JPH02142461A - 回転式生化学反応装置 - Google Patents

回転式生化学反応装置

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JPH02142461A
JPH02142461A JP29460688A JP29460688A JPH02142461A JP H02142461 A JPH02142461 A JP H02142461A JP 29460688 A JP29460688 A JP 29460688A JP 29460688 A JP29460688 A JP 29460688A JP H02142461 A JPH02142461 A JP H02142461A
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JP
Japan
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stirring
culture
stirring tank
inner shell
inner cylinder
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JP29460688A
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English (en)
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Iori Aoki
青木 五百里
Kimiaki Yasuda
公昭 安田
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AGURO SYST KK
SAKAI ENG KK
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AGURO SYST KK
SAKAI ENG KK
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M27/00Means for mixing, agitating or circulating fluids in the vessel
    • C12M27/14Rotation or movement of the cells support, e.g. rotated hollow fibers
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M27/00Means for mixing, agitating or circulating fluids in the vessel
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    • C12M27/22Perforated plates, discs or walls
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は通気攪拌槽型バイオリアゲタ−に属する回転式
生化学反応装置に関するものである。
〔従来の技術〕
従来から用いられている縦型攪拌研の欠点は攪拌並びに
エアー供給に要する動力が大きいことや攪拌羽根の剪断
力によって糸状菌や放M菌の菌糸が切断され細胞が損傷
を受は易いなどの点であった。
通気攪拌槽は、好気的微生物反応器としては最も普及し
た形式である。攪拌羽根として平羽根タービンか、若し
くは下羽根タービンを使用する。
実験室規模の反応器では攪拌羽根は普通1段であるが、
工業規模の反応器では2段以上取り付ける。
攪拌羽根を取り付ける軸の支持部は、無菌シールにしな
れけばならない、邪魔板を4枚ないし6枚取り付け、ス
パージャ−またはノズルより無菌空気を吹き込み、ジャ
ケット若しくは蛇管により温度調節する0反応器の70
〜80%しか液を仕込まないが、運転時にはガスのホー
ルドアツプと泡のため液面は可成り上まで来る。培養液
は泡立ち易いので、機械的に破泡するか消泡剤を加えて
消泡させる。反応器内で培養液を直接蒸気吹込みによっ
て滅菌する場9合は、蛇管は滅菌後の冷却に見合うだけ
の伝熱面積を持たせる。反応中の発熱は、微生物反応熱
と攪拌による粘性応力エネルギーの散逸に出来する。回
分操作では萌者は成る時点でピークとなるから、この最
大値が基準となっていた。
〔発明が解決しようとする課題〕
通気攪拌槽は、 (1) pl+や温度制御を行ない易い、(2)スケー
ルアップ方策がほぼ確立している、(3) C5TRに
適する、 などの利点を有しているが、反面法の様な欠点がある。
(1)攪拌及び通気に要する動力が大きい。
(2)内部構造が複雑になるため、装置内の洗浄が不充
分となり、雑菌lη染され易い、また、無菌シールをし
ているとはいえ、雑菌汚染の恐れを生ずる軸受が存在す
る。
(3)糸状菌培養では攪拌羽根の剪断力によって菌糸が
切断され、細胞が損傷を受は易い。
(1)の欠点を補う方式として横型通気槽1゛P4曹が
考案され、実用化されている。(2)の欠点は、通気攪
拌槽の有する本質的な欠陥であり、装置の性能向−にを
計れば、内部構造物の複雑性は避けられない。(3)の
欠点を改善する方式は、攪拌タービンの形状を工夫する
方向で種々検討されている。
しかしながら、実用的なノ、(質拡散効率及び酸素移動
速度係数を有し、剪断応力の小さい攪拌タービンは未だ
発明されていないのが現状である。
機械的攪拌によるこの問題に関しては、攪1゛1もター
ビンを用いる限りに於いては、該欠点は解決出来ないで
あろう、何故ならば、普及型通気攪拌槽のモーター駆動
による基質攪拌方式は攪拌効率を向上させることと攪拌
タービンが発生させる剪断応力の強さとの間に正比例の
関係があるからである。また、攪拌タービンを高回転で
運転する大きな「1的の一つは酸素移動速度係数を一4
二げることにあるが、タービンの高回転による剪断応力
を低回転にしてその応力を低下させる手段として、スパ
ージャ−やノズルからのエアの供給方式以外に微小バブ
ルを生成させる他の手段を考案する必要がある。
〔課題を解決するための手段〕
本発明は上記欠点を改善するために、横型攪拌槽を考案
し、更に普及型横型攪拌槽に装備されている攪拌羽根・
攪拌方式に代わる内胴回転方式を採用したことを特徴と
する装置に関するものである。
本発明の装置は、微生物(細菌、放線菌、酵母。
糸状iW)を固定した担体或いは微生物フロックを生体
触媒として利用する生化学反応に於いて、上記課題を改
善する手段を提案し得る。即ち、第1図に示す如く、横
型攪(゛ト槽に回転体の内胴を設け、その中に担体或い
は微生物フロックを充填する方式を採る。内胴は空VX
率の高いメツシュ様枯造物から成り、メツシュ径は担体
或いは微生物フロックが内+1)1から漏れない程度に
する。内III!は、円筒状、長方体などの培養種に応
した形状を採るものとし、内服の素材は同様に培養種に
よってステンレスからガラスやポリカーボネートに至る
迄適宜応用出来る。培養基質は、横型攪拌槽の外部に設
けた循環ポンプにより、循環用パイプを通じて外胴より
内jル1へ心びかれる。循環用パイプは、循環ポンプの
他に熱交換器とエアーミキサーを付Jj!′L、微/J
\エアーバブルの供給と培養61λ度の制御を行なう。
また、エアー供給量及び基質循環量を制御することによ
って、内胴内に於ける基質攪拌及び担体や微生物フロッ
クへのN!素供給を制御出来ろ。
更に、内胴をg!l!Itにより回転II動させること
により、より完全な攪拌混合を可能にし、担体や微生物
フロックへ与える剪断応力は著しく小さいものとなる。
勿論、内胴の回転速度を上げれば攪拌効率は増大するが
、酸素供給方式としてエアーミキサーを採用しているた
めに、悴及型通気攪拌槽に採用されている攪拌タービン
の如く高回転速度を維持する必要は無い。本装置に於け
るエアーミキサーの採用を可能としたのは、粒状固形物
を全て内胴に封入したために、循環基質が固形粒子フリ
ーとなり、エアーミキサー内の目詰まりを防止出来たた
めである。この攪拌槽へのインプットやアウトプット(
エアー供給、基質供給、消泡剤供給。
pl+制御、植苗、基質交換、排気など)は、バルブや
フィルターなどの周辺機器を所定の生物工学用器材で装
備することによって無菌的に行なうことが出来る。
本発明の装置の攪拌効率と剪断応力を明らかにする目的
で、普及型の攪拌槽であるジャーファメンター(いわし
や社1L3Q容量)と本装置の同容景の小型試験機を用
いて性能比較試験を行なった。攪拌効率は、亜硫酸酸化
法による一般的な手法を用い酸素移動速度係数で表現し
、剪断力はカラギーナン・ゲル化粒子を用い剪断応力に
よる破砕の度合を粒度分布で明らかにした。先ず亜硫酸
酸化法による酸素移動速度を比較するため、両装置の実
験条件を同一にした。即ち、エアーの供給量を0.2v
vmにし、実験温度を30℃に設定し、基質容量を2Q
にした。ジャーファメンターの攪拌装置は、フラット・
タービンとパドル羽根を用いた。
この実験結果を第2図に示す8図から明らかな様に、4
0 m jIIoQ O,/ Q −hrの酸素移動速
度を達成するには、本装置では15rpm、フラット・
タービンでは260rpn+、パドル羽根では実に46
0rpn+を必要とする。また、カラギーナン・ゲル化
粒子を用いた攪拌効果による破砕実験の粒度分布分析結
果(第3図)から、本装置とジャーファメンターのパド
ル羽根は剪断応力が小さいことが判明した。
実験条件はエアー供給量0.5vv+a、実験温度30
℃。
基質量2Q、攪拌時間24時間とした。カラギーナン粒
子が破砕されない攪拌回転数は、本装置に於いては11
00rpであり、フラット・タービンでは50rpm以
下、パドル羽根では150rpm以下となった。
ジャーファメンターに於いては、如何なる攪拌形状のタ
ービンを用いても、上記程度の攪拌では酸素移動速度は
2〜311IloQO□/Q−hrであり、この攪拌回
転数では好気醗酵に於ける適正培養条件を創出すること
は不可能である。特に、低い剪断力の下で好気的培養を
行なう必要がある動・植物細胞培養やゲル粒子に包括し
た好気生機生物の増殖型固定化担体を用いた醗酵には1
本発明の装置が有用であると考えられる。
本発明は、動・植物細胞培養及び酵素や微生物を固定し
た担体を用いて生化学反応を触媒させる試験、研究およ
び産業分野に利用される。
〔実施例〕 実施例1 糸状菌の1種である黒麹菌(アスペルギルス・ニガー、
J CM  5548株)をセルローススポンジ担体に
着生固定させ、粗糖を炭宏源としてクエン酸発酵を試み
た。
本発明の3Ω容小型試験装置に、種培養用のノん質(a
糖 2%、硫安 0.25%、KH□PO40,1%。
M Ps 304・7)1,0 0.04%)と3鵬角
のセルローススポンジの体積比が1=1になる様に調整
して、全容積を2Qとし、121℃で1時間の湿熱滅菌
後、放冷し、上記菌の胞子を10’/dの密度になる様
に接種した。培養温度を25℃に設定し、 20rpv
aの内胴回転数で0.lvvmのエアー供給を行ない、
3日間種培養をした。菌体は全てセルローススポンジ上
に発育し、基質中に菌体の漏出は認められなかった。
種培養終了後に菌体の着生した担体を残し、種培養基質
を除去し発酵用基質(粗糖 14%、KlシPO41%
、M gS (14・71120 0.04%)を無菌
的に1Ω添加し、同様に2Orpmの内胴回転数で6日
間バッチ式培養を行なった。培養温度を30’Cに設定
し、エアーの供給量をO,lvvmとした。上記条件下
の培養で、消費糖のクエン酸転換効率は86%であった
実施例2 放線菌の1種であるストレプトマイセス・グリセウス(
ATCC2334株)をセルロース・スポンジ担体に着
生固定させ、本発明の装置を用いてストリプ1〜マイシ
ンの生産をバッチ式培養法で試みた。
1.4Qの種培養基質(ブドウ糖 1%、酵母エキス1
%)を本発明の3Q容/h型試験装置に添加し、121
℃で1時間の湿熱滅菌を行なった後、放冷し、別に三角
フラスコ(5〇−容で200ai!の基質量)で培養し
た上記菌株を接種した。 20rpmの内用回転数で、
30℃、2日間種培養した後、無菌的に311w11角
のセルロース・スポンジ担体を添加し、培養全容積を2
aに調整した。更に2日間種培養を継続し、菌体を担体
に着性固定させた。
種培養終了後に、着生固定した担体を残し、種培養用基
質を除去した。発酵用基質(IQ当りブドウ糖 20 
g 、 MgSO4・711,0 10g、クエン酸ナ
トリウム log 、 NaCQ  5 g %CaC
Q2・28200.3g、 Kll、PO40,5に、
 FeSO4・711.0 2mg。
CLISO4・5H201■、znS04・77H2O
1r:、Nt11MoO4・2H,00,Jmgを含有
する)を無菌的に添加し、同様に20rp’mの内用回
転数で25℃、7日間培養した。ストレプトマイシンの
測定はディスク拡散法で行なった。その結果、培養7日
目で240犀/−の濃度のストレプトマイシンが生産さ
れた6実施例3 ムラサキ(リンスパーマム・エリスロリゾン)の根(紫
根)は、殺菌作用と創傷治癒作用を示す赤紫色のシコニ
ン系化合物を含有し、1キから高級染料や医薬品として
用いられて来た。本実施例に於いては、常法に従ってプ
ロトプラスト法によってシコニン系化合物を高生産する
ムラサキの細胞培養株を選抜した該選抜株のカルスを、
本発明の装置を用いて培養しシコニンの生産を試みた。
先ず、該選抜株のカルスを前以て大量培養し、そのlO
g(乾燥重量換算)を次表に示す。
表 シコニン生産に用いる培地組成(■/Q)組成  
   増殖用培地   生産用培地Nll、 NO,、
500 KN0.           1900      
  8ONaNO,、2480 Q3 (NOa ”)x・41(,0694Nal12
P04・2120                1
9に11□PO4170 にCQ                      
   650a2・211□0150 融SO4・7H,0120750 融CQ2・611□0203 Na、5o41480 FeSO,・7H2028 Mn5O,・411□0        22ZnSO
,・711.0        9         
3NaFe−EDTA−2 Naz−EDTA          37++、80
,2        4.5CuSO,・5H200,
0250,3Na2MoO,・211,0      
 0.25蔗糖         3X10’    
  3X10’イノシトール     100    
  100チアミン・HCQ       0.4増殖
用培地2Qを入れた本発明の小)(!試験装置に無菌的
に添加し、9日間培養した。培養Vr1度を25℃とし
、内胴の回転数をlOrpmに設定しエアーは0,5v
vm供給した。増殖培養終了後に増殖用培地を除去し、
次表に示す生産用培地の3/41:1度を2Q添加した
。生産培養期間を14日に設定し、その間漸次、生産用
培地をフィードし、生産培養終了時の144日目は、そ
の濃度が473になる様に調整した。本装置の運転条件
は増殖培養と同様にした。
カルスの培養期間の合計を23日間に設定したが、その
間のカルスの増加量は、カルスの小塊が不均一に培養基
中に分散するために1lll定出来ず、培養終了時に乾
燥重量を測定した。またカルス中のシコニン化合物の定
量は、常法に従いカルスをCHCQ 、溶液中で磨砕し
、1日暗所に静置した後、Mg5o4を加えて濾過し、
エバポレーターでd5縮した。a相液は、KO11溶液
でアルカリ性にし、(i22nmで分光分析した。
23日間の増殖培養および生産培養の結果、カルスは乾
燥重量で42g/2Qに増!孜し、その増加皐は仕込細
胞重量の4.8倍に相当した。また、シコニン系化合物
収量は6.280■/2Qに達し、23日間の培養期間
中、培養液中にはカルスの破片の小さな浮遊物は殆んど
発生しなかった。之はカルスが受ける本装置の攪拌によ
る剪断応力が著しく小さかったことを示唆し1本発明の
装置は植物の組織培養に適すると断定出来る。
〔発明の効果〕
本発明装置は従来用いられていた縦型攪拌槽に代えて横
型攪拌槽とし、内周回転方式を採用することによって攪
拌及び通気に要する動力を節減し。
攪拌羽根の使用を取除いたので羽根の剪断力による菌糸
の切断、M胞の損傷を防止出来た。
【図面の簡単な説明】
第1図は本発明に成る回転式生化学反応装置の説明用フ
ローシー1−であり、第2図は夫々の攪拌方式による攪
拌効率を回転数と酸素移動速度とで表わした図であり、
第3図は攪拌回転数とカラギーナン・ゲル粒子の粒度分
布を示す図である。 図中、 1・・外胴 2・・内胴 3・・担体 4・・滅菌培地貯槽 5・・空気 6・・フィルター 7・・エアミキサー 8・・熱交換器 9・・培地@環ポンプ 10・・排気 ll・・フィルター 12・・ミストセパレーター 13・・内用回転用原動 a・・回転式リアクター攪拌方式 b・・フラノ1−タービン攪拌方式 C・・パドル羽根攪拌方式

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 1 横型攪拌槽内に、円筒状、長方体などの空隙率の高
    いメッシュ様構造物の内胴を有し、内胴のメッシュが細
    菌、放線菌、酵母、糸状菌などの微生物或いは各種の酵
    素を固定した担体や微生物フロック或いは動・植物細胞
    の小塊が漏れない程度の口径を有し、循環ポンプを横型
    攪拌槽の外部に設けられてあつて培養基質を循環用パイ
    プを通じて外胴より内胴に導びく構造であり、循環用パ
    イプが循環ポンプの他に熱交換器とエアーミキサーを付
    帯していて微小エアーバブルの発生と供給および反応温
    度の制御も可能ならしめてあり、完全攪拌混合を著しく
    低い剪断力の下で行なうことを可能ならしめた回転式生
    化学反応装置。
JP29460688A 1988-11-24 1988-11-24 回転式生化学反応装置 Pending JPH02142461A (ja)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100398932B1 (ko) * 2000-09-21 2003-09-22 한국해양연구원 기포발생기를 이용한 동물플랑크톤 섭식률 측정기

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