JP7842217B2 - 抗Nectin-4抗体、抗体薬物複合体、その製造方法及び使用 - Google Patents
抗Nectin-4抗体、抗体薬物複合体、その製造方法及び使用Info
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Description
(i) 前記重鎖が3つのCDR領域を含み、少なくとも1つのCDR領域のアミノ酸配列が配列番号1、配列番号2もしくは配列番号3に示されるアミノ酸配列を有し、又はそれと少なくとも80%(好ましくは85%、90%、95%、96%、97%、98%、もしくは99%)の配列同一性を持つアミノ酸配列を有する;及び/又は
(ii) 前記軽鎖は3つのCDR領域を含み、少なくとも1つのCDR領域のアミノ酸配列が配列番号4、配列番号5、もしくは配列番号6に示されるアミノ酸配列を有し、又はそれと少なくとも80%(好ましくは85%、90%、95%、96%、97%、98%、もしくは99%)の配列同一性を持つアミノ酸配列を有する。
(i) 前記重鎖が、それぞれCDR1領域、CDR2領域及びCDR3領域である3つのCDR領域を含み、前記CDR1領域、CDR2領域及びCDR3領域がそれぞれ、配列番号1、配列番号2及び配列番号3に示されるアミノ酸配列を有する;及び/又は
(ii) 前記軽鎖は、それぞれCDR1領域、CDR2領域及びCDR3領域である3つのCDR領域を含み、前記CDR1領域、CDR2領域及びCDR3領域がそれぞれ、配列番号4、配列番号5及び配列番号6に示されるアミノ酸配列を有する。
ASTKGPSVFPLAPSSKSTSGGTAALGCLVKDYFPEPVTVSWNSGALTSGVHTFPAVLQSSGLYSLSSVVTVPSSSLGTQTYICNVNHKPSNTKVDKKVEPKSCDKTHTCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK(配列番号16)。
RTVAAPSVFIFPPSDEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTEQDSKDSTYSLSSTLTLSKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC(配列番号17)。
特に定義されない限り、本明細書で使用される全ての科学用語は、当業者によって理解される同じ意味を有する。本分野の定義及び用語について、当業者は具体的に分子生物学カレント・プロトコル(Current Protocols in Molecular Biology(Ausubel))に参考できる。アミノ酸残基の略語は、本分野で用いられる、20つの通常L-アミノ酸のうちの1つを表記するための3文字及び/又は1文字の標準コードである。
Nectin-4マウス抗体は、WO2022051591A2に従って調製された。簡単な工程は、以下の通りであった:
動物(BALB/cマウス)を、アジュバント(フロイントアジュバント)を含有するヒトNectin-4-His融合タンパク質で腹腔内注射により免疫化した。動物に、適切な力価が生じるまで2週間ごとに追加免疫を誘導し続けた。各追加免疫後に動物を採血し、力価をELISA及びFACSにより検出した。最後の免疫化の4日後に、適切な力価を有する動物の脾臓を採取し、単一細胞懸濁液を調製した。細胞を、電気融合を用いてSP2/0マウス骨髄腫細胞と融合させた。融合細胞をハイブリドーマ細胞選択剤であるチミジン、ヒポキサンチン及びアミノプテリン(HAT)を含有する培地に再懸濁し、96ウェルプレートに播種して培養した。
ヒトIgG1から選択された定常領域でマウス抗体に基づいて修飾されたキメラ抗体の可変領域を、pcDNA3.4(IgG1,kappa)ベクターに挿入して、インタクトな重鎖及び軽鎖プラスミドを構築した。HEK293細胞にプラスミドをトランスフェクトし、上清を採取した後、protein A磁気ビーズを用いて精製し、全長抗体を得た。溶液を透析脱塩によりPBSに置換した。抗体の濃度及び純度をそれぞれOD280及びSDS-PAGEゲル電気泳動により検出した。次に、その親和性は、表面プラズモン共鳴(Surface Plasmon Resonance、SPR)技術によって検出した。
キメラ抗体の親和性検出は、主に、表面プラズモン共鳴(Surface Plasmon Resonance、SPR)技術を用いたBiacore機器によって決定される。protein Aチップを用いてFc断片を捕捉することによって結合抗体に結合させ、抗原を移動相として用いた。得られた検出データを、機器によるソフトウェア・フィットから対応する結合定数(ka)及び解離定数(pk)を決定し、対応する平衡定数(KD)を計算した。
ヒト抗体の軽鎖構造及び重鎖構造の核領域の複数のアミノ酸部位で復帰突然変異及び組み合わせを行った。対応する軽鎖遺伝子は、GenScript(登録商標)によって合成した。
重鎖と軽鎖のプラスミドを得た後、対応する軽鎖と重鎖の組み合わせを合わせ、対合し、4mL系でトランスフェクション発現を行った。発現上清を得た後、SPR技術を用いて、親和性を検出し、上清中の抗体を、protein Aチップを用いて抗体Fc断片を捕捉することにより捕捉し、センサーチップ上に固定化した。分析物抗原は移動相として使用した。表面再生は、別の抗体上清の注入前に行い、全ての抗体が分析されるまでこのプロセスを繰り返した。Biacore解析ソフトウェアを使用して、1:1相互作用モデルを用いて実験データをフィッティングした。抗体の結合解離速度を取得し、抗体の親和性を解離速度定数(pk)によって順序付けた。配列結果から、上位3種の親和性のクローンを候補抗体として選択し、上記の手順により、SWY2001-Ab1、SWY2001-Ab2及びSWY2001-Ab3とそれぞれ命名された3つのヒト抗体を得た。
3株の候補抗体の遺伝子をそれぞれ、ベクターpcDNA3.4(IgG1、kappa)に挿入し、完全な重鎖及び軽鎖抗体プラスミドを構築した。次に、Expi293F細胞に軽鎖と重鎖プラスミドを同時トランスフェクトし、上清を採取した後、protein A磁気ビーズで精製して、完全長抗体を得た。溶液を透析脱塩によりPBSに置換し、抗体の濃度と純度をそれぞれOD280及びSDS-PAGEゲル電気泳動により検出した。次いで、その親和性を、表面プラズモン共鳴(Surface Plasmon Resonance、SPR)技術よって検出した。
Nectin-4ヒト抗体重鎖、軽鎖DNA配列は、Biointron Tazhouにより合成され、発現ベクターpcDNA3.1は、Biointron Tazhouにより提供された(図4参照)。簡単な工程は、以下の通りであった:
人工的に合成した重鎖をNectin-4-HCと名付けた。5'末端にHindIIIエンドヌクレアーゼ部位、3'末端にEcoRIエンドヌクレアーゼ部位を導入し、さらに5'末端のHindIIIエンドヌクレアーゼ部位の後にコザック配列及びシグナルペプチド配列(19アミノ酸) MELGLCWVFLVAILEGVQC(配列番号14)を導入した。重鎖の発現カセットは以下のように設計された。
HindIII-Kozak配列-シグナルペプチド-Nectin-4-HC-終止コドン-EcoRI
人工的に合成した軽鎖をNectin-4-LCと名付けた。合成の際、軽鎖の5'末端にHindIIIエンドヌクレアーゼ部位、3'末端にEcoRIエンドヌクレアーゼ部位を導入し、それに、5'末端のHindIIIエンドヌクレアーゼ部位の後にコザック配列とシグナルペプチド配列(22アミノ酸):MDMRVPAQLLGLLLLWFPGSRC(配列番号15)を導入した。軽鎖の発現カセットは以下のように設計された。
HindIII-Kozak配列-シグナルペプチド-Nectin-4-LC-終止コドン-EcoRI
PCR増幅産物Nectin-4-HC及びプラスミドベクターpcDNA3.1をHindIII/EcoRI二重酵素で切断及び連結形質転換した後、Amp +耐性マーカーで陽性クローンをスクリーニングし、正しい組換え重鎖発現ベクターが得られたことを確認した。PCR増幅産物Nectin-4-LCとプラスミドベクターpcDNA3.1をHindIII/EcoRI二重切断し、連結形質転換し、Amp +耐性マーカーにより陽性クローンをスクリーニングし、正しい組換え型軽鎖発現ベクターを得た。
本実験は、Nectin-4ヒト抗体の安定性を示差走査熱量計で測定し、実験パラメータは下表に示し、抗体濃度は1 mg/mLで、試料量は325μLであった。実験結果を図5に示した。具体的なDSCパラメータは、以下のように設定された。
本実験では、Fortebioを用いて、ヒトNectin-4タンパク質に対するNectin-4ヒト抗体の親和性を検出した。Nectin-4タンパク質を抗Nectin-4抗体試料と共にインキュベートした後、Fortebioによってシグナル値を検出することにより、試料のヒトNectin-4に対する親和性を分析した。実験結果は、表5に示す通り、ヒトNectin-4タンパク質に対する3種のヒト抗体の親和性は、ヒト化完了後もほとんど低下しないことが示された。キメラ抗体はマウス抗体を基にして変性され得られたもので、定常領域はhuman IgG1から選択された。
1. SWY2001-Ab1-LND1002の酵素的に結合
LND1002(1gを5 mL DMSOで溶解、構造は図2に示した)、10×反応緩衝液、抗Nectin-4抗体、mTgase(トランスグルタミナーゼ、N-グリコシル化部位に近接する受容体グルタミンでのトランスグルタミン反応を触媒するために使用され、Kabat番号Q295位でのトランスグルタミン反応を特異的に触媒することができる)、20% H2OをEPチューブに順に加え、密封混合後、30℃で、反応時間は72時間未満であった。結合率が95%となる時点で反応を終了し、直ちに精製した。反応条件は以下の通りであった:
DSDERVTPPAEPLDRMPDPYRPSYGRAETIVNNYIRKWQQVYSHRDGRKQQMTEEQREWLSYGCVGVTWVNSGQYPTNRLAFAFFDEDKYKNELKNGRPRSGETRAEFEGRVAKDSFDEAKGFQRARDVASVMNKALENAHDEGAYLDNLKKELANGNDALRNEDARSPFYSALRNTPSFKDRNGGNHDPSKMKAVIYSKHFWSGQDRSGSSDKRKYGDPEAFRPDRGTGLVDMSRDRNIPRSPTSPGESFVNFDYGWFGAQTEADADKTVWTHGNHYHAPNGSLGAMHVYESKFRNWSDGYSDFDRGAYVVTFVPKSWNTAPDKVTQGWP
抗体を5 mM EDTA pH =6.0を含むPBS緩衝液に置換して、抗体濃度を10 mg/mLとし、抗体(SWY2001-Ab1)の物質量濃度に応じて3モル当量のTCEP還元剤、1/50体積の1Mリン酸二カリウムを加え、37℃水浴で1時間加熱し、次に6モル当量のMC-VC-pABC-MMAEを加え、1mLの体積当たり80μLのDMSOを加え、室温で30分間反応させた。12モル当量のL-システインを添加し、20分後に反応を停止させて最終生成物を形成し、抗体は、鎖間システインにおけるスルフヒドリル基を介してリンカー-薬物に結合し、構造は図3に示された。
1. 酵素的に結合したSWY2001-Ab1-LND1002修飾率の同定
実験手順:
1) 試料処理:SWY2001-Ab1-LND100272h修飾液を、50 mM酢酸アンモニウム、20 mM DTT、55 mM Tris-HCl緩衝液処理を30℃±2℃で30分間反応し、12000 rpmで5分間遠心分離した。
2) 試料添加:10μL(30μg)の上清みを液体クロマトグラフィー(waters xbridge C4,3.5μm,4.6 mm×250 mm)に添加した
3) 溶出:移動相A液は0.1% TFA水溶液で、移動相B液は0.1%アセトニトリル溶液であり、0、5、8、15、20、22、25、30分で、それぞれ移動相A液:B液の比率が9:1、7:3、6.5:3.5、6:4、5.5:4.5、5:5、1:9、9:1となるように移動相Aを調節した。流速を0.8 mL/minに制御し、カラム温度を60℃とし、検出波長を280/254 nmとした。
実験手順:
中国薬局方2020年版、4部0512に記載した高速液体クロマトグラフィーを参照し、本品を逆相クロマトグラフィー(RP-HPLC)を用いて薬物抗体結合比DAR値を測定した。
カラム:PLRP-S1000A、5um、50*2.1mm
移動相:移動相A:0.1%(v/v) TFA水溶液
移動相B:0.1%(v/v) TFAアセトニトリル溶液
流速0.25mL /分
検出波長280nm
注入量10μL
カラム温度80℃
計算結果は以下の通りであった:
実験手順:
SK-BR-3細胞、T47D細胞(ヒト乳がん細胞)を採集し、培地を用いて細胞を懸濁させた。標的細胞を単細胞懸濁液になるまで数回軽く吹き飛ばし、トリパンブルー染色法によって、細胞生存率及び細胞数を特定した。細胞密度を1×10 5 cells/mLに調整し、100μL /ウェルで共焦点96ウェルプレート細胞培養ディッシュに移し、1ウェルあたり1×10 4 個の細胞播種数で播種し、Zenon(登録商標)pHrodo(登録商標)iFLで標識したADCを最終濃度2μg/mLで96ウェルプレートに添加し、その後37℃で、5%CO2インキュベーター条件下で連続的に24時間にインキュベートした。全ての像をレーザー共焦点顕微鏡20X対物レンズで観察し、画像を撮影した。
実験手順:
標的細胞を回収して単細胞懸濁液として再懸濁し、トリパンブルー染色法により細胞生存率と細胞数を測定した。細胞密度を1×105 cells/mLに調整し、96ウェルの黒平底細胞培養プレートに100μL /ウェルずつ加えた。希釈した試料を、細胞をすでに播種した96ウェルの黒色平底細胞培養プレートに、1ウェル当たり20μLずつ加え、細胞培養器(37℃、5%CO2)に入れて、66±3時間インキュベートし、レサズリン溶液(0.03%)を1ウェル当たり20μLで加え、37℃で3-4時間反応させ、マイクロプレートリーダーで550 nm/610 nmで蛍光値を読み取り、Prism又は同種のプロッティングソフトウェアを用いてプロッティングし、参照標準及び試料の半阻害濃度IC50にフィティングさせた。出力パラメータCはIC50で、ng/mLの単位があった。
1. in vivoでの前立腺がんの阻害の薬効実験
本試験では、適切な年齢の雌NUNUマウスに、PC3-Nectin-4(ヒト前立腺がんで移植されたヌードマウスマデルでNectin-4の発現が高かった)で安定に形質転換された細胞を接種した。腫瘍体積が約190 mm3(播種後D19)まで成長した場合、腫瘍成長が良好な42匹の動物を選別し、腫瘍体積(D0)に従って、7匹のマウスごとに6群、すなわち、溶媒対照群、Nectin4-mab1 mg/kg群、PADCEV1 mg/kg群、SWY2001-Ab1-LND1002 0.5mg/kg群、1mg/kg群及び2 mg/kg群に等分した。投与後のマウスの体重を秤量し、データを記録し、投与後の種々の時点で腫瘍の径を測定することにより、腫瘍の成長を動的に観察した。d17(投与後17日目)で試験を終了し、マウスを二酸化炭素で窒息させた後、腫瘍を取り出し、重量を秤量した。
本実験では、ヌードマウスにMDA-MB-468細胞を接種して、ヒト乳がんMDA-MB-468ヌードマウス移植モデルを構築した。腫瘍体積が約100 mm3まで成長した(播種後D25)場合、腫瘍成長が良好な16匹の動物を選別し、腫瘍体積(D0)に従って、3群で、溶媒対照群8匹、残りの実験群4匹に分け、それぞれ0.9%塩化ナトリウム注射液(0.9% INJ NS(生理食塩水)、溶媒対照群)、薬物PADCEV群3 mg/kg、SWY2001-Ab1-LND1002群3 mg/kgを静脈内投与した(単回投与)。投与後のマウスの体重を秤量し、データを記録し、投与後の種々の時点で腫瘍の径を測定することにより、腫瘍の成長を動的に観察した。D29で試験を終了し、マウスを二酸化炭素で窒息させた後、腫瘍を取り出し、重量を秤量した。
本試験では、適切な年齢の雌NUNUマウスに、1匹当たり5×106個の細胞でHT-1376細胞を接種した。腫瘍体積が約100 mm3(播種後D21)まで成長した場合、腫瘍成長が良好な12匹の動物を選別し、腫瘍体積(D0)に従って、3群に分けた。A:溶媒対照群4匹、0.9%塩化ナトリウム注射液(0.9% INJ NS(生理食塩水)、溶媒対照群)投与、B:PADCEV実験群4匹、PADCEV3 mg/kg(単回投与)投与、C:SWY2001-Ab1-LND1002実験群4匹、3mg/kg(単回投与)投与。投与後のマウスの体重を秤量し、データを記録し、投与後の種々の時点で腫瘍の径を測定することにより、腫瘍の成長を動的に観察した。D22で試験を終了し、マウスを二酸化炭素で窒息させた後、腫瘍を取り出し、重量を秤量した。
10.1 化学的に結合に対するSWY2001-Ab1-VC-MMAEの効果比較アッセイ
本試験では、6匹の適切な年齢の雄のカニクイザルを選択し、対照品と試料であるSWY2001-Ab1-ADCを静脈注射することにより毒性反応を観察した。以下の表に示したように、試料SWY2001-Ab1-LND1002(DAR2)、対照SWY2001-Ab1-VC-MMAE(DAR4)、週1回の静脈内注射、2週間の連続注射で投与した。第2の投与後の7日間の連続観察、1日2回の一般観察、1日1回の詳細観察を実施した。投与前1D、投与後7D、14Dで体重変化を観察し、血液学上と生化学上、指数を測定した。
試験では、カニクイザル10匹、雌雄各半を用い、ランダムに5群2匹ずつに群分けた。第1群に6 mg/kgの市販対照(PADCEV(登録商標))を投与し、第2~5群に試料であるSWY2001-Ab1-LND1002を静脈内注入で、10 mL/kgの投与容量と0.5 mL/kg /分の注入速度で投与した。各群の動物に投与した投与量、濃度、頻度及び期間は、以下の表に示された。
血漿安定性実験
実験では、SDラット、カニクイザル及びヒト血漿中のSWY2001-Ab1-LND1002とMMAEの安定性について、37℃でin vitroでの血漿インキュベーション方法を用いて行った。また、試験系全体の信頼性を調べるために、陰性対照群としてPBSTを用いた。各インキュベーション群は、0時間、24時間、48時間(D2)、72時間(D3)、96時間(D4)、168時間(D7)及び336時間(D14)で、インキュベーション試料をそれぞれ採取した。様々な血漿及びPBST中のMMAEの濃度を、LC-MS/MS法を用いて測定した。SWY2001-Ab1-LND1002の様々な血漿及びPBST中でのインキュベーション後のMMAE平均生成百分率結果を表12に示した。
Claims (24)
- Nectin-4に特異的に結合する抗体薬物複合体(ADC)であって、前記抗体又はその機能性断片が重鎖可変領域と軽鎖可変領域を含み、前記重鎖可変領域が、配列番号1に示されるアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号2に示されるアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号3に示されるアミノ酸配列を含むCDR3を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号4に示されるアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号5に示されるアミノ酸配列を含むCDR2、及び配列番号6に示されるアミノ酸配列を含むCDR3を含み、前記薬物がリンカーによって前記抗体又はその機能性断片に結合し、前記リンカーが、NH 2 -(CH 2 -CH 2 -O) m -CH 2 -C(=O)-Val-Cit、NH 2 -(CH 2 -CH 2 -O) m -CH 2 -C(=O)-Val-Cit-pABC、mc-Val-Cit-pABC、mc-Val-Cit、Val-Cit-pABC、Val-Cit-pAB、及びVal-Citから選択され、mが1-8の整数である、前記抗体薬物複合体。
- 前記抗体又はその機能性断片の重鎖可変領域の配列が、配列番号9に示されるアミノ酸配列、又はそれと少なくとも80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%又は99%の配列同一性を有する配列であり、前記軽鎖可変領域の配列が、配列番号10-12に示されるアミノ酸配列、又はそれと少なくとも80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%又は99%の配列同一性を有する配列から選択される、請求項1に記載の抗体薬物複合体。
- 前記抗体がモノクローナル抗体である、請求項1に記載の抗体薬物複合体。
- 前記抗体がヒト化抗体である、請求項1に記載の抗体薬物複合体。
- 請求項2に記載の抗体又はその機能性断片の軽鎖及び/又は請求項2に記載の抗体又はその機能性断片の重鎖をコードする;又は
請求項2に記載の抗体又はその機能性断片をコードする、
単離されたポリヌクレオチド。 - 請求項5に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクターであって、前記ポリヌクレオチドと、宿主細胞又は無細胞の発現系においてそれがコードするポリペプチドの発現可能の調節配列とが連結されている、前記発現ベクター。
- 請求項6に記載の発現ベクターを含んでなる宿主細胞。
- 請求項1に記載の複合体であって、前記薬物は、細胞毒性薬物、免疫増強剤及び放射性同位体から選択され、好ましくは、前記薬物が、アウリスタチン誘導体、マイタンシノイド誘導体、カンプトテシン類似体、DNAトポイソメラーゼI阻害剤及びそれらの誘導体から選択され、最も好ましくは、前記薬物が、MMAE、MMAF、DM1、DM4、DXD及びSN38及びそれらの誘導体から選択される、前記複合体。
- 前記リンカーがスルフヒドリル基又はアミノ基を介して抗体又はその機能性断片に結合し、前記リンカーが、mc-Val-Cit-pABC、mc-Val-Cit、NH2-(CH2-CH2-O)m-CH2-C(=O)-Val-Cit、及びNH2-(CH2-CH2-O)m-CH2-C(=O)-Val-Cit-pABCからなる群から選択され、mが1-8の整数である、請求項8に記載の複合体。
- Ab-(L-U)nの構造を有し、式中、Abが抗体又はその機能性断片を表し、Lがリンカーを表し、Uが薬物を表し、nが1-8の整数又は小数である、請求項8に記載の複合体。
- 前記抗体又はその機能性断片が、モノクローナル抗体又は二重特異性抗体で、好ましくはヒト化抗体である、請求項8に記載の複合体。
- 前記抗体又はその機能性断片がIgG型、好ましくはIgG1抗体である、請求項8に記載の複合体。
- 請求項8に記載の複合体と、薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物。
- 腫瘍の治療又は予防のための医薬品の製造における、請求項8-12のいずれかに記載の複合体又は請求項13に記載の医薬組成物の使用。
- 前記腫瘍がNectin-4陽性腫瘍で、好ましくはNectin-4陽性固形腫瘍で、好ましくは前立腺がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、乳がん、膀胱がん、肺がん、卵巣がん、結腸がん、肝臓がん、頭頸部がん及び胆嚢がんからなる群から選択され、特に好ましく前立腺がん、乳がん、膀胱がん、肺がん、卵巣がんであり、最も好ましくは前立腺がん、乳がん又は膀胱がんである請求項14に記載の使用。
- 請求項8に記載の複合体を含む、医薬品製品。
- 請求項8-12のいずれかに記載の複合体を収容する容器を含むキットの形態で存在する、請求項16に記載の医薬品製品。
- 請求項8-12のいずれかに記載の複合体と抗増殖剤との組み合わせの、抗腫瘍薬の製造における使用。
- 請求項8-12のいずれかに記載の複合体と抗増殖剤を含む医薬組成物。
- 対象における腫瘍を治療するための剤であって、有効量の請求項8-12のいずれかに記載の抗体薬物複合体、請求項13に記載の医薬組成物、又は請求項16に記載の医薬品製品を含む、剤。
- 対象における腫瘍を治療するための放射線療法と併用するための剤であって、有効量の請求項8-12のいずれかに記載の抗体薬物複合体、請求項13に記載の医薬組成物、又は請求項16に記載の医薬品製剤を含む、剤。
- 対象における腫瘍を治療するための剤であって、有効量の請求項8-12のいずれかに記載の抗体薬物複合体、請求項13に記載の医薬組成物、又は請求項16に記載の医薬品製剤と抗増殖剤とを含む、剤。
- トランスグルタミナーゼの存在下で、請求項1-4のいずれかに記載の抗体又はその機能性断片をリンカーを介して薬物に連結させるステップを含み、前記リンカーが抗体の内因性受容体グルタミン残基Q295位に複合する、複合体の製造方法。
- 前記薬物が、アウリスタチン誘導体、マイタンシンアルカロイド誘導体、カンプトテシン類似体、DNAトポイソメラーゼI阻害剤及びその誘導体から選択され、好ましくはMMAE、MMAF、DM1、DM4、DXD及びSN38及びその誘導体から選択され、前記リンカーが、mc-Val-Cit-pABC、mc-Val-Cit、NH2-(CH2-CH2-O)m-CH2-C(=O)-Val-Cit及びNH2-(CH2-CH2-O)m-CH2-C(=O)-Val-Cit-pABCから選択され、mが1-8の整数である、請求項23に記載の方法。
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