JPH02188532A - リポソームワクチン - Google Patents
リポソームワクチンInfo
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- JPH02188532A JPH02188532A JP923689A JP923689A JPH02188532A JP H02188532 A JPH02188532 A JP H02188532A JP 923689 A JP923689 A JP 923689A JP 923689 A JP923689 A JP 923689A JP H02188532 A JPH02188532 A JP H02188532A
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Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
- A61K9/1271—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers
- A61K9/1272—Non-conventional liposomes, e.g. PEGylated liposomes or liposomes coated or grafted with polymers comprising non-phosphatidyl surfactants as bilayer-forming substances, e.g. cationic lipids or non-phosphatidyl liposomes coated or grafted with polymers
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- Health & Medical Sciences (AREA)
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- Veterinary Medicine (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
り東上の■貝盆!
本発明は、リポソームワクチン、より詳しくは癌細胞表
面に顕在する抗原提示糖蛋白質を特定のリポソームに再
構成させてなるリポソームワクチンに関する。
面に顕在する抗原提示糖蛋白質を特定のリポソームに再
構成させてなるリポソームワクチンに関する。
i区反丘点ヱ五J旦荒
1960年中期に英国のパンガム(Bangham)が
天然物由来のリン脂質を水中に再分散させたとき、細胞
の形質膜と同じ基本構造の二分子膜が形成され、これが
細胞のバルク構造と同じ閉鎖型小胞形態を有することを
見出して以来、該小胞は脂質(lipid )からなる
小胞(some )という意味からリポソーム(l i
posome )と呼ばれ、膜モデルとして乃至はマ
イクロカプセルとして、膜の流動性やバリヤー能(膜透
過障壁)等の細胞膜構造特性の研究材料や、また凝集、
融合等の細胞の動物機能研究等に広く利用され盛んな研
究が展開されてきている。
天然物由来のリン脂質を水中に再分散させたとき、細胞
の形質膜と同じ基本構造の二分子膜が形成され、これが
細胞のバルク構造と同じ閉鎖型小胞形態を有することを
見出して以来、該小胞は脂質(lipid )からなる
小胞(some )という意味からリポソーム(l i
posome )と呼ばれ、膜モデルとして乃至はマ
イクロカプセルとして、膜の流動性やバリヤー能(膜透
過障壁)等の細胞膜構造特性の研究材料や、また凝集、
融合等の細胞の動物機能研究等に広く利用され盛んな研
究が展開されてきている。
上記リポソームは、両親媒性脂質分子の非共有結合性集
合体であり、このことがら脂溶性(疎水性)分子の膜内
への侵入、イオン吸着、温度変化に伴う脂質膜のゲル−
液晶相転位、内外水相間の浸透圧バランスの崩れ等の物
理化学的摂動を起こすことはもとより、脂質分子の化学
的・酵素的分解、不飽和脂質の過酸化等による膜構造の
不安定化を起こし、それと共に水の膜外流出、膜内流入
や、膜内に存在させてカプセル化された水溶性薬剤、特
に低分子薬剤の漏出をも起こし得、之等の点より、例え
ば組織指向性薬物運搬体、人工赤血球、細胞修飾剤、酵
素固定化基材、人工細胞等として医薬品分野を初めとす
る各種の分野で積極的利用が大いに期待されてきた。し
かるに、従来のリポソームは、この水溶性物質のカプセ
ル化効率、保持能力等の低さ、即ちリポソーム膜のバリ
ヤー能の低さを致命的欠点としていた(例えばJ。
合体であり、このことがら脂溶性(疎水性)分子の膜内
への侵入、イオン吸着、温度変化に伴う脂質膜のゲル−
液晶相転位、内外水相間の浸透圧バランスの崩れ等の物
理化学的摂動を起こすことはもとより、脂質分子の化学
的・酵素的分解、不飽和脂質の過酸化等による膜構造の
不安定化を起こし、それと共に水の膜外流出、膜内流入
や、膜内に存在させてカプセル化された水溶性薬剤、特
に低分子薬剤の漏出をも起こし得、之等の点より、例え
ば組織指向性薬物運搬体、人工赤血球、細胞修飾剤、酵
素固定化基材、人工細胞等として医薬品分野を初めとす
る各種の分野で積極的利用が大いに期待されてきた。し
かるに、従来のリポソームは、この水溶性物質のカプセ
ル化効率、保持能力等の低さ、即ちリポソーム膜のバリ
ヤー能の低さを致命的欠点としていた(例えばJ。
sunamoto andに、Iwamoto、 CR
CCr1tical Review。
CCr1tical Review。
2.2,117 (1986)参照〕。
上記従来のリポソームの欠点は、リポソーム膜中に膜蛋
白質等を組込むことにより解消されると考えられるが、
これはリポソーム膜中での膜蛋白質の保持、安定性の面
で必ずしも満足できるものではなかった〔例えばS、L
、C00k、 S、R,BOuma。
白質等を組込むことにより解消されると考えられるが、
これはリポソーム膜中での膜蛋白質の保持、安定性の面
で必ずしも満足できるものではなかった〔例えばS、L
、C00k、 S、R,BOuma。
W、H,Huestis、 Biochemistry
、 19.4601(1980)参照〕。
、 19.4601(1980)参照〕。
本発明者らも従来より上記リポソームの構造強化と分子
認識機能発現とを同時に達成し得る技術を提供すること
を目的として鋭意研究を重ねてきたが、その過程で天然
にあける境界脂質の一種と考えられているスフィンゴミ
エリンの部分構造アナログとして、アシル鎖中にアミド
結合を有する1、2−ジミリストイルアミド−1,2−
デオキシホスファチジルコリン(以下rDDPcJとい
う)を設計合成し、これがアミド結合に由来する二分子
膜中での水素結合帯形成によって極めて安定な二分子膜
を形成することを見出し、この知見に係わる発明を完成
し特許出願した〔特開昭61−267509@公報〕。
認識機能発現とを同時に達成し得る技術を提供すること
を目的として鋭意研究を重ねてきたが、その過程で天然
にあける境界脂質の一種と考えられているスフィンゴミ
エリンの部分構造アナログとして、アシル鎖中にアミド
結合を有する1、2−ジミリストイルアミド−1,2−
デオキシホスファチジルコリン(以下rDDPcJとい
う)を設計合成し、これがアミド結合に由来する二分子
膜中での水素結合帯形成によって極めて安定な二分子膜
を形成することを見出し、この知見に係わる発明を完成
し特許出願した〔特開昭61−267509@公報〕。
上記出願に係わるスフィンゴミエリン含有リポソームは
、生体投与時でもその安定性は、通常のホスファチジル
コリンリポソームよりも優れており、更にDDPCは天
然のスフィンゴミエリンよりも構造的に単純で、また二
分子膜中での水素結合帯の形成により、ホスファチジル
コリンと混合するのみで脂質分子膜の構造安定性を向上
できるものであり、人工細胞等の用途としてより有効な
ものと考えられた〔例えばM、GOlO,)1.Ara
kaWa。
、生体投与時でもその安定性は、通常のホスファチジル
コリンリポソームよりも優れており、更にDDPCは天
然のスフィンゴミエリンよりも構造的に単純で、また二
分子膜中での水素結合帯の形成により、ホスファチジル
コリンと混合するのみで脂質分子膜の構造安定性を向上
できるものであり、人工細胞等の用途としてより有効な
ものと考えられた〔例えばM、GOlO,)1.Ara
kaWa。
■、Sat、、 H,にondo、 J、Suna
moto、 Chem、Cett、。
moto、 Chem、Cett、。
1旦、1935 (1987)参照)。
本発明者らは、上記出願に係わるリポソームの応用面の
研究を更に引き続き重ねた結果、従来より細胞間の情報
伝達に極めて重要な役割を演じており、特に癌の免疫療
法において古くから注目されてはいるが、いまだ有効な
抗原として確立されていない癌細胞表面の抗原提示糖蛋
白質(TtlmOrSurface Antigen
Present Protein、以下rTsAPJと
略記する)に着目し、これを上記リポソームに再構成し
た結果、得られるリポソームはワクチンとして非常に有
効であり、その適用によって癌の新しい治療法が確立で
きることを見出し、ここに本発明を完成するに至った。
研究を更に引き続き重ねた結果、従来より細胞間の情報
伝達に極めて重要な役割を演じており、特に癌の免疫療
法において古くから注目されてはいるが、いまだ有効な
抗原として確立されていない癌細胞表面の抗原提示糖蛋
白質(TtlmOrSurface Antigen
Present Protein、以下rTsAPJと
略記する)に着目し、これを上記リポソームに再構成し
た結果、得られるリポソームはワクチンとして非常に有
効であり、その適用によって癌の新しい治療法が確立で
きることを見出し、ここに本発明を完成するに至った。
問題7.を 決するための手r
即ち、本発明は癌細胞表面に顕在する抗原提示糖蛋白質
(TSAP>を、1,2−ジミリストイルアミド−1,
2−デオキシホスファチジルコリン(DDPC)を含む
リポソームに再構成させてなることを特徴とするリポソ
ームワクチンに係わる。
(TSAP>を、1,2−ジミリストイルアミド−1,
2−デオキシホスファチジルコリン(DDPC)を含む
リポソームに再構成させてなることを特徴とするリポソ
ームワクチンに係わる。
本発明ワクチンは、これを生体に投与することによって
生体を免疫化させ得、かくして生体の癌に対する抵抗性
を強化し、もって癌の新しい予防及び治療法を確立でき
る。即ち、本発明ワクチンで免疫化された生体は癌細胞
の陵内移植試験によっても全く発癌及び癌細胞の増殖を
認めず、優れた免疫効果を奏し得る。
生体を免疫化させ得、かくして生体の癌に対する抵抗性
を強化し、もって癌の新しい予防及び治療法を確立でき
る。即ち、本発明ワクチンで免疫化された生体は癌細胞
の陵内移植試験によっても全く発癌及び癌細胞の増殖を
認めず、優れた免疫効果を奏し得る。
本発明はかかる優れた免疫効果を奏し得るリポソームワ
クチンの製造方法をも提供するものであり、また本発明
ワクチンは癌診断用抗体の調製にも非常に有効である。
クチンの製造方法をも提供するものであり、また本発明
ワクチンは癌診断用抗体の調製にも非常に有効である。
以下、本発明リポソームワクチンにつき、これをその製
造法より詳述すれば、該ワクチンはTSAPを、DDP
Cを含むリポソームに再構成させることにより製造でき
る。
造法より詳述すれば、該ワクチンはTSAPを、DDP
Cを含むリポソームに再構成させることにより製造でき
る。
ここで使用されるTSAPは、各種の癌細胞より通常の
方法により調製することができる。その起源とする癌細
胞も特に限定されるものではなく、各種動物、ヒトの再
移植性癌細胞、癌患者等から手術等により切除された癌
細胞乃至白血病細胞のいずれでもよい。特に好ましい代
表的癌細胞としては、例えばマウス白血病細胞(Bal
b RVD) (例えばH,Morishita、
H,5hiku、に、Horibe、 Y、0bata
。
方法により調製することができる。その起源とする癌細
胞も特に限定されるものではなく、各種動物、ヒトの再
移植性癌細胞、癌患者等から手術等により切除された癌
細胞乃至白血病細胞のいずれでもよい。特に好ましい代
表的癌細胞としては、例えばマウス白血病細胞(Bal
b RVD) (例えばH,Morishita、
H,5hiku、に、Horibe、 Y、0bata
。
E、5tockert、 H,T、Oettgen、
L、J、Old、に、 Yamada。
L、J、Old、に、 Yamada。
J、Exp、Med、、163.452 (1986)
参照))を例示できる。2等癌細胞からのTSAPの調
製は、代表的には通常の細胞膜糖蛋白質の抽出操作に従
うことができる。該抽出操作に利用される溶媒も特に限
定されるものではなく、一般的な各種のもの、例えば水
、メチルアルコール、エチルアルコール、プロピルアル
コール、ブチルアルコール等の低級アルコール類等や之
等とPBSとの混液等を利用できる。また上記抽出操作
は、通常O〜50℃の温度条件下に1〜30分間程度イ
ンキュベートすることにより実施され、この抽出後、遠
心分離等の常法により、上清として所望のTSAP抽出
液を得ることができる。該抽出液はまた常法に従い、必
要に応じて適宜減圧濃縮、凍結乾燥、透析等を行なって
更に濃縮精製することもでき、通常2等精製操作の採用
が好ましい。本発明では上記抽出操作及び必要に応じて
更に精製操作を行なって得られるものを利用するが、本
発明のリポソームワクチンの製造におけるTSAPは、
上記抽出等を行なうことなく、起源癌細胞が有するTS
APをそのまま、即ち該癌細胞のまま利用できる場合も
ある。
参照))を例示できる。2等癌細胞からのTSAPの調
製は、代表的には通常の細胞膜糖蛋白質の抽出操作に従
うことができる。該抽出操作に利用される溶媒も特に限
定されるものではなく、一般的な各種のもの、例えば水
、メチルアルコール、エチルアルコール、プロピルアル
コール、ブチルアルコール等の低級アルコール類等や之
等とPBSとの混液等を利用できる。また上記抽出操作
は、通常O〜50℃の温度条件下に1〜30分間程度イ
ンキュベートすることにより実施され、この抽出後、遠
心分離等の常法により、上清として所望のTSAP抽出
液を得ることができる。該抽出液はまた常法に従い、必
要に応じて適宜減圧濃縮、凍結乾燥、透析等を行なって
更に濃縮精製することもでき、通常2等精製操作の採用
が好ましい。本発明では上記抽出操作及び必要に応じて
更に精製操作を行なって得られるものを利用するが、本
発明のリポソームワクチンの製造におけるTSAPは、
上記抽出等を行なうことなく、起源癌細胞が有するTS
APをそのまま、即ち該癌細胞のまま利用できる場合も
ある。
本発明において上記TSAPの再構成に用いられるリポ
ソームは、DDPCを含むリポソームである限り特に限
定されるものではなく、その代表例としては、本発明者
らの先の出願〔特開昭61−267509号公報〕に係
わる方法により得られるものを例示できる。より詳しく
は上記リポソームは、通常のリポソーム形成用リン脂質
と上記DDPCとを利用して、それ自体公知の各種方法
、例えば代表的にはポルテックス法(vortex i
ngmethod又はHydrationmetho
d) (Bangham、A、D、。
ソームは、DDPCを含むリポソームである限り特に限
定されるものではなく、その代表例としては、本発明者
らの先の出願〔特開昭61−267509号公報〕に係
わる方法により得られるものを例示できる。より詳しく
は上記リポソームは、通常のリポソーム形成用リン脂質
と上記DDPCとを利用して、それ自体公知の各種方法
、例えば代表的にはポルテックス法(vortex i
ngmethod又はHydrationmetho
d) (Bangham、A、D、。
5tand + sh、 M、 M。& Watkin
s、J、C,J、Mo1.[5io1.。
s、J、C,J、Mo1.[5io1.。
13.238 (1965))に従って実施できる。
上記リポソーム形成用脂質としては、より具体的には例
えば、大豆、卵黄等から抽出、精製されたレシチン、ス
フイボミニリン等の膜中で水素結合帯形成を行ない得る
アミド基を有する脂質、極性頭部近くにジペプチド結合
を有する合成脂質(DDPC等)、好ましくは卵黄レシ
チン、シミリストイルホスファチジルコリン(DMPC
)等を例示できる。上記に5いて、特に好ましいりボソ
ームは、卵黄レシチンとDDPCとを併用するか又はD
DPCとDMPCとを通常約4:6(重量比〉で併用し
て調製される。
えば、大豆、卵黄等から抽出、精製されたレシチン、ス
フイボミニリン等の膜中で水素結合帯形成を行ない得る
アミド基を有する脂質、極性頭部近くにジペプチド結合
を有する合成脂質(DDPC等)、好ましくは卵黄レシ
チン、シミリストイルホスファチジルコリン(DMPC
)等を例示できる。上記に5いて、特に好ましいりボソ
ームは、卵黄レシチンとDDPCとを併用するか又はD
DPCとDMPCとを通常約4:6(重量比〉で併用し
て調製される。
上記TSAPによるリポソームの再構成は、基本的には
、両者を単に混合することにより、即ち、リポソーム懸
濁液に所定量のTSAP水溶液を添加混合することによ
り実施できる。また癌細胞自体を利用する場合は、上記
と同様にリポソーム懸濁液中に癌細胞の適当量を添加し
てインキュベート後、癌細胞を遠心力!llt等の適当
な手段で除去することにより目的とする所望のリポソー
ムを得ることができる。上記におけるリポソームに対す
るTSAPの添加量は、得られるワクチンの活性発現能
と関連して非常に重要であり、一般には1鵬中のレシチ
ン10111gに対して約200μQの蛋白質量程度と
するのが好ましい。
、両者を単に混合することにより、即ち、リポソーム懸
濁液に所定量のTSAP水溶液を添加混合することによ
り実施できる。また癌細胞自体を利用する場合は、上記
と同様にリポソーム懸濁液中に癌細胞の適当量を添加し
てインキュベート後、癌細胞を遠心力!llt等の適当
な手段で除去することにより目的とする所望のリポソー
ムを得ることができる。上記におけるリポソームに対す
るTSAPの添加量は、得られるワクチンの活性発現能
と関連して非常に重要であり、一般には1鵬中のレシチ
ン10111gに対して約200μQの蛋白質量程度と
するのが好ましい。
かくして得られるリポソームはそのまま本発明リポソー
ムワクチンとして利用できる。勿論必要に応じて、常法
に従い滅菌等の操作を施すこともできる。
ムワクチンとして利用できる。勿論必要に応じて、常法
に従い滅菌等の操作を施すこともできる。
本発明リポソームワクチンは、従来公知の他のワクチン
と同様にして、その所定量を動物に投与することにより
、該動物を免疫化することができる。該ワクチンを適用
され得る動物は特に限定はなく、ヒトを初めとする各種
の哺乳動物、その他の動物のいずれでもよい。また2等
動物の本発明ワクチン投与による免疫化も、一般的方法
に従うことができる。本発明ワクチンの投与経路として
は、皮下注射が一般的であるが、特にこれに限定される
ものではない。上記免疫化に当たっての本発明ワクチン
の投与量は、適宜決定できるが、通常投与量はTSAP
として0.01単位/マウス程度の量を目安とすること
ができる。尚、このTSAP(7)1単(1:、2X1
0’ Ba1b RVDIB胞から抽出される抗原性蛋
白質量として表わされる。上記免疫化は、またワクチン
を約0.01〜10単位/個体となる量で、1〜2週間
に1〜4回程度投与することにより行なわれるのが適当
である。
と同様にして、その所定量を動物に投与することにより
、該動物を免疫化することができる。該ワクチンを適用
され得る動物は特に限定はなく、ヒトを初めとする各種
の哺乳動物、その他の動物のいずれでもよい。また2等
動物の本発明ワクチン投与による免疫化も、一般的方法
に従うことができる。本発明ワクチンの投与経路として
は、皮下注射が一般的であるが、特にこれに限定される
ものではない。上記免疫化に当たっての本発明ワクチン
の投与量は、適宜決定できるが、通常投与量はTSAP
として0.01単位/マウス程度の量を目安とすること
ができる。尚、このTSAP(7)1単(1:、2X1
0’ Ba1b RVDIB胞から抽出される抗原性蛋
白質量として表わされる。上記免疫化は、またワクチン
を約0.01〜10単位/個体となる量で、1〜2週間
に1〜4回程度投与することにより行なわれるのが適当
である。
叉−一厘一一1
以下、本発明を更に詳しく説明するため実施例を挙げる
。
。
実施例 1 リポソームワクチンの調製1 )TSAP
の抽出 10匹のBALB/Cマウス腹腔内で培養したRVD
(白血病細胞〉細胞5〜10x 109fin採取し、
これを11000rpで5分間遠心分離し、細胞ペレッ
トを得た。このベレットに同体積の0.83%NHi
C9水溶液を加えて混在する赤血球を溶血させ、ioo
orpmで5分間遠心分離して除去した。この操作は赤
血球が完全に溶血するまで数回繰返した。
の抽出 10匹のBALB/Cマウス腹腔内で培養したRVD
(白血病細胞〉細胞5〜10x 109fin採取し、
これを11000rpで5分間遠心分離し、細胞ペレッ
トを得た。このベレットに同体積の0.83%NHi
C9水溶液を加えて混在する赤血球を溶血させ、ioo
orpmで5分間遠心分離して除去した。この操作は赤
血球が完全に溶血するまで数回繰返した。
次いで得られた細胞ペレットに2.5%n−ブタノール
−PBS溶液を細胞5X107個当たり1m!J!I添
加して混合し、至瀧で7分30秒インキュベートした。
−PBS溶液を細胞5X107個当たり1m!J!I添
加して混合し、至瀧で7分30秒インキュベートした。
その後、11000rpで5分間遠心分離を行ない、更
に得られた上澄を200Orpmで10分間遠心分離し
、その上澄をTSAPとして得た。
に得られた上澄を200Orpmで10分間遠心分離し
、その上澄をTSAPとして得た。
このTSAP溶液約100〜200鵬を、PLAT限外
濾過機(ミリボア社製)で約5〜10倍に濃縮し、濃縮
液を200倍容量のPBSに対して室温で2時間透析し
て、TSAP濃縮液(138μ(1)TSAP/1単位
/1−)を得た。
濾過機(ミリボア社製)で約5〜10倍に濃縮し、濃縮
液を200倍容量のPBSに対して室温で2時間透析し
て、TSAP濃縮液(138μ(1)TSAP/1単位
/1−)を得た。
2)リポソームの調製
卵黄から文献記載の方法(W、S、Singieton
、H,S。
、H,S。
Gray、H,L、Brown、J、L、White、
J、Ai、OiI Chem、3oc、。
J、Ai、OiI Chem、3oc、。
42.53 <1965))に従い卵黄ホスファチジル
コリン(EUOPC)を抽出し、アルミナカラムを用い
て精製した。その純度はTLCにより確認した。
コリン(EUOPC)を抽出し、アルミナカラムを用い
て精製した。その純度はTLCにより確認した。
また、2,3−ジアミノプロピオン酸から特開昭61−
267509@公報〔砂本順三ら1日本化学会誌、19
87 (3)、 p569−574)記載の方法により
、DDPCを合成した。
267509@公報〔砂本順三ら1日本化学会誌、19
87 (3)、 p569−574)記載の方法により
、DDPCを合成した。
上記EggPCの10.6m(IIとDDPCの7.
Olngとを混合し、ナス型フラスコ中で21!II2
のクロロホルム中に溶解さ、せた。ロータリーエバポレ
ーターを用いてクロロホルムを減圧下に留去し、更に減
圧デシケータ−中で一夜放置した。
Olngとを混合し、ナス型フラスコ中で21!II2
のクロロホルム中に溶解さ、せた。ロータリーエバポレ
ーターを用いてクロロホルムを減圧下に留去し、更に減
圧デシケータ−中で一夜放置した。
次いで得られた溶液をポルテックスミキサー上でPBS
(pH7,38>の111Qに膨潤させ、剥離した。
(pH7,38>の111Qに膨潤させ、剥離した。
その後、UR200Pプローブ型超音波破砕機(トミー
社製)を用いて、窒素ガス気流下に5分間、0℃、25
Wで超音波照射して、所望のリポソーム懸濁液を得た。
社製)を用いて、窒素ガス気流下に5分間、0℃、25
Wで超音波照射して、所望のリポソーム懸濁液を得た。
3)リポソームワクチンの調製
上記1)で調製したTSAP濃縮液1−と上記2)で調
製したリポソーム懸濁液1脱とを混合し、37℃で24
時間インキュベートして、本発明のリポソームワクチン
懸濁液を得た。
製したリポソーム懸濁液1脱とを混合し、37℃で24
時間インキュベートして、本発明のリポソームワクチン
懸濁液を得た。
実施例 2 リポソームワクチンのwA製1)リポソー
ム懸濁液の調製 DMPCの38.OIIigとDDPCの24.0mc
+とを用いて、前記実施例1の2)と同様にして溶液を
調製し、これにP B S 2 mQを加えてポルテッ
クスミキサーをかけ、その後、UR200Pプローブ型
超音波破砕機を用いて、窒素ガス気流下に5分間、37
℃で超音波照射して、所望のリポソーム懸濁液を得た。
ム懸濁液の調製 DMPCの38.OIIigとDDPCの24.0mc
+とを用いて、前記実施例1の2)と同様にして溶液を
調製し、これにP B S 2 mQを加えてポルテッ
クスミキサーをかけ、その後、UR200Pプローブ型
超音波破砕機を用いて、窒素ガス気流下に5分間、37
℃で超音波照射して、所望のリポソーム懸濁液を得た。
2)リポソームワクチンの調製
上記1)で調製したリポソーム懸濁液1.5mlとBa
1b RVDl、5xlO8細胞とを混合し、37°C
で1時間インキュベートした後、0.8μmのフィルタ
ーで細胞とリポソームとを分離して、本発明のリポソー
ムワクチン懸濁液を得た。
1b RVDl、5xlO8細胞とを混合し、37°C
で1時間インキュベートした後、0.8μmのフィルタ
ーで細胞とリポソームとを分離して、本発明のリポソー
ムワクチン懸濁液を得た。
このものがTSAPを含むことは、5DS−PAGEに
より確認された。
より確認された。
実施例 3 リポソームワクチンの効果16週令のCB
6F+雄性マウス(平均体重20〜25g>1群5匹に
、各種濃度(0,01単位又は0.1単位TSAP)の
実施例1で調製したリポソームワクチン懸濁液を、2週
間間隔で2回皮下に投与して免疫し、最終投与から2週
間後に、供試動物の背部陵内にRVD細胞2X105個
を移植した。
6F+雄性マウス(平均体重20〜25g>1群5匹に
、各種濃度(0,01単位又は0.1単位TSAP)の
実施例1で調製したリポソームワクチン懸濁液を、2週
間間隔で2回皮下に投与して免疫し、最終投与から2週
間後に、供試動物の背部陵内にRVD細胞2X105個
を移植した。
その後、移植したRVD細胞のコロニーの直径を経日的
に測定して、リポソームワクチンの効果を判定した。
に測定して、リポソームワクチンの効果を判定した。
比較及び対照として、リポソームワクチン懸濁液に代え
て、TSAP及び生理食塩水をそれぞれ同様に投与した
群を設けた。
て、TSAP及び生理食塩水をそれぞれ同様に投与した
群を設けた。
腫瘍移植10日目における腫瘍径(mm)を以下の式に
より求めて効果の判定を行なった。
より求めて効果の判定を行なった。
腫瘍径(mm) = (短径士長径)/2その結果、生
理食塩水投与対照群では5例中4例において腫瘍直径が
10mmを越えた。
理食塩水投与対照群では5例中4例において腫瘍直径が
10mmを越えた。
また丁SAP単独投与群では、TSAPo、1単位投与
群(1単位=2X10B細胞から抽出した抗原M)にお
いて5例中2例が、0.01単位投与群において5例中
3例が、生理食塩水投与対照群と同様に腫瘍径がlQm
mを越えた。
群(1単位=2X10B細胞から抽出した抗原M)にお
いて5例中2例が、0.01単位投与群において5例中
3例が、生理食塩水投与対照群と同様に腫瘍径がlQm
mを越えた。
之等に対して、本発明のリポソームワクチン投与群にお
いては、該ワクチン0.01単位投与群(1単位=2X
108細胞から抽出した抗原量)において、腫瘍の増殖
は全く認められず、顕著な腫瘍増殖抑制効果を奏するこ
とが確認された。
いては、該ワクチン0.01単位投与群(1単位=2X
108細胞から抽出した抗原量)において、腫瘍の増殖
は全く認められず、顕著な腫瘍増殖抑制効果を奏するこ
とが確認された。
(以 上)
Claims (1)
- (1)癌細胞表面に顕在する抗原提示糖蛋白質を、1,
2−ジミリストイルアミド−1,2−デオキシホスファ
チジルコリンを含むリポソームに再構成させてなること
を特徴とするリポソームワクチン。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP923689A JPH02188532A (ja) | 1989-01-17 | 1989-01-17 | リポソームワクチン |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP923689A JPH02188532A (ja) | 1989-01-17 | 1989-01-17 | リポソームワクチン |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02188532A true JPH02188532A (ja) | 1990-07-24 |
Family
ID=11714767
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP923689A Pending JPH02188532A (ja) | 1989-01-17 | 1989-01-17 | リポソームワクチン |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02188532A (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0603671A3 (de) * | 1992-12-23 | 1995-02-22 | Behringwerke Ag | Verfahren zur Reaktivierung von gereinigten Membranproteinen. |
| EP0614355A4 (en) * | 1991-11-26 | 1997-10-01 | Jenner Technologies | Antitumor vaccines. |
| WO1998033817A1 (en) * | 1997-01-31 | 1998-08-06 | Incyte Pharmaceuticals, Inc. | Human membrane protein |
| US8012483B2 (en) | 2004-04-15 | 2011-09-06 | Athera Biotechnologies Ab | Phosphorylcholine conjugates and corresponding antibodies |
| US9796786B2 (en) | 2011-08-09 | 2017-10-24 | Athera Biotechnologies Ab | Antibodies binding to phosphorylcholine (PC) and/or PC conjugates |
| US9803028B2 (en) | 2011-08-09 | 2017-10-31 | Athera Biotechnologies Ab | Antibodies against phosphorylcholine |
-
1989
- 1989-01-17 JP JP923689A patent/JPH02188532A/ja active Pending
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0614355A4 (en) * | 1991-11-26 | 1997-10-01 | Jenner Technologies | Antitumor vaccines. |
| US5738867A (en) * | 1991-11-26 | 1998-04-14 | Jenner Technologies | Antitumor vaccines |
| EP0603671A3 (de) * | 1992-12-23 | 1995-02-22 | Behringwerke Ag | Verfahren zur Reaktivierung von gereinigten Membranproteinen. |
| WO1998033817A1 (en) * | 1997-01-31 | 1998-08-06 | Incyte Pharmaceuticals, Inc. | Human membrane protein |
| US8012483B2 (en) | 2004-04-15 | 2011-09-06 | Athera Biotechnologies Ab | Phosphorylcholine conjugates and corresponding antibodies |
| US10222382B2 (en) | 2004-04-15 | 2019-03-05 | Athera Biotechnologies Ab | Phosphorylcholine conjugates and corresponding antibodies |
| US9796786B2 (en) | 2011-08-09 | 2017-10-24 | Athera Biotechnologies Ab | Antibodies binding to phosphorylcholine (PC) and/or PC conjugates |
| US9803028B2 (en) | 2011-08-09 | 2017-10-31 | Athera Biotechnologies Ab | Antibodies against phosphorylcholine |
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