JP7122976B2 - 医学に使用するためのヒト血小板溶解物由来細胞外小胞 - Google Patents
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Description
1.BCAアッセイ、ブラッドフォードアッセイのような同様のアッセイ、又は、(「NanoDrop」のような)分光法に基づく機器を用いた、標準的なタンパク質定量方法によるタンパク質含有量[mg/ml]の決定。
ウエスタンブロット(WB)、(高分解能)フローサイトメトリー、又は、質量分析技術を用いた包括的プロテオーム解析を含む、hPLEVのタンパク質プロファイリングのための解析アプローチは、免疫学的マーカー、シグナル伝達マーカー、サイトカイン及び他の関連する生理活性タンパク質の含有量等、他のEVマーカーの特性解析のための技術水準でもある。
hPLEV RNAをプロファイリングするために、マイクロアレイ技術が適用可能である。マイクロアレイは、スライド又はチップベースの媒体を使用して既知の核酸断片の発現を解析するための十分に確立された技術である。マイクロアレイは、mRNA、miRNA及び長鎖非コーディングRNA(IncRNA)種をスクリーニングするために利用可能である。
小胞膜中の脂質及び脂質ラフト関連タンパク質は、細胞外小胞に安定性及び構造的完全性を提供する。それらの起源となる細胞と比較して、hPL-EVは、同様の脂質組成を表すはずである。
EV富化画分のELISAアッセイに基づくサイトカイン分析
HPLEV含有画分は、サイトカインプロファイルについて半定量的に解析され得る。この解析は、例えば、市販の膜ベースのサイトカインアレイを用いて行われる。サイトカインには、ケモカイン、腫瘍壊死因子、インターロイキン、インターフェロン及びコロニー刺激因子が含まれる。この技術は、多くの異なる所定のタンパク質(例えば、200個のサイトカイン)を並行して検出するための非常に感度の高い方法を提供する。わずか数ピコグラムのタンパク質量が検出可能である。このアッセイは、固定された特異的一次抗体が結合している膜に基づく。周囲の液体に含有されたサイトカインは、インキュベート中にこれら一次抗体に結合する。続く反応では、ビオチン結合二次抗体が一次抗体に結合している、いわゆる「サンドイッチ複合体」が形成される。その結果、抗体-サイトカイン-複合体は、ビオチン標識される。HRP結合ストレプトアビジン又は他のマーカー分子はビオチンに結合可能であり、それによって、該複合体が化学発光、カロメトリ又はIR光によって検出可能になる。化学発光の場合には、検出シグナルは既知の標準からのシグナルと比較可能であり、該シグナルの濃度測定が、解析されたタンパク質を比較するために実行可能である。
hPLEVの免疫細胞に対する影響を解析するための生体外アッセイ
富化EV画分の潜在的な免疫調節能力は、ヒト免疫系由来の細胞(例えば、PBMC)を用いた少なくとも1つの機能的生体外アッセイにおいて定義されるべきである。そのようなアッセイの原理は、hPLEVの存在下又は非存在下での免疫細胞に対する免疫調節作用の解析である。この問題について、フローサイトメトリー解析が使用される。免疫応答を誘導するために、細胞は、例えばPHA(フィトヘマグルチニン)、PMA(酢酸ミリスチン酸ホルボール)、イオノマイシン、モノクローナル抗体、(カンジダ又はバクテリアタンパク質のような)抗原、又は、市販の活性化キットからの他の可能な成分をも添加することによって、刺激される。また、混合リンパ球反応(MLR)のような方法も適用可能な場合がある。活性化は、(例えば、PHAを使用して)全てのPBMC上に非特異的に誘導されてもよく、特異的に(例えば、T細胞又は他の所定のPBMC亜集団上にのみ)誘導されてもよい。刺激によって免疫細胞は活性化され、このことは、とりわけ細胞の表面マーカーの発現プロファイルの変化によって検出され得る。刺激が十分に強ければ、増殖活性の増加が後でも検出可能となることがある(例えば、T細胞の場合)。hPLEV富化画分存在下では、EVを有さない細胞対照に対する差異(例えば、T細胞増殖の抑制及び活性化マーカーの発現など)が検出可能であるはずである。
「PBMC-CFSE-PHA-アッセイ」は、hPLEV富化画分存在下におけるPHA誘導性細胞増殖の解析に使用され得る。CFSE(カルボキシフルオレセイン-スクシンイミジルエステル)は、解析のためにフローサイトメーターを用いた細胞追跡に使用可能な蛍光色素である。前駆体分子CFSE-SE(カルボキシフルオレセイン-ジアセテート-スクシンイミジルエステル)は、受動的に細胞内へと拡散し、細胞内酵素によって切断されて、蛍光によって検出され得る。毎度の細胞分裂に起因して、増殖するCFSE標識細胞は、それらの蛍光強度が50%減衰する。
血管新生は、成長及び発達、並びに、虚血性血管疾患における創傷治癒及び組織再生の全てのステージにおける基本的な過程である。血管新生の処置では、既存の血管系から新たな毛細血管が生じ、その過程は、血管新生誘導因子と血管新生阻害因子との繊細なバランスによって制御される。内皮細胞は、損傷、炎症、低酸素等の血管新生刺激に反応して活性化される。
血管新生の再編成段階をモデル化するために最も広く使用されている生体外アッセイの1つは、管形成アッセイである。このアッセイは、内皮細胞が毛細血管状構造(管)を形成する能力を測定する。管形成は、典型的には、培養皿の二次元顕微鏡画像におけるこれら毛細血管状構造の数、長さ又は面積を測定することによって定量化される。
スクラッチアッセイは、生体外において細胞遊走を測定するために使用される。この基本工程には、均質な集団の細胞単層に「スクラッチ(引っかき傷)」を作り、スクラッチを閉じるための細胞遊走中に、開始時及び規則的な間隔で画像をキャプチャして、蛍光寿命イメージング顕微鏡法(life imaging microscopy)を用いて細胞の遊走速度を定量化するために画像を比較することが含まれる。
診療所にてhPLEVを適用するために、安全性、潜在的な毒性及び免疫原性を監視する必要がある。組織及び細胞、並びにATMP("Arzneimittel fur neuartige Therapien(先端医療医薬品)")に関する法令によれば、ヒト細胞ベースの医薬品を特性解析するための最小限の基準におけるプラットフォームは、臨床試験にて使用する前に考慮する必要がある。要約すると、製品が(a)自己起源であるか、同種異系起源であるか、又は、異種起源であるか、(b)生体外において広く操作されているか、又は、最小限に操作されているか、及び、(c)免疫学的に活性であるか、又は、免疫学的に中性であるか、について検討する必要がある。さらに、(d)細胞の増殖能力、(e)細胞又は組織状器質、及び、細胞と構造成分との間の動的相互作用、並びに、(f)意図される用途、を定義する必要がある。
a)単一ドナー提供血小板、又は、少なくとも15ドナー、好ましくは、少なくとも20ドナー若しくは少なくとも30ドナー若しくは少なくとも40ドナーのプールされたドナー提供血小板から、ヒト血小板溶解物を供給するステップ。
b)ヒト血小板溶解物に由来する細胞外小胞を富化するステップ。
c)場合により、上記富化された細胞外小胞の免疫調節効果等の生体外効果、特に、抗炎症効果及び/又は免疫抑制効果の生体外効果を、例えば、減少したIL-1β、TNF-α、T-細胞増殖によって決定するステップ。
d)場合により、免疫調節効果、特に抗炎症効果及び/又は免疫抑制効果等の生体外効果を示す前記富化細胞外小胞画分を選択するステップ。
e)場合により、EV/エクソソームマーカーCD81に対して陰性であり、EV/エクソソームマーカーCD9に対して陽性である細胞外小胞を示す、ステップb)の富化された前記細胞外小胞を選択する。
f)場合により、ステップb)、d)若しくはe)の富化された前記細胞外小胞を、少なくとも1つの適切な医薬賦形剤及び/又は医薬担体と混合するステップ。
hPLEVに基づく本発明によれば、診断用途及び疾患のリアルタイムモニタリングにおいて使用するための生体外診断試験が確立され得る。hPLEVは、非侵襲的血液検査を通じた疾患診断用のバイオマーカーとして使用され得る。個々のドナーにおけるhPLEV製剤の特定の含有量は、腫瘍性疾患又は炎症性疾患関連疾患についてのバイオマーカーとして使用され得る。
1.1.血小板濃厚液(PRP-PC)
450mlの全血を、CPDA1抗凝固剤を含有する450mlトリプルバッグ(TERUMO PENPOL社製、インド、ティルヴァナンタプラム州プリヤラコナム)内に収集する。全血から、Heraeus 6000i(ドイツ)冷却遠心分離機により、加速曲線5及び減速曲線4を用いて21℃で11分間、1750rpmで軽回転遠心分離することによって多血小板血漿を分離し、血小板を加速曲線9及び減速曲線5を用いて21℃で5分間、3940rpmで重遠心分離することによって濃縮した後、上清血漿を除去する。血小板濃厚液バッグを、ラベル面を下にして室温で約1時間静止させる。乏血小板血漿を速やかに凍結して、新鮮凍結血漿(FFP)として-30℃以下にて1年間保存する。
450mlの全血を、63mlのCPD抗凝固剤を添加剤溶液(SAGM)と共に含有する450mlクアドラプルバッグ(TERUMO PENPOL社製、インド、ティルヴァナンタプラム州プリヤラコナム)内に収集する。まず、全血を、加速曲線9及び減速曲線4を用いて21℃で5分間、3940rpmで「ハードスピン」遠心分離することによって多血小板血漿を分離する。該全血は、比重に応じて種々異なる成分へと分離される。
・最上層-乏血小板上清血漿(150~200ml)。
・中間層-約90%の血小板、70%の白血球、10%の赤血球を含有するバフィーコート。
・最下層-濃縮赤血球。
乏血小板上清は1つのサテライトバッグに、バフィーコートは別のサテライトバッグに導入する。残った細胞からのチューブを洗浄してBC内に適切な量の血漿を得ることを目的として、約20~30mlの血漿をバフィーコートへと戻す。SAGM溶液を、赤血球へと添加する。続いて、赤血球及び血漿を含有するバッグを取り出す。赤血球を低温室内に4℃で配置し、乏血小板血漿を-40℃の超低温冷凍庫内へと配置して新鮮凍結血漿(FFP)とする。バフィーコートを血漿と穏やかに混合して、空のサテライトバッグ1つと共に、加速曲線5及び減速曲線4を用いて21℃で6分間、1100rpmで再び「ライトスピン」遠心分離にかける。上清の多血小板血漿を空の血小板保存バッグに導入した後、チューブを封止した。残存するWBC及び赤血球を含むバッグは、廃棄した。
自動細胞分離装置は、単静脈又は二重静脈アクセスを用いる間欠フローセル技術又は連続フローセル技術のものであってもよい。連続フロー二重静脈アクセス自動細胞分離装置-CS3000(登録商標)plus(バクスター社フェンオール部門、米国、ディアフィールド、14 60015)が使用され得る。
1.ドナーの同意書は、手順を詳細に説明し、所要時間及び起こり得る危険及び利益について説明した後に取得する。
2.静脈アクセスはアフェレーシスのドナーに重要な考慮事項であり、静脈は、以下の理由に基づく選択の際に検査される。
・長時間の処置
・長期にわたる流量
・連続フロー装置による2箇所の静脈穿刺が頻繁に必要であること。
3.ドナーの年齢は、文書化される。
4.アフェレーシス処置の前に、血小板アフェレーシスのドナーのABO/Rh型分類及び感染性疾患マーカー(HIV、HBV、HCV、VDRL、マラリア)検査を行う。
5.血小板機能に影響を及ぼす可能性があるアスピリン又は他のNSAIDを服用したドナーについては、延期する。
6.血小板アフェレーシスのため、それらのドナーのうち血小板数が1.5×105/μlを超える者より採血を行った。
この処置は、閉鎖系にて行う。使い捨てキットを連続フローセパレーターに取り付けた後、装置をプライミングする。ドナーは、両腕の前肘部領域における2つの静脈穿刺部位をベタジン及びアルコール(spirit)により清掃することによって準備し、静脈切開をドナーに対して最小限の外傷で行う。処置の間には、採血時に制御された方法で血液を抗凝固処理し、全血及びと抗凝固剤との比(ACD)を9:1~11:1に維持しておく。抗凝固処理された血液は、回転式分離容器内へと注入される。赤血球は、遠心力によって容器の外縁側に詰め込まれ、その後、該赤血球は、分離容器から排出される。血漿、血小板又はWBCなどの低密度成分は、血漿ポンプによって取り出されて回転式収集容器内に導入され、この回転式収集容器内において、血小板は遠心力により該容器の外縁側に詰め込まれる。分離された血小板が容器内に詰め込まれたままにされる一方で、他の血液成分はドナーへと戻される。収集処置の終わりに、血小板収集バッグを激しく振盪して血小板をバッグの壁から剥がし、室温で1時間維持することにより、均一な懸濁液とする。この処置全体には、1.5~2.5時間かかる。アフェレーシス-PCの最終容量は、200~300mlの範囲であった。
ヒト血小板(thrombocyte)溶解物(=ヒト血小板(platelet)溶解物(hPL))の産生は、期限切れのヒト血小板(thrombocyte)濃厚液(=ヒト血小板(platelet)濃厚液(=hPC/hTC)のさらなる処理に基づく。hTCを得るには、通常2つの異なる進行方法が使用される。一方は、複数名のドナーの全血献血から得られるプールされたバフィーコート製品の使用によって定義され、他方では、アフェレーシス濃厚液が使用される。この技術では、ドナーは体外細胞分離装置に接続されて、血小板は濾過され、赤血球、白血球及び血漿のような他の血液成分はドナーに戻される。両方の場合において、得られる血液製剤は、白血球除去TCである。これらの製品は、少なくとも4~5日間生きている血小板を含み、例えば、血小板減少症患者の不足している血小板を置き換えるために使用され得る。
末梢血単核細胞は、全血献血由来のバフィーコート製品から得られる。PBMCの単離は、以下の説明に従ってフィコール密度勾配遠心分離を使用することにより行った。
1.約100mlのバフィーコート製品を、3本の50mlポリプロピレンチューブに等量ずつ分配する。必要であれば、失われた容量を、PBS(リン酸緩衝食塩水)に置き換えた。
2.追加の3本の50mlPPチューブに、10mlのフィコールを満たす。
3.35mlの血液を10mlのフィコールへと慎重に注ぐことによって、2つの分離した層を形成する。
4.密度勾配遠心分離を、10℃の温度で20分間、900gで実施する(中断設定(break set)0又は1)。
5.勾配を形成した後、PBMC含有中間相を、新たな50mlPPチューブへと移す。
6.収集されたPBMCを備える画分を、PBSを用いて50ml容量まで満たす。
7.血小板を除去させるため、650gで5分間の遠心分離を行う。
8.血小板を含有する上清を廃棄する。
9.赤血球を溶解するため、細胞を20~25mlの溶解緩衝液中に再懸濁し、続いて4℃で7分間インキュベートする。
10.PBSを50ml容量まで満たすことによって、溶解反応をPBSにより停止する。
11.900gで5分間遠心分離することによって、溶解画分を除去する。
12.上清を廃棄し、細胞を50mlのPBSに再懸濁する。
13.細胞は、ノイバウエルチャンバーを使用して手作業で、あるいは、例えばSysmex血球計を使用して自動的に数える。
14.PBMCを培地(RPMI、10%の熱不活性化hAB血清、1%のPSG(ペニシリン/ストレプトマイシン/L-グルタミン))中に再懸濁させ、以下の生体外アッセイに従って適切な濃度に設定する。
1.BCAアッセイ(又は、Bradfordアッセイのような代替の標準方法)を使用した、総タンパク質濃度の決定
EV富化画分の総タンパク質濃度は、標準方法を使用して決定され得る。様々な市販のキット及び薬剤が、この目的のために利用可能である。例として、Thermo Scientific社製のBCAプロテインアッセイキットを使用した。ビシンコニン酸(BCA)2分子は、銅イオン(1+)1つと共に、キレート錯体を形成する。銅の減少は、アルカリ性環境内にタンパク質が存在することによって引き起こされる。キレート錯体の形成は、解析された液体の緑色から紫色への色変化に対応する。色変化の強度は、562nmの吸収で測光的に測定され得る。種々異なるBSA濃度の較正値についての既知の値と比較して、EV画分のタンパク質濃度が決定され得る。
細胞外ナノ小胞の特性解析のために、ナノ粒子トラッキング解析(NTA)を使用した。この物理的技術は、光の波長よりも小さいサイズからの粒子を追跡するのに適している。該方法は、電界の誘導に基づいており、このとき、粒子が動き始める。この動きのために、粒子が解析キュベットを通して拡散する間に、粒子のブラウン運動がトラッキングされ得る。画分中における粒子のサイズ及びサイズ分布が規定され得ると共に、粒子濃度の値もまた与えられる。ブラウン運動のトラッキング解析は、ビデオ顕微鏡に接続されたスクリーン上で追跡され得る。データは、ソフトウェアによってデータへとデジタル変換される。サイズの決定は、粒子の拡散定数によって計算され、そして流体力学的粒子サイズへと変換される。粒子濃度は、ビデオ部の分析から推定され、測定された散乱光の量に関連する。
単離方法は、超遠心分離(分画遠心分離)、サイズ排除クロマトグラフィー(Izonカラム及びExospinカラム)、ポリマー沈殿法(PEG 1000、PEG 6000、PEG 8000 EV、Exoquick(Qiagen社製))、膜アフィニティー(Exoeasy(Qiagen社製))及び流動濾過に基づくことができる。EVを分離するための標準化された技術水準は、治療用途又は基礎研究のいずれにも存在していない。精製方法を選択する基準は、処理が必要な血小板溶解物の初期容量、及び、PL-EV富化画分の高い純度及び回収率である。
EVの保管について、現在標準化されたプロトコルはない。保管条件はEVの安定性に影響を及ぼす可能性があるため、検証する必要がある。一般的に使用されるいくつかの溶媒及び緩衝液は、塩化ナトリウムから、PBS、TRIS-HCl、HEPES及びグリセロールにまで及ぶ。
遠心分離は、成分、細胞を分離するため、及び、細胞小器官を単離するために使用される。遠心分離は、遠心力によって引き起こされる液体中の粒子の動きに基づいている。この技術の主要な構成部品は、ローターである。固定角度ローター、垂直ローター、又はスイングローターのような種々異なるタイプが存在する。超遠心分離機は、高速遠心分離機のグループに属する。空力抵抗による摩擦熱の発生を避けるため、真空が設けられる。物理的原理によれば、サイズ及び密度に起因して、部品同士の間隔が生じる。粒子は、遠心力によって外方向に加速される。この加速度は、粒子の角速度、及び、回転軸までの距離に依存する。加速度は、重力gを参照する。
分画遠心分離は、粒子の沈降速度の違いに基づいている。分画遠心分離は、粒子の富化のため、及び、低減された容積中でより高い粒子濃度を得るために使用される。固定角度ローターが使用される。
最初に、完全な細胞が沈降し(1000g、2分)、続いて、核のような高重量の大サイズの細胞成分が沈降する(1000g、5~10分)。その後、核膜及び原形質膜が沈降し(1500g、15分)、続いて、ゴルジ装置(2000g、20分)、ミトコンドリア、リソソーム及びペルオキシソーム(10000g、25分)が沈降する。ミクロソームは、100000g、60分以上にて沈殿する。ミクロソームには、エクソソームを含むEVも属する。それらは最終ペレットに含まれている。
記載された成分は、100%まで分離精製することはできない。急速に沈降する粒子により構成される沈降物には、遠心チューブの底部近くに配されたゆっくりと沈降する粒子が常に含まれることになる。この汚染のため、完全な純度は達成できない。
第1の遠心分離工程では、(細胞培養上清、希釈血漿含有液又は希釈hPLのような)EV含有液を、2000gで15分間遠心分離する。細胞、死細胞、細胞残屑(核、核膜、原形質膜、ゴルジ装置)は、底に沈殿して、取り除かれ得る。第2の遠心分離工程は、10000gにて4℃で45分間行われ、該工程では、第1の工程の上清が、ミトコンドリア、リソソーム及びペルオキシソームから取り除かれ得る。エクソソームを含むEVのようなミクロソームは該上清中に留まっており、最後に、超遠心分離(110000g、1~2時間)によって沈澱させられ得る。
ポリエチレングリコール沈殿には、PEG 6000が使用され得る。該物質は、エチレングリコール由来のポリマーであり、水溶性かつ不活性で、毒性はない。PEGは、タンパク質のような(また、ウイルス粒子及びEVのような)高分子物質を沈殿させるために使用され得る。PEG存在下では、タンパク質が沈澱する一方で、低分子量物質は可溶性のまま留まる。選択された沈殿条件に応じて、高分子物質及び低分子物質を定義する境界は、ある程度(PEGの分子量、PEG濃度及び沈殿温度)まで変動し得る。親水性かつ荷電のないPEG及びタンパク質が水溶液中にて共に混合される場合には、タンパク質の水和水について合同作用が生じる。規定のPEG濃度に達すると、タンパク質は可逆的に沈殿する。この沈澱は、非常に穏やかな沈澱様式を表している(最初の記載:Poison et al., 1964)。
EV含有液、例えば0.9%NaCl中に希釈されたものを、10%v/vのPEG6000存在下において、一晩(16時間、4℃)インキュベートし、それによりEVを沈殿させる。インキュベートした後、沈殿粒子を、1500gで30分間(4℃)かけてペレット化する。上清を廃棄する。ペレットを、例えば0.9%NaCl中に再懸濁して、超遠心分離(110,000g、約2時間)を行った。あるいは、該ステップは、追加の洗浄ステップとして繰り返され得る。
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Claims (6)
- ヒト血小板溶解物由来細胞外小胞の選択された富化画分を含んでいる製剤を製造する方法であって、
a.ヒト血小板溶解物に由来する細胞外小胞の濃度を高めることによって富化するステップであって、該ステップは、200nmよりも大きい粒子を除去することによって、少なくとも1つの熱ショックタンパク質及び少なくとも1つのテトラスパニンマーカーについて陽性であると共に、Grp94、カルネキシン、GM130、プロヒビチン、シトクロムCのマーカーについて陰性である、ヒト血小板由来細胞外小胞の富化画分を取得する、ステップと、
b.前記富化画分における生体外効果を決定するステップであって、前記生体外効果は、免疫調節効果であり、前記免疫調節効果は、抗炎症効果及び免疫抑制効果のうち一方又は両方である、ステップと、
c.前記富化画分が前記生体外効果を示す場合にのみ、製剤の成分として使用するためのヒト血小板溶解物に由来する細胞外小胞の前記富化画分を選択するステップと、
を含む、方法。 - 前記製剤が無細胞である、請求項1に記載の方法。
- 前記富化画分における細胞外小胞が、50~200nmのサイズを有している、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記製剤のタンパク質含有量が、0.5mg/mlより高い、請求項1~3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ヒト血小板溶解物が、バフィーコート抽出された血小板濃厚液又は血小板アフェレーシスに由来する、請求項1~4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞外小胞が、遺伝物質、脂質、及び、タンパク質から選択される生物学的因子を含んでいる、請求項1~5のいずれか1項に記載の方法。
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