JPH0283336A - 乳房炎およびその他のブドウ球菌感染症の治療法並びに同治療用組成物 - Google Patents

乳房炎およびその他のブドウ球菌感染症の治療法並びに同治療用組成物

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JPH0283336A
JPH0283336A JP63234685A JP23468588A JPH0283336A JP H0283336 A JPH0283336 A JP H0283336A JP 63234685 A JP63234685 A JP 63234685A JP 23468588 A JP23468588 A JP 23468588A JP H0283336 A JPH0283336 A JP H0283336A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 発明の背景 本出願はブドウ球菌感染の治療および予防へのリゾスタ
フインの使用、特に、ブドウ球菌によるウシ乳房炎の治
療および予防に関する。
リゾスタフィンは、元来5chindlerおよび5c
huhartにより分離され、スタフィロコッカス・ス
タフィロコッカス(5taphylOCOCCuSst
aphy+o+yttcus ”)と命名されたー既知
株スタフイロ1ツカス・シミ1ランス(5taphy+
ococcussiiulans)により分泌されるバ
クテリオシンである。リゾスタフィンの3.5taph
ylolyticusによる製造は1966年10月1
1日に発行の米国特許No、3.278.378および
Pr0Ceedinl;13 ofthe Natio
nal Acade+++y of 5ciences
、 51巻、414−421頁(1964年)に記載さ
れている。
リゾスタフィンを生産した一菌株S、 5taphyl
o−yticus  (N RRL  B −2628
)は最近5loanら、J、 5ystei、 Bac
teriol、32巻、170−174頁(1982年
)によりs、s*mutansノ生物変異株と同定され
た。S、 5taphylolyt+cusはAppr
oved Li5t of Bacterial Na
mes (細菌名の承認リスト)にないので、リゾスタ
フィン生産菌もS、simulansと再命名された。
バクテリアシンはバクテリアが分泌し、近縁バクテリア
を殺したり溶菌したりするたん白質である。例えば、リ
ゾスタフィンは実質的に全ての既知ブドウ球菌種を溶菌
し殺すが、他の属のバクテリアに対しては活性がない。
S、simulans(NRRL  B−2628)を
報告文献に従って増殖させた培?!濾液から単離される
リゾスタフィンはブドウ球菌の@直壁に存在するペプチ
ドクリカンのポリグリシン架橋結合を切断するエンドペ
プチダーゼである。さらに、リゾスタフィンを生産する
培養菌はその活性に耐性であるが、リゾスタフィン非生
産条件下で増殖させた培養菌は感受性である。
リゾスタフィンはS、simulansを液体培養で増
殖させる発酵法により生産できることがわかっている。
そのような発酵法は1966年10月11日発行の米国
特許No、3.278.378およびProceedi
ngs of the National Acade
ly ofSciences 、51巻、414−42
1頁(1964年)に記載されている。発酵法によるリ
ゾスタフィンの生産の種々の改良は1968年8月20
日発行の米国特許No、3.398.056および19
71年7月20日発行のN013,594,284に記
されている。後ろの2つの文献では発酵によるリゾスタ
フィンの生産を促進し、改良するための培養培地および
植菌方法の改良が開示されている。リゾスタフィンはS
、5illlLllanSの対数増殖期に不活性な前駆
体として生産される。プO酵素はS、 simulan
sの休止期の培養菌が生産するプロテアーゼにより活性
な成熟たん白質に変換される。
さらにリゾスタフィンはリゾスタフイン遺伝子を発現す
るE、 coli、 Bacillus 5IJbti
liSおよびBacillus 5phaericus
などの組換え微生物によっても生産される。通常の生産
とは違って、組換えのリゾスタフイン生産菌株での培養
培地ではリゾスタフインは対数増殖期に完全にプロセス
された成熟活性酵素として、ブドウ球菌の免疫原性汚染
物の存在なく蓄積する。
ウシ乳房炎は酪農業にとって非経済的な問題であり、ア
メリカ合衆国のみで年間20億ドル以上かかる。この疾
患はアメリカ酪農牛の50パーセントにある程度は影響
していると考えられ、その結果、使用できない牛乳が出
て牛乳の生産量が低下し、感染がひどいとウシの死につ
ながる。
乳房炎は乳腺の感染、主に5taphylococcu
saureus或いは5taphylococcus 
agalactiaeにより、また頻度は低いがE、 
coliおよびその他のダラム陰性細菌或いはそれらの
合併感染により起る。
ブドウ球菌感染のほとんどは従来の抗生?5質療法によ
り効果的に治療できることがわかっている。
しかしながら、ブドウ球菌による乳房炎は治癒するのが
難しいことがわかっている。
ウシ乳房炎の従来からの予防法は乳頭を消毒液に毎日浸
ける複雑な養生法により(J、5HcDonald、 
 5 Veterinary Cl1nics of 
NorthAmerican Large Anima
l Practice  269 [1984年]参照
)、また時には抗生物質含有の乳頭浸漬による。しかし
、日常の抗生物質療法は抗生物質耐性菌株の出願を最少
限とするように注意して行なわねばならない。感染が起
ったら、抗生物質の乳腺注入を必要とする。このような
抗生物質療法は感染を抑え、生産される牛乳は販売でき
るが、通常、原因微生物を完全に消失させることはない
過去にはブドウ球菌による乳房炎は抗生物質治療に対し
ての応答が悪く、感染の再発と慢性化の傾向があった。
乳房炎の研究の結果、乳房炎の治療に於ける問題の一部
はブドウ球菌のかなりの数が乳腺中で食細胞の多形核好
中球(PMN)の内部に生存して残ることによることが
明かとなった。
ブドウ球菌はPMN内では抗生物質の作用から防御され
、好中球の溶解が起ると食細胞内ブドウ球菌が乳房炎を
起すブドウ球菌の再増殖源となると考えられている。
乳房炎治療に於ける食細胞内ブドウ球菌の抗生物質攻撃
の機構研究の結果、リゾスタフィンは食細胞内ブドウ球
菌を殺菌する候補物質からは外されていた。Crave
nら、29 Re5earch 1nVeterina
ry 5cience  57 (1980年);Cr
avenら、21  Antimicrobial  
Agents andChemotheral)V  
618頁(1982年) HCravenら、5 Co
ma、 Immun、 Hicrobial、 Inf
ect、 Dos447頁(1982年) 、crav
enら、51Journal  of Dairy R
e5earch  513 (1984年)。これらの
実験ではリゾスタフインを食m胞内のブドウ球菌をクロ
キサシリン、ゲンタマイシン或いはリゾスタフインで処
理する前に細胞外ブドウ球菌を殺菌するための前処理と
してインビトロで使用している。Cravenらの実験
ははっきりと、リゾスタフィン含有の溶液中で20時間
インキュベートした後も細胞内ブドウ球菌は生存してい
るため、リゾスタフィンは乳房炎には効果がないことを
示しティる。51Journal of DairyR
esearch  515−516頁および第2表。
リゾスタフィンはヒト単核細胞を透過することも報告さ
れている。単核細胞はPMNとは異なるタイプの細胞で
あるから、このヒトのモデルがウシ乳房炎の治療に応用
できるとは思われない(van den Broekら
、21.5cand、 J、 lm1unol、189
頁[1985年〕)。
リゾスタフィンはまたマウスのブドウ球菌性腎膿瘍の治
療に、特にメチシリン投与と連続して使用すると有効で
あることがわかっている。Dixonら、41  Wa
fer、 Biol、 Hed、 62 (1968年
)。
ヒトではリゾスタフインは慢性の鼻ブドウ球菌感染の治
療薬としても使用されてきた。
(Quickel、 Jr、ら、22 ^pplied
 Hicrobiology446頁[1971年])
。耐性ブドウ球菌感染の一例ではリゾスタフインが全身
投与された( 5tarkら、291  Medica
l Intelligence 239頁[1974年
])。しかし一般には、リゾスタフィンの全身投与につ
いては臨床医療分野でも動物医療分野でも強い疑問およ
び躊躇がある。リゾスタフィンは局所投与以外に一般的
に使用するには免疫原性が強すぎると考えられている。
発明の要約 今回、リゾスタフィンが驚くべき効力でブドウ球菌乳房
炎を、たとえ慢性型であっても、免疫原性の悪影響なし
に予防し、治癒するのに使用できることを発見した。予
防には、リゾスタフィンを日常の乳頭洗滌液の中に入れ
ればよい。リゾスタフィンは単独でも使用できるが、乳
頭洗滌液はリゾスタフインの他に5taphyloco
ccus globisporusにより生産されてブ
ドウ球菌に対して有効なバクテリオシンであるムタノリ
シン:およびグラム陽性菌およびダラム陰性菌の細胞壁
に含まれるペプチドグリカンの多糖類骨格を加水分解す
るムラミン酸溶解酵素であるリゾチームのような溶菌剤
を含有する。製剤はまた、エチレンジアミンテトラ酢酸
(EDTA)のようなキレート斉ト;およびバクテリア
の殺菌を高めることの知られている弱性界面活性剤など
も含有できる。適当な弱性界面活性剤としては特に、ポ
リオキシエチレンソルビタンと脂肪酸のエステル類(T
l1Teen系統)、オクチルフェノキシポリエトキシ
エタノール(■「1℃0n−X系統)、n−オクチル−
β−D−グルコピラノシド、n−オクチル−β−D−チ
オグルコピラノシド、n−デシル−β−D−グルコピラ
ノシド、n−ドデシル−β−D−グルコピラノシドおよ
び生物に存在する界面活性剤、例えば、脂肪酸、グリセ
リド、モノグリセリド、デオキシコレートおよびデオキ
シコレートのエステル類などがある。
広範囲スペクトルの乳頭洗滌液の予防への使用に加え、
洗滌液の種々の成分を菌を除去し、乳房炎を治癒するた
めに乳房へ注入でき、例えばリゾスタフィンを単独で、
或いは弱性界面活性剤と一緒に注入でき、界面活性剤を
併用することにより驚くことにリゾスタフィンのブドウ
球菌殺菌効果は1000倍以上上昇する。さらに、リゾ
スタフィンとペニシリンを併用することにより試験管内
で1000倍のブドウ球菌殺菌作用を示すような相乗作
用が認められた。従って、治療用の注入液はペニシリン
、または弱性界面活性剤と任意にキレート剤とをさらに
含有できる。
界面活性剤、EDT△、ペニシリンまたは他の増強剤を
含有する、或いは含有しないリゾスタフィンを治療有効
量注入することによりブドウ球菌感染を除去することが
出来る。好ましくはそのような注入液は他の薬剤を併用
しない場合には2がら400■のリゾスタフインを含有
する。増強剤を含有する併用の場合にはリゾスタフイン
の必要量はく相乗的に活性が高められるため)1000
倍も低くできる。
リゾスタフィンとペニシリンの相乗的な殺菌活性はベニ
シリナーゼ陽性のs、 aureusおよびメチシリン
耐性S、 aureus (“MR8A” )に投与し
た場合にもv!AIされた。MR3Aは通常多くの抗生
物質に耐性であって特にヒトで問題が多く、殺菌が困難
ぐある。リゾスタフィン/ペニシリンの併用は難しいM
 RS A感染が従来の抗生物質(例えばペニシリン〉
治療により制御できないような特殊な状況での使用に適
用されよう。さらにペニシリンおよび他の同じような作
用をする物質はリゾスタフインと併用してブドウ球菌感
染および汚染に対する薬剤として有用であろう。
本発明によるリゾスタフィン含有製剤は乳房炎治療への
利用として示すが、これら製剤でのリゾスタフインの増
強効果はブドウ球菌による感染および汚染が関与する他
の多くの利用にも適当である。従って、本製剤は外傷保
護および治療、消毒液、洗液やローション、或いは外科
用挿入などに加えることによってブドウ球菌感染を制御
することに使用できる。さらに本製剤は医療用様器の洗
滌および環境の消毒が好ましいような時に床、壁および
ベツド等の清掃にも使用できる。他の利用法としては、
ブドウ球菌の^腔感染を低下するための鼻腔注入、およ
び肉、卵、ヂーズおよび魚類の処理、或いは包装および
取り扱い器具などの食品関連の利用などがある。
本発明の第一の側面は、リゾスタフィンおよびリゾスタ
フィンの殺菌活性を相乗的に高めうる、ペニシリン、合
成ペニシリン、その他の抗生物質、キレート剤、弱い界
面活性剤およびその他の膜活性物質より成る群より選ば
れる少なくとも−っの薬剤とをブドウ球菌を殺す有効量
含有する抗ブドウ球菌組成物に関する。
リゾスタフィンが少なくとも0.01μ9/dの濃度で
存在することが好ましい。
また、ペニシリンはリゾスタフインの殺菌効果を高める
有効量で含有することが望ましい。
その吊としては、0.1μ7/dがら10.0μg/d
の範囲内の量が例示される。
リゾスタフィンの殺菌効果を高めるのに有効量の弱界面
活性剤が含有されていてもよい。
その覆としては0.1%から1.0%の徒囲内である。
更に好ましくは、リゾスタフィンの殺菌効果を高める有
効量のペニシリンおよび弱界面活性剤が含有される。
弱界面活性剤は0.1%から1.0%でペニシリンとし
ては0.1μg/mlから10.Oug/dの量から好
ましくは選択される。
ざらにムタノリシンおよびリゾチームを含有していても
よい。
リゾスタフィンとしてはリゾスタフインをコードする組
換えプラスミドを保有する形質転換微生物に由来するも
のが好適に使用される。
形質転換微生物としてはプラスミドpBC161Lを保
有するものが好適に利用される。
本発明の第2の側面は、許容担体に含有されるリゾスタ
フィンより成る治療薬をブドウ球菌性乳房炎を治癒する
有効量、感染腺に乳腺内注入により投与することより成
るブドウ球菌性乳房炎の治療法に関する。
その場合2〜から4001ngのリゾスタフインをウシ
乳腺に適用すればよい。
リゾスタフィンとしてはリゾスタフインをコードする組
換えプラスミドを保有するBacillussphae
ricus形質転換株により生産されるものが好適に使
用される。
かかる生産菌としてはプラスミドpBC16−11を保
有する形質転換微生物が挙げられる。
治療薬に更にリゾスタフィンの治療効果を高めるのに有
効量の弱界面活性剤を含有しているものを使用してもよ
い。
さらに、リゾスタフィンの殺菌活性を高めうる、ペニシ
リン、合成ペニシリン類、細胞壁−活性抗生物質、キレ
ート剤および弱界面活性剤より成る群より選ばれる少な
くとも一つの薬剤を、リゾスタフィンの治療効果を相乗
的に高める量で含有していることが好ましい。
治療薬としてはさらに少なくとも一つの追加の細菌溶菌
剤を含有しているものでもよい。
かかる追加の細菌溶菌剤としてはムタノリシンおよびリ
ゾチームより成る群から選ばれるものが挙げられる。
第3の側面は、適当な担体中におよそ0.01μ9./
leから10.0μg/I+11!のリゾスタフインを
含有して成る溶液に乳頭を、各搾乳時の前後に浸すこと
から成るウシ乳房炎の予防方法に関する。
その際に溶液がさらにムタノリシンおよびリゾチームを
含有するものを用いてもよい。
リゾスタフィンとしてはリゾスタフインをコードする組
換えプラスミドを保有するBacillussphae
ricusの形質転換株により生産されたものが好適に
使用される。
かかるBacillus 5phaericusの形質
転換株としてはプラスミドpBC16−I Lを保有し
ているものが挙げられる。
また、溶液にさらにメタノリシンおよびリゾチームを含
有するものも好適に使用される。
本発明により使用するリゾスタフインは天然または組換
え体より得られる。好ましくはリゾスタフインはリゾス
タフインの合成を指示する組換えプラスミドを保有する
Bacillus 5phaericus00株から得
られ、その結果リゾスタフィンが生育培地中に直接蓄積
するので高収量にかつブドウ球菌由来の免疫原性汚染が
なく、また面倒なリゾスタフイン精製の必要もなく調整
できる。プラスミドpBC16−I Lを保有するBa
ci l 1ussphaericus形質転換株がこ
の目的に最も適していることがわかっているが、他の菌
株もリゾスタフイン源として使用できる。リゾスタフィ
ンをコードする遺伝子を含む組換えプラスミドにより形
質転換した微生物からリゾスタフインを得る一つの方法
は1987年8月10日に出願され、米国特許比!!r
1852,407の一部継続出願である米国特許出願0
34,464に詳細に開示されている。
両出願共本発明の文献として採用する。
〈治療方法〉 本発明によるウシ乳房炎の予防処理にはリゾスタフイン
含有の乳頭洗滌液を使用する。リゾスタフィン含有の乳
頭洗滌液を搾乳の前後に毎回使用するとウシ乳房炎の有
効な予防が出来る。好ましくは本予防法を群の全てのウ
シに使用するのがよい。乳頭洗滌液はおよそ1.0Lt
g/dのリゾスタフィンを許容担体中に含んで成る。さ
らに、本発明により使用する乳頭洗滌液はおよそ1.0
μJ/dのムタリシン、およそ10μg/mlのりゾチ
ームおよび弱性界面活性剤を含有する。許容担体として
はpHおよそ8.0の緩衝液となるもので、水性緩衝液
または親水性の軟こうベースなどがある。例えば、非イ
オン性界面活性剤、脂肪酸または弱性界面活性剤、アル
ブミンやゼラチンのようなたん白担体、粉末セルロース
およびカルメルなどが担体として使用できる。本発明に
よる乳頭洗滌液はまた、EDTAのようなキレート剤、
着色剤およびグリセロール或いはソルビトールのような
湿潤剤を含有するのが有利である。
ムタノリシンはStreptomyces globi
sporusから得られる。リゾチームはトリ卵白より
1号られる。
予防処置を施しても発生する慢性或いは急性のブドウ球
菌によるウシ乳房炎に感染した動物は、リゾスタフィン
を乳腺内注入することにより有効に治療することができ
る。乳腺当り2から400 rrtyのリゾスタフィン
の一回投与により多くの場合ブドウ球菌乳房炎の感染を
除去して治癒できる。感染が持続する場合にはさらにリ
ゾスタフィンの投与を行なう。400IItgより高い
投与量は好ましくない副作用、例えば−時的膨潤、柔軟
および搾乳里の低下など、を起すので推奨できない。し
かし、このような影響は治療した腺にのみ見られ、従っ
て重篤な生命を左右するような場合にはその腺のみ高い
投与量で処理することも良い。命に係わる場合には投与
経路も全身分布が可能なように、感染箇所以外の場所も
含み、リゾスタフィンが腸内で失活しないように防御し
た適当な被覆製剤の静注、皮下注射、或いは筋注および
直腸または経口投与などを行なう。
リゾスタフィンおよびペニシリンの組合せの注入はこの
併用による抗菌活性の見かけ上の相乗作用のため、リゾ
スタフィン単独よりも驚くほど効力が高まることも明か
となった。その上、治療用のリゾスタフイン製剤はリゾ
スタフインの抗菌活性を高めるような他の薬剤、例えば
合成ペニシリンやその他の抗生物質、キレート剤、弱い
界面活性剤(例えばデオキシコール酸)、および感染部
位へのリゾスタフインの透過を高めるような膜に活性の
ある他の薬剤を含有できると考えられている。例えばペ
ニシリンを含有する製剤では、リゾスタフィンの抗菌活
性が高められるのでリゾスタフィン投与量を低くできる
。リゾスタフィンの投与量が多いと好ましくない副作用
を誘発する可能性があるため、このような相乗効果は効
力の点からだけでなく、副作用を回避できる点でも有意
義である。
火1」LL二A リゾスタフィン、ムタノリシンおよびリゾチーム組成物
のs、 aureusおよびその他の乳房炎病原菌に対
する殺菌活性を調べるために試験管内実験を行なった。
手順は以下のとおりである:く生菌数測定〉 1、−晩インキュベート(37℃)した平板からのバク
テリア細胞(通常109個/mf!、)をトリス緩衝液
(20mHt−リス、p++s>にけん濁する。
2、 10μlのバクテリア細胞けん濁液と1dの対照
および洗滌試験処方(即ち、リゾスタフィン組成物を含
有する牛乳、緩衝液、或いは緩衝界面活性剤等)を合わ
せる。
3、 細胞を37℃にて種々の時間インキュベートする
4  細胞液を卓上遠心分離を用いて2分間遠心分離し
て集菌する。
5、 沈でん物を1.0−のファージ緩衝液で2回洗滌
する。
6、 細胞を1.0ti!のファージ緩衝液に再けん濁
し、ファージ緩衝液を用いて適当に段階希釈した後、1
00tllをGL寒天(s、 aureus  Eco
li、 Klebsiella pneumoniae
 )またはトリプトケース大豆寒天(S、 agala
ctiae )にまく。
7、 平板を37℃で一晩インキユベートし対照平板お
よび試験平板上のコロニー形成単位(以(I CF U
という)を計測して生存パーセントを決定する。
くファージ緩衝液の組成〉 50 n+Hl−IJ ’)、、DH7、8: 1 m
HM Q S 04  :4m)I  CaCj!  
;100+HNaCj!;ゼラチン、1.0’;J/1
 (ファージ緩衝液は処理により溶菌しなかったプロト
プラストやスフエロプラス<GL寒 の1リツトル た
つの  〉D t rco製カザミノ酸、3.(:)g
 HDifco製酵母エキス、3.C1:NaC1,5
,9g;乳酸ナトリウム(60%、W/V )、3.、
M; 25%(V/ V)グリセロール、4.0d;寒
天、15g;pHを7.8に調整。
〈トリプトケース大豆寒天培地の1リツトル当たりの組
成〉 バクトドリプトン、15g;バクトドリトン、5h:N
aCf、5g;寒天、15h;pHは7.3に調整。
各種リゾスタフィン治療製剤の殺菌効果を示す試験管内
実験の結果は第1A表から第1C表に示す。結果はS、
 aureusのNewbould 305株、RN4
51株、ペニシリン耐性株RN1753(ベニシリナー
ゼ生産株)およびCo1株(メチシリン耐性)に対する
生存パーセントで表わした。
トを安定化するのに役立つ)。
必 −二 第1A表はリゾスタフインを1μg/d。
0.1μ9/me、0゜01μ!?/dおよび0.00
μg/ad!(対照)含有する製剤の結果を示す。これ
らの結果から明かなように、試験した全ての濃度のリゾ
スタフインで緩衝液中の菌を殺す効果があることがわか
る。牛乳を担体とした場合には1μg/dおよび0.1
μg/meのみで生存筒の低下が認められた。
第1B表はリゾスタフイン製剤に弱非イオン性界面活性
剤活性剤、オクチルフェノキジルポリエトキシ(10)
エタノール、(Triton X −100)、の添加
効果を示す。例えば、0.1Bg/dのリゾスタフイン
と0.1%Triton X −100で処理すると0
.001%以下の細胞しか生存しないが、それぞれの薬
剤での単独処理ではそれぞれ2.2%および7.7%が
生存した。さらに驚くことに、0.01Bg/dのリゾ
スタフィンと0.1%Triton X −100でも
0.001%以下の生存が観察された。
第1C表はブドウ球菌の3株に対してのリゾスタフイン
/ペニシリン併用の相乗効果を示す。各薬剤の溌磨によ
ってリゾスタフィンにペニシリンを添加した併用は3株
全てでリゾスタフィンまたはペニシリンの単独よりも1
00倍からi oo。
倍有効である。
第1D表はS、 aLlretlsに対するリゾスタフ
ィンとペニシリンの順次投与に比較して併用の効果を示
す。S、 aureusを牛乳中に107個/威の細胞
数でけん濁し、リゾスタフィンとペニシリンと同時に、
或いは順次に記載の時間インキュベートした。インキュ
ベション後、試料を遠心分離して細胞を集め、2回洗滌
後1.0dのファージ緩衝液に再けん濁し、希釈して1
00μmをGし寒天にまく。コロニー形成単位(CFU
)を37℃に一晩インキユベーションしてから計測し、
対照に対する生存率をパーセントで測定した。リゾスタ
フィン/ペニシリン併用はs、 aureusに対して
これらを順次添加したものより少なくとも3桁高い殺菌
活性の相乗効果を示す。
第1D表 5on(0,5h)    pen(0,5h)生存率
 0.0005  23    25    0.3 
     10(%) spn−リゾスタフィン  peハローニシリンさらに
、S、 aureus、 S、 agalactiae
およびE、 coliまたはにIebsiella p
net+moniae生菌けん濁液の600 nmに於
ける濁度を測定するリゾスタフイン、ムタノリシンおよ
びリゾチームの活性測定でキレ−1〜剤(例えばEDT
A)がこれら3薬剤のそれぞれの活性を高めることがわ
かった。
これらのデータは、リゾスタフィンは速効性で高活性の
ブドウ球菌殺菌剤であり、その殺菌活性はペニシリンま
たは弱い界面活性剤、TritonXlooにより10
00倍以上高められることを示す。さらにキレート剤を
添加するとリゾスタフインの殺菌活性は高まる。また合
成ペニシリンや細胞壁に活性のある抗生物質もリゾスタ
フインの活性を高めると考えられている。リゾスタフィ
ンは牛乳中でもブドウ球菌に対する殺菌剤であるが、f
fi衝液中では牛乳中で見られるおよそ10倍の殺菌活
性を示す。
実施例5 実施例1から4までに記載した一般手順に従い、溶菌酵
素、非イオン性界面活性剤および緩衝キレート剤を含有
するリゾスタフイン組成物の殺菌活性を評価するために
試験管内実験を行なった。第■表に示すように、1%T
riton X −100゜0.1Bg/mlリゾスタ
フィン、10μ7/ateリゾチームおよび20ff1
14トリス、pH8,O中の5mHEDTAを含む製剤
(AMB I乳頭洗滌液0.1)はS、 aureus
 t4ewbould  3 Q 5株、S(!p!d
erlll!dfs、 5treptococcus 
agalactiaeHCDOna同株および048株
を含む広範囲の乳房炎起因の病原菌および5trept
ococcus uberisE、 coli並びに 
Klebsiella pneumoniaeの臨床分
離株に対して非常に有効であった。
第■表 (Newbould 305) Staphylococcus aureus(RN4
51) Staphylococcus epiclern+1
dis(ps) streptococct+s a[1alactia
G(HcDonald) StrQptOCOCCuS agalactiae(
C48) streptococcus uberis(PS) Escherichia coli (ps) KIebSiel la pneumoniae(ps
) 5.7x10” 8.3X105 3.9X105 2□9X104 69X105 9、lX105 9.6X105 <0 001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 〈1.0 〈1,0 実施例6 リゾスタフィン乳頭洗滌液組成物の生体内での効力を示
すためウシでの試験を行なった。試験は一般にはNat
ional Mastitis Council (国
立乳房炎評議会)のプロトコールAに従って行なった。
−殻内には、乳頭を1%ヨード洗液で清浄してベーパー
タオルで乾かす。次に乳頭をアルコールで洗って自然乾
燥する。次に一頭当たり4個全ての乳頭をS、 aur
eus Newbould 305株の108個/ad
!のけん濁液に乳頭の1/2が浸かるように浸漬し、3
0分間自然乾燥する。2個の乳頭(前の右と後ろの左)
をリゾスタフィンの試験用乳頭洗滌液製剤<0.85%
食塩水中に10μg/dのリゾスタフィン)の中に2/
3が浸かるように浸漬し、30分間自然乾燥する。残り
の2個の乳頭は非処理対照とする。それぞれの乳頭を先
ず湿った綿でふき、10−の0.85%滅菌食塩水で洗
う。洗液は30mの滅菌管に集める。洗液の0.2td
およびその適当な希釈液を血液寒天平板上に二連でまき
、37℃で24−48時間インキュベートした。コロニ
ー形成単位を計測し、5aureusの対照に対する生
存率を計算する。
0.85%塩溶液中の10μg/dのリゾスタフィン溶
液はウシ乳頭表面に感染したs、 aureusを完全
に消毒した。さらに乳頭をS、 aureusの細胞液
で処理する前にリゾスタフィンを乳頭表面に投与しても
乳頭表層に十分な活性が残存して乳頭での増殖を防いだ
。残存活性はリゾスタフインが除去されるのを軽減する
ために重合体吸着剤および/または不活性担体たん白を
添加することで高めることができる。
実施例7 実施例6の結果および試験管内実験で得られた結果に従
って、1.0μ9/udlリゾスタフイン、10ug/
mRリゾチーム、1.0%Triton X −100
および5m)4EDTAを20mHトリス!i衝液、t
lH8,Olに溶解した強力乳頭洗滌液製剤(AMB 
1乳頭洗滌液1.0)についてS、 aureus N
ewbould 305株に対する消毒効果を調べた。
乳頭をS、 aureus Newbould 305
株細胞108個/mlに浸け、30分間自然乾燥した。
次に乳頭をAMB I試験用乳頭洗滌液−1,0(1,
0μg/In1リゾスタフィン、10μg/dリゾチー
ム、1.O%Triton X −100,5m)4 
 EDTA、20mHトリス緩衝液、DH8,0)に浸
けて30分間自然乾燥した。乳頭を湿った綿でふき、1
0dの滅菌0.85%塩溶液ですすいだ。綿と洗液とを
別々に血液寒天平板にまき、24−48時間インキュベ
ートした後CFtJを測定した。第111A表に示す結
果は明かに本調製物の有効性を示す。処理乳頭では少な
くとも3桁低い数(7) S、 aureusltl胞
が見られ、50%の乳頭でS。
aureusの感染が全く見られなかった。
同様の実験を5treptococcus agala
ctiaeHcDOnald株の2×107個/mlの
細胞液に乳頭を浸け、30分間自然乾燥して行なった。
この実験結果を第■B表に示す。処理した乳頭は全て5
aOalactiaeが検出されなかった。
第111A表 第1[18表 対照 処理 平均 陰性の数 0/10 0/10 6/10 4/10 ウシ番号 平均 陰性の数 対照 1−当たりのCFU LF    RF 1/10 0/10 処理 1#Li!当たりのCFU LHRF 実施例6 モルモットの乳腺に200−300CFUのS、 au
reus Newbould  305株を感染させた
。感染3日後に200μlの0.85%滅菌塩溶液に溶
解したリゾスタフインを一回注入した。処理後6時間口
およびそれ以後12時間毎に少なくとも5日間、乳を採
取した。処理および非処理の乳腺からの乳試料100u
1を血液寒天平板上にまいた。24−48時間インキュ
ベート後、CFUを決定するために計測した。感染を防
止できる十分量のリゾスタフインを単回投与しても副作
用は見られず、リゾスタフィンの乳腺内への注入はブド
ウ球菌性乳房炎に対して有効であることを示した。
125μg/Kgの処理で6時間までに乳腺は感染から
回復し、実験中感染は見られなかった。
第■入 非感染動物数 (0/10)  (Ilo)  (1/
2)  (2/2)  (1/1)  (7/7)以上
の実施例からリゾスタフインがブドウ球菌乳房炎の治療
に有効であり、その効果はペニシリンまたは弱性界面活
性剤やキレート剤などの物質と併用して使用することに
より大きく高められることがわかる。
リゾスタフィンのBaC11ljlSを いた本発明に
より使用するリゾスタフインは天然源または組換え体か
ら得ることが出来る。好ましくは、リゾスタフィンはリ
ゾスタフイン合成を指示する組換えプラスミドにより形
質転換したBacillus 5phaericus 
 O0株に由来する培養物より得られ、これに関しては
1986年4月16日に出願された米国特許No、85
2.407号の一部継続出願であり、1987年4月1
0日に出願された同時係続出願であるNo、034.4
64号に記載されている。水沫によると高レベルでブド
ウ球菌由来の免疫原性汚染のないリゾスタフィンの生産
が出来る。活性型リゾスタフィンが生育培地中に直接蓄
積するのでリゾスタフィンの精製も容易である。この方
法を用いる際、プラスミドpBC16−11を保有する
BaC11lLISsphaericus  OO形質
転換株(B、 5phaeriCuS00/1)BCl
 6/I L)が目的に特に適していることがわかって
いるが、他のBacillusの形質転換株も有用なリ
ゾスタフイン源となる。
リゾスタフィン生産微生物をリゾスタフィン生産に適し
た条件下で生育させる。至適条件は菌株により変わるが
、ある種の生育培地および発酵条件がリゾスタフィン生
産を高めることが知られている。Bacillus 5
phaericus  00 / pB C16/IL
形質転換株では、好ましい生育培地はVY液体培地(2
5g子牛肉浸出液+5g酵母エキス/リットル)で十分
に通気した条件がよい(第V表参照)。
玉Y衣 にIett 100 rpm 200 rpm   200 rpm (みぞつき) 320 rpm 250  21.8    36.2    35.9
    30.0350  40.1    68,9
    45.3    45.0400  88.5
    62.7    102.8   ’   7
1.445On/a      86.4    52
.3    135.90/N   64,4    
31,3    37.6    57.5300dの
クレットフラスコに容れた培地(40adりに4dの一
晩前培養物を植菌した。
生育培地=5μ9/ldのエリスロマイシン含有■Yブ
ロス。
増殖過程で試料を採取した。上澄液についてリゾスタフ
ィンの活性をS、 aureusの死菌けん濁液の清澄
の濁度により測定した。結果は1d当たりのリゾスタフ
インのμ9で表わしである。
B、 5phaericus  00/pBC16−I
 L形質転換株はVY培地で増殖させると培養液1リツ
トル当たりおよそ130j1!Jのリゾスタフィンを生
産し、分泌した。これは現在可能な最適の発酵条件下で
S、 5illLllanSが生産する値の4倍以上の
量である。リゾスタフィンは培養液中で長くインキュベ
ーションを続けてもほとんど分解せずに培地中に蓄積さ
れ、菌体外の全たん白の80%以上を占める。
リゾスタフィンは培養液より公知の分画法でん(塩析)
法により単離される。別法として、特に効果的な精製は
リゾスタフイン生産性Bsphaericus  OO
/ pB C16−I L形質転換株の培養物の発酵液
を沈でん法とクロマトグラフィーによる分離とを組合せ
てできる。
菌体は発酵液より、例えば遠心分離または限外濾過によ
って、除去し、固型硫酸アンモニウムも40−60%飽
和、好ましくは50%飽和で上澄液に添加する。4℃に
て1時間後にリゾスタフィンを含有する沈でんを遠心分
離により回収する。
この段階での回収は80%以上である。
沈でんは最少量のり/υ酸ナナトリウム緩衝液pH7,
00,50mHNaCjりに再溶解し、100培容の同
じ緩衝液に対して透析する。特別の物質を除去した後、
透析液を陽イオン交換カラム(好ましくはPharma
cia  F P L CモノS)でクロマトグラフィ
ーにか1′、I、塩濃度0.05から0.25M  N
a(lの緩衝勾配を用いて溶出する。−回のクロマトグ
ラフィーでのリゾスタフインの回収は90%以上であっ
た。リゾスタフィン活性は二つの主要ピーク(第1図)
に存在した。
後ろに溶出するリゾスタフインのピークはたん白の非共
有凝集物より成る。この凝集物は緩衝液での希釈および
ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳
動下で遊離する。
Bacillus 5phaericusのリゾスタフ
ィン生産株は組換えDNA技術を用いて、好ましくは同
時係属出願852,407号および034,464に記
載される方法により調整できる。具体的には、S、 s
imulansの全DNAを適当な制限エンドヌクレア
ーゼで部分消化し、得られるDNA断片を適合する末端
を有し、抗生物質耐性マーカーおよびac Z’遺伝子
(即ち、β−ガラクトシダーゼ遺伝子)を保有する線状
化した既知ベクター(pUc8)と結合する。ライゲー
ション反応液を形質転換によりE、coli(JM10
5)に移す。
リゾスタフィン遺伝子がプラスミド中にうまく挿入した
ものは先ず適当な抗生物質に生育する形質転換株を選択
し、続いて lac Z’陰性の表現型を見つけること
により検出できる。リゾスタフィンの生産はs、 au
reusのけん濁の濁度清澄を液体または寒天平板での
重層で検出する。
種々のりシスタチン生産E、 coli  JM 10
5形質負転換株を用いてそのプラスミドDNAの制限酵
素解析およびサブクローニングをした結果、リゾスタフ
ィンをコードするDNA配列は1.5kbpのHpaI
I−Hi ndll[DNA断片に特定された。断片は
電気泳動後臭化エチジウム染色により検出し、ニトロセ
ルロースフィルターに移した。
フィルターをNETIvjiJ液(0,15MNaCj
!、0.1mEDTA、0.02Mトリス、1)H8,
O>で洗い、移したDNAを1MNaC1含有のNET
緩衝液中で65℃、1時間インキュベーションして溶出
した。n−ブタノールによる抽出で臭化エチジウムをD
NAから除去する。水溶液に2培容の冷95%エタノー
ルを添加してDNAを沈でんし、遠心分離によって集め
た後80%エタノールで洗ってTE緩衝液(10181
−IJス、1mHEDTA、pH18,0>に溶解する
。B、 5ubtilisおよびB、 5phaeri
cusを形質転換してリゾスタフィン発現の出来る組換
えプラスミドはプラスミドpBc16の誘導体(DBC
l6−1)をクローニングベクターとして使用して構築
した。pBcl6は元来、B、 1reLI3から単離
され(に、 Bernhard、 tl、 Schre
mpおよび―Goevel、 J、 Bact 、 1
33巻、897頁、1978年)だテトラサイクリン耐
性(Teし >のBacillusのプラスミドである
。制限酵素分析およびサザンハイプリダイゼーションで
DBCl 6と区別のつかないプラスミドがB、 5L
IbtiliSおよびB、 5phae−r 1cus
の土壌分離株からも見つかっている(J PolakおよびR,N、 Novick、 Plas
mid  7巻、152頁、1982年)。
クローニングベクターとして使用したDBCl6の誘導
体(OBCI 6−1 >はS、 aureus由来の
エリスロマイシン耐性(erm  )プラスミドである
プラスミドo E 194 (B、 Weisblum
阻Y、 Graham、 T、 Gryczanおよび
り、 DubnauJ、 Bact 、 137巻、6
35頁、1979年)のTaq IA断片とプラスミド
1)BCI 6のTaqI部分消化物とをT4リガーゼ
でライゲーションして構築した。ライゲーション液をプ
ロトプラスト形質転換(S、 ChangおよびS、 
N。
Cohen、molec、Gen、Genet 、16
8巻、111頁、1979年)によってB、 5ubN
lisに移し、テトラサイクリンとエリスロマイシンの
両剤に耐性のクローンを選択した。その一つをpBcl
 6−1と命名した。
制限酵素分析の結果、pBCl 6−1はpBC16の
Taq I断片の全てとpE194のエリスロマイシン
耐性を含有するTaa IA断片とを含有していること
がわかった。次にpBCl 6−1を制限エンドヌクレ
アーゼPvuIIで消化してテトラサイクリン耐性因子
の大部分を含むプラスミドDNAの25%を除去した。
PvuII消化したベクターpBc16−1は仔つアル
カリフオスファターゼで処理した。リゾスタフィンをコ
ードする1、5kbpのDNA断片をDNAポリメラー
ゼのフレナラ断片で処理した。1.5kbaのDNA断
片とプラスミドDNAを混合してT4リガーゼを用いて
ライゲーションし、ライゲーション液をプロトプラスト
形質転換によりB、 aubtilisに移した。形質
転換株はエリスロマイシン耐性、テトラサイクリン感受
性でS、 aureusの死菌を含む寒天で培養した時
透明ゾーンで示されるように、リゾスタフィンを生産し
た。一つのそのようなリゾスタフイン生産クローンを選
択してB、 5ubtilis/pBC16−I Lと
命名した。
B、 5ubtilis/ pB C16−1L形質転
換株から抽出したプラスミドpBc16−IL  DN
Aを臭化エチジウム−塩化セシウム密度勾配超遠心分離
の後単離した。プラスミドpBc16−I LDNAを
プロトプラスト形質転換により、B。
5phaericus  00株を含む各種BaC11
ljlS種に移した。形質転換株はエリスロマイシン耐
性でリゾスタフィンヲ生産した。B、 5phaeri
cus  001pBC16−I L形質転換株が最大
量のリゾスタフイン生産を示し、天然の酵素的に活性の
ある生成物を蓄積した。B、 5phaericus 
 00株は元は土壌より分離され、ニューヨーク州、ニ
ューヨークのPublic Health Re5ea
rch In5titute  (公衆衛生研究所)の
保存菌株で(RN3106)維持さレテイル。B、 5
phaericus  00 / pB C16−IL
もニューヨーク州、ニューヨークのPublic He
alth Re5earch In5tituteの保
存菌株中で維持され、AleriCan TVDe C
u1ture Co11ectionに受理番号ATC
CNo、67398として寄託されている。
【図面の簡単な説明】
第1図はリゾスタフインをコードする組換えプラスミド
pBc16−I Lを保有するB、 5phae−ri
cusOO株の形質転換株が生産するリゾスタフインの
クロマトグラムをホす。 図面の浄書(内容に変更なし)

Claims (3)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)リゾスタフインおよびリゾスタフインの殺菌活性
    を相乗的に高め、ペニシリン、合成ペニシリン、その他
    の抗生物質、キレート剤、弱い界面活性剤およびその他
    の膜活性物質より成る群より選ばれる少なくとも一つの
    薬剤とをブドウ球菌を殺す有効量含有する抗ブドウ球菌
    組成物。
  2. (2)許容担体に含有されるリゾスタフインとさらに、
    リゾスタフインの殺菌活性を高めうる、ペニシリン、合
    成ペニシリン類、細胞壁−活性抗生物質、キレート剤お
    よび弱界面活性剤より成る群より選ばれる少なくとも一
    つの薬剤を、リゾスタフインの治療効果を相乗的に高め
    る有効量含有することより成る治療薬をブドウ球菌性乳
    房炎を治癒する有効量、感染腺に乳腺内注入により投与
    することより成るブドウ球菌性乳房炎の治療法。
  3. (3)適当な担体中におよそ0.01μg/mlから1
    0.0μg/mlのリゾスタフインとムタノリシンおよ
    びリゾチームを含有して成る溶液に乳頭を、各搾乳時の
    前後に浸すことから成るウシ乳房炎の予防方法。
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