JPH02238880A - バイオリアクターの再生方法 - Google Patents
バイオリアクターの再生方法Info
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- JPH02238880A JPH02238880A JP5869789A JP5869789A JPH02238880A JP H02238880 A JPH02238880 A JP H02238880A JP 5869789 A JP5869789 A JP 5869789A JP 5869789 A JP5869789 A JP 5869789A JP H02238880 A JPH02238880 A JP H02238880A
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- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、酵素、微生物菌体、植物、動物細胞、細胞内
オルガネラ等の生体触媒を触媒担体に担持させたバイオ
リアクターの再生方法に関するものである. (従来の技術) 生化学反応を触媒する生体触媒を触媒担体に担持させた
バイオリアクターは、高価な生体触媒の流失を防止でき
ること、生体触媒の高密度化が図れること、反応時間及
びリアクターのコンパクト化が図れること、連続的な生
産が可能となること等の多くのメリットがあるため、種
々の生化学工業の分野で広く使用されている.ところが
このようなバイオリアクターは、時間の経過とともに触
媒担体に固定された生体触媒の活性が次第に低下するこ
とを避けることができない宿命を持つ.このような場合
には、失活した生体触媒を触媒担体から遊離させて洗い
流したうえで、新しい生体触媒を固定化し直すことが望
まれる. しかし、触媒担体としてイオン交換樹脂が使用されてい
る場合にのみ、リアクターの内部に高塩濃度液を注入し
て失活した生体触媒を洗い流す方法を取ることができる
が、セラミックスのような無機担体が使用されている場
合には触媒担体をリアクターの内部に充填したままでバ
イオリアクターを再生する方法は知られていなかった.
これは無機担体と生体触媒とは共有結合のような強固な
結合方式により結合しているため、両者を容易に開離さ
せることができないからである.このため、セラミック
スのような無機担体が使用されているバイオリアクター
を再生するには、無機担体をリアクター外に取出し、焼
成するという方法を取らざるを得なかったが、担体をリ
アクター外に取出すことは雑菌汚染の点から好ましくな
いことであった. (発明が解決しようとする課題) 本発明は上記のような従来の問題点を解決して、無機担
体が使用されているバイオリアクターの活性が低下した
際に、担体をリアクターの外部に取出すことなく再生を
行わせることができるバイオリアクターの再生方法を提
供するために完成されたものである. (課題を解決するための手段) 上記の課題を解決するためになされた本発明は、固定化
生体触媒を組み込んだバイオリアクターの固定化生体触
媒の活性が低下した際に、次亜塩素酸又は次亜塩素酸塩
の水溶液を触媒担体に接触させて失活した固定化生体触
媒を除去し、その後新しい固定化生体触媒を触媒担体に
固定するこ々を特徴とするものである. 本発明において使用される次亜塩素酸又は次亜塩素酸ナ
トリウムのような次亜塩素酸塩は、発生機の酸素による
殺菌効果を持つものとして知られているが、次亜塩素酸
はそれ自身が生活細胞の細胞膜を破壊する効果を持ち、
失活した固定化生体触媒を触媒担体から除去することが
できる。次亜塩素酸又は次亜塩素酸塩を本発明の目的で
使用するためには、その有効塩素濃度がI PP?I以
上であり、かつPl1が9以下の条件下で使用すること
が望ましい.これは有効塩素濃度がl PPM未満であ
ると固定化生体触媒を触媒担体から効果的に除去するこ
とができず、またPl1が大きくなると次亜塩素酸イオ
ンの解離度が低下し、P}lが9を越えるとその効果が
著しく低下するためである。
オルガネラ等の生体触媒を触媒担体に担持させたバイオ
リアクターの再生方法に関するものである. (従来の技術) 生化学反応を触媒する生体触媒を触媒担体に担持させた
バイオリアクターは、高価な生体触媒の流失を防止でき
ること、生体触媒の高密度化が図れること、反応時間及
びリアクターのコンパクト化が図れること、連続的な生
産が可能となること等の多くのメリットがあるため、種
々の生化学工業の分野で広く使用されている.ところが
このようなバイオリアクターは、時間の経過とともに触
媒担体に固定された生体触媒の活性が次第に低下するこ
とを避けることができない宿命を持つ.このような場合
には、失活した生体触媒を触媒担体から遊離させて洗い
流したうえで、新しい生体触媒を固定化し直すことが望
まれる. しかし、触媒担体としてイオン交換樹脂が使用されてい
る場合にのみ、リアクターの内部に高塩濃度液を注入し
て失活した生体触媒を洗い流す方法を取ることができる
が、セラミックスのような無機担体が使用されている場
合には触媒担体をリアクターの内部に充填したままでバ
イオリアクターを再生する方法は知られていなかった.
これは無機担体と生体触媒とは共有結合のような強固な
結合方式により結合しているため、両者を容易に開離さ
せることができないからである.このため、セラミック
スのような無機担体が使用されているバイオリアクター
を再生するには、無機担体をリアクター外に取出し、焼
成するという方法を取らざるを得なかったが、担体をリ
アクター外に取出すことは雑菌汚染の点から好ましくな
いことであった. (発明が解決しようとする課題) 本発明は上記のような従来の問題点を解決して、無機担
体が使用されているバイオリアクターの活性が低下した
際に、担体をリアクターの外部に取出すことなく再生を
行わせることができるバイオリアクターの再生方法を提
供するために完成されたものである. (課題を解決するための手段) 上記の課題を解決するためになされた本発明は、固定化
生体触媒を組み込んだバイオリアクターの固定化生体触
媒の活性が低下した際に、次亜塩素酸又は次亜塩素酸塩
の水溶液を触媒担体に接触させて失活した固定化生体触
媒を除去し、その後新しい固定化生体触媒を触媒担体に
固定するこ々を特徴とするものである. 本発明において使用される次亜塩素酸又は次亜塩素酸ナ
トリウムのような次亜塩素酸塩は、発生機の酸素による
殺菌効果を持つものとして知られているが、次亜塩素酸
はそれ自身が生活細胞の細胞膜を破壊する効果を持ち、
失活した固定化生体触媒を触媒担体から除去することが
できる。次亜塩素酸又は次亜塩素酸塩を本発明の目的で
使用するためには、その有効塩素濃度がI PP?I以
上であり、かつPl1が9以下の条件下で使用すること
が望ましい.これは有効塩素濃度がl PPM未満であ
ると固定化生体触媒を触媒担体から効果的に除去するこ
とができず、またPl1が大きくなると次亜塩素酸イオ
ンの解離度が低下し、P}lが9を越えるとその効果が
著しく低下するためである。
次の実施例に示すように、本発明では単にバイオリアク
ターの内部に次亜塩素酸又は次亜塩素酸塩の水溶液を注
入することにより失活した固定化生体触媒を触媒担体か
ら除去することができ、その後バイオリアクターの内部
を水洗し、新しい固定化生体触媒を常法により触媒担体
に固定すればよい.なお、セラミックのような無機担体
のうちでは、セピオライトは比表面積が大きく酵素固定
化量が大きいのでより好ましいものである.(実施例) 実施例l 5mlプノレラナーゼ/50髄h酢酸バッファ一(PH
5.0)蛋白濃度20mg/g+1をセピオライトを
原料とし、900℃で焼成した固定化用セラミックス担
体く比表面積77M/g)25gに添加し、室温にて1
時間静置し、固定化プルラナーゼを調製した.この固定
化プルラナーゼを50mM酢酸バッファーで充分に洗浄
した後、第1図に示すように直径20am、長さ150
■のジャケット付力ラムに充填した.次にカラムジャケ
ットに80゜Cの恒温水を循環し、カラムが恒温になっ
た後、マルトースとサ゜イクロデキストリンの混合溶解
液(マルトースとサイクロデキストリンの重量比4;l
、固形分濃度70%水溶液)を20鵬1/H『の流速で
送液した。
ターの内部に次亜塩素酸又は次亜塩素酸塩の水溶液を注
入することにより失活した固定化生体触媒を触媒担体か
ら除去することができ、その後バイオリアクターの内部
を水洗し、新しい固定化生体触媒を常法により触媒担体
に固定すればよい.なお、セラミックのような無機担体
のうちでは、セピオライトは比表面積が大きく酵素固定
化量が大きいのでより好ましいものである.(実施例) 実施例l 5mlプノレラナーゼ/50髄h酢酸バッファ一(PH
5.0)蛋白濃度20mg/g+1をセピオライトを
原料とし、900℃で焼成した固定化用セラミックス担
体く比表面積77M/g)25gに添加し、室温にて1
時間静置し、固定化プルラナーゼを調製した.この固定
化プルラナーゼを50mM酢酸バッファーで充分に洗浄
した後、第1図に示すように直径20am、長さ150
■のジャケット付力ラムに充填した.次にカラムジャケ
ットに80゜Cの恒温水を循環し、カラムが恒温になっ
た後、マルトースとサ゜イクロデキストリンの混合溶解
液(マルトースとサイクロデキストリンの重量比4;l
、固形分濃度70%水溶液)を20鵬1/H『の流速で
送液した。
次にこの反応力ラム出口でのマルトシルサイク口デキス
トリンの生成量をHPLCで測定したところ、分岐化率
は58%であった.その後分岐化率の測定を継続したと
ころ、30日目にして分岐化率は20%に低下した. そこで反応力ラムを蒸留水で洗浄した後、5gずつ5本
のカラムに充填し直した。次にこれらの各カラムに1、
lO、100 , 1・000, 5000PPMの有
効塩素濃度の次亜塩素酸ナトリウム(PH 7.0)を
41/{1rで送液し、出口の洗液を11ずつフラクシ
ョンコレクターで回収し、その蛋白量を測定した。
トリンの生成量をHPLCで測定したところ、分岐化率
は58%であった.その後分岐化率の測定を継続したと
ころ、30日目にして分岐化率は20%に低下した. そこで反応力ラムを蒸留水で洗浄した後、5gずつ5本
のカラムに充填し直した。次にこれらの各カラムに1、
lO、100 , 1・000, 5000PPMの有
効塩素濃度の次亜塩素酸ナトリウム(PH 7.0)を
41/{1rで送液し、出口の洗液を11ずつフラクシ
ョンコレクターで回収し、その蛋白量を測定した。
その結果を第2図に示す, IOPPM以上の次亜塩素
酸ナトリウムで溶出された蛋白の総量は、最初に固定化
された蛋白量の90%に達した.また担体上に残存した
蛋白の有無を調査するため、ケルダール分解法によりセ
ラミックス担体上のケルダール窒素量を測定したところ
NOであ・った。また同様にIPP−の次亜塩素酸ナト
リウムで洗浄したカラムについても蛋白量を測定したと
ころ、最初に固定化された蛋白量の30%が検出された
. IOPPM以上の次亜塩素酸ナトリウムで洗浄した
4本のカラムについては、更に水洗を充分に施した後、
1回目と同様の操作でプルラナーゼの固定化を試みた。
酸ナトリウムで溶出された蛋白の総量は、最初に固定化
された蛋白量の90%に達した.また担体上に残存した
蛋白の有無を調査するため、ケルダール分解法によりセ
ラミックス担体上のケルダール窒素量を測定したところ
NOであ・った。また同様にIPP−の次亜塩素酸ナト
リウムで洗浄したカラムについても蛋白量を測定したと
ころ、最初に固定化された蛋白量の30%が検出された
. IOPPM以上の次亜塩素酸ナトリウムで洗浄した
4本のカラムについては、更に水洗を充分に施した後、
1回目と同様の操作でプルラナーゼの固定化を試みた。
その結果得られた分岐化率は58.2%であり、最初の
状態にカラムが再生されたことが確認された.実施例2 セピオライトを主原料とし、900’Cで焼成された酵
素固定化用セラミックス担体(比表面積77M/g)2
6gに51インへルターゼ溶液/50mM酢酸バッファ
一(PH 4.0) 20傾g/mlを添加し室温にて
1時間静置し、固定化インベルターゼを調整した.この
インベルターゼを50一一酢酸バッファーで充分に洗浄
した後、固定化酵素200mgを37゜C,2%シヨ糖
/50mM酢酸バッファ−50■H中に加え、グルコー
スの生成量を和光製薬 グルコースBテストで測定した
.このとき、1分間当たり1μモルのグルコースを生成
する酵素量+1Uとして計算したところ、固定化インベ
ルターゼ1g当たりの活性は600 Uであった. この固定化インベルターゼを直径10go、長さ100
閣のカラムに5sgずつ充填し、それぞれPllll、
9、7、5、3に調製した有効塩素濃度0.1%の次亜
塩素酸ナトリウム水溶液を4−I/Hrの流速でカラム
内に送液した.次にそれぞれのカラム出口から溶出液を
lalずつ分取し、蛋白濃度を測定したところ、第3図
のような溶出プロフィールを得た.この結果から、次亜
塩素酸ナトリウム水溶液のPHが9を越える・と固定化
インへルターゼを溶出量が低下することが分かる. (発明の効果) 本発明は以上に説明したように、次亜塩素酸又は次亜塩
素酸塩の水溶液を触媒担体に接触させることにより、セ
ラミックスのような無機担体を使用したバイオリアクタ
ーを再生することができるものであり、触媒担体をリア
クターの内部に置いたままで再生することができるので
雑菌による汚染の心配もないうえ、完全な再生が可能で
ある。
状態にカラムが再生されたことが確認された.実施例2 セピオライトを主原料とし、900’Cで焼成された酵
素固定化用セラミックス担体(比表面積77M/g)2
6gに51インへルターゼ溶液/50mM酢酸バッファ
一(PH 4.0) 20傾g/mlを添加し室温にて
1時間静置し、固定化インベルターゼを調整した.この
インベルターゼを50一一酢酸バッファーで充分に洗浄
した後、固定化酵素200mgを37゜C,2%シヨ糖
/50mM酢酸バッファ−50■H中に加え、グルコー
スの生成量を和光製薬 グルコースBテストで測定した
.このとき、1分間当たり1μモルのグルコースを生成
する酵素量+1Uとして計算したところ、固定化インベ
ルターゼ1g当たりの活性は600 Uであった. この固定化インベルターゼを直径10go、長さ100
閣のカラムに5sgずつ充填し、それぞれPllll、
9、7、5、3に調製した有効塩素濃度0.1%の次亜
塩素酸ナトリウム水溶液を4−I/Hrの流速でカラム
内に送液した.次にそれぞれのカラム出口から溶出液を
lalずつ分取し、蛋白濃度を測定したところ、第3図
のような溶出プロフィールを得た.この結果から、次亜
塩素酸ナトリウム水溶液のPHが9を越える・と固定化
インへルターゼを溶出量が低下することが分かる. (発明の効果) 本発明は以上に説明したように、次亜塩素酸又は次亜塩
素酸塩の水溶液を触媒担体に接触させることにより、セ
ラミックスのような無機担体を使用したバイオリアクタ
ーを再生することができるものであり、触媒担体をリア
クターの内部に置いたままで再生することができるので
雑菌による汚染の心配もないうえ、完全な再生が可能で
ある。
よって本発明は従来の問題点を解決したパイオリアクタ
ーの再生方法として、産業の発展に寄与するところは極
めて大である.
ーの再生方法として、産業の発展に寄与するところは極
めて大である.
第1図は第1の実施例における固定化プルラナーゼの連
続合成装置を示す正面図、第2図は第1の実施例におけ
る有効塩素濃度による酵素溶離パターンの違いを示すグ
ラフ、第3図は第2の実施例における溶離液PHの違い
による酵素溶離パターンの違いを示すグラフである. 第1図
続合成装置を示す正面図、第2図は第1の実施例におけ
る有効塩素濃度による酵素溶離パターンの違いを示すグ
ラフ、第3図は第2の実施例における溶離液PHの違い
による酵素溶離パターンの違いを示すグラフである. 第1図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、固定化生体触媒を組み込んだバイオリアクターの固
定化生体触媒の活性が低下した際に、次亜塩素酸又は次
亜塩素酸塩の水溶液を触媒担体に接触させて失活した固
定化生体触媒を除去し、その後新しい固定化生体触媒を
触媒担体に固定することを特徴とするバイオリアクター
の再生方法。 2、有効塩素濃度が1PPM以上の次亜塩素酸又は次亜
塩素酸塩の水溶液を、PH9以下の条件下で触媒担体に
接触させる請求項1記載のバイオリアクターの再生方法
。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5869789A JPH02238880A (ja) | 1989-03-10 | 1989-03-10 | バイオリアクターの再生方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5869789A JPH02238880A (ja) | 1989-03-10 | 1989-03-10 | バイオリアクターの再生方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02238880A true JPH02238880A (ja) | 1990-09-21 |
Family
ID=13091723
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5869789A Pending JPH02238880A (ja) | 1989-03-10 | 1989-03-10 | バイオリアクターの再生方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH02238880A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5397755A (en) * | 1993-06-29 | 1995-03-14 | W. R. Grace & Co.-Conn. | Low density glassy materials for bioremediation supports |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59173086A (ja) * | 1983-03-24 | 1984-09-29 | Res Assoc Petroleum Alternat Dev<Rapad> | 固定化酵母を用いたアルコ−ル発酵方法 |
| JPS63177790A (ja) * | 1987-01-14 | 1988-07-21 | Nitto Electric Ind Co Ltd | 酵素固定膜の再生方法 |
-
1989
- 1989-03-10 JP JP5869789A patent/JPH02238880A/ja active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59173086A (ja) * | 1983-03-24 | 1984-09-29 | Res Assoc Petroleum Alternat Dev<Rapad> | 固定化酵母を用いたアルコ−ル発酵方法 |
| JPS63177790A (ja) * | 1987-01-14 | 1988-07-21 | Nitto Electric Ind Co Ltd | 酵素固定膜の再生方法 |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5397755A (en) * | 1993-06-29 | 1995-03-14 | W. R. Grace & Co.-Conn. | Low density glassy materials for bioremediation supports |
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