JPH0242063A - 酵素活性測定用の化合物、酵素の検出法及び検出用試薬 - Google Patents
酵素活性測定用の化合物、酵素の検出法及び検出用試薬Info
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- C07—ORGANIC CHEMISTRY
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- C07D231/00—Heterocyclic compounds containing 1,2-diazole or hydrogenated 1,2-diazole rings
- C07D231/02—Heterocyclic compounds containing 1,2-diazole or hydrogenated 1,2-diazole rings not condensed with other rings
- C07D231/10—Heterocyclic compounds containing 1,2-diazole or hydrogenated 1,2-diazole rings not condensed with other rings having two or three double bonds between ring members or between ring members and non-ring members
- C07D231/14—Heterocyclic compounds containing 1,2-diazole or hydrogenated 1,2-diazole rings not condensed with other rings having two or three double bonds between ring members or between ring members and non-ring members with hetero atoms or with carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals, directly attached to ring carbon atoms
- C07D231/18—One oxygen or sulfur atom
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
この発明は、アミノ酸で置換された4−アミノピリン(
[4−アミノフェナジン」とも称しつる。)であって酵
素活性を測定するための基質として利用される新規なア
ミドに関するものである。特にこの発明はアミノ酸で置
換された4−アミノピリン、特にグルタミル−4−アミ
ノピリン、であって、置換体アミノ酸がアミノ酸を認識
する酵素により開裂されて4−アミノピリンが生成され
、その4−アミノピリンをアミノ色素中間体として酸化
剤の存在下で第2の色素中間体と反応させてクロモゲン
を生成させるように用いられるところの、アミノ酸で置
換された4−アミノピリンに係る。
[4−アミノフェナジン」とも称しつる。)であって酵
素活性を測定するための基質として利用される新規なア
ミドに関するものである。特にこの発明はアミノ酸で置
換された4−アミノピリン、特にグルタミル−4−アミ
ノピリン、であって、置換体アミノ酸がアミノ酸を認識
する酵素により開裂されて4−アミノピリンが生成され
、その4−アミノピリンをアミノ色素中間体として酸化
剤の存在下で第2の色素中間体と反応させてクロモゲン
を生成させるように用いられるところの、アミノ酸で置
換された4−アミノピリンに係る。
全ゆる肝臓病で血清ガンマグルタミルトランスフェラー
ゼ(GGT)が高められる( Mo5s、 D、 W、
。
ゼ(GGT)が高められる( Mo5s、 D、 W、
。
et al、 Enzymes、 In + ’I
’eitz、 N、 W、 、 ed、 Textbo
okof Cl1nical C11emiC11e
、 philadelphia : W、 B、 5a
unders。
’eitz、 N、 W、 、 ed、 Textbo
okof Cl1nical C11emiC11e
、 philadelphia : W、 B、 5a
unders。
5 : 721−722 (1986))。閉塞性黄痘
、胆管炎及び胆のう炎を検知するためにGGTはアルカ
リンホスワアターゼ、5′−ヌクレオシダーゼ、ロイシ
ンアミノペプチダーゼ、及びトランスアミナーゼ類より
も感受性が大である(Moss、 I)、 W、、 e
tal、 Enzymes、 In : Te1tz
、 N、 W、 、 ed、 Textbookof
Cl1nical Chemistry、 Ph1la
delphia :W、 B、3aunders。
、胆管炎及び胆のう炎を検知するためにGGTはアルカ
リンホスワアターゼ、5′−ヌクレオシダーゼ、ロイシ
ンアミノペプチダーゼ、及びトランスアミナーゼ類より
も感受性が大である(Moss、 I)、 W、、 e
tal、 Enzymes、 In : Te1tz
、 N、 W、 、 ed、 Textbookof
Cl1nical Chemistry、 Ph1la
delphia :W、 B、3aunders。
5 : 721−722 (1986))。GGTの上
昇は上述の他の酵素よりも早期薯こ生じ、より長く持続
する。
昇は上述の他の酵素よりも早期薯こ生じ、より長く持続
する。
血清GGTの活性測定はアルコールに原因する肝臓病を
検知するのに極めて有用である。アルコール肝硬変症の
患者の血清中のみならず大多数の大酒飲みの血清中にも
、GGT濃度の上昇が認められる (Moss、 El
、 W、、 et al、 Enzymes、 i
n:Te1tz。
検知するのに極めて有用である。アルコール肝硬変症の
患者の血清中のみならず大多数の大酒飲みの血清中にも
、GGT濃度の上昇が認められる (Moss、 El
、 W、、 et al、 Enzymes、 i
n:Te1tz。
N、 W、+ ed、 Textbook of C1
1nical Chemistry、Ph1l−ad
elphia : W、 B、 5aunders、
5 : 721−722(1986))。
1nical Chemistry、Ph1l−ad
elphia : W、 B、 5aunders、
5 : 721−722(1986))。
GGTを測定するための当初の方法には生理的な基質グ
ルタチオンを利用する方法(Hanes、 C,S−。
ルタチオンを利用する方法(Hanes、 C,S−。
et’ al、 :Biochem、 J、 51.2
5−35 (1952))が含まれていたが、これは厄
介であるため早期に合成基質を利用する方法にとって替
られた。N−(DL−ガンマ−グルタミル)アニリン(
Goldberg、 J 、。
5−35 (1952))が含まれていたが、これは厄
介であるため早期に合成基質を利用する方法にとって替
られた。N−(DL−ガンマ−グルタミル)アニリン(
Goldberg、 J 、。
et al、 : Arch、 Biochem、 B
iophys、 91 、61−70(1960) )
、L−ガンマ−グルタミル−ナフチルア ミ ド
(Orlowski 、 M、、 et al
、 : C11n、 Chem、Acta。
iophys、 91 、61−70(1960) )
、L−ガンマ−グルタミル−ナフチルア ミ ド
(Orlowski 、 M、、 et al
、 : C11n、 Chem、Acta。
7.755−760 (1962)) 、及びL−ガン
マ−グルタミル−p−ニトロアニリド(5zasz、
G 、 。
マ−グルタミル−p−ニトロアニリド(5zasz、
G 、 。
Cl1n、 Chem、 15.124−136 (
1969))のような合成基質の利用法は全て開裂生成
物からの色素の生成を伴なうが、日常的に利用するのに
は一定の限界がある。ビーティ (Bgaty)等に附
与された米国特許Nα4,511,651及びベック(
Bgck )等に附与された米国特許Nα4,567.
138も、参照されたい。
1969))のような合成基質の利用法は全て開裂生成
物からの色素の生成を伴なうが、日常的に利用するのに
は一定の限界がある。ビーティ (Bgaty)等に附
与された米国特許Nα4,511,651及びベック(
Bgck )等に附与された米国特許Nα4,567.
138も、参照されたい。
現在GGT活性の測定のために選択されている基質はL
−ガンマ−グルタミル−3−カルボキシ−4−−1−ト
o ア= +) ト(glucANA )である( I
FCCMethods for the Me
asurement of Catalytic
Con−centration of gnzym
es、 Part 4. IFCCMethodfo
r garrma−Gultamyltransfe
rase、 C(gamma −Glutamyl)
−Peptide : Am1no Ac1d
gamma−Gultamyl−transfera
se、 EC2、3、2、2〕、 1983’)。本
基質の高い転換率と溶解度は、それ以前に利用されてイ
タ低溶解度の基質L−ガンマーグル゛タミルーpニトロ
アニリド(gluPA) と対比して一定の長所を附
与する。しかしこれらの両基質ともモル吸光係数が小さ
く、また基質と生成物とが重複するスペクトルを呈し、
色素の吸光ピークにおいてよりむしろスペクトルの肩の
部分で測定を行なわねばならない(Fossati、
P、 、 et at、 : C11n、 (hem。
−ガンマ−グルタミル−3−カルボキシ−4−−1−ト
o ア= +) ト(glucANA )である( I
FCCMethods for the Me
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Con−centration of gnzym
es、 Part 4. IFCCMethodfo
r garrma−Gultamyltransfe
rase、 C(gamma −Glutamyl)
−Peptide : Am1no Ac1d
gamma−Gultamyl−transfera
se、 EC2、3、2、2〕、 1983’)。本
基質の高い転換率と溶解度は、それ以前に利用されてイ
タ低溶解度の基質L−ガンマーグル゛タミルーpニトロ
アニリド(gluPA) と対比して一定の長所を附
与する。しかしこれらの両基質ともモル吸光係数が小さ
く、また基質と生成物とが重複するスペクトルを呈し、
色素の吸光ピークにおいてよりむしろスペクトルの肩の
部分で測定を行なわねばならない(Fossati、
P、 、 et at、 : C11n、 (hem。
32、 1581−1584(1986))。
したがってこの発明の目的とするところは酵素用の基質
として、色素中間体である4−アミノピリンを生成する
のに有用であるところのアミノ酸で置換された4−アミ
ノピリンである新規なアミドを、提供するにある。また
この発明は新規なアミノ酸置換−4−アミノピリンを利
用した酵素検出法と酵素検出試薬を提供することも、目
的とする。さらにこの発明は比較的安価で信頼性が高い
酵素の検出法と検出用試薬を提供することも、目的とす
るものである。
として、色素中間体である4−アミノピリンを生成する
のに有用であるところのアミノ酸で置換された4−アミ
ノピリンである新規なアミドを、提供するにある。また
この発明は新規なアミノ酸置換−4−アミノピリンを利
用した酵素検出法と酵素検出試薬を提供することも、目
的とする。さらにこの発明は比較的安価で信頼性が高い
酵素の検出法と検出用試薬を提供することも、目的とす
るものである。
この発明は一般式
〔式中、RC−は2個から6個までの間の炭素原子を含
むアミノ酸基である。〕で表される化合物に係る。
むアミノ酸基である。〕で表される化合物に係る。
またこの発明は酵素と反応して複素環式アミノ色素中間
体を形成する複素環式化合物へ結合されているアミノ酸
を用いる酵素検出法であり、上記アミノ色素中間体が次
いで第2の色素中間体と結合してクロモゲンを形成する
ものである検出法であって、 (a)、一般式 〔式中、RC−は2個から6個までの炭素原子を含むア
ミノ酸基である。〕で表される化合物を、酵素との反応
により生成されるアミノ酸カルボニル基用の受容体と共
に水溶液の形で設け、(b)、上記化合物を酵素と反応
させて、一般式で表される4−アミノ色素中間体、及び
上記受容体と反応するアミノ酸カルボニル基を形成し、
(C)、上記した4−アミノ色素中間体を酸化剤の存在
下で第2の色素中間体と反応させて、4−アミノ色素中
間体の4−アミノ基と第2の色素中間体との反応生成物
であるクロモゲン色素複合体を形成する、 ことを特徴とする酵素検出法に係る。
体を形成する複素環式化合物へ結合されているアミノ酸
を用いる酵素検出法であり、上記アミノ色素中間体が次
いで第2の色素中間体と結合してクロモゲンを形成する
ものである検出法であって、 (a)、一般式 〔式中、RC−は2個から6個までの炭素原子を含むア
ミノ酸基である。〕で表される化合物を、酵素との反応
により生成されるアミノ酸カルボニル基用の受容体と共
に水溶液の形で設け、(b)、上記化合物を酵素と反応
させて、一般式で表される4−アミノ色素中間体、及び
上記受容体と反応するアミノ酸カルボニル基を形成し、
(C)、上記した4−アミノ色素中間体を酸化剤の存在
下で第2の色素中間体と反応させて、4−アミノ色素中
間体の4−アミノ基と第2の色素中間体との反応生成物
であるクロモゲン色素複合体を形成する、 ことを特徴とする酵素検出法に係る。
さらにこの発明はグルタミルトランスフェラーゼの検出
法であって、 (al、 ]−]フェニルー2−メチル−3−メチル
4−グルタミルアミノ−3−ピラゾリン−5−オンを、
酵素とグルタミル基との反応により生成されるグルタミ
ルカルボキシル基用の受容体と共に水溶液の形で設け、 (b)、この水溶液中にグルタミルトランスフェラーゼ
を導入して、アミノ色素中間体としての1−フエニル−
2−N−メチル−3−メチル−4−アミノ−3−ピラゾ
リン−5−オン及びグリタミルカルボキシル基と上記受
容体との反応生成物を形成し、 (c)、 ]−]フェニルー2−N−メチル−3−メ
チル4−アミノ−3−ピラゾリン−5−オンを酸化剤及
び第2の色素中間体と反応させて、アミノ色素中間体の
4−アミノ基と第2の色素中間体との反応生成物である
色素複合体を形成する、検出法に係る。
法であって、 (al、 ]−]フェニルー2−メチル−3−メチル
4−グルタミルアミノ−3−ピラゾリン−5−オンを、
酵素とグルタミル基との反応により生成されるグルタミ
ルカルボキシル基用の受容体と共に水溶液の形で設け、 (b)、この水溶液中にグルタミルトランスフェラーゼ
を導入して、アミノ色素中間体としての1−フエニル−
2−N−メチル−3−メチル−4−アミノ−3−ピラゾ
リン−5−オン及びグリタミルカルボキシル基と上記受
容体との反応生成物を形成し、 (c)、 ]−]フェニルー2−N−メチル−3−メ
チル4−アミノ−3−ピラゾリン−5−オンを酸化剤及
び第2の色素中間体と反応させて、アミノ色素中間体の
4−アミノ基と第2の色素中間体との反応生成物である
色素複合体を形成する、検出法に係る。
またこの発明は、アミノ酸を開裂してアミノ色素中間体
を形成する酵素を、上記アミノ色素中間体を酸化剤の存
在下で第2の色素中間体と反応させてクロモゲンを形成
することにより検出する酵素検出用試薬であって、 (a)、−形成 〔式中、RC−は2個から6個までの間の炭素原子を含
むアミノ酸基である。〕で表され、上記酵素と反応して
4−アミノ色素中間体を形成する化合物、 (b)、上記した4−アミノ色素中間体と反応してクロ
モゲン色素複合体を形成する第2の色素中間体、 (C)、上記した4−アミノ色素中間体の4−アミノ基
と第2の色素中間体との間の反応を生じさせて上記クロ
モゲン色素複合体を生成させる酸化剤、及び (d)、上記した化合物が酵素と反応することにより遊
離されるアミノ酸カルボニル基のための受容体、 を含む酵素検出用試薬に係る。
を形成する酵素を、上記アミノ色素中間体を酸化剤の存
在下で第2の色素中間体と反応させてクロモゲンを形成
することにより検出する酵素検出用試薬であって、 (a)、−形成 〔式中、RC−は2個から6個までの間の炭素原子を含
むアミノ酸基である。〕で表され、上記酵素と反応して
4−アミノ色素中間体を形成する化合物、 (b)、上記した4−アミノ色素中間体と反応してクロ
モゲン色素複合体を形成する第2の色素中間体、 (C)、上記した4−アミノ色素中間体の4−アミノ基
と第2の色素中間体との間の反応を生じさせて上記クロ
モゲン色素複合体を生成させる酸化剤、及び (d)、上記した化合物が酵素と反応することにより遊
離されるアミノ酸カルボニル基のための受容体、 を含む酵素検出用試薬に係る。
この発明に係る新規化合物は、アミノ酸−4−フエナゾ
ニルアミドまたはN−(アミノ酸)−フエナゾニルアミ
ドと称しうる。望ましい化合物は4−グルタミルフェナ
ジンアミドと称しうる。これはまた、グルタミル−4−
フエナゾニルアミドまたはN−(グルタミル)−フエナ
ゾニルアミドとも称することができる。グルタミル基は
、ガンマ−グルタミルトランスフェラーゼによって認識
されるし一ガンマー異性体であるのが望ましい。
ニルアミドまたはN−(アミノ酸)−フエナゾニルアミ
ドと称しうる。望ましい化合物は4−グルタミルフェナ
ジンアミドと称しうる。これはまた、グルタミル−4−
フエナゾニルアミドまたはN−(グルタミル)−フエナ
ゾニルアミドとも称することができる。グルタミル基は
、ガンマ−グルタミルトランスフェラーゼによって認識
されるし一ガンマー異性体であるのが望ましい。
アミノ酸−4−アミノフェナジンアミドはトランスフェ
ラーゼと反応して4−アミノピリンを生成し、4−アミ
ノピリンは酸化剤の存在下で第2の色素中間体と反応し
てクロモゲン色素複合体を形成する。このクロモゲン色
素複合体は、フェノールとの反応により生成されるとこ
ろの4−アミノピリンの4−モノイミノ誘導体であるの
が望ましい。クロモゲン色素複合体はまた、アミノ基を
含む第2の色素中間体との反応によって生成されるアゾ
誘導体であってもよい。4−アミノ酸フェナゾンアミド
化合物は溶液中で本質的に無色であり、したがって色の
全てがクロモゲン色素複合体によって発現されることか
らして該複合体の測定に対し干渉しない。
ラーゼと反応して4−アミノピリンを生成し、4−アミ
ノピリンは酸化剤の存在下で第2の色素中間体と反応し
てクロモゲン色素複合体を形成する。このクロモゲン色
素複合体は、フェノールとの反応により生成されるとこ
ろの4−アミノピリンの4−モノイミノ誘導体であるの
が望ましい。クロモゲン色素複合体はまた、アミノ基を
含む第2の色素中間体との反応によって生成されるアゾ
誘導体であってもよい。4−アミノ酸フェナゾンアミド
化合物は溶液中で本質的に無色であり、したがって色の
全てがクロモゲン色素複合体によって発現されることか
らして該複合体の測定に対し干渉しない。
グルタミル−4−アミノピリンはガンマ−グルタミルト
ランスフェラーゼ(GGT)と反応して色素中間体とし
ての4−アミノピリンを生成し、この4−アミノピリン
はビリルビンオキシダーゼ(BOX )のような酸化剤
の存在下で2−ヒドロキシ−3,5−ジクロロベンゼン
スルホン酸(HDCBS)のような第2の色素形成中間
体と反応してクロモゲン色素複合体、特に特定試薬で赤
色を呈する複合体を、形成する。フェリシアン化カリウ
ムのような何れの強力な酸化剤も、クロモゲン色素複合
体の形成反応を促進するために使用することができる。
ランスフェラーゼ(GGT)と反応して色素中間体とし
ての4−アミノピリンを生成し、この4−アミノピリン
はビリルビンオキシダーゼ(BOX )のような酸化剤
の存在下で2−ヒドロキシ−3,5−ジクロロベンゼン
スルホン酸(HDCBS)のような第2の色素形成中間
体と反応してクロモゲン色素複合体、特に特定試薬で赤
色を呈する複合体を、形成する。フェリシアン化カリウ
ムのような何れの強力な酸化剤も、クロモゲン色素複合
体の形成反応を促進するために使用することができる。
第2の色素形成中間体としてはフェノール化合物が適当
しており、その例としては2−ヒドロキシー3,5−ジ
クロロベンゼンスルホン酸、2゜5−ジメチルフェノー
ル、及び一般にフェノール類、ナフトール類とそれらの
誘導体がある。酸化剤としてのオキシダーゼには例えば
ビリルビンオキシダーゼ、アスコルバートオキシダーゼ
、ラッカーゼ、及び過酸化水素または有機過酸化物と共
に用いるペルオキシダーゼ或はマイクロペルオキシダー
ゼ(チトクロムC分子のヘム部分)がある。
しており、その例としては2−ヒドロキシー3,5−ジ
クロロベンゼンスルホン酸、2゜5−ジメチルフェノー
ル、及び一般にフェノール類、ナフトール類とそれらの
誘導体がある。酸化剤としてのオキシダーゼには例えば
ビリルビンオキシダーゼ、アスコルバートオキシダーゼ
、ラッカーゼ、及び過酸化水素または有機過酸化物と共
に用いるペルオキシダーゼ或はマイクロペルオキシダー
ゼ(チトクロムC分子のヘム部分)がある。
化学的な酸化剤としては例えばフェリシアン化カリウム
がある。アゾ色素複合体を形成するための中間体として
は例えばN−エチル−N−(2−ヒドロオキシ−3−ス
ルホノピリル)−m−トルイジン、N−エチル−N−ス
ルホプロピルアニリン、或はN−スルホプロピルアニリ
ンがある。複素環式アミノ化合物を用いて種々のクロモ
ゲン色素複合体を形成する方法は周知であり、アーチス
(Artiss)等によりMicrocher′rIi
cal Journal 26.487505(19
81)に記載されている。K 、 ’I’amaoku
。
がある。アゾ色素複合体を形成するための中間体として
は例えばN−エチル−N−(2−ヒドロオキシ−3−ス
ルホノピリル)−m−トルイジン、N−エチル−N−ス
ルホプロピルアニリン、或はN−スルホプロピルアニリ
ンがある。複素環式アミノ化合物を用いて種々のクロモ
ゲン色素複合体を形成する方法は周知であり、アーチス
(Artiss)等によりMicrocher′rIi
cal Journal 26.487505(19
81)に記載されている。K 、 ’I’amaoku
。
etal>知a1. Chirrh Acta 13
6.121 (1982)及び Chem、 Ph
arm Bul’1. 3 0. 2492(19
82)に記載されているようなトリンダー試薬(Tri
ndet’sReagents )を、用いることがで
きる。
6.121 (1982)及び Chem、 Ph
arm Bul’1. 3 0. 2492(19
82)に記載されているようなトリンダー試薬(Tri
ndet’sReagents )を、用いることがで
きる。
受容体としては例えば、4−アミノ酸フエナゾンのアミ
ド基から開裂されるカルボニル基と反応するグリシルグ
リシン(gly)を用いることができる。他の受容体と
しては例えば、グリシルグリシルグリシン或は水がある
。
ド基から開裂されるカルボニル基と反応するグリシルグ
リシン(gly)を用いることができる。他の受容体と
しては例えば、グリシルグリシルグリシン或は水がある
。
検出可能な酵素にはL−ガンマ−グルタミルトランスフ
ェラーゼ、アラニンアミノペプチダーゼ、グリシルトラ
ンスペプチダーゼ等がある。アミノ酸は酵素に対応させ
て選択される。
ェラーゼ、アラニンアミノペプチダーゼ、グリシルトラ
ンスペプチダーゼ等がある。アミノ酸は酵素に対応させ
て選択される。
この発明に係る化合物は構造式
で表され、式中φはフェニル、RCはアミノ酸基である
。好ましいRCはグルタミル基であり、この基をもつ化
合物は通称でグルタミル−4−アミノピリンまたはグル
タミル−4−アミノフェナジンと称しえ、より正確には
1−フエニル−2−メチル−3−メチル−4−グルタミ
ルアミノ−3−ピラゾリン−5−オンと称しうる。好ま
しい他のI RCNH−基は アラニル、 酸(或は他のアミノ酸)、例えばN−t−BOC−L−
グルタミン酸−アルファーベンジルエステル(ここにt
−BOCはt−ブチルオキシカルボニル)を、ジシクロ
へキシルカルボジイミド(DCC)及び溶剤(例えばジ
オキサン或はテトラヒドロフラン)の存在下で4−アミ
ノピリンと先ず0℃で、次に常温で反応させることがで
きる。αマスクの生成物を反応混合物から分離精製し、
次に塩化メチレン中でトリフルオル酢酸によりBOC基
を除去し、水素添加分解によりアルファーベンジル基を
除去して、グルタミル−4−アミノピリンを遊離させう
る。反応式は次のようである。
。好ましいRCはグルタミル基であり、この基をもつ化
合物は通称でグルタミル−4−アミノピリンまたはグル
タミル−4−アミノフェナジンと称しえ、より正確には
1−フエニル−2−メチル−3−メチル−4−グルタミ
ルアミノ−3−ピラゾリン−5−オンと称しうる。好ま
しい他のI RCNH−基は アラニル、 酸(或は他のアミノ酸)、例えばN−t−BOC−L−
グルタミン酸−アルファーベンジルエステル(ここにt
−BOCはt−ブチルオキシカルボニル)を、ジシクロ
へキシルカルボジイミド(DCC)及び溶剤(例えばジ
オキサン或はテトラヒドロフラン)の存在下で4−アミ
ノピリンと先ず0℃で、次に常温で反応させることがで
きる。αマスクの生成物を反応混合物から分離精製し、
次に塩化メチレン中でトリフルオル酢酸によりBOC基
を除去し、水素添加分解によりアルファーベンジル基を
除去して、グルタミル−4−アミノピリンを遊離させう
る。反応式は次のようである。
NH2CH2C−NH=
である。
アミノ酸−4−アミノピリンを調製するためには両アル
ファ官能基をマスキングしたグルタミン(工V) (V) (エエエ) 他の可能な合成法はMeth、 Enzymol 19
. 78..9−797 (1970)、J 、 Ch
em、 SO,C,3315(1949)、J、 A
mer、 (:hem、 Soc、 72.2469(
1950)から類推して、またJ、Chem、 Soc
、 886 (1957)に類似して出発無水物の合成
、ガンマ−アミド結合の形成、及び次いでのヒドラジン
水和物を用いた脱フタロイルといった、次の式で表され
る方法である。
ファ官能基をマスキングしたグルタミン(工V) (V) (エエエ) 他の可能な合成法はMeth、 Enzymol 19
. 78..9−797 (1970)、J 、 Ch
em、 SO,C,3315(1949)、J、 A
mer、 (:hem、 Soc、 72.2469(
1950)から類推して、またJ、Chem、 Soc
、 886 (1957)に類似して出発無水物の合成
、ガンマ−アミド結合の形成、及び次いでのヒドラジン
水和物を用いた脱フタロイルといった、次の式で表され
る方法である。
化合物グルタミル−4−アミノピリンはまた、L−ガン
マ−グルタミン酸メチルエステルを溶剤(クロロホルム
)中での塩基の存在下で4−アミノピリンと反応させる
ことによっても製造できる。
マ−グルタミン酸メチルエステルを溶剤(クロロホルム
)中での塩基の存在下で4−アミノピリンと反応させる
ことによっても製造できる。
得られた化合物は使用に供するため、残留アミノを除去
するように精製しなければならない。
するように精製しなければならない。
以下にグルタミル−4−アミノピリンを製造するための
好適した方法を記載する。
好適した方法を記載する。
工程1a
N−(t−BOC)−グルタミン酸−α−ベンジルエス
テル(33,7重量部(pbw −parts by
weight))トリエチルアミノ(10,1pbw
)とをクロロホルムに溶かした溶液を0℃に冷却して撹
拌し、クロルギ酸イソブチル(13,7pbw)を1滴
ずつ加えて行った。浴を取去り、反応混合物を16時間
撹拌した。この時点で4−アミノアンチピリン(203
pbw )を少しずつ加え、反応混合物を常温で1晩撹
拌した。その反応混合物を真空中でストリッピング処理
した。残分を酢酸エチルと共に微細化し、濾過した。p
液を真空中でストリッピング処理し、ガラス状の残分を
得た。NMR及びMS分析により予期した通りの構造を
確認した。粗製品の収量は実質的に定量的であった。
テル(33,7重量部(pbw −parts by
weight))トリエチルアミノ(10,1pbw
)とをクロロホルムに溶かした溶液を0℃に冷却して撹
拌し、クロルギ酸イソブチル(13,7pbw)を1滴
ずつ加えて行った。浴を取去り、反応混合物を16時間
撹拌した。この時点で4−アミノアンチピリン(203
pbw )を少しずつ加え、反応混合物を常温で1晩撹
拌した。その反応混合物を真空中でストリッピング処理
した。残分を酢酸エチルと共に微細化し、濾過した。p
液を真空中でストリッピング処理し、ガラス状の残分を
得た。NMR及びMS分析により予期した通りの構造を
確認した。粗製品の収量は実質的に定量的であった。
工程1b
N−CBZ−クルタミン酸−α−ベンジルエステル(5
0pbW)とトリエチルアミノ(15pbw )の冷却
−(0℃)クロロホルム溶液に、クロロギ酸イソブチル
(20,3pbw )を1滴ずつ加えた。反応混合物を
常温で1晩、撹拌した。その反応混合物を真空中でスト
リッピング処理し、雪泥状の残分を酢酸エチルと共に撹
拌した。この混合物を濾過し、p過ケークを酢酸エチル
で洗滌した。有機物P液を希HCI 、水、重炭酸ナト
リウムの着水溶液及び水で洗浄し、無水硫酸マグネシウ
ムで乾燥させた。乾燥剤をp過除去した上で有機物溶液
を真空中でストリッピング処理し、橙赤色の粘性な油を
97%の収率で取得した。薄層クロマトグラフィー(シ
リカゲル、酢酸エチル中にエタノール′2%)による分
析でいくつかの僅かな不純物が存在することが示された
。取得物質をシリカゲル上でのフラッシュクロマトグラ
フィー法(酢酸エチル中にエタノール296゜空気圧で
駆動する類カラムクロマトグラフィー法□W、 CIa
rk 3till etal、: J、 Qrga
nic Chemistry 43.2923(197
8)参照)で精製した。製品はレモン様の黄色の固体と
して得られた。NMR及びMS分析により構造を確認し
た。
0pbW)とトリエチルアミノ(15pbw )の冷却
−(0℃)クロロホルム溶液に、クロロギ酸イソブチル
(20,3pbw )を1滴ずつ加えた。反応混合物を
常温で1晩、撹拌した。その反応混合物を真空中でスト
リッピング処理し、雪泥状の残分を酢酸エチルと共に撹
拌した。この混合物を濾過し、p過ケークを酢酸エチル
で洗滌した。有機物P液を希HCI 、水、重炭酸ナト
リウムの着水溶液及び水で洗浄し、無水硫酸マグネシウ
ムで乾燥させた。乾燥剤をp過除去した上で有機物溶液
を真空中でストリッピング処理し、橙赤色の粘性な油を
97%の収率で取得した。薄層クロマトグラフィー(シ
リカゲル、酢酸エチル中にエタノール′2%)による分
析でいくつかの僅かな不純物が存在することが示された
。取得物質をシリカゲル上でのフラッシュクロマトグラ
フィー法(酢酸エチル中にエタノール296゜空気圧で
駆動する類カラムクロマトグラフィー法□W、 CIa
rk 3till etal、: J、 Qrga
nic Chemistry 43.2923(197
8)参照)で精製した。製品はレモン様の黄色の固体と
して得られた。NMR及びMS分析により構造を確認し
た。
工程2a:脱ベンジル
N −(t −BOC) −4−(γ−グルタミルアミ
ド)−アンチピリン−α−ベンジルエステル(422p
bw )のジメチルホルムアミド溶液に、ギ酸アンモニ
ウム(30,0pbw )を加えた。混合物を、炭素(
30,0pbw )上の10%パラジウムを加えながら
撹拌した。撹拌は出発物質が薄層クロマトグラフィー(
シリカゲル、酢酸エチル中にメタノール3%)上で認め
られなくなる迄、継続した。これには約1時間を要した
。反応混合物を短長のCe1ite (登録商標)層を
通して吸引濾過した。P液を高真空中において、ジメチ
ルホルムアミドの大部分を除去した。残分を酢酸エチル
中にとり、飽和食塩水で洗滌し、無水硫酸マグネシウム
で乾燥させた。有機物溶液を濾過し、p液を真空中でス
l−IJッピング処理して純白でない粘性の油を収穫し
た。組物質の収率は9896であった。NMR及びMS
分析によって構造を確認した。
ド)−アンチピリン−α−ベンジルエステル(422p
bw )のジメチルホルムアミド溶液に、ギ酸アンモニ
ウム(30,0pbw )を加えた。混合物を、炭素(
30,0pbw )上の10%パラジウムを加えながら
撹拌した。撹拌は出発物質が薄層クロマトグラフィー(
シリカゲル、酢酸エチル中にメタノール3%)上で認め
られなくなる迄、継続した。これには約1時間を要した
。反応混合物を短長のCe1ite (登録商標)層を
通して吸引濾過した。P液を高真空中において、ジメチ
ルホルムアミドの大部分を除去した。残分を酢酸エチル
中にとり、飽和食塩水で洗滌し、無水硫酸マグネシウム
で乾燥させた。有機物溶液を濾過し、p液を真空中でス
l−IJッピング処理して純白でない粘性の油を収穫し
た。組物質の収率は9896であった。NMR及びMS
分析によって構造を確認した。
窒素雰囲気下で無水のアセトニl−IJルに溶かしたN
−(t −BOC) −4−(γ−グルタミルアミド
)−アンチピリン(21,6pbw)の溶液に、ヨウ化
ナトリウム(22,5pbw )を加えた。混合物を、
澄んだ溶液が得られるまで常温で撹拌した。
−(t −BOC) −4−(γ−グルタミルアミド
)−アンチピリン(21,6pbw)の溶液に、ヨウ化
ナトリウム(22,5pbw )を加えた。混合物を、
澄んだ溶液が得られるまで常温で撹拌した。
?−1/) 溶液に塩化トリメチルシリル(10,8p
bw)を、いちどに加えた。薄層クロマトグラフィー(
シリカケル、196の酢酸を含む酢酸エチル中にメタノ
ール10%)により出発物質が認められなくなる迄、約
2時間撹拌を続けた。反応混合物にメタノールを加え、
15分間撹拌した上で冷蔵庫に1晩おいた。反応混合物
を真空中でス) IJッピング処理し、残分をエーテル
と3096の酢酸水溶液とに分配させた。水溶液相を、
エーテルを加えて洗浄し、次に数粒の重亜硫酸ナトリウ
ム結晶を加えて脱色した。溶液をAmberl ite
(登録商標)XAD−2レジン床(Rohm & H
aas Co、製)を通過させ、最初蒸留水で、次に1
:1のエタノール蒸留水で、溶離処理した。水・エタノ
ールによる溶出液を真空中でストリッピング処理して、
所望の生成物を淡黄色ガラス状の形で得た。NMR及び
MS分析により構造を確認した。
bw)を、いちどに加えた。薄層クロマトグラフィー(
シリカケル、196の酢酸を含む酢酸エチル中にメタノ
ール10%)により出発物質が認められなくなる迄、約
2時間撹拌を続けた。反応混合物にメタノールを加え、
15分間撹拌した上で冷蔵庫に1晩おいた。反応混合物
を真空中でス) IJッピング処理し、残分をエーテル
と3096の酢酸水溶液とに分配させた。水溶液相を、
エーテルを加えて洗浄し、次に数粒の重亜硫酸ナトリウ
ム結晶を加えて脱色した。溶液をAmberl ite
(登録商標)XAD−2レジン床(Rohm & H
aas Co、製)を通過させ、最初蒸留水で、次に1
:1のエタノール蒸留水で、溶離処理した。水・エタノ
ールによる溶出液を真空中でストリッピング処理して、
所望の生成物を淡黄色ガラス状の形で得た。NMR及び
MS分析により構造を確認した。
無水エタノールにN−CBZ−4−(γ−グルタミルア
ミド)−α−ベンジルエステルを溶かした溶液を、炭素
上の】0%Pdを触媒として用い3気圧の水素ガスで処
理した。水素の理論量の消費が認められたときに薄層ク
ロマトグラフィー(シリカゲル、酢酸196を含む酢酸
エチル中にメタノール1096)は、出発物質の痕跡も
示さず工程3aで得た物質と同一のRf を有する斑
点を示した。
ミド)−α−ベンジルエステルを溶かした溶液を、炭素
上の】0%Pdを触媒として用い3気圧の水素ガスで処
理した。水素の理論量の消費が認められたときに薄層ク
ロマトグラフィー(シリカゲル、酢酸196を含む酢酸
エチル中にメタノール1096)は、出発物質の痕跡も
示さず工程3aで得た物質と同一のRf を有する斑
点を示した。
反応混合物を、短長のCe1ite (登録商標)層を
通して吸引濾過した。P液を真空中でストリッピング処
理した。残分である所望の4−(γ−グルタミルアミド
)−アンチピリンを、純白でない固体として取得した。
通して吸引濾過した。P液を真空中でストリッピング処
理した。残分である所望の4−(γ−グルタミルアミド
)−アンチピリンを、純白でない固体として取得した。
構造はNMR及び質量分析により確認した。この物質が
工程3aで得た物質と同一であることは高性能液体クロ
マトグラフィー(HPi、C)により、試料を個別的に
共通するカラムに注入して通すことによって示された。
工程3aで得た物質と同一であることは高性能液体クロ
マトグラフィー(HPi、C)により、試料を個別的に
共通するカラムに注入して通すことによって示された。
反応過程を次頁に示す。次頁においてrRJは基C6H
6CHf−を、また[protJはBOCとかCBZと
いったマスキングに用いた基を、それぞれ示している。
6CHf−を、また[protJはBOCとかCBZと
いったマスキングに用いた基を、それぞれ示している。
″″3
区
〔明細な説明〕
以下に述べる実施例は、供与体基質を用いてガンマ−グ
ルタミルトランスフェラーゼの活性を測定する例に係る
。
ルタミルトランスフェラーゼの活性を測定する例に係る
。
血清中のガンマ−グルタミルトランスフェラーゼ(GG
T)の活性を測定する比色法において供与体基質である
し一ガンマーグルタミルー4−アミノピリン(gAAP
)を、開裂されるカルボニル部分のための受容体として
のグリシルグリシン(gIy)と共に用いる。2−ヒド
ロキシ−3,5−ジクロルベンゼンスルホル酸はビリル
ビンオキシダーゼ(BOX )の存在下で、遊離される
生成物4−アミノアンチピリン(4AAP)と反応して
赤色の色素複合体を生じさせる。この色素複合体の吸光
ピークは510nmで現れる。供与体基質は可視スペク
トルの全体にわたって吸光性を示さない。
T)の活性を測定する比色法において供与体基質である
し一ガンマーグルタミルー4−アミノピリン(gAAP
)を、開裂されるカルボニル部分のための受容体として
のグリシルグリシン(gIy)と共に用いる。2−ヒド
ロキシ−3,5−ジクロルベンゼンスルホル酸はビリル
ビンオキシダーゼ(BOX )の存在下で、遊離される
生成物4−アミノアンチピリン(4AAP)と反応して
赤色の色素複合体を生じさせる。この色素複合体の吸光
ピークは510nmで現れる。供与体基質は可視スペク
トルの全体にわたって吸光性を示さない。
反応は全ての試薬を単一の作業溶液に含ませた単一のキ
ュベツト中でおこる。本方法は自動化に適している。
ュベツト中でおこる。本方法は自動化に適している。
本方法は呈色生成物を形成するのに無色の供与体基質を
用いる点で有利である。GGTは、gAAPからガンマ
−グルタミルを奪取して生ぜしめられるカルボニル基を
グリシルグリシンに引渡す。4−アミノアンチピリンが
遊離されて、BOXの存在下でHDCBS (2−ヒド
ロキシ−3,5−ジクロロベンゼンスルホン酸)と結合
して赤色の色素複合体を形成する。試料中に存在するG
GTの活性に比例する1分毎の吸光度の変化から、反応
を動的に鑑視できる。BOXはペルオキシダーゼ類似の
活性を示すラッカーゼ或はアスコルバートオキシダーゼ
等の他の酵素に置き換え得、また過酸化水素または有機
過酸化物の存在下でペルオキシダーゼ或はマイクロペル
オキシダーゼ自体に置き換え得る。
用いる点で有利である。GGTは、gAAPからガンマ
−グルタミルを奪取して生ぜしめられるカルボニル基を
グリシルグリシンに引渡す。4−アミノアンチピリンが
遊離されて、BOXの存在下でHDCBS (2−ヒド
ロキシ−3,5−ジクロロベンゼンスルホン酸)と結合
して赤色の色素複合体を形成する。試料中に存在するG
GTの活性に比例する1分毎の吸光度の変化から、反応
を動的に鑑視できる。BOXはペルオキシダーゼ類似の
活性を示すラッカーゼ或はアスコルバートオキシダーゼ
等の他の酵素に置き換え得、また過酸化水素または有機
過酸化物の存在下でペルオキシダーゼ或はマイクロペル
オキシダーゼ自体に置き換え得る。
材料と方法
菜垂・・・温度制御可能なキュベツト保持器を備えたU
V−260複光束分光計(日本国家都市の3 imad
zu製)を使用した。
V−260複光束分光計(日本国家都市の3 imad
zu製)を使用した。
材料・・・BOX (ビリルビンオキシダーゼ)はアメ
リカ合衆国、バージニア州、トロイのAmano In
−ternational Co、から購入した。B
OXの1単位を、p)(7,O、温度37℃で1分間に
1μmolのビIJ )レビンを酸化する酵素の量で定
義した。HDCBS(2−ヒドロキシ−3,5−ジクロ
ロベンゼンスルホン酸)は、スイス国、チューリッヒの
BiosynthAGから入手した。ウシGGT、グリ
シルグリシン及びTriton X−100はアメリカ
合衆国、ミズーリ州、セントル4 、スのSigma
Cherriical、Co−力)ら購入し、Tri
s(ヒドロオキシメチル)アミノメタンはアメリカ合衆
国、ニューシャーシー州、7zアローンのFisher
3cientific Co、から購入した。
リカ合衆国、バージニア州、トロイのAmano In
−ternational Co、から購入した。B
OXの1単位を、p)(7,O、温度37℃で1分間に
1μmolのビIJ )レビンを酸化する酵素の量で定
義した。HDCBS(2−ヒドロキシ−3,5−ジクロ
ロベンゼンスルホン酸)は、スイス国、チューリッヒの
BiosynthAGから入手した。ウシGGT、グリ
シルグリシン及びTriton X−100はアメリカ
合衆国、ミズーリ州、セントル4 、スのSigma
Cherriical、Co−力)ら購入し、Tri
s(ヒドロオキシメチル)アミノメタンはアメリカ合衆
国、ニューシャーシー州、7zアローンのFisher
3cientific Co、から購入した。
試薬・・・単一試薬は11当りBOX5000単位、g
AAP 20.OmmolSHD CB S 13.0
mmol 、グリシルグリシ:y 5.0 mmol、
50mmol/J?のTris −HCl緩衝液(pH
7,9)中でTriton X−10015gを含む。
AAP 20.OmmolSHD CB S 13.0
mmol 、グリシルグリシ:y 5.0 mmol、
50mmol/J?のTris −HCl緩衝液(pH
7,9)中でTriton X−10015gを含む。
GGTの標準品も、Tris−HCl緩衝液(50mm
ol/ l 、 pH7,9)で調製した。
ol/ l 、 pH7,9)で調製した。
手順・・・10マイクロリットルの標準GGTを、1、
OMtの試薬に加えた。120秒間の導入期後薯こ51
0nm、37℃での吸光度の変化を180秒間、記録し
た。反応はブランク試薬におけるのと対照的に進行する
。
OMtの試薬に加えた。120秒間の導入期後薯こ51
0nm、37℃での吸光度の変化を180秒間、記録し
た。反応はブランク試薬におけるのと対照的に進行する
。
活性度の計算・・・活性度U/L=(△A/分)X力価
。
。
ここに力価=(全容量(−)/試料容量(−))X(モ
ル/マイクロモル)1モル吸光係数= (1,0110
,01)X(106/26,000)、=3885結果 成分の濃度・・・反応は、1リツトルの緩衝溶液中にH
DCBS 13.0mmol 、グリシルクリシン5.
0mmol、gAAG 20.0 mmol 、BOX
500単位が含まれるとき反応混合物中に最大のGG
T活性が生ぜしめられるように、最適となった。
ル/マイクロモル)1モル吸光係数= (1,0110
,01)X(106/26,000)、=3885結果 成分の濃度・・・反応は、1リツトルの緩衝溶液中にH
DCBS 13.0mmol 、グリシルクリシン5.
0mmol、gAAG 20.0 mmol 、BOX
500単位が含まれるとき反応混合物中に最大のGG
T活性が生ぜしめられるように、最適となった。
色素のモル吸光係数・・・赤色の色素複合体のモル吸光
係数を、gAAPic代えテ4AAPI7)増分ヲ0.
100とi、o o o間の吸光度値が与えられるよう
各種濃度の色素を定量的に生じさせるようにして加える
ことにより、測定した。510nmでの色素のモル吸光
係数は26.000 L mol ag であると算
出された。
係数を、gAAPic代えテ4AAPI7)増分ヲ0.
100とi、o o o間の吸光度値が与えられるよう
各種濃度の色素を定量的に生じさせるようにして加える
ことにより、測定した。510nmでの色素のモル吸光
係数は26.000 L mol ag であると算
出された。
gAAPについて、ラインウイーヴアー・グルタ(Li
neweaver −E3urk )法でのプロットに
線形回帰して求めた。本酵素のN−(ガンマ−L−グル
タミル)−アルファーナフチルアミドを基質トする画分
A及びBについての読値が6.3及び6.8mmol/
lであると報告されている( 3zewezick、
A、 、 etal、 : =Biochemisc
he Zeitschrift338 317−32
9(1963))のに対し、GGTの読値は約9.9m
mol/4であると算出された。他の文献(Al fe
n、 L−M−。
neweaver −E3urk )法でのプロットに
線形回帰して求めた。本酵素のN−(ガンマ−L−グル
タミル)−アルファーナフチルアミドを基質トする画分
A及びBについての読値が6.3及び6.8mmol/
lであると報告されている( 3zewezick、
A、 、 etal、 : =Biochemisc
he Zeitschrift338 317−32
9(1963))のに対し、GGTの読値は約9.9m
mol/4であると算出された。他の文献(Al fe
n、 L−M−。
et al、 : Chem、 −13io!、 In
teractions33,361−365(1981
))では、ガンマ−グルタミル−p−ニトロアニリドを
基質としてウシの腎臓GGTの膓とvmaXがそれぞれ
、0.98mmo!/ (l及び177マイクロモル/
分/ηであると報告されている。発明者が得たVmax
は36.8マイクロモル/分/■であった。
teractions33,361−365(1981
))では、ガンマ−グルタミル−p−ニトロアニリドを
基質としてウシの腎臓GGTの膓とvmaXがそれぞれ
、0.98mmo!/ (l及び177マイクロモル/
分/ηであると報告されている。発明者が得たVmax
は36.8マイクロモル/分/■であった。
吸収スペクトル・・・生成物の最大吸収は510nmで
みられた。供与体基質は可視スペクトルの全体にわたっ
て吸収を示さなかった。
みられた。供与体基質は可視スペクトルの全体にわたっ
て吸収を示さなかった。
反応経過・・・37℃で510nmにおけるGGTの反
応速度は約2分後に直線的になった。
応速度は約2分後に直線的になった。
考察
この発明は高モル吸光係数をもつ赤色生成物を形成する
ところの新規な無色の供与体基質gAAPを、利用する
ものである。前述したglucANA或はgluPAを
利用する方法でみられていた基質と生成物とのスペクト
ルの重複は何ら存在せず、また試料量も10分の1 (
1oodから10μ!りに減少する。
ところの新規な無色の供与体基質gAAPを、利用する
ものである。前述したglucANA或はgluPAを
利用する方法でみられていた基質と生成物とのスペクト
ルの重複は何ら存在せず、また試料量も10分の1 (
1oodから10μ!りに減少する。
本基質の優れた溶解性、スペクトル特性、高い感受性、
及び自動化に対する適応性からして、本発明は汎用され
ているgI u CANA或はgluPAによる方法の
好ましい代替法を提供する。
及び自動化に対する適応性からして、本発明は汎用され
ているgI u CANA或はgluPAによる方法の
好ましい代替法を提供する。
本方法は血清中のガンマ−グルタミルトランスフェラー
ゼ活性を測定するのに、特に有用である。
ゼ活性を測定するのに、特に有用である。
赤血球を除去して適当量の血清を、本発明の試薬と接触
させればよい。赤血球の除去は遠心分離或は濾過によっ
て行なわれる。
させればよい。赤血球の除去は遠心分離或は濾過によっ
て行なわれる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 〔式中、▲数式、化学式、表等があります▼は2個から
6個までの間の炭素原子を含むアミノ酸基である。〕で
表される化合物。 2、前記アミノ酸基がグルタミル基である、請求項1に
記載の化合物。 3、前記アミノ酸基がL−ガンマ−グルタミルである、
請求項1に記載の化合物。 4、前記アミノ酸基がアラニニル基である、請求項1に
記載の化合物。 5、アミノ酸を結合したアミノ色素中間体を用いる酵素
検出法であつて、アミノ酸が酵素により上記アミノ色素
中間体を形成するように開裂され、次に該アミノ色素中
間体が第2の色素中間体と結合してクロモゲンを形成す
る酵素検出法において、(a)、一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 〔式中、▲数式、化学式、表等があります▼は2個から
6個までの炭素原子を含むアミノ酸基である。〕で表さ
れる化合物を、酵素との反応により生成されるアミノ酸
カルボニル基用の受容体と共に水溶液の形で設け、 (b)、上記化合物を酵素と反応させて、一般式▲数式
、化学式、表等があります▼ で表される4−アミノ色素中間体及び上記受容体と反応
するアミノ酸カルボニル基を形成し、(c)、上記した
4−アミノ色素中間体を酸化剤の存在下で第2の色素中
間体と反応させて、4−アミノ色素中間体の4−アミノ
基と第2の色素中間体との反応生成物であるクロモゲン
色素複合体を形成する、 ことを特徴とする酵素検出法。 6、前記した第2の色素中間体がアニリン、ナフトール
またはフェノール化合物であり、前記したクロモゲン色
素複合体が前記化合物の4−モノイミノ誘導体である、
請求項5に記載の酵素検出法。 7、前記した第2の色素中間体が2−ヒドロオキシ−3
,5−ジクロロベンゼンスルホン酸である、請求項5に
記載の酵素検出法。 8、グルタミルトランスフェラーゼの検出法であつて、 (a)、1−フエニル−2−N−メチル−3−メチル−
4−グルタミルアミノ−3−ピラゾリン−5−オンを、
酵素とグルタミル基との反応により生成されるグルタミ
ルカルボキシル基用の受容体と共に水溶液の形で設け、 (b)、この水溶液中にグルタミルトランスフェラーゼ
を導入して、アミノ色素中間体としての1−フエニル−
2−N−メチル−3−メチル−4−アミノ−3−ピラゾ
リン−5−オン、及びグリタミルカルボキシル基と上記
受容体との反応生成物を形成し、 (c)、1−フエニル−2−N−メチル−3−メチル−
4−アミノ−3−ピラゾリン−5−オンを酸化剤及び第
2の色素中間体と反応させて、アミノ色素中間体の4−
アミノ基と第2の色素中間体との反応生成物である色素
複合体を形成する、検出法。 9、前記した第2の色素中間体が2−ヒドロオキシ−3
,5−ジクロロベンゼンスルホン酸である、請求項8に
記載の検出法。 10、前記酸化剤が酸化酵素である、請求項9に記載の
検出法。 11、前記酸化酵素がビリルビンオキシダーゼである、
請求項10に記載の検出法。 12、前記酸化剤がフェリシアン化カリウムである、請
求項9に記載の検出法。 13、アミノ酸を開裂してアミノ色素中間体を形成する
酵素を、上記アミノ色素中間体を酸化剤の存在下で第2
の色素中間体と反応させてクロモゲンを形成することに
より検出する酵素検出用試薬であつて、 (a)、一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ で表される化合物であつて、上記酵素と反応して一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼ で表される4−アミノ色素中間体を形成する化合物、 (b)、上記した4−アミノ色素中間体と反応してクロ
モゲン色素複合体を形成する第2の色素中間体、 (c)、上記した4−アミノ色素中間体の4−アミノ基
と第2の色素中間体との間の反応を生じさせて上記クロ
モゲン色素複合体を生成させる酸化剤、及び (d)、上記した化合物が酵素と反応することにより遊
離されるアミノ酸カルボニル基のための受容体、 を含む酵素検出用試薬。 14、前記化合物を表わす一般式中のRがグルタミル基
である、請求項13に記載の酵素検出用試薬。 15、前記した第2の色素中間体がフェノール化合物で
あり前記したクロモゲン色素複合体が4−モノイミノ化
合物である、請求項14に記載の酵素検出用試薬。 16、前記フェノール化合物が2−ヒドロオキシ−3,
5−ジクロロベンゼンスルホン酸である、請求項15に
記載の酵素検出用試薬。 17、前記酸化剤が酸化酵素である、請求項16に記載
の酵素検出用試薬。 18、前記酸化酵素がビリルビンオキシダーゼである、
請求項17に記載の酵素検出用試薬。 19、前記酸化剤がフェリシアン化カリウムである、請
求項13に記載の酵素検出用試薬。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US206,835 | 1988-06-15 | ||
| US07/206,835 US5116730A (en) | 1988-06-15 | 1988-06-15 | Amino acid substituted 4-aminophenazones for measuring enzyme activity |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0242063A true JPH0242063A (ja) | 1990-02-13 |
| JPH0641453B2 JPH0641453B2 (ja) | 1994-06-01 |
Family
ID=22768176
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1152038A Expired - Lifetime JPH0641453B2 (ja) | 1988-06-15 | 1989-06-14 | 酵素活性測定用の化合物、酵素の検出法及び検出用試薬 |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5116730A (ja) |
| EP (1) | EP0346870A3 (ja) |
| JP (1) | JPH0641453B2 (ja) |
| KR (1) | KR910004208B1 (ja) |
| AU (1) | AU602295B2 (ja) |
| CA (1) | CA1340131C (ja) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5432274A (en) * | 1993-07-28 | 1995-07-11 | National Research Council Of Canada | Redox dye and method of preparation thereof using 2-hydroxypropyl-β-cyclodextrin and 1,1'-dimethylferrocene |
| US6011052A (en) * | 1996-04-30 | 2000-01-04 | Warner-Lambert Company | Pyrazolone derivatives as MCP-1 antagonists |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5569549A (en) * | 1978-11-16 | 1980-05-26 | Nitto Boseki Co Ltd | Novel substrate for determination of enzyme activity |
| JPS58198756A (ja) * | 1982-05-14 | 1983-11-18 | Nitto Boseki Co Ltd | 新規な5−アミノサリチル酸の定量法 |
| US4511651A (en) * | 1982-07-30 | 1985-04-16 | American Monitor Corporation | Reagent composition and assay for the determination of γ-glutamyltransferase activity |
| US4567138A (en) * | 1982-08-30 | 1986-01-28 | Beckman Instruments, Inc. | Method for determining γ-glutamyltransferase activity and kits containing a novel substrate solution for use therein |
| US4588836A (en) * | 1982-09-01 | 1986-05-13 | Toyo Jozo Kabushiki Kaisha | Novel synthetic substrate and assay method using the same |
| JPS61260900A (ja) * | 1985-05-11 | 1986-11-19 | Wako Pure Chem Ind Ltd | γ−グルタミルトランスペプチダ−ゼ活性測定方法 |
| US4751178A (en) * | 1985-09-26 | 1988-06-14 | Eastman Kodak Company | Substrates, compositions, elements and methods for the determination of gamma-glutamyltransferase |
-
1988
- 1988-06-15 US US07/206,835 patent/US5116730A/en not_active Expired - Fee Related
-
1989
- 1989-05-17 CA CA000599950A patent/CA1340131C/en not_active Expired - Fee Related
- 1989-06-06 AU AU36068/89A patent/AU602295B2/en not_active Ceased
- 1989-06-08 KR KR1019890007854A patent/KR910004208B1/ko not_active Expired
- 1989-06-14 JP JP1152038A patent/JPH0641453B2/ja not_active Expired - Lifetime
- 1989-06-14 EP EP19890110803 patent/EP0346870A3/en not_active Withdrawn
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
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| CA1340131C (en) | 1998-11-17 |
| AU3606889A (en) | 1989-12-21 |
| US5116730A (en) | 1992-05-26 |
| AU602295B2 (en) | 1990-10-04 |
| EP0346870A3 (en) | 1991-08-07 |
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| EP0346870A2 (en) | 1989-12-20 |
| JPH0641453B2 (ja) | 1994-06-01 |
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