JPH02295923A - 腸内クロストリジウム属細菌の増殖阻害剤 - Google Patents

腸内クロストリジウム属細菌の増殖阻害剤

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JPH02295923A
JPH02295923A JP1116598A JP11659889A JPH02295923A JP H02295923 A JPH02295923 A JP H02295923A JP 1116598 A JP1116598 A JP 1116598A JP 11659889 A JP11659889 A JP 11659889A JP H02295923 A JPH02295923 A JP H02295923A
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clostridium
bacteria
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catechin
formula
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JP1116598A
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English (en)
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Riyuushiyun Yasu
安 龍濬
Masa Kanetake
金 武▲とし▼
Tomotari Mitsuoka
光岡 知足
Senji Sakanaka
阪中 専二
Toshiya Kawamura
河村 俊也
Tomohiko Fujisawa
藤沢 倫彦
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Taiyo Kagaku Co Ltd
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Taiyo Kagaku Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は腸内の有害菌の増殖阻害に有効な組成物に関す
る。
本発明の阻害組成物は、腸内有害菌の中で最も有害であ
るクロストリジウム属(Clostridium )に
対して優れた選択的増殖阻害活性を有しておりクロスト
リジウム属によって引き起こされる様々な病気を抑え、
常に健康な状態を保つには極めて有効な成分である。
〔従来の技術〕
ヒトの腸内には100兆100種にも及ぶ細菌が棲息し
、常に一定のバランスを保ち、大変複雑な種の多様性を
もつ生態系を構成し、絶えず増殖しては排泄きれている
。これらの細菌の大部分は死菌として取り扱ってきたが
、近年、優れた嫌気培養技術の進歩やこより、その殆ど
が生きた細菌として存在していることが明かになった。
これらの腸内細菌は食物や薬物に由来する様々な物質や
内因性物質の代謝に関与していて、ヒトの栄養、生理機
能、感染、免疫2発癌、老化、薬効等に重要な役割を果
たしている(光岡知足“腸内菌の世界”叢文社、東京、
1980年;D、J。
Hentges ’Human Intestinal
 l’1icroflora 1nHealth an
d Disease” Academic Press
、 NewYork、 1983 ) 。
腸内フローラの中で、ビフィドバクテリウム(Bifi
dobactarium ) 、ラクトバチルス(La
ctobacillus) *ストレプトコッカス(5
treptococcus )等の乳酸菌群、バタテロ
イダセア(Bacteroidaceae)、アナエロ
ピック・カーブドφロツズ゛(Anaerobic c
urved rods) 、ニーバクテリウム(Eub
acterium) 、ペブトコッカセア(Pepto
coccaceae )十リジウム(Clostrid
ium) 、 )レボネ7 (Trap。
nema )等の嫌気性菌群、ユーテロバクテロイダセ
ア(Euterobacteroiaceae ) 、
スタフィロコッカスモナス(Pseudomonas 
)等の好気性菌が主要菌群である。
これらの腸内菌の中には、ビフィドバクテリウムのよう
にヒトの感染防御、栄養、腸内浄化等の面で有利に働く
ものがあるに対し、クロストリジウム等の有害菌は、発
癌、肝臓病、動脈硬化症。
高血圧症、自発性感染症等に関係している。また腸内フ
ローラは年齢に伴って変わる。壮年期を過ぎて老年期に
入ると総画数はやや減少し、ビフィドバクテリウムが減
少する。これに対しクロストリジウム◆バーフリンジエ
ンス(Clostridium perfringen
s ) は検出率、菌数ともに顕著に増加しこれがさら
に老化を促進するようになる(光岡知足“腸内菌の世界
”叢文社、東京、1980)。
従って腸内有害菌、特にクロストリジウムによって引き
起こされる様々な病気の発生を予防するためには良い役
割を果たす乳酸菌には影響がなくクロストリジウムの増
殖だけを、選択的に阻害することが最も効果的な方法で
ある。
〔発明が解決しようとする課題〕
従来、腸内有害菌を阻害する殺菌剤あるいは各種の抗生
物質が検討されてきたが、これらの技術では必ずしも満
足すべき効果が得られていない。
即ち、腸内常在菌の一部には普段は何ら病原性を持たな
いにもかかわらず、スルフォンアミド類(Sulfon
amides )などの殺菌剤やペニシリン類(Pen
1cillins ) などの抗生物質の連用によって
腸内フローラのバランスが崩れている時(S、M。
Finegold、 G、 E、 Mathisen 
& W、 L、 George、 pp356〜446
. D、 J、 Hentges ed、 ”Huma
n IntestinalMicroflora in
 Health and DiseaseHAcade
micPress、 New York、 1983)
やステロイドホルモン。
免疫抑制剤等によって生体の防御が低下した時、また老
化に伴って腸内フローラを構成する細菌のうち、あるも
のが日和見感染を起こし健康時には増殖できない臓器に
侵入し、敗血症、心内膜炎。
脳・肝・肺の腫瘍、膀胱炎、膣炎等を引き起こすなど好
ましからぬ状況をもたらすことが多い。
(光岡知足“腸内菌の世界”叢文社、東京、1980年
) 〔問題を解決するための手段〕 本発明者らは、多数のクロストリジウムに対して選択的
に抗菌作用を示し、かつ長期の連用に於て安全性の高い
物質を探すべぐ鋭意研究を重ねた結果、ツバキ科の植物
、特に我々が日常飲用に供している茶に含まれるカテキ
ン化合物が腸内有害菌であるクロストリジウムに対して
優れた選択的増殖阻害活性を有することを見い出した。
本発明者らは、茶(Thea 5inensis ’L
、 = Camelli−a 5inensis(L、
 ) O,Kuntze)に含まれるカテキン化合物を
有効成分とする腸内有害菌の増殖阻害活性組成物を得る
ことに成功した。
本発明のカテキン化合物とは、特許請求の範囲記載の(
1)式及び(2)式で表される第1表に示した6種類の
カテキン類縁体化合物をさす。
第1表 本発明のカテキン化合物は、茶の水もしくはアルコール
抽出物の酢酸エチル可溶画分より得ることができるが、
他の原料起源のもの及び化学合成品でもさしつかえない
。
本発明のカテキン化合物の典型的調製法を例示すると次
のようである。
まず茶を十分量の水もしくは、アルコールで室温抽出す
る。抽出後、公知の方法にて残金を分離し抽出液を得る
。抽出液から溶媒を留去しその残留物に水を加え溶解後
、ヘキサン、クロロホルム及び酢酸エチルを順次用いて
分配を行い、ヘキサン可溶画分2クロロホルム可溶画分
及び酢酸エチル可溶画分を得る0本操作におけるヘキサ
ン及びクロロホルムによる分配は、水もしくはアルコー
ル抽出物の着色度及び粘度等の状況により省略すること
ができるが、酢酸エチル可溶画分の純度を上げるために
は、ヘキサン及びクロロホルムによる分配の実施が望ま
しい。
抽出に用いるアルコールはメチルアルコール。
エチルアルコール、n−プロピルアルコール、イソプロ
ピルアルコール、ブチルアルコール等の低級アルコール
が操作性、抽出効率の点から好ましい。
さらに上記で得られた酢酸エチル可溶画分をシリカゲル
カラムクロマトグラフィーにイ寸し、クロ旧ボルムーメ
チルアルコール(20:1.V/V)及びクロロホルム
−メチルアルコール(10:1 、V/V)の溶媒にて
順次溶出することにより第1表の6種化合物を得ること
ができる。また必要に応じてさらにセファデックスLH
−20に付し適当な溶媒、例えばメチルアルコールにて
溶出することにより、あるいはリサイクルHPLC(日
本分析工業製、LC−908、G5−320カラム、溶
媒メチルアルコール)を用いることにより、より高純度
の第1表の6種化合物を得ることができる。
このカテキン化合物が、腸内有害菌であるクロストリジ
ウム′を選択的に阻害する活性を有することは本発明者
により、はじめて明らかにされたものである。
本発明のクロストリジウム阻害組成物の有効成分である
カテキン化合物は、腸内有害菌である多種のクロストリ
ジウムに対する抗菌性試験において、極めて優れた結果
を示した。これらの有害菌による様々な病気の予防に有
用なこれらの作用につき、以下に実施例及び試験例を挙
げて詳細に説明する。
〔実施例〕
実施例1゜ 緑茶1kgにメチルアルコール4p、を加え、室温で2
日間浸漬抽出した。抽出液を?濾過しメチルアルコール
を留去し乾燥して抽出物的0.23kgを得た(緑茶の
メチルアルコール抽出物、第1表に示すカテキン化合物
の混合物として純度389%)。
実施例2゜ 実施例1の緑茶のメチルアルコール抽出物(60g)に
0.5j2の水を加え溶解後、1.5!ヘキサン、1.
5Qクロロホルム及び1.51酢酸エチルを順次用いて
分配を行い、ヘキサン可溶画分(3,2g)、クロロホ
ルム可溶画分(4,0g)、酢酸エチル可溶画分(22
,8g)及び水可溶画分(30,0g)を得た(緑茶の
ヘキサン、クロロホルム、酢酸エチル及び水可溶画分)
。
実施例3゜ 一実施例2で得られた酢酸エチル可溶画分(第1表に示
すカテキン化合物の混合物として純度837%)1gを
シリカゲルカラムクロマトグラフィー(溶媒クロロポル
ム−メチルアルコール、20:1.LO:1.v/v)
、セフ7デツクスLH−20(溶媒メチルアルコール)
、リサイクルHPLC(日本分析工業製、LC−908
,G5−320クラム、溶媒メチルアルコール、溶出速
度3m!/m1n)を用いることにより、第1表の6種
化合物、I(17mg)、IF(40mg)、III(
10mg)、IV(117mg)、V(86mg ) 
、 VI(340mg )を得た(緑茶のカテキン化合
物)。
試験例1゜ 実施例1で得られた緑茶のメチルアルコール粗抽出物に
つき、各種細菌に対するその増殖阻害活性を試験した。
48時間EG培地(栄研株式会社製)で嫌気培養された
菌を滅菌生理食塩水(0゜85% NaC1,0,1%
 L−システィン−HCl、0.1% チオグリコール
酸ナトリウム)1mj2に懸濁した後、この懸濁液0.
1mlを5%の馬面液を添加したBrucella培地
(Difco製)の表面に塗布した。あらかじめメチル
アルコールに溶解された試料溶液100μ2を抗菌性試
験用のP紙(直径8mm、東洋P紙)に毛細管を使って
添加し溶媒を蒸発させた後、菌が接種きれたBruce
lla培地の表面に置いた。平板を80%窒素ガスと1
5%炭酸ガスと5%の水素ガスの混合ガス下で、37°
C,2日間嫌気培養した。対照には、試料溶液の代わり
にメチルアルコールを使用した。阻害活性の判定は、阻
止円の大きさが13mm以上の場合、阻害活性は強(+
+)、12mm以下の発育阻害部分が認められる場合、
阻害活性は中(+)、阻害が認められない場合は(−)
で表した。
[試験菌種] 1、ビフィドバクテリウム・アドレセンチス(Bifi
dobactarium adolescentis)
 E−194a2、ビフィドバクテリウム・アドレセン
チス(B、 adolescentis) E−319
a3、ビフィドバクテリウム・ビフィダム(B、 bi
fidum) E−319a4、ビフィドバクテリウム
・ビフィダム(B、 bifidum) S−28a5
、ビフィドバクテリウム・ブレベ (B、 breve) 5−1 6、ビフィドバクテリウム・ブレベ (B、 brave) S−46 7、ビフィドバクテリウム・インファンチス(B、 1
nfantis) S−128、ビフィドバクテリウム
・インファンチス(B、 1nfantis) 1−1
0−59、ビフィドバクテリウム・ロンガム (B、 longum) E(94b 1.0.ビフィドバクテリウム・ロンガム(B、 lo
ngum) Kd−5−611,ラクトバチルス・アジ
ドフィラス(Lactobachillus acid
ophilus) ArCC−435612、ラクトバ
チルス・カゼイ (L、 casei) ArCC−746913、ラク
トバチルス・サリバリュウス(L、 5alivari
us) A’1CC−1174114、バクテロイデス
・ジスタソニス (Bacteroides distasonis) 
B−2615、バクテロイデス番ジスタソニス (B、 distasonis) S−60116、バ
クテロイデス・フラジリス (B、 fragilis) M−60117、バクテ
ロイデス・フラジリス (B、 fragilis) VI−2318、バクテ
ロイデス・セタイウタミクロン(B、 thetaio
taomicron) As−12619、バクテロイ
デス・プルガラス (B、 vulgatus) B−2420、バクテロ
イデス・プルガラス (B、 vulgatus) F−9221、クロスト
リジウム・ビフエルメンタンス(Clostridiu
m bifermentans) B−122、クロス
トリジウム・ビフェルメンタンス(C,biferme
ntans) B−4−23,クロストリジウム・ブチ
リクム(C,butyricum) ArCC−148
2324、クロストリジウム・ブチリクム (C,butyricum) S−60125、クロス
トリジウム・ココイデス (C,coccoides) B−2 26、クロストリジウム・ジフィシル (C,difficile) A’1CC−96892
7、クロストリジウム・インノキューム(C,inno
cuum)  M−60128、クロストリジウム・バ
ラブトリフィクム(C,paraputrificum
) B−3−429、クロストリジウム・バラブトリフ
ィクム(C,paraputrificum) B−7
83,0,クロストリジウム・パラブトリフィクム(C
,paraputrificum) VPI−6372
31、クロストリジウムΦバーフリンジエンス(C,p
erfringens) ATCC−1312432、
クロストリジウム・バーフリンジエンス(C,perf
ringens) B−3−733、クロストリジウム
・バーフリンジエンス(C,凹せり四辻凹) B−3−
8 34、クロストリジウム・バーフリンジェンス(C,p
erfringens) B−165−1635、クロ
ストリジウム・バーフリンジエンス(C,perfri
ngens) C−0136、クロストリジウム書うモ
スム (C,ramosum) ATCC−2558237、
クロストリジウム・ラモスム (C,ramosum) C−00 38、ニーバクテリウム・オーしオファシエンス(Eu
baeterium aerofaciens) S−
60139、ニーバクテリウム参オーしオファシエンス
(E、 aerofaciens) S−60540、
ニーバクテリウム・レンタム (Eubacterium lentum) M−60
141、ニーバクテリウム・リモスム (E、  limosum)  E−142、エシェリ
キア争フリ (Escherichia coli) E−605−
43,エシェリキア・コリ (E、  coli)  M−602 44、エシェリキア争フリ (E、 coli) 0−601 45、エシェリキア・コリ (E、 coli) V−603 緑茶のメチルアルコール抽出物(実施例1)の腸内細菌
に対する抗菌試験の結果は第2表に示した通りである。
メチルアルコール抽出物は腸内細菌の中で最も有害であ
るクロストリジウムのみを選択的阻害した。よい役割を
果たしているビフィドバクテリウム、ラクトバグ・ルス
菌には阻害活性を示さなかった。また他の菌にも増殖阻
害活性は認められなかった。
第2表 + ++ ++ ++ + ++ ++ ++ ++ 十+ + ++ ++ ++ 試験例2 実施例2の酢酸エチル可溶画分につきクロストリジウム
・ジフィシル、クロストリジウム争パラブ、トリフィク
ム及びクロストリジウム・パーフリンジェンスに対する
増殖阻害活性を試験した。即ち、1白金耳の試験細菌を
1mlの生理食塩水に懸濁した。この懸濁液の0.1m
lを5%の馬面液を添加したBrucella培地([
)ifco製)の表面に塗布した。上記酢酸エチル可溶
画分5mg及び1mgをメチルアルコール(100μl
)に溶解した溶液をベーパーディスク(直径8mm、東
洋濾紙)に毛細管を使って添加した。溶媒を蒸発きせた
後、ディスクを寒天表面に置き、平板を80%窒素ガス
と15%炭酸ガスと5%水素ガスの混合ガス下で、37
℃、2日間定温保持した。阻害活性の判定は、阻止円の
大きさが13mm以上の場合、阻害活性は強(++)、
12mm以下の阻害部分が認められる場合、阻害活性は
中(+)、阻害が認められない場合は(−)で表した。
結果は第3表に示すように、腸内細菌の中で最も有害菌
であるクロスト)ノジウム・ジフィシル(2株)、クロ
ストリジウム・バラブトリフィクム(1株)及びクロス
トリジウム・バーフリンジエンス(3株)の増殖を阻害
した。
第3表 C,difficile・ATcc 9689    
−    + +C,difficile V−6−+
 +−C,paraputrificum VPI−6
372−++C,perfringens AI’CC
−13124−+ +C,perfringens B
−165−16−+ +C,perfringens 
B−3−7+ +試験例3゜ 実施例3の6種のカテキン化合物■〜■にっきクロスト
リジウム・バーフリンジエンス ATCC−13124
とクロストリジウム・ジフィシルATCC−9689菌
株に対するその増殖阻害即ち、上記化合物I 〜VIを
0.5mg 、1.0mg及び5.0mgをメチルアル
コール(100μl)に溶解した溶液をペーパーディス
ク(直径8mm、東洋濾紙)に毛細管を使って添加した
。溶媒、を蒸発させた後、あらかじめ試験菌株が塗布さ
れたBrucella培地(Difco製)の表面にデ
ィスクを置いた。平板を80%窒素ガスと15%次酸ガ
スと5%水素ガスの混合ガス下で、37℃、2日間定温
保持した。阻害活性の判定は、阻止円の大きさが13m
m以上の場合、阻害活性は強(++)、12mm以下の
阻害部分が認められる場合、阻害活性は中(+)、阻害
が認められない場合は(−)で表した。
腸内細菌に対する本発明のカテキン化合物の抗菌試験は
、クロストリジウム・パーフリンジエンスATCC−1
3124とクロストリジウム・ジフィシル ATCC−
9689菌株を用いて抗菌試験の結果は第4表及び第5
表に示した。クロストリジウム・パーフリンジエンス 
ATCC−13124菌の場合、化合物V及び■は、5
 m g /ディスク処理では強い増殖阻害活性を示し
、化合物t、n、mは中程度の活性を示した。1.0m
g/ディスク以下の濃度では阻害活性は認められなかっ
た。
一方、クロストリジウム・ジフイシル ATCC−96
89菌に対しては、化合物■及び■のみ強い阻害活性を
示した。
本発明のカテキン化合物は、古くは中国の薬物書(新訂
校定国訳本草網目、第8冊、木材−監修、P、579〜
594.1974.春陽堂、東京一)にも記#cキれて
いる茶由来のものであり、茶の成分として多量に含まれ
ていることからその安全性は歴史経験から既に実証され
ている。
第4表 第5表 使用態様 本発明のカテキン化合物を、腸内有害菌であるクロスト
リジウムによる様々な病気の予防用組成物として使用す
るためには適当な経口投与剤として使用するのが好まし
い、この様々な経口投与剤は、液剤、固形剤、半固形剤
のいずれであってもよく、対象としては乳幼児、成人の
飲料水に添加し使用することができる。添加する本来の
カテキン化合物の量は使用態様によっても異なるが、通
常有効量である0、1μg/kg体重以上となるように
投与するのが望ましい。
これらの経口投与剤を製造するのに使用される賦形剤又
は補助剤は、通常この種の目的に使用されるものから網
形に応じて適宜選択すればよく、特に制限きれるもので
はない。
−〔発明の効果〕 本発明の有効成分であるカテキン化合物は、様々な病気
の原因となる腸内有害菌であるクロストリジウム菌に対
し強い阻害活性を示す。しかもごく少量で有効性を示す
本発明のカテキン化合物は古来より飲用に供されている
茶の成分であることからその安全性は極めて高く、クロ
ストリジウム感染予防剤を大量に供給することが可能で
あり乳幼児の病気や成人病の予防又は改善あるいは動物
の病気の予防に貢献することは勿論、産業的にも極めて
有用であると考えられる。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 下記(1)式及び(2)式 ▲数式、化学式、表等があります▼−−−−−(1) ▲数式、化学式、表等があります▼−−−−−−(2) (式中R_1は水素原子又はヒドロキシル基を示し、R
    _2は水素原子又は3,4,5−トリハイドロキシベン
    ゾイル基 ▲数式、化学式、表等があります▼ を示す) で表されるカテキン化合物を有効成分とする腸内有害菌
    の増殖阻害組成物。
JP1116598A 1989-05-10 1989-05-10 腸内クロストリジウム属細菌の増殖阻害剤 Pending JPH02295923A (ja)

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