JP7577335B2 - 肺炎症治療用のナノキャリア - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１８年１０月１９日に出願された米国仮出願第６２／７４７９８７号の優先権を主張し、米国仮出願第６２／７４７９８７号の内容のすべてを本出願明細書の一部を構成するものとして援用する。

配列表
本出願は、２０１９年１０月１８日に作成された「３２１５０１－２３４０ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｌｉｓｔｉｎｇ＿ＳＴ２５」というタイトルのＡＳＣＩＩ．ｔｘｔファイルとして電子形式で提出された配列表を含む。配列表の内容のすべてを本出願明細書の一部を構成するものとして援用する。

急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）は、重度の低酸素血症、び慢性の両側性肺浸潤を引き起こし、肺コンプライアンスを低下させるのが特徴である。現在、ＡＲＤＳ治療法で認可されているものはない。

本明細書で開示されるのは、抗炎症性カーゴを載せた肺細胞を効率よく標的とし、ＡＲＤＳに罹った肺の炎症を調節するための、ナノキャリアシステムである。これらのナノキャリアは、さまざまなトランスフェクション技術（バルクエレクトロポレーション、ナノエレクトロポレーション、組織ナノトランスフェクション、ウイルストランスフェクションなど）を用いた、試験管内の細胞または生体内の組織トランスフェクションにより得られる。開示のナノキャリアは、マイクロＲＮＡ―１４６ａなどの抗炎症性カーゴを載せたカスタムメイドの細胞外小胞（ＥＶ）であり、これを肺微小環境下、特定受容体に対するリガンド修飾を介して機能化し、標的化遺伝子を導入する。

図１に示すように、例えば、特定のカーゴまたはリガンドをコードするプラスミドＤＮＡをトランスフェクトすることにより、ＥＶに抗炎症性カーゴを搭載、および／または細胞を標的とするリガンドによる修飾が可能となる。制御する必要のある炎症経路に応じてカーゴを改良したり、また標的細胞のタイプに応じて表面装飾の程度を変えたりすることができる。

例えば、ＩＩ型肺胞上皮細胞および肺マクロファージは、それぞれ、肺サーファクタントタンパク質Ａ（ＳＰＡ）および膜糖タンパク質ＣＤ２００をコード化するプラスミド遺伝子を使って標的化することができる。ＳＰＡで機能化されたＥＶは、II型細胞の受容体P６３／ＣＫＡＰ４と相互作用する一方で、ＣＤ２００で機能化されたＥＶは、肺胞マクロファージ中のＣＤ２００Ｒ受容体と優先的に相互作用する。

ＥＶは、肺血管系の受容体ＣＸＣＲ７と相互作用するＳＤＦ１で機能化される。これは、たとえば血管内法によるＥＶの導入に役立つ。

図２に示すように、表面修飾後のＥＶには、また濃度勾配によりＥＶに拡散する膜透過性薬理学的化合物（例えば、Ｙ－２７６３２ Ｒｈｏ阻害剤、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ社製）である抗炎症性カーゴを載せることができる。

本発明の１つ以上の実施形態の詳細を、添付の図面を使って以下にて説明する。本発明の他の特徴、目的、および利点を、以下の説明および図面、ならびに特許請求の範囲から明らかにする。

図１は、細胞または組織をトランスフェクションした後の抗炎症性カーゴを載せた、および／または細胞を標的とするリガンドで装飾した、カスタムメイドのナノキャリアの産生を示す概略図である。 図２は、他の抗炎症性カーゴ、例えば、膜透過性薬理学的化合物を載せた表面修飾後のＥＶを示す概略図である。 図３Ａから３Ｅでは、試験管由来のデザイナーＥＶの特性評価結果を示す。図３Ａおよび３Ｂでは、初代マウス胚性線維芽細胞（ＰＭＥＦ）をナノトランスフェクションしてから２４時間後に、単離し得られたｍｉＲ－１４６ａを載せたデザイナーＥＶを示す。その粒子サイズは２００ｎｍの範囲で、ＥＶの集結度は１ｍＬあたり数十億の粒子の範囲であった。図３Ｃでは、ｍｉＲ－１４６Ａをコード化するプラスミドと偽／対照プラスミド（^＊ｐ値＝０．０４１）を用いてナノトランスフェクションを行ってから４８時間後にマウス樹状細胞から得られた、ｍｉＲ－１４６Ａ積載のデザイナーＥＶのｑＲＴ－ＰＣＲ特性を示す。図３Ｄでは、これらのｍｉＲ－１４６Ａまたは偽デザイナーＥＶ（^＊ｐ値＜０．００１）で処理したＡ５４９肺上皮細胞および分化ＴＨＰ－１単球における、ｍｉＲ－１４６Ａの相対的発現を示す。図３Ｅでは、ＰＭＥＦに由来する蛍光標識されたｍｉＲ－１４６ａデザイナーＥＶで４８時間処理した後のＣ５７ＢＬ／６マウス初代肺胞上皮細胞を示し、白い矢印でＥＶの取り込みを強調した。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 図４Ａから４Ｆでは、生体由来のデザイナーＥＶ特性を示した。図４Ａは、生体内での皮膚の組織ナノトランスフェクション（ＴＮＴ）、およびその後でデザイナーＥＶを単離した場合の概略図である。図４Ｂでは、皮膚１ｃｍ^２あたり１０兆ＥＶのオーダーの粒子濃度を示している。図４Ｃは、１０９～１３５ｎｍの範囲の平均粒子サイズを示している。図４Ｄでは、偽ＥＶとｍｉＲ―１４６ａデザイナーＥＶの両方ともが、膜ＥＶマーカーのテトラスパニンＣＤ９の陽性を発現したことが示される。図４Ｅは、これら生体由来のｍｉＲ－１４６ＡデザイナーＥＶのｑＲＴ－ＰＣＲ特性を示しており、分子カーゴの積載に成功していることが示される。図４Ｆおよび４Ｇでは、標識化デザイナーＥＶの生体内産生状態を示しており、ここでは、ＣＤ６３－ＧＦＰ（ＥＶトレーサー）をコード化するプラスミドを含む皮膚をＴＮＴしてから２４時間後に、ＧＦＰ標識化デザイナーＥＶが、トランスフェクトされていない動物からの対照組織（図４Ｇ）と比較し、トランスフェクトされた皮膚細胞（白い矢印）によって明らかに産生されていることが示されている。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 図５Ａから５Ｆでは、生体由来のデザイナーＥＶにより肺の炎症が調整されることが示される。換気下治療４時間後のｍｉＲ―１４６ＡデザイナーＥＶの効果によって、生理学的パラメーター（図５Ａから５Ｄ）が改善され、ＢＡＬタンパク質含有量の有意な減少（図５Ｅ）、および炎症性サイトカインの分泌量の減少傾向が見られる（図５Ｆ、^＊ｐ値＝０．０２２）。 同上。 同上。 同上。 同上。 同上。 図６Ａおよび６Ｂでは、炎症を起こした肺を標的とする機能化されたデザイナーＥＶを示す。デザイナーＥＶは、肺胞腔の様々な細胞内コンパートメントを標的化するように機能化できる。肺胞マクロファージを標的とするＣＤ２００リガンドで機能化されたデザイナーＥＶでもって動物を２４時間処理し、そこから収集された器官の生体内画像を図６Ａに示す。図６Ｂには、肺組織を蛍光標識化機能化デザイナーＥＶで治療し、２４時間経った後のＩＦ画像を示したが、取り込みに成功した例が示されている（矢印）。

本願の開示内容は、抗炎症性カーゴを積んだ肺標的細胞外小胞（ＥＶ）、ならびにその組成物、システム、および作製方法である。開示のＥＶには、肺の標的化部分を含む融合タンパク質などの肺を標的とするリガンドが含まれる。また、開示の融合タンパク質を含むＥＶを含んだ組成物も開示される。一部の実施形態では、ＥＶは抗炎症性カーゴを載せる。また、開示ＥＶを産生するように設計されたＥＶ産生細胞も開示される。また、ＥＶ産生に適した条件下で開示ＥＶ産生細胞を培養することを含む、開示ＥＶの作製方法も開示される。この方法においては、細胞からＥＶを精製する方法がさらに包含される。

本願をより詳細に開示する前に、本願の開示内容は特定の実施形態に限定されず、もちろん改良が許されることに言及しておく。本開示で使用する用語は特定の実施形態を説明するためにのみ使用され、本開示の範囲が添付の特許請求の範囲のみに限定されるからして、当該用語の限定を意図されるものではないことも理解される。

本明細書に記載される数値の範囲として、その範囲内の数値は、その範囲の上限および下限間、乃至は記載範囲内の他の任意の値またはその間において、文脈上明確で別段の指示がなされない限り、下限の単位の１０分の１まで本開示に含まれる。この範囲よりさらに狭い範囲の上限および下限は、本開示内で独立してより狭い範囲に含まれ得、また、記載された範囲において特別に除外された制限値を設けることができる。記載された範囲が一方または両方の制限値を含む場合、いずれかまたは両方を除外する範囲も本開示に含まれる。

別段定義されない限り、本開示で使用されるすべての技術用語および科学用語は、本開示の技術分野に属する当業者によって普通に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載されているものと類似または同等の任意の方法および材料もまた、本開示の実施または試験に使用することができるが、好ましい方法および材料を以下に説明する。

本開示で引用されるすべての刊行物および特許は、個々の刊行物または特許が具体的かつ個別に示されているかのように本開示中に援用され、引用出版物と関連した本方法および／または材料を開示および説明するために本開示中に援用される。引用出版物はいずれも本願の出願日より前に開示することを目的とするが、これにより本開示がそのような出版物に対して先行する権利がないのを認める、と解釈されるものではない。さらに、提供される発行日は、個別に確認する必要がある実際の発行日とは異なる場合がある。

当業者に明らかであるように、本開示を読むと、本開示中に記載および図示される個々の実施形態は、本開示の範囲または精神から逸脱しない範囲で、他のいずれかの特徴から容易に分離できること、または組み合わせ可能な別個の構成要素および特徴を有することが分かる。列挙された任意の方法は、列挙された順序で、または論理的に成り立つのであれば任意の順序で実行することができる。

本開示の実施形態は、他に示されない限り、当技術分野の技術の範囲内である化学、生物学などの技術を使用する。

以下の実施例は、当業者に対して、本明細書において開示および特許請求された方法や使用を、完全な形で開示および説明するために提示される。数値（例えば量、温度など）に関して正確さを確保するよう努めたが、場合によっては誤りや偏差に対する釈明が必要になる。特に明記されない限り、部材の単位は重量部であり、温度は摂氏で、圧力は大気圧またはその近傍の圧力である。標準の温度と圧力は、２０℃および１気圧として定義される。

本開示の実施形態を詳細に説明する前に、本開示は、別段の指示がない限り、特定の材料、試薬、反応材料、製造プロセスなどに限定されず、改良の可能性があることに言及しておく。本開示中で使用される用語は、特定の実施形態を説明することのみを目的としており、それに限定することを意図するものではない。本開示では、論理的で矛盾の無い場合、各工程を異なる順序で実施することも可能である。

本開示および添付の特許請求の範囲で使用されるように、ある対象が単数形「ａ」、「ａｎ」でおよび「ｔｈｅ」という語句付きで表記される場合には、文脈上明らかでない限り、その対象には複数形も含まれるとする。

開示のＥＶとしては、一部の実施形態において、細胞により産生され得るものであればいずれのものでもよい。細胞は幅広い直径と機能を持つ細胞外小胞（ＥＶ）を分泌するが、これにはアポトーシス小胞（１～５μｍ）、微小胞（１００～１０００ｎｍのサイズ）、およびエクソソーム（５０～１５０ｎｍ）として知られるエンドソーム起源の小胞が含まれる。

開示の細胞外小胞は、当技術分野における既知の方法によって調製することができる。例えば、開示の細胞外小胞は、真核細胞中で細胞を標的とするリガンドをコードするｍＲＮＡを発現させることによって調製できる。一部の実施形態において、細胞はまた、抗炎症性カーゴをコードするｍＲＮＡを発現する。細胞を標的とするリガンドおよび抗炎症性の積み荷用のｍＲＮＡは、開示ＥＶの産生に適する産生細胞にトランスフェクトされるベクターから発現することができる。細胞を標的とするリガンドおよび抗炎症性カーゴ用のｍＲＮＡは、同じベクター（例えば、ベクターが細胞を標的とするリガンドおよび抗炎症性カーゴ用ｍＲＮＡを別々のプロモーターから発現する場合）、または細胞を標的とするリガンドと抗炎症性カーゴ用のｍＲＮＡを、別々のベクターから発現させることができる。当該ベクターまたは細胞を標的とするリガンドおよび抗炎症性カーゴ用のｍＲＮＡを発現するベクターを、開示の細胞外小胞の調製用に設計されたキットに詰め込むことができる。

開示の標的化リガンドを有するＥＶを含む組成物も開示される。一部の実施形態では、ＥＶは、開示の抗炎症性カーゴを積んでいる。開示のＥＶを分泌するよう設計されたＥＶ産生細胞も開示されている。

エクソソームなどのＥＶは、Ｂリンパ球、Ｔリンパ球、樹状細胞（ＤＣ）およびほとんどの細胞の免疫細胞を含む多くの異なるタイプの細胞によって産生される。ＥＶは、例えば、神経膠腫細胞、血小板、網状赤血球、ニューロン、腸上皮細胞、および腫瘍細胞によっても産生される。開示の組成物および方法で使用されるＥＶは、上記の特定細胞を含む、任意の適当な細胞から誘導することができる。大量産生に適したＥＶ産生細胞の非限定的な例には、樹状細胞（例えば、未成熟樹状細胞）、ヒト胎児腎臓２９３（ＨＥＫ）細胞、２９３Ｔ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、およびヒトＥＳＣ由来間葉幹細胞が含まれる。ＥＶは、エクソソームを導入した患者の免疫応答の発生を低減または回避できるように、自家患者由来、他家ハプロタイプ適合性幹細胞または他家幹細胞から取得することもできる。この目的のために、任意のＥＶ産生細胞を使用することができる。

また、開示のＥＶに抗炎症性カーゴを載せる方法であって、これには開示のＥＶを分泌するよう操作し、開示のＥＶ産生細胞を培養することが含まれる。この方法には、さらに細胞からＥＶを精製することも含まれる。

細胞から産生されたＥＶは、任意の適切な方法により培地から収集できる。通常、ＥＶは、遠心分離、濾過、またはこれらの方法を組み合わせて、細胞培養または組織上清から調製することができる。たとえば、より大きな粒子球状ＥＶを得るために、低速（＜２０，０００ｇ）で遠心分離して、続いてＥＶの球状化のために高速で（＞１００，０００ｇ）遠心分離して、適当なフィルターを使用したサイズろ過、勾配超遠心分離（たとえば、ショ糖勾配を使用）またはこれらの方法を組み合わせてＥＶを調製することができる。

開示のＥＶは肺の中にある肺細胞の表面上で発現し、細胞表面と結合する標的化部分の発現により標的化される。標的化部分の適当な例としては、その標的化部分がエクソソーム表面で発現されることを前提として、短いペプチド、ｓｃＦｖおよび完全タンパク質が挙げられる。ペプチドを標的とする部分は通常、その長さが１００アミノ酸未満、例えば、５０アミノ酸未満、３０アミノ酸未満であり、最小長が１０、５または３アミノ酸であってよい。

一部の実施形態において、ＩＩ型肺胞上皮細胞を肺サーファクタントタンパク質Ａ（ＳＰＡ）の使用により標的化することができる。ＳＰＡで機能化されたＥＶは、ＩＩ型細胞の受容体Ｐ６３／ＣＫＡＰ４と相互作用する。一部の実施形態において、標的化部分は、以下のアミノ酸配列を有するＳＰＡ１である：ＭＷＬＣＰＬＡＬＮＬＩＬＭＡＡＳＧＡＶＣＥＶＫＤＶＣＶＧＴＰＧＩＰＧＥＣＧＥＫＧＥＰＧＥＲＧＰＰＧＬＰＡＨＬＤＥＥＬＱＡＴＬＨＤＦＲＨＱＩＬＱＴＲＧＡＬＳＬＱＧＳＩＭＴＶＧＥＫＶＦＳＳＮＧＱＳＩＴＦＤＡＩＱＥＡＣＡＲＡＧＧＲＩＡＶＰＲＮＰＥＥＮＥＡＩＡＳＦＶＫＫＹＮＴＹＡＹＶＧＬＴＥＧＰＳＰＧＤＦＲＹＳＤＧＴＰＶＮＹＴＮＷＹＲＧＥＰＡＧＲＧＫＥＱＣＶＥＭＹＴＤＧＱＷＮＤＲＮＣＬＹＳＲＬＴＩＣＥＦ（配列番号１）か、またＩＩ型細胞上の受容体Ｐ６３／ＣＫＡＰ４と相互作用できる配列番号1との同一性が少なくとも以下：６５％、７０％、７１％、７２％、７３％、７４％、７５％、７６％、７７％、７８％、７９％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、である多様体および/またはそのフラグメントである。

一部の実施形態において、標的化リガンドは、ＳＰＡ１のフラグメントであって、少なくとも、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１５６、１４７、１４８、１４９、１５０、１５１、１５２、１５３、１５４、１５５、１５６、１５７、１５８、１５９、１６０、１６１、１６２、１６３、１６４、１６５、１６６、１６７、１６８、１６９、１７０、１７１、１７２、１７３、１７４、１７５、１７６、１７７、１７８、１７９、１８０、１８１、１８２、１８３、１８４、１８５、１８６、１８７、１８８、１８９、１９０、１９１、１９２、１９３、１９４、１９５、１９６、１９７、１９８、または１９９の、配列番号１の連続アミノ酸を含むものかまたはその多様体である。

一部の実施形態において、標的化部分は、以下のアミノ酸配列を有するＳＰＡ２部分である：ＭＷＬＣＰＬＡＬＴＬＩＬＭＡＡＳＧＡＡＣＥＶＫＤＶＣＶＧＳＰＧＩＰＧＴＰＧＳＨＧＬＰＧＲＤＧＲＤＧＶＫＧＤＰＧＰＰＧＰＭＧＰＰＧＥＴＰＣＰＰＧＮＮＧＬＰＧＡＰＧＶＰＧＥＲＧＥＫＧＥＡＧＥＲＧＰＰＧＬＰＡＨＬＤＥＥＬＱＡＴＬＨＤＦＲＨＱＩＬＱＴＲＧＡＬＳＬＱＧＳＩＭＴＶＧＥＫＶＦＳＳＮＧＱＳＩＴＦＤＡＩＱＥＡＣＡＲＡＧＧＲＩＡＶＰＲＮＰＥＥＮＥＡＩＡＳＦＶＫＫＹＮＴＹＡＹＶＧＬＴＥＧＰＳＰＧＤＦＲＹＳＤＧＴＰＶＮＹＴＮＷＹＲＧＥＰＡＧＲＧＫＥＱＣＶＥＭＹＴＤＧＱＷＮＤＲＮＣＬＹＳＲＬＴＩＣＥＦ（配列番号２）か、またはＩＩ型細胞上の受容体Ｐ６３／ＣＫＡＰ４と相互作用できる配列番号２との同一性が少なくとも６５％、７０％、７１％、７２％、７３％、７４％、７５％、７６％、７７％、７８％、７９％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、である多様体および/またはそのフラグメントである。

一部の実施形態において、標的化リガンドは、SＰＡ２のフラグメントであって、少なくとも、１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１５６、１４７、１４８、１４９、１５０、１５１、１５２、１５３、１５４、１５５、１５６、１５７、１５８、１５９、１６０、１６１、１６２、１６３、１６４、１６５、１６６、１６７、１６８、１６９、１７０、１７１、１７２、１７３、１７４、１７５、１７６、１７７、１７８、１７９、１８０、１８１、１８２、１８３、１８４、１８５、１８６、１８７、１８８、１８９、１９０、１９１、１９２、１９３、１９４、１９５、１９６、１９７、１９８、１９９、２００、２０１、２０２、２０３、２０４、２０５、２０６、２０７、２０８、２０９、２１０、２１１、２１２、２１３、２１４、２１５、２１６、２１７、２１８、２１９、２２０、２２１、２２２、２２３、２２４、２２５、２２６、２２７、２２８、２２９、２３０、２３１、２３２、２３３、２３４、２３５、２３６、２３７、２３８、２３９、２４０、２４１、２４２、２４３、２４４、２４５、２４６、２４７、または２４８、の配列番号２の連続アミノ酸を含むものかまたはその多様体である。

一部の実施形態において、肺マクロファージは、膜糖タンパク質ＣＤ２００を使用して標的化され得る。ＣＤ２００で機能化されたＥＶは、肺胞マクロファージ中のＣＤ２００Ｒ受容体と優先的に相互作用する。一部の実施形態において、標的化部分は、以下のアミノ酸配列３を有するＣＤ２００である：ＭＥＲＬＶＩＲＭＰＦＣＨＬＳＴＹＳＬＶＷＶＭＡＡＶＶＬＣＴＡＱＶＱＶＶＴＱＤＥＲＥＱＬＹＴＰＡＳＬＫＣＳＬＱＮＡＱＥＡＬＩＶＴＷＱＫＫＫＡＶＳＰＥＮＭＶＴＦＳＥＮＨＧＶＶＩＱＰＡＹＫＤＫＩＮＩＴＱＬＧＬＱＮＳＴＩＴＦＷＮＩＴＬＥＤＥＧＣＹＭＣＬＦＮＴＦＧＦＧＫＩＳＧＴＡＣＬＴＶＹＶＱＰＩＶＳＬＨＹＫＦＳＥＤＨＬＮＩＴＣＳＡＴＡＲＰＡＰＭＶＦＷＫＶＰＲＳＧＩＥＮＳＴＶＴＬＳＨＰＮＧＴＴＳＶＴＳＩＬＨＩＫＤＰＫＮＱＶＧＫＥＶＩＣＱＶＬＨＬＧＴＶＴＤＦＫＱＴＶＮＫＧＹＷＦＳＶＰＬＬＬＳＩＶＳＬＶＩＬＬＶＬＩＳＩＬＬＹＷＫＲＨＲＮＱＤＲＥＰ（配列番号３）か、または肺マクロファージと相互作用できる配列番号３との同一性が少なくとも６５％、７０％、７１％、７２％、７３％、７４％、７５％、７６％、７７％、７８％、７９％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、である、その多様体および／またはそのフラグメントである。

一部の実施形態において、標的化リガンドはＣＤ２００のフラグメントであって、少なくとも１００、１１０、１２０、１３０、１４０、１４１、１４２、１４３、１４４、１４５、１５６、１４７、１４８、１４９、１５０、１５１、１５２、１５３、１５４、１５５、１５６、１５７、１５８、１５９、１６０、１６１、１６２、１６３、１６４、１６５、１６６、１６７、１６８、１６９、１７０、１７１、１７２、１７３、１７４、１７５、１７６、１７７、１７８、１７９、１８０、１８１、１８２、１８３、１８４、１８５、１８６、１８７、１８８、１８９、１９０、１９１、１９２、１９３、１９４、１９５、１９６、１９７、１９８、１９９、２００、２０１、２０２、２０３、２０４、２０５、２０６、２０７、２０８、２０９、２１０、２１１、２１２、２１３、２１４、２１５、２１６、２１７、２１８、２１９、２２０、２２１、２２２、２２３、２２４、２２５、２２６、２２７、２２８、２２９、２３０、２３１、２３２、２３３、２３４、２３５、２３６、２３７、２３８、２３９、２４０、２４１、２４２、２４３、２４４、２４５、２４６、２４７、２４８、２４９、２５０、２５１、２５２、２５３、２５４、２５５、２５６、２５７、２５８、２５９、２６０、２６１、２６２、２６３、２６４、２６５、２６６、２６７、２６８、または２６９の配列番号３の連続アミノ酸を含むものかまたはその多様体である。

場合によっては、細胞を標的とするリガンドを、エクソソームまたはリソソーム膜貫通タンパク質との融合タンパク質として、ＥＶの表面上に発現させることができる。多くのタンパク質がエクソソームと関連していることが知られている。つまり、それらは形エクソソームに組み込まれる。例としては、Ｌａｍｐ―１、Ｌａｍｐ－２、CD１３、CD８６、ｆｌｏｔｉｌｌｉｎ、Ｓｙｎｔａｘｉｎ―３、ＣＤ２、ＣＤ３６、ＣＤ４０、Ｃｄ４０ｌ、ＣＤ４１ａ、ＣＤ４４、ＣＤ４５、ＩＣＡＭ－１、Ｉｎｔｅｇｒｉｎ ａｌｐｈａ４、ＬｉＣＡＭ、ＬＦＡ－１、Ｍａｃ―１アルファおよびベータ、Ｖｔｉ―ＩＡおよびＢ、ＣＤ３イプシロンおよびゼータ、ＣＤ９、ＣＤ１８、ＣＤ３７、ＣＤ５３、ＣＤ６３、ＣＤ８１、ＣＤ８２、ＣＸＣＲ４、ＦｃＲ、ＧｌｕＲ２／３、ＨＬＡ－ＤＭ（ＭＨＣ ＩＩ）、免疫グロブリン、ＭＨＣ－ＩまたはＭＨＣ－ＩＩ成分、ＴＣＲベータおよびテトラスパニンが挙げられるが、これらに限定されるものではない。

開示の細胞外小胞には、抗炎症剤をさらに載せることができるが、細胞外小胞は、抗炎症剤を標的細胞に輸送する。適当な抗炎症剤としては、治療薬剤（例えば、小分子薬剤）、治療用タンパク質、および治療用核酸（例えば、治療用ＲＮＡ）が挙げられるが、これらに限定されない。一部の実施形態において、開示の細胞外小胞は、治療用ＲＮＡ（本開示では「カーゴＲＮＡ」とも呼ばれる）を含む。例えば、一部の実施形態においては、さらに細胞を標的とするモチーフを含む融合タンパク質には、細胞から細胞外小胞が分泌される前にカーゴＲＮＡを細胞外小胞に詰め込むのを目的として、カーゴＲＮＡに存在する１つ以上のＲＮＡモチーフに結合するＲＮＡドメイン（例えば、融合タンパク質の細胞質ゾルのＣ末端における）が含まれる。このように、融合タンパク質は「細胞を標的とするタンパク質」および「パッケージングタンパク質」の両方として機能できる。一部の実施形態においては、パッケージングタンパク質は、細胞外小胞搭載タンパク質または「ＥＶ搭載タンパク質」と呼ばれる。

一部の実施形態においては、カーゴＲＮＡは、ｍｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｍＲＮＡ、ｎｃＲＮＡ、ｓｇＲＮＡ、またはそれらの任意の組み合わせである。例えば、一部の実施形態では、抗炎症剤はマイクロＲＮＡ １４６ａである。

追加で使用できる抗炎症性マイクロＲＮＡとしては、ｍｉＲ－１５５、ｍｉＲ－９、ｍｉＲ－２１０、ｍｉＲ－１４６ｂ、およびｍｉＲ－１８１が挙げられる。抗炎症性ｍｉＲ－１５５、ｍｉＲ－９、ｍｉＲ－２１０、ｍｉＲ－１４６ｂは、高一回換気量換気および急性肺損傷（ＡＬＩ）、誘発性肺損傷（ＶＩＬＩ）、および変形性関節症などに罹ったマウスのモデルを使ったＡＬＩ／ＡＲＤＳ中に上方制御されることが示されている。一方、ＭｉＲ－１８１は、ＩＬ－１αを介してマクロファージの炎症反応を調整する。ＭｉＲ－９、ｍｉＲ－５１１、ｍｉＲ－１４６ａ、ｍｉＲ－２３ｂ、およびｍｉＲ－１８１ａは、特に敗血症およびＡＲＤＳ中に肺で上方制御される抗炎症性ｍｉＲＮＡとして既に報告されている。

デザイナーＥＶはまた、主要な成長因子、調節タンパク質、および抗炎症性サイトカインを効率的に輸送して、肺の炎症および損傷を軽減し、さらにＡＲＤＳ／ＶＩＬＩ中の組織修復を強化するものとして使用することができる。たとえば、抗炎症性サイトカインのインターロイキン－１０とインターロイキン－４、調節タンパク質分泌型白血球プロテアーゼ阻害剤（ＳＬＰＩ）、およびケラチノサイト増殖因子（ＫＧＦ）を載せることができる。これらにより、ＡＲＤＳによる死亡率が低下し、炎症を調節できることが示されている。

開示の細胞外小胞のカーゴＲＮＡは、その長さは任意の適当な長さであってよい。例えば、一部の実施形態では、カーゴＲＮＡは、少なくとも約１０ｎｔ、２０ｎｔ、３０ｎｔ、４０ｎｔ、５０ｎｔ、１００ｎｔ、２００ｎｔ、５００ｎｔ、１０００ｎｔ、２０００ｎｔ、５０００ｎｔまたはそれ以上のヌクレオチド長を有してよい。他の実施形態では、カーゴＲＮＡは、約５０００ｎｔ、２０００ｎｔ、１０００ｎｔ、５００ｎｔ、２００ｎｔ、１００ｎｔ、５０ｎｔ、４０ｎｔ、３０ｎｔ、２０ｎｔ、または１０ｎｔ以下のヌクレオチド長を有してよい。さらなる実施形態において、カーゴＲＮＡは、これらの設計ヌクレオチド長の範囲内のヌクレオチド長、例えば、約１０ｎｔ～５０００ｎｔの範囲のヌクレオチド長、または他の範囲を有してよい。開示の細胞外小胞のカーゴＲＮＡは、例えば、カーゴＲＮＡがｍＲＮＡまたは別の比較的長いＲＮＡを含む場合には、比較的長くてもよい。

一部の実施形態において、抗炎症性カーゴとは、細胞によって分泌された後にＥＶに搭載される膜透過性を有する薬理学的化合物のことである。例えば、一部の実施形態では、抗炎症性カーゴには、濃度勾配によりＥＶに拡散できるＹ－２７６３２ Ｒｈｏ阻害剤（カルビオケム）が含まれる（図２を参照）。

開示の方法によれば、臨床上関連する親油性化合物および他の抗炎症性膜透過性化合物をＥＶに搭載できる。このタイプの化合物の一例としては、スタチン、より具体的には、臨床現場で使用される血中のコレステロールレベルを低下させるシンバスタチンが挙げられる。シンバスタチンは、デザイナーＥＶを介して炎症を起こした肺に局所的に効果的に導入され、炎症を抑制し、たとえばＡＬＩ／ＡＲＤＳまたはＶＩＬＩの患者の回復を早めるのに役立つ。

一部の実施形態において、抗炎症性カーゴは、濃度勾配による拡散によってＥＶに載せられる。

本開示では、ＥＶの使用方法についても説明する。例えば、開示の細胞外小胞を使って開示の抗炎症性カーゴを標的肺細胞に導入してもよいが、当方法には標的細胞を開示のＥＶと接触させることも含まれる。したがって、本開示には、対象の肺疾患を治療する方法であって、本開示のカーゴを搭載した肺を標的とするＥＶを含む組成物を対象に治療有効量投与し治療する方法も含まれる。一部の実施形態では、対象はＡＲＤＳを発症する。

開示のデザイナーＥＶは、基本的にＥＶ修飾用のリガンドを設計することによって、肺だけでなく異なる器官系における多種多様な炎症状態を調整するのに使用できる。肺の疾患例として、人工呼吸惹起性肺損傷（ＶＩＬＩ）、肺線維症、および敗血症、インフルエンザ、肺炎などの感染症が挙げられる。

肺の疾患または障害の治療用の医薬組成物の一部として、開示のＥＶを処方してもよく、医薬組成物を肺の病気または障害を治療する際に、必要とする患者に投与し、カーゴを標的肺細胞に導入することができる。

開示のＥＶは任意の適当な手段によって対象に投与することができる。ヒトまたは動物といった対象への投与の仕方は、非経口、筋肉内、脳内、血管内、皮下、または経皮投与から選択することができる。通常、デリバリー方法は注射による方法が用いられる。好ましくは、注射は筋肉内または血管内（例えば静脈内）である。医師は、特定の患者ごとに必要な投与経路を決定することができる。

ＥＶは好ましくは組成物として導入される。組成物は、非経口、筋肉内、脳内、血管内（静脈内を含む）、皮下、または経皮投与用に処方することができる。非経口投与用の組成物としては、緩衝液、希釈剤、および他の適切な添加剤も含む滅菌水溶液が挙げられる。ＥＶは、これに加え、薬学的に許容される担体、増粘剤、希釈剤、緩衝液、防腐剤、および他の薬学的に許容される担体または賦形剤などを含む医薬組成物として処方してもよい。

非経口投与は、一般に、皮下、筋肉内、または静脈内などの注射をすることを特徴とする。非経口投与する際に用いる調製物としては、使用直前の溶媒と併用する注射用の滅菌溶液や皮下錠剤を含む凍結乾燥粉末、注射用の滅菌懸濁液、さらには使用直前のビヒクルおよび滅菌エマルジョンと併用する注射用の滅菌乾燥不溶性製品が挙げられる。溶液は水性または非水性のいずれかでよい。

静脈内投与するのに適した担体としては、生理食塩水またはリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、ならびにグルコース、ポリエチレングリコール、およびポリプロピレングリコールなどの増粘剤および可溶化剤、ならびにそれらの混合物を含む溶液が挙げられる。非経口製剤として使用し薬学的に許容される担体としては、水性ビヒクル、非水性ビヒクル、抗菌剤、等張剤、緩衝液、抗酸化剤、局所麻酔薬、懸濁剤および分散剤、乳化剤、封鎖剤またはキレート剤、および他の薬学的に許容される物質が挙げられる。水性ビヒクル群としては、たとえば塩化ナトリウム注射、リンガー注射、等張デキストロース注射、滅菌水注射、デキストロースおよび乳酸リンガー注射が挙げられる。非水性非経口ビヒクル群としては、植物由来の脂肪油、綿実油、コーン油、ゴマ油、落花生油が含まれる。抗菌剤は、フェノールまたはクレゾール、水銀、ベンジルアルコール、クロロブタノール、メチルおよびプロピルｐ－ヒドロキシ安息香酸エステル、チメロサール、塩化ベンザルコニウム、塩化ベンゼトニウムを含む複数回投与用の容器に詰め込まれた非経口製剤に、静菌性または静真菌性を発現する濃度で添加する必要がある。等張剤としては、塩化ナトリウムとデキストロースが挙げられる。緩衝液としては、リン酸塩とクエン酸塩が挙げられる。酸化防止剤としては硫酸水素ナトリウムが挙げられる。局所麻酔薬としては塩酸プロカインが挙げられる。懸濁剤および分散剤としては、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ヒドロキシプロピルメチルセルロースおよびポリビニルピロリドンが挙げられる。

乳化剤としては、ポリソルベート８０（ＴＷＥＥＮ（登録商標）８０）が挙げられる。金属イオンの封鎖剤またはキレート剤としてはＥＤＴＡが挙げられる。医薬品担体としては、水混和性ビヒクル用のエチルアルコール、ポリエチレングリコール、およびプロピレングリコール、ｐＨ調整用の水酸化ナトリウム、塩酸、クエン酸または乳酸が挙げられる。薬学的活性な化合物の濃度は、注射により所望の薬理学的効果を生み出すのに有効な量となるように調整される。正確な用量は、当業界で知られているように、患者または動物の年齢、体重、および状態に依存する。

アンプル、バイアル、または針付き注射器に単位用量の非経口製剤を充填することができる。非経口投与に使う調製物のすべては、当技術分野ですでに実践されているように、無菌にしておかなくてはならない。

組成物は治療上有効な量を投与する。その用量は様々な要因に沿って、特に治療を受ける患者の重症度、年齢、および体重；投与経路；そして必要な養生法に沿って決定すればよい。特定の患者に必要な投与経路と投与量は医師が決める。最適な投与量は、個々の構成体の相対的効能に応じて変える場合があるが、一般には試験管内および生体内の動物モデルにより有効であると判明しているＥＣ５０に基づいて推定できる。投与量は一般に体重１ｋｇあたり０．０１ｍｇから１００ｍｇである。典型的な１日の投与量は、特定の構成体の効能、治療を受ける対象の年齢、体重、および状態、病気の重症度、投与の頻度と経路に応じて、体重１ｋｇあたり約０．１から５０ｍｇ、好ましくは約０．１ｍｇ／ｋｇから１０ｍｇ／ｋｇである。投与を筋肉内注射にするか全身（静脈内または皮下）注射にするかによって、構成体の投与量を変えて投与する。

単回筋肉内注射の用量は、好ましくは約５から２０μｇの範囲である。単回または複数回の全身注射の用量は、好ましくは、体重に対して１０から１００ｍｇ／ｋｇの範囲である。

構成体のクリアランス（および任意の標的分子の分解）が原因で、患者としての治療を繰り返し、例えば、毎日、毎週、毎月、または毎年１回以上、受けなければならない場合がある。当業者は、体液または組織中の構成体の滞留時間や濃度に基づいて、投薬の反復回数を容易に推定することができる。治療に成功した後でも、患者に維持療法を受けさせることが望ましい場合があり、この場合には、構成体を体重１ｋｇあたり０．０１ｍｇ／ｋｇから１００ｍｇの範囲の維持用量で、１日１回以上から２０年に１回投与する。

本発明における多数の実施形態を説明してきた。それにも関わらず、本発明の精神および範囲から逸脱することのない範囲において、様々な改良を行うことができる。ただし、その実施形態は以下の特許請求の範囲に包含される。

実施例１
図３に生体由来のデザイナーＥＶの特性評価と導入結果とを示す。図３Ａは、ｑＲＴ－ＰＣＲを介してｍｉＲ－１４６ａおよびＳＨを載せたＥＶの特徴を示す棒グラフである。ＳＨ－ＣＴまたはｍｉＲを載せたＥＶを、換気前に気管内に差し込んだ挿管を介して導入した。図３Ｂは、ＳＨ－ＣＴまたはｍｉＲ－１４６Ａを載せたＥＶ（ＭＶプロトコール：1回換気量１２ｃｃ／ｋｇ、呼吸数１５０呼吸／分、４時間の０ｃｍ Ｈ_２Ｏ下での呼気終末陽圧）で処理した動物の生理学的測定値の棒グラフを示す。図３Ｃは、ＭＶを４時間行った後にＳＨおよびｍｉＲ－１４６ａで処理した動物のＢＡＬタンパク質含有量の変化を示す棒グラフである。図３Ｄには、モックプラスミド（偽コントロール－ＳＨ）または抗炎症性ｍｉＲ－１４６ａを載せたＥＶの平均サイズ分布の棒グラフを示す。

抗炎症性ｍｉＲ－１４６ａを載せた生体由来のデザイナーＥＶをｍｉＲ－１４６ａ（ＯｒｉＧｅｎｅ）をコードするプラスミドで、Ｃ５７ＢＬ６マウス（８～１０週齢）の背部皮膚をナノトランスフェションすることによって得た。皮膚トランスフェクションしてから２４時間後に、搭載後のＥＶを皮膚生検から収集し、ＥｘｏＱｕｉｃｋキット（ＳｙｓｔｅｍＢｉｏ）で単離した。単離後、ＥＶを粒状に保ち、その後の使用するために０．９％塩化ナトリウム溶液に懸濁させた。ＥＶの搭載効率は、ｑＲＴ－ＰＣＲを介してｍｉＲ－１４６ａのコピー数を定量化して測定した。

デザイナーＥＶを生体内で評価した。簡単に説明すると、重大な肺損傷を誘発する可能性のある既報の換気プロトコールに従って、機械的人工呼吸（ＭＶ）を行った。この際の条件は、1回換気量１２ｃｃ／ｋｇ、呼吸数１２０呼吸／分、４時間の０ｃｍＨ_２Ｏ下の呼気終末陽圧であった。これらの実験では、ＭＶ前に気管内注射（２μＬ／ｇのマウス重量を使用）を介してデザイナーＥＶをこれらのマウスの肺に導入した。肺の生理機能と酸素飽和度のデータを換気過程中に収集する。４時間後、動物を安楽死させ、気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）検査データおよび組織を収集した。

例２：デザイナーＥＶの製造に向けた試験管内アプローチ
ナノチャネル系のエレクトロポレーションを使用して、ドナー細胞内で目的のカーゴを制御範囲内で過剰に発現させ、ＥＶの含有量および表面修飾の程度を所望する範囲に設定した。ナノチャネル系のエレクトロポレーションにより、トランスフェクション効率と細胞生存率を最大１００％にすることができ、キャプシドサイズの制限は受けなかった。このアプローチを使って、マウス樹状細胞および胚性線維芽細胞の初代培養物、ならびにヒト細胞株などの複数の細胞源から得られる抗炎症性ｍｉＲ－１４６Ａを載せたデザイナーＥＶを取得した（図３Ａ－３Ｅ）。ＥＶ含有量の特性評価結果から、偽積載ＥＶと比較して、目的の分子カーゴの取り込みに成功していることが示された（図３Ｃ）。次に、このようなＥＶを有効に使用して、ヒト肺上皮細胞およびヒトマクロファージを培養する際の遺伝子発現を調節した（図３Ｄ）。前神経因子遺伝子ＡＳＣＬ１、ＢＲＮ２、およびＭＹＴ１ｌ（ＡＢＭ）を載せたデザイナーＥＶも、マウス線維芽細胞の初期初代培養物から得た。ＡＢＭを搭載したデザイナーＥＶの動的放出と取り込みを検討した結果、ドナー細胞からのＥＶ放出は、トランスフェクションの２４時間後にピークに達し、その時の濃度は数十億粒子／ｍｌのオーダーであることが明らかになった。ＥＶ内に充填された遺伝子のコピー数は、「ドナー」細胞にデリバーされた元のコピー数を約３桁上回り、ＥＶ放出前の治療用カーゴが細胞内で増幅することが示唆された。

例３：デザイナーＥＶの製造に向けた生体内アプローチ
生体内組織からデザイナーＥＶを誘導するナノチャネル系の組織トランスフェクションを行うと、おそらく患者自身の組織を量産型のＥＶバイオリアクターとして使えるようになると考えられるが、このことは臨床上および産生への橋渡し上重要な意味を持つ。この方法によれば、約１ｃｍ^２のマウス皮膚から、抗炎症性ｍｉＲ－１４６Ａを載せた約１０兆個のＥＶが得られる（図４）。このようなＥＶを有効に活用すると、機械的人工呼吸により引き起こされる炎症を抑制できる（図５）。

例３：
ＡＲＤＳ発症の場合の救命救急の必要性、入院の長期化および回復の遅延を考えると、ＡＲＤＳにかかわる医療システムにかかる負担は甚大である。Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｌｕｎｇ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ（２０１３）によると、米国では年間約１９万件のＡＲＤＳが発生している。ＡＲＤＳ患者の死亡率は高く、３８～４５％に達する。ＡＲＤＳは通常、肺への鈍的外傷や敗血症などの基礎疾患により引き起こされる。肺に損傷が起こると、感染で引き起こされる重度の全身性炎症反応を伴う敗血症に罹り生命の危険にさらされ、そのため多くのＩＣＵ患者が亡くなっている。ＡＲＤＳの特徴として、重度の低酸素症、肺胞毛細血管バリア機能障害、肺サーファクタントの産生低下による小気道氾濫、および炎症誘発性経路の活性化が挙げられる。機械的人工呼吸は酸素療法をサポートする一方で、機械的ストレスにより初期損傷を悪化させ、より死亡率の高い人工呼吸器誘発肺損傷（ＶＩＬＩ）を引き起こす可能性がある。これらすべてが要因となり、根底にある肺損傷をさらに悪化させ、炎症を助長し、多臓器不全や死につながる得る正のフィードバックループを助長する。現在、ＡＲＤＳの治療法はないが、肺を標的とした抗炎症性カーゴを使うアプローチに対する期待は大きい。細胞ベース（例えば、内皮前駆細胞、間葉系幹細胞）の治療法を使えば、例えば、炎症を軽減し、栄養メカニズムおよび抗炎症／感染メカニズムを介して肺の修復が助長される。ただし、過剰な体外処理に一部起因するものであるが、腫瘍の形成や高免疫原性反応を引き起こす可能性のある前駆細胞をベースとした細胞治療の安全性については、依然、重大な懸念が残っている。特定の治療薬の正体はすでに明らかになっている一方で、炎症を起こした肺への治療薬の効率的な導入方法については、重症患者にとっては依然として大きな課題である。こういった制限を克服する上で鍵となる抗炎症性および抗菌性分子カーゴは、機能化デザイナーＥＶにより効率的かつ選択的に導入され、肺の炎症と損傷を軽減し、敗血症誘発性ＡＲＤＳ中の組織を修復する機能を高める。表１に、分子カーゴを搭載したデザイナーＥＶの設計内容を示す。

実験プロトコールを最適化し、生体組織に由来するデザイナーＥＶを取得した。この重点分野においては、表１に記載されているように、８～１０週齢のＣ５７ＢＬ６マウスの皮膚に各因子をコードするプラスミドを生体内でナノトランスフェクションすることにより、抗炎症性または抗菌性カーゴを積んだ生体由来のデザイナーＥＶを得た。組織ナノトランスフェクションプラットフォームは、既報したように、投影／接触フォトリソグラフィー、および深掘り反応性イオンエッチングとの組み合わせによりクリーンルームで製造した。ＥＶは、トランスフェクション後のさまざまな時点で皮膚生検から収集した。ＥＶを分離するために、ｇｅｎｔｌｅＭＡＣＳ解離剤を使用して皮膚サンプルを解離および均質化した。トータルエクソソーム分離キットを使用してＥＶを選択的に沈殿させ、後で使用するために－８０℃で保存した。

デザイナーＥＶを機能化し、ＡＲＤＳ炎症の重要な拠点となる肺上皮およびマクロファージの細胞コンパートメントへの標的導入を行う。機能化デザイナーＥＶは、肺サーファクタントタンパク質Ａ（ＳＰＡ）および膜糖タンパク質ＣＤ２００のプラスミドを用いたナノトランスフェクションを行うことにより得られる（図6）。ＳＰＡによる機能化ＥＶは、肺胞肺細胞の受容体ｐ６３／ＣＫＡＰ４と相互作用し、これらの細胞のトル様受容体－２（ＴＬＲ２）にも結合して、ＮＦκβ炎症経路の活性化を弱めると予想される。ＣＤ２００で機能化されたＥＶは、肺胞マクロファージのＣＤ２００Ｒ受容体と優先的に相互作用する傾向にあり、これにより炎症誘発性状態が調節される。内皮を標的とする追加のリガンドはＳＰＡおよびＣＤ２００と組み合わせて使用し、体循環により導入されるデザイナーＥＶが肺微小血管系と相互作用しやすくなるようにした。ＳＤＦ１リガンドと共機能化されたＥＶは、肺血管系のＣＸＣＲ７受容体と優先的に相互作用する。これにより、損傷状態下で上方制御され、その後デザイナーＥＶが肺胞腔へ移行する際に、肺血管系へ固着し易くなる。デザイナーＥＶの最適な投与経路を特定することも、デザイナーＥＶを治療用途向けに最適化するための重要な項目となる。そのため、３つの非侵襲的投与経路（表２）を比較して、治療用途に最適な導入方法を決めた。

導入方法ごとに、機能性および非機能性の抗炎症性、抗菌性、または偽デザイナーＥＶで治療された健康な動物および罹患した動物に対して、服用量感受性分析を行った（表３）。この分析では、気管支肺胞洗浄検査物（ＢＡＬ）、血液、および肺が収集され、導入された分子カーゴをコードする遺伝子の相対的発現度合い、ならびに鍵となる炎症誘発性および抗炎症因子（表４）がｑＲＴ－ＰＣＲを介して定量化される。この分析により、生体内での肺の炎症を有意的に調整するための最適な服用量濃度が決められる。これらの結果は、デザイナーＥＶの最適濃度を取得するのに必要なトランスフェクトされた皮膚の面積と相関する。オフターゲット部分の蓄積とクリアランスについては、定量的な生体内分布の調査に基づき試験される（図６）。

生体内での検討に加えて、広範なＥＶの試験管内特性評価結果により、ＥＶの本質がよりよく理解される。この評価には、たとえばＮａｎｏｓｉｇｈｔおよびゼータ電位アナライザーシステムを使った、カーゴおよび表面修飾の関数としてのサイズ分布、電荷、および粒子濃度の分析が含まれる。ＥＶの積載効率は、各プラスミドＤＮＡに対して作成された標準曲線から求めた絶対定量ｑＲＴ－ＰＣＲプロトコールを使って、ＥＶごとに詰められた各遺伝子のコピー数を定量化することで決められる。これらの結果は、皮膚にトランスフェクトされたコピー数と相関する。全ＲＮＡ配列を使って、抗炎症、抗菌性、または偽分子からなるカーゴを載せたデザイナーＥＶの内容物を特徴付け、これによりデザイナーＥＶ内に詰め込まれたコード化および非コード化ＲＮＡの形態に関する詳細な情報を得る。さらに、機能性および非機能性デザイナーＥＶの（膜およびサイトゾルレベルでの）比較プロテオミクス分析を実施して、抗炎症効率および抗菌性分子カーゴの詰込み効率、ならびに膜リガンドの発現効率を決める。

デザイナーＥＶの作用メカニズムをよりよく理解するために、肺損傷のマウスモデル（表３）における生体内性能評価結果を、損傷に関して十分に確立された試験管モデル（表５）に対するベンチマークとして採用した。試験管モデルでは、特定の細胞集団に対するデザイナーＥＶの効果的かつ体系的な研究が可能となり、一方、生体内モデルでは、複数の臓器系間の相互作用が重要となる病態生理学上の条件の元での応答をより良く理解することができる。生体内では、炎症および細菌感染を低減する上でのデザイナーＥＶの有効性を、敗血症誘発性ＡＲＤＳのマウスモデルおよび２ヒットモデルを使って評価した。これらのモデルは、感染下にある特定濃度のデザイナーＥＶから観察された炎症減衰レベルの潜在的な影響を判断するのに役立つ。圧外傷および容積外傷の試験管モデルを使って、デザイナーＥＶを肺組織および細菌培養物から単離した細胞成分上でプロービングした。

生体内損傷モデルでは、デザイナーＥＶを様々な用量（例えば、単回対反復）および時点（例えば、損傷前対損傷後）で投与した（表２）。敗血症誘発性ＡＲＤＳをモデル化するために、８～１０週齢のＣ５７ＢＬ６マウスを盲腸結紮穿刺（ＣＬＰ）または偽開腹術の対象とした。肺水腫は、Ｖｅｖｏ２１００システムによる超音波画像診断からＣＬＰ後に評価した。動物を犠牲にし、ＢＡＬ、血液、および主要な臓器（すなわち、肺、心臓、脾臓、肝臓、および腎臓）を、下流分析のために滅菌生理食塩水で灌流した後に収集した。２ヒットモデルを使用すると、感染患者が機械的人工呼吸を必要とする場合のように、より臨床的に関連性のある状態の再現が可能になる。このモデルでは、８～１０週齢のＣ５７ＢＬ６マウスを、最初にＣＬＰまたは偽開腹手術し、ＣＬＰの２４時間後に、有害なプロトコール（1回換気量１２ｃｃ／ｋｇ、１２０呼吸／分、およびＦｌｅｘｉＶｅｎｔ ＦＸ、ＳＣＩＲＥＱを使用して４時間０ｃｍ Ｈ_２Ｏ下の呼気終末陽圧）の条件にて機械的換気にさらした。肺の生理機能と酸素飽和度のデータをＭＶ過程中に収集したのち、ＭＶの最後に動物を麻酔薬の過剰摂取により犠牲にし、ＢＡＬ、血液、および主要臓器を下流分析のために滅菌生理食塩水で灌流した後に収集する。ＢＡＬサンプルの細胞含有量は、炎症性細胞カウント数（すなわち、肺胞マクロファージ、リンパ球、好酸球、好中球、および肥満細胞）により決めた。タンパク質含有量の上昇は肺胞毛細血管バリア機能の完全性の喪失と相関するため、ＢＡＬタンパク質含有量も測定した。タンパク質の定量後、カスタムメイドのサイトカインアレイを使用して、炎症誘発性および抗炎症性のサイトカインおよび因子を発現するために、すべてのＢＡＬおよび血漿サンプルをスクリーニングする（表４）。生体内に導入された分子カーゴの相対的発現（表１に記載されている治療法に対する）およびこれらの治療法の鍵となる抗炎症性および炎症誘発性分子マーカー（表4に記載）の発現への効果については、ｑＲＴ－ＰＣＲを介して評価された。

生体内損傷モデルの場合、初代肺上皮細胞とマウス由来のマクロファージとの共培養物は、圧外傷または量（体積）外傷損傷に晒される。圧外傷は、以前公開された周期的圧力モデルを使うことで誘発される。このため、細胞をトランスウェルインサート上で共培養し、頂端コンパートメントを２４時間加圧して、０．２Ｈｚの周波数で０～２０ｃｍ Ｈ_２Ｏ下の周期的振動圧をかけ、人工呼吸器および通常の呼吸数の場合と同じ状態をシミュレートした。容積外傷は、ＦｌｅｘｃｅｌｌＦＸ－５０００テンションシステムを使用してシミュレートした。このモデルでは、細胞をエラストマー底部付きの改良型6ウェルプレート上で共培養し、細胞培養インキュベーター内で２４時間、１．２５Ｈｚで１０～２０％の伸長率で連続的かつ周期的に伸長を繰り返した。主要な炎症誘発性分子（表４）の培地への分泌をモニターした。密着結合の形成と保持状態を評価するために、ＺＯ－１を外傷後の上皮－内皮バリア機能の指標として、ＩＦを介して染色および画像化した。この評価に採用された実験グループを表５に示す。

特段の言及がない限り、本開示で使用されるすべての技術用語および科学用語は、開示の分野に属する当業者によって通常理解されるのと同じ意味を有する。本開示で引用されている刊行物および引用資料は、本開示中にて援用される。

当業者は、本開示書に記載の本発明に特定の実施形態と同等のものを多数認識し、または通常の実験でもって確認することができるが、以下の特許請求の範囲に包含されるように意図される。

Claims (4)

1. 急性呼吸窮迫症候群（ＡＲＤＳ）の治療方法に使用するための治療用細胞外小胞であって、前記治療用細胞外小胞が、小胞の分泌に適した条件下で、肺サーファクタントタンパク質Ａ（ＳＰＡ）および他家エクソソームまたはリソソーム膜貫通タンパク質を含む融合タンパク質をコードする非ウイルスベクターで皮膚細胞をナノトランスフェクトすること、並びに前記皮膚細胞で産生された細胞外小胞を収集することにより産生され、
   前記治療用細胞外小胞が、治療用カーゴを搭載し、
   前記治療用カーゴがｍｉＲ１４６ａ又はＹ－２７６３２を含み、並びに
   前記方法が、ＡＲＤＳの患者に前記治療用細胞外小胞を投与することを含む、治療用細胞外小胞。
2. 小胞の分泌に適した条件下で、肺サーファクタントタンパク質Ａ（ＳＰＡ）および他家エクソソームまたはリソソーム膜貫通タンパク質を含む融合タンパク質をコードする非ウイルスベクターで皮膚細胞をナノトランスフェクトすること、並びに前記皮膚細胞で産生された細胞外小胞を収集することにより産生される、請求項１に記載の治療用細胞外小胞。
3. 肺サーファクタントタンパク質Ａ（ＳＰＡ）および他家エクソソームまたはリソソーム膜貫通タンパク質を含む肺標的融合タンパク質を発現し、且つｍｉＲ１４６ａ又はＹ－２７６３２を含む治療用カーゴを搭載する、皮膚細胞由来の治療用細胞外小胞。
4. 前記治療用カーゴがｍｉＲ１４６ａを含む、請求項３に記載の治療用細胞外小胞。