JPH02257063A - 免疫測定試薬および免疫測定法 - Google Patents
免疫測定試薬および免疫測定法Info
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- JPH02257063A JPH02257063A JP8007889A JP8007889A JPH02257063A JP H02257063 A JPH02257063 A JP H02257063A JP 8007889 A JP8007889 A JP 8007889A JP 8007889 A JP8007889 A JP 8007889A JP H02257063 A JPH02257063 A JP H02257063A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、不溶性担体を使用し免疫凝集反応に基づいて
被測定物質を測定するために用いられ、高い検出感度で
非特異反応が少ない免疫測定試薬および免疫測定法に関
する。特に抗原および抗体の測定に適した免疫測定試薬
に関する。
被測定物質を測定するために用いられ、高い検出感度で
非特異反応が少ない免疫測定試薬および免疫測定法に関
する。特に抗原および抗体の測定に適した免疫測定試薬
に関する。
また、特に梅毒トレポネーマ抗体およびHBS抗体の測
定に適した免疫測定試薬に関する。
定に適した免疫測定試薬に関する。
(従来の技術)
体液中の微量成分などの測定方法のひとつとして、目的
とする被測定物質である抗原または抗体に対応する抗体
または抗原を不溶性担体に担持させ、被測定物質との抗
原抗体反応により生じた不溶性担体の凝集の度合を検出
することにより、被測定物質を測定する免疫測定法があ
る。このような測定法としては、ラテックス凝集反応法
、赤血球凝集反応法などが知られている。
とする被測定物質である抗原または抗体に対応する抗体
または抗原を不溶性担体に担持させ、被測定物質との抗
原抗体反応により生じた不溶性担体の凝集の度合を検出
することにより、被測定物質を測定する免疫測定法があ
る。このような測定法としては、ラテックス凝集反応法
、赤血球凝集反応法などが知られている。
この凝集の程度を検出する方法としては、凝集の有無を
肉眼で判定する方法と、反応液に光を照射して散乱光あ
るいは透過光を測定する方法がある。
肉眼で判定する方法と、反応液に光を照射して散乱光あ
るいは透過光を測定する方法がある。
肉眼で判定する方法は試料中の抗原あるいは抗体の有無
の判定法、あるいは半定量法として用いられている。光
学的な測定方法は試料中の抗原あるいは抗体の定量に用
いられている。
の判定法、あるいは半定量法として用いられている。光
学的な測定方法は試料中の抗原あるいは抗体の定量に用
いられている。
これらの凝集反応の測定法において、測定感度の向上あ
るいは抗原抗体反応の促進を目的として、ポリエチレン
グリコール(以下、PEGと略すときがある)を反応系
に添加することが提案されている。例えば、特開昭58
−47256号公報では、抗原または抗体を担持した不
溶性微粒子と抗体及び/または抗原とを溶液中で反応さ
せ、反応混合物に光を照射して反応の進行度を光学的に
測定する抗原抗体反応の測定法において、溶液中にポリ
エチレングリコールを共存させでいる。これは測定感度
の向上を目的とするものであり、ポリエチレングリコー
ルとしては、平均分子量が1 、000以上のものが効
果ありとされ、実施例では1 、540〜8.000の
ものが使用されている。
るいは抗原抗体反応の促進を目的として、ポリエチレン
グリコール(以下、PEGと略すときがある)を反応系
に添加することが提案されている。例えば、特開昭58
−47256号公報では、抗原または抗体を担持した不
溶性微粒子と抗体及び/または抗原とを溶液中で反応さ
せ、反応混合物に光を照射して反応の進行度を光学的に
測定する抗原抗体反応の測定法において、溶液中にポリ
エチレングリコールを共存させでいる。これは測定感度
の向上を目的とするものであり、ポリエチレングリコー
ルとしては、平均分子量が1 、000以上のものが効
果ありとされ、実施例では1 、540〜8.000の
ものが使用されている。
また、特開昭59−54968号公報では、赤血球凝集
反応の促進用試薬として、リン酸緩衝液に溶解させたポ
リエチレングリコールが使用されている。この実施例に
おいては、平均分子量4,000〜20,000のポリ
エチレングリコールが使用されている。
反応の促進用試薬として、リン酸緩衝液に溶解させたポ
リエチレングリコールが使用されている。この実施例に
おいては、平均分子量4,000〜20,000のポリ
エチレングリコールが使用されている。
また、不溶性担体を使用した凝集反応を測定原理とする
ものではないが、特公昭63−45066号公報では、
変性ヒト免疫グロブリンを含有する溶液とリウマチ因子
との反応において、凝集促進剤としてポリエチレングリ
コールを使用しており、平均分子量としてり、OOO〜
20,000のものが有効に使えるとの記載がある。
ものではないが、特公昭63−45066号公報では、
変性ヒト免疫グロブリンを含有する溶液とリウマチ因子
との反応において、凝集促進剤としてポリエチレングリ
コールを使用しており、平均分子量としてり、OOO〜
20,000のものが有効に使えるとの記載がある。
このように、抗原抗体反応の反応系にポリエチレングリ
コールを使用することが提案されているが、その分子量
は、平均分子量20,000以下のものである。
コールを使用することが提案されているが、その分子量
は、平均分子量20,000以下のものである。
(発明が解決しようとする課題)
従来、使用されてきたPEGは、平均分子量2万以下の
ものであるが、感度向上または反応促進の効果はまだ不
十分であり、更に効果の高いものが求められていた。
ものであるが、感度向上または反応促進の効果はまだ不
十分であり、更に効果の高いものが求められていた。
本発明は、上記の問題点を解決するものであり、その目
的とするところは、高い検出感度で非特異反応が少ない
免疫測定試薬および測定方法を提供することにある。
的とするところは、高い検出感度で非特異反応が少ない
免疫測定試薬および測定方法を提供することにある。
更に、梅毒トレポネーマ抗体またはHBS抗体の測定に
適した免疫測定試薬を提供することにある。
適した免疫測定試薬を提供することにある。
(課題を解決するための手段)
上記の問題点を解決するために、ポリエチレングリコー
ルについて鋭意研究した。ポリエチレングリコールの感
度向上または反応促進の効果は、反応系中での濃度が高
いほど大きくなる。
ルについて鋭意研究した。ポリエチレングリコールの感
度向上または反応促進の効果は、反応系中での濃度が高
いほど大きくなる。
しかし、ポリエチレングリコールの濃度を上げて行くと
試料そのものが混濁を生じたり、抗原あるいは抗体を感
作した不溶性担体そのものが凝集を生しる。本発明者は
、従来検討されたことのない平均分子量3万以上のポリ
エチレングリコールについて、反応系中での濃度とその
効果について検討し、平均分子量を大きくすると、平均
分子量2万以下のものを使用したときと比較して極めて
少量で、同等以上の感度向上効果があり、かつ、試料を
混濁させず、非特異的な凝集反応もひき起こさないこと
を見出し、本発明を完成した。
試料そのものが混濁を生じたり、抗原あるいは抗体を感
作した不溶性担体そのものが凝集を生しる。本発明者は
、従来検討されたことのない平均分子量3万以上のポリ
エチレングリコールについて、反応系中での濃度とその
効果について検討し、平均分子量を大きくすると、平均
分子量2万以下のものを使用したときと比較して極めて
少量で、同等以上の感度向上効果があり、かつ、試料を
混濁させず、非特異的な凝集反応もひき起こさないこと
を見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明の免疫測定試薬は、被測定物質である
抗原または抗体に対応する抗体または抗原を担持した不
溶性担体および平均分子量30、000以上のポリエチ
レングリコールから構成され、そのことにより前記目的
が達成される。
抗原または抗体に対応する抗体または抗原を担持した不
溶性担体および平均分子量30、000以上のポリエチ
レングリコールから構成され、そのことにより前記目的
が達成される。
本発明の免疫測定試薬は、被測定物質である抗体に対応
する抗原を担持した不溶性担体および平均分子量30.
000以上のポリエチレングリコールから構成され、そ
のことにより前記目的が=6 達成される。
する抗原を担持した不溶性担体および平均分子量30.
000以上のポリエチレングリコールから構成され、そ
のことにより前記目的が=6 達成される。
本発明の免疫測定試薬は、梅毒トレポネーマ抗原または
HBS抗原を担持した不溶性担体および平均分子量30
,000以上のポリエチレングリコールから構成され、
そのことにより前記目的が達成される。
HBS抗原を担持した不溶性担体および平均分子量30
,000以上のポリエチレングリコールから構成され、
そのことにより前記目的が達成される。
本発明の免疫測定法は、被測定物質である抗原または抗
体に対応する抗体または抗原を不溶性担体に担持させ、
被測定物質との抗原抗体反応により生じた不溶性担体の
凝集の度合を検出することにより、被測定物質を測定す
る方法であって、該抗原抗体反応の反応系に平均分子量
30.000以上のポリエチレングリコールを存在させ
、そのことにより前記目的が達成される。
体に対応する抗体または抗原を不溶性担体に担持させ、
被測定物質との抗原抗体反応により生じた不溶性担体の
凝集の度合を検出することにより、被測定物質を測定す
る方法であって、該抗原抗体反応の反応系に平均分子量
30.000以上のポリエチレングリコールを存在させ
、そのことにより前記目的が達成される。
本発明に用いられるPEGとしては、平均分子量3万〜
500万、好ましくは5万〜200万のものが好適であ
る。平均分子量の測定方法は、ゲルクロマトグラフ(G
PC)法、末端基定量法、粘度法などより適宜選ばれる
。例えば、GPC法による分子量の測定の1例を次に示
す。
500万、好ましくは5万〜200万のものが好適であ
る。平均分子量の測定方法は、ゲルクロマトグラフ(G
PC)法、末端基定量法、粘度法などより適宜選ばれる
。例えば、GPC法による分子量の測定の1例を次に示
す。
サンプルをTHFに溶かし、メンブランフィルタ−でろ
過し、得られたろ液をカラムに注入する。カラムはH3
(、−30(積木ファインケミカル■製) 7.9 t
nIllφX 500mmφを3本面列につなぐ。キャ
リアはTHFを用い、流量1 、 OrnR/minの
条件で検出器は示差屈折計を用いる。
過し、得られたろ液をカラムに注入する。カラムはH3
(、−30(積木ファインケミカル■製) 7.9 t
nIllφX 500mmφを3本面列につなぐ。キャ
リアはTHFを用い、流量1 、 OrnR/minの
条件で検出器は示差屈折計を用いる。
分子量は、市販のPEG分子量標準物を用い、サンプル
の保持時間を標準物の保持時間と比較することによって
サンプル中のPEGの分子量を決定する。
の保持時間を標準物の保持時間と比較することによって
サンプル中のPEGの分子量を決定する。
本発明で用いられる不溶性担体としては、有機高分子粉
末、無機物質粉末、微生物、血球および細胞膜片などが
挙げられる。有機高分子粉末としては、不溶性アガロー
ス、セルロース、不溶性デキストランなどが例示でき、
好ましくはラテックス懸濁液がよい。ラテックスとして
は、例えばポリスチレン、スチレン−スチレンスルホン
酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アクリル酸重合体
、アクリロニトリルブタジェンスチレン共重合体、塩化
ビニル−アクリル酸エステル共重合体、ポリ酢酸ビニル
アクリレート等がある。用いるラテックスの平均粒径は
、測定対象物質の検出濃度或は測定機器によって、0.
05〜1.0μmのものが適宜選択される。無機物質粉
末としてはシリカ、アルミナ、或は金、チタン、鉄、ニ
ッケル等の金属片などが例示される。
末、無機物質粉末、微生物、血球および細胞膜片などが
挙げられる。有機高分子粉末としては、不溶性アガロー
ス、セルロース、不溶性デキストランなどが例示でき、
好ましくはラテックス懸濁液がよい。ラテックスとして
は、例えばポリスチレン、スチレン−スチレンスルホン
酸塩共重合体、メタクリル酸重合体、アクリル酸重合体
、アクリロニトリルブタジェンスチレン共重合体、塩化
ビニル−アクリル酸エステル共重合体、ポリ酢酸ビニル
アクリレート等がある。用いるラテックスの平均粒径は
、測定対象物質の検出濃度或は測定機器によって、0.
05〜1.0μmのものが適宜選択される。無機物質粉
末としてはシリカ、アルミナ、或は金、チタン、鉄、ニ
ッケル等の金属片などが例示される。
本発明により測定されるべき物質は特に限定されず、一
般に抗原抗体反応を利用して測定し得る生理活性物質は
いずれも測定が可能である。
般に抗原抗体反応を利用して測定し得る生理活性物質は
いずれも測定が可能である。
被測定物質としては、タンパク、脂質などがあり、それ
には例えば、各種抗原、抗体、レセプター、酵素などが
挙げられる。具体的には、CRP、ヒトフィブリノーゲ
ン、リウマチ因子、アルファーフェトプロティン(AF
P)、抗ストレプトリジン0抗体、梅毒トレポネーマ抗
体、梅毒脂質抗原に対する抗体、HBS抗体、HBC抗
体、HBe抗体、HTLVI、n、■に対する抗体など
が例示される。
には例えば、各種抗原、抗体、レセプター、酵素などが
挙げられる。具体的には、CRP、ヒトフィブリノーゲ
ン、リウマチ因子、アルファーフェトプロティン(AF
P)、抗ストレプトリジン0抗体、梅毒トレポネーマ抗
体、梅毒脂質抗原に対する抗体、HBS抗体、HBC抗
体、HBe抗体、HTLVI、n、■に対する抗体など
が例示される。
本発明により被測定物質を測定する場合の測定系は、例
えばラテックス凝集反応や血球凝集法などの凝集法が利
用される。試薬の調製は、まず公知の方法により、不溶
性担体に抗原または抗体を物理的に吸着あるいは化学的
に結合により担持(感作)させる。用いる抗体は免疫グ
ロブリンあるいはその断片、例えばF(ab’)zでも
良い。
えばラテックス凝集反応や血球凝集法などの凝集法が利
用される。試薬の調製は、まず公知の方法により、不溶
性担体に抗原または抗体を物理的に吸着あるいは化学的
に結合により担持(感作)させる。用いる抗体は免疫グ
ロブリンあるいはその断片、例えばF(ab’)zでも
良い。
次に、測定系について述べる。例えば、ラテックス試薬
を用いた抗原抗体反応により被測定物質を測定する場合
には、被測定物質である抗原または抗体に対応する抗体
または抗原を担持したラテックス試薬にあらかじめPE
Gを添加しておく。あるいは、PEGを含まないラテッ
クス試薬を使用することも可能で、この場合には抗原抗
体反応時にPEGが該反応系に存在するようにすればよ
い。例えば、検体にあらかじめPEGを添加しておく方
法;使用する緩衝液にPEGを加えておく方法などがあ
り、特に限定されない。言いかえれば、本発明の測定試
薬は、例えば、抗体または抗原を担持した不溶性担体、
およびPEGを含む、1液系の試薬;抗体または抗原を
担持した不溶性担体を含む第1試薬と、PEGを含む緩
衝液でなる、第2試薬とで構成される2液系の試薬;な
ど種々の形態であり得る。
を用いた抗原抗体反応により被測定物質を測定する場合
には、被測定物質である抗原または抗体に対応する抗体
または抗原を担持したラテックス試薬にあらかじめPE
Gを添加しておく。あるいは、PEGを含まないラテッ
クス試薬を使用することも可能で、この場合には抗原抗
体反応時にPEGが該反応系に存在するようにすればよ
い。例えば、検体にあらかじめPEGを添加しておく方
法;使用する緩衝液にPEGを加えておく方法などがあ
り、特に限定されない。言いかえれば、本発明の測定試
薬は、例えば、抗体または抗原を担持した不溶性担体、
およびPEGを含む、1液系の試薬;抗体または抗原を
担持した不溶性担体を含む第1試薬と、PEGを含む緩
衝液でなる、第2試薬とで構成される2液系の試薬;な
ど種々の形態であり得る。
このような試薬を用いて凝集反応を行ない、生じた凝集
の程度を光学的に観察もしくは目視観察することにより
被測定物質が測定され得る。
の程度を光学的に観察もしくは目視観察することにより
被測定物質が測定され得る。
具体的には、不溶性担体の凝集の程度を光学的に検出す
る方法においては、測定は散乱光強度、吸光度または透
過光強度を測定する光学機器で行う。測定の波長は30
0〜2400nmが使用できる。
る方法においては、測定は散乱光強度、吸光度または透
過光強度を測定する光学機器で行う。測定の波長は30
0〜2400nmが使用できる。
測定方法については公知の方法に従い、用いる不溶性担
体の粒子の大きさあるいは濃度の選択、反応時間の設定
により、散乱光強度、吸光度または透過光強度の増加も
しくは減少を測定することにより行われる。また、これ
らの方法を併用することも可能である 不溶性担体の凝集の程度を肉眼で判定する試薬において
は、通常、試料と感作不溶性担体を含む溶液を判定板上
で混合し、1〜5分間揺り動かした後、凝集の有無を判
定する。凝集判定には、単に肉眼判定以外に、ビデオカ
メラで撮影し、画像処理を施すことによって判定するこ
とも可能である。
体の粒子の大きさあるいは濃度の選択、反応時間の設定
により、散乱光強度、吸光度または透過光強度の増加も
しくは減少を測定することにより行われる。また、これ
らの方法を併用することも可能である 不溶性担体の凝集の程度を肉眼で判定する試薬において
は、通常、試料と感作不溶性担体を含む溶液を判定板上
で混合し、1〜5分間揺り動かした後、凝集の有無を判
定する。凝集判定には、単に肉眼判定以外に、ビデオカ
メラで撮影し、画像処理を施すことによって判定するこ
とも可能である。
この免疫測定法において、抗原抗体反応の反応系に存在
させるPEGの濃度は、PEGの分子量、共存する塩、
タンパク、糖類などの添加物の濃度によって適宜選ばれ
る。一般には、該反応系に0.01〜3%(W/誓)、
好ましくは、0.05〜1.5%(W/W)の割合で含
有されるように調製される。PEG濃度が0.01%(
W/W)を下まわると、PEC,と抗原および抗体との
相互作用が小さくなる結果、増感効果が得られない。逆
に3%(W/W)を上まわると不溶性担体が非特異的に
凝集し易くなる。
させるPEGの濃度は、PEGの分子量、共存する塩、
タンパク、糖類などの添加物の濃度によって適宜選ばれ
る。一般には、該反応系に0.01〜3%(W/誓)、
好ましくは、0.05〜1.5%(W/W)の割合で含
有されるように調製される。PEG濃度が0.01%(
W/W)を下まわると、PEC,と抗原および抗体との
相互作用が小さくなる結果、増感効果が得られない。逆
に3%(W/W)を上まわると不溶性担体が非特異的に
凝集し易くなる。
上記抗原抗体反応の条件は通常の場合と同様であり、反
応媒体としては、被測定物質の種類に応じた各種緩衝液
が用いられる。この緩衝液は、被測定物質を失活させる
ことがなく、かつ抗原抗体反応を阻害しないようなイオ
ン強度やpHを有するものであればよい。例えば、リン
酸緩衝液、グリシン緩衝液、トリス緩衝液が使用される
。反応のpHは、5〜10特に6〜8が好ましい。反応
温度は0〜50°C特に20〜40°Cが好ましい。反
応時間は適宜法められる。反応時には、さらに測定系の
特異性を高めるために、塩化コリンなどの第4級アンモ
ニウム塩、EDTA、ポリアニオン、カオトロピックイ
オン(CI!、−,1、5CN−など)、ゼラチンなど
を添加することも可能である。
応媒体としては、被測定物質の種類に応じた各種緩衝液
が用いられる。この緩衝液は、被測定物質を失活させる
ことがなく、かつ抗原抗体反応を阻害しないようなイオ
ン強度やpHを有するものであればよい。例えば、リン
酸緩衝液、グリシン緩衝液、トリス緩衝液が使用される
。反応のpHは、5〜10特に6〜8が好ましい。反応
温度は0〜50°C特に20〜40°Cが好ましい。反
応時間は適宜法められる。反応時には、さらに測定系の
特異性を高めるために、塩化コリンなどの第4級アンモ
ニウム塩、EDTA、ポリアニオン、カオトロピックイ
オン(CI!、−,1、5CN−など)、ゼラチンなど
を添加することも可能である。
本発明によれば、平均分子量3万以上のPEGの働きに
より、高感度かつ非特異反応が少ない測定ができる。
より、高感度かつ非特異反応が少ない測定ができる。
なお、本発明の原理は、分子量の大きなPEGの抗原抗
体反応の促進効果によっており、抗原または抗体を不溶
性担体に担持しない免疫比濁法の試薬、測定方法におい
ても、その測定感度の向上、抗原抗体反応の促進効果が
ある。
体反応の促進効果によっており、抗原または抗体を不溶
性担体に担持しない免疫比濁法の試薬、測定方法におい
ても、その測定感度の向上、抗原抗体反応の促進効果が
ある。
以下に、本発明の実施例を述べ、その効果を具体的に説
明する。
明する。
(実施例)
本発明を以下の実施例にて説明する。
本実施例および比較例においてPEGは、すべて和光純
薬工業■のものが使用された。
薬工業■のものが使用された。
実施例1
ヒ1−CRPの測定試薬及び測定法−凝集像の肉眼観察
による検出方法 (1)抗CRP抗体感作ラテックス液の調製抗ヒトCR
P抗体を1■/ mlのIgG濃度でO,1Mグリシン
緩衝液(pH8,8)に溶解した液10 rdに、平均
粒径が0.26μmのポリスチレンラテックス(固形分
10%、積木化学社製)1 mlを添加し、37°Cに
て60分間撹拌した。次いで、この液を4°Cにて60
分間、18. OOOrpmで遠心分離した。得られた
沈澱物にウシ血清アルブミン(以下、BSAと略)を0
.5重量%含有する0、1Mグリシン緩衝液(pl+
8.8)10戚を添加し、ラテックスを懸濁させ、抗C
RP抗体感作ラテックス液を調製した。
による検出方法 (1)抗CRP抗体感作ラテックス液の調製抗ヒトCR
P抗体を1■/ mlのIgG濃度でO,1Mグリシン
緩衝液(pH8,8)に溶解した液10 rdに、平均
粒径が0.26μmのポリスチレンラテックス(固形分
10%、積木化学社製)1 mlを添加し、37°Cに
て60分間撹拌した。次いで、この液を4°Cにて60
分間、18. OOOrpmで遠心分離した。得られた
沈澱物にウシ血清アルブミン(以下、BSAと略)を0
.5重量%含有する0、1Mグリシン緩衝液(pl+
8.8)10戚を添加し、ラテックスを懸濁させ、抗C
RP抗体感作ラテックス液を調製した。
(2) P E G溶液の調製
平均分子量500,000のPEGを、BSAを1重量
%含有するリン酸−食塩緩衝液(0,05門リン酸緩衝
液(pt+ 7.0) 、0.10M NaCI)に、
0.0゜10.0.25.0.50.1.00重量%の
濃度になるように溶解した。
%含有するリン酸−食塩緩衝液(0,05門リン酸緩衝
液(pt+ 7.0) 、0.10M NaCI)に、
0.0゜10.0.25.0.50.1.00重量%の
濃度になるように溶解した。
(3)ヒI−CRP測定試薬
本実施例のし)CRP測定試薬は、上記(1)項の抗C
RP抗体感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2
)項のPEGを含む緩衝液からなる第2試薬とから構成
される2液系の試薬である。
RP抗体感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2
)項のPEGを含む緩衝液からなる第2試薬とから構成
される2液系の試薬である。
(4)標準CRP液の調製
CRPを0.0.0.10.0.50.1.00.2゜
0μg/d濃度で含むヒト血清を上記(2)項のPEG
溶液で1=1に希釈して、CRP濃度0.0〜1.0μ
g/mflを含む標準CRP液を調製した。
0μg/d濃度で含むヒト血清を上記(2)項のPEG
溶液で1=1に希釈して、CRP濃度0.0〜1.0μ
g/mflを含む標準CRP液を調製した。
(5)抗原抗体反応
標準CRP液50μlを判定板上に採り、これに上記(
1)項の抗CRP抗体感作ラテックス液50μ!を滴下
し混和する。判定板を手に持ち、ゆるやかに揺動し2分
後に凝集の度合を肉眼で観察した。結果を第1表に示し
た。
1)項の抗CRP抗体感作ラテックス液50μ!を滴下
し混和する。判定板を手に持ち、ゆるやかに揺動し2分
後に凝集の度合を肉眼で観察した。結果を第1表に示し
た。
第1表
+1凝集を示したもの
:凝集を示さなかったもの
比較例1
実施例1における1)EG温溶液調製の項を、次のよう
に行ったことを除いては、実施例1と同様にして、ヒト
CRP測定試薬を作成した。
に行ったことを除いては、実施例1と同様にして、ヒト
CRP測定試薬を作成した。
PEG溶液の調製:平均分子量7,500のPEGを、
実施例1の(2)項で使用したものと同じ緩衝液に、0
、■、2.3.4重量%の濃度になるように熔解した。
実施例1の(2)項で使用したものと同じ緩衝液に、0
、■、2.3.4重量%の濃度になるように熔解した。
標準CRP液は次のように調製した。
標準CRP液の調製:CRPを0.0.0.10.0.
50.1.00.2.Oug1mleA度で含むヒト血
清を上記のPEG溶液で1:1に希釈して、CRP濃度
0.0〜1.Oug /mlを含む標準CRP液を調製
した。
50.1.00.2.Oug1mleA度で含むヒト血
清を上記のPEG溶液で1:1に希釈して、CRP濃度
0.0〜1.Oug /mlを含む標準CRP液を調製
した。
上記の標準CRP液を使用し、実施例1と同様に抗原抗
体反応を行った。結果を第2表に示した。
体反応を行った。結果を第2表に示した。
第2表
+:凝集を示したちの
:凝集を示さなかったもの
第1表および第2表において、標準CRP液濃度が0.
0(ゼロ)μg/mflで凝集を示したものは、PEG
によってラテックスそのものが凝集したことによる。
0(ゼロ)μg/mflで凝集を示したものは、PEG
によってラテックスそのものが凝集したことによる。
第1表および第2表より、平均分子量500,000の
PEC,を使用した場合の検出感度はCRP液濃度0.
25μg/ldであるが、平均分子量7 、500のP
EGの場合のそれは、0.5 μg/mlであることが
わかる。従って、soo、oooのPEGを使用した方
が高い検出感度である。
PEC,を使用した場合の検出感度はCRP液濃度0.
25μg/ldであるが、平均分子量7 、500のP
EGの場合のそれは、0.5 μg/mlであることが
わかる。従って、soo、oooのPEGを使用した方
が高い検出感度である。
実施例2
ヒ)CRPの測定試薬及び測定法−光学的な検出方法
(1)抗CRP抗体感作ラテックス液の調製実施例1の
(1)項で使用した平均粒径が0.26μmのポリスチ
レンラテックスの代わりに、0.13μmのポリスチレ
ンラテックス(固形分10%、積木化学社製)を用いた
ことを除いては、実施例1の(1)項と同様にして、抗
CRP抗体感作ラテックス液を調製した。
(1)項で使用した平均粒径が0.26μmのポリスチ
レンラテックスの代わりに、0.13μmのポリスチレ
ンラテックス(固形分10%、積木化学社製)を用いた
ことを除いては、実施例1の(1)項と同様にして、抗
CRP抗体感作ラテックス液を調製した。
(2) P E G溶液の調製
平均分子量50.000のPEGを、BSAを0゜5重
量%含有する0、1Mグリシン緩衝液(pH8,8)に
、0.0.0.5.1.0.2.0.3.0重量%の濃
度になるように熔解した。
量%含有する0、1Mグリシン緩衝液(pH8,8)に
、0.0.0.5.1.0.2.0.3.0重量%の濃
度になるように熔解した。
(3)ヒトCRP測定試薬
本実施例のヒ)CRP測定試薬は、上記(1)項の抗C
RP抗体感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2
)項のPEGを含む緩衝液からなる第2試薬とから構成
される2液系の試薬である。
RP抗体感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2
)項のPEGを含む緩衝液からなる第2試薬とから構成
される2液系の試薬である。
(4)標準CRP液
CRPを0.0.1.0.2.0.25.0.5μg/
d含むヒト血清を使用した。
d含むヒト血清を使用した。
(5)抗原抗体反応
標準CRP液3μlを、上記(2)項のPEG溶液50
0μ!で希釈する。これに上記(1)項の抗CRP抗体
感作ラテックス液50μlを添加し、撹拌混合する。該
ラテックス液の添加から5分後に570nmの吸光度を
分光光度計で読み取る。
0μ!で希釈する。これに上記(1)項の抗CRP抗体
感作ラテックス液50μlを添加し、撹拌混合する。該
ラテックス液の添加から5分後に570nmの吸光度を
分光光度計で読み取る。
なお、抗原抗体反応は37°Cで行なった。
その結果をcell長1 cmとして換算し第3表に示
した。
した。
第3表
比較例2
実施例2で使用した平均分子量50,000のPEGの
代わりに、平均分子量が20,000のPEGを用いた
ことを除いては、実施例2と同様にして抗原抗体反応を
行った。その結果を第4表に示した。
代わりに、平均分子量が20,000のPEGを用いた
ことを除いては、実施例2と同様にして抗原抗体反応を
行った。その結果を第4表に示した。
第4表
第3表および第4表において、*印は血清そのものが混
濁を生じたあるいはラテックスそのものがPEGにより
凝集を生じたことを表わす。
濁を生じたあるいはラテックスそのものがPEGにより
凝集を生じたことを表わす。
従って*印以下の濃度のPEGを使用しなければならな
い。
い。
第3表および第4表において、PEG濃度1%で平均分
子量50,000のPEGと20,000のものを比較
すると、各標準CRP液濃度での反応性(波長570n
mの吸光度)は平均分子量50,000のものの方が高
い。すなわち、PEGの分子量は50.000のものを
用いる方が高い検出感度が得られることがわかる。
子量50,000のPEGと20,000のものを比較
すると、各標準CRP液濃度での反応性(波長570n
mの吸光度)は平均分子量50,000のものの方が高
い。すなわち、PEGの分子量は50.000のものを
用いる方が高い検出感度が得られることがわかる。
実施例3
ヒトフィブリノーゲン(Fg)の測定試薬及び測定法−
光学的な検出方法 (1)抗ヒトフィブリノーゲン(抗Fg)抗体感作ラテ
ックス液の調製 抗Fg山羊産生抗体を2 mg / mlのIgG濃度
で、0.3Mリン酸緩衝液(pH7,0)に溶解した液
10威に、平均粒径が0.10μmのポリスチレンラテ
ックス(固形分10%、積木化学社製)1dを添加し、
室温にて120分間撹拌した。
光学的な検出方法 (1)抗ヒトフィブリノーゲン(抗Fg)抗体感作ラテ
ックス液の調製 抗Fg山羊産生抗体を2 mg / mlのIgG濃度
で、0.3Mリン酸緩衝液(pH7,0)に溶解した液
10威に、平均粒径が0.10μmのポリスチレンラテ
ックス(固形分10%、積木化学社製)1dを添加し、
室温にて120分間撹拌した。
次いで、この液を4°Cにて60分間、1B、OOOr
pmで遠心分離した。得られた沈澱物にBSAを0.2
重量%含有する0、3 Mリン酸緩衝液(pH7,0)
10mを添加し、ラテックスを懸濁させ、抗Fg抗体惑
作ラテックス液を調製した。
pmで遠心分離した。得られた沈澱物にBSAを0.2
重量%含有する0、3 Mリン酸緩衝液(pH7,0)
10mを添加し、ラテックスを懸濁させ、抗Fg抗体惑
作ラテックス液を調製した。
(2) P E G溶液の調製
平均分子量500,000のPEGを、BSAを0.2
重量%で含有する0、3Mリン酸緩衝液(pH7,0)
に、0.0.0.1.0.2.0.3.0.4重量%の
濃度になるように溶解した。
重量%で含有する0、3Mリン酸緩衝液(pH7,0)
に、0.0.0.1.0.2.0.3.0.4重量%の
濃度になるように溶解した。
(3)Fg測定試薬
本実施例のFg測定試薬は、上記(1)項の抗Fg抗体
感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2)項のP
EGを含む緩衝液からなる第2試薬とから構成される2
液系の試薬である。
感作ラテックスからなる第1試薬と、上記(2)項のP
EGを含む緩衝液からなる第2試薬とから構成される2
液系の試薬である。
(4)標準Fg液
Fgを0.1.0.2.0.4.0 、8.Opg /
成金むヒト血清を使用した。
成金むヒト血清を使用した。
(5)抗原抗体反応
標準Fg液10μ!を、上記(2)項のPEG溶液40
0μ!で希釈する。これに上記(1)項の抗Fg抗体感
作ラテックス液60μlを添加し、撹拌混合する。該ラ
テックス液の添加から60秒後と160秒後の波長57
0nmの吸光度の差を分光光度計で読み取る。抗原抗体
反応は37°Cで行なった。その結果を第5表に示した
。
0μ!で希釈する。これに上記(1)項の抗Fg抗体感
作ラテックス液60μlを添加し、撹拌混合する。該ラ
テックス液の添加から60秒後と160秒後の波長57
0nmの吸光度の差を分光光度計で読み取る。抗原抗体
反応は37°Cで行なった。その結果を第5表に示した
。
(以下余白 )
第5表
比較例3
実施例3で使用したPEG溶液の代わりに、平均分子量
3,000のPEGを実施例5と同じ緩衝液に0.0.
0.5.1.0.2.0.3.0重量%の濃度になるよ
うに溶解したPEG溶液を用いたことを除いては、実施
例3と同様にして抗原抗体反応を行った。その結果を第
6表に示した。
3,000のPEGを実施例5と同じ緩衝液に0.0.
0.5.1.0.2.0.3.0重量%の濃度になるよ
うに溶解したPEG溶液を用いたことを除いては、実施
例3と同様にして抗原抗体反応を行った。その結果を第
6表に示した。
(以下余白 )
第5表および第6表において、*印は血清そのものが混
濁を生じたあるいはラテックスそのものがPEGにより
凝集を生じたことを表わす。
濁を生じたあるいはラテックスそのものがPEGにより
凝集を生じたことを表わす。
従って*印以下の濃度のPEGを使用しなければならな
い。
い。
第5表および第6表において、平均分子量50o、 o
ooのPEGi)1度0.3%使用のものと、分子量3
,000のPEG濃度2.0%使用のものの吸光度を比
較すると、各フィブリノーゲン濃度での反応性(波長5
70nmの吸光度)は平均分子量50o、oooのもの
の方が高い。すなわち、PEGの分子量は50鈷OOO
のものを用いる方が高い検出感度を得られることがわか
る。
ooのPEGi)1度0.3%使用のものと、分子量3
,000のPEG濃度2.0%使用のものの吸光度を比
較すると、各フィブリノーゲン濃度での反応性(波長5
70nmの吸光度)は平均分子量50o、oooのもの
の方が高い。すなわち、PEGの分子量は50鈷OOO
のものを用いる方が高い検出感度を得られることがわか
る。
実施例4
梅毒抗体の測定試薬及び測定法−凝集像の肉眼観察によ
る検出方法 梅毒トレポネーマ抗原に対する抗体の測定を行なった。
る検出方法 梅毒トレポネーマ抗原に対する抗体の測定を行なった。
本実施例においては、次に挙げる試薬および測定用検体
を使用した。後述の実施例5〜7および比較例4〜7に
おいても、特に指示されない限り、同名の試薬および検
体については、同様のものを使用した。
を使用した。後述の実施例5〜7および比較例4〜7に
おいても、特に指示されない限り、同名の試薬および検
体については、同様のものを使用した。
PBS (リン酸緩衝液)ニリン酸−ナトリウム(2水
和物)、リン酸二ナトリウム(2水和物)および塩化ナ
トリウムを、リン酸および塩化ナトリウムの終濃度がそ
れぞれ0.02Mおよび0.15M、pHが7.4とな
るように精製水に加えて、調製を行なった。
和物)、リン酸二ナトリウム(2水和物)および塩化ナ
トリウムを、リン酸および塩化ナトリウムの終濃度がそ
れぞれ0.02Mおよび0.15M、pHが7.4とな
るように精製水に加えて、調製を行なった。
1%BSA −PBS : PBSにBS八を1%(W
/W) となるように溶解させて調製した。
/W) となるように溶解させて調製した。
1%トリトンx−−iooニリン酸緩衝液にトリトンX
−(00を1%(W/W) となるように溶解させた
。
−(00を1%(W/W) となるように溶解させた
。
梅毒抗原液:家兎翠丸中で10〜14日間培養したトレ
ボネーマ パリダム(Treponema palli
dum; CDC(Center for Disea
se Control、 PublicHealth
5ervice、 U、S、Department o
f HealthEducation and Wel
fare+ At1anta、 Georgia)より
入手したものを家兎翠丸に接種し、継代培養したものを
用いた〕を生理食塩水中に109個菌体/Idとなるよ
うに懸濁した菌体懸濁液1 mllを採り、リン酸緩衝
液中で遠心分離(6,00Orpm×5分、3回)する
ことにより洗浄した。次いで、得られた沈澱に1%トリ
トンX−100を1 ml添加し、37°Cにて30分
間インキュベートした。
ボネーマ パリダム(Treponema palli
dum; CDC(Center for Disea
se Control、 PublicHealth
5ervice、 U、S、Department o
f HealthEducation and Wel
fare+ At1anta、 Georgia)より
入手したものを家兎翠丸に接種し、継代培養したものを
用いた〕を生理食塩水中に109個菌体/Idとなるよ
うに懸濁した菌体懸濁液1 mllを採り、リン酸緩衝
液中で遠心分離(6,00Orpm×5分、3回)する
ことにより洗浄した。次いで、得られた沈澱に1%トリ
トンX−100を1 ml添加し、37°Cにて30分
間インキュベートした。
その後、これを超遠心分離機にかけて(50,000r
pmX1時間)上清を採取し、1%トリトンX100で
1 、000倍希釈して使用した。
pmX1時間)上清を採取し、1%トリトンX100で
1 、000倍希釈して使用した。
梅毒陽性家兎血清:1−レポネーマ パリダムを翠丸に
接種後45日間飼育した家兎から血清を採取した。この
血清を1%BSA −PBSで100倍、200倍およ
び400倍に希釈して使用した。
接種後45日間飼育した家兎から血清を採取した。この
血清を1%BSA −PBSで100倍、200倍およ
び400倍に希釈して使用した。
正常家兎血清:トレポネーマ パリダムを接種されてい
ない家兎から採取した血清を用いた。
ない家兎から採取した血清を用いた。
市販のT P 116キツト(セロディアTP、冨士し
ビオ製)を用いてタイターを測定したところ、結果は陰
性を示した。この血清を1%BSA −PBSで100
倍から400倍に希釈して用いた。
ビオ製)を用いてタイターを測定したところ、結果は陰
性を示した。この血清を1%BSA −PBSで100
倍から400倍に希釈して用いた。
ラテックス:積木化学工業■製の粒径0.23μmのポ
リスチレンラテックス(固形分10%)を用いた。
リスチレンラテックス(固形分10%)を用いた。
0.20.0.5.1.00および2600%P E
G500゜000:平均分子量500,000のPEG
を1%BS八・PBSに、それぞれ0.20.0.50
.1.00および2゜00%(訂−)となるように溶解
させたもの。
G500゜000:平均分子量500,000のPEG
を1%BS八・PBSに、それぞれ0.20.0.50
.1.00および2゜00%(訂−)となるように溶解
させたもの。
(A) ラテックスへの梅毒抗原の感作ニラテックス1
00μlと、梅毒抗原液400μlとを速やかに混合し
、室温で撹拌した。1時間後に1%BSA −PBSを
5 mll加え、15000 rpmで1時間遠心した
。これを2回繰り返してラテックスを洗浄した。洗浄後
のペレットを2 mlの0.20.0.50、1.00
および2.00%P E G 500,000に懸濁さ
せ、よく分散して固形分0.5%のラテックス試薬を得
た。これを4°Cにて保存した。
00μlと、梅毒抗原液400μlとを速やかに混合し
、室温で撹拌した。1時間後に1%BSA −PBSを
5 mll加え、15000 rpmで1時間遠心した
。これを2回繰り返してラテックスを洗浄した。洗浄後
のペレットを2 mlの0.20.0.50、1.00
および2.00%P E G 500,000に懸濁さ
せ、よく分散して固形分0.5%のラテックス試薬を得
た。これを4°Cにて保存した。
(B)梅毒抗体の測定:梅毒陽性家兎血清と(八)項で
得られたラテックス試薬とを50μlずつ判定板上に採
り(このため反応時のPEG最終濃度は0.1〜1.0
%となる)、混合・撹拌したのち3分間反応させた。対
照として、正常家兎血清についても同様に反応を行なっ
た。ラテ・ンクス試薬の凝集を目視観察した。凝集した
検体を陽性、凝集の認められなかった検体を陰性とした
。その結果を第7表に示す。第7表において+および+
+は陽性(++は凝集の度合が大きい)、士は偽陽性、
そして−は陰性を示す。
得られたラテックス試薬とを50μlずつ判定板上に採
り(このため反応時のPEG最終濃度は0.1〜1.0
%となる)、混合・撹拌したのち3分間反応させた。対
照として、正常家兎血清についても同様に反応を行なっ
た。ラテ・ンクス試薬の凝集を目視観察した。凝集した
検体を陽性、凝集の認められなかった検体を陰性とした
。その結果を第7表に示す。第7表において+および+
+は陽性(++は凝集の度合が大きい)、士は偽陽性、
そして−は陰性を示す。
比較例4
0.20〜2.00%P E 0500,000の代わ
りに、下記の2.0.4.0.6.0.8.0%P E
G7,500または1%BSA・PBSを用いて実施
例4と同様に反応を行なった。その結果を第7表に示す
。
りに、下記の2.0.4.0.6.0.8.0%P E
G7,500または1%BSA・PBSを用いて実施
例4と同様に反応を行なった。その結果を第7表に示す
。
2.0.4.0.6.0および8.0%P E G 7
,500二平均分子量7,500のPEGを1%BSA
−PBSに、それぞれ2.0.4.0.6.0および
8.0%(W/譬)となるように溶解させたもの。
,500二平均分子量7,500のPEGを1%BSA
−PBSに、それぞれ2.0.4.0.6.0および
8.0%(W/譬)となるように溶解させたもの。
第7表より、PEGの分子量は500,000を使用す
る方が7,500よりも高い検出感度が得られることが
わかった。
る方が7,500よりも高い検出感度が得られることが
わかった。
(以下余白 )
第7表
実施例5
梅毒抗体の測定試薬及び測定法−光学的な検出方法
実施例4と同様の検体および試薬を用い、日立7050
型全自動分析装置により測定を行なった。
型全自動分析装置により測定を行なった。
但し、梅毒抗原感作ラテツクス試薬にはPEG500.
000は加えず、1%BSA −PBSで希釈して固形
分0.25%に調製した。
000は加えず、1%BSA −PBSで希釈して固形
分0.25%に調製した。
また、P E G 500,000は1%BS八・PB
Sに0゜1.0.25.0.50および1.00%(W
/W)に溶解させて使用した。すなわち、この試薬は感
作ラテツクス液からなる第1試薬とPEG溶液からなる
第2試薬とから構成されるものである。
Sに0゜1.0.25.0.50および1.00%(W
/W)に溶解させて使用した。すなわち、この試薬は感
作ラテツクス液からなる第1試薬とPEG溶液からなる
第2試薬とから構成されるものである。
測 法と測 。果
検体として梅毒陽性家兎血清または正常家兎血清3μ!
を採り、これに上記のP E G 500,000の0
.1〜1.00%溶液350μ!を加えた。これに上記
の梅毒抗原感作ラテツクス液50μ!を添加後、この溶
液を撹拌・混合した。そして、該ラテックス液の添加か
ら80秒後と320秒後の波長570nmにおける吸光
度の差(Δ0D570)を分光光度計で読み取った。な
お、抗原抗体反応は37°Cで行なった。Δ0D57゜
を10,000倍して結果を第8表に示した。
を採り、これに上記のP E G 500,000の0
.1〜1.00%溶液350μ!を加えた。これに上記
の梅毒抗原感作ラテツクス液50μ!を添加後、この溶
液を撹拌・混合した。そして、該ラテックス液の添加か
ら80秒後と320秒後の波長570nmにおける吸光
度の差(Δ0D570)を分光光度計で読み取った。な
お、抗原抗体反応は37°Cで行なった。Δ0D57゜
を10,000倍して結果を第8表に示した。
また、使用したPEGの濃度とΔ0D570との関係を
第1図に示した。
第1図に示した。
比較例5
0.1〜1.0%P E G 500,000の代わり
に、PEG7,500を1%BSA −PBSにそれぞ
れ1.0.2.0.3.0.4.0%(W/W) とな
るように溶解させたもの、または1%BSA −PBS
を用いて、実施例5と同様に反応を行なった。その結果
を第8表に示した。
に、PEG7,500を1%BSA −PBSにそれぞ
れ1.0.2.0.3.0.4.0%(W/W) とな
るように溶解させたもの、または1%BSA −PBS
を用いて、実施例5と同様に反応を行なった。その結果
を第8表に示した。
また、使用したPEGの濃度とΔOD5.。との関係を
第2図に示した。
第2図に示した。
第8表、第1図および第2図よりP E G500゜0
00の方がPEG7,500より高感度かつ非特異反応
の少ない定量ができることがわかった。なお、第1図を
みると、PEG濃度0.5%で正常血清でのΔ0D57
0値が低く、梅毒陽性血清でのΔODswo値が高い値
を示しているので至適PEG濃度は0.5%である。
00の方がPEG7,500より高感度かつ非特異反応
の少ない定量ができることがわかった。なお、第1図を
みると、PEG濃度0.5%で正常血清でのΔ0D57
0値が低く、梅毒陽性血清でのΔODswo値が高い値
を示しているので至適PEG濃度は0.5%である。
第8表
実施例6
HBS抗体の測定試薬及び測定法
凝集像の
肉眼観察による検出方法
本実施例において、実施例4と同一名の試薬は実施例4
と同様に調製を行なった。その他の試薬の調製法を次に
示す。
と同様に調製を行なった。その他の試薬の調製法を次に
示す。
HB、抗原液:ヒト血漿よりアフィニティークロマトグ
ラフィーにより精製した精製HB。
ラフィーにより精製した精製HB。
抗原を使用した。抗原はリン酸緩衝液に溶解し、濃度を
ローリ−法により測定した。使用直前に、リン酸緩衝液
により希釈し、濃度を1〜IOμg/dとなるように調
製し、これをHB s抗原液とした。
ローリ−法により測定した。使用直前に、リン酸緩衝液
により希釈し、濃度を1〜IOμg/dとなるように調
製し、これをHB s抗原液とした。
抗HB、抗血清(陽性家兎血清):精製HB s抗原を
、フロイントの完全アジュバントとともに家兎に免疫し
て得られた抗血清を、正常ヒト血清を結合させたカラム
で吸収操作をしてから用いた。正常ヒト血清を結合させ
たカラムはCNBr活性化セファロース(:L4B (
ファルマシア社)を用い、メーカー(ファルマシア)の
使用説明書に従って行った。吸収操作を行った抗HB。
、フロイントの完全アジュバントとともに家兎に免疫し
て得られた抗血清を、正常ヒト血清を結合させたカラム
で吸収操作をしてから用いた。正常ヒト血清を結合させ
たカラムはCNBr活性化セファロース(:L4B (
ファルマシア社)を用い、メーカー(ファルマシア)の
使用説明書に従って行った。吸収操作を行った抗HB。
抗血清は、1%BSΔ・PBSにより80から800倍
に希釈して用いた。
に希釈して用いた。
正常家兎血清:HBs抗原が接種されていない家兎から
採取した血清を用いた。市販PHAキットあるいはET
Aキットにより抗体の有無を測定したところ、陰性であ
った。この血清を1%BSA −PBSで80倍から8
00倍に希釈して用いた。
採取した血清を用いた。市販PHAキットあるいはET
Aキットにより抗体の有無を測定したところ、陰性であ
った。この血清を1%BSA −PBSで80倍から8
00倍に希釈して用いた。
0.2〜0.6%P E G 500,000 :平均
分子量500.000のPEGを1%BSA −PBS
で0.2.0.3.0.35.0.4および0.6%側
/誓)に溶解したもの。
分子量500.000のPEGを1%BSA −PBS
で0.2.0.3.0.35.0.4および0.6%側
/誓)に溶解したもの。
1.0〜2.0%P E G50,000 :平均分子
量50000のPEGを1%BS八・PBSで1.0.
1.5おび2.0%(W/W)に?容解したもの。
量50000のPEGを1%BS八・PBSで1.0.
1.5おび2.0%(W/W)に?容解したもの。
(A) ラテックスへのHB s抗原の感作ニラテック
ス100.!/ffiと、HBs抗原液40011Aと
を速やかに混合し、室温で撹拌した。1時間後に1%B
SA −PBSを5滅加え、15000rpmで1時間
遠心した。これを2回繰り返してラテックスを洗浄した
。洗浄後のペレットを21n1の0.2〜0゜6%P
E G 500,000または1.0〜2.0%PEG
50、000に懸濁させ、よく分散して固形分0.5%
のラテックス試薬を得た。これを4°Cにて保存した。
ス100.!/ffiと、HBs抗原液40011Aと
を速やかに混合し、室温で撹拌した。1時間後に1%B
SA −PBSを5滅加え、15000rpmで1時間
遠心した。これを2回繰り返してラテックスを洗浄した
。洗浄後のペレットを21n1の0.2〜0゜6%P
E G 500,000または1.0〜2.0%PEG
50、000に懸濁させ、よく分散して固形分0.5%
のラテックス試薬を得た。これを4°Cにて保存した。
(B)HB、抗体の測定
HB、陽性家兎血清と本実施例(A)項で得られたラテ
ックス試薬とを50μlずつ判定板上に採り、混合・撹
拌したのち3分間反応させた。
ックス試薬とを50μlずつ判定板上に採り、混合・撹
拌したのち3分間反応させた。
対照として、正常家兎血清についても同様に反応を行な
った。ラテックス試薬の凝集を実施例4と同様に行なっ
た。その結果を第9表に示す。
った。ラテックス試薬の凝集を実施例4と同様に行なっ
た。その結果を第9表に示す。
比較例6
実施例6で使用したP E C500,000またはP
E G50,000の代わりに、下記の1.0〜4.0
%PEG 7,500.10〜20%P E G 1,
000または1%BSA −PBSを用いて、実施例
6と同様に反応を行なった。その結果を第9表に示す。
E G50,000の代わりに、下記の1.0〜4.0
%PEG 7,500.10〜20%P E G 1,
000または1%BSA −PBSを用いて、実施例
6と同様に反応を行なった。その結果を第9表に示す。
1.0〜4.0%P E G 7,500 :平均分子
量7,500のPEGを、1%BSΔ・PBSに、1.
0.2.0.3.0および4.0%(W/W)に溶解し
たもの。
量7,500のPEGを、1%BSΔ・PBSに、1.
0.2.0.3.0および4.0%(W/W)に溶解し
たもの。
10〜20%P E G 1,000 :平均分子量i
、 oooのPEGを、1%BS八・PBSに、10
.15および20%(讐/W)に溶解したもの。
、 oooのPEGを、1%BS八・PBSに、10
.15および20%(讐/W)に溶解したもの。
第9表よりPEGの分子量は30,000以上を用いる
方が高い検出感度が得られることがわかった。また、P
EGの分子量は50,000より500,000を用い
る方が、より高い感度が得られることがわかった。
方が高い検出感度が得られることがわかった。また、P
EGの分子量は50,000より500,000を用い
る方が、より高い感度が得られることがわかった。
(以下余白 )
第9表
実施例7
HB S抗体の測定試薬及び測定法−光学的な検出方法
実施例6の検体および試薬を用い、日立7050型全自
動分析装置により測定を行なった。但し、HBS抗原感
作ラテックス試薬にはPEG500000またばP E
G 50,000は力■えず、1%BS八・PBSで
希釈して固形分0.25%に調製した。
動分析装置により測定を行なった。但し、HBS抗原感
作ラテックス試薬にはPEG500000またばP E
G 50,000は力■えず、1%BS八・PBSで
希釈して固形分0.25%に調製した。
また、P E G 500,000は1%BS八・PB
Sに0.2.0.3.0.35.0.4および0.6%
(W/W)に、PEG50,000は1%BSA −P
BSに1.0.1.5および2.0%(W/W)に溶解
させて使用した。すなわち、この試薬は感作ラテツクス
液からなる第1試薬とPEG溶液からなる第2試薬とか
ら構成されるものである。
Sに0.2.0.3.0.35.0.4および0.6%
(W/W)に、PEG50,000は1%BSA −P
BSに1.0.1.5および2.0%(W/W)に溶解
させて使用した。すなわち、この試薬は感作ラテツクス
液からなる第1試薬とPEG溶液からなる第2試薬とか
ら構成されるものである。
損1 法と濱1″″
検体としてHBS陽性家兎血清または正常家兎血清20
μ!を採り、これに上記の各濃度のPEG 500,0
00またはP E G50,000の溶液350μ!を
加えた。これに上記のHBS抗原感作ラテックス液50
μ!を添加後、この溶液を撹拌・混合した。そして、該
ラテックス液の添加から80秒後と320秒後の波長5
70nmにおける吸光度の差(ΔOD5.。)を分光光
度計で読み取った。なお、抗原抗体反応は37°Cで行
なった。八〇D570を1.0.000倍して結果を第
10表に示した。
μ!を採り、これに上記の各濃度のPEG 500,0
00またはP E G50,000の溶液350μ!を
加えた。これに上記のHBS抗原感作ラテックス液50
μ!を添加後、この溶液を撹拌・混合した。そして、該
ラテックス液の添加から80秒後と320秒後の波長5
70nmにおける吸光度の差(ΔOD5.。)を分光光
度計で読み取った。なお、抗原抗体反応は37°Cで行
なった。八〇D570を1.0.000倍して結果を第
10表に示した。
また、使用したPEGの濃度とΔ0DS70との関係を
P E G 500,000について第3図、PEG
50.000について第4図に示した。
P E G 500,000について第3図、PEG
50.000について第4図に示した。
第10表
比較例7
P E G 500,000またはP E 050,0
00の代わりに、P E G 7,500を1%BSA
−PBSにそれぞれ1.0.2.0.3.0および4
.0%(リハ)となるように溶解させたもの、PEGI
、000を1%BS八・PBSにそれぞれ10.15お
よび20%(誓/W) となるように溶解させたものま
たは1%BSA・PBSを用いて、実施例7と同様に反
応を行なった。
00の代わりに、P E G 7,500を1%BSA
−PBSにそれぞれ1.0.2.0.3.0および4
.0%(リハ)となるように溶解させたもの、PEGI
、000を1%BS八・PBSにそれぞれ10.15お
よび20%(誓/W) となるように溶解させたものま
たは1%BSA・PBSを用いて、実施例7と同様に反
応を行なった。
その結果を第10表に示した。
また、使用したPEGの濃度とΔ0D57Gとの関係を
PEG7,500について第5図、PEG1 、000
について第6図に示した。
PEG7,500について第5図、PEG1 、000
について第6図に示した。
第1O表および第3〜6図より、PEGの分子量は30
,000以上を用いる方が高い検出感度が得られかつ非
特異反応の少ない定量ができることがわかった。
,000以上を用いる方が高い検出感度が得られかつ非
特異反応の少ない定量ができることがわかった。
また、PEGの分子量は50,000より500,00
0を用いる方がさらに高い検出感度が得られることがわ
かった。
0を用いる方がさらに高い検出感度が得られることがわ
かった。
P E G 500,000を用いた場合、0.3〜0
.35%で高い検出感度が得られかつ非特異反応が少な
く、至適であることがわかった。
.35%で高い検出感度が得られかつ非特異反応が少な
く、至適であることがわかった。
(発明の効果)
本発明によれば、このように、不溶性担体を使用し免疫
凝集反応に基づく被測定物質の測定において、高い検出
感度で非特異反応が少ない免疫測定試薬および免疫測定
法が提供される。
凝集反応に基づく被測定物質の測定において、高い検出
感度で非特異反応が少ない免疫測定試薬および免疫測定
法が提供される。
従って、本発明の試薬及び測定法は、各種の生理活性物
質、特に、アルファーフェトプロティン抗原、梅毒トレ
ポネーマ抗体およびHBS抗体などの測定に適している
。
質、特に、アルファーフェトプロティン抗原、梅毒トレ
ポネーマ抗体およびHBS抗体などの測定に適している
。
第1図は本発明により血清中の梅毒トレポネーマ抗体を
測定したときの、PEG濃度と測定の結果得られる吸光
度との関係を示すグラフである。第2図は、この場合の
比較例を示すグラフである。第3図および第4図は、本
発明により血清中のHBS抗体を測定したときの、PE
G濃度と測定の結果得られる吸光度との関係を示すグラ
フである。第5図、第6図は、この場合の比較例を示す
グラフである。 以上
測定したときの、PEG濃度と測定の結果得られる吸光
度との関係を示すグラフである。第2図は、この場合の
比較例を示すグラフである。第3図および第4図は、本
発明により血清中のHBS抗体を測定したときの、PE
G濃度と測定の結果得られる吸光度との関係を示すグラ
フである。第5図、第6図は、この場合の比較例を示す
グラフである。 以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)被測定物質である抗原または抗体に対応する抗体ま
たは抗原を担持した不溶性担体および平均分子量30,
000以上のポリエチレングリコールから構成される免
疫測定試薬。 2)被測定物質である抗体に対応する抗原を担持した不
溶性担体および平均分子量30,000以上のポリエチ
レングリコールから構成される免疫測定試薬。 3)被測定物質である抗体に対応する抗原が、梅毒トレ
ポネーマ抗原またはHBS抗原である請求項2記載の免
疫測定試薬。 4)被測定物質である抗原または抗体に対応する抗体ま
たは抗原を不溶性担体に担持させ、被測定物質との抗原
抗体反応により生じた不溶性担体の凝集の度合を検出す
ることにより、被測定物質を測定する免疫測定法であっ
て、該抗原抗体反応の反応系に平均分子量30,000
以上のポリエチレングリコールを存在させる、免疫測定
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1080078A JP2682697B2 (ja) | 1989-03-29 | 1989-03-29 | 免疫測定試薬および免疫測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1080078A JP2682697B2 (ja) | 1989-03-29 | 1989-03-29 | 免疫測定試薬および免疫測定法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH02257063A true JPH02257063A (ja) | 1990-10-17 |
| JP2682697B2 JP2682697B2 (ja) | 1997-11-26 |
Family
ID=13708180
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1080078A Expired - Fee Related JP2682697B2 (ja) | 1989-03-29 | 1989-03-29 | 免疫測定試薬および免疫測定法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2682697B2 (ja) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH05288748A (ja) * | 1992-04-08 | 1993-11-02 | Sanwa Kagaku Kenkyusho Co Ltd | イヌ crp の簡易検出試薬及びその製法 |
| US6210975B1 (en) | 1990-10-30 | 2001-04-03 | Roche Diagnostics Gmbh | Process for determining a bindable analyte via immune precipitation and reagent therefor |
| JP2008215894A (ja) * | 2007-03-01 | 2008-09-18 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 蛋白質の検出方法及びペプチドの検出方法 |
| CN100472213C (zh) | 1994-09-19 | 2009-03-25 | 里卡尔多·J·莫罗 | 癌症的检测和治疗 |
| EP2042870A1 (en) | 2007-09-28 | 2009-04-01 | Fujifilm Corporation | Method of high sensitive immunoassay |
| CN106596963A (zh) * | 2016-05-27 | 2017-04-26 | 安徽伊普诺康生物技术股份有限公司 | 一种测定甲胎蛋白的试剂盒 |
| US20210396741A1 (en) * | 2018-11-09 | 2021-12-23 | Sekisui Medical Co., Ltd. | Method for preventing irregular detection in immunoassay in automatic analyzer, and immunoassay reagent |
| JP2022132100A (ja) * | 2021-02-26 | 2022-09-07 | キヤノン株式会社 | ラテックス凝集反応増感剤、ラテックス凝集試薬、及びそれを用いたラテックス凝集法による検体中の標的物質の測定方法 |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20220276232A1 (en) | 2021-02-26 | 2022-09-01 | Canon Kabushiki Kaisha | Latex agglutination reaction sensitizer, latex agglutination reagent, and method for measuring target substance in specimen by latex agglutination method using the same |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS55138657A (en) * | 1979-04-05 | 1980-10-29 | Mallinckrodt Chemical Works | Method of and reagent for eliminating lipemia trouble |
-
1989
- 1989-03-29 JP JP1080078A patent/JP2682697B2/ja not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS55138657A (en) * | 1979-04-05 | 1980-10-29 | Mallinckrodt Chemical Works | Method of and reagent for eliminating lipemia trouble |
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|---|---|---|---|---|
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| JPH05288748A (ja) * | 1992-04-08 | 1993-11-02 | Sanwa Kagaku Kenkyusho Co Ltd | イヌ crp の簡易検出試薬及びその製法 |
| CN100472213C (zh) | 1994-09-19 | 2009-03-25 | 里卡尔多·J·莫罗 | 癌症的检测和治疗 |
| JP2008215894A (ja) * | 2007-03-01 | 2008-09-18 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 蛋白質の検出方法及びペプチドの検出方法 |
| EP2042870A1 (en) | 2007-09-28 | 2009-04-01 | Fujifilm Corporation | Method of high sensitive immunoassay |
| CN106596963A (zh) * | 2016-05-27 | 2017-04-26 | 安徽伊普诺康生物技术股份有限公司 | 一种测定甲胎蛋白的试剂盒 |
| US20210396741A1 (en) * | 2018-11-09 | 2021-12-23 | Sekisui Medical Co., Ltd. | Method for preventing irregular detection in immunoassay in automatic analyzer, and immunoassay reagent |
| JP2022132100A (ja) * | 2021-02-26 | 2022-09-07 | キヤノン株式会社 | ラテックス凝集反応増感剤、ラテックス凝集試薬、及びそれを用いたラテックス凝集法による検体中の標的物質の測定方法 |
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| JP2682697B2 (ja) | 1997-11-26 |
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