JP7065516B2 - アミロイドベータのn末端エピトープおよびそれに対する立体配座選択的抗体 - Google Patents
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Description
これは2015年11月9日に出願された米国特許出願第62/253044号、2016年5月4日に出願された米国特許出願第62/331,925号、2016年7月22日に出願された米国特許出願第62/365,634号および2016年9月12日に出願された米国特許出願第62/393,615号の優先権の利益を主張するPCT出願であり、上記の出願はそれぞれ参照により本明細書に組み込まれる。
本開示は、N末端アミロイドベータ(AベータまたはAβ)エピトープおよびそれに対する抗体、より具体的には、例えばAベータオリゴマー内で選択的に接触可能な立体配座Aベータエピトープおよび関連する抗体組成物に関する。
36~43アミノ酸のペプチドとして存在するアミロイドベータ(Aベータ)は、酵素であるβセクレターゼおよびγセクレターゼによってアミロイド前駆体タンパク質(APP)から放出される産物である。アルツハイマー病(AD)患者では、Aベータは可溶性モノマー、不溶性線維および可溶性オリゴマーの形で存在し得る。モノマー型のAベータは、主として不定形のポリペプチド鎖として存在する。線維型のAベータは、よく株と呼ばれる様々な形態に凝集することができる。これらの構造のうちのいくつかは固体NMRにより決定されている。
a.生体試料と、本明細書に記載される抗体または本明細書に記載されるイムノコンジュゲートとを接触させること;および
b.何らかの抗体複合体の存在を検出すること
を含む、方法を含む。
a.抗体:Aベータオリゴマー複合体の形成が可能な条件下で、試料と、Aベータオリゴマーに特異的かつ/または選択的な本明細書に記載される抗体または本明細書に記載されるイムノコンジュゲートとを接触させること;および
b.何らかの複合体の存在を検出すること
を含み、
検出可能な複合体の存在により、試料がAベータオリゴマーを含有し得ることが示される、
方法。
本明細書には、アルツハイマー病に関連するオリゴマー種を含めたAベータの毒性オリゴマー種内で優先的に接触可能なエピトープを標的とし得る抗体、免疫療法組成物および方法が提供される。Aベータのオリゴマー種内での抗体結合に特異的かつ/または選択的に接触可能であり得るAベータの領域が特定された。
本明細書で使用される「Aベータ(A-beta)」という用語は、代替的に「アミロイドベータ」、「アミロイドβ」、Aベータ(Abeta)、Aベータ(A-beta)または「Aβ」と呼ばれ得る。アミロイドベータは、36~43個のアミノ酸よりなるペプチドであり、あらゆる種のあらゆる野生型および変異型、特にヒトAベータを包含する。Aベータ40は40アミノ酸型を指し、Aベータ42は42アミノ酸型を指すなど。ヒト野生型Aベータ42のアミノ酸配列は配列番号3で示されるものである。
本発明者らは、Aベータのアミノ酸残基6~9にAベータの「エピトープ領域」HDSG(配列番号1)を特定した。本発明者らはさらに、そのエピトープ領域が立体配座エピトープであり得る、またはこれを含み得ることおよびHDSG(配列番号1)がAベータのオリゴマー種での抗体結合に選択的に接触可能であり得ることを明らかにした。
したがって、本開示は、アミノ酸HDSG(配列番号1)またはその一部よりなるAベータのエピトープを特定するものであり、HDSG(配列番号1)はAベータのアミノ酸残基6~9に対応する。実施例で示されるように、エピトープHDSG(配列番号1)、HDSGY(配列番号4)およびRHDSG(配列番号5)(本明細書でまとめて「HDSGおよび関連エピトープ」と呼ばれるエピトープに包含される)がAベータ線維で不規則になりやすい領域として特定された。残基HDSG(配列番号1)は集団座標法を用いた2つの予測に現れたものであり、このエピトープの隣接残基であるR5およびY10はそれぞれ、1つの予測にみられたものである。
上記の化合物および特に環状化合物を用いて、Aベータ内のDS、HDSもしくはHDSG(配列番号1)(例えば、残基6~7、6~8もしくは6~9)と特異的に結合する抗体および/またはAベータの種、例えばAベータのオリゴマー種のDS、HDSVもしくはHDSG(配列番号1)の特定の立体配座を認識する抗体を生じさせることができる。これと同様に、例えばRHDSG(配列番号5)、HDSGY(配列番号4)、HDSG(配列番号1)および/または本明細書に記載されるその他の関連エピトープ配列を含む環状化合物を用いて、HDSG(配列番号1)などおよび/またはその特定の立体配座エピトープと特異的に結合する抗体を生じさせることができる。本明細書で示されるように、シクロ(CGHDSGG)(配列番号2)に対する抗体を生じさせ、この抗体は、直鎖状CGHDSGG(配列番号2)よりもシクロ(CGHDSGG)(配列番号2)と特異的かつ/または選択的に結合した。
さらなる態様は、本明細書に記載される化合物、免疫原、核酸、ベクターまたは抗体を含む組成物である。
さらなる態様は、無菌バイアルなどのバイアルあるいはその他の筐体に入った本明細書に記載されるi)抗体および/またはその結合フラグメント、ii)核酸、iii)ペプチドまたは免疫原、iv)組成物あるいはv)組換え細胞と、任意選択で参照物質および/またはキットの使用のための説明書とを含む、キットに関する。
本明細書に記載される化合物、免疫原および抗体を作製および使用する方法が含まれる。
a.抗体:Aベータオリゴマー複合体の形成が可能な条件下で、生体試料と、本明細書のAベータオリゴマーに特異的かつ/または選択的な本明細書に記載される抗体とを接触させること;および
b.何らかの複合体の存在を検出すること
を含み、
検出可能な複合体の存在により、試料がAベータオリゴマーを含有し得ることが示される。
(a)抗体-抗原複合体の生成が可能な条件下で、前記対象の生体試料と本明細書に記載される抗体とを接触させること;
(b)被験試料中の抗体-抗原複合体の量を測定すること;および
(c)被験試料中の抗体-抗原複合体の量と対照とを比較すること
を含み、
対照と比較して生体試料中に抗体-抗原複合体が検出されることにより、試料がAベータを含むことが示される。
実施例1
集団座標予測
ミスフォールドされたエピトープを予測する方法は、2015年11月9日に出願され参照により本明細書に組み込まれる米国特許出願第62/253044号、「Systems and methods for predicting misfolded protein epitopes by collective coordinate biasing」に記載されている「集団座標バイアス」によって得られる。そこに記載されているように、この方法は、あるタンパク質(またはペプチド凝集体)にグローバル座標のバイアスをかけて、そのタンパク質(またはペプチド凝集体)をミスフォールドさせた後、部分的に構造化されていないタンパク質(またはペプチド凝集体)のフォールドされない可能性が最も高いアンフォールド領域を予測する、分子動力学に基づくシミュレーションを用いるものである。バイアスシミュレーションを実施し、各残基インデックスに対応する(検討するタンパク質の初期構造のものと比較した)溶媒接触表面積(SASA)。SASAはH2Oが接触可能な表面積を表す。SASAの(検討するタンパク質の初期構造のものと比較した)正の変化は、関連する残基インデックスの領域におけるアンフォールドを示すと考え得る。この方法をそれぞれが独自の形態を有する3種類のAベータ株、すなわち、3回対称性構造(またはモノマー)(PDBエントリー2M4J)のAβ-40ペプチド、2回対称性構造(PDBエントリー2LMN)のAβ-40モノマーおよび一本鎖平行in-register(例えば、一本の鎖の残基が近接する鎖の同じ残基と相互作用するベータシートが反復したもの)構造(PDBエントリー2MXU)のAβ-42モノマーに適用した。
I.集団座標予測
エピトープHDSG(配列番号1)は実施例1に記載した集団座標法から予測される2M4J株由来のエピトープとして現れる。いくつかの他の線維の株では、この領域は不規則な状態であり、このためPDBエントリーの構造をもたない。例えば、2LMNではHDSが構造化されておらず、このため、これらの残基の座標はPDB構造に存在せず、2LMPではHDSがPDBに構造化されておらず、2MXUではHDSG(配列番号1)がPDBに構造化されていない。予測されたエピトープを示す対応する図が図1である。線維構造2M4Jに関しては、HDSG(配列番号1)を左右から挟む2つの配列、RHDSG(配列番号5)およびHDSGY(配列番号4)が予測され;残基R5およびY10はそれぞれ1つの予測から現れるが、残基HDSG(配列番号1)は2つの予測から現れ、このため、これら2つの予測の間の推定コンセンサス配列として扱った。
本明細書に記載され、図1に示されるように、HDSG(配列番号1)エピトープは、線維PDB構造2M4Jに変性ストレスを加えたときの予測として現れる。HDSGY(配列番号4)およびRHDSG(配列番号5)も予測される。
環状ペプチドCGHDSGG(配列番号2)の曲率プロファイルにより環状HDSG(配列番号1)と直鎖状ペプチドまたは線維が区別される。曲率プロファイルを図2に示す。位置6のヒスチジン残基は直鎖状ペプチドまたは線維よりも曲率が小さい。直鎖状ペプチドは、環状ペプチドまたは線維により検討した立体配座と比較して曲がる傾向がある。一方、アスパラギン酸残基D7およびセリン残基S8は、環状ペプチド内での曲率が、直鎖状ペプチドまたは線維内でのこれらの残基の曲率と比較して高い。環状ペプチド内でのグリシン残基(G)は、曲率が線維内での曲率より若干高いが、直鎖状ペプチド内での曲率より若干低い。以上の結果は、環状ペプチドに対する抗体が、モノマーまたは線維のものとは異なる立体配座アンサンブルを示す種に対して選択性を示す可能性があることを示している。
オリゴマー選択的エピトープを特定するためのさらなるコンピュータ支援が、オリゴマー内の露出エピトープの代わりである環状ペプチドの側鎖二面角分布ならびに主鎖二面角のラマチャンドランφおよびΨ分布の両方によって得られ、これらの分布は、多数の角について線維またはモノマーの対応する分布とは実質的に異なる。
C-CA-CB-CG:12%
N-CA-CB-CG:19%
O-C-CA-CB:15%。
C-CA-CB-CG:30%
N-CA-CB-CG:49%
O-C-CA-CB:6%
C-CA-CB-OG:92%(このことは実質的に重なり合っていることを示しているが、図5からわかるように、図5で重なり合っているピークの重みは実質的に異なっており、好ましい二面角が依然として異なり得ることを示している)
N-CA-CB-OG:84%(この二面角についても上のC-CA-CB-OGと同じことが言える)
O-C-CA-CB:19%。
C-CA-CB-OG:30%
N-CA-CB-OG:28%
O-C-CA-CB:25%。
H、DおよびSのそれぞれの側鎖の各二面角のエントロピーを検討した。H6、D7およびS8の二面角のエントロピーを図6にプロットする。H、DおよびSのいくつかの二面角のエントロピーが線維と比較して減少しており、このことは、線維モノマーまたは直鎖状モノマーとは異なる傾向がある立体配座においてそれらの角のポーズが制約されることを示している。
エピトープが抗体に対して露出する主鎖配向は、ペプチドが直鎖状型であるか、環状型であるか、または繊維型であるかによって異なる。この相違は、直鎖ペプチドおよび環状ペプチドの両方の残基H、D、S、Gについて、主鎖に沿ってラマチャンドラン角ファイおよびプサイ(またはΦおよびΨ)をプロットすることにより定量化することができる。配列CGHDSGG(配列番号2)よりなる直鎖状ペプチドおよび環状ペプチドの両方ならびに線維構造2M4JにおけるHDSG(配列番号1)の残基H6、D7、S8およびG9について平衡シミュレーションでサンプリングしたファイ角およびプサイ角を図7にプロットする。図7から、残基D7およびS8のBB二面角に関して、環状ペプチドの主鎖二面角分布は、直鎖状ペプチドまたは線維構造2M4JにおけるペプチドHDSG(配列番号1)についてサンプリングした二面角の分布との差が最も大きいことがわかる。
CamSol予測スキーム[4]によるAベータ42の残基の溶解度を図8に示す。残基H6~G9が縦の線により示されている。
のように導入され、式中、siは残基iの溶解度であり、ssaveは42残基Aベータペプチドの平均溶解度であり、上に記載されるδsは、42残基Aベータペプチドの溶解度の標準偏差である。
はAβの42残基全体の溶解度の標準偏差である。SASA対残基インデックスのプロットは、全立体配座において、残基がN末端の方向に向かって、より抗体が接触可能な表面を提示する傾向があることを示している。明確に定められていない状況において所与の残基が溶媒に表面を露出する可能性の尺度を示す溶解度により重み付けした場合、環状ペプチドアンサンブルでは残基H6とS8に差がみられない。SASAを上記のように溶解度により重み付けし、次いで対応する線維の値を減じて残基に対する値を示した場合、残基S8は環状ペプチドで最も露出し溶解性の高いものとして現れる。この解析から、このペプチドでは残基S8およびH6が潜在的に結合に特に重要なものであるものとして強調される。
立体配座間に標準的な構造アライメントの測定基準を用い、次いでクラスタリング解析を実施することにより、配列HDSG(配列番号1)が環状ペプチドにおいて直鎖状ペプチドとは異なる立体配座を提示するという決定的証拠を確認することができる。直鎖状ペプチドおよび環状ペプチドのCGHDSGG(配列番号2)ならびにPDB ID 2M4Jに対応する3回対称性構造の完全長線維について立体配座の平衡アンサンブルを得る。これらのアンサンブルから残基HDSG(配列番号1)に関する立体配座のスナップショットを収集し、次いで、直鎖状ペプチドアンサンブルの最も大きい3つのクラスターの重心を構造的に整列させ、平均二乗偏差(RMSD)を記録する。ここでは、最大クラスターアルゴリズム(http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/maxcluster)によりクラスタリングを実施する。図10に、直鎖状アンサンブル、環状アンサンブルおよび線維アンサンブルの3つの対応するRMSD値を三次元散布図としてプロットする。
立体配座拘束エピトープを含む環状化合物構築
シクロ(CGHDSGG)(配列番号2)などのHDSG(配列番号1)を含むペプチドは頭-尾環化することができる。
以下の方法(CPC Scientific社、サニーベール、カリフォルニア州)を用いてシクロ(CGHDSGG)(配列番号2)を合成した。標準的な従来のFmocベースの固相ペプチド合成により、保護された直鎖状ペプチドを2-クロロトリチルクロリド樹脂上で合成し、次いで、30%HFIP/DCMを用いて樹脂から切断した。低濃度のEDC.HCl/HOBt/DIEAのDMF溶液を用いることにより、保護された直鎖状ペプチドを対応する保護された環状ペプチドに環化した。保護された環状ペプチドをTFAにより脱保護して粗環状ペプチドを得、粗ペプチドをRP HPLCにより精製し、凍結乾燥後、純粋な環状ペプチドを得た。
環状化合物シクロ(CGHDSGG)(配列番号2)を上記の通りに合成し、次いでBSAおよび/またはKLHとコンジュゲートした(CPC Scientific社、サニーベール、カリフォルニア州)。PBS緩衝液に溶かしたSMCCによりBSAまたはKLHを再活性化し、次いで、純粋なペプチドをPBS緩衝液に溶かした溶液をコンジュゲーション混合物に加え、コンジュゲーション混合物を室温(RT)で2時間攪拌した。次いで、コンジュゲーション混合物を透析後に凍結乾燥させて、コンジュゲーション産物を得た。
抗体の作製および選択
立体配座拘束化合物、任意選択で環状化合物、例えばシクロ(CGHDSGG)(配列番号2)ペプチドなどのHDSG(配列番号1)を含む環状ペプチドなどとキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)とを結合させる。カナダ動物管理協会により承認されたプロトコルに従ったマウスモノクローナル抗体作製(ImmunoPrecise Antibodies社(ビクトリア、ブリティッシュコロンビア州、カナダ))のためにシクロペプチドを送る。BSAと結合した、抗体の作製に使用する立体配座ペプチドまたは関連ペプチド、例えばシクロ(CGHDSGG)(配列番号2)ペプチドを用いて、マウス血清をスクリーニングする。
斑/線維との結合の有無の評価
新鮮な凍結ヒト脳切片または10%ホルマリンで固定した後の凍結ヒト脳切片で免疫組織化学を実施することができる。過酸化水素の0.5%メタノール溶液を20分間用いて、内因性ペルオキシダーゼ活性を失活させることができる。pH6.0のクエン酸ナトリウムおよび25分間の蒸気加熱を用いて抗原回復を達成することができ、次いで室温(RT)で30分間冷却する。TBS中で5~7分間安定化させた後、切片を70%ギ酸によりRTで15分間処理し、次いでTBSで3×15分間洗浄する。加湿チャンバ内で無血清タンパク質ブロッキング試薬(Dako Canada社、ミシサガ、オンタリオ州、カナダ)と1時間インキュベートすることにより非特異的染色をブロックする。
方法および材料
免疫原
米国カリフォルニア州サニーベールのCPC Scientific社で環状ペプチドおよび直鎖状ペプチドを作製した。トリフルオロ酢酸対イオンプロトコルを用いてペプチドをKLH(免疫感作用)およびBSA(スクリーニング用)とコンジュゲートした。ペプチドを脱塩し、MSおよびHPLCにより確認し、純度95%であると判断された。ペプチドをIPA社に発送し、マウスを用いたモノクローナル抗体の作製に使用した。
キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)と結合したシクロ(CGHDSGG)(配列番号2)に対するハイブリドーマおよびモノクローナル抗体をいくつか作製した。
リンパ球を単離し、ポリエチレングリコール(PEG1500)の存在下でマウスSP2/0ミエローマ細胞と融合させた。融合した細胞をHAT選択を用いて培養した。この方法では、半固形メチルセルロース系HAT選択培地を用いてハイブリドーマ選択とクローン化とを1つの段階に組み合わせる。半固形培地上で単一細胞由来のハイブリドーマが増殖してモノクローナルコロニーを形成した。融合事象から10日後、得られたハイブリドーマクローンを96ウェル組織培養プレートに移し、中期対数増殖期に達するまで(5日)HT含有培地で増殖させた。
ハイブリドーマの組織培養上清を間接ELISAによりスクリーニング抗原(環状ペプチド-BSA)(一次スクリーニング)で試験し、ヤギ抗IgG/IgM(H&L)-HRP二次抗体を用いてIgG抗体およびIgM抗体の両方について探索し、TMB基質で発色させた。このアッセイで0.2OD超であったクローンを次の試験ラウンドに進めた。陽性培養物をスクリーニング抗原で再試験して分泌を確認し、無関係の抗原(ヒトトランスフェリン)で再試験して非特異的mAbを除去し、偽陽性を除外した。抗体捕捉ELISAにより目的とする全クローンにアイソタイピングを実施して、それらがIgGアイソタイプであるのか、またはIgMアイソタイプであるのかを判定した。また、目的とする全クローンを間接ELISAにより他の環状ペプチド-BSAコンジュゲートおよび直鎖状ペプチド-BSAコンジュゲートで試験して、交差反応性を評価した。
簡潔に述べれば、ELISAプレートを4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルのシクロ(CGHDSGG)(配列番号2)コンジュゲートBSA 100uL/ウェルでコートし、脱脂粉乳の3%PBS溶液を用いて室温で1時間ブロックした。一次抗体:37℃で振盪しながら1時間インキュベートした100uL/ウェルのハイブリドーマ上清。二次抗体:37℃で1時間振盪したPBS-Tween中1:10,000の100uL/ウェルのヤギ抗マウスIgG/IgM(H+L)-HRP。全洗浄段階をPBS-Tweenで30分間実施した。基質3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジン(TMB)を50uL/ウェルで加え、暗所で発色させ、等体積の1M HClで停止させた。
ELISAプレートを1)4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルのシクロ(CGHDSGG)コンジュゲートBSA(配列番号2)100uL/ウェル;2))4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルの直鎖状CGHDSGGコンジュゲートBSA(配列番号2)100uL/ウェル;または3)4℃の炭酸塩コーティング緩衝液(pH9.6)O/N中0.1ug/ウェルの陰性ペプチド100uL/ウェルでコートした。一次抗体:37℃で振盪しながら1時間インキュベートした100uL/ウェルのハイブリドーマ上清。二次抗体:37℃で1時間振盪したPBS-Tween中100uL/ウェルの1:10,000ヤギ抗マウスIgG/IgM(H+L)-HRP。全洗浄段階をPBS-Tweenで30分間実施した。基質TMBを50uL/ウェルで加え、暗所で発色させ、等体積の1M HClで停止させた。
抗体捕捉実験を用いてハイブリドーマ抗体にアイソタイピングを実施した。捕捉プレートをpH9.6の炭酸塩コーティング緩衝液中、4℃で一晩、100uL/ウェルの1:10,000ヤギ抗マウスIgG/IgM(H&L)抗体でコートした。ブロッキング段階は用いなかった。一次抗体(ハイブリドーマ上清)を加えた(100ug/mL)。二次抗体:37℃で1時間振盪したPBS-Tween中100uL/ウェルの1:5,000ヤギ抗マウスIgGγ-HRPまたは1:10,000ヤギ抗マウスIgMμ-HRP。全洗浄段階をPBS-Tweenで30分間実施した。基質TMBを50uL/ウェルで加え、暗所で発色させ、等体積の1M HClで停止させた。
抗体とAベータモノマーおよびAベータオリゴマーとの結合に関するSPR解析
AベータモノマーおよびAベータオリゴマーの調製組換えAベータ40およびAベータ42ペプチド(California Peptide社、ソルトレイクシティ、ユタ州、米国)を氷冷ヘキサフルオロイソプロパノール(HFIP)に溶かした。一晩蒸発させることによりHFIPを除去し、SpeedVac遠心機で乾燥させた。モノマーの調製には、ペプチド薄膜をDMSOで戻して5mMとし、dH2Oでさらに100μMに希釈し、直ちに使用した。5mMのDMSOペプチド溶液を無フェノールレッドF12培地(Life Technologies社、バーリントン、オンタリオ州、カナダ)で希釈して最終濃度100μMとすることによりオリゴマーを調製し、4℃で24時間~7日間インキュベートした。
可溶性脳抽出物およびCSFの調製UBC Alzheimer’s and Related Disorders Clinicで評価した患者からヒトの脳組織およびCSFを採取した。推定ADの臨床診断はNINCDS-ADRDA基準[5]に基づくものである。腰椎穿刺後1時間以内にCSFをポリプロピレンチューブに収集し、処理し、100μLポリプロピレンバイアルに等分し、-80℃で保管する。
組織培養上清の一次スクリーニングでは、Aベータ42モノマーおよびAベータ42オリゴマーを直接結合アッセイに用いた。二次スクリーニングでは、Aベータ40モノマーおよびAベータ42オリゴマー、可溶性脳抽出物およびCSF試料を間接(捕捉)結合アッセイに用いた。
コグネイト環状ペプチドに対する抗体の結合の有無について組織培養上清をスクリーニングした。各試料を希釈し、固定化したペプチドおよびBSA参照の表面に120秒間、二重反復で注入し、次いで、300秒間の解離相にのみランニング緩衝液を注入した。解析サイクル毎に、センサーチップ表面を再生した。BSA参照表面およびブランクランニング緩衝液注入から結合を減算することによりセンサグラムを二重参照し、解離相の結合応答報告点を収集した。
次の合成Aベータ42オリゴマーを上記の通りに作製および固定化し、抗体結合応答を解析した。Aベータ42オリゴマーに対する抗体結合応答を環状に対する結合応答と比較した。
Aベータ42オリゴマー結合をさらに検証および確認するため、抗体を共有結合で固定化し、次いで、市販の調製済みの安定なAベータ42オリゴマー(SynAging社、ヴァンドゥーヴル=レ=ナンシー、フランス)を表面に注入した。
ELISA試験では、ハイブリドーマクローンの大部分がシクロペプチドと結合することがわかった。
ハイブリドーマ上清のELISAプレスクリーニングにより、直鎖状ペプチドと比較して環状ペプチドとの結合の増大を示すクローンを特定した。そのクローンの一部はKLH-エピトープリンカーペプチドに対して反応性であった。これらはさらなる検討から除外した。本明細書に記載されるアイソタイピング法を用いて、クローンの大部分がIgGアイソタイプであることが明らかになった。
表面プラズモン共鳴を用いて、抗体クローンを含有する組織培養上清を環状ペプチド、直鎖状ペプチド、AベータオリゴマーおよびAベータモノマーとの直接結合について試験した。
二次スクリーニング
免疫組織化学
固定も抗原回復も実施していない凍結ヒト脳切片に免疫組織化学を実施した。加湿チャンバ内で無血清タンパク質ブロッキング試薬(Dako Canada社、ミシサガ、オンタリオ州、カナダ)と1時間インキュベートすることにより非特異的結合をブロックした。免疫染色には以下の一次抗体を使用した:マウスモノクローナルアイソタイプ対照IgG1、IgG2aおよびIgG2bならびに抗アミロイドβ6E10(以上、Biolegend社から購入)ならびにシクロペプチドに対して反応性を示す選択した精製クローン。いずれの抗体も1μg/mLで使用した。切片を室温で1時間インキュベートし、TBS-Tで3×5分間洗浄した。西洋ワサビペルオキシダーゼとコンジュゲートした抗マウスIgG(1:1000、ECL社)を切片に添加し、45分間インキュベートし、次いでTBS-Tで3×5分間洗浄した。DAB発色試薬(Vector Laboratories社、バーリントン、オンタリオ州、カナダ)を加え、バックグランド染色に対して所望の標的レベルに達したとき、切片を蒸留水でリンスした。切片をマイヤーのヘマトキシリンで対比染色し、脱水し、カバーガラスをかけた。スライドを光学顕微鏡(Zeiss Axiovert 200M、Carl Zeiss Canada社、トロント、オンタリオ州、カナダ)下で検査し、Leica社のDC300デジタルカメラおよびソフトウェア(Leica Microsystems Canada社、リッチモンドヒル、オンタリオ州)を用いて代表的な画像を20倍および40倍の倍率で記録した。Adobe PhotoshopでLevels Auto Correctionを用いて画像を最適化した。
UBCのClinical Research Ethics Board(C04-0595)から承認を受け、メリーランド大学のBrain and Tissue Bankからヒト脳組織を入手した。UBC Hospital Clinic for Alzheimer’s and Related Disordersで評価した患者からCSFを採取した。この試験はUBCのClinical Research Ethics Boardにより承認を受けたものであり、CSF試料を収集する前に参加者または法律上の近親者から書面による同意を得た。推定ADの臨床診断はNINCDS-ADRDA基準に基づくものとした。腰椎穿刺後1時間以内にCSFをポリプロピレンチューブに収集し、処理し、100μLポリプロピレンバイアルに等分し、-80で保管した。
CSF脳抽出物および免疫組織化学
いくつかのクローンをCSF、可溶性脳抽出物中でのAベータとの結合能について試験し、死体AD脳の組織試料を表6に示す。表6では陽性度がプラス印の数により示されている。
合成オリゴマー結合
共有結合で固定化した抗体との結合について市販の調製済み合成アミロイドベータオリゴマー(SynAging社、ヴァンドゥーヴル=レ=ナンシー)の連続2倍希釈物(7.8nM~2000nM)を試験した。対照抗体mAb6E10の結果を図18Aに示し、マウス対照IgGの結果を図18Bに示す。シクロ(CGHDSGG)(配列番号2)に対して生じさせた抗体を用いた結果を図18Cに示す。
ホルマリン固定組織での免疫組織化学
シクロ(CGHDSGG)(配列番号2)に対して生じさせた抗体を用いてヒト脳組織を評価した。患者はそれまでに、(i)老人斑および神経原線維濃縮体を示すビルショウスキー銀法、(ii)アミロイドを示すコンゴーレッドならびに(iii)濃縮体を示し老人斑が「神経突起性」であることを確認するタウ免疫組織化学法の3部よりなる方法でアルツハイマー病であることが特徴付けられ診断されていた。この組織を用いて、選択したモノクローナル抗体クローンの斑反応性を試験した。脳組織を10%緩衝ホルマリンで数日間固定し、Sakura VIP組織処理装置でパラフィン処理した。組織切片にマイクロ波による抗原回復(AR)を実施するか、または実施せずに、1μg/mlの抗体で探索した。陽性対照として、汎アミロイドベータ反応性抗体6E10を、選択した抗体クローンと同時に含めた。抗体を抗体希釈剤(Ventana社)で希釈し、OptiView DAB(Ventana社)で発色させた。Ventana Benchmark XT IHC染色装置で染色を実施した。Olympus BX45顕微鏡で画像を取得した。画像は神経病理学の専門知識を有する専門の病理学者が盲検的に解析した。
オリゴマー伝播の阻害
チオフラビンT(ThT)結合アッセイを用いてアミロイドベータ(Aβ)凝集の伝播に対する抗体の効果を検討することにより、その生物学的機能をin vitroで試験した。Aβ凝集は、予め形成された小さいAβオリゴマーの核によって誘導され、この核を介して伝播し、単量体Aβから可溶性オリゴマー、次いで不溶性線維への全過程には同時に、ベータシート形成の増大が伴う。このことはベンゾチアゾール塩のThTによってモニターすることができ、ThTがベータシートに富む構造に結合すると、その励起および発光の最大値がそれぞれ385nmから450nmおよび445nmから482nmに遷移し、それにより蛍光が増大する。簡潔に述べれば、Aβ1~42(Bachem Americas社、トーランス、カリフォルニア州)を可溶化し、超音波処理し、トリス-EDTA緩衝液(pH7.4)で希釈し、黒色の96ウェルマイクロタイタープレート(Greiner Bio-One社、モンロー、ノースカロライナ州)のウェルに加え、これに等体積のシクロペプチドに対する抗体または無関係のマウスIgG抗体アイソタイプ対照を加え、Aβ1~42ペプチドと抗体のモル比を1:5とした。ThTを加え、プレートを室温で24時間インキュベートし、1時間毎にWallac Victor3v 1420 Multilabel Counter(PerkinElmer社、ウォルサム、マサチューセッツ州)を用いてThT蛍光を測定し記録した。全ウェルからバックグラウンド緩衝液の蛍光読取り値を減算し、さらに、対応するウェルから抗体単独のウェルの読取り値を減算した。
アルツハイマー病の免疫療法に最適なプロファイルの達成:毒性Aベータオリゴマーに特異的な抗体の合理的作製
目的:毒性アミロイドβオリゴマー(AβO)に特異的な抗体を作製すること
背景:現時点での証拠から、AβOの伝播性プリオン様株は、モノマーおよび線維とは対照的に、ニューロンに対して優先的に毒性を示し、アルツハイマー病(AD)のタウ病態を誘発することが示唆される。さらに、臨床試験では、用量制限有害作用がAβ線維認識と関係があることがわかっている。これらの観察結果から、安全性および有効性のためには毒性AβOの特異的中和が望ましいものであり得ることが示唆される。
コグネイト構造化ペプチドおよび合成AβOを認識することが可能であり、非構造化ペプチド、リンカーペプチドまたはAβモノマーとはほとんどまたは全く結合しないことに基づき、5種類の予測エピトープに対するIgGクローンを66種類選択し精製した。さらなるスクリーニングにより、対照と比較してAD患者のCSFおよび脳抽出物中の天然の可溶性AβOと優先的に結合する抗体を特定した。AD脳の免疫組織化学的解析により、斑と反応しない抗体クローンを選択することができた。
毒性阻害アッセイ
シクロペプチドに対して生じさせた抗体によるAベータ42オリゴマーの毒性の阻害をラット一次皮質ニューロンアッセイで試験することができる。
in vivo毒性阻害アッセイ
シクロペプチドに対して生じさせた抗体によるAベータ42オリゴマーの毒性の阻害をマウス行動試験でin vivoで試験することができる。
in vivo伝播阻害アッセイ
Aベータ毒性オリゴマーのin vivoの伝播およびそれに関連する病態を様々なアルツハイマー病(AD)げっ歯類モデルで研究することができる。例えば、ヒトAPPのトランスジェニックマウス(例えば、APP23マウス)またはヒトAPPとPSEN1のトランスジェニックマウス(APPPS1マウス)は高レベルのAベータを発現し、加齢とともに炎症および神経損傷を伴うアミロイド沈着が徐々にみられるようになる。オリゴマー含有脳抽出物の脳内接種によりこの過程を大幅に加速させることができる(13、14)。これらのモデルは、脳内または全身に投与した被験抗体によるAベータオリゴマー伝播の阻害を研究するためのシステムとなる。
CDRシーケンシング
IgG2A重鎖とカッパ軽鎖とを有することが明らかになったクローン25(303-25)を重鎖および軽鎖のCDRおよび可変領域に選択した。
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Claims (25)
- HDSG(配列番号1)の配列からなるAベータペプチドおよびリンカーからなる、環状化合物であって、
前記リンカーが、前記AベータペプチドのN末端残基および前記AベータのC末端残基と共有結合しているアミノ酸GCGまたはCGCからなる、
環状化合物。 - 配列番号2の配列からなる、請求項1に記載の化合物。
- 請求項1または2に記載の環状化合物を含む、免疫原。
- 前記化合物が、担体タンパク質または免疫原性増強物質と結合している、請求項3に記載の免疫原。
- 前記担体タンパク質がウシ血清アルブミン(BSA)である、または前記免疫原性増強物質がキーホールキーホールリンペットヘモシアニン(KLH)である、請求項4に記載の免疫原。
- Aベータモノマーおよび/またはAベータ線維よりもAベータオリゴマーと選択的に結合する抗体であって、配列番号17の配列を有するCDR-H1と配列番号18の配列を有するCDR-H2と配列番号19の配列を有するCDR-H3とを含む重鎖可変領域、および配列番号20の配列を有するCDR-L1と配列番号21の配列を有するCDR-L2と配列番号22の配列を有するCDR-L3とを含む軽鎖可変領域を含む、抗体。
- モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体である、あるいはヒト化抗体である、請求項6に記載の抗体。
- Fab、Fab’、F(ab’)2、scFv、dsFv、ds-scFv、二量体、ナノボディ、ミニボディ、ダイアボディおよびその多量体から選択される抗体結合フラグメントである、請求項6または7に記載の抗体。
- 前記抗体は、(i)配列番号24で示されるアミノ酸配列;または(ii)配列番号24と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、そのCDRの配列が配列番号17、18および19で示される、アミノ酸配列;を含む重鎖可変領域を含む、および/または
前記抗体は、(i)配列番号26で示されるアミノ酸配列;または(ii)配列番号26と少なくとも90%の配列同一性を有するアミノ酸配列であって、そのCDRの配列が配列番号20、21および22で示される、アミノ酸配列;を含む軽鎖可変領域を含む、
請求項6~8のいずれか1項に記載の抗体。 - 前記重鎖可変領域は、配列番号24で示されるアミノ酸配列を含む、もしくはこれよりなる、および/または
前記軽鎖可変領域は、配列番号26で示されるアミノ酸配列を含む、もしくはこれよりなる、
請求項9に記載の抗体。 - 請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体と、検出可能な標識または細胞毒性物質と、を含むイムノコンジュゲート。
- 前記検出可能な標識は、陽電子放出放射性核種を含む、請求項11に記載のイムノコンジュゲート。
- 請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体または請求項11もしくは12に記載のタンパク質性イムノコンジュゲートをコードする、核酸分子。
- ベクターに含まれている、請求項13に記載の核酸分子。
- 請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体を発現する、細胞。
- ハイブリドーマまたはCHO細胞である、請求項15に記載の細胞。
- 請求項1または2に記載の化合物、請求項3~5のいずれか1項に記載の免疫原、請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体、請求項11もしくは12に記載のイムノコンジュゲート、請求項13もしくは14に記載の核酸または請求項15もしくは16に記載の細胞を含む、組成物。
- アジュバントをさらに含む、請求項17に記載の組成物。
- 請求項1または2に記載の化合物、請求項3~5のいずれか1項に記載の免疫原、請求項17もしくは18に記載の組成物、請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体、または請求項11もしくは12に記載のイムノコンジュゲート、請求項13もしくは14に記載の核酸分子、前記核酸分子を含むベクターまたは請求項15もしくは16に記載の細胞を含む、キット。
- 請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体を作製する方法であって、
請求項1または2に記載の環状化合物、請求項3~5のいずれか1項に記載の免疫原、または前記環状化合物もしくは前記免疫原を含む組成物、をヒト以外の対象に投与することと、
投与する前記環状化合物もしくは前記免疫原および/またはAベータオリゴマーに対して特異的または選択的である抗体および/または抗体を発現する細胞を単離することと、を含む方法。 - 生体試料がAベータを含むかどうかを判定する方法であって、
a.前記生体試料を、請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体または請求項11もしくは12に記載のイムノコンジュゲートと接触させること、および
b.抗体複合体の存在を検出すること;
を含む方法。 - Aベータオリゴマーの伝播の阻害に使用するための、あるいはADおよび/または他のAベータアミロイド関連疾患を有する対象の治療に使用するための、1)請求項6~12のいずれか1項に記載の抗体またはイムノコンジュゲート、あるいは前記抗体またはイムノコンジュゲートを含む医薬組成物;2)請求項3~5のいずれか1項に記載の免疫原、または前記免疫原を含む医薬組成物;あるいは3)1)の抗体または2)の免疫原をコードする核酸または前記核酸を含むベクター。
- 治療される対象由来の生体試料が、請求項6~10のいずれか1項に記載の抗体を用いてAベータの有無またはレベルに関して評価されている、請求項22に記載の抗体、イムノコンジュゲート、免疫原、医薬組成物、核酸またはベクター。
- 脳またはCNSの他の部分に直接投与される、請求項22または23に記載の抗体、イムノコンジュゲート、免疫原、医薬組成物、核酸またはベクター。
- 投与する前記環状化合物もしくは前記免疫原および/またはAベータオリゴマーに対して特異的または選択的である抗体は、前記Aベータペプチドを含む直鎖状ペプチドと結合しない、もしくはほとんど結合しない、および/または斑と結合しない、もしくはほとんど結合しない、請求項20に記載の方法。
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