JP7708669B2 - エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)から選択された分裂組織細胞株のフィトコンプレックス及び抽出物 - Google Patents
エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)から選択された分裂組織細胞株のフィトコンプレックス及び抽出物Info
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Description
本発明に関連して、「分裂組織系列」又は「分裂組織細胞」とは、新しい細胞を生み出すように有糸分裂により分裂する能力を維持することができる植物系列又は細胞を意味する。全ての分裂組織細胞は、別の分裂組織細胞に由来する。分裂組織細胞の機能は、動物の幹細胞の機能と同等である。
1)エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)属の植物から得られた組織を固体培地に植えるステップ;
2)複数の細胞クローンを単離するステップ;
3)単離したクローンの各々を液体培地に接種するステップ;
4)各クローンについて、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸及びフェルタル酸からなる群から選択されるポリフェノールの含量を定量するステップ;
5)0.05%w/w超、好ましくは0.5%~25%w/wの量のチコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸、フェルタル酸及びそれらの混合物からなる群から選択されるポリフェノールを含む細胞クローンを選択するステップ。
1)エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)属の植物から得られた組織を固体培地に植えるステップ;
2)複数の細胞クローンを単離するステップ;
3)単離したクローンの各々を液体培地に接種するステップ;
4)各クローンについて、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸及びフェルタル酸を含む群から選択されるポリフェノールの含量を定量するステップ;
5)0.05%w/w超、好ましくは0.5%~25%w/wの量で、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸、フェルタル酸及びそれらの混合物からなる群から選択されるポリフェノールを含む細胞クローンを選択するステップ
を含む。
文献に記載されている標準的手順を用いて、カルス組織の誘導を達成した。この手順により、エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)の植物からの幼組織(シュート)の収集、例えば、水道水によるそれらの洗浄、2~5cmの切片への細断、並びに例えば、順に、70%エタノール水溶液で約15秒、2%次亜塩素酸ナトリウム及び0.1%Tween 20で約5分の処理、最後に滅菌蒸留水で少なくとも4回の洗浄によるプレート上での滅菌を実施する。寒天の添加により固体にされ、抗生剤なしで、成長ホルモンを補充した栄養培地を含有するペトリ皿内に、さらに破砕した植物組織の全ての断片(外植片)を載せる。25℃の暗所で好適な期間のインキュベーション後、未分化カルス組織が形成され;次にこれを、新鮮な培地を含む、より広い表面に移した後、増殖させる。
Ep-2Pと称されるエキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)の選択された細胞株は、固体EP培地で維持され、白っぽい色合いが混じったベージュ色であり、脆い質感を有する(図1~3)。
選択され、25℃(±2)のバイオリアクター内で14日間増殖させた細胞のバイオマスをホモジナイズする手順は、以下:
a)EP-F培地中でのEp-2P細胞培養物の増殖から得られたバイオマスの濾過により、細胞のみを取得し、培地を廃棄するステップ;
b)細胞の2倍量の食塩水(滅菌水中0.9%W/V NaCl)で細胞を洗浄するステップ;
c)濾過し、洗浄したバイオマスに、1.0%W/W(0.5~2%W/W)のクエン酸(又はアスコルビン酸若しくはクエン酸とアスコルビン酸の混合物)を添加するステップ;
d)例えば、Ultra-Turrax又は細胞及びその内部構造を破砕するのに好適な他の器具を用いて、混合物をホモジナイズするステップ;
e)凍結乾燥又は空気循環乾燥又は回転シリンダー乾燥又は流動層乾燥又は噴霧によりバイオマスを乾燥させるステップ
を含む。
EchiPure-PC(登録商標)ホモジネートの内容の明細:
40~65%の多糖
0.5~20%の総ポリフェノール(うち約38%はチコリ酸である)
10~30%のタンパク質
5~10%の脂質
2~6%の水分
2~17%の灰
5~30%のクエン酸
EP-F培地中の標準EchiPure-PC(登録商標)Aフィトコンプレックスの調製の例は、非限定的な例として提供される。
固体EP培地(20g/Lのスクロース、1mg/LのNAA、0.5mg/LのIAA、0.5mg/Lのキネチン並びに0.8%の植物用寒天を添加したガンボーグB5)中で培養されたエキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)の株由来の、既述のように安定化及び選択された分裂組織細胞(Ep-2Pと称する)を、200mlの液体EP-F培地(40g/Lのスクロース、2.5g/Lではなく1g/LのKNO3、1mg/LのNAA、0.5mg/LのIAA及び0.5mg/Lのキネチンを添加した、最終pH6.5のガンボーグB5)を含有する5つの1リットル容量フラスコに接種した。液体培地に接種した分裂組織細胞の量は、6%W/Vであった。このようにして得られた懸濁液を25℃の暗所でインキュベートし、120RPMに設定したオービタルシェーカーの上に置いた。7日のインキュベーション後、5mg/Lのジャスミン酸メチルを細胞懸濁液(95%、Sigma-Aldrich,CAS Number:39924-52-2)に添加した。7日のインキュベーション後、植物バイオマス(1リットルの細胞懸濁液)を収集し、孔径50μmのナイロンメッシュで濾過し、700mlの滅菌食塩水(0.9%W/V)で洗浄した。洗浄した細胞(新鮮重量350g)に3.5gのクエン酸を添加し、Ultra-Turraxでホモジナイズした。
a)UPLC-DADによるEchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックス中のポリフェノールの定量
EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの100mgの粉末を計量して15mL試験管に導入し、30容量のエタノールと水60:40(V/V)を添加した。懸濁液をボルテックスミキサーで30秒混合した後、氷浴中で15分音波処理し;最後に、6℃にて15分間4000rpmで遠心分離した。遠心分離の終了時に、上清を回収した。15mLの上清を新しい試験管に移し、UPLCシステムにロードするまで、氷中で保存した。サンプルを1:10(初めに溶媒で1:5、続いて水で1:2)希釈した。希釈したサンプルを0.22μmフィルターで濾過した後、UPLCシステムにロードした。ポリフェノールの定量に用いるクロマトグラフィーシステムは、Acquity UPLC BEH C18 1.7μm VanGuard Pre-Column 3/Pk、サイズ2.1×5mmに連結された、Acquity UPLC BEH C18 1.7μmカラム、サイズ2.1×100mmである。UPLC-DAD分析に用いるプラットフォームは、PDA eλダイオードアレイ検出器に連結された、溶離液管理モジュール、Binary Solvent Manager model I Class、及びオートサンプラー、Sample Manager-FTN model I Classから構成されるUPLCシステム(Waters)を含む。Empower 3(Waters)ソフトウェアを用いて、データを取得し、解析した。使用したクロマトグラフィー法は、以下:溶媒A:水、0.1%ギ酸;溶媒B:100%アセトニトリルであった。初期条件は、99%溶媒Aであり;さらに、流量は、分析期間全体を通して、0.350ml/分で一定のままである。クロマトグラフィーカラムは、30℃に温度制御した。表2に示すように、勾配及びイソクラティック相を交互にすることにより、分子の溶離を実施した。
b)EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスのHPLC-ESI-MS解析
EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの粉末を、ボルテックス式ミキサーで30秒攪拌した後、氷の下、15分間40Hzの音波処理装置内で、20容量のメタノール:水90:10を用いて抽出し;4℃にて、18000gで10分の遠心分離後に抽出物を回収した。分析の前に、320nmで0.4~0.6の分光光度的吸光度を取得するように、好適な量の同じ溶媒(メタノール:水90:10)でサンプルを希釈した。サンプルを水でさらに希釈し、HPLC-ESI-MSにより分析した。
流量:200μl/分、25℃;注入量:10μl。
使用したカラム:7.5×2.1mmガードカラムと連結された、Alltima HP C18 3μm 150×2.1mm(Alltech Associates,Inc,Derfield,IL)。
ESI:ネブライザーガスN2,圧力50psi、温度350℃、乾燥ガス10l/分
質量取得:50~1500m/zの範囲で交流するフルスキャン;真空圧:1.4×10~5mバール。
溶離液:
-溶液A:5%ACN及び0.5%ギ酸水溶液、溶液B:100%ACN
溶離の合計時間:42分
勾配:
-分析の開始:溶離液A100%;
-勾配1:10%の溶離液Bを2分;
-勾配2:2分時点で、20%のBを10分;
-勾配3:12分時点で、25%のBを2分;
-勾配4:14分時点で、70%のBを7分;
-イソクラティック1:70%のBで6分;
-勾配5:27分時点で、90%のBを5分;
-イソクラティック2:10分間90%のB;
-カラムの最終再平衡化:42分時点で、0%のBを1分、60分時点で分析の終了。
c)EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックス中の多糖含量の定量分析
分析は、フェノール硫酸法(Segarra et al.,1995,Am J Enol Vitic.)を改変することによって実施した。この方法は、多糖の酸加水分解を伴い、これにより単糖が放出される。単糖は、フェノールと反応して、黄色を発色し、これは、490nmで分光光度計を用いて測定することができる。得られた結果は、520mg/gのEchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスと同等の量の多糖を示し、これは、52%に相当する。
d)EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスのタンパク質含量の分析
Lynch,J M. et al.,“Kjeldahl nitrogen analysis as a reference method for protein determination in dairy products” Journal of AOAC International(1999),82(6),1389-1398に記載されている通り、Kjeldahl法を用い、EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスに対して、タンパク態窒素の総含量の測定を実施した。
e)EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの脂質含量の分析
Martinez M.et al.,“Soxhlet lipids extraction from cotton from different producing areas.Comparison of dichloromethane or successive dichloromethane-methanol extractions”.Grasas y Aceites(1997),48(4),226-230に記載されている方法に従って、少なくとも12時間にわたる、ジクロロメタンでのSoxhlet抽出により、全脂質画分の抽出をEchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスに対して実施した。
f)EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックス中の水分及び灰の分析
40℃のストーブに材料を12時間放置することにより、フィトコンプレックスに対して水分の測定を実施した。灰の測定は、一定重量に到達するまで、300℃のマッフル炉内で材料を処理することにより取得した。
エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)の分裂組織細胞のカルスを分析して、選択前のそれらのポリフェノール含量、特にそれらのチコリ酸含量を定量した。使用した分析方法は、前述したUPLC分析であった。図4から明らかなように、選択された株Ep-2P(A)は、初期細胞(B)のそれより39倍高い総ポリフェノール含量(チコリ酸相当量として表される)を示す。
固体EP培地中で培養した、Ep-2Pと称されるエキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)の株に由来する、既述のように安定化及び選択した分裂組織細胞を、200mlの液体EP培地を含有する1リットル容量の10のフラスコに接種した。液体培地に接種した分裂組織細胞の量は、6%W/Vに等しかった。このようにして得られた懸濁液を25℃の暗所でインキュベートし、120RPMに設定したオービタルシェーカーの上に載せた。7日のインキュベーション後、細胞懸濁液を用いて、800mlの液体EP培地を含有する3リットル容量の10のフラスコに接種した。200mlの細胞懸濁液を、3リットル容量のフラスコに入った800mlのEP培地中に移した。こうして得られた懸濁液を25℃の暗所でインキュベートし、120RPMに設定したオービタルシェーカーの上に載せた。7日のインキュベーション後、細胞懸濁液を用いて、80リットルのEP-F培地を含有するバイオリアクターを接種した。25℃の暗所でバイオリアクターで7日増殖させた後、5mg/Lのジャスミン酸メチルを細胞懸濁液に添加した。
生物学的試験:コラーゲンIII及びIVの遺伝子発現の増大
高齢者ドナーからのヒト線維芽細胞の微小組織を用いて、コラーゲンIII及びIVの生合成の刺激の評価を実施した。0.03%及び0.1%濃度のEchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスを用いて、アッセイをセットアップした。アッセイに用いた濃度は、消費者に使用されることになる化粧品処方中のフィトコンプレックスの最終濃度と同等である。
EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの抗炎症活性
LPSによる刺激後のJ774 A1マクロファージ細胞株を用いて、EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの抗炎症活性の評価を実施した。使用した試験は、Paterniti et al.,Nutrients,2017に記載されている。
EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの抗酸化活性
a)ヒトケラチノサイト中のROSの生成の評価
ジクロロジヒドロフルオレセインジアセテート(H2DCF-DA)プローブを用いて、活性酸素種(ROS)の細胞内生成を評価した;このプローブは、細胞内に内在化され、ここで、エステラーゼの存在下、脱アセチル化された後、蛍光化合物中に存在するROSにより酸化される。DCFの蛍光の強度をMultilabelPlate Reader VICTOR TM X3 2030,PerkinElmer,USA(λec=485nm;λem=535nm)で読み取ると、細胞自体に存在するROSの量と比例している。EchiPure-PC(登録商標)フィトコンプレックスの抗酸化活性を試験するために使用した実験モデルは、細胞株HaCaT、即ち、ヒトケラチノサイトの株であった。
b)J774-A1マクロファージにおける抗酸化活性の評価
LPSによるストレス後のJ774-A1マクロファージ細胞モデルを用いて、EchiPure-PC(登録商標)の抗酸化活性の評価を実施した。実験の一部は、1μg/mLのLPSで処理したマクロファージに対して実施し、別の部は、LPS及びEchiPure-PC(登録商標)0.5mg/mLで処理したマクロファージを用いて実施した。
EchiPure-PC(登録商標)と称されるEp-2P株のホモジネートを3%w/wの濃度でグリセリンに分散させた(INCI名:グリセリン、エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)カルス溶解物、クエン酸)。分散液を3%で以下に記載する処方に添加した。
Claims (14)
- エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)の植物に由来する分裂組織細胞株を得るためのプロセスであって、前記プロセスは、以下:
1)エキナセア・プルプレア(Echinacea purpurea)属の植物から得られた組織を固体培地に植えるステップ;
2)複数の細胞クローンを単離するステップ;
3)前記単離したクローンの各々を液体培地に接種するステップ;
4)各クローンについて、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸、フェルタル酸及びそれらの混合物を含む群から選択されるポリフェノールの含量を定量するステップ;
5)0.05%w/w超の量で、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸、フェルタル酸及びそれらの混合物を含む群から選択されるポリフェノールを含む前記細胞クローンを選択するステップ;
6)ガンボーグ(Gamborg)B5培地に使用される塩、スクロース、ナフチル酢酸(NAA)及びインドール酢酸(IAA)を含有する最終液体培地に前記細胞クローンを移して、前記ポリフェノールの含量及びバイオマスの増加を誘導するステップ
を含み、
前記固体及び液体培地が、前記塩、スクロース、NAA、IAA、及びキネチンからなり、
前記細胞株が、前記細胞株の乾燥質量に対して、0.05%w/w超の量のポリフェノールを含み、ここで、前記ポリフェノールが、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸、フェルタル酸及びそれらの混合物からなる群から選択され、
前記固体培地が、20g/Lのスクロース、1mg/LのNAA、0.5mg/LのIAA、0.5mg/Lのキネチン並びに0.8%の植物用寒天を添加した、最終pH6.5であって、2.5g/LのKNO 3 を含む、ガンボーグB5培地であり、
前記液体培地が、20g/Lのスクロース、1mg/LのNAA、0.5mg/LのIAA、0.5mg/Lのキネチンを添加した、最終pH6.5であって、2.5g/LのKNO 3 を含む、ガンボーグB5培地であり、
前記最終液体培地が、40g/Lのスクロース、1mg/LのNAA、0.5mg/LのIAA及び0.5mg/Lのキネチンを添加した、最終pH6.5であって、1g/LのKNO 3 を含む、ガンボーグB5培地である、
プロセス。 - 前記ポリフェノールが、少なくとも30%のチコリ酸を含有する、請求項1に記載のプロセス。
- 前記分裂組織細胞株が、30~70%w/wの量の多糖を含む、請求項1又は2に記載のプロセス。
- 前記分裂組織細胞株が、5~40%w/wの量のタンパク質を含む、請求項1~3のいずれか1項に記載のプロセス。
- 前記分裂組織細胞株が、3~30%w/wの量の脂質を含む、請求項1~4のいずれか1項に記載のプロセス。
- 請求項1~5のいずれか1項に記載のプロセスによって得られる分裂組織細胞株を用いて、分裂組織細胞株のフィトコンプレックス又は抽出物を得るためのプロセス。
- 前記フィトコンプレックスは、乾燥若しくは凍結乾燥された細胞、又は細胞ホモジネート、又は細胞壁及びそれらの構成要素である、請求項6に記載のプロセス。
- 前記フィトコンプレックスは、前記細胞株の乾燥質量に対して0.5%w/w超の量のポリフェノールを含む細胞ホモジネートであり、ここで、前記ポリフェノールが、チコリ酸、クロロゲン酸、シナリン、カフタル酸、フェルタル酸及びそれらの混合物からなる群から選択される、請求項6又は7に記載のプロセス。
- 請求項1~5のいずれか1項に記載のプロセスによって得られる分裂組織細胞株及び/又は請求項6~8のいずれか1項に記載のプロセスによって得られるフィトコンプレックス及び/又は抽出物を含む組成物を得るためのプロセス。
- 前記組成物は、総組成物に対して、0.01重量%~1重量%の濃度の前記分裂組織細胞株及び/又は前記フィトコンプレックス及び/又は抽出物を含む、請求項9に記載のプロセス。
- 前記フィトコンプレックスが、0.05~0.2%の濃度のホモジネートである、請求項9又は10に記載のプロセス。
- 前記組成物は、クリーム、ゲルクリーム、ゲル、セラム、オイル、エマルジョン、エマルジョンゲル(エマルゲル)、軟膏、点眼薬、マウスウォッシュ、スプレー、スティック、丸薬、カプセル、錠剤、粒状粉、ハードシェルカプセル、口腔内崩壊顆粒、サシェ、ロゼンジ、又はリポソームとして製剤化される、請求項9~11のいずれか1項に記載のプロセス。
- 請求項1~5のいずれか1項に記載のプロセスによって得られる分裂組織細胞株、請求項6~8のいずれか1項に記載のプロセスによって得られるフィトコンプレックス及び/若しくは抽出物、並びに/又は請求項9~12のいずれか1項に記載のプロセスによって得られる組成物が、炎症若しくは上気道感染症の治療及び/又は予防に使用される、請求項1~12のいずれか1項に記載のプロセス。
- 請求項1~5のいずれか1項に記載のプロセスによって得られる分裂組織細胞株、請求項6~8のいずれか1項に記載のプロセスによって得られるフィトコンプレックス及び/若しくは抽出物、並びに/又は請求項9~12のいずれか1項に記載のプロセスによって得られる組成物が、機能性食品として使用される、請求項1~12のいずれか1項に記載のプロセス。
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