JPH01281075A - 安定化プロトプラスト - Google Patents
安定化プロトプラストInfo
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- JPH01281075A JPH01281075A JP63327503A JP32750388A JPH01281075A JP H01281075 A JPH01281075 A JP H01281075A JP 63327503 A JP63327503 A JP 63327503A JP 32750388 A JP32750388 A JP 32750388A JP H01281075 A JPH01281075 A JP H01281075A
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- medium
- cold
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/04—Preserving or maintaining viable microorganisms
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/02—Preparation of hybrid cells by fusion of two or more cells, e.g. protoplast fusion
- C12N15/03—Bacteria
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- Saccharide Compounds (AREA)
- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
この発明は、安定化したバクテリアプロトプラスト組成
物に、その製造方法に、およびバクテリアプロトプラス
トの保存方法に関する。
物に、その製造方法に、およびバクテリアプロトプラス
トの保存方法に関する。
EP−A−0246163において、チーズを作るため
にミルクを処理する方法が開示されている。この方法は
、レンネットの添加前にミルクをバクテリアプロトプラ
ストで接種することからなる。
にミルクを処理する方法が開示されている。この方法は
、レンネットの添加前にミルクをバクテリアプロトプラ
ストで接種することからなる。
L2方法で使用されるバクテリアプロトプラストは、従
来既知の方法に従って調製され、その方法は、バクテリ
ア細胞壁を除去することから本質的になるものである。
来既知の方法に従って調製され、その方法は、バクテリ
ア細胞壁を除去することから本質的になるものである。
これら方法の1つによると、プロトプラストの懸濁物の
調製にリゾチームが使用される。
調製にリゾチームが使用される。
これらプロトプラスト懸濁物は、バクテリア懸濁物にリ
ゾチームを添加した後は、できるだけすぐに使用すべき
である。
ゾチームを添加した後は、できるだけすぐに使用すべき
である。
′N延した使用のためには、懸濁物は1例えばシュクロ
ースやラクトースのような浸透圧安定化剤をプロトプラ
スト懸濁物に含めることにより。
ースやラクトースのような浸透圧安定化剤をプロトプラ
スト懸濁物に含めることにより。
または該プロトプラストおよびスキムミルクを用いて、
プロトプラストの細胞内容物に近い浸透圧を有するミル
クを再構成することにより安定化させなければならない
。
プロトプラストの細胞内容物に近い浸透圧を有するミル
クを再構成することにより安定化させなければならない
。
しかしながら、そのような安定化懸濁物は、限られた期
間しか貯蔵できない。
間しか貯蔵できない。
を期されなかった様態で、プロトプラストが安定化され
た(すなわち、長い貯蔵期間にわたって、細胞メンプラ
ンを含む結果溶菌に至る劣化がない)バクテリアプロト
プラスト組成物が見い出Jれた。
た(すなわち、長い貯蔵期間にわたって、細胞メンプラ
ンを含む結果溶菌に至る劣化がない)バクテリアプロト
プラスト組成物が見い出Jれた。
かくして、この発明の1つの特徴は、凍結もしくは凍結
乾燥された状態にある。耐寒性(cryaprotec
tive)培地中のバクチリアブミドプラスト懸濁物か
らなる安定化プロトプラスト組成物に関する。
乾燥された状態にある。耐寒性(cryaprotec
tive)培地中のバクチリアブミドプラスト懸濁物か
らなる安定化プロトプラスト組成物に関する。
この発明に従って使用される耐毒性培地は、凍結、凍結
乾燥およびその後の貯蔵中にプロトプラストの一体性を
維持することを可能とする培地である。
乾燥およびその後の貯蔵中にプロトプラストの一体性を
維持することを可能とする培地である。
この培地は、有利には、スキムミルクまたは糖を含む水
溶液である。この発明の目的に適切な糖は、例えばその
分子睦が大きすぎるために、プロトプラストに侵入しな
い分子を有する糖である。
溶液である。この発明の目的に適切な糖は、例えばその
分子睦が大きすぎるために、プロトプラストに侵入しな
い分子を有する糖である。
特に有用は糖は、オシド(as 1de)であり殊に、
ホロシト頁halogide)または多糖1例えばシュ
クロース、プルドース、セロビオース、メリビオース、
ラクトース、トレハロースまたはマルトデキストリンで
ある。
ホロシト頁halogide)または多糖1例えばシュ
クロース、プルドース、セロビオース、メリビオース、
ラクトース、トレハロースまたはマルトデキストリンで
ある。
耐寒性培地中の糖のψは、後者の浸透圧がプロトプラス
トの細胞内容物のそれに近接するように選ばれる。細胞
内容物の浸透圧は、プロトプラストが形成されるバクテ
リアに依存する0例えば、ストレプトコッカス番サーモ
フィラス由来のプロトプラストにとっては、約340の
分子騒を有し、クライオスコピックオスモメータ(cr
7oscopic asmoseter)で測定したオ
シドの実際のオスモル濃度(ossolality)が
約650ミリギルであるオシドを含有する水溶液が有利
に用いられる。
トの細胞内容物のそれに近接するように選ばれる。細胞
内容物の浸透圧は、プロトプラストが形成されるバクテ
リアに依存する0例えば、ストレプトコッカス番サーモ
フィラス由来のプロトプラストにとっては、約340の
分子騒を有し、クライオスコピックオスモメータ(cr
7oscopic asmoseter)で測定したオ
シドの実際のオスモル濃度(ossolality)が
約650ミリギルであるオシドを含有する水溶液が有利
に用いられる。
そのような組成物は、既知のバクテリア株からJ製でき
る。バクテリア株の中でも、農食品産業において醗酵目
的で使用される株は、好ましいものである。その中でも
、好熱性株および中温性株が特に好ましい、乳酸バクテ
リアが特によく適している。
る。バクテリア株の中でも、農食品産業において醗酵目
的で使用される株は、好ましいものである。その中でも
、好熱性株および中温性株が特に好ましい、乳酸バクテ
リアが特によく適している。
これら乳酸バクテリアは、特に、ラクトバチルス(La
etobacillus)属、リューコノストック(L
euconostoc)属、およびストレプトコッカス
(Streptococcu+)属を特に含み、またコ
リネフォルムバクテリアのアルカリ化性(alkali
zing)バクテリアを挙げることもでき、その中では
、アルトロ八クタ−(Arthrobacter)属お
よびブレビバクテリウム・リネ7 ス(Breviba
cteriu* linems) Nが、ミクロコッキ
(micrococci) (ミクロコツカス(Mic
racoccug)属)またはプロピオン酸バクテリア
(プロピt7バタテリウム(Propionbacte
rium)属)(その作用は、グルエレオブコムテ(g
ru7ereof co■te)のような、内部孔を有
するチーズについてよく知られている)と同様に決定的
な役割を東たす。
etobacillus)属、リューコノストック(L
euconostoc)属、およびストレプトコッカス
(Streptococcu+)属を特に含み、またコ
リネフォルムバクテリアのアルカリ化性(alkali
zing)バクテリアを挙げることもでき、その中では
、アルトロ八クタ−(Arthrobacter)属お
よびブレビバクテリウム・リネ7 ス(Breviba
cteriu* linems) Nが、ミクロコッキ
(micrococci) (ミクロコツカス(Mic
racoccug)属)またはプロピオン酸バクテリア
(プロピt7バタテリウム(Propionbacte
rium)属)(その作用は、グルエレオブコムテ(g
ru7ereof co■te)のような、内部孔を有
するチーズについてよく知られている)と同様に決定的
な役割を東たす。
この発明の第2の特徴は、
l)バクテリアからプロトプラストを形成する工程、
2)■程l)で得たプロトプラストの耐寒性液体中懸濁
物を凍結する工程、 3)必要に応じて、該凍結懸濁物を凍結乾燥する工程 を具備したことを特徴とする。安定化したプロトプラス
ト組成物の製造方法に関する。
物を凍結する工程、 3)必要に応じて、該凍結懸濁物を凍結乾燥する工程 を具備したことを特徴とする。安定化したプロトプラス
ト組成物の製造方法に関する。
プロトプラストの形成すなわち「プロトプラスト化」は
、既知の手法に従い、バクテリア細胞壁を破壊し得る酵
素の作用によりおこなう、特許出′InEP−A−02
48183ニ記載された方法によりリゾチームの存在下
におこなうことが有利である。
、既知の手法に従い、バクテリア細胞壁を破壊し得る酵
素の作用によりおこなう、特許出′InEP−A−02
48183ニ記載された方法によりリゾチームの存在下
におこなうことが有利である。
好ましい手法によれば、プロトプラストの形成は、耐浸
透圧性培J′l!!(ossoprotective
medium)すなわち、形成したプロトプラストの一
体性を保持し得る培地中でおこなわれる。事実、後者の
浸透圧は、プロトプラストの安定化において重要な役割
を果たす、糖の水溶液が有利に用いられ、好ましくは耐
寒性培地として用いられたものと同じものである。その
ような溶液の糖のモル濃度は0.5Mであることが有利
である。かくして得られた。必要に応じて耐浸透圧性培
地で安定化されたプロトプラストの懸濁物は1次に、上
に述べたような耐寒性液体中で凍結される。好ましくは
、[程2)の耐寒性培地は、工程l)の耐浸透圧性培地
を包含する。
透圧性培J′l!!(ossoprotective
medium)すなわち、形成したプロトプラストの一
体性を保持し得る培地中でおこなわれる。事実、後者の
浸透圧は、プロトプラストの安定化において重要な役割
を果たす、糖の水溶液が有利に用いられ、好ましくは耐
寒性培地として用いられたものと同じものである。その
ような溶液の糖のモル濃度は0.5Mであることが有利
である。かくして得られた。必要に応じて耐浸透圧性培
地で安定化されたプロトプラストの懸濁物は1次に、上
に述べたような耐寒性液体中で凍結される。好ましくは
、[程2)の耐寒性培地は、工程l)の耐浸透圧性培地
を包含する。
凍結は、プロトプラストの細胞膜に悪影響を与え得る大
きな結晶の形成を避けるために迅速におこなうことが必
要である。
きな結晶の形成を避けるために迅速におこなうことが必
要である。
好ましい凍結処理は、温度が一80℃である容器中に、
深さ0.5ないし2cmの液層が生じるように、IMま
たはそれ以上の受容体(recipient)に分散さ
せたIn9.当り10ないし10”’のプロトプラスト
を含む耐寒性培地を置くことからなる。これら条件下で
、かくして調製された凍結組成物は、約1時間以内で完
全な結晶構造を獲得する。この組成物は、必要に応じて
凍結乾燥することができる。
深さ0.5ないし2cmの液層が生じるように、IMま
たはそれ以上の受容体(recipient)に分散さ
せたIn9.当り10ないし10”’のプロトプラスト
を含む耐寒性培地を置くことからなる。これら条件下で
、かくして調製された凍結組成物は、約1時間以内で完
全な結晶構造を獲得する。この組成物は、必要に応じて
凍結乾燥することができる。
凍結乾燥は、当業者に知られたルールに従っておこなう
ことが必要であり、生物学的物質のもろい性質を考慮し
なければならない。
ことが必要であり、生物学的物質のもろい性質を考慮し
なければならない。
好ましくは、凍結懸濁物は、−45℃に維持された凍結
乾燥器中で少なくとも24時間凍結乾燥される。凍結乾
燥が完結したら、得られた組成物を、残りのべ分を除去
するために20℃に加温することが有利である。
乾燥器中で少なくとも24時間凍結乾燥される。凍結乾
燥が完結したら、得られた組成物を、残りのべ分を除去
するために20℃に加温することが有利である。
こうして得られたバクテリアプロテアーゼ組成物は、
EP−A−0248183に記載された方法に使用する
ことができる。
EP−A−0248183に記載された方法に使用する
ことができる。
凍結組成物を使用した場合、これらを含む受容体を、そ
れらを解凍し得る温度にまず置くことが有利である。凍
結乾燥組成物を使用する場合、これを蒸留水で再水和す
べきである。
れらを解凍し得る温度にまず置くことが有利である。凍
結乾燥組成物を使用する場合、これを蒸留水で再水和す
べきである。
この発明の今1つの特徴は、
a)バクテリアプロトプラストを耐寒
性培地中に導入する工程。
b)得られた懸濁物を凍結する1
程、および
C)該凍結懸濁物を、その使用まで貯
蔵する工程
を具備したことを特徴とするバクテリアプロトプラスト
の保存方法に関する。−80℃での貯蔵が特に適してい
る。
の保存方法に関する。−80℃での貯蔵が特に適してい
る。
この貯蔵方法は、凍結組成物を凍結乾燥に供することに
より改りできる。凍結乾燥組成物は有利に+4℃で貯蔵
できる。
より改りできる。凍結乾燥組成物は有利に+4℃で貯蔵
できる。
以下、この発明の実施例を2峨するが、この発明はそれ
に限定されるものではない。
に限定されるものではない。
実施例 l
■ プロトプラスト系凍結乾燥組成物の調製l)株
以下の8種の株を用いた。これら全ての株は知られてお
り、一般に入手できる。これらは、特に、センター・ナ
シオナル・デウ会レシェルシェ・ズーテクニク(Cen
tre Ha目onnal daRecherches
Zootechaiques) (CNRZ) (7
ランス)から入手できる。
り、一般に入手できる。これらは、特に、センター・ナ
シオナル・デウ会レシェルシェ・ズーテクニク(Cen
tre Ha目onnal daRecherches
Zootechaiques) (CNRZ) (7
ランス)から入手できる。
(中温性菌)
フィリックバクテリア、ソフトペーストといつ衣株の成
長培地 に2株は、以下の培地の1つ上で成長させた。
長培地 に2株は、以下の培地の1つ上で成長させた。
A培地
(テルザギ(Terzaghi)他により、アプライド
番マイクロバイオロジー、 23 、6 、1975:
807−813に記載されたM17として知られてい
る培地)組成: パートa: (ビオカー、リファレンス104008)イーストエキ
ス 2.5g(デイフコ、リファレン
ス0127−05−3)ビーフエキス
5g(デイフコ、リファレンス012B−Of−0
8)アスコルビン酸 0.5gジナト
リウムグリセロホスフェート IgI M Mg50
4−7820 1 m l蒸留水
950℃見とするに4N NaOH
でpHを7.2に1箇した後、パートaを熱処理(12
0℃、20分)により減菌する。
番マイクロバイオロジー、 23 、6 、1975:
807−813に記載されたM17として知られてい
る培地)組成: パートa: (ビオカー、リファレンス104008)イーストエキ
ス 2.5g(デイフコ、リファレン
ス0127−05−3)ビーフエキス
5g(デイフコ、リファレンス012B−Of−0
8)アスコルビン酸 0.5gジナト
リウムグリセロホスフェート IgI M Mg50
4−7820 1 m l蒸留水
950℃見とするに4N NaOH
でpHを7.2に1箇した後、パートaを熱処理(12
0℃、20分)により減菌する。
パ − ト b =
ラクトース 10g蒸留水
50℃見とする績パートbは、0.22gm孔
のメンプランによりろ過滅菌する。
50℃見とする績パートbは、0.22gm孔
のメンプランによりろ過滅菌する。
A培地はパートbをパートaに添加することにより得ら
れる。
れる。
B培地
(デイフコ、リファレンス0370−01)(デイフコ
、リファレンス0127−05−3)蒸留水
1000m文とする埴4N水酸化ナトリウムでpH
を7.2に1箇した後、培地を熱処理(i 20℃、2
0分)により′J7R菌する。
、リファレンス0127−05−3)蒸留水
1000m文とする埴4N水酸化ナトリウムでpH
を7.2に1箇した後、培地を熱処理(i 20℃、2
0分)により′J7R菌する。
C培地
組成:
D−グルコース 10g酢酸アンモ
ニウム 5g酢酸ナトリウム
2gMgSO4・7H200,2g M n S 134 ・4HZ 0
0−05 g微X1元素溶液
1m見H380330麿8 MnCl、・4820 70mgZn
C1,200mg Ha214aO,・2H2020sg FeC]36H2050mg CuSO4τH20200vg 蒸留水 5001とする量 蒸留水 1000m文とする量滅菌前にp
Hを6.7に調節する。
ニウム 5g酢酸ナトリウム
2gMgSO4・7H200,2g M n S 134 ・4HZ 0
0−05 g微X1元素溶液
1m見H380330麿8 MnCl、・4820 70mgZn
C1,200mg Ha214aO,・2H2020sg FeC]36H2050mg CuSO4τH20200vg 蒸留水 5001とする量 蒸留水 1000m文とする量滅菌前にp
Hを6.7に調節する。
培地を熱処理(120”0.20分)により滅菌する。
D培地
組成:
溶」Lユ
D−グルコース 10gN a
z HP % 2 H202gKH2POヤ
2gMg5Oy7Hh0
0 、5 gNnSO44JOO、
(15g 蒸留水 900m文とする着誠菌前にP
Hを6.8に調節する。
z HP % 2 H202gKH2POヤ
2gMg5Oy7Hh0
0 、5 gNnSO44JOO、
(15g 蒸留水 900m文とする着誠菌前にP
Hを6.8に調節する。
この溶液を0.22gm孔のメンプランによりろ過M菌
する。
する。
溶〕Lヱ
組成:
イーストエキス 10g(デイフ
コ、リファレンス0127−05−3)蒸留水
100mJLとする量滅菌前にpHを6.8に
調節する。
コ、リファレンス0127−05−3)蒸留水
100mJLとする量滅菌前にpHを6.8に
調節する。
この溶液を熱処理(120℃、20分)により滅菌する
。
。
溶液2を溶液lに添加することによりD培地が得られる
。
。
卵11リソチームの
、組成:
蒸留水 100m1とする墳この溶液を
0.22xm孔のメンプランでろ過滅菌する。
0.22xm孔のメンプランでろ過滅菌する。
プロトプラスト1
組成:
シュクロース 171gMail
0.584 gMgCI?
、1.02 g 1000miにする量 この緩衝液は熱処理(120”0.20分)により滅菌
する。
0.584 gMgCI?
、1.02 g 1000miにする量 この緩衝液は熱処理(120”0.20分)により滅菌
する。
1襄立亙遣
蒸留水930mJLをレジレイト(Regilait)
粉末100gに添加することによりスキムミルクを再構
成する。これを熱処理(11”Q、2o分)によりM菌
する。
粉末100gに添加することによりスキムミルクを再構
成する。これを熱処理(11”Q、2o分)によりM菌
する。
3)「順
一般原則
株を、それぞれの作用懸濁物が得られるように培地中に
置く。
置く。
これら作用懸濁物は、プロトプラストの生産のだめの出
発材料となる。得られたプロトプラスト懸濁物は凍結し
、ついで凍結乾燥する。
発材料となる。得られたプロトプラスト懸濁物は凍結し
、ついで凍結乾燥する。
a)L匹羞」
培養条件は第1表に示す通りである。
プロピオニバクテリウムを除き、各棟に対し、培地10
mJlを一80℃で凍結されたアンプルに含まれたバク
テリア懸濁物的500uJlで接種する。接種後、この
前培養物を同じ培地に写す、得られた懸濁物をおだやか
な攪拌下にインキュベートする。
mJlを一80℃で凍結されたアンプルに含まれたバク
テリア懸濁物的500uJlで接種する。接種後、この
前培養物を同じ培地に写す、得られた懸濁物をおだやか
な攪拌下にインキュベートする。
プロピオ二バタテリウム株も、凍結アンプルから出発し
て培養する。これは前培養しない、培地に攪拌すること
なく直接接種する。
て培養する。これは前培養しない、培地に攪拌すること
なく直接接種する。
コロニー形成単位(CFU)としてカウントした約10
9個のバクテリアを含有する作用懸濁物(WS)を収積
する。この段階で、培養物は、対数増殖期の終点にある
。
9個のバクテリアを含有する作用懸濁物(WS)を収積
する。この段階で、培養物は、対数増殖期の終点にある
。
b)プロトプラストの”
一ヒ記a)で得た懸濁物(WS)を立を遠心(4825
g、30分)する。
g、30分)する。
に澄液(Sl)を捨てる。バクテリアケーキ(ci)を
生理食塩水300m見に入れる。得られた懸濁物(SC
I)を遠心(4825g、30分)する、上ff1(5
2)を捨てる。バクテリアケーキ(C2)を生理食塙水
300muに入れる。得られた懸濁物(S C2)を遠
心(4825g、30分)する、上澄(S3)を捨てる
。バクテリアケーキ(C3)を、プロトプラスト形成に
用いた緩衝液130mMに入れる。得られた懸濁物(S
C3)を撹拌によりホモジナイズする。
生理食塩水300m見に入れる。得られた懸濁物(SC
I)を遠心(4825g、30分)する、上ff1(5
2)を捨てる。バクテリアケーキ(C2)を生理食塙水
300muに入れる。得られた懸濁物(S C2)を遠
心(4825g、30分)する、上澄(S3)を捨てる
。バクテリアケーキ(C3)を、プロトプラスト形成に
用いた緩衝液130mMに入れる。得られた懸濁物(S
C3)を撹拌によりホモジナイズする。
約10”’ CF Uを含有する懸濁物(SC3)13
0 m 、(lに、リゾチーム溶液20mMを加える。
0 m 、(lに、リゾチーム溶液20mMを加える。
得られた混合物をおだやかに撹拌しながら、44℃で、
ミクロコツカス32株については4時1ift 、他の
株についてはそれぞれ2時間インキュベートする。14
られた懸濁物(Spl)は、プロトプラストと、そのま
まの細胞壁を有するバクテリアとを含有する。
ミクロコツカス32株については4時1ift 、他の
株についてはそれぞれ2時間インキュベートする。14
られた懸濁物(Spl)は、プロトプラストと、そのま
まの細胞壁を有するバクテリアとを含有する。
プロトプラスト形成に至る操作の効率を、懸濁物(S
p l)中に含まれているプロトプラストを、0.5M
シュクロース溶液中に稀釈した後MALASSEZ細胞
カウンタを用いてカウントし、 5OS(ドデシル4t
E酸ナトリウム)の1%溶液に稀釈した後残存バクテリ
アをカウントすることにより調べた、さらに、懸濁物を
寒天培地上に画線した後残存バクテリアの数を評価した
。こうして、S、ラクチスのWS懸濁物の場合には10
000中わずか1個のバクテリアが、ブレビバクテリウ
ムリネンのWS懸濁物の場合には1000中わずか1個
のバクテリアが、そしてミクロコツカスspおよびプロ
ピオニバクテリウムのWS懸濁物の場合には100中わ
ずか1個のバクテリアが、上記第理に耐性を示すことが
観察された。
p l)中に含まれているプロトプラストを、0.5M
シュクロース溶液中に稀釈した後MALASSEZ細胞
カウンタを用いてカウントし、 5OS(ドデシル4t
E酸ナトリウム)の1%溶液に稀釈した後残存バクテリ
アをカウントすることにより調べた、さらに、懸濁物を
寒天培地上に画線した後残存バクテリアの数を評価した
。こうして、S、ラクチスのWS懸濁物の場合には10
000中わずか1個のバクテリアが、ブレビバクテリウ
ムリネンのWS懸濁物の場合には1000中わずか1個
のバクテリアが、そしてミクロコツカスspおよびプロ
ピオニバクテリウムのWS懸濁物の場合には100中わ
ずか1個のバクテリアが、上記第理に耐性を示すことが
観察された。
c)4= よび し
上記b)で得られた懸濁物(PPI)を遠心(2830
g、−30・分、+4℃)する、l:澄(S4)を捨て
る。ケーキ(C4)を0.5Mスクロース溶液150o
n9.に入れる。得られた懸濁物(S C4)を遠心(
2830g、30分、+4℃)する、J:澄(S5)を
捨てる。ケーキ(C5)をスキムミルク12m、llに
入れる。
g、−30・分、+4℃)する、l:澄(S4)を捨て
る。ケーキ(C4)を0.5Mスクロース溶液150o
n9.に入れる。得られた懸濁物(S C4)を遠心(
2830g、30分、+4℃)する、J:澄(S5)を
捨てる。ケーキ(C5)をスキムミルク12m、llに
入れる。
得られた!!jI!4物(SC5)を、25 m lピ
ペットからの注意深い吸入および吸引によりホモジナイ
ズし、この懸濁物が5mmの深さを持つようにペニシリ
ン型フラスコに分配する。適当なストッパを7ラスコに
取り付ける。このフラスコを凍結乾燥機の皿に赦せる。
ペットからの注意深い吸入および吸引によりホモジナイ
ズし、この懸濁物が5mmの深さを持つようにペニシリ
ン型フラスコに分配する。適当なストッパを7ラスコに
取り付ける。このフラスコを凍結乾燥機の皿に赦せる。
皿を一80℃に謂箇されたディープフリーズ(deep
freeze)中に置く、この温度で少なくとも1時
間放置した後1皿を凍結乾燥機に入れる。凍結乾燥機の
チャンバは予め一45℃に冷却されている。
freeze)中に置く、この温度で少なくとも1時
間放置した後1皿を凍結乾燥機に入れる。凍結乾燥機の
チャンバは予め一45℃に冷却されている。
凍結乾燥は24時間以内に完7L、その終了時に生成物
を20℃に加温する。フラスコは、皿をFげることによ
って昇華チャンバ中に閉じられている。
を20℃に加温する。フラスコは、皿をFげることによ
って昇華チャンバ中に閉じられている。
■、凍結乾燥組成物の性質
■で調製された8個の組成物は、凍結乾燥前の組成物に
含まれていたのと同じ容量の生理食塩水を添加して再水
和した後の単位容量光りに多数のプロトプラストを含ん
でいることが分った。
含まれていたのと同じ容量の生理食塩水を添加して再水
和した後の単位容量光りに多数のプロトプラストを含ん
でいることが分った。
このプロトプラストをMALASSEZ細胞カウンタで
計数したところ、下記の結果が得られた。ここに記録さ
れた収率は、凍結乾燥に対して抵抗性を有するプロトプ
ラストのパーセンテージを示す。
計数したところ、下記の結果が得られた。ここに記録さ
れた収率は、凍結乾燥に対して抵抗性を有するプロトプ
ラストのパーセンテージを示す。
第 2 表
■、凍結乾燥プロトプラストに基づいた、チーズ製造に
おける凍結乾燥組成物の利用 次の二つの試験を行なった。第一の試験は、ミックス外
皮(m1xed rind)を有する安定化されたソフ
トチーズの製造に関する。第二の試験は、浸蝕された外
皮(washed rind )を有するソフトチーズ
の製造に関する。これらの試験は、安定化プロトプラス
トを調製した後、48時間行なった。
おける凍結乾燥組成物の利用 次の二つの試験を行なった。第一の試験は、ミックス外
皮(m1xed rind)を有する安定化されたソフ
トチーズの製造に関する。第二の試験は、浸蝕された外
皮(washed rind )を有するソフトチーズ
の製造に関する。これらの試験は、安定化プロトプラス
トを調製した後、48時間行なった。
製造プロセスは、標準的なやり方で行なった。
プロトプラストは、レンネットを添加する前に、製造桶
に収容された牛乳に添加した。
に収容された牛乳に添加した。
プロトプラストの作用を評価するために、物理的パラメ
ータの測定によ・って熟成度を決定した。
ータの測定によ・って熟成度を決定した。
官能テスト(第二試験)も実施した。
(1)ミックス外皮を有する安定化
されたソフトチーズの製造
a)製造プロトコール
ストレプトコッカス・ラクチスの菌株を用いた。1.2
.c、で得られた凍結乾燥組成物から、生理食塩水中の
プロトプラスト懸濁液を二つ調製した。一つは1012
個のプロトプラストを含み、他の一つは1010個のプ
ロトプラストを含む。
.c、で得られた凍結乾燥組成物から、生理食塩水中の
プロトプラスト懸濁液を二つ調製した。一つは1012
個のプロトプラストを含み、他の一つは1010個のプ
ロトプラストを含む。
試験は、レンネットが未だ添加されていない牛乳too
Il中に添加されるプロトプラストの数において異な
る二つの系列で行なった。
Il中に添加されるプロトプラストの数において異な
る二つの系列で行なった。
・系列1 : 10”個のプロトプラスト・系列2:1
B12個のプロトプラストチーズの説明 ・スキンミルクチーズ二 25%脂肪/乾燥抽出物 ・形態:平均重量1.5kgの円形 製造パラメータ ・レンネットの添加前に、pH6,4で熟成したミルク
。
B12個のプロトプラストチーズの説明 ・スキンミルクチーズ二 25%脂肪/乾燥抽出物 ・形態:平均重量1.5kgの円形 製造パラメータ ・レンネットの添加前に、pH6,4で熟成したミルク
。
・PLORA DANICA (商標名)バクテリアに
よる乳酸菌叢の接種。
よる乳酸菌叢の接種。
・レンネットの添加
・製造桶からの少量のラクトース除去。
・pHが5.20に達するまで自然に排水。
・1.2〜163%の塩濃度を与えるためのブライン塩
漬け。
漬け。
熟成パラメータ
・微生物接種の性質
一生乳にミクロコツカス類及び赤酵素を接種ミクロコツ
カス類から成る微生物調合剤、赤酵素およびゲオトリク
ムカンジダ類の芽胞を表面に接種。
カス類から成る微生物調合剤、赤酵素およびゲオトリク
ムカンジダ類の芽胞を表面に接種。
一熟成プロセス
ーチーズを13〜14℃で17日間保管−包装
一チーズを8℃で保管
プロトプラストが添加されていない対照製造系列を、系
列1および系列2と並行して行なった。
列1および系列2と並行して行なった。
系列1および系列2のチーズ試料、並びに対照系列のチ
ーズ試料を採取した。
ーズ試料を採取した。
一ブラインから除去後48時間。
一包装の直前。
一包装の8日後、25日後。
a > ap1定の実施
試料から調製した水抽出物の氷点を測定し、蒸溜水の氷
点からの標準偏差(低下)を計算することによって、熟
成度の変化を38日間モニターした。
点からの標準偏差(低下)を計算することによって、熟
成度の変化を38日間モニターした。
l)方法
使用した方法は、M、C0URROYEが記述した方法
(Rcvuc La1tlcre Prancalse
、4B2.1987:53〜54)の変形である。
(Rcvuc La1tlcre Prancalse
、4B2.1987:53〜54)の変形である。
夫々の試料を下記のようにして処理する。
縦型コアで夫々のチーズ片の外縁と中心との間の中間を
サンプリングすることにより採取した30〜40gの+
イ科を、食品加工タイプのミキサーによって粉砕する。
サンプリングすることにより採取した30〜40gの+
イ科を、食品加工タイプのミキサーによって粉砕する。
粉砕された材料を、40−の超純水中に懸濁させる。こ
の懸濁液を、80℃で20分間インキュベートする。水
性抽出物を分離する。不溶性のペーストを、5−の超純
水で2回洗浄する。
の懸濁液を、80℃で20分間インキュベートする。水
性抽出物を分離する。不溶性のペーストを、5−の超純
水で2回洗浄する。
最後に、水性抽出物および洗浄水を集め、超純水で容量
を500−とする。
を500−とする。
こうして4′J3製された抽出物の全量をWIIATM
AN(商標名) No、42濾紙で濾過する。濾液を回
収し、これを熟成度の決定に用いる。この熟成度の決定
は、濾液の氷点を測定し、次いで蒸溜水の氷点からの低
下を計算することによって間接的に行なう。
AN(商標名) No、42濾紙で濾過する。濾液を回
収し、これを熟成度の決定に用いる。この熟成度の決定
は、濾液の氷点を測定し、次いで蒸溜水の氷点からの低
下を計算することによって間接的に行なう。
熟成度が高いほど、氷点の低下は大きくなる。
使用する装置は、自動氷点測定用の浸透圧計(商標名は
Roebllng)である。
Roebllng)である。
この装置は濾液100μgの氷点を1513定し、その
結果を蒸溜水の氷点と比較することによって氷点降下を
決定する。得られた値を変換することにより、濾液の浸
透圧を直接表示する。
結果を蒸溜水の氷点と比較することによって氷点降下を
決定する。得られた値を変換することにより、濾液の浸
透圧を直接表示する。
上記で得られた浸透圧値は、熟成度を℃で:IP1定し
た氷点低下で記載した既述のM、C0URI?OYEの
データの比較できるように、これを以下のデータ(第3
表)から作製される標準曲線と比較することによって変
換される。
た氷点低下で記載した既述のM、C0URI?OYEの
データの比較できるように、これを以下のデータ(第3
表)から作製される標準曲線と比較することによって変
換される。
第 3 表
2)結果
第1図に示した曲線は、系列1について行なった測定を
示している。曲線Ylは、製造試験に対応し、曲線TY
Iはプロトプラストを添加せずに同一条件で行なった対
照製造系列に対応する。統計学的な試験によって、同日
に行なった試験系列および対照系列の対についての二つ
の測定値の間に認められる差は顕著であることが立証さ
れた。
示している。曲線Ylは、製造試験に対応し、曲線TY
Iはプロトプラストを添加せずに同一条件で行なった対
照製造系列に対応する。統計学的な試験によって、同日
に行なった試験系列および対照系列の対についての二つ
の測定値の間に認められる差は顕著であることが立証さ
れた。
試験製造における熟成は、常に、対照製造における熟成
よりも更に進んだ段階にあることが認められる。
よりも更に進んだ段階にあることが認められる。
系列2においても、同じ結果が得られた。
この系列2について、熟成38日口のal定にを下記第
4表に示す。
4表に示す。
第 4 表
この結果から、プロトプラストを導入することによって
熟成度の制御も可能で、より多数のプロトプラストを添
加することにより熟成をより促進できることが分る。
熟成度の制御も可能で、より多数のプロトプラストを添
加することにより熟成をより促進できることが分る。
(1)浸蝕された外皮を有するソフトチーズの製造
a)製造プロトコール
4系列の実験を行なった。夫々の系列において、特定の
菌株から調製されたプロトプラストの懸濁液を、未だレ
ンネットが添加されていない製造牛乳ioo Oにに対
する接種に用いた。各系列において用いた菌株と、牛乳
100gに添加したプロトプラストの数を第5表に示す
。
菌株から調製されたプロトプラストの懸濁液を、未だレ
ンネットが添加されていない製造牛乳ioo Oにに対
する接種に用いた。各系列において用いた菌株と、牛乳
100gに添加したプロトプラストの数を第5表に示す
。
第 5 表
チーズの説明
・浸蝕外皮を有するソフトチーズ;
45%脂肪/乾燥抽出物
・形!!3:平均重Q500gの円形
製造パラメータ
・11”Cにおいて14時間、pHが6.6に達するま
で0.1%の酵素で予成熟させたミルク。
で0.1%の酵素で予成熟させたミルク。
・25℃において1時間30分、0.1%の酵素と共に
桶中で成熟。
桶中で成熟。
・pH6,45でレンネットの添加
・凝縮物の切断に続いてモールディング・モールド中で
24時間排水。
24時間排水。
・1時間のブライン処理
(塩濃度:チーズ中で1.8%)
熟成パラメータ
・チーズの外での作業
・ブレビバクテリウム系の塩溶液で1週間に2回洗浄し
ながら、13℃でチーズを熟成・試料を採取 一熟成30日および熟成45日 a)al定の実施 熟成30日および450目に官能テストを行なった。
ながら、13℃でチーズを熟成・試料を採取 一熟成30日および熟成45日 a)al定の実施 熟成30日および450目に官能テストを行なった。
l)方法
テストは4人のパネラ−により、次の項目について行な
った。
った。
・視覚による熟成度の評価
・味覚による熟成度の評価
・チーズ外観の全体的な評価
これらテストの結果を第6表および第7表に示す。
第 6 表
第 7 表
上記結果を分析する前に、次のことに注意しなければな
らない。即ち、対照に用いたのと同じ従来の製造方法で
は、良好な芳香および味を生じるのに通常は2月または
2.5月の熟成を必要とする。
らない。即ち、対照に用いたのと同じ従来の製造方法で
は、良好な芳香および味を生じるのに通常は2月または
2.5月の熟成を必要とする。
また、これらのチーズを熟成45日に検査した時に、外
皮下の流動状態のような成る種の欠陥が、極めて頻繁か
つ現実に観察される。
皮下の流動状態のような成る種の欠陥が、極めて頻繁か
つ現実に観察される。
ここに示された結果は、プロトプラストを添加しない場
合には45日後でなければ得られない成熟状態のチーズ
を、プロトプラストの添加によって30日以内に得るこ
とが可能となることを示している。ここに示された熟成
の促進は、その味覚値や外観の劣化を伴わない。他方、
驚くべきことに、これらの試験チーズの熟成は安定化さ
れており、熟成の30日[1および45日目の間には認
め得べき変化は観察されなかった。後者の結果は血著で
ある。
合には45日後でなければ得られない成熟状態のチーズ
を、プロトプラストの添加によって30日以内に得るこ
とが可能となることを示している。ここに示された熟成
の促進は、その味覚値や外観の劣化を伴わない。他方、
驚くべきことに、これらの試験チーズの熟成は安定化さ
れており、熟成の30日[1および45日目の間には認
め得べき変化は観察されなかった。後者の結果は血著で
ある。
これは、升−ズ工場で30[i後にすぎないチーズが出
荷され得、また期間を延長することなく販売され得るこ
とを示している。本発明の安定化プロトプラスト組成物
を用いたこれらのチーズ製造試験によって、従って、チ
ーズ製造工業における後者の価値が確認される。
荷され得、また期間を延長することなく販売され得るこ
とを示している。本発明の安定化プロトプラスト組成物
を用いたこれらのチーズ製造試験によって、従って、チ
ーズ製造工業における後者の価値が確認される。
実施例2
凍結乾燥したプロトプラスト系組成物の調製とプロトプ
ラストの溶菌率のaF+定 1)株 以下の6株を使用した。
ラストの溶菌率のaF+定 1)株 以下の6株を使用した。
ミクロコツカス SP。
CNRZ A2B (中m 菌)
ストレプトコッカス ラクテイス
CNRZ 304 (中温菌)
ストレプトコッカス クレモリス
CNI?Z IH(中?K IW )
ストレプトコッカス ジアセチラクテイスCN!?Z
124 (中温菌) ストレプトコッカス サーモフィラス CNRZ 302 (好温菌) ストレプトコッカス サーモフィラス CNRZ 385 (kF 温(4)2)培地、溶液
と試薬 培地 : 実施例1のA培地リゾチーム溶
液 : 実施例1で用いたちのプロトプラスト調整用
緩衝液: PMNS緩衝液(組 成) シュクロース 171 g#!塩化ナト
リウム 0.584 g/fl塩化マグネ
シウム 1.02g/fIO1IMのフォス
フェート緩衝液(pH7)を下記組成物が10100O
となるように加える。
124 (中温菌) ストレプトコッカス サーモフィラス CNRZ 302 (好温菌) ストレプトコッカス サーモフィラス CNRZ 385 (kF 温(4)2)培地、溶液
と試薬 培地 : 実施例1のA培地リゾチーム溶
液 : 実施例1で用いたちのプロトプラスト調整用
緩衝液: PMNS緩衝液(組 成) シュクロース 171 g#!塩化ナト
リウム 0.584 g/fl塩化マグネ
シウム 1.02g/fIO1IMのフォス
フェート緩衝液(pH7)を下記組成物が10100O
となるように加える。
リン酸二水素ナトリウムH20: 15.8g/j!
、及びリン酸水索二ナト!J ’7 ム12 H20:
35.85 g/flP M N S 緩衝液は0.
22B孔のメンブランフィルタ−で濾過滅菌する。
、及びリン酸水索二ナト!J ’7 ム12 H20:
35.85 g/flP M N S 緩衝液は0.
22B孔のメンブランフィルタ−で濾過滅菌する。
耐寒性培地
スキムミルク
DIECO社製スキムミルクパウダー1 ooICに蒸
溜水1000 mlを加えてスキムミルクを再構成し、
115℃で20分間の熱処理により滅菌する。
溜水1000 mlを加えてスキムミルクを再構成し、
115℃で20分間の熱処理により滅菌する。
0.5Mシュクロース溶液
シュクロース(MERCK社製)171gを蒸溜水に溶
かし1gとする。
かし1gとする。
これを0.22μm孔のメンブランフィルタ−により濾
過滅菌する。
過滅菌する。
0.5Mマルトース溶液
マルトース−水化物(PROLABO社製):180g
を蒸溜水に溶かし1gとする。
を蒸溜水に溶かし1gとする。
これを0.221孔のメンブランフィルタ−により濾過
滅菌する。
滅菌する。
0.5Mセロビオース溶液
D(+)セロビオース(FLUKA社製):171gを
蒸溜水に溶かし1gとする。
蒸溜水に溶かし1gとする。
これを0.22tn*孔のメンブランフィルタ−により
濾過滅菌する。
濾過滅菌する。
0.5Mメリビオース溶液
D(+)メリビオース(1コ!、U K A社製):1
71gを蒸溜水に溶かし1i!とする。
71gを蒸溜水に溶かし1i!とする。
これを0.22M孔のメンブランフィルタ−にかける。
0.5Mラクトース溶液
ラクトース−水化物(PIiOLABO社製)=180
gを蒸溜水に溶かしIIIとする。
gを蒸溜水に溶かしIIIとする。
これを0.22ts孔のメンブランフィルタ−により濾
過滅菌する。
過滅菌する。
0.5Mトレハロース溶液
D(+) トレハロース(IGMA社製):1g9gを
蒸溜水に溶かし1gとする。
蒸溜水に溶かし1gとする。
これを0.22μ膳孔のメンブランフィルタ−により濾
過滅菌する。
過滅菌する。
マルトデキストリン溶液
Pi No、8 (ROQUETTE社製):200g
を蒸溜水に溶かし1gとする。
を蒸溜水に溶かし1gとする。
この溶液は滅菌処理を施していない。
3)手順
a)株の培養
中温菌は30℃で、高温菌は37℃で成長させた。スト
レプトコッカスサーモフィラスCNRZ3851はA培
地を15ffeEb20wl (D培a?5で増殖させ
、それ以外の株は211のフラスコに500m1の培養
液を入れたもので培養(攪伴:9090−120rpし
て増殖させた。これらの株は対数増殖期の終わりで増殖
を止めた。
レプトコッカスサーモフィラスCNRZ3851はA培
地を15ffeEb20wl (D培a?5で増殖させ
、それ以外の株は211のフラスコに500m1の培養
液を入れたもので培養(攪伴:9090−120rpし
て増殖させた。これらの株は対数増殖期の終わりで増殖
を止めた。
b)プロトプラスト調製
プロトプラストは実施例1と同様の方法で調製した。
プロトプラスト形成効率を前と同様にチエツクしたとこ
ろいつも99.9%以上であった。
ろいつも99.9%以上であった。
C)凍結および凍結乾燥
凍結乾燥するサンプルを直径90mmのペトリ皿に10
mIずつ入れ、−80℃で少なくとも2時間凍結した。
mIずつ入れ、−80℃で少なくとも2時間凍結した。
ついで、凍結乾燥を凍結乾燥機中で48時間行なったが
、最後の2時間は20℃に加温した。これは嫂余の水分
を減少させるためである。
、最後の2時間は20℃に加温した。これは嫂余の水分
を減少させるためである。
凍結乾燥試料は+4℃のバイアル(ガラス瓶)内に栓を
して貯蔵したが、密閉されていない。
して貯蔵したが、密閉されていない。
d)LDHa?J定によるプロトプラストの溶菌率の検
討 凍結乾燥前および凍結乾燥後経過時間別のプロトプラス
トの溶菌率は、細胞内酵素系のマーカー、すなわち、乳
酸デヒドロゲナーゼ(LDH)により測定できる。この
酵素は使用したすべてのバクテリアに存在している。
討 凍結乾燥前および凍結乾燥後経過時間別のプロトプラス
トの溶菌率は、細胞内酵素系のマーカー、すなわち、乳
酸デヒドロゲナーゼ(LDH)により測定できる。この
酵素は使用したすべてのバクテリアに存在している。
溶菌率Tは下記の式に従い、プロトプラスト懸濁液の上
清のLDH活性と懸濁液の全LDH活性を測定して得ら
れる。ここで懸濁液とは、凍結乾燥されたプロトプラス
トの組成物の場合には蒸留水を加えて再構成する。また
全LDH活性は、浸透圧膨張により完全に溶菌した後に
生じた活性である。
清のLDH活性と懸濁液の全LDH活性を測定して得ら
れる。ここで懸濁液とは、凍結乾燥されたプロトプラス
トの組成物の場合には蒸留水を加えて再構成する。また
全LDH活性は、浸透圧膨張により完全に溶菌した後に
生じた活性である。
得られた主な結果を第8表と第9表に示す。
第8表は、ストレプトコツがス・サーモフィラスCNR
2385株の溶菌率が、使用した各種耐寒性培地では、
いずれも低い値となっていることを示している。
2385株の溶菌率が、使用した各種耐寒性培地では、
いずれも低い値となっていることを示している。
第9表から、ストレプト・ジアセチラクティスCNRZ
124株の耐寒性培地としてスキムミルクが適してお
り、ストレプトコッカス・サーモフィラスCNRZ30
2株の耐寒性培地として0゜5Mのマルトース溶液が適
していることがわかる。
124株の耐寒性培地としてスキムミルクが適してお
り、ストレプトコッカス・サーモフィラスCNRZ30
2株の耐寒性培地として0゜5Mのマルトース溶液が適
していることがわかる。
実施例3 安定化プロトプラスト組成物調製の方去の簡
略化の検討 ストレプトコッカス・サーモフィラスCNR2385株
の約500 uf!懸濁液を100m1)の培也Aにh
i菌して、6時間インキュベートし、この懸濁?Ijc
10rrlを500rrlの培地Aに移した。
略化の検討 ストレプトコッカス・サーモフィラスCNR2385株
の約500 uf!懸濁液を100m1)の培也Aにh
i菌して、6時間インキュベートし、この懸濁?Ijc
10rrlを500rrlの培地Aに移した。
二のバクテリアを緩かに攪伴しながら37℃で61間増
殖させた。6時間経過時には、光学密度の1はほぼ2に
なっていた。
殖させた。6時間経過時には、光学密度の1はほぼ2に
なっていた。
そしてこの液を遠心分離操作し、ケーキを50OmfI
のPKMS緩衝液(実施例2で使用)に入れた。得られ
た懸濁液を再び遠心して得られたケーキをPKMS緩衝
液50mJl!に加えた。このようにして懸濁液が得ら
れ、これをマグネティックスターラー付の44℃の恒温
槽に移し変えた。温度平衡が達成された後、リゾチーム
溶液(実施例1および実施例2で使用)をバクテリア懸
濁液に濃度1g/Nで加えた。1時間15分に亘って、
プロトプラストの形成が行なわれた。プロトプラストの
形成効率は上記したように、約99.5%であった。
のPKMS緩衝液(実施例2で使用)に入れた。得られ
た懸濁液を再び遠心して得られたケーキをPKMS緩衝
液50mJl!に加えた。このようにして懸濁液が得ら
れ、これをマグネティックスターラー付の44℃の恒温
槽に移し変えた。温度平衡が達成された後、リゾチーム
溶液(実施例1および実施例2で使用)をバクテリア懸
濁液に濃度1g/Nで加えた。1時間15分に亘って、
プロトプラストの形成が行なわれた。プロトプラストの
形成効率は上記したように、約99.5%であった。
このようにして調製したプロトプラストを含んだ培地サ
ンプルをガラスフラスコに移し変え、−80℃で2時間
凍結させた。次にそのうちの一部を、48時間凍結乾燥
した。このとき、この48時間の最後2時間は、残って
いる水分を減少させるために20℃に加温した。得られ
た凍結乾燥試料を+4℃でガラスフラスコに保存した。
ンプルをガラスフラスコに移し変え、−80℃で2時間
凍結させた。次にそのうちの一部を、48時間凍結乾燥
した。このとき、この48時間の最後2時間は、残って
いる水分を減少させるために20℃に加温した。得られ
た凍結乾燥試料を+4℃でガラスフラスコに保存した。
安定化プロトプラスト組成物調製の6異なる段階および
保存中の溶菌率は、実施例2と同様にLDHをΔ−1定
することにより決定した。その主な結果を下記第10表
に示す。
保存中の溶菌率は、実施例2と同様にLDHをΔ−1定
することにより決定した。その主な結果を下記第10表
に示す。
第1O表
プロトプラスト形成完結時に得られた培地の凍結及び/
又は凍結乾燥後のストレブトコ・ツカスサーモフィラス
CNRZ 385プロトプラストの溶菌率第10表に明
らかなように、CNR2385株は低い溶菌率を示して
いる。したがって、プロトプラストの形成完結時にプロ
トプラストを囲包する0、5Mのシュクロース水溶液の
培地がこの株を良好に耐寒保護することが判明した。し
かし1、この培地の他の成分は、0.5Mのシュクロー
ス水溶液の耐寒効果(実施例2参照)を損わない。
又は凍結乾燥後のストレブトコ・ツカスサーモフィラス
CNRZ 385プロトプラストの溶菌率第10表に明
らかなように、CNR2385株は低い溶菌率を示して
いる。したがって、プロトプラストの形成完結時にプロ
トプラストを囲包する0、5Mのシュクロース水溶液の
培地がこの株を良好に耐寒保護することが判明した。し
かし1、この培地の他の成分は、0.5Mのシュクロー
ス水溶液の耐寒効果(実施例2参照)を損わない。
このようにして凍結乾燥後得られた安定化プロトプラス
ト組成物は、吸湿性であり、粉末状にしにくいという欠
点を有している。これを防ぐには、プロトプラストの形
成完結後の懸濁液に、粒径70μmの水酸化シリカ(T
txos i 138A。
ト組成物は、吸湿性であり、粉末状にしにくいという欠
点を有している。これを防ぐには、プロトプラストの形
成完結後の懸濁液に、粒径70μmの水酸化シリカ(T
txos i 138A。
Rh o n e P o u I e n c it
製)を加えると良い。
製)を加えると良い。
上記のようにプロトプラストの形成の完結時において、
プロトプラストを囲む培地を耐寒保護体として使用する
ことにより、安定化プロトプラストの組成物の調製がか
なり簡単になる。
プロトプラストを囲む培地を耐寒保護体として使用する
ことにより、安定化プロトプラストの組成物の調製がか
なり簡単になる。
第1図は本発明のプロトプラストを用いて製造したチー
ズからj%7られた抽出液の氷点降下を示す線図である
。 出願人代理人 弁理士 鈴江武彦
ズからj%7られた抽出液の氷点降下を示す線図である
。 出願人代理人 弁理士 鈴江武彦
Claims (12)
- (1)凍結もしくは凍結乾燥された状態にある、耐寒性
培地中のバクテリアプロトプラスト懸濁物からなる安定
化プロトプラスト組成物。 - (2)耐寒性培地が糖を含む水溶液である請求項1記載
の組成物。 - (3)糖がオシドである請求項2記載の組成物。
- (4)糖が多糖である請求項2記載の組成物。
- (5)耐寒性培地がスキムミルクである請求項1記載の
組成物。 - (6)プロトプラストが、農食品産業において醗酵目的
で使用されるバクテリア株由来である請求項1ないし5
のいずれか1項記載の組成物。 - (7)バクテリア株が乳酸バクテリアの株である請求項
6記載の組成物。 - (8)a)バクテリアからプロトプラストを形成する工
程、 b)工程a)で得たプロトプラストの耐寒性培地中懸濁
物を凍結する工程、 c)場合に応じて、該凍結懸濁物を凍結乾燥する工程 を具備したことを特徴とする、請求項1ないし7のいず
れか1項記載の組成物を製造する方法。 - (9)工程a)を耐浸透圧性培地中でおこなうことを特
徴とする請求項8記載の方法。 - (10)工程b)の耐寒性培地が工程a)の耐浸透圧性
培地を含むことを特徴とする請求項8または9記載の方
法。 - (11)a)バクテリアプロトプラストを耐寒性培地中
に導入する工程、 b)得られた懸濁物を凍結する工程、 c)該凍結懸濁物を、それを使用するまで貯蔵する工程 を具備したことを特徴とするバクテリアプロトプラスト
の保存方法。 - (12)工程b)の終了時に、凍結懸濁物を凍結乾燥す
ることを特徴とする請求項11記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8718186A FR2625221B1 (fr) | 1987-12-24 | 1987-12-24 | Protoplastes stabilises et procede pour leur obtention |
| FR8718186 | 1987-12-24 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01281075A true JPH01281075A (ja) | 1989-11-13 |
Family
ID=9358326
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63327503A Pending JPH01281075A (ja) | 1987-12-24 | 1988-12-24 | 安定化プロトプラスト |
Country Status (8)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0323782B1 (ja) |
| JP (1) | JPH01281075A (ja) |
| AT (1) | ATE92955T1 (ja) |
| AU (1) | AU621579B2 (ja) |
| DE (1) | DE3883196D1 (ja) |
| FR (1) | FR2625221B1 (ja) |
| NZ (1) | NZ227494A (ja) |
| PT (1) | PT89289B (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2022522710A (ja) * | 2019-02-28 | 2022-04-20 | ネイティブ マイクロビアルズ, インコーポレイテッド | 保存された細胞のレスキュー及び連続継代を介して微生物の保存収量を改善するための方法、装置、及びシステム |
Families Citing this family (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2598596B1 (fr) * | 1986-05-15 | 1990-10-19 | Sanofi Elf Bio Ind | Procede de traitement du lait en vue de l'obtention de fromages |
| US5059518A (en) * | 1988-10-20 | 1991-10-22 | Coulter Corporation | Stabilized lyophilized mammalian cells and method of making same |
| FR2727128B1 (fr) * | 1994-11-17 | 1997-01-17 | Fdm Pharma | Moyens pour le traitement de prelevements susceptibles de renfermer des microorganismes pathogenes |
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| US5891692A (en) | 1996-03-29 | 1999-04-06 | Life Technologies, Inc. | Method for increasing the viability and transformation ability of bacteria during or after storage at low temperatures |
| DK1005529T3 (da) | 1997-02-12 | 2005-06-13 | Invitrogen Corp | Fremgangsmåder til lyofilisering af kompetente celler |
| EP1261253B1 (en) * | 2000-03-10 | 2009-09-23 | Uutech Limited | Storage and delivery of micro-organisms |
| EP1382241A1 (en) * | 2000-03-10 | 2004-01-21 | Uutech Limited | Storage and delivery of micro-organisms |
| BR112019006765B1 (pt) * | 2016-10-04 | 2023-09-26 | Membrane Protective Technologies, Inc | Método para congelar células e tecidos |
Family Cites Families (2)
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|---|---|---|---|---|
| US3483087A (en) * | 1966-03-14 | 1969-12-09 | Miles Lab | Cheese starter culture |
| US4521434A (en) * | 1982-09-27 | 1985-06-04 | Microlife Technics, Inc. | Fermentation method and compositions including a lactobacillus species strain |
-
1987
- 1987-12-24 FR FR8718186A patent/FR2625221B1/fr not_active Expired - Fee Related
-
1988
- 1988-12-21 PT PT89289A patent/PT89289B/pt not_active IP Right Cessation
- 1988-12-22 AU AU27434/88A patent/AU621579B2/en not_active Ceased
- 1988-12-22 NZ NZ227494A patent/NZ227494A/en unknown
- 1988-12-23 AT AT88403305T patent/ATE92955T1/de not_active IP Right Cessation
- 1988-12-23 DE DE8888403305T patent/DE3883196D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1988-12-23 EP EP88403305A patent/EP0323782B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1988-12-24 JP JP63327503A patent/JPH01281075A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2022522710A (ja) * | 2019-02-28 | 2022-04-20 | ネイティブ マイクロビアルズ, インコーポレイテッド | 保存された細胞のレスキュー及び連続継代を介して微生物の保存収量を改善するための方法、装置、及びシステム |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| FR2625221A1 (fr) | 1989-06-30 |
| EP0323782A1 (fr) | 1989-07-12 |
| NZ227494A (en) | 1990-07-26 |
| AU621579B2 (en) | 1992-03-19 |
| PT89289B (pt) | 1993-08-31 |
| ATE92955T1 (de) | 1993-08-15 |
| EP0323782B1 (fr) | 1993-08-11 |
| FR2625221B1 (fr) | 1990-06-15 |
| PT89289A (pt) | 1989-12-29 |
| DE3883196D1 (de) | 1993-09-16 |
| AU2743488A (en) | 1989-06-29 |
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