JP7619941B2 - Cd25抗体 - Google Patents
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Description
この出願は、2018年11月14日に出願された米国仮特許出願第62/767,405号の優先権の利益を主張し、この仮出願の内容は、全体として参照により本明細書に組み入れられている。
a.前記抗体は、IL-2リガンドのIL-2受容体のα鎖(CD25)との結合を阻まず、かつ7G7B6が結合するものとは異なるエピトープと結合する;
b.前記抗体は、IL-2リガンドのIL-2受容体のα鎖(CD25)との結合を阻まないが、IL-2受容体のβ鎖とγ鎖とα鎖(CD25)の三量体形成を阻む;
c.前記抗体は、IL-2リガンドのIL-2受容体のα鎖、β鎖、および/またはγ鎖との結合を阻み、かつダクリズマブまたはバシリキシマブが結合するものとは異なるエピトープと結合する;
d.前記抗体は、7.4のpHにおけるCD25との結合親和性と比較した場合、7.4未満のpHにおいてCD25とのより高い結合親和性を示す;
e.前記抗体は、表1A、表1C、表1E、表1G、表1I、表1K、表2A、表2B、表2C、表4A、および表5A、もしくは図3A、図3B、および図5に提示された重鎖可変領域(variable heavy chains)のいずれか1つのアミノ酸配列、そのヒト化バージョン、またはそれと少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、もしくは少なくとも95%配列同一性を含むアミノ酸配列を含む;
f.前記抗体は、表1B、表1D、表1F、表1H、表1J、表1L、表3A、表3B、表3C、表4B、および表5B、もしくは図4A、図4B、および図6に提示された軽鎖可変領域(variable light chains)のいずれか1つのアミノ酸配列、そのヒト化バージョン、またはそれと少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、もしくは少なくとも95%配列同一性を含むアミノ酸配列を含む;
g.前記抗体のVHは、表1A、表1C、表1E、表1G、表1I、表1K、表2A、表2B、表2C、表4A、表5A、および表6に提示されている、または図3A、図3B、および図5に提示された配列に含有されているCDRH1、CDRH2、およびCDRH3のアミノ酸配列のいずれか1つを含む;
h.前記CD25抗体のVLは、表1B、表1D、表1F、表1H、表1J、表1L、表3A、表3B、表3C、表4B、表5B、および表7に提示されている、または図4A、図4B、および図6に提示された配列に含有されているCDRL1、CDRL2、およびCDRL3のアミノ酸配列のいずれか1つを含む;
i.前記抗体は、表6に提示された組合せのいずれか1つのCDRH1、CDRH2、およびCDRH3のアミノ酸配列、ならびに表7に提示された組合せのいずれか1つのCDRL1、CDRL2、およびCDRL3のアミノ酸配列を含む、
のうちの少なくとも1つ、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、少なくとも5つ、または少なくとも6つを有するモノクローナルCD25抗体が本明細書で提供される。
本明細書で他に規定がない限り、本明細書で用いられる全ての技術的および科学的用語は、当業者により一般的に理解されているのと同じ意味をもつ。本明細書に記載されたものと類似したまたは等価の任意の方法および材料が、本発明の実践または試験に用いることができ、例示的な方法および材料が記載されている。
CD25と特異的に結合する抗体が本明細書で提供される。そのような抗体は、制御性T細胞上に存在する、単独か、または高親和性IL-2受容体を形成する他の分子と会合したかのいずれかでCD25抗原と結合する能力がある。
図2は、CD25抗体発見、インビトロ試験、およびインビボ試験についての例示的な非限定的ワークフローであるが、抗体発見および試験にアプローチする代替方法があることを当業者は認識している。
治療的使用、例えば、癌などの増殖性疾患もしくは障害における使用、または自己免疫疾患における使用のためのCD25抗体が本明細書で提供される。
本明細書に提供されたCD25抗体は、診断および検出のために用いられ得る。適用に依存して、CD25抗体は、インビボまたはインビトロで検出および定量化され得る。
本開示は、治療用CD25抗体を含む組成物を提供する。いくつかの実施形態において、組成物は無菌である。医薬組成物は、一般的に、薬学的に許容される賦形剤中に有効量の治療用抗体を含む。
本開示はまた、例えば、治療的かまたは診断的かのいずれかの使用のための、本明細書に記載されたCD25抗体のいずれかを含むキットを提供する。いくつかの実施形態において、キットはさらに、二次抗体のいずれか、免疫組織化学分析のための試薬、薬学的に許容される賦形剤、および取扱説明書、ならびにそれらの任意の組合せから選択されるコンポーネントを含有する。いくつかの実施形態において、キットは、本明細書に記載された治療用組成物のいずれか1つまたは複数を、1つまたは複数の薬学的に許容される賦形剤と共に含む。
実施形態1. ヒトCD25と結合するモノクローナルCD25抗体であって、以下の特性:
a.抗体は、IL-2リガンドのIL-2受容体のα鎖(CD25)との結合を阻まず、かつ7G7B6が結合するものとは異なるエピトープと結合する;
b.抗体は、IL-2リガンドのIL-2受容体のα鎖(CD25)との結合を阻まないが、IL-2受容体のβ鎖とγ鎖とα鎖(CD25)の三量体形成を阻む;
c.抗体は、IL-2リガンドのIL-2受容体のα鎖(CD25)、β鎖、および/またはγ鎖との結合を阻み、かつダクリズマブまたはバシリキシマブが結合するものとは異なるエピトープと結合する;
d.抗体は、7.4のpHにおけるCD25との結合親和性と比較した場合、7.4未満のpHにおいてCD25とのより高い結合親和性を示す;
e.抗体は、表1A、表1C、表1E、表1G、表1I、表1K、表2A、表2B、表2C、表4A、および表5A、もしくは図3A、図3B、および図5に提示された重鎖可変領域のいずれか1つのアミノ酸配列、そのヒト化バージョン、またはそれと少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、もしくは少なくとも95%配列同一性を含むアミノ酸配列を含む;
f.抗体は、表1B、表1D、表1F、表1H、表1J、表1L、表3A、表3B、表3C、表4B、および表5B、もしくは図4A、図4B、および図6に提示された軽鎖可変領域のいずれか1つのアミノ酸配列、そのヒト化バージョン、またはそれと少なくとも80%、少なくとも85%、少なくとも90%、もしくは少なくとも95%配列同一性を含むアミノ酸配列を含む;
g.抗体のVHは、表1A、表1C、表1E、表1G、表1I、表1K、表2A、表2B、表2C、表4A、表5A、および表6に提示されている、または図3A、図3B、および図5に提示された配列に含有されているCDRH1、CDRH2、およびCDRH3のアミノ酸配列のいずれか1つを含む;
h.CD25抗体のVLは、表1B、表1D、表1F、表1H、表1J、表1L、表3A、表3B、表3C、表4B、表5B、および表7に提示されている、または図4A、図4B、および図6に提示された配列に含有されているCDRL1、CDRL2、およびCDRL3のアミノ酸配列のいずれか1つを含む;
i.抗体は、表6に提示された組合せのいずれか1つのCDRH1、CDRH2、およびCDRH3のアミノ酸配列、ならびに表7に提示された組合せのいずれか1つのCDRL1、CDRL2、およびCDRL3のアミノ酸配列を含む。
の少なくとも1つを有する、モノクローナルCD25抗体。
CD25での免疫化
KLHとコンジュゲートされた完全長CD25を、5匹の異なるBalbCマウスへ注射した。全ての注射を、尾静脈を介して行った。免疫化プロトコールは以下の通りであった:
- 0日目:免疫化1
- 14日目:免疫化2
- 28日目:免疫化3
- 35日目:採血
CD25結合についてのファージパニング
Fab含有ファージライブラリのファージパニングの3ラウンドを、ELISAに基づいたアッセイを用いて実行した。ファージを、CD25でコーティングされたビーズに対してスクリーニングした。各ラウンドを、減少する濃度のCD25を用いて実行した。個々のファージクローンは、大腸菌(E. Coli)TG1細胞(LB/カルベニシリン上にプレーティングされた)において発現した。単一コロニーを、0.4ml 2YTブロス中、37℃で30分間、培養し、その後、M13 K07ヘルパーファージに、37℃で3時間、感染させた。その後、50μg/mlカルベニシリンおよび10μg/mlカナマイシンを、その培養物へ加え、その後、それを25℃で一晩、増殖させた。次の日、ファージをその培養物から採取した。
pH 6.5におけるCD25結合についてのファージパニング
より低いpH範囲においてCD25を結合するFab候補について選択するために、例えば低酸素の酸性腫瘍微小環境において、結合することができる結合剤について選択するために、さらなるファージパニングを実行した。
陽性ヒットクローンを、一晩、培養し、プラスミドDNAを、Qiagen plasmid miniprepキットを用いて調製した。精製されたプラスミドを、サンガーシーケンシングのために、GenewizおよびELIM Biopharmaceuticalsへ提出した。VH配列は、シーケンシングプライマー(ACGCCTGCGAAGTCACCCAT(配列番号1497))または(AGAAACACAAAGTCTACGCCTGCGAAGTCAC(配列番号1498))を用いて得られた。VL配列は、シーケンシングプライマー(AGCGGATAACAATTTCACACAGGA(配列番号1499))または(CGGATAACAATTTCACACAG(配列番号1500))を用いて得られた。VHおよびVL V-D-J配置、核酸アライメント、およびアミノ酸アライメントを、IMGT High V-Questにより同定した。
ファージELISAプロトコールおよびバイオセンサー/Octetスクリーニング
ELISA/抽出物調製
CD25のFabファージとの結合を評価するためのファージELISA、およびFab Octetスクリーニングのためのペリプラスム抽出物調製を、本質的には記載されているように行い、改変を付記した(Schwimmer et al., 2013)。
プレート中0.03~0.5ml 一晩培養物または50mL培養物に関して、単一の大腸菌コロニーを、50 2×YT 0.2%グルコース中に接種し、増殖した。培養物を、250~700rpm、37℃で1.5時間、インキュベートした。培養物を、50ulの25mM~1M IPTGで誘導した。温度を30℃へ、rpmを150へ下げた。インキュベーションを一晩、行った。50ml培養物またはプレートを、3400rcfで15分間、ペレット化することにより採取した。上清を捨てた。50mL培養物からの細胞ペレットを、-80℃フリーザーに1時間、置き、一方、プレート中で増殖した培養物に、EDTAフリーの1×Haltプロテアーゼ阻害剤(Thermo Fisher Scientific)と共に75uLのPPBを加え、ボルテックスした。プレートを、1000rpm、4℃で10分間、振盪した。EDTAフリーの1×Haltプロテアーゼ阻害剤(Thermo Fisher Scientific)と共に225uLの容量の冷水を各ウェルに加えた。試料を混合し、最大速度、すなわち、1000rpmで、4℃、1~2時間、振盪した。プレートを3500rpm、4℃で10分間、回転させた。上清(PPE)を、新しいプレートへ移し、-20℃で保存した。50ml培養物からの細胞ペレットを、フリーザーから取り出し、5ml PBS、10mMイミダゾールを、2.5mg/ml リゾチームおよびEDTAフリーの1×Haltプロテアーゼ阻害剤(Thermo Fisher Scientific)と共に加えた。ペレットが完全に解凍/混合したらすぐに、これらを室温で30分間、インキュベートした。溶解物を、3400rcfで15分間、遠心分離した。上清を取り出し、ペレットを捨てた。500ul Ni-NTA樹脂を加え(予洗およびペレット化)、またはNi-NTAスピンカラムをFab精製に用いた。清浄化された溶解物を30分間~1時間、インキュベートした。これを1500rcfで回転させた。これらを、1ml PBS、10mMイミダゾールで5回、洗浄した。各回転後、バッファーを捨てた。1ml PBS、200mMイミダゾールを加え、混合し、30分間、インキュベートし、1500rcfで15分間、回転させた。溶出されたタンパク質を、タンパク質濃度を決定した後、4℃または20℃で保存した。Zebaカラムを、脱塩/バッファー交換に用いた。
未加工の上清におけるOctet Koff速度定数スクリーニングについて、50ulの溶解物を、384ウェルPall ForteBio Octetプレートに用いた。データを、Octet RED 384(MD ForteBio)において収集した。簡単に述べれば、ヒトCD25を、AR2Gチップに連結した(1ug/ml)。データ収集について、ベースラインを、pH6.5におけるPBST 1%BSAバッファー中、60秒間、評価した。その後、pH6.5に調整された50ul 溶解物へチップを移動させ、会合を、300秒間、測定した。最後に、チップを、pH6.5におけるPBST 1%BSAバッファーへ移動させた。その後、チップを、200mM Tris-グリシン、pH2.5で再生し、PBST、1% BSA、pH6.5で中和した。データ分析に関して、参照サブトラクションについて、二重参照(チップ上のCD25なし、およびブランク参照ウェル)を、Octet HT 11.0ソフトウェアにおいて実施した。
選択された40個のFabのサブセットを、ヒトIgG1(本明細書ではヒトIgG1抗体と呼ばれている)を含有するように再フォーマットし、データをこれらから収集した。再フォーマットのために選択されたFabは、表5A(重鎖)および表5B(軽鎖)に示されている。異なる再フォーマット化IgG1抗体のKoff速度定数および親和性を、ForteBio(登録商標)Octet RED384(商標)バイオレイヤー干渉法(bio-layer interferometry)装置において評価した。精製された抗体を、アミン反応性バイオセンサー(Fortebio(登録商標)AR2G)上に共有結合性に固定化し、過剰な反応性エステルをエタノールアミンでブロッキングした。その後、ベースラインとして、センサーをランニングバッファー中へ漬け、300nM完全長CD25を含有するウェルへ移し、その後、ランニングバッファー中へ戻した。CD25の会合およびその後の解離を、二連で記録した。ランニングバッファーのみの会合(センサードリフトについて照合するために)、およびヒトND血清由来の固定化IgGを有する追加のセンサー(非特異的IgG結合について照合するために)を、対照として実行した。観察された結合速度(on rate)および解離速度を、1:1結合フィットモデルを用いてフィッティングし、平衡結合定数(KD)を計算した。
図7は、分子レベルでの交差遮断アッセイを用いる、非IL-2遮断剤およびIL-2遮断剤(Fab)の同定を描く。CD25をバイオセンサーチップ上にコーティングし、示されたFabと接触させた。その後、IL2を加えた。シグナル伝達の増加は、そのFabとIL2が、CD25上に異なる結合部位を有することを示す。
結合アッセイ
ヒトIgG抗体のCD25特異的結合についての細胞結合アッセイ
細胞上のCD25との抗体結合および特異性を確証するために、3つの細胞株SUDHL-1およびSUDHL-2(ヒト大型びまん性組織球性リンパ腫細胞株、ATCC)、ならびにHEK IL-2レポーター細胞(Invivogen)を用いて、CD25結合について試験した。SUDHL-1およびHEK IL-2レポーター細胞株はCD25+であるが、SUDHL-2はCD25- 細胞である。各細胞株について、100,000個の細胞を、96ウェル丸底プレートの細胞バッファー(PBS+2%HI FBS)においてプレーティングし、遠心分離した。1~10ug/mLの抗体濃度を用いて、各抗体の結合を試験した。細胞を、100uLの抗体/ウェル中に再懸濁し、氷上で20分間、インキュベートした。インキュベーション後、細胞を、300xg、室温で5分間、遠心分離し、氷冷の細胞バッファーで再懸濁および洗浄した。その後、細胞を、AF647にコンジュゲートされた抗ヒトFc二次抗体(Biolegend)で染色し、暗闇中、氷上で20分間、インキュベートした。細胞を遠心分離し、洗浄し、DAPIを含む冷たい細胞バッファー中で洗浄および再懸濁し、フローサイトメトリー(Cytoflex、Becton Dickinson)を用いて分析した。DAPI+ 細胞を分析から除外した。平均蛍光強度を、中央値を用いて計算した(FlowJo、TreeStar)。
組換えカニクイザル(cyno)CD25との結合について試験するために、マイクロタイタープレートを、50mM炭酸ナトリウム、pH9.6中1ug/ml Cyno CD25の80ulで、4℃で、一晩、コーティングした。次の日、ウェルから前記タンパク質を除去し、200ul PBS/0.1%BSA/0.05%tween20でブロッキングした。プレートを、室温で1時間、インキュベートした。ヒトIgG1再フォーマット化Fabクローン(ヒトIgG1抗体)を25nMから開始し、PBTバッファー中に3倍の段階希釈し、RTで1時間のインキュベーションのためにプレートへ加えた。その後、プレートを洗浄し、その後、1:2500希釈のHRPコンジュゲート型抗Fab抗体を加えた。プレートをPBS/tween20で5~10回、洗浄して、非特異的結合剤を除去した。TMBペルオキシダーゼ基質およびペルオキシダーゼ溶液を加え、発色させるのに必要とされる時間の間、インキュベートし、その終了時に80uLのELISA停止溶液を加えた。その後、OD測定値を、プレートリーダー(SpectraMax iD3プレートリーダー、Molecular Devices)を用いて450nMにおいて取得した。
一次細胞を用いたpSTAT5アッセイ
高度に精製されたヒト制御性T細胞におけるFabクローンの生物活性をスクリーニングするためのpSTAT5アッセイ
IL-2/JAK3/STAT-5シグナル伝達経路は、Tregの生存および増殖に関与する。この経路は、Tregの抑制活性に必須である因子、転写因子Foxp3の発現を惹起し、かつ維持する。IL-2がIL-2Rと結合した時、JAKタンパク質は活性化される;それらは、IL-2受容体の細胞質側領域と結合しているチロシンキナーゼである。これは、特定のチロシン残基上でトランスリン酸化を惹起し、STATタンパク質が動員され、かつリン酸化されるためのドッキング部位を生じる。その後、二量体化およびリン酸化されたSTATが、核へ転位置して、特異的なDNA配列を結合し、TregにおけるFoxp3およびCD25などのいくつかの標的遺伝子の転写を制御する。
この実施例において、クローンを、HEK IL-2レポーター細胞株(Invivogen)を用いて試験した。この細胞株は、IL-2の結合によるJAK-STAT経路の活性化をモニターするためにInvivogenにより作製された。完全活性ヒトIL-2シグナル伝達経路を得るために、そのレポーター細胞株は、HEK293細胞にヒトIL-2Rα、IL-2Rβ、およびIL-2Rγ遺伝子、ならびにJAK3およびSTAT5遺伝子を安定的にトランスフェクションすることにより作製された。このアッセイは、pSTAT5レベルに基づいて、IL-2の存在下での抗体および競合物質の添加による、IL-2遮断剤、非遮断剤、部分的遮断剤のIL-2生理機能および特徴づけを評価するためのハイスループット方法を提供する。アッセイに用いられる対照は、既知のIL-2遮断剤(ダクリズマブおよびバシリキシマブ)およびIL-2非遮断剤(7G7B6)を含む。pSTAT5アッセイについて、100,000個の細胞を、96ウェル丸底プレート中にプレーティングし、遠心分離した。1~5ug/mLの抗体濃度を用いた。HEK細胞を、50uLの抗体/ウェル中に再懸濁し、37℃インキュベーター内で15分間、インキュベートした。次に、IL-2についての希釈物を、細胞培地中10ng/mL濃度から開始して10倍希釈で調製した。IL-2希釈物をウェルに50uL/ウェルで、37℃インキュベーター内で10分間、加えた。インキュベーション後、プレートを室温、300xgで5分間、遠心分離し、100uL/ウェルの室温固定化バッファー(BD Biosciences)中、室温で15分間、再懸濁した。細胞を遠沈し、冷たい細胞バッファー(PBS+2%HI FBS)中に再懸濁した。その後、細胞を、100uL/ウェルの氷冷透過処理バッファー(BD Biosciences)中に再懸濁し、氷上で15分間、インキュベートした。細胞を、細胞バッファーで洗浄し、フローサイトメトリー(Cytoflex、Becton Dickinson)を用いる分析のために50uLの調製pSTAT5抗体中に再懸濁した。パーセントpSTAT5+ 細胞を、親集団に基づいて定量化し、値を、10ng/mL濃度におけるIL-2に対して標準化した。
図9は、pSTAT5シグナルがIL-2用量依存的であり、ダクリズマブ(IL-2遮断剤)で阻害されることを示している。pSTAT5レベルは、IL-2の用量と相関し、高いIL-2用量がpSTAT5レベルを増加させ、一方、より低いレベルのIL-2はより低いレベルのpSTAT5を生じた。加えて、抗ヒトIL-2抗体のIL-2遮断剤である、ダクリズマブが2ug/mLの一定濃度で加えられた時、それは、JAK-STAT5シグナル伝達経路を阻害して、より低いpSTAT5レベルを生じた。
抗体依存性細胞傷害性(ADCC)
機能細胞殺害アッセイADCCおよびADCP
Treg枯渇についての機構の一つは、抗体依存性細胞傷害性(ADCC)を通してである。これは、標的細胞上の特定の抗原と結合した抗体への免疫/エフェクター細胞の認識によりトリガーされる、細胞死を通常、引き起こす、細胞媒介性免疫防御機構である。ADCCを誘発するために、ヒトFcサブクラスを有する抗体、IgG1が、以下の3つのFc受容体と結合する能力を有するそれのエフェクター機能について、一般的に選択される:NK細胞、単球、および顆粒球などの免疫細胞上に発現している、FcγRI(CD64)、FCγRII(CD32)、およびFcγRIIIA(CD16)。NK細胞は主に、FcγRIIIAを発現し、ADCCにおける主要なエフェクター細胞であると考えられる。
図19A~19Bは、全ての再フォーマット化クローンの機能性ADCC活性を示す。第1のスクリーニングにおいて、クローンはCD25+ 細胞と結合し、ADCCが誘導され、細胞殺害は、18.2%から26.7%までの溶解の範囲であった(Raji細胞殺害は、参照として用いられている;図19A)。これらの所見を検証するために、選択クローンについての用量応答曲線に関して、アッセイを繰り返した。結果は、ベースライン溶解に対して2倍から6倍までのADCC活性の範囲を示し、%バックグラウンド溶解に対する倍数変化により測定された場合、クローンAH04511、AH05274、D11、D34、D36が、最も強力なADCCを誘発し、かつ7G7B6抗体より高い効力を有した。
CD25抗体の機能特徴づけ
インビトロでの特徴づけ
次のインビトロでの特徴づけは、Treg細胞の非存在下および存在下における、CD25抗体のTエフェクター細胞応答への影響を評価するためのT細胞活性化およびTreg抑制研究を含む。活性化についての読み取りは、細胞内グランザイムB、増殖、およびサイトカイン放出(例えば、IL-2、IFNγ、TNF-α)を含む。具体的には、健康なドナーおよび特定の抗原応答(例えば、ヒトサイトメガロウイルスまたはインフルエンザ抗原)を有するドナー由来のヒト一次通常T細胞(T conv細胞)を、細胞増殖色素(例えば、ThermoFisher)で標識し、様々な濃度のCD25抗体および対照抗体(1~10ug/mL)で処理し、その後、CD3/CD28ビーズを用いて活性化し、Tregと共にまたはTregなしで、37℃、5%CO2で48~72時間のインキュベーションとして、インキュベートする。T細胞活性化を評価するために、上清を、サイトカイン分析のために収集し、固定可能な生死判別色素(例えば、Thermofisher)および表面抗ヒトT細胞マーカー:CD3、CD4、CD8、CD45RA、CD25で細胞を染色し、その後、細胞内グランザイムBおよびFoxp3の染色のために固定化および透過処理を行う。細胞を、グランザイムB陽性細胞および増殖性細胞についてフローサイトメトリーを用いて分析する。
マウス異種移植腫瘍モデルを用いた、CD25抗体のインビボ活性。これらの実験は、ADCCおよび/またはADCPによるCD25+ 腫瘍枯渇に基づいて、CD25抗体の違いを区別するのに役立つ。候補抗体を、マウスIgG2aアイソタイプ抗体として産生し、免疫不全RAG-/- ノックアウトマウス(機能性NK細胞およびAPC細胞を有するが、成熟Bリンパ球もTリンパ球ももたない)において用いる。動物に、CD25+ ヒト細胞株(例えば、SUDHL-1、CD25+ 未分化大細胞リンパ腫)を皮下に移植する。抗体間の違いを認識するために、様々なサイズの腫瘍(触知可能、100~500mm3)が用いられ得る。動物を、異なる用量のCD25抗体(例えば、1~10mg/kg、週3回または1日1回)で処置し、体重およびTGIの変化についてモニターする。
Treg枯渇、およびTエフェクター細胞活性の増加と共に腫瘍内Teff/Treg比の増加による腫瘍成長阻害についてより効果的な抗体を、有効性および作用機構を確立するために、様々なヒト腫瘍モデル(例えば、肝臓癌、乳癌、黒色腫、胃癌、NSCLC、および結腸癌)において試験する。いくつかの研究は、トリプルネガティブ乳癌細胞株MDA-MB-231、胃細胞株、黒色腫細胞株A375、および肝臓癌細胞株Huh-7、加えて、十分特徴づけられており、かつ浸潤したTregと腫瘍成長の間の相関が示されており、ならびに/またはヒトPBMCおよび/もしくはCD34+ 細胞を移植されたヒト化マウスにおいてPD-1抗体組合せで処置されているヒトPDXモデルを用いることを含み得る。これらのモデルにおいて、腫瘍を皮下に移植し、腫瘍が触知可能から100~500mm3までのサイズ範囲に達したならば、様々な用量のCD25抗体および投薬スケジュール(例えば、1~10mg/kg、週3回または1日1回)で処置する。動物の健康スコアリング、体重、腫瘍成長、加えて、血液および腫瘍の免疫表現型検査を、腫瘍および免疫細胞組成および腫瘍浸潤細胞、ならびにサイトカイン分泌を特徴づけるために、フローサイトメトリー、Meso Scale Discovery多重プレート、および組織診断を用いて、実施する。
本明細書に引用された全ての特許、特許出願、刊行物、文書、Webリンク、および品物は、全体として参照により本明細書に組み入れられている。
Claims (9)
- ヒトCD25と結合するモノクローナルCD25抗体であって、以下の表に提示された(1)~(278)のいずれか1つの組合せである、CDRH1、CDRH2、およびCDRH3のアミノ酸配列ならびにCDRL1、CDRL2、およびCDRL3のアミノ酸配列を含む、前記モノクローナルCD25抗体。
- 配列番号2、17、32、38、44、60~107、431~460、868、869、1222、1230、1231、1232、1233、1234、1235、1236、1238、1237、1299、1316、1318、1327、1328、1329、1330、1331、1332、1333、1334、および1335に提示された重鎖可変領域のいずれか1つのアミノ酸配列、そのヒト化バージョン、またはそれと少なくとも90%配列同一性を含むアミノ酸配列からなる重鎖可変領域を含み、かつ、配列番号10、25、34、40、50、59、701、703、705、707、709、712、715、717、722、724、725、727、728、735、736、737、739、742、745、747、749、750、751、752、754、755、756、759、762、765、767、769、775、776、777、778、780、781、783、785、787、789、791、794、795、797、799、801、803、804、806、809、810、811、813、815、818、822、823、824、825、827、829、835、838、841、842、844、846、848、849、851、853、857、859、860、861、864、875、876、877、878、879、880、882、884、886、888、892、895、897、901、902、903、905、906、907、908、912、914、917、919、920、921、および922に提示された軽鎖可変領域のいずれか1つのアミノ酸配列、そのヒト化バージョン、またはそれと少なくとも90%配列同一性を含むアミノ酸配列からなる軽鎖可変領域を含む;
請求項1に記載のモノクローナルCD25抗体。 - ヒト抗体である;
ヒト化抗体である;
キメラ抗体である;
マウス可変ドメインおよびヒト定常ドメインを含む;
抗体断片である;または
カニクイザルCD25も結合する;
請求項1または2に記載のモノクローナルCD25抗体。 - 請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナルCD25抗体を含む、医薬組成物。
- 請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナルCD25抗体をコードする核酸。
- 請求項5に記載の核酸を含むベクター。
- 請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナルCD25抗体を発現するファージ。
- 癌、自己免疫疾患、自己免疫障害を処置するため、または制御性T細胞を枯渇させるための、請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナルCD25抗体を含む組成物。
- 請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナルCD25抗体または請求項4に記載の医薬組成物を含むキット。
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