JPH0213396A - 選択的免疫学的定量のためのモノクローナル抗体 - Google Patents

選択的免疫学的定量のためのモノクローナル抗体

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JPH0213396A
JPH0213396A JP1104804A JP10480489A JPH0213396A JP H0213396 A JPH0213396 A JP H0213396A JP 1104804 A JP1104804 A JP 1104804A JP 10480489 A JP10480489 A JP 10480489A JP H0213396 A JPH0213396 A JP H0213396A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 プロコラーゲンペプチド(旧型) (pup )は、プ
ロコラーゲン(旧型)分子の分泌後1拙胞外除去を受け
ろコラーゲン(bllffl)のアミノ末端プロはブテ
ドである。一方、プロコラーゲンペプチド(III■型
)はコラ−ゲナーゼでさらに、それ自体公知のタンパク
質化学の方法を用いて単離できるフラグメントC○11
、col 2およびcoat 3に分離される(Now
ackら: l1fiur、、T、Biochom、、
70:205−216.1976;Bruckner 
P、ら: Eur、J。
Biochem、、90:595−603.1978)
ヨーロッパ特許筒4,940号に記載されている放射免
疫定量法は、体液中の上記プロコラーケ゛ンはブチドの
濃度を測定するのに使用できる。Jこのペプチドの血清
濃度の知識からたとえば肝臓の繊維性疾患の活動性に関
する情報が提供される(Robd、H,ら: Eur、
、T、C11n、工nveat、 、 9:451〜4
59,1979)。
血清および他の体液中のプロコラーゲンはプチド(旧型
)およびプロコラーケ゛ン(旧型)の正確な選択的定量
はヨーロッパ特許出願筒289、930号に提案されて
いる。しかしながら、これは多数の遠心分離工程を必要
とし、それが定常的な臨床検査への使用を困難にしてい
る。
イムノラジオメトリックアッセイ(IRMA)法では、
さらに単純な操作が可能になる。この方法では2mの抗
体が使用される。そのひとつは固体担体にカップリング
されるが、それによシ沈殿工程がひとつ、その結果遠心
分離工程がひとつとビベツテイング工程がいくつか不要
になる。
ゲルp過クロマトグラフィーでは特徴的な、ピ叫りとし
てこれまで明らかにされていなかったプロコラーゲン(
旧型)のフラグメントと反応するモノクローナル抗体が
驚くべきことに発見された。この抗体を、プロコラーゲ
ンペプチド(旧型)および/またはプロコラ−ダン(旧
型)に対する特異性を有する他のモノクローナルまたは
ポリクローナル抗体と組合せると、B工MA技術を用い
たこれらの抗原の定量が可能になる。
したがって、本発明は、 (b)  完全プロコラーゲン(旧型)およびpN−コ
ラーゲ゛ン(c末端プロはプテドを欠(プロコラーケ゛
ン)(キーク1a)、完全アミノ末端プロコラーゲンは
ブチド(旧型)(ピーク2a)、分子量がアミノ末端プ
ロコラーケ゛ンはブチド(nl型)の分子量とcol 
1の分子量の間にあるアミノ末端プロコラーゲンペプチ
ド(il[W)の分解生成物(ピーク3a)、ならびに
col 1およびC011と同じ分子量をもつアミノ末
端プロコラーケ゛ンはブチド(旧型)の分解生成物(ピ
ーク4a)に対して第2図に抽かれた反応パターンを有
するモノクローナル抗体、 (2)  ミエローマ系の細胞と、予めアミノ末端プロ
コラーゲンはプチド(旧型)で免疫感作された動物から
のリンパ球細胞との細胞融合によって得られ、上記(b
)に定義された抗体を産生ずるハイブリドーマ細胞系統
(hybridoma cell 1ine)s(5)
上記(b)に定義された抗体の製造方法、(4)  上
記(b)に定義された抗体を用いるプロコラーゲンはプ
チド(旧型)の免疫学的定量方法、(5)上記(b)に
定義されたモノクローナル抗体の有効量を、単独または
他の抗体と(にヨーロッパ特許出願筒289.930号
に提案されているモノクローナル抗体の有効量と組合せ
て、診断的に許容される担体と混合して含有する、体液
中のプロコラーダンRブチ)l’(ill型)の量を確
立するための診断用組成物、に関する。
本発明を以下に、とくにその好ましい態様について詳細
に説明する。本発明はまた。特許請求の範囲に明示され
ている。
モノクローナル抗体を製造するには、動物好ましくはた
とえばマウス、ラット、ウサギまたはモルモットのよう
なげつ書類動物を、ヨーロッパ特許第4,940号の方
法によって単離されたプロコラーゲンペプチド(lIl
型)によシ、アジュバントの存在下に免疫感作すること
ができる。
マウスの使用が好ましく、とくに8.Ti株のマウスが
好ましい。免疫応答は、たとえば4〜8週の間隔で、反
復ブースター注射することによって増強される。免疫感
作の成否は、放射能結合検定で抗体の濃度を測定するこ
とによってチエツクされる(R,Timpl & L、
R15teli:工mmunoche−mistry 
of the extracellular matr
ix、 H,Fur−thma7r編、第1巻、199
頁(b982))。 リンパ球細胞とミエローマ細胞系
統(IIIyexoma cexx 1ine)との融
合の何日か前に、動物を、アジュバントを使用せすにプ
ロコラーゲンペプチド(III型)で処理する。リンパ
球細胞は動物から採取し、ミエローマ細胞系統と融合さ
せる。このミエローマ細胞も同様に上述の動物種のひと
つに出来するものを使用できるが、マウス起源のものが
好ましく、とくに細胞系統P3X63AG8 、653
と融合させる。同じ種のリンパ球細胞とミエローマ細胞
系統を融合させるのが有利である。融合およびその後の
細胞クローンの培養は、当業者によく知られた方法で行
われ、特異的抗体の濃度は細胞培養液からの上清につい
て、免疫学的結合検定を用いて測定される。この過程か
ら誘導される細胞クローンから、工RMAに使用するた
め、ひとつのクローンを選択する。マウスミエローマ細
胞系統P3X63AGa653と、プロコラーゲンペプ
チド(IIIJ)で予め免疫感作したS、TL株ママウ
スらのリンパ球細胞との融合によって製造され、第2図
に示すような反応ノぞタンを有するモノクローナル抗体
を産生ずる細胞系統を用いるのがとくに好ましい。この
細胞系統は、1988年6月2日に、ブダペスト条約の
条件に従い、European col1ection
 of Animal Ce1l Cul四ea(EC
ACC)、PHL8 Centre for Appl
iecl Microt+io−1ogy and R
e5earch、 Porton Down、 8al
iabury。
8P40JG、 D、に、に第880i202号として
寄託された。
本発明によるモノクローナル抗体は工gG、■gMおよ
び工gムタンパク質クラスに属する。XgGクラス、と
くに工gG2bサブクラスの抗体はとくに有利に使用で
きる。細胞系統ICACC88030202から得られ
るモノクローナル抗体PIP 226を用い、血清中に
存在する抗原をゲルー過クロマトグラフィーによって分
子量に応じて分画し、このクロマトグラフィーから分画
な放射免疫検定に用いた場合のモノクローナル抗体の性
質を例示する。第2図は、モノクローナル抗体PIll
P226によって示されるゲル濾過クロマトグラフィー
溶出像を、ポリクローナル抗体が示す溶出像と比較して
表した図であるっ ピーク1/1aは完全プロコラーゲ
ン(III型)およびpN−コラーゲン(III型)に
相当する。ピークV2aは完全アミノ末端プロコラーゲ
ンペプチド(III型)およびその類似サイズの分解生
成物に相当する。ピーク3aは、クロマトグラムにおい
てプロコラーゲンペプチド(III型)より小さいがc
ollよ勺明らかに大ぎいピークを生じるプロコラーゲ
ンペプチド(III温)の分解生成物を示す。すなわち
、各分解生成物の分子量は約45.[]00(プロコラ
ーゲンペプチド)と約1へ000 (cox 1 )の
間にある。ピーク4/4aはcal 1プラスアミノ末
端プロコラーダンはプチド(III型)のco11ト同
じ分子量の分解生成物に相当する。ポリクローナル抗体
での分析でも検出され、collの分解生成物の分子量
をもつ抗原分画またはcollである抗原分画は、本発
明のモノクローナル抗体でははるかに弱くしか検出され
ないことが明らかである。したがって、本発明のモノク
ローナル抗体は、coll中には存在しないアミノ末端
プロコラーゲンはブチド(III型)のエピドープに対
する特異的な作用を有する。さらに、ピーク2にポリク
ローナル抗体によって検出される抗原のい(つかは抗体
PIIIP 226によって認識されず、その結果、抗
体PIIIP 226ではビーク2の位置に2つのピー
ク(2aおよび3a)が明らかである。ビーク3aは同
様に、ドイツ特許出願に提案されている抗体P[llP
 296を用いては見出されない。
本発明の抗体の製造に際しては、抗原を得るのに適当な
原料の入手が重要である。既述のように、ヒトまたは動
物の高度に精製されたプロコラ−ダンペプチド(III
型)は、関連組織または病的体液をコラ−ゲナーゼで分
解し、反応溶液からプロコラーゲンペプチドを取出し、
クロマトグラフィー法および/または免疫吸着の組合せ
によって精製するヨーロッパ特許第4,940号によっ
て有利に単離される。
本発明のモノクローナル抗体は、すべての言類の放射免
疫測定法たとえば連続飽和分析もしくは平衡分析、なら
びに他の競合的および非結合的結合検定たとえば螢光、
酵素、化学発光もしくは他の免疫検定を包含する様々の
免疫学的方法に使用することができる。とくに免疫吸着
検定においてサンドインチ法に使用するのに適している
。すなわち1本発明のモノクローナル抗体は、組織また
は体液中のプロコラーゲンペプチド(III型)の単離
および特性づけ、ならびに定量的測定のための免疫学的
方法に使用することができる。使用される方法はそれ自
体は当業者によく知られた方法であシ、プロコラーゲン
にブチド<mm)を含有する液体サンプルを、好ましく
はプラスチック材料から構成される固体マトリックスと
(にプラスチック試験管に結合させた本発明のモノクロ
ーナル抗体と反応させ、ついで放射性または他のトレー
サーを付与されたポリクローナルまたは第2のモノクロ
ーナル抗体好ましくはヨーロッパ特許出願用289、9
30号に提案されているモノクローナル抗体の結合によ
シプロコラーゲンはブチド(b1[屋)の量を測定する
のが有利である。この方法はまた、ポリクローナル抗体
またはモノクローナル抗体とくにヨーロッパ特許出願用
289,930号に提案されているモノクローナル抗体
を固体マトリックスに結合させて抗原と反応させ、この
抗原をついで標識された本発明の抗体の結合で定量的に
測定することによっても実施できる。
これらの方法では、プロコラーゲンペプチド(III型
)がプロコラーゲン< mm>のアミノ末端にまだ連結
しているかどうかは重要でない。
ポリクローナル抗体を用いる免疫学的測定では従来妨害
となっていたプロコラーゲンペプチド(IIIW)の分
解生成物とくにcollは上述の検定システムでは検出
されない。
ヨーロッパ特許出願用289.930号に提案されてい
るモノクローナル抗体は、完全プロコラーゲン(III
型)およびpN−コラーゲン(c末端プロペプチドを欠
くプロコラーゲン、ビーク4a)。
完全7ミノ末端プロコラーゲンペプチド(III型)(
ピーク5a)、ならびにCOI 1およびcollと同
じ分子址をもつアミノ末端プロコラーゲンペプチド(I
II型)の分解生成物(ピーク6a)に対して第5図に
抽かれた反応パタンを示す。
このモノクローナル抗体の製造操作は上述の操作とほぼ
同じである。マウスミエローマ細胞系統P3X63AG
& 655と、プロコラーゲンペプチド(III型)で
免疫感作した8、7t株マウスからのリンパ球細胞との
融合によって製造された細胞系統の使用がとくに好まし
い。この細胞系統は、European col1ec
tion of Animal Cel Cu1tur
es(jccAcC) 、 PHLS centre 
for Applied Microbio−1ogy
 and Re5earch、 Porton Dow
n、 5alisbury。
SF30JG、σ、に、に第87042308号として
寄託されている。
本発明を以下の実施例によシさらに説明する。
とくに指示がない限シ、百分率の数値は重量に基づくも
のである。
実施例 1 プロコラーゲンペプチド(III型)の製造プロコラー
ゲンペプチド(III型)はプロコラーゲン(III型
)に37℃でコラ−ゲナーゼを作用させて製造される。
この間、ペプチドを変性剤に曝すことはしない。大量の
ペプチドを製造するためには改良方法を使用する。コラ
−ゲナーゼを作用させるまでの全工程は冷却室内で行う
。可溶化に用いられるNaC2溶液はl105Mトリス
塩酸塩、pH7,4,αOIMED’rA、ナトリウム
アジド(200η/−)ならびにプロテアーゼ阻害剤、
フェニルメチルスルホニルフルオライド(5μI/−)
およびp−クロロメルクリ安息香酸(5μVml )を
含有する。
ウシ胎児皮膚C3Kp)を、I M NaCtl 0 
を中で2日間ホモジナイズし、抽出する。溶解したコラ
ーゲンを抽出溶液から、最終濃度が2.5Mになるよう
に固体NaCtを加えて沈殿させる。沈殿を一夜攪拌し
たのち、遠心分離して(b800X#。
20分)集め、2.5 M NaC1で2回洗浄し、a
5MNaCt10A中で一夜攪拌して再溶解する。少量
の不溶物質を遠心分離にょシ除去する。この方法で得ら
れたコラーゲン(In)およびプロコラーゲン(III
型)の混合物は16 MNaCtで沈殿する。沈殿をつ
いでcL05Mトリス塩酸塩(pHaO)2A中に懸濁
し、 [102M C’aCj2を加えたのち、50℃
に20分間加熱し、ついで湿った沈殿11あたシフ50
0[7の細菌性コラ−ゲナーゼとともに37℃で3時間
インキュベートする。
コラーゲンを作用させたのち、生成した沈殿を遠心分離
で除き、溶液を(LOO5MトIJスー塩酸塩、pHa
o、6.8Mw累で透析し、同じ緩衝液で予め平衡化し
たDKAE−セルロースカラム(5,。
x 30 cm )を通過させる。
カラムに結合したタンパク質を、 NaC1溶液でその
濃度を0からCL3Mに上昇させて洗い出す。
溶出する総量は2tである。カラムから流出した溶液に
ついて、236nmの吸収と、プロコラーゲン(III
型)のアミノ末端セグメントに対して特異的な抗体を用
いてその抗原活性を調べる。
通常、プロコラーゲンペプチド(III型)を含有する
のiカラムから溶出する最終ピークである。
蒸留水で透析してペプチドから塩を除去し、凍結乾燥す
る。次の精製は、アガロースA 1.5 Mを含有する
カラム(2X 120cnt) (Eioradから入
手)をI M CaCl2.1105M l−リス塩酸
塩、≠Z5で平衡化して実施する。
実施例 2 ハイブリドーマの製造 El、TL株のマウスに1例1のようにして得られたプ
ロコラーゲンペプチド(Ill型)5μIを完全7算イ
ンドアジユバントの存在下に筋肉内注射して免疫感作す
る。免疫応答はさらにプロコラーケ゛ンベブチド(II
Im)sμ9を不完全フロインドアジュバントの存在下
、4週後および5力月後に筋肉内注射することによシ増
強される。融合の3日前にさらに50μgのプロコラー
ゲンペプチド(III型)を注射して免疫応答を増強す
る。
融合に際しては動物を層殺し、膵臓細胞を単離する。膵
臓細胞をミエローマ細胞系統P3X63AG8.653
と、ポリエチレングリコールの存在下に融合させる(得
られた細胞系統はECACCに番号88030202で
寄託されている)。膵臓細胞xP3X63aG8.65
3ハイブリッドは、融合混合物をヒボキサンチン/アミ
ノプテリン/チミジン培地中で2週間にわたって培養し
て選択する。生成した細胞クローンを数回サブクローニ
ングするとモノクローナル細胞系が得られる。生成した
細胞コロニーの上清について、抗体の産生な放射免疫結
合検定法で検定する。この方法で二元性モノクローナル
抗体PmP 226が得られる。
実施例 3 放射免疫結合検定法 500μtの細胞培養上清、またはたとえばマウスの腹
腔内でハイブリドーマ細胞を培養したのちの腹水のよう
な他のサンプルを、125エープロコラーケ゛ンはプチ
ド(nt型)溶液(タンパク質1 nJi’/100μ
t、FP4,940の例1に記載されているようにして
調製)100μtと一夜インキユベートする。生成した
抗原−抗体複合体を、ヒツジまたは他の種からの抗−マ
ウスエgG血清を加えて沈殿させる。遠心分離し、上清
をデカンテーションで除去し、ついで沈殿した放射能量
をガンマシンチレーションスはクトロメーターで測定す
る。
実施例 4 抗体の放射性標識 ドイツ特許出願p5,71a、6515の例2に記載さ
れたようにして得られた七ツクローナル抗体PII[P
 296または他の抗体α2gqを(b05Mリン酸緩
衝液pH7,4中に含有する溶液CL2−をポリスチレ
ン検定管(b2X55mm)に取、9,10μ/!、の
CL5Mリン酸緩衝液pH7,4で緩衝化した1 00
 MBqのN、125工溶液を加える。20μ9のクロ
ラミンTの水溶液50μtを加え、1分間混合する。つ
いで20μ9の亜硫酸ナトリウム水溶液50μtを加え
てヨード化反応を停止させる。次に、陰イオン交換樹脂
上クロマトグラフィーに付して、未反応N、125Iを
125ニ一標識抗体から除去する。
精!!!1125ニー標識抗体を含むクロマトグラフィ
ー分画を、1tの[105M)リス塩酸塩、−aO中に
209のツイーン20および14.6gのNa2ED′
rAを溶解した液で希釈して標識抗体の濃度が200μ
m1/lになるようにする。
実施例 5 検定管の抗体によるコーティング 抗体をポリスチレン検定管(b2x75麿)に固定化す
るには、(LOIMリン酸ナトリウム緩衝液。
p!(6,4中4η/lの抗体たとえばPIIIP 2
26の溶液300μtを各検定管に取υ、室温で一夜イ
ンキユベートする。ついで吸引して抗体溶液を除去し、
α05Mトリス−クエン酸塩、 p[17,5中つシ血
清アルブミン1%濃度溶液500μtを各検定管に加え
る。室温で一夜インキュベーション後、溶液を吸引して
除去する。抗体でコーティングされた検定管をシリカゲ
ルで乾燥させる。
実施例 6 イムノラジオメトリックアッセイ(ラジオイムノメトリ
ックアツセー、工RMA ) 分析用サンプルまたはプロコラーゲンペプチド(III
型)標準液CLIMtを、実施例5に記載したようにし
てモノクローナル抗体PIIIP 226でコーティン
グしたポリスチレン検定管中で、リン酸緩衝食塩水(P
BX) l 1−とともに、室温で2時間インキュベー
トする。次に検定管を各回1−のPB8で2回洗浄する
。ついで200μtの125ニ一標識抗体pmp296
(−抗体40 ng)または他の抗原を検定管に取シ、
室温で2時間インキュベートする。検定管壁に結合した
抗体−抗原−125ニ一抗体複合体の放射能は、各回1
−のPBX3で2回洗浄しついでデカンテーションした
のちガンマシンチレーションスペクトロメーターで測定
する。
次に異なる量のプロコラーゲンペプチド(III型)を
含む標準液を用いて作成した検量プロットと比較するこ
とによシ未知サンプル溶液中のプロコラーゲンペプチド
(III型)の濃度の計算が可能になる。第1図にはイ
ムノラジオメトリックアッセイの検量プロットを示す(
B/々は結合放射能と使用した総放射能の比を意味する
)。
実施例 7 PlnP 226と反応するヒト血清中の抗原の分子量
分布の測定 血清1−を、1104%の非イオン界面活性剤たとえば
ポリエトキシ化ンルビタンモノラクレート(ツイーン2
0)を含有するPBEIで平衡化したN、N’−メチレ
ンビスアクリルアミド架橋アリルデキストラン上〔セフ
ァクリル■5300カラム(b,6x150cr1M)
)ゲル濾過クロマトグラフィーによって分画する。各[
1L2rntの分画を個々に、検討すべき抗体の標識抗
原量に関して制限される量(緩衝液α1ゴ中)およびα
1−の125ニー標識プロコ2−ダンはプチド(III
凰) (bngのタンパク質を含む)と% 4℃で一夜
インキユベートする。次に、予め検定した量のヒツジか
らの抗−マウスIgG血清と10俤ポリエチレングリコ
ール(pxo6000)の存在下に1時間インキュベー
トする。沈殿した抗原−抗体複合体を遠心分離しく15
00X&)、デカンテーションしたのチ、カンマシンチ
レーションスヘクトロメーター中で放射能を測定する7
ついで、異なる量のプロコラーゲンペプチド(III型
)を含む標準溶液を用いて作成した検量プロットと比較
することによシ、使用した抗体と反応する抗原のクロマ
トグラフィー分画中の濃度測定することが可能である。
第2図にPIIIP 226を用いて測定される抗原の
溶出像を、ポリクローナル抗体を用いて測定される抗原
の溶出像と比較して示す。
【図面の簡単な説明】
第1図は本発明の定量方法に用いられるPIIIPを含
む標準液で作成した検量曲線の例である。 第2図および第5図はそれぞれ、モノクローナル抗体P
luP 226およびPIIIP 296の反応パタン
をポリクローナル抗体のそれと比較した図である。 外2名

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1)完全プロコラーゲン(III型)およびpN−コラー
    ゲン(ピーク1a)、完全アミノ末端プロコラーゲンペ
    プチド(III型)(ピーク2a)、分子量がアミノ末端
    プロコラーゲンペプチド(III型)の分子量とcol1
    の分子量の間にあるアミノ末端プロコラーゲンペプチド
    (III型)の分解生成物(ピーク3a)、ならびにco
    l1およびcol1と同じ分子量をもつアミノ末端プロ
    コラーゲンペプチド(III型)の分解生成物(ピーク4
    a)に対して第2図に描かれた反応パタンを有するモノ
    クローナル抗体。 2)col1には存在しないアミノ末端プロコラーゲン
    ペプチド(III型)のエピドープに対して特異的活性を
    有する請求項1に記載のモノクローナル抗体。 3)IgGクラスに属する請求項1または2に記載のモ
    ノクローナル抗体。 4)ミエローマ系の細胞と予めアミノ末端プロコラーゲ
    ンペプチド(III型)で免疫感作された動物からのリン
    パ球細胞との細胞融合によつて生成するハイブリドーマ
    によつて形成される請求項1から3までの1以上に記載
    のモノクローナル抗体。 5)ハイブリドーマ細胞系統ECACC8803020
    2のモノクローナル抗体PIIIP226。 6)ミエローマ細胞系統からの細胞と、予めプロコラー
    ゲンペプチド(III型)で免疫感作した動物からのリン
    パ球細胞との細胞融合によつて形成された、請求項1か
    ら5までのいずれかに記載の抗体を産生するハイブリド
    ーマ細胞系統。 7)ハイブリドーマ細胞系統ECACC8803020
    2。 8)(a)動物をアミノ末端プロコラーゲンペプチド(
    III型)で免疫感作し、(b)リンパ球細胞を採取して
    ミエローマ細胞と融合させ、(c)請求項1から3まで
    のひとつに指示した性質を有する抗体の存在によつてハ
    イブリドーマを選択してクローン化し、(d)このクロ
    ーンから抗体を得ることからなる請求項1から5までの
    1以上に記載のモノクローナル抗体を製造する方法。 9)工程(d)の実施にはハイブリドーマ細胞系統EC
    ACC88030202を使用する請求項8に記載の方
    法。 10)(a)アミノ末端プロコラーゲンペプチド(III
    型)またはプロコラーゲン(III型)を含有する液体サ
    ンプルを請求項1から5までの1以上に記載のモノクロ
    ーナル抗体と反応させ、(2)アミノ末端プロコラーゲ
    ンペプチド(III型)またはプロコラーゲン(III型)の
    量を生成した抗原−抗体複合体を介して測定することか
    らなる抗体を用いるプロコラーゲンペプチド(III型)
    の免疫学的定量方法。 11)(a)請求項1から5までの1以上に記載のモノ
    クローナル抗体を固体マトリックスにカップリングさせ
    、(b)アミノ末端プロコラーゲンペプチド(III型)
    またはプロコラーゲン(III型)を含有する液体サンプ
    ルを上記抗体と反応させ、(c)結合した抗原を、プロ
    コラーゲンペプチド(III型)またはプロコラーゲン(
    III型)に対する特異性を有する標識モノクローナルま
    たはポリクローナル抗体によつて検出することからなる
    抗体を用いるプロコラーゲンペプチド(III型)の免疫
    学的定量方法。 12)プロコラーゲンペプチド(III型)および/また
    はプロコラーゲン(III型)に対する特異性を有するポ
    リクローナルまたはモノクローナル抗体を工程(a)に
    使用し、請求項1から5までの1以上に記載の標識モノ
    クローナル抗体を工程(c)に使用する請求項11に記
    載の方法。 13)工程(b)に使用するモノクローナル抗体は、完
    全プロコラーゲン(III型)およびpN−コラーゲン(
    ピーク4a)、完全アミノ末端プロコラーゲンペプチド
    (III型)(ピーク5a)ならびにcol1およびco
    l1と同じ分子量をもつアミノ末端プロコラーゲンペプ
    チド(III型)の分解生成物(ピーク6a)に対して第
    5図に抽かれた反応パタンを有する抗体である請求項1
    1に記載の方法。 14)工程(a)に使用するモノクローナル抗体は、完
    全プロコラーゲン(III型)およびpN−コラーゲン(
    ピーク4a)、完全アミノ末端プロコラーゲンペプチド
    (III型)(ピーク5a)ならびにcol1およびco
    l1と同じ分子量をもつアミノ末端プロコラーゲンペプ
    チド(III型)の分解生成物(ピーク6a)に対して第
    5図に抽かれた反応パターンを有する抗体である請求項
    12に記載の方法。 15)使用するモノクローナル抗体はハイブリドーマ細
    胞系統ECACC87042308のPIIIP296で
    ある請求項13または14に記載の方法。 16)請求項1から5までの1以上に記載のモノクロー
    ナル抗体の有効量を、単独または他の抗体と組合せて、
    診断的に許容される担体と混合して含有する、体液中の
    プロコラーゲンペプチド(III型)の量を確立するため
    診断用組成物。
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