JPH022390A - 新規なヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子 - Google Patents
新規なヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子Info
- Publication number
- JPH022390A JPH022390A JP63050871A JP5087188A JPH022390A JP H022390 A JPH022390 A JP H022390A JP 63050871 A JP63050871 A JP 63050871A JP 5087188 A JP5087188 A JP 5087188A JP H022390 A JPH022390 A JP H022390A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- amino acid
- acid sequence
- macrophage colony
- coli
- granulocyte macrophage
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
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- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、医薬として有用な新規な構造を有するヒト顆
粒球マクロファージコロニー刺激因子(以下、ヒト顆粒
球マクロファージコロニーII+ 激因子をGM−C3
Fと略称する)に関する。
粒球マクロファージコロニー刺激因子(以下、ヒト顆粒
球マクロファージコロニーII+ 激因子をGM−C3
Fと略称する)に関する。
(従来の技術および課題を解決するための手段〕GM−
C3Fは骨職を刺激して、感染防御、免疫などに重要な
役割を果たす顆粒球マクロファージなど白血球の分化・
増殖を促進するサイト力インの一種であり、その−次構
造はすでに報告されている。(Gordon G、 W
ong et、a+、、 5cience228+ 8
10−815.(1985);Antony w、 B
urgess et、a+、。
C3Fは骨職を刺激して、感染防御、免疫などに重要な
役割を果たす顆粒球マクロファージなど白血球の分化・
増殖を促進するサイト力インの一種であり、その−次構
造はすでに報告されている。(Gordon G、 W
ong et、a+、、 5cience228+ 8
10−815.(1985);Antony w、 B
urgess et、a+、。
Blood、 6943−501987)本発明者らは
、遺伝子組換え法により形質転換した大腸菌の菌体内に
産生させたGM−C3Fを単離し、回収するにあたり、
大腸菌内ではGMC3Fが不活性な凝集体として得られ
るため、適当な条件で可溶化還元して直鎖状のGM−C
S Fとして単離し、これを酸化して2組のジスルフィ
ド結合を有する活性なGM−C3Fを導く過程において
、すでに報告されているものとは異なる新規なGM−C
3Fが得られることを見出し、本発明を完成した。
、遺伝子組換え法により形質転換した大腸菌の菌体内に
産生させたGM−C3Fを単離し、回収するにあたり、
大腸菌内ではGMC3Fが不活性な凝集体として得られ
るため、適当な条件で可溶化還元して直鎖状のGM−C
S Fとして単離し、これを酸化して2組のジスルフィ
ド結合を有する活性なGM−C3Fを導く過程において
、すでに報告されているものとは異なる新規なGM−C
3Fが得られることを見出し、本発明を完成した。
本発明のG M −CS Fは、第1図記載のアミノ酸
配列(第1番目から第128番目まで)で特定されるN
末端にメチオニン残基が先行したGM−C3FのN末端
からアミノ酸が7個(Met−Ala−Pr。
配列(第1番目から第128番目まで)で特定されるN
末端にメチオニン残基が先行したGM−C3FのN末端
からアミノ酸が7個(Met−Ala−Pr。
Ala−Arg−5er−Pro)除去された、第1図
記載のアミノ酸配列の第8番目から第128番目のアミ
ノ酸配列で特定される新規なGM−C3Fである。
記載のアミノ酸配列の第8番目から第128番目のアミ
ノ酸配列で特定される新規なGM−C3Fである。
C以下、本明細書では第1図記載のアミノ酸配列(第1
番目から第128番目まで)で特定されるN末端にメチ
オニン残基が先行したGM−C3FをA型とし、A型G
M−C3FのN末端からアミノ酸が7個除去された本発
明のGM−C3FをB型とする) 本発明のGM−C3F B型は、以下に記す方法によ
り得られる。
番目から第128番目まで)で特定されるN末端にメチ
オニン残基が先行したGM−C3FをA型とし、A型G
M−C3FのN末端からアミノ酸が7個除去された本発
明のGM−C3FをB型とする) 本発明のGM−C3F B型は、以下に記す方法によ
り得られる。
第1図記載のGM−C3FをコードするGM−CSF遺
伝子を常法により単離し、これを発現する組換え大腸菌
を常法により作成する。
伝子を常法により単離し、これを発現する組換え大腸菌
を常法により作成する。
好ましくはヒト白血病細胞0937株(ATCCCRL
1593)由来のヒトGM−C3F遺伝子を有する
プラスミドによって大腸菌に一12株由来のSG 9
36株を形質転換し、得られた大腸菌をLブロス培地等
の適当な培地で常法に従い培養し、GM−C3Fを産生
させる(PC?出願WO37102060参照)。GM
−C3Fは不溶性の凝集体として宿主内に蓄積される。
1593)由来のヒトGM−C3F遺伝子を有する
プラスミドによって大腸菌に一12株由来のSG 9
36株を形質転換し、得られた大腸菌をLブロス培地等
の適当な培地で常法に従い培養し、GM−C3Fを産生
させる(PC?出願WO37102060参照)。GM
−C3Fは不溶性の凝集体として宿主内に蓄積される。
遠心分離等により培養した菌体を集め、適当な手段(例
えば超音波処理、フレンチプレス処理など)を用いて菌
体を破砕して、遠心分離によって不溶性の凝集体をとり
出す。この凝集体を適当な可溶化剤(例えば高濃度のグ
アニジン塩酸又は尿素)及び、分子内及び分子間に存在
すると思われるジスルフィド結合を切断するための還元
剤(例えば2−メルカプトエタノール)を用いて可溶化
する。還元体として含まれるCM−C3Fをゲルろ過ク
ロマトグラフィーなどの手段によって一次精製する。凝
集体をとり出す段階で0MC3Fに夾雑している宿主由
来のタンパク質や核酸、また、細胞膜成分などのうち可
溶性成分およびCMC5Fと分子量の異なる夾雑成分を
上記の操作により除く。このとき、GM−C3F還元体
の純度は次の再生工程に支障の無い程度に低いことが望
ましく、好ましくは、20〜50%程度の純度とする。
えば超音波処理、フレンチプレス処理など)を用いて菌
体を破砕して、遠心分離によって不溶性の凝集体をとり
出す。この凝集体を適当な可溶化剤(例えば高濃度のグ
アニジン塩酸又は尿素)及び、分子内及び分子間に存在
すると思われるジスルフィド結合を切断するための還元
剤(例えば2−メルカプトエタノール)を用いて可溶化
する。還元体として含まれるCM−C3Fをゲルろ過ク
ロマトグラフィーなどの手段によって一次精製する。凝
集体をとり出す段階で0MC3Fに夾雑している宿主由
来のタンパク質や核酸、また、細胞膜成分などのうち可
溶性成分およびCMC5Fと分子量の異なる夾雑成分を
上記の操作により除く。このとき、GM−C3F還元体
の純度は次の再生工程に支障の無い程度に低いことが望
ましく、好ましくは、20〜50%程度の純度とする。
このようにして得られたGM−C3Fの還元体は適当な
酸化還元系(例えばグルタチオン又はシスティンの酸化
型及び還元型の混合物)を有する溶液中で2mのジスル
フィド結合を形成させ、活性なGM−CSFを再生させ
る。再生後、GM−C3F濃度が低い時には限外ろか等
の方法により0.1mg/IR1以上、より好ましくは
0.5mg/m以上の濃度に濃縮する。この再生溶液に
は、−次槽製によって除き得なかった宿主由来物質の他
、酸化還元剤、キレート剤等の夾雑物が存在するので、
ゲルろ過クロマトグラフィーか、あるいはイオン交換高
速液体クロマトグラフィーを用いて該夾雑物を除去する
。・このようにして得られたGM−C3FA型、B型の
混合物を逆相高速液体クロマトグラフィーにかけ、分離
する。各GM−C3F活性画分を分取し、さらに精製し
、GM−C3Fの構造を検定することにより、目的のG
M−C3FB型を得ることができる。以上の各操作によ
り得られたGM−C3F B型はA型より高い好中球
生存維持活性およびハムスター骨髄細胞コロニー形成活
性などの生物活性を有することが認められた。
酸化還元系(例えばグルタチオン又はシスティンの酸化
型及び還元型の混合物)を有する溶液中で2mのジスル
フィド結合を形成させ、活性なGM−CSFを再生させ
る。再生後、GM−C3F濃度が低い時には限外ろか等
の方法により0.1mg/IR1以上、より好ましくは
0.5mg/m以上の濃度に濃縮する。この再生溶液に
は、−次槽製によって除き得なかった宿主由来物質の他
、酸化還元剤、キレート剤等の夾雑物が存在するので、
ゲルろ過クロマトグラフィーか、あるいはイオン交換高
速液体クロマトグラフィーを用いて該夾雑物を除去する
。・このようにして得られたGM−C3FA型、B型の
混合物を逆相高速液体クロマトグラフィーにかけ、分離
する。各GM−C3F活性画分を分取し、さらに精製し
、GM−C3Fの構造を検定することにより、目的のG
M−C3FB型を得ることができる。以上の各操作によ
り得られたGM−C3F B型はA型より高い好中球
生存維持活性およびハムスター骨髄細胞コロニー形成活
性などの生物活性を有することが認められた。
以下実施例により、この発明をさらに詳しく説明する。
ス斯I津1
ヒト白血病細胞0937株 (A T CCCRL
1593)由来のhGM−C3F遺伝子を有するプラス
ミドによって 大腸菌に一12株由来のSG936株(
ATCC39264)を形質転換し、得られた大腸菌(
DSM3474)(PCT出願賀087102060に
記載の公知菌株)を用いて、アンピシリン、カナマイシ
ンを含むしプロス培地で14時間、30’Cで培養し、
次に42°Cに温度をあげて誘導をかけ、さらに3時間
焙養した。培養後に、菌体を超音波破砕により破壊し、
12、OOOrpmで30分間遠心分離してペレット化
した。
1593)由来のhGM−C3F遺伝子を有するプラス
ミドによって 大腸菌に一12株由来のSG936株(
ATCC39264)を形質転換し、得られた大腸菌(
DSM3474)(PCT出願賀087102060に
記載の公知菌株)を用いて、アンピシリン、カナマイシ
ンを含むしプロス培地で14時間、30’Cで培養し、
次に42°Cに温度をあげて誘導をかけ、さらに3時間
焙養した。培養後に、菌体を超音波破砕により破壊し、
12、OOOrpmで30分間遠心分離してペレット化
した。
得られたペレットをO,1M Tri−11(:1(p
fl 7.5)で洗浄後、6Mグアニジン塩酸及びI(
1mM 2−メルカプトエタノールを含む0.1M
Tri−11CI(pH7,5)を用いて可溶化し、次
いでセファクリル5200スーパーフアインカラム (
商標:ファルマシア社製)(2,6cm X 94co
+、 500ad樹脂)にかけて4°Cでゲルろ過クロ
マトグラフィーを行った。)吉川したCMC3F含有溶
液の総蛋白量中のGM−C3F純度は47%であった。
fl 7.5)で洗浄後、6Mグアニジン塩酸及びI(
1mM 2−メルカプトエタノールを含む0.1M
Tri−11CI(pH7,5)を用いて可溶化し、次
いでセファクリル5200スーパーフアインカラム (
商標:ファルマシア社製)(2,6cm X 94co
+、 500ad樹脂)にかけて4°Cでゲルろ過クロ
マトグラフィーを行った。)吉川したCMC3F含有溶
液の総蛋白量中のGM−C3F純度は47%であった。
さらにこの画分を41システィン0.4mMシスチンを
含む0.1M Tri−HCI(ptl 7.5)で4
°C512時間透析を行い、さらに新しいバッファー溶
液で4”C11晩透析を行って、酸化型GM−C3Fを
含む再生溶液を得た。この溶液中のGM−C2F4度は
0.05mg/ ml であったので、再生溶液を1
2.000rp−で30分間遠心分離後、上清を限外ろ
かにより0.4mg7m1に濃縮した。 得られた濃縮
液をセファデックスG−100(商標;ファルマシア社
製) (2,6cn+X94cm、500m樹脂)にか
けてゲルろ過クロマトグラフィーを行い、溶出したGM
−C3F含有溶液を、再度、限外ろかにより1.0 m
g/ mlに濃縮した。
含む0.1M Tri−HCI(ptl 7.5)で4
°C512時間透析を行い、さらに新しいバッファー溶
液で4”C11晩透析を行って、酸化型GM−C3Fを
含む再生溶液を得た。この溶液中のGM−C2F4度は
0.05mg/ ml であったので、再生溶液を1
2.000rp−で30分間遠心分離後、上清を限外ろ
かにより0.4mg7m1に濃縮した。 得られた濃縮
液をセファデックスG−100(商標;ファルマシア社
製) (2,6cn+X94cm、500m樹脂)にか
けてゲルろ過クロマトグラフィーを行い、溶出したGM
−C3F含有溶液を、再度、限外ろかにより1.0 m
g/ mlに濃縮した。
このようにして得られた、GM−C3Fとして1.88
mgを含む溶液を下記条件によりHPLCを用いて精製
を行った。
mgを含む溶液を下記条件によりHPLCを用いて精製
を行った。
カラム:スミパックス ODS A−213(10m
m X 250m翔)(住友化学製)移動相:A液0.
12%トリフルオロ酢酸水溶液B液 水 溶出条件ニ一定の割合(A液 43%、B液57%)で
?8出させる。
m X 250m翔)(住友化学製)移動相:A液0.
12%トリフルオロ酢酸水溶液B液 水 溶出条件ニ一定の割合(A液 43%、B液57%)で
?8出させる。
流量:3mfl/min
カラム温度:室温
検出器:紫外線吸収計(測定波長230nm)保持時間
j(1,M−C3F A型 17分C,M−C3F
B型 21分 分取したGM−C3F A型 B型の各成分をBra
dfordらの方法(Bradford、 M、 et
、al、、 Anal。
j(1,M−C3F A型 17分C,M−C3F
B型 21分 分取したGM−C3F A型 B型の各成分をBra
dfordらの方法(Bradford、 M、 et
、al、、 Anal。
Biochem、ユ2248(1976))によりタン
パク量を測定した結果、GM−C3F A型0.54
mg、 G M −C3F C型0.4hgを得た
。
パク量を測定した結果、GM−C3F A型0.54
mg、 G M −C3F C型0.4hgを得た
。
GM−C3Fの粗製品の高速液体クロマトグラムを第2
図に示す。
図に示す。
尖血班主
実施例1で得たGM−C3F B型について気相アミ
ノ酸シークエンサーを用いてN末端アミノ酸配列を分析
した。その結果、GM−C3F B型はA型のN末端
アミノ酸が7個(Met−Ala−Pr。
ノ酸シークエンサーを用いてN末端アミノ酸配列を分析
した。その結果、GM−C3F B型はA型のN末端
アミノ酸が7個(Met−Ala−Pr。
Ala−Arg−5er−Pro)欠失したものである
ことが判明した。
ことが判明した。
実藷且J
ハムスター骨髄細胞のコロニー形成活性試験方法
ハムスター大腿骨を無菌的に摘出し、2%牛脂児血清含
有a−MEM培養液(Stanners+C,P、、e
t。
有a−MEM培養液(Stanners+C,P、、e
t。
al、、Nature New Biology、23
0:52(1972) (Flow社製))を注入し、
骨髄細胞を洗い出した。この細胞をピペッティングでば
らばらにし、3分間静置する。細胞浮遊液をとり、同じ
培養液で洗浄した後、40%牛脂児血清含有α−MEM
培養液でlXl0/m1の細胞濃度に調製する。この骨
髄細胞浮遊液および2%牛脂児血清含有α−MEM培養
液で段階的に希釈したヒトGM−C3Fをウェルに10
0Ilずつ入れて、37°C,5%−酸化炭素の条件下
で培養する。培養42時間後にα−MEM培養液で40
μci/xi!に調製したトリチウム標識チミジンを2
5μlずつ各ウェルに添加しさらに6時間培養後、細胞
に取り込まれた放射活性を測定する。
0:52(1972) (Flow社製))を注入し、
骨髄細胞を洗い出した。この細胞をピペッティングでば
らばらにし、3分間静置する。細胞浮遊液をとり、同じ
培養液で洗浄した後、40%牛脂児血清含有α−MEM
培養液でlXl0/m1の細胞濃度に調製する。この骨
髄細胞浮遊液および2%牛脂児血清含有α−MEM培養
液で段階的に希釈したヒトGM−C3Fをウェルに10
0Ilずつ入れて、37°C,5%−酸化炭素の条件下
で培養する。培養42時間後にα−MEM培養液で40
μci/xi!に調製したトリチウム標識チミジンを2
5μlずつ各ウェルに添加しさらに6時間培養後、細胞
に取り込まれた放射活性を測定する。
CCV/CC)/2のトリチウム標識チミジン取り込み
を誘導するGM−C3F量を50単位/rdと定義して
CM−C3FO比活性を求めた。但し、Cvは最大トリ
チウム標識チミジン取り込み量CCはGM−C3F非存
在下に取り込まれたトリチウム標識チミジン量を表わす
。
を誘導するGM−C3F量を50単位/rdと定義して
CM−C3FO比活性を求めた。但し、Cvは最大トリ
チウム標識チミジン取り込み量CCはGM−C3F非存
在下に取り込まれたトリチウム標識チミジン量を表わす
。
試験結果 表1
表1の結果から、GM−C3F B型はGM−C3F
A型と同様、ハムスター骨髄細胞コロニー形成活性
を有することが認められた。
A型と同様、ハムスター骨髄細胞コロニー形成活性
を有することが認められた。
第1図は組み換え大腸菌由来のGM−C3Fのアミノ酸
配列を示す。 但し、A:アラニン、Cニジスティン、D=アスパラギ
ン酸、E:グルタミン酸、F:フェニルアラニン、Gニ
ゲリシン、H:ヒスチジン、1:イソロイシン、K:リ
ジン、L:ロイシン、M:メチオニン、N:アスパラギ
ン、Pニブロリン、Q:グルタミン、R:アルギニン、
S:セリン、T:スレオニン、v:バリン、wニトリブ
トファン、Y二チロシンを各々表す。 第2図は実施例にて用いた粗製品GM−C3Fの高速液
体クロマトグラムを示す。 第1図 M A P A RS P S P
S T Q P W E Hl 2
3 4 5 6 7 8 9]011 12
131415+6V N A r Q E’
A RRL L N L S R17
181920212223242526272g 2
9 30 31DTAAEMNETVEV I
5E32 33 34 35 36 37 38 39
40 4+ 42 43 44 45 46MFD
LQEPTCLQTRLE 47 48 49 EO5152535455565
758596061し YKQGLRGSLTKLK
G PLTMIASHYKQHCPP TPETSCATQ I ITFES92 93
94 9:l 96 97 98 9910010
1102103104105106FKENLKDFL
LV I PFD1071081091101
1+ 112113114115116117118
119120121−S−S−結合 55番目と97
7番目!スティン89番目と1225目のンスティン
配列を示す。 但し、A:アラニン、Cニジスティン、D=アスパラギ
ン酸、E:グルタミン酸、F:フェニルアラニン、Gニ
ゲリシン、H:ヒスチジン、1:イソロイシン、K:リ
ジン、L:ロイシン、M:メチオニン、N:アスパラギ
ン、Pニブロリン、Q:グルタミン、R:アルギニン、
S:セリン、T:スレオニン、v:バリン、wニトリブ
トファン、Y二チロシンを各々表す。 第2図は実施例にて用いた粗製品GM−C3Fの高速液
体クロマトグラムを示す。 第1図 M A P A RS P S P
S T Q P W E Hl 2
3 4 5 6 7 8 9]011 12
131415+6V N A r Q E’
A RRL L N L S R17
181920212223242526272g 2
9 30 31DTAAEMNETVEV I
5E32 33 34 35 36 37 38 39
40 4+ 42 43 44 45 46MFD
LQEPTCLQTRLE 47 48 49 EO5152535455565
758596061し YKQGLRGSLTKLK
G PLTMIASHYKQHCPP TPETSCATQ I ITFES92 93
94 9:l 96 97 98 9910010
1102103104105106FKENLKDFL
LV I PFD1071081091101
1+ 112113114115116117118
119120121−S−S−結合 55番目と97
7番目!スティン89番目と1225目のンスティン
Claims (1)
- 第1図記載のアミノ酸配列の第8番目から第128番目
のアミノ酸配列で特定されるヒト顆粒球マクロファージ
コロニー刺激因子ポリペプチド
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP63050871A JPH022390A (ja) | 1988-02-23 | 1988-03-03 | 新規なヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4163388 | 1988-02-23 | ||
| JP63-41633 | 1988-02-23 | ||
| JP63050871A JPH022390A (ja) | 1988-02-23 | 1988-03-03 | 新規なヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH022390A true JPH022390A (ja) | 1990-01-08 |
Family
ID=26381278
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63050871A Pending JPH022390A (ja) | 1988-02-23 | 1988-03-03 | 新規なヒト顆粒球マクロファージコロニー刺激因子 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH022390A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1997012054A1 (fr) * | 1995-09-28 | 1997-04-03 | Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. | Lymphokine chemotactique neutrophile, medicament et necessaire de diagnostic de la granulopenie hypersensible aux medicaments la contenant |
| US6911204B2 (en) | 2000-08-11 | 2005-06-28 | Favrille, Inc. | Method and composition for altering a B cell mediated pathology |
| US7726941B2 (en) | 2004-07-30 | 2010-06-01 | Vestas Wind Systems A/S | Methods of handling wind turbine blades and mounting said blades on a wind turbine, system and gripping unit for handling a wind turbine blade |
-
1988
- 1988-03-03 JP JP63050871A patent/JPH022390A/ja active Pending
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1997012054A1 (fr) * | 1995-09-28 | 1997-04-03 | Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. | Lymphokine chemotactique neutrophile, medicament et necessaire de diagnostic de la granulopenie hypersensible aux medicaments la contenant |
| US6911204B2 (en) | 2000-08-11 | 2005-06-28 | Favrille, Inc. | Method and composition for altering a B cell mediated pathology |
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