JPH01285196A - 発光蛋白エクオリンの製造法 - Google Patents
発光蛋白エクオリンの製造法Info
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- JPH01285196A JPH01285196A JP63113979A JP11397988A JPH01285196A JP H01285196 A JPH01285196 A JP H01285196A JP 63113979 A JP63113979 A JP 63113979A JP 11397988 A JP11397988 A JP 11397988A JP H01285196 A JPH01285196 A JP H01285196A
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- Japan
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- aequorin
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- plasmid
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- mammalian cells
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/43504—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates
- C07K14/43595—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from coelenteratae, e.g. medusae
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/65—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression using markers
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[技術の分野]
本発明はクラゲ発光蛋白エクオリンの哺乳動物細胞系で
の製造法に関する。
の製造法に関する。
更に詳しくは、組換えDNA技術を用いて、クラゲ発光
蛋白エクオリンの生合成を特定する遺伝子を、哺乳動物
細胞系発現ベクターに組みこみ、そのDNAを哺乳動物
細胞にトランスフェクションした細胞を用いる、発光蛋
白エクオリンの製造法に関する。
蛋白エクオリンの生合成を特定する遺伝子を、哺乳動物
細胞系発現ベクターに組みこみ、そのDNAを哺乳動物
細胞にトランスフェクションした細胞を用いる、発光蛋
白エクオリンの製造法に関する。
[従来の技術とその問題点]
カルシニウム受容発光蛋白エクオリンは、米国ワシント
ン州シアトル近郊のフライデー・ハーバ−島近辺に7〜
9月に発生する発光オワンクラゲの傘周辺に存在し、刺
激を与えるこにより発光する。この発光クラゲlO万匹
より約200111gの精製エクオリンが得られている
。
ン州シアトル近郊のフライデー・ハーバ−島近辺に7〜
9月に発生する発光オワンクラゲの傘周辺に存在し、刺
激を与えるこにより発光する。この発光クラゲlO万匹
より約200111gの精製エクオリンが得られている
。
エクオリンはカルシュラムイオンと特異的に結合し、発
光する性質から、微弱発光利用によるカルシェウムイオ
ンの定量に利用されている。特に動物細胞中のカルシュ
ラムイオンの測定に広く使用されている。
光する性質から、微弱発光利用によるカルシェウムイオ
ンの定量に利用されている。特に動物細胞中のカルシュ
ラムイオンの測定に広く使用されている。
しかし、前述の如く、天然発光クラブより得られるエク
オリンの量は少なく、市場の需要を満たすことはできな
い、そこで我々は、組換えDNAの手法を用いて、発光
クラブより、エクオリン遺伝子pAQ440を単離した
(特願昭59−176.125号)。
オリンの量は少なく、市場の需要を満たすことはできな
い、そこで我々は、組換えDNAの手法を用いて、発光
クラブより、エクオリン遺伝子pAQ440を単離した
(特願昭59−176.125号)。
さらに、このエクオリン遺伝子を用いて、原核細胞であ
る大腸閑に於いてアポエクオリンの生産系を確立(特願
昭61−249,098号)し、その精製系も確立した
(特願昭82−291,640号)。
る大腸閑に於いてアポエクオリンの生産系を確立(特願
昭61−249,098号)し、その精製系も確立した
(特願昭82−291,640号)。
このことにより、エクオリン供給の道が開け、波及効果
も期待できる。
も期待できる。
たとえば十分な精製エクオリンを用いることにより、そ
の発光機構や原理の解明が可能となり、他の分野の研究
協力により応用研究への可能性も広がることが示唆され
る。
の発光機構や原理の解明が可能となり、他の分野の研究
協力により応用研究への可能性も広がることが示唆され
る。
現在までの基礎的研究から、以下のようなエクオリンの
性質が明らかとなっている。
性質が明らかとなっている。
一般に哺乳動物細胞の発生や分化の過程は、主として遺
伝子の転写レベルで制御されていると推定され、発現制
御シグナルは、クローン化した遺伝子を用い、細胞に再
導入して、遺伝子の発現あるいは、転写に及ぼす影響を
調べるこにより、解析されている。
伝子の転写レベルで制御されていると推定され、発現制
御シグナルは、クローン化した遺伝子を用い、細胞に再
導入して、遺伝子の発現あるいは、転写に及ぼす影響を
調べるこにより、解析されている。
現在までに、哺乳動物細胞系において、種々の発現ベク
ターが開発され、発現遺伝子マーカーとして、 CA
T遺伝子(クロラムフェニコールアセチルトランスフェ
ラーゼ)がよく用いられている。
ターが開発され、発現遺伝子マーカーとして、 CA
T遺伝子(クロラムフェニコールアセチルトランスフェ
ラーゼ)がよく用いられている。
しかし、このCAT活性測定には、ラジオアイソトープ
を含む+4(−クロラムフェニコールを基質として、生
成する14C−アセチルクロラムフェニコールをTLC
により分離し、その活性を求める。
を含む+4(−クロラムフェニコールを基質として、生
成する14C−アセチルクロラムフェニコールをTLC
により分離し、その活性を求める。
CAT法は、ラジオアイソトープの使用が必須であり、
現在CAT遺伝子におきかわるもつと使用上安全性の高
く、非アイソトープ系で、高感度検出能を有する発現遺
伝子マーカーが求められている。
現在CAT遺伝子におきかわるもつと使用上安全性の高
く、非アイソトープ系で、高感度検出能を有する発現遺
伝子マーカーが求められている。
そこで、本発明者等は哺乳動物細胞系に於いて、この発
現遺伝子マーカーとしてカルシュラム受容発光蛋白エク
オリンの遺伝子を用いることにより、非ラジオアイソト
ープ系で、微弱発光活性を測定することにより高感度検
出が可能となることを見出した。
現遺伝子マーカーとしてカルシュラム受容発光蛋白エク
オリンの遺伝子を用いることにより、非ラジオアイソト
ープ系で、微弱発光活性を測定することにより高感度検
出が可能となることを見出した。
[問題点を解決するための手段]
本発明は、発光クラブよりエクオリンの生合成を特定す
る遺伝子+1AQ440を、哺乳動物細胞発現系ベクタ
ーに組みこみ、動物細胞へトランスフェクションするこ
とにより導入を行い、アポエクオリンを生産させ、エク
オリンへの再生する方法(エクオリンの製造法)である
。
る遺伝子+1AQ440を、哺乳動物細胞発現系ベクタ
ーに組みこみ、動物細胞へトランスフェクションするこ
とにより導入を行い、アポエクオリンを生産させ、エク
オリンへの再生する方法(エクオリンの製造法)である
。
たとえば、使用する哺乳動物細胞系として、COS細胞
株−5V40系の使用が可能である。 COS細胞株
での遺伝子の発現に於いて、サル腎細胞でベクタープラ
スミドDNAが自律増殖するには、ベクタープラスミド
DNAにSV40゜r+(複製起点)が存在し、細胞中
にSV401argeT(ITJ抗原が存在することが
必要である。
株−5V40系の使用が可能である。 COS細胞株
での遺伝子の発現に於いて、サル腎細胞でベクタープラ
スミドDNAが自律増殖するには、ベクタープラスミド
DNAにSV40゜r+(複製起点)が存在し、細胞中
にSV401argeT(ITJ抗原が存在することが
必要である。
cos(cv−t、orl、5v4o1細胞株(Glu
zman、Y、Ce1l 23175 (1985)は
5V40or+欠損変異株によりトランスフオームされ
たサル腎CV−1細胞で、IT抗原が生産されているた
めSV40初期変異株の増殖が可能である。
zman、Y、Ce1l 23175 (1985)は
5V40or+欠損変異株によりトランスフオームされ
たサル腎CV−1細胞で、IT抗原が生産されているた
めSV40初期変異株の増殖が可能である。
そこで、現在よく使用されている発現ベクタープラスミ
ドpSV2−gptのgpt遺伝子(キサンチンーグア
ニンフオスフオリボシルトランスフエラーゼの遺伝子)
の部分を、エクオリン遺伝子と交換したpSv−^Qプ
ラスミド及び、レトロウィルスの発現プロモータ一部分
を含むLTR(両末端反復配列)を組みこんだpR5V
−^qを構築した。
ドpSV2−gptのgpt遺伝子(キサンチンーグア
ニンフオスフオリボシルトランスフエラーゼの遺伝子)
の部分を、エクオリン遺伝子と交換したpSv−^Qプ
ラスミド及び、レトロウィルスの発現プロモータ一部分
を含むLTR(両末端反復配列)を組みこんだpR5V
−^qを構築した。
以下本発明を実施例によって詳細に述べる。
実施例
■[動物細胞でのアポエクオリン発現ベクターの構築]
動物細胞内でのアポエクオリン発現ベクターpsV2−
AQ、 psVl−AQ及びpR5V−AQ (D構築
を第1図に示した。
AQ、 psVl−AQ及びpR5V−AQ (D構築
を第1図に示した。
動物細胞に於ける発現ベクタープラスミドルSシーgp
t Mulllgan R,(:ら、Proc、Nat
l、^cod、scl US^Q 2072(198
1)small T抗原mRNAの5°、3°フプライ
ス部分及び、初期mRNA用、poly(^)付加シグ
ナルを含む部分をEcoRI / EcoRV消化後分
消化上分離取 得のフラグメントをクローニングベクターptlc19
Yanisch、C,ら、Gene、33110(1
985)のT4ポリメラーゼ処理した鏡!部位とEco
R7部分にサブクローニングを行い、プラスミドpNo
−14を構築する。
t Mulllgan R,(:ら、Proc、Nat
l、^cod、scl US^Q 2072(198
1)small T抗原mRNAの5°、3°フプライ
ス部分及び、初期mRNA用、poly(^)付加シグ
ナルを含む部分をEcoRI / EcoRV消化後分
消化上分離取 得のフラグメントをクローニングベクターptlc19
Yanisch、C,ら、Gene、33110(1
985)のT4ポリメラーゼ処理した鏡!部位とEco
R7部分にサブクローニングを行い、プラスミドpNo
−14を構築する。
pNO−14の脱リン酸化(RAP処理) SmaI
部位にKleno胃フラグメント及びT4ボリメレース
処理したエクオリンcDN^を有するpAQ440の里
!、堕R1フラグメントを挿入しpsVo−八〇を作成
する。このpsVO−^qのエクオリン遺伝子の上流部
分に、各種のプロモーター、エンハンサ−1or1等を
挿入スることにより、動物細胞でアポエクオリン発現可
能なベクターを容易に構築できる。
部位にKleno胃フラグメント及びT4ボリメレース
処理したエクオリンcDN^を有するpAQ440の里
!、堕R1フラグメントを挿入しpsVo−八〇を作成
する。このpsVO−^qのエクオリン遺伝子の上流部
分に、各種のプロモーター、エンハンサ−1or1等を
挿入スることにより、動物細胞でアポエクオリン発現可
能なベクターを容易に構築できる。
たとえば、psV2−gPtより5V4Gのori部分
(プロモーター及びエンハンサ−を含む)を pvul
l。
(プロモーター及びエンハンサ−を含む)を pvul
l。
皿!■消化により取得し、psVo−AQのXba 1
部分に挿入することにより COS細胞でアポエクオリ
ン発現可能なpSV2−AQを構築した。
部分に挿入することにより COS細胞でアポエクオリ
ン発現可能なpSV2−AQを構築した。
このpSV2−^qより Sph r消化、結合により
生じるpsVl−AQは、各種エンハンサ−活性をエク
オリン活性を用いて測定することが、可能である。
生じるpsVl−AQは、各種エンハンサ−活性をエク
オリン活性を用いて測定することが、可能である。
一方、レトロウィルスのLTR(Long terII
linalrepeat、末端反復配列)には、動物細
胞中で調節可能プロモーターが含まれている。たとえば
、R5V(Rous Sarcoma Virus)Y
a+lamoto、TらPro。
linalrepeat、末端反復配列)には、動物細
胞中で調節可能プロモーターが含まれている。たとえば
、R5V(Rous Sarcoma Virus)Y
a+lamoto、TらPro。
Na1t Acod So US^(1981)のLT
Rを含むフラグメントをpsV2−AQ (7) Xb
a1部位に挿入したpR5V−AQを構築した。
Rを含むフラグメントをpsV2−AQ (7) Xb
a1部位に挿入したpR5V−AQを構築した。
■[動物細胞への発現プラスミドのトランスフェクショ
ン法] (1)用いた動物細胞はサル腎由来COS細胞である。
ン法] (1)用いた動物細胞はサル腎由来COS細胞である。
(2)動物細胞培養のための培地組成
培地500mJ2当り組成は以下のとおりである。
ダルベツコ変法イーグル培地■
(日本製薬株式会社) 4.75gF
etal calf serum (牛脂仔血清)
50oJIL−グルタミン酸
0.292gメイロン(8,496炭酸水素ナトリ
ウム) 9mj2ペニシリンG
45単位(3)トランスフェクションの方法 COS細胞の上記の培地で5%Co、、37℃C02イ
ンキユベーター中で培養する。対数増殖期にあるcos
M5胞をトランスフェクション24時間前に 100m
m Falcon +HshにlXl0’細胞/10m
Lとなるように植継ぐ、さらにトランスフェクション4
時間前に新鮮な培地を交換する。
etal calf serum (牛脂仔血清)
50oJIL−グルタミン酸
0.292gメイロン(8,496炭酸水素ナトリ
ウム) 9mj2ペニシリンG
45単位(3)トランスフェクションの方法 COS細胞の上記の培地で5%Co、、37℃C02イ
ンキユベーター中で培養する。対数増殖期にあるcos
M5胞をトランスフェクション24時間前に 100m
m Falcon +HshにlXl0’細胞/10m
Lとなるように植継ぐ、さらにトランスフェクション4
時間前に新鮮な培地を交換する。
15ggのエクオリン発現ベクターDNAをリン酸カル
シュウム法(F、L、Graham、& A、J、va
nder Eb。
シュウム法(F、L、Graham、& A、J、va
nder Eb。
■匹江uJj、 458 (1973) ) ニより
cos細胞ニトランスフェクションする。
cos細胞ニトランスフェクションする。
以下の組成である。
DNA15μfl/219μf (1mMTrls−
HCI(p)17.5)0.1mM EDT^・2Na
) 2M CaC1a 31μm1 2 x HBS 250μfL (IIEPEs
10g/ 11 、NaC116g/ Il及び70
mM Na2 HPO4,70mM Na2HPO4を含む 〜500μm トランスフェクション後12時間前記のように培養を行
い、新鮮な培地に交換し、さらに36時間同条件で培養
する。
HCI(p)17.5)0.1mM EDT^・2Na
) 2M CaC1a 31μm1 2 x HBS 250μfL (IIEPEs
10g/ 11 、NaC116g/ Il及び70
mM Na2 HPO4,70mM Na2HPO4を含む 〜500μm トランスフェクション後12時間前記のように培養を行
い、新鮮な培地に交換し、さらに36時間同条件で培養
する。
■[産生アポエクオリンの抽出方法]
トランスフエフ95248時間後シャーレの培地を除去
し、細胞をPBS NaCl a、og、 KCI 0
.2g、 Na2HPOa 1.15g、 KH2PO
40,2gを水1fLに溶解したもの((:a2° M
g 2 *不含!J ンalE衝液) テ3 回洗浄
tる、さらに、 PbSを少量加えシャーレ上の細胞を
ポリスマンでかきとり、エッペンドルフチューブに集め
る。卓上遠心機で5000rp11.1分間遠心し、上
溝を除去する。集めた細胞沈殿物を200μLの30m
M Tris−HCI(pH7,6)1(lIllM
EDTA・2Naに懸濁する。ドライアイス−メタノー
ルで凍結、37℃で融解を3度くり返すことにより細胞
を破壊する。
し、細胞をPBS NaCl a、og、 KCI 0
.2g、 Na2HPOa 1.15g、 KH2PO
40,2gを水1fLに溶解したもの((:a2° M
g 2 *不含!J ンalE衝液) テ3 回洗浄
tる、さらに、 PbSを少量加えシャーレ上の細胞を
ポリスマンでかきとり、エッペンドルフチューブに集め
る。卓上遠心機で5000rp11.1分間遠心し、上
溝を除去する。集めた細胞沈殿物を200μLの30m
M Tris−HCI(pH7,6)1(lIllM
EDTA・2Naに懸濁する。ドライアイス−メタノー
ルで凍結、37℃で融解を3度くり返すことにより細胞
を破壊する。
細胞破壊の有無を、トリバンブルーで染色し確認した後
、14,000rp■、10分間4℃で遠心分離後、そ
の上清を産生アポエクオリンの抽出液として用いた。
、14,000rp■、10分間4℃で遠心分離後、そ
の上清を産生アポエクオリンの抽出液として用いた。
■[アポエクオリンのエクオリンへの変換及びエクオリ
ン活性の測定法] 産生アポエクオリン抽出液に2−メルカプトエタノール
6μβ、セレンテラジン3μ2(1μg/μm溶を夜)
を加え、30+aM Trls−HCI (p)17.
6) 、IQmlAEDT^・2Na液で全量を300
μmにする。このものを氷上(4℃)に12時間放置す
ることによりエクオリンへと変換・再生する。
ン活性の測定法] 産生アポエクオリン抽出液に2−メルカプトエタノール
6μβ、セレンテラジン3μ2(1μg/μm溶を夜)
を加え、30+aM Trls−HCI (p)17.
6) 、IQmlAEDT^・2Na液で全量を300
μmにする。このものを氷上(4℃)に12時間放置す
ることによりエクオリンへと変換・再生する。
再生したエクオリン反応液を60μl測定用チユーブに
入れ、ルミフォトメーターTO−4000(ラボサイエ
ンス社製)の測光室に移し、6θOμmの30mM C
aCl2/30mM Tris−HCI(pH7,6)
を(主人し、初期最大発光強度を測定する。
入れ、ルミフォトメーターTO−4000(ラボサイエ
ンス社製)の測光室に移し、6θOμmの30mM C
aCl2/30mM Tris−HCI(pH7,6)
を(主人し、初期最大発光強度を測定する。
その結果を示したのが表1である。
(表 1)
9SVl−^q5
psV2−AQ 52 。
以上の結果から、エクオリン遺伝子は哺乳動物細胞系で
発現可能であり、エクオリン遺伝子が動物細胞内での遺
伝子マーカーとなることが明らかとなり、さらには動物
細胞内で生産することが明らかとなった。
発現可能であり、エクオリン遺伝子が動物細胞内での遺
伝子マーカーとなることが明らかとなり、さらには動物
細胞内で生産することが明らかとなった。
第1図は、本発明の詳細な説明図である。
以 上
Claims (1)
- (1)クラゲ発光蛋白エクオリンの生合成を特定する遺
伝子(pAQ440)を、哺乳動物細胞系発現ベクター
プラスミドにクローニングして得られたプラスミドを哺
乳動物細胞にトランスフェクションし、該トランスフェ
クション後の哺乳動物細胞で産生することを特徴とする
発光蛋白エクオリンの製造法。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63113979A JPH01285196A (ja) | 1988-05-11 | 1988-05-11 | 発光蛋白エクオリンの製造法 |
| EP89107335A EP0341477A1 (en) | 1988-05-11 | 1989-04-24 | A process for producing a photoprotein aequorin |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63113979A JPH01285196A (ja) | 1988-05-11 | 1988-05-11 | 発光蛋白エクオリンの製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01285196A true JPH01285196A (ja) | 1989-11-16 |
Family
ID=14626010
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63113979A Pending JPH01285196A (ja) | 1988-05-11 | 1988-05-11 | 発光蛋白エクオリンの製造法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0341477A1 (ja) |
| JP (1) | JPH01285196A (ja) |
Families Citing this family (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5714666A (en) * | 1993-02-09 | 1998-02-03 | Children's Hospital Of Philadelphia | Measurement of intracellular calcium using bioluminescent apoaequorin expressed in mammalian cells |
| CA2336929C (en) | 1998-07-06 | 2005-10-04 | Euroscreen S.A. | High-throughput screening diagnostic and/or dosage method of an agonist and/or an antagonist for a calcium-coupled receptor |
| SE0101519D0 (sv) * | 2001-04-27 | 2001-04-27 | Astrazeneca Ab | Nucleic ACID |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| ZW18282A1 (en) * | 1981-08-31 | 1983-03-23 | Genentech Inc | Preparation of polypeptides in vertebrate cell culture |
| CA1277931C (en) * | 1984-06-05 | 1990-12-18 | Shimon Ulitzur | Detection and/or identification of microorganisms in a test sample usingbioluminescence or other exogenous genetically-introduced marker |
| NZ214563A (en) * | 1984-12-31 | 1991-05-28 | Univ Georgia | Production of apoaeqorin using recombinant dna |
| US4775624A (en) * | 1985-02-08 | 1988-10-04 | Eli Lilly And Company | Vectors and compounds for expression of human protein C |
| JPS62171695A (ja) * | 1985-12-14 | 1987-07-28 | Chisso Corp | 発光蛋白アクアリン遺伝子を用いるアクアリン活性を有する蛋白質の製造法 |
-
1988
- 1988-05-11 JP JP63113979A patent/JPH01285196A/ja active Pending
-
1989
- 1989-04-24 EP EP89107335A patent/EP0341477A1/en not_active Withdrawn
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0341477A1 (en) | 1989-11-15 |
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