JPH02501327A - Detection of organic particles, especially viruses, using improved techniques - Google Patents

Detection of organic particles, especially viruses, using improved techniques

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JPH02501327A JP62500003A JP50000387A JPH02501327A JP H02501327 A JPH02501327 A JP H02501327A JP 62500003 A JP62500003 A JP 62500003A JP 50000387 A JP50000387 A JP 50000387A JP H02501327 A JPH02501327 A JP H02501327A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 れ−゛にト l 1 に ルスの ゛ 本発明は、有機性粒子、たとえばウィルス、細菌、菌類及び花粉の診断方法に関 し、ここでもしあるならば、その中の前記粒子の存在を決定するために試験され るべき液体又はガスが通路又は迷路システムを通して通され、そしてもしあるな らば、蓄積された粒子が検出される。[Detailed description of the invention] Re-゛ni Tol 1 ni Rus゛ The present invention relates to a method for diagnosing organic particles such as viruses, bacteria, fungi and pollen. is tested to determine the presence, if any, of said particles therein. The liquid or gas to be If so, the accumulated particles are detected.

特定のウィルスの存在により必要とされる医学的治療をできるだけ早く行なうた めに、前記特定のウィルスが体液、たとえば血清、背髄液、唾液又は尿に存在す るかどうかを、従来の装置を用いることによって急速且つ簡単に決定することが できることが明らかに必要である。現在利用できる従来の診断方法は、この所望 を満たさない。To ensure that any medical treatment required due to the presence of the specific virus is administered as soon as possible. In order to can be quickly and easily determined using conventional equipment. There is a clear need for something that can be done. Conventional diagnostic methods currently available cannot achieve this desired goal. does not satisfy.

ウィルスを診断するための従来の方法は、血清学的診断法である。ウィルスが生 物体を攻撃する場合、そのウィルスに対する抗体が患者の血液又は他の体液中に 生成される。その方法は、ウィルスが攻撃した後、体液中に生成される抗体の存 在が測定され、そしてそのような抗体が患者からのサンプルを採取することによ って同定されるような工程に基づかれている。しかしながら、これはその攻撃の 後、1又は2週後まで起こらない。なぜならばそれので十分な量の抗体が存在し ないし、且つ過剰の抗体が存在するまで血清学的流体は陽性に変わらないであろ うからである。多くの場合、この期間は、効果的な治療処置が行なわれることを 可能にするためには長過ぎる。The traditional method for diagnosing viruses is serological diagnostics. virus is alive When attacking an object, antibodies against the virus are present in the patient's blood or other body fluids. generated. The method relies on the presence of antibodies produced in body fluids after a virus attacks. antibodies are measured and such antibodies are detected by taking samples from patients. It is based on processes that are identified as However, this It does not occur until 1 or 2 weeks later. Because there are enough antibodies No, and the serological fluid will not turn positive until there is excess antibody. It's your body. This period often does not allow for effective therapeutic treatment. Too long to be possible.

血清学的診断は、生成される抗体が測定され、そして同定されるので、間接的な 試験である。また、組織培養物へのサンプルの接種を含む直接的な試験も存在す る。そのようないわゆる、ウィルスの組織単離は、なお一層厄介且つ手間がかか り、そして試験の結果を得るためには、3〜5日、但し通常6〜8週間、amの 培養を必要とする。Serological diagnosis is an indirect method since the antibodies produced are measured and identified. It's a test. Direct tests also exist that involve inoculating samples into tissue cultures. Ru. Such so-called virus tissue isolation is even more troublesome and time-consuming. a.m. for 3 to 5 days, but usually 6 to 8 weeks, to obtain test results. Requires culture.

また、組織サンプルが患者から、たとえば鼻の粘膜から採取され、そしてこのサ ンプルの体細胞が、探索されるウィルスに対して向けられた螢光抗体と共にイン キュベートされる免疫螢光法も存在する。このウィルスが存在し、そして抗体に 結合される場合、そのウィルスによって感染された体細胞の特定の染色が得られ る。この従来の診断法は敏速であるが(それは3〜5時間で行なわれ得る)、シ かしそれは比較的複雑且つ鈍感である。放射能又は螢光によってマークされた抗 補体性ウィルスDNA又はRNAとハイブリダイズするウィルスの診断のための 第4番目の方法(患者からの組織サンプルからの細胞の染色を含む)のためにも また、これは正しい。他方、ウィルスDNA又はRNAは、いわゆる既知のDN A又はRNAプローブに対するノザン法又はサチン法におけるエレクトロフォア −(electrofores)により説明され得る。Also, a tissue sample is taken from the patient, for example from the nasal mucosa, and this The sample's somatic cells are infected with fluorescent antibodies directed against the virus being sought. Curated immunofluorescence also exists. This virus exists and antibodies When combined, specific staining of somatic cells infected by the virus is obtained. Ru. Although this traditional diagnostic method is rapid (it can be done in 3-5 hours), the However, it is relatively complex and insensitive. Antibiotics marked by radioactivity or fluorescence For diagnosis of viruses that hybridize with complementing viral DNA or RNA Also for the fourth method (which involves staining cells from tissue samples from patients) Also, this is correct. On the other hand, viral DNA or RNA is the so-called known DNA Electrophores in the Northern method or Sachin method for A or RNA probes -(electrofores).

本発明の目的は、直接的に同定され、そしてまた定量化されるウィルス又は他の 微生物を敏速に診断するための方法を提供することである。The object of the present invention is to directly identify and also quantify viruses or other viruses. An object of the present invention is to provide a method for rapidly diagnosing microorganisms.

しかしながら上記のように、本発明は、これまでウィルスの診断に適用されてい ない従来の濃縮技法に基づかれる。他方、この技法は、アメリカ特許第4,12 4,449号明細書かられかるように、細菌の存在の決定が関係するかぎり通用 されて来た。この場合、その濃縮は、あらゆるフィルターのために特有な態様で 作用するフィルターディスク上でもたらされ;その多孔性は、粒子、この場合、 探索される細菌がそのフィルターディスクを通過しないで、そのディスクの表面 上に集められる。次に、そのフィルターディスク上に集められた細菌は、適切な 染料により染色され、又は螢光抗体と共にインキュベーションが適用される。However, as mentioned above, the present invention has not been applied to virus diagnosis so far. Not based on traditional enrichment techniques. On the other hand, this technique is described in U.S. Pat. No. 4,449, it is applicable as far as the determination of the presence of bacteria is concerned. I've been In this case, the concentration is unique for every filter. on the acting filter disc; its porosity is such that the particles, in this case, The bacteria being searched for do not pass through the filter disc and the surface of that disc collected above. The bacteria collected on that filter disc are then transferred to a suitable Staining with dyes or incubation with fluorescent antibodies is applied.

ウィルスが濾過技法を適用することによってフィルター上に集められることを可 能にするためには、そのフィルターがひじょうに密集し、すなわちフィルターの 孔がひじように小さいことが必要とされる。なぜならば、ウィルスは、たとえば 細菌よりも相当に小さいからである。50nmの程度の孔を有するフィルターが 関係するが、しかしそのような小さな孔を有するフィルターも通過するウィルス 、たとえば20〜4Qr+mの大きさの肝炎ウィルスが存在する。この種のフィ ルターは急速に目詰りが起こるであろう。すなわち、これは、たった極めて少量 の液体が、目詰りが起こる前、フィルターを通過することを可能にされ得ること を意味する。従って、直径8鶴であり、そして50nmの程度の孔を有する円形 のフィルターの場合、0.5■/−のタンパク質濃度を有する液体のたった20 〜30uのみが、フィルターの目詰まりが起こる前、それらから通過され得る。Viruses can be collected on filters by applying filtration techniques. In order to be effective, the filter must be very dense, i.e. It is required that the holes be as small as an elbow. Because viruses, for example, This is because they are considerably smaller than bacteria. A filter with pores of about 50 nm is Related, but viruses that also pass through filters with such small pores For example, there are hepatitis viruses with a size of 20 to 4 Qr+m. This kind of file The router will quickly become clogged. That is, this is only a very small amount of liquid may be allowed to pass through the filter before clogging occurs. means. Therefore, a circular shape with a diameter of 8 cranes and a hole of the order of 50 nm For a filter of only 20% of liquid with a protein concentration of 0.5/- Only ~30u can be passed from them before filter clogging occurs.

ウィルス血症で、ウィルスは、10″〜107個の粒子/mZの濃度で血清中に 存在し、そしてこれは、ひじょうに少ないウィルス粒子(0,5■/−のタンパ ク質濃度に希釈されるO〜3 xlO” /30x血清)が、フィルター表面で 利用できる。それらは広く分散され、そしてさらに、タンパク質層によって被覆 されるであろう;続いてそれらは現在知られている方法を用いることによって、 検出するためには利用できない。With viremia, the virus is present in the serum at a concentration of 10'' to 107 particles/mZ. exist, and this is due to very few viral particles (0,5 μ/- protein). O ~ 3xlO”/30x serum) is diluted to a serum concentration on the filter surface. Available. They are widely dispersed and further coated by a protein layer They will then be tested by using currently known methods. It cannot be used for detection.

ここに言及されている発明は、蓄積されたウィルスに対して濃縮技法を適用する ためには、たとえば大きな孔サイズのフィルターのような高い透過性を有する通 路又は迷路システムを使用することが必要とされ、またウィルス粒子がそれらか ら通過することができ、そしてそれにもかかわらず、前記システム上に止められ ているウィルス粒子を有することが必要であるような知識に基づかれる。The invention referred to herein applies concentration techniques to accumulated viruses. In order to It is necessary to use a tract or labyrinth system and to ensure that the virus particles can be passed through and nevertheless stopped on said system. Based on the knowledge that it is necessary to have virus particles that are

この知識に基づいて、本発明の方法は、請求の範囲第1項の特徴を得た。Based on this knowledge, the method of the invention obtains the features of claim 1.

本発明をより詳しく説明するために、その態様が、添付する図に関連して、例に よって下記に記載されるであろう。ここで、 第1図は、ラテックス球への抗体の通用を例示する図であり、 第2図は、特異的に向けられる抗体に対して存在するウィルス粒子を結合する場 合、いかにそれらの球が凝集体を形成するかを例示するマイクロ写真であり、第 3図は、凝集体の形成の拡大を例示するマイクロ写真であり、 第4図は、ウィルスを結合していない単離されたラテックス球を例示するマイク ロ写真であり、 第5図は、ラテックス珠玉への放射性ラベルされた抗体の通用を例示する図であ り、そして 第6図は、フィルター表面上への抗体の適用を例示する図である。In order to explain the invention in more detail, its aspects are illustrated by way of example with reference to the accompanying figures. Therefore, it will be described below. here, FIG. 1 is a diagram illustrating the application of antibodies to latex spheres, Figure 2 shows the binding of virus particles present to specifically directed antibodies. This is a micro-photograph illustrating how those spheres form aggregates when Figure 3 is a microphotograph illustrating the expansion of aggregate formation; Figure 4 is a microphone illustrating an isolated latex sphere with no virus attached. It is a photo, Figure 5 is a diagram illustrating the application of radioactively labeled antibodies to latex beads. ri, and FIG. 6 is a diagram illustrating the application of antibodies onto the filter surface.

例1゜ 4、 Otnnの大きさのラテックス球10 (Batch17155)(Po ly−science、 LISAからの)を、γ線によって誘発される接種方 法によってカルボキシル化せしめ(これはヨーロッパ特許出願第8585008 −7に記載されている)、カルボキシル基を第1図に示されるようにラテックス 球の表面上に結合せしめる。次に、ウサギ抗−マウス抗体11は、球の表面上の カルボキシル基にカルボジイミドによって共有結合され、次に探索されルウィル スに対して向けられた特定の種類のマウス−モノクローナル抗体12が付加され る。その抗体12は、その不変部(F c)で抗体11に結合され、ところが抗 体12の可変部は、その適切な抗原に自由に結合する。たとえばCMV(サイト メガロウィルス)に関しては、抗体12は、ウィルス粒子のカバーに対して向け られたモノクローナルマウス抗体から成ることができる。Example 1゜ 4. Otnn size latex balls 10 (Batch 17155) (Po ly-science, from LISA), inoculation method induced by gamma rays. carboxylated by a method (this is described in European Patent Application No. 8585008). -7), the carboxyl group is added to the latex as shown in Figure 1. Bonded onto the surface of the sphere. Rabbit anti-mouse antibody 11 is then applied to the surface of the sphere. covalently bonded by carbodiimide to the carboxyl group and then probed A specific type of mouse monoclonal antibody 12 directed against the Ru. The antibody 12 is bound to the antibody 11 in its constant region (Fc), but the anti-antibody The variable region of body 12 is free to bind its appropriate antigen. For example, CMV (site For megaloviruses), antibody 12 is directed against the covering of virus particles. It can consist of a monoclonal mouse antibody that has been tested.

抗体結合性球は、試験されるべき液体中において適切な数でインキュベートされ る(105個のラテックス球/試験流体−)。この液体は、たとえば血清、背髄 液、唾液又は尿を含むことができる。しかしながらまず最初に、その液体は、細 胞又は細胞残骸を沈降せしめるために、約150Orpmで10分間、テーブル 遠心分離機で遠心分離にかけられる。上滑液をそれらから吸い出し、そして上記 のラテックス球と共に37℃で1時間インキュベートし、次にその液体を、平衡 化された塩溶液、いわゆるpH7,4のPBS (リン酸緩衝溶液)中に希釈し 、血清を1:100の比で希釈し、唾液を1:5の比で、そして尿を1:2の比 で希釈する。Antibody-binding spheres are incubated in the appropriate number in the liquid to be tested. (105 latex balls/test fluid). This fluid can be, for example, serum, spinal cord It can include fluid, saliva or urine. However, first of all, the liquid The table was heated for 10 minutes at approximately 150 rpm to allow cells or cell debris to settle out. It is centrifuged in a centrifuge. Aspirate the superior synovial fluid from them, and above latex spheres for 1 hour at 37°C, then the liquid was diluted in a dissolved salt solution, so-called PBS (phosphate buffered solution) with a pH of 7.4. , dilute serum in a 1:100 ratio, saliva in a 1:5 ratio, and urine in a 1:2 ratio. Dilute with

インキュベーションの後、全体として試験液体をたとえばスウェーダン特許出@ 8404B21−4に示され、そして記載されている態様のフィルターを有する サンプルホルダーを用いることによって濾過する。この場合、そのフィルターは 好ましくはプロトン技法によって得られた精密な孔を有し、そして0.8趨〜1 0声の範囲のサイズの親水性ポリカーボネートフィルターを含んで成る。そのフ ィルターの孔のサイズは、ウィルスの最終決定に使用される検出システムに従っ て選択される。そのようなフィルターにより、多量の液体又はガスは、フィルタ ーの目詰りなしに濾過され得る。適切なフィルターが登録された商標NUCLE OPOREとして利用できる。ウィルス、すなわちCMVを結合しているラテッ クス球は凝集するであろう。すなわち、それらはいくつかのラテックス球及び結 合されたウィルス粒子の複合体形成によりフィルターの表面上にかたまりを形成 しく第2及び3図)、ところがウィルスが結合されていないラテックス球はフィ ルター表面上に単離され横たわるであろう(第4図)。次に、結合されていない ウィルスはフィルターを通過するであろう。なぜならばそのウィルス粒子はフィ ルターの孔よりも相当に小さいからである。After incubation, the test liquid as a whole is 8404B21-4 and has a filter of the embodiment described. Filter by using a sample holder. In this case, that filter is Preferably with a precise pore obtained by proton technique and with a diameter of 0.8 to 1 It comprises a hydrophilic polycarbonate filter of size in the zero range. That flap The pore size of the filter depends on the detection system used for final determination of the virus. selected. With such a filter, large amounts of liquid or gas can pass through the filter. can be filtered without clogging. Trademark NUCLE with appropriate filter registered Can be used as OPORE. Latex binding virus, i.e. CMV. The spheres will clump together. That is, they have some latex balls and nodules. Complex formation of combined virus particles forms clumps on the surface of the filter (Figures 2 and 3), however, latex spheres with no virus attached are will lie isolated on the Luther surface (Figure 4). Then uncombined The virus will pass through the filter. Because the virus particles This is because it is considerably smaller than the Luther hole.

そのフィルターの孔がラテックス球よりも大きい場合、またそのラテックス球は 、それらがウィルスを結合せず、そして複合体を形成しなかったとしても、フィ ルターを通過するであろう。If the filter pores are larger than the latex bulb, and the latex bulb , even if they do not bind viruses and do not form complexes, It will pass through Luther.

フィルター上でのウィルス及びラテックス球の集合体の検出は、異なった態様で 起こり得る。1つの態様は、スウェーダン特許出願8404821−4に従って 前記のサンプルホルダー中のフィルター表面上にサンプルの堆積及び真空蒸発、 いわゆるスバフターによる、0.5〜5nmの厚さを有する金又は白金のイオン 化層によるサンプルの被覆を含んで成り、次にそのフィルター表面を走査電子顕 微鏡で分析する。次に、この検出システムの操作のために必要である、電気的に 導電性のホルダー中に固定された、0.8−の孔サイズを有するフィルターを使 用する。見うけられる図面は、第2〜第4図に例示されている外観を有する。第 2及び第3図によれば、ラテックス球は体液からの特定の抗体により被覆され、 それはその表面にウィルス粒子を結合されていて、そしてウィルス及びラテック ス球の多数の集合体の複合体を形成される。ラテックス球の間の結合は特に第3 図において明確に見うけられる。Detection of virus and latex sphere aggregates on filters can be done in different ways. It can happen. One embodiment is according to Swedish Patent Application No. 8404821-4. Deposition and vacuum evaporation of the sample onto the filter surface in the sample holder; Gold or platinum ions with a thickness of 0.5-5 nm by so-called buffeting The filter surface is then subjected to scanning electron microscopy. Analyze with a microscope. Next, the electrical Using a filter with a 0.8-pore size fixed in a conductive holder. use The drawings seen have the appearance illustrated in FIGS. 2-4. No. 2 and 3, the latex spheres are coated with specific antibodies from body fluids, It has virus particles bound to its surface and the virus and latex A complex of many aggregates of spheres is formed. The bond between the latex spheres is particularly It can be clearly seen in the figure.

これに反して、第4図においては、特異的抗体により被覆されたラテックス球は 、ウィルスを欠いている。その表面は、完全になめらかであり、そしてそれらの ラテックス球はフィルター表面上で単離して存在する。In contrast, in Figure 4, the latex spheres coated with specific antibodies , devoid of viruses. Their surfaces are completely smooth, and their Latex spheres exist isolated on the filter surface.

他方、ウィルスを結合し、そしてフィルターを通過することができない集合体を ウィルスと一緒に形成するラテックス球は、ペルオキシダーゼによりそのラテッ クス球をマークすることによって決定され得、基質が供給されている場合、その フィルターは、そのフィルター表面上の堆積されたラテックス球が黄色になるで あろう事実のために黄緑色になる。その色の反応は、分光分析により又はELI ZM酵素結合性免疫吸着性アンセイ)のために使用されるシステムに類似するシ ステムによって目により測定され得る。しかしながら、この反応方法は、ラテッ クスがその特定のウィルスに結合することによって集合体を形成しない場合、そ のラテックス球がフィルターを通過するようにそのラテックス球の直径よりも大 きなフィルター孔の直径を必要とする。この場合、10−程度の孔サイズを有す るフィルターが使用される。On the other hand, it binds viruses and aggregates that cannot pass through the filter. The latex spheres that form together with the virus are oxidized by peroxidase. This can be determined by marking the spheres and, if the substrate is supplied, its The filter may become yellow due to latex spheres deposited on its filter surface. It turns yellow-green because of the obvious fact. The color response can be determined by spectroscopic analysis or by ELI. A system similar to that used for ZM enzyme-linked immunosorbent assays The stem can be measured by eye. However, this reaction method If the virus does not form an aggregate by binding to that particular virus, then larger than the diameter of the latex sphere so that it passes through the filter. Requires a large filter pore diameter. In this case, with a pore size of the order of 10- filter is used.

より改良されたタイプの検出法がまた、ウィルスにより被覆され、そしてフィル ター表面上に堆積しているラテックス球を、放射能によりマークされた第2特異 的抗体により被覆することによって通用され得、そしてこれは、ラテックス球が 集められているフィルターに前記第2抗体を供給することによって行なわれる。A more improved type of detection method is also used to detect viruses coated and filtered. The latex spheres deposited on the surface of the This can be achieved by coating the latex sphere with a specific antibody, and this This is done by supplying said second antibody to the filter where it is collected.

ラテックス珠玉にウィルスが存在する場合、その放射能によりマークされた特異 的抗体はウィルス粒子に結合し、そして次に、フィルター表面から洗浄により除 去され得ない、しかしながら、ラテックス珠玉にウィルスが存在しない場合、前 記第2放射性抗体は、フィルターから洗浄除去されるであろう。これは第5図に 示され、ここで13として命名されているウィルスは、1125を含むことがで きる、放射性マークされた抗体14に結合される。3度洗浄した後、フィルター 表面上の残存する放射能を、いわゆるRIA (ラジオイムノアッセイ)により γ腑で測定する。If a virus is present in the latex gem, it will be marked by its radioactivity. The target antibodies bind to virus particles and are then removed from the filter surface by washing. However, if there are no viruses on the latex beads, the The second radioactive antibody will be washed away from the filter. This is shown in Figure 5. The virus shown and named here as 13 can contain 1125. The antibody 14 is bound to a radioactively marked antibody 14. After washing three times, filter The remaining radioactivity on the surface is measured by so-called RIA (radioimmunoassay). Measure with gamma sense.

さらにもう1つの検出方法は、特定のウィルスに向けられた第2抗体14をベル オキシターゼによりマークし、この抗体が結合し、そして洗浄により除去されな い場合、基質の添加の後、黄緑色の反応が得られ、そして前記と同じ方法により 測定され得ることを含んで成る。Yet another detection method is to use a second antibody 14 directed against a specific virus. Marked by oxidase, this antibody binds, and is not removed by washing. If not, after addition of the substrate a yellow-green reaction is obtained and the same method as above is used. It consists of something that can be measured.

例2゜ 例1に記載された態様でのラテックス球へのウサギ抗−マウス抗体の結合の代わ りに、これらの抗体の結合は、ヨーロンバ特許出願第8585008−7号と同 じ方法で処理されるであろうポリカーボネートフィルターディスクに直接的にも たらされ、そしてこのフィルターは、フィルター表面に共有結合によって抗体の Fc一部の結合を可能にする、T線により誘導される接種方法によってカルボキ シル化される。これは第6図に図示され、ここで15はフィルターホルダーを示 し、そして16はフィルターディスクを示す、フィルター表面を4度洗浄した後 、そのフィルターを通して、その試験液体を濾過スる0次に、ウィルスの表面に 向けられている特異的なマウス−モノクローナル抗体を添加する。もしあるなら 、存在するウィルスは、そのウィルス抗体への特異的な結合によってフィルター 表面に直接的に付着し、そして4回の連続的な洗浄によってさえも除去され得な い。ウィルスがその表面に結合されていない場合、それは洗浄によって除去され るであろう。フィルター表面の孔サイズは、その孔サイズがウィルス粒子の直径 よりも約10倍大きいように選択される。検出は、例1に記載されたのと同じ方 法で行なうことができる(走査電子顕微鏡、ラジオイムノアッセイ又はELIZ Aによって)。濾過のためには、スウェーダン特許出願第8404821−4号 に記載のタイプのフィルターホルダーが使用される。Example 2゜ Alternatives to the binding of rabbit anti-mouse antibodies to latex spheres in the manner described in Example 1. In particular, the binding of these antibodies is similar to European Patent Application No. 8585008-7. Directly onto polycarbonate filter discs that would be treated in the same way. and the filter is coated with antibodies covalently attached to the filter surface. Carboxylation by T-ray induced inoculation method, which allows binding of Fc moieties. silized. This is illustrated in Figure 6, where 15 indicates the filter holder. and 16 shows the filter disk, after cleaning the filter surface 4 times. , filter the test liquid through the filter, then apply it to the surface of the virus. Add specific mouse monoclonal antibodies directed against it. If there is , the viruses present are filtered by specific binding to their viral antibodies. It adheres directly to surfaces and cannot be removed even by four consecutive washes. stomach. If the virus is not bound to the surface, it is removed by washing There will be. The pore size on the filter surface is determined by the diameter of the virus particle. is selected to be about 10 times larger than . Detection is the same as described in Example 1. (scanning electron microscopy, radioimmunoassay or ELIZ) by A). For filtration, Swedish Patent Application No. 8404821-4 A filter holder of the type described in is used.

フィルターは、異なったウィルスの存在を1回の濾過により決定することを可能 にするために、異なったレベルの表面上にそれぞれ異なったサイズ又は異なった 種類のラテックス球及びウィルスの堆積のためにそれぞれ異なったレベルで配置 され得る。そのフィルターはまた、相互に一定の間隔を保たれた多くのくぼみを 有するプレートを含むことができ、そしてその底は、その中に異なったサンプル を受けるためにフィルターを供給されている。最後に、そのフィルターは、多孔 性底によって支持されている独特のラテックス球によって形成され得る。The filter allows the presence of different viruses to be determined in one filtration to make different sizes or different shapes on the surface of different levels Different types of latex spheres and placed at different levels for virus deposition can be done. The filter also has many wells spaced apart from each other. and the bottom of which has different samples in it. A filter is supplied to receive the Finally, the filter is porous It can be formed by a unique latex sphere supported by a sole.

そのフィルターは、それぞれウィルス及びラテックス球の濃縮のためにもう1つ の通路又は迷路システムによって交換され得る。The filters each have one more for concentration of virus and latex spheres. can be replaced by a passageway or maze system.

そのフィルターが半透明材料から成る場合、検出はそれらを通して光を放射する ことによって行なわれ得る。If the filter is made of translucent material, the detection emits light through them This can be done by

昭和63年2月9日 特許庁長官 小 川 邦 夫 殿 1 特許出願の表示 PCT/SE86100507 2 発明の名称 改良された技法による有機性粒子、特にウィルスの検出法73 特許出願人 住 所 スウェーダン国、ニス−13300サルトショーバーデン、シェフパル スティゲン 15 補正書の提出年月日 1987年10月16日(受理臼) れたi、S゛の− 1、濃縮技法によって有機性粒子、特にウィルスを診断するための方法(ここで 、もしあるならばその中の前記粒子の存在を決定するために試験されるべき液体 又はガスが、通路又は迷路システムを通して通され、そしてもしあるならば蓄積 された粒子が検出される)であって、前記粒子の通過を可能にする透過性を有す る通路又は迷路システムの表面が前記濃縮のために使用され、そして/又、は発 見されるべき粒子よりも大きなボール又は他の物体の表面が、それぞれ該表面又 は複数の表面に前記粒子を結合するために調製され、通路又は迷路システムを通 しての液体又はガスの通過で前記粒子が直接的にそのようなシステムの表面上に 蓄積し、又はボール又は他の物体に間接的に結合され、そしてイオン化金属層に より被覆した後、たぶん表面上に位置しているボール又は他の物体を有する通路 又は迷路システムの表面が、もしあるなら前記粒子の存在の検出のために走査電 子顕微鏡により試験されることを特徴とする方法。February 9, 1986 Mr. Kunio Kogawa, Commissioner of the Patent Office 1 Display of patent application PCT/SE86100507 2 Name of the invention Method for detecting organic particles, especially viruses, by improved techniques 73 Patent Applicant Address: Shefpal, Nis-13300 Saltsjöbaden, Sweden Stegen 15 Submission date of amendment October 16, 1987 (reception mortar) i, S゛- 1. A method for diagnosing organic particles, especially viruses, by concentration techniques (here , the liquid to be tested to determine the presence, if any, of said particles therein. or gas is passed through a passageway or labyrinth system and accumulates, if any. particles are detected) and has a permeability that allows the passage of said particles. A passageway or labyrinth system surface is used for said concentration and/or The surface of a ball or other object that is larger than the particle to be viewed is are prepared to bind the particles to multiple surfaces and pass through a passageway or labyrinth system. With the passage of a liquid or gas, the particles are directly onto the surface of such system. accumulates or is indirectly bonded to a ball or other object and to an ionized metal layer. Passages with balls or other objects perhaps located on the surface after more coating or the surface of the maze system is exposed to a scanning voltage for detection of the presence of said particles, if any. A method characterized in that it is examined by means of a submicroscope.

2、前記通路又は迷路システムの表面及び/又は前記ボール又は他の物体の表面 が、発見されるべき粒子に対して向けられた特定の種類の抗体をそれぞれ該表面 又は複数の表面に共有結合せしめるために調製されることを特徴とする請求の範 囲第1項記載の方法。2. The surface of said passageway or maze system and/or the surface of said ball or other object. each surface with a specific type of antibody directed against the particle to be discovered. or prepared for covalent bonding to multiple surfaces. The method described in box 1.

3、探索される粒子に対して向けられた前記粒子が中間体の抗体によってそれぞ れ前記表面又は複数の表面に結合されることを特徴とする請求の範囲第1項記載 の方法。3. The particles directed towards the particles to be probed are each activated by an intermediate antibody. claim 1, wherein the surface or surfaces are bonded to said surface or surfaces. the method of.

4、反応性基が、それぞれ探索される粒子に対して向けられた抗体を共有結合す るために、それぞれ前記表面又は複数表面に又は中間体の抗体に結合されること を特徴とする請求の範囲第2又は3項記載の方法。4. Reactive groups covalently bind antibodies directed against each probed particle. conjugated to said surface or surfaces or to an intermediate antibody, respectively, in order to The method according to claim 2 or 3, characterized in that:

5、 それぞれ前記抗体又は中間体の抗体が、カルボジイミド結合又は他の共有 結合によって前記反応性基に結合されることを特徴とする請求の範囲第4項記載 の方法。5. The antibody or intermediate antibody, respectively, may have a carbodiimide bond or other covalent bond. Claim 4, characterized in that it is bonded to the reactive group by a bond. the method of.

6、前記濃縮が、検出のために半透明材料を通して光の放射を可能にするために 、その材料の通路又は迷路システム上でもたらされることを特徴とする請求の範 囲第1〜5項のいづれか1項記載の方法。6. The concentration allows emission of light through the translucent material for detection. , characterized in that the material is provided on a passageway or labyrinth system. The method according to any one of items 1 to 5.

国Fgi11査卸失 量咎I−−響・―・−―−^IM+”−’”口PCT/5E81’100507National FGI11 inspection lost Quantity I--Hibiki-----^IM+"-'"口PCT/5E81'100507

Claims (6)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.濃縮技法によって有機性粒子、特にウィルスを診断するための方法(ここで 、もしあるならばその中の前記粒子の存在を決定するために試験されるべき液体 又はガスが、通路又は迷路システムを通して通され、そしてもしあるならば蓄積 された粒子が検出される)であって、前記粒子の通過を可能にする透過性を有す る通路又は迷路システムが前記濃縮のために使用され、そしてその通路又は迷路 システムの表面及び/又は探索される粒子よりも大きな球又は他の物体の表面が 、それぞれ該表面又は複数の表面に前記粒子を結合するために調製され、通路又 は迷路システムを通しての液体又はガスの通過で前記粒子が直接的にそのような システム上に蓄積し、又は前記球又は他の物体に間接的に結合されていることを 特徴とする方法。1. A method for diagnosing organic particles, especially viruses, by concentration techniques (here , the liquid to be tested to determine the presence, if any, of said particles therein. or gas is passed through a passageway or labyrinth system and accumulates, if any. particles are detected) and has a permeability that allows the passage of said particles. A passageway or maze system is used for said concentration, and said passageway or maze system is The surface of the system and/or the surface of a sphere or other object larger than the particle being searched , each prepared to bind said particles to said surface or surfaces, and a channel or The passage of a liquid or gas through a labyrinth system causes the particles to directly accumulated on the system or indirectly coupled to said sphere or other object. How to characterize it. 2.前記通路又は迷路システムの表面及び/又は前記球の表面が、探索される粒 子に対して向けられた特定の種類の抗体をそれぞれ該表面又は複数の表面に共有 結合せしめるために調製されることを特徴とする請求の範囲第1項記載の方法。2. The surface of the passageway or maze system and/or the surface of the sphere is covered by the particles to be explored. Each surface or surfaces shares a specific type of antibody directed against the child. A method according to claim 1, characterized in that it is prepared for binding. 3.探索される粒子に対して向けられた前記粒子が中間体の抗体によってそれぞ れ前記表面又は複数の表面に結合されることを特徴とする請求の範囲第1項記載 の方法。3. The particles directed against the particles to be probed are each activated by an intermediate antibody. claim 1, wherein the surface or surfaces are bonded to said surface or surfaces. the method of. 4.反応性基が、それぞれ探索される粒子に対して向けられた抗体を共有結合す るために、それぞれ前記表面又は複数表面に又は中間体の抗体に結合されること を特徴とする請求の範囲第2又は3項記載の方法。4. The reactive groups covalently bind antibodies directed against each probed particle. conjugated to said surface or surfaces or to an intermediate antibody, respectively, in order to The method according to claim 2 or 3, characterized in that: 5.それぞれ前記抗体又は中間体の抗体か、カルボジイミド結合又は他の共有結 合によって前記反応性基に結合されることを特徴とする請求の範囲第4項記載の 方法。5. antibodies of said antibodies or intermediates, carbodiimide bonds or other covalent bonds, respectively. Claim 4, wherein the reactive group is bonded to the reactive group by bonding. Method. 6.前記濃縮が、検出のために半透明材料を通して光の放射を可能にするために 、その材料の通路又は迷路システム上でもたらされることを特徴とする請求の範 囲第1〜5項のいづれか1項記載の方法。6. The concentration allows the emission of light through the translucent material for detection. , characterized in that the material is provided on a passageway or labyrinth system. The method according to any one of items 1 to 5.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4407943A (en) * 1976-12-16 1983-10-04 Millipore Corporation Immobilized antibody or antigen for immunoassay
FR2514367A1 (en) * 1981-10-08 1983-04-15 Pasteur Institut Detection of pathogenic germs in drinking water, urine etc. - uses specific immuno-adsorbents e.g. polyacrylamide-agarose coupled with specific antibodies
US4459361A (en) * 1982-06-04 1984-07-10 Angenics, Inc. Ligand assay with one or two particulate reagents and filter
US4632901A (en) * 1984-05-11 1986-12-30 Hybritech Incorporated Method and apparatus for immunoassays
AU4964785A (en) * 1984-09-26 1986-04-17 Andersson Jan Peter Anordning och satt for att fanga och analysera partiklar

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