JPH01180451A - アフィニティー分離用吸着体 - Google Patents
アフィニティー分離用吸着体Info
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- JPH01180451A JPH01180451A JP63003567A JP356788A JPH01180451A JP H01180451 A JPH01180451 A JP H01180451A JP 63003567 A JP63003567 A JP 63003567A JP 356788 A JP356788 A JP 356788A JP H01180451 A JPH01180451 A JP H01180451A
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Landscapes
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(1)産業上の利用分野
本発明は、蛋白質分解酵素(fロチアーゼ)の分離、精
製等に有用なアフィニティー分離用吸着体に関する。
製等に有用なアフィニティー分離用吸着体に関する。
(2)従来の技術及び問題点
近年、蛋白質の精製法の一つとして、アフィニティー分
離を利用する方法が一般的に広く行なわれており、その
為のアフィニティークロマトグラフィー用吸着体が各種
開発され、実用化されている。
離を利用する方法が一般的に広く行なわれており、その
為のアフィニティークロマトグラフィー用吸着体が各種
開発され、実用化されている。
しかし、これらアフィニティー分離法は大部分のものが
ある程度精製されたものの精製、つまり、全精製プロセ
スの最終ステップに用いられることが多く、この場合、
精製プロセス全体としては多くのステツブからなるため
複雑で目的物の回収率も低くなる。今までに、比較的単
純なプロセスで、且、工業的大量精製に適したアフィニ
ティー分離法はなかった。
ある程度精製されたものの精製、つまり、全精製プロセ
スの最終ステップに用いられることが多く、この場合、
精製プロセス全体としては多くのステツブからなるため
複雑で目的物の回収率も低くなる。今までに、比較的単
純なプロセスで、且、工業的大量精製に適したアフィニ
ティー分離法はなかった。
また、酵素を精製する分野、特にアルカリグロチアーゼ
の精製分野では、アミノ酸、アミノ酸誘導体、蛋白性阻
害剤、ペグチド性阻害剤等の種々のリガンドが開発され
ているが、実用的溶離特性を得るための溶離条件は酵素
にとって苛酷なものが多く1例えば、アルコール、アセ
トン等の有機溶媒系、高または低−系、尿素、塩酸グア
ニジン等の蛋白質変性剤系等を用いたものがほとんどで
ある。これらの方法では溶離液中でプロテアーゼは不安
定となるため、溶離の時間や温度が制限され、工業的大
規模な精製には向いていない。また、プロテアーゼを安
定な条件下に移す必要があるため、有機溶媒回収系、P
H中和槽、変性剤の除外系等が必要となり、プロセスが
複雑になる欠点を有する。
の精製分野では、アミノ酸、アミノ酸誘導体、蛋白性阻
害剤、ペグチド性阻害剤等の種々のリガンドが開発され
ているが、実用的溶離特性を得るための溶離条件は酵素
にとって苛酷なものが多く1例えば、アルコール、アセ
トン等の有機溶媒系、高または低−系、尿素、塩酸グア
ニジン等の蛋白質変性剤系等を用いたものがほとんどで
ある。これらの方法では溶離液中でプロテアーゼは不安
定となるため、溶離の時間や温度が制限され、工業的大
規模な精製には向いていない。また、プロテアーゼを安
定な条件下に移す必要があるため、有機溶媒回収系、P
H中和槽、変性剤の除外系等が必要となり、プロセスが
複雑になる欠点を有する。
一方、温和な条件でアルカリプロテアーゼヲ溶離可能な
ものとしては、今までにフェニルアルソン酸系及びフェ
ニルホウ酸系のリガンドが知られていたが、フェニルア
ルソン酸系のリガンドはヒ素を含有しており有毒である
ため、吸着体調製時に大量に扱うには危険性を伴い、ま
た、プロテアーゼの精製時に於てもリガンドの脱離を完
全に防ぐことも難しい。したがって、このリガンドを扱
う方法は除害系が必要となり、プロセスが複雑になる等
の欠点を有する。また、フェニルホウ酸系のリガンドで
は吸着のプロテアーゼに対する選択が低く、プロテアー
ゼの吸着と競合するような物質を充分線いておく必要が
あり、また、溶離時では、このリガンドが吸着したプロ
テアーゼが溶離しにくいため、溶離液量を多く必要とし
、溶離時間も長くなる等の欠点を有する。
ものとしては、今までにフェニルアルソン酸系及びフェ
ニルホウ酸系のリガンドが知られていたが、フェニルア
ルソン酸系のリガンドはヒ素を含有しており有毒である
ため、吸着体調製時に大量に扱うには危険性を伴い、ま
た、プロテアーゼの精製時に於てもリガンドの脱離を完
全に防ぐことも難しい。したがって、このリガンドを扱
う方法は除害系が必要となり、プロセスが複雑になる等
の欠点を有する。また、フェニルホウ酸系のリガンドで
は吸着のプロテアーゼに対する選択が低く、プロテアー
ゼの吸着と競合するような物質を充分線いておく必要が
あり、また、溶離時では、このリガンドが吸着したプロ
テアーゼが溶離しにくいため、溶離液量を多く必要とし
、溶離時間も長くなる等の欠点を有する。
本発明の目的は、前記従来のアフィニティー分離用吸着
体の欠点を克服して、プロテアーゼ、例えば、アルカリ
グロチアーゼを中性〜弱塩基性の水溶液で溶離可能で、
大量精製に十分対応できる吸着溶離特性を持つ安全なア
フィニティー分離用吸着体およびそれを用いるプロテア
ーゼの精製法を提供することKある。
体の欠点を克服して、プロテアーゼ、例えば、アルカリ
グロチアーゼを中性〜弱塩基性の水溶液で溶離可能で、
大量精製に十分対応できる吸着溶離特性を持つ安全なア
フィニティー分離用吸着体およびそれを用いるプロテア
ーゼの精製法を提供することKある。
(3)問題点を解決するための手段
本発明によれば、サリチル酸、フタル酸またはこレラの
誘導体で少くとも1つのカルボキシル基が修飾されずに
残存するものをリガンドとするアフィニティー分離用吸
着体が提供される。
誘導体で少くとも1つのカルボキシル基が修飾されずに
残存するものをリガンドとするアフィニティー分離用吸
着体が提供される。
本発明のアフィニティー分離用吸着体は、上記リガンド
を直接担体に固定化したもの又は担体上で、該リガンド
となり得る物質を合成したものである。リガンドを直接
担体に固定化する場合、リガンドの分子中にアミン基、
水酸基等の担体と結合反応させやすい官能基(以後、特
にことわりのない限り「官能基」と略す)が少なくとも
一つ以上含まれている必要がある。
を直接担体に固定化したもの又は担体上で、該リガンド
となり得る物質を合成したものである。リガンドを直接
担体に固定化する場合、リガンドの分子中にアミン基、
水酸基等の担体と結合反応させやすい官能基(以後、特
にことわりのない限り「官能基」と略す)が少なくとも
一つ以上含まれている必要がある。
本発明に用いるリガンドの官能基は使用する担体とリガ
ンドとを結合可能なものであればよく、例えば、アミノ
基、カルボキシル基、ホルミル基。
ンドとを結合可能なものであればよく、例えば、アミノ
基、カルボキシル基、ホルミル基。
水酸基等が挙げられるが、これらに限定されるものでは
ない。また、これらリガンドの種類は種々あり、特に゛
限定されるものではないが、例えば、官能基がアミノ基
の場合、5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチル酸、
4−・アミンサリチル酸。
ない。また、これらリガンドの種類は種々あり、特に゛
限定されるものではないが、例えば、官能基がアミノ基
の場合、5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチル酸、
4−・アミンサリチル酸。
フタル酸、4−アミノフタル酸、2.3−ジヒドロ安息
香酸、2.4−ジヒドロ安息香酸、オルセリン酸、キノ
リン酸等がある。
香酸、2.4−ジヒドロ安息香酸、オルセリン酸、キノ
リン酸等がある。
本発明のリガンドを担体上で合成する場合、5−(4−
アミノフェニルアゾ)サリチル酸、フタル酸モノアミド
等が合成でき、合成法としては、脱水縮合やジアゾカッ
プリング等の一般的合成法を適応すればよい。
アミノフェニルアゾ)サリチル酸、フタル酸モノアミド
等が合成でき、合成法としては、脱水縮合やジアゾカッ
プリング等の一般的合成法を適応すればよい。
本発明に用いる担体としては、アガロース、セルロース
、デキストラン、ポリアクリルアミド。
、デキストラン、ポリアクリルアミド。
ポリビニルアルコ−・ル、キトサン、多孔性ガラス等の
アフィニティー分離に於て通常用いられる担体はいずれ
も例外なく用いられる。アガロース系担体の具体的商品
としては、例えば、セファデックス(Pharmaci
m社登録商標、以下■と略称する)。
アフィニティー分離に於て通常用いられる担体はいずれ
も例外なく用いられる。アガロース系担体の具体的商品
としては、例えば、セファデックス(Pharmaci
m社登録商標、以下■と略称する)。
バイオグルA (BIO−RAD社■)等があり、セル
ロース系のものとしては、例えば、セルロファイン(チ
ッソ(株)■)、デキストラン系のものとしては、例え
ば、セファデックス(Pharmacia社■)、ポリ
アクリルアミド系のものとしては、例えば、エンデフィ
ックスP(和光紬薬@)■)、ポリビニルアルコール系
のものとしては、例えば、トヨパール(東洋曹達(株)
■)、セA?ビーズ(三菱化成(株)■)、キトサン系
のものとしては、例えば、キ) ノ4−ル(昭和電工(
株)■)等が各々市販されているが、これらクロマトグ
ラフィー用担体に限定されるものではない。また、これ
ら担体の種類は種々あり、特に限定されるものではない
が、例えば、官能基がアミン基の場合には担体にCNB
r活性化セファロース4 B 、 CH−セファロー
ス4B。
ロース系のものとしては、例えば、セルロファイン(チ
ッソ(株)■)、デキストラン系のものとしては、例え
ば、セファデックス(Pharmacia社■)、ポリ
アクリルアミド系のものとしては、例えば、エンデフィ
ックスP(和光紬薬@)■)、ポリビニルアルコール系
のものとしては、例えば、トヨパール(東洋曹達(株)
■)、セA?ビーズ(三菱化成(株)■)、キトサン系
のものとしては、例えば、キ) ノ4−ル(昭和電工(
株)■)等が各々市販されているが、これらクロマトグ
ラフィー用担体に限定されるものではない。また、これ
ら担体の種類は種々あり、特に限定されるものではない
が、例えば、官能基がアミン基の場合には担体にCNB
r活性化セファロース4 B 、 CH−セファロー
ス4B。
活性化CH−セファロース4B、エポキシ活性化セファ
ロース4B等も用いることができる。
ロース4B等も用いることができる。
リガンドを担体に固定化する場合、担体の種類、即ち担
体側の活性基及び官能基により異なるが、いずれも一般
的固定化担体の調整法が適応できる。
体側の活性基及び官能基により異なるが、いずれも一般
的固定化担体の調整法が適応できる。
一方、本発明のアフィニティー分離用吸着体で精製可能
な酵素としては、アルカリグロテアーピを中心にして、
スブチリシンBPN’ 、スプチリシンカールスベルグ
、カズサーゼ(昭和電工@)■)。
な酵素としては、アルカリグロテアーピを中心にして、
スブチリシンBPN’ 、スプチリシンカールスベルグ
、カズサーゼ(昭和電工@)■)。
アルカラーゼ(NoVO社■)、サビナーゼ(NoVO
社■)、エスペラーゼ(NoVO社■)、キモトリグシ
ン等があるが、これらに限定されるものではない。
社■)、エスペラーゼ(NoVO社■)、キモトリグシ
ン等があるが、これらに限定されるものではない。
(4)作用
本発明によって得られたアフィニティー分離用吸着体は
一般的な担体を使用できるため、充填塔方式や流動層方
式をはじめとする移動層方式等によって実用化できる。
一般的な担体を使用できるため、充填塔方式や流動層方
式をはじめとする移動層方式等によって実用化できる。
しかも、本発明のリガンドは水系の溶液で吸着溶離がで
きる所にメリットおよび特徴がある。
きる所にメリットおよび特徴がある。
従って、従来のように溶離に有機溶媒を用いて分離精製
する工程や、除害設備の必要なアルソン酸系のリガンド
を用いたものに比較して、はるかにプロセスが単純であ
り、また、フェニルホウ酸系のリガンドを用いたものよ
り溶離しやすく高い回収率を得やすいので、工業的に有
利な方法である。
する工程や、除害設備の必要なアルソン酸系のリガンド
を用いたものに比較して、はるかにプロセスが単純であ
り、また、フェニルホウ酸系のリガンドを用いたものよ
り溶離しやすく高い回収率を得やすいので、工業的に有
利な方法である。
(5)実施例
以下に実施例を挙げる。実施例中の酵素の定量は、TN
BS法により行なった。
BS法により行なった。
実施例1
5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチル酸の固定化活
性化CH−セファロ−y、 4 B (Pharmac
ia社■)3Sに氷冷した1 0 mM HCL水溶液
15−を加え、約15分間攪拌し樹脂を膨潤させ、グラ
スフィルター上に樹脂を移し、氷冷した1 0 mM
HCt水溶液600m1で洗浄した。次いで氷冷した1
00mM炭酸水素ナトリウム水溶液20rnlで手早く
洗浄し、ただちに樹脂を10mM 5− (4−アミノ
フェニルアゾ)サリチル酸を含む100mM炭酸水素ナ
トリウム水溶1(p)18.0)50ゴ中に移し、室温
で一昼夜攪拌した。反応後、樹脂を再びグラスフィルタ
ー上に移し、P液に色がなくなるまで100 mM炭酸
水素す) IJウム水溶液で洗浄し、目的とする吸着体
を得た。この吸着体には、I Q−’mQtS(樹脂)
の5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチル酸が固定化
された。
性化CH−セファロ−y、 4 B (Pharmac
ia社■)3Sに氷冷した1 0 mM HCL水溶液
15−を加え、約15分間攪拌し樹脂を膨潤させ、グラ
スフィルター上に樹脂を移し、氷冷した1 0 mM
HCt水溶液600m1で洗浄した。次いで氷冷した1
00mM炭酸水素ナトリウム水溶液20rnlで手早く
洗浄し、ただちに樹脂を10mM 5− (4−アミノ
フェニルアゾ)サリチル酸を含む100mM炭酸水素ナ
トリウム水溶1(p)18.0)50ゴ中に移し、室温
で一昼夜攪拌した。反応後、樹脂を再びグラスフィルタ
ー上に移し、P液に色がなくなるまで100 mM炭酸
水素す) IJウム水溶液で洗浄し、目的とする吸着体
を得た。この吸着体には、I Q−’mQtS(樹脂)
の5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチル酸が固定化
された。
実施例2
5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチル酸の担体上で
の合成 モノやビーズCM−13100gをジオキサ7500m
1で3回洗浄し、樹脂をジオキサン300 ml中に移
した。これに、ジシクロへキシルカルどジイミド5Iと
p−フェニレンジアミン10gとを加え、室温で一昼夜
攪拌した。次に、樹脂をジオキサンsoomz及び水5
QQmJで3回ずつ洗浄し、樹脂を氷冷した1M塩酸5
00d中に少しずつ加え、液温を4℃に保ちながら、亜
硝酸ナトリウム29を少しずつ加え、約3時間反応させ
た。反応後、樹脂を氷冷水5QQm/で洗浄し、樹脂を
水300m1中に移し液温10℃以下、pH8〜9に保
ちながら、サリチル酸5gを加え、約3時間反応させた
。
の合成 モノやビーズCM−13100gをジオキサ7500m
1で3回洗浄し、樹脂をジオキサン300 ml中に移
した。これに、ジシクロへキシルカルどジイミド5Iと
p−フェニレンジアミン10gとを加え、室温で一昼夜
攪拌した。次に、樹脂をジオキサンsoomz及び水5
QQmJで3回ずつ洗浄し、樹脂を氷冷した1M塩酸5
00d中に少しずつ加え、液温を4℃に保ちながら、亜
硝酸ナトリウム29を少しずつ加え、約3時間反応させ
た。反応後、樹脂を氷冷水5QQm/で洗浄し、樹脂を
水300m1中に移し液温10℃以下、pH8〜9に保
ちながら、サリチル酸5gを加え、約3時間反応させた
。
反応後10mM水酸化ナトリウム溶液、10mM塩酸。
水で各500dずつで順次洗浄し、目的とする吸着体を
得た。この吸着体には、10−4〜10−5mot/m
l (樹脂)の5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチ
ル酸が固定化された。
得た。この吸着体には、10−4〜10−5mot/m
l (樹脂)の5−(4−アミノフェニルアゾ)サリチ
ル酸が固定化された。
実施例3
フタル酸モノアミドの担体上での合成
セパビーズ臥−13100Nをジオキサン500m1で
3回洗浄し、無水フタル酸10%ジオキサン溶液30O
rnl中に樹脂を移し、室温で一昼夜攪拌した。次に、
樹脂f、3回ず・つ、ジオキサン500m1次いで水5
00 mlで洗浄し、目的とする吸着体を得た。この吸
着体には、10−’ 〜10−’ mol/ml(樹脂
)のフタル酸モノアミドが固定化された。
3回洗浄し、無水フタル酸10%ジオキサン溶液30O
rnl中に樹脂を移し、室温で一昼夜攪拌した。次に、
樹脂f、3回ず・つ、ジオキサン500m1次いで水5
00 mlで洗浄し、目的とする吸着体を得た。この吸
着体には、10−’ 〜10−’ mol/ml(樹脂
)のフタル酸モノアミドが固定化された。
実施例4
アフィニティークロマトグラフィー法による精製1)吸
着分離 実施例1〜3の吸着体それぞれKついてアフィニティー
クロマトグラフィーを行なった。
着分離 実施例1〜3の吸着体それぞれKついてアフィニティー
クロマトグラフィーを行なった。
1.2cWIφ×40傭のカラムに樹脂を充填し、2〇
−燐酸緩衝液(pH9)であらかじめカラムを平衡化し
ておき、アフィニティークロマトグラフィーを開始した
。pH9Fc調製した1チカズサーゼ(昭和電工(株)
)酵素原木水溶液1000111/ ’i粗試料として
カラムに添加し、酵素を樹脂に吸着させた。
−燐酸緩衝液(pH9)であらかじめカラムを平衡化し
ておき、アフィニティークロマトグラフィーを開始した
。pH9Fc調製した1チカズサーゼ(昭和電工(株)
)酵素原木水溶液1000111/ ’i粗試料として
カラムに添加し、酵素を樹脂に吸着させた。
次に20 mM燐酸緩衝液(pH9) 500mlテカ
ラAを洗浄し、200mM硫酸ナトリウムを含む20m
M燐酸緩衝液(pH6)50omJ(実施例3のみ10
00m/)で酵素を溶出させた。結果を表IK示した0 2)分離条件 実施例2の吸着体について、粗試料の−及び溶出液の声
、塩濃度、塩の種類を変えて実施例4−1)と同様にア
フィニティークロマトグラフィーを行なった。なお、カ
ラムの平衡化の−及び洗浄の声は粗試料の−と同じにし
た。結果を表2,3に示した0 3)拳法によって精製された酵素の比活性は300 n
k/A28o以上であり、著しく高純度の酵素が得られ
た。本酵素溶液は無色透明であり、この凍結乾燥粉末は
白色であり、酵素造粒品に使用すれば、化粧剤を使用し
なくても充分使用に耐えるきれいなものができる。
ラAを洗浄し、200mM硫酸ナトリウムを含む20m
M燐酸緩衝液(pH6)50omJ(実施例3のみ10
00m/)で酵素を溶出させた。結果を表IK示した0 2)分離条件 実施例2の吸着体について、粗試料の−及び溶出液の声
、塩濃度、塩の種類を変えて実施例4−1)と同様にア
フィニティークロマトグラフィーを行なった。なお、カ
ラムの平衡化の−及び洗浄の声は粗試料の−と同じにし
た。結果を表2,3に示した0 3)拳法によって精製された酵素の比活性は300 n
k/A28o以上であり、著しく高純度の酵素が得られ
た。本酵素溶液は無色透明であり、この凍結乾燥粉末は
白色であり、酵素造粒品に使用すれば、化粧剤を使用し
なくても充分使用に耐えるきれいなものができる。
実施例6
酵素をアルカラーゼ(NoVO社)として同様に実施例
1のカラムを用いて分離した結果、pH9において吸着
し、PH6,硫酸ナトリウム200mMの溶離液で溶離
し、酵素吸着量40In9/ff1A’(樹脂)回収率
99%で回収し、乾燥することによって白色の酵素原末
を得た。
1のカラムを用いて分離した結果、pH9において吸着
し、PH6,硫酸ナトリウム200mMの溶離液で溶離
し、酵素吸着量40In9/ff1A’(樹脂)回収率
99%で回収し、乾燥することによって白色の酵素原末
を得た。
実施例7
酵素をスプチリシンBPN’(SIGMA社)として同
様に実施例1のカラムを用いて分離した結果、−9にお
いて吸着し、PH6,硫酸ナトリウム200mMの溶離
液で溶離し、酵素吸着量42In9/m(樹脂)1回収
率98チで回収し、乾燥することによって白色の酵素原
末を得た。
様に実施例1のカラムを用いて分離した結果、−9にお
いて吸着し、PH6,硫酸ナトリウム200mMの溶離
液で溶離し、酵素吸着量42In9/m(樹脂)1回収
率98チで回収し、乾燥することによって白色の酵素原
末を得た。
実施例8
酵素をα−キモトリプシン(SIGMA 社) トして
同様に実施例1のカラムを用いて分離した結果、p)1
8におイテ吸着し、PH6,硫酸ナトリウムZo。
同様に実施例1のカラムを用いて分離した結果、p)1
8におイテ吸着し、PH6,硫酸ナトリウムZo。
−の溶離液で溶離し、酵素吸着量241n97ml (
樹脂)9回収率88%で回収した。
樹脂)9回収率88%で回収した。
表1 各アフィニティー分離剤による酵素の分離結果実
施例1 28 101 7
8実施例3 33 98
72実施例4 51 90
69注1)0回収率=溶出酵素i/吸着酵量注2
)、精製率=溶出酵素の比活性/粗試料比活性(粗試料
の比活性= 4.4 nkat/A280 )表2 吸
着条件の影響 粗試料の−酵素吸着量(m9蛋白質/at樹脂)表3
溶出条件の影響 溶出液の−添 加 塩 添加塩濃度(mM) 溶出
率(%)9 塩化ナトリウム 100
986 # tt
739 硫酸ナトリウム
50 666 1/
100 959 #
500 91注1)、添加塩とは、20
mM燐酸緩衝剤の他に添加した塩を指す。
施例1 28 101 7
8実施例3 33 98
72実施例4 51 90
69注1)0回収率=溶出酵素i/吸着酵量注2
)、精製率=溶出酵素の比活性/粗試料比活性(粗試料
の比活性= 4.4 nkat/A280 )表2 吸
着条件の影響 粗試料の−酵素吸着量(m9蛋白質/at樹脂)表3
溶出条件の影響 溶出液の−添 加 塩 添加塩濃度(mM) 溶出
率(%)9 塩化ナトリウム 100
986 # tt
739 硫酸ナトリウム
50 666 1/
100 959 #
500 91注1)、添加塩とは、20
mM燐酸緩衝剤の他に添加した塩を指す。
注2)、溶出率=溶出酵素量/吸着酵素量(7)発明の
効果 本発明の吸着体は、吸着体1 ml当り酵素蛋白質を2
0〜30■以上吸着することができ、従来のアフィニテ
ィー吸着体の2〜数十倍の吸着能を持つ。従来、酵素の
大量精製に於て、アフィニティ−分離法は十分効率の良
い方法ではなく実用化はされていなかったが、本発明の
吸着体を用いれば、洗剤用酵素等の大量精製を必要とす
るものに対しても十分にアフィニティー分離法を活用で
きる。
効果 本発明の吸着体は、吸着体1 ml当り酵素蛋白質を2
0〜30■以上吸着することができ、従来のアフィニテ
ィー吸着体の2〜数十倍の吸着能を持つ。従来、酵素の
大量精製に於て、アフィニティ−分離法は十分効率の良
い方法ではなく実用化はされていなかったが、本発明の
吸着体を用いれば、洗剤用酵素等の大量精製を必要とす
るものに対しても十分にアフィニティー分離法を活用で
きる。
本発明の吸着体は、少なくともpH6〜10、好ましく
はpH6〜9において酵素を吸着し、少なくともpH6
〜9の溶出液に塩1100mM以上添加することにより
溶出可能である。
はpH6〜9において酵素を吸着し、少なくともpH6
〜9の溶出液に塩1100mM以上添加することにより
溶出可能である。
このように、本発明の吸着体を用いたアフィニティー分
離法は、大量精製に於て十分な吸着容量で、有機溶媒等
を使わずに塩類の水溶液のみで、粗酵素液等からアルカ
リグロチアーゼを選択的に分離精製できることを大きな
特徴とする。
離法は、大量精製に於て十分な吸着容量で、有機溶媒等
を使わずに塩類の水溶液のみで、粗酵素液等からアルカ
リグロチアーゼを選択的に分離精製できることを大きな
特徴とする。
水沫によって得られた酵素はかなり比活性が高く、また
、不純物(例えば色成分)の少ないものが得られるので
各種用途の酵素、特に液体洗剤用酵素等として極めて有
用である。
、不純物(例えば色成分)の少ないものが得られるので
各種用途の酵素、特に液体洗剤用酵素等として極めて有
用である。
特許出願人 昭和電工株式会社
Claims (1)
- サリチル酸、フタル酸またはこれらの誘導体で少なくと
も1つのカルボキシル基が修飾されないで残存するもの
をリガンドとするプロテアーゼのアフィニティー分離用
吸着体。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63003567A JPH01180451A (ja) | 1988-01-11 | 1988-01-11 | アフィニティー分離用吸着体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63003567A JPH01180451A (ja) | 1988-01-11 | 1988-01-11 | アフィニティー分離用吸着体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01180451A true JPH01180451A (ja) | 1989-07-18 |
Family
ID=11561012
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63003567A Pending JPH01180451A (ja) | 1988-01-11 | 1988-01-11 | アフィニティー分離用吸着体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH01180451A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1069131A1 (en) * | 1999-07-15 | 2001-01-17 | QIAGEN GmbH | Methods for separating particulate substrates from solution while minimizing particle loss |
| CN102274715A (zh) * | 2011-05-23 | 2011-12-14 | 南京工业大学 | 改性金属有机骨架多孔吸附材料及其吸附工质对 |
-
1988
- 1988-01-11 JP JP63003567A patent/JPH01180451A/ja active Pending
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP1069131A1 (en) * | 1999-07-15 | 2001-01-17 | QIAGEN GmbH | Methods for separating particulate substrates from solution while minimizing particle loss |
| CN102274715A (zh) * | 2011-05-23 | 2011-12-14 | 南京工业大学 | 改性金属有机骨架多孔吸附材料及其吸附工质对 |
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