JPH029564B2 - - Google Patents
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- JPH029564B2 JPH029564B2 JP56195301A JP19530181A JPH029564B2 JP H029564 B2 JPH029564 B2 JP H029564B2 JP 56195301 A JP56195301 A JP 56195301A JP 19530181 A JP19530181 A JP 19530181A JP H029564 B2 JPH029564 B2 JP H029564B2
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Description
本発明は、人工血液用の新規酸素運搬剤に関す
る。
本発明者は、ヘモグロビン―イヌリン結合体が
次の諸性質を有し、人工血液用酸素運搬剤として
すぐれていることを見出し、本発明を完成した。
血管内滞留時間が長い。
ヘモグロビンと同程度の酸素運搬能力を有す
る。
人体蓄積性がない。
無害である。
本発明に使用するヘモグロビン―イヌリン結合
体の製造に使用するヘモグロビンは、ヒト、ウ
シ、ブタ、ヒツジ、ウマ、イヌ、サル、ウサギ、
ニワトリ等ヘモグロビンを有する動物由来のもの
であればいずれでもよい。本明細書中でヘモグロ
ビンというときはヘモグロビン誘導体、例えば、
ヘモグロビンとピリドキサールリン酸、ピリドキ
サール硫酸、2,3―ジリン酸化グリセリン酸、
イノシトールリン酸、糖リン酸エステル、ホスホ
エノールピルビン酸との共有結合物、グルコース
等単糖あるいは多糖との共有結合物、およびアミ
ノ糖との共有結合物を含む。このなかで、ピリド
キサールリン酸、ピリドキサール硫酸等ピリドキ
サール誘導体で修飾されている誘導体が、特に優
れた酸素運搬能を有する目的結合体を与えるとい
う点で好ましい。
一方、イヌリンは特に限定されないが、分子量
3000〜6000のものが好ましく、また分枝を有する
ものであつてもよい。
ヘモグロビンとイヌリンとの結合方法は、どの
ような方法であつてもよいが、化学結合剤を使用
し共有結合せしめるのがよい。
例えば、臭化シアン等の化学結合剤を使用し、
ヘモグロビンのアミノ基とイヌリンの水酸基との
間を結合させたり、塩化シアヌル、2,2′―ジク
ロルベンジジン、p,p′―ジフルオロ―m,m′―
ジニトロジフエニルスルホン、2,4―ジクロル
ニトロベンゼン等の化学結合剤により結合せしめ
る方法がある。
特に、化学結合剤としてはカルボン酸がよく、
例えば、ハロゲン化モノカルボン酸、アミノ基含
有モノカルボン酸等モノカルボン酸、コハク酸、
グルタル酸、アジピン酸等のカルボキシル基以外
の官能基を有さないジカルボン酸、リンゴ酸、ア
スパラギン酸、グルタミン酸等のカルボキシル基
以外の官能基を有するジカルボン、ニトリ口三酢
酸、トリカルバリリツク酸等トリカルボン酸、エ
チレンジアミン四酢酸その他のポリカルボン酸が
あげられる。
例えば、ヨード酢酸、クロル酢酸、ブロム酢酸
等のハロゲン化モノカルボン酸を使用する場合、
イヌリンの水酸基との間で脱ハロゲン化水素を行
わしめ、カルボキシル基を有するイヌリン誘導体
を製造し、これとヘモグロビンとを結合せしめる
とよい。
また、ポリカルボン酸を使用する場合、その酸
無水物を、イヌリンの水酸基と縮合せしめて同様
にカルボキシル基を有するイヌリン誘導体を製造
し、これとヘモグロビンとを結合せしめるとよ
い。ここで、ヒドロキシジカルボン酸及びアミノ
ジカルボン酸等のカルボキシル基以外の官能基を
有するポリカルボン酸を使用する場合は、あらか
じめその官能基を各官能基を保護するものとして
慣用されている保護試薬で保護して、例えば、水
酸基やアミノ基は、カルボベンジルオキシクロラ
イド等で保護して上記反応を行うのが望ましい。
もちろん、その保護基は、水添等の脱保護方法と
して慣用している方法により脱離せしめることが
できる。
次に、カルボキシル基が導入されたイヌリン誘
導体とヘモグロビンとをアミド結合を形成せしめ
る方法としてはN―ヒドロキシコハク酸イミド、
p―ニトロフエノール、ペンタクロロフエノー
ル、コハク酸イミド、N―ヒドロキシフタル酸イ
ミド、カルボジイミダゾール、イミダゾール等の
ペプチド合成におけるカルボキシル基活性化剤に
よる活性エステルとし、これとヘモグロビンを反
応させアミド結合を形成せしめることができる。
また、例えばカルボキシル基に塩化チオニル、オ
キシ塩化リン等酸ハロゲン化剤を作用せしめ、酸
ハロゲン化物とした後、ヘモグロビンと反応せし
めることができる。
本発明に使用するヘモグロビン―イヌリン結合
体は、ヘモグロビンにイヌリンが、ヘモグロビン
サブユニツト当り1〜15個程度結合したもの、イ
ヌリンにヘモグロビンが1〜10個程度結合したも
の、イヌリンとヘモグロビンが互いに架橋したも
の、あるいはこれらの混合物等いずれも使用でき
る。
本発明の人工血液用酸素運搬剤には、実質的に
ヘモグロビン―イヌリン結合体より成るもの、こ
れと他の酸素運搬能を有するものとの混合物、あ
るいはこれらに血漿増量剤、グルコース、塩類等
を混合したもの等ヘモグロビン―イヌリン結合体
を含有する人工血液用酸素運搬剤であればすべて
含まれる。
以下、実施例により本発明を詳細に説明する。
実施例 1
イヌリン10g(0.002モル)(東京化成(株))を水
100mlに溶解し、氷冷下、臭化シアン1g(0.01
モル)を10mlのジオキサンに溶解したものを滴下
した。このとき、2Nカセイソーダ水溶液により
そのPHを9〜10に保つた。約30分で滴下し、その
後20分間撹拌した。この反応液を氷冷アセトン
400ml中に加え、前記調製した活性化イヌリンを
沈澱させた。しばらく静置後、上清を除去し、残
存臭化シアンを氷冷アセトン300mlで洗浄した。
アセトンを完全に除去した後、氷冷下ヘモグロビ
ン5.2g(0.08ミリモル)を含む水溶液(50ml)
を加え、4時間撹拌後、アミコン(Amicon)社
製「XM―100」膜を用いて透析および濃縮を行
つた。生成物を東洋ソーダ(株)製水系ゲル「G―
3000SW」カラムを用いた高速液体クロマトグラ
フイーでチエツクし、必要によりフアルマシア社
製「セフアデツクスG―100」を用いたゲル濾過
により分子量分画を行い、二種の画分(以下、
「イヌリン―Hb1」および「イヌリン―Hb2」と
いう。)を得た。
実施例 2
イヌリン5g(0.001モル)を水100mlに溶解し
た溶液に、塩化シアヌル1g(0.005モル)を、
水10mlとアセトン20mlの混合溶媒に溶解した溶液
を滴下した。このとき、2Nカセイソーダ水溶液
によりそのPH値を10〜11に保つた。滴下終了後5
分間撹拌した後、2N塩酸によりそのPH値を3に
した。これにアセトン500mlを加えて生成する沈
澱を濾別し、さらにアセトンでよく洗浄した。ア
セトンをよく除去した後、0.2Mホウ酸緩衝液100
mlを加えた後、これに5.6%膜成分除去ヘモグロ
ビン溶液(ストローマフリーヘモグロビン)15ml
を加え、氷冷下3時間撹拌した。以後の処理は実
施例1と同様に行つた。ゲル濾過により分子量分
画を行い、二種の画分(以下、「イヌリン―Hb3」
および「イヌリン―Hb4」という。)を得た。
実施例 3
実施例2において、ヘモグロビンの代わりに
6.3%ピリドキサールリン酸化ヘモグロビン13.3
mlを用いて、実施例2と同じ反応を行い、イヌリ
ン―ヘモグロビン―ピリドキサールリン酸結合物
(「イヌリン―Hb5」という。)を得た。
実施例 4
イヌリン5.0g(0.001モル)と無水コハク酸3
g(0.03モル)をピリジン50ml中に溶解し、2時
間加熱還流した。冷却後、ヘキサン200mlを加え、
生じた沈澱をろ過した。この沈澱2.8gとN―ヒ
ドロキシコハク酸イミド2.4g(0.021モル)およ
びジシクロカルボジイミド4.2g(0.021モル)を
60mlのジメチルホルムアミド(DMF)に溶解し
1時間撹拌した。生成した沈澱をろ別した後、ろ
液にヘキサン300ml加えるとイヌリンサクシイミ
ジルサクシネートの結晶3.5gが得られた。この
結晶2.1g(0.0004モル)を、1%ヘモグロビン
溶液(0.2M、ホウ酸緩衝液、PH8.5)に撹拌しつ
つ加えた。4℃で16時間撹拌した後、アミコン社
「PM―30」膜により限外3過で未反応のイヌリ
ン及び塩類を除いた後、濃縮してイヌリン―ヘモ
グロビン結合物(「イヌリン―Hb6」という。)を
得た。
実施例 5
実施例4において、ヘモグロビンの代わりにピ
リドキサール酸結合ヘモグロビンを用いて、実施
例4と同様に反応を行い、イヌリン―ヘモグロビ
ン―ピリドキサールリン酸結合物(「イヌリン―
Hb7」という。)を得た。
実施例 6
イヌリン10g(0.002モル)と無水コハク酸6.2
g(0.062モル)を40mlのジメチルホルムアミド
と4mlのピリジンの混合溶媒に懸濁させて、110
℃で2時間撹拌を行つた。冷却後アセトンを加え
て生成する結晶をろ過し、イヌリンサクシネート
の結晶8gを得た。この結晶8g(0.0013モル)
とN―ヒドロキシコハク酸イミド1.76g(0.015
モル)を60mlのDMFに溶解し、これに3.16g
(0.015モル)のジシクロヘキシルカルボジイミド
を加え室温にて一夜撹拌した。沈澱物をろ過後、
ろ液にエチルエーテル120mlを加えるとイヌリン
サクシイミジルサクシネート5.2gを得た。これ
を13%ヘモグロビン溶液30ml(0.00006モル)と
0.1Mホウ酸緩衝液(PH8.5)200mlに溶解し、こ
れに上記イヌリンサクシイミジルサクシネート3
g(0.0006モル)を加え、4℃にて1時間撹拌し
た。反応液を蒸留水に対して透析した後、分子量
阻止3万の膜(Amicon社製「PM30」)による限
外ろ過により脱塩及び濃縮を行い、引き続き
Millipore社製「GS」膜により無菌ろ過を行い、
イヌリン―ヘモグロビン結合物(「イヌリン―
Hb8」という。)を得た。
実施例 7
イヌリン10g(0.002モル)および無水コハク
酸4g(0.04モル)を用い実施例6と同様にし
て、イヌリンサクシネート5.1gを得、さらにこ
れとN―ヒドロキシコハク酸イミド1g(0.0087
モル)からイヌリンサクシイミジルサクシネート
4.8gを得た。このイヌリンサクシイミジルサク
シネートを用いて実施例6と同様の反応によりイ
ヌリン―ヘモグロビン結合物(「イヌリン―Hb9」
という。)を得た。
実施例 8
実施例6と同様に無水コハク酸2g(0.02モ
ル)およびN―ヒドロキシコハク酸イミド0.73g
(0.0063モル)から、イヌリンサクシイミジルサ
クシネート4.4gを得た。さらにこれを用いて実
施例6と同様の反応によりイヌリン―ヘモグロビ
ン結合物(「イヌリン―Hb10」という。)を得た。
実施例 9
実施例6と同様に無水コハク酸1g(0.01モ
ル)およびN―ヒドロキシコハク酸イミド0.58g
(0.005モル)から、イヌリンサクシイミジサクシ
ネート4.1gを得た。さらに、これを用いて実施
例6においてヘモグロビンのかわりにピリドキサ
ールリン酸化ヘモグロビン(8%、49ml)を用い
て実施例6と同様の反応を行うことによりイヌリ
ン―ヘモグロビン結合物(「イヌリン―Hb11」と
いう。)を得た。
実施例 10
注射用蒸留水225mlに、リン酸2水素カリウム
1.7gと13.2%ヘモグロビン溶液26.6ml(0.000054
モル)を加えた後、これを2Nカセイソーダ水溶
液でPH6.8に調節した。これに、ピリドキサール
5′―リン酸51mg(0.0002モル)を加えて4℃で1
時間撹拌した後、これに水素化ホウ素ナトリウム
36mg(0.00097モル)を加えた。さらに、1時間
撹拌した後、これを2Nカセイソーダ水溶液でPH
8.5に調節しつつ、氷冷下実施例4に記載の方法
で調製したイヌリンサクシイミジルサクシネート
6g(0.0011モル)を添加した。これを4℃で一
夜撹拌した後、ミリポア(Millipore)社製「ペ
リコン(Pallicon)」濃縮装置で限外ろ過及び濃
縮を行い、イヌリン―ヘモグロビン結合物(「イ
ヌリン―Hb12」という。)の6.5%溶液を得た。
実施例 11
前記に得られたイヌリン―ヘモグロビン結合物
について、ヘモグロビンサブユニツト当りのイヌ
リンの結合数を求め、サブユニツト当たりの分子
量を求めた。また、同試料について血管内滞留時
間および50%酸素解離圧を求めた。
〔分子量測定法〕
シアンメトヘモグロビン法(D.Drabkin,Am.
J.Med.Sci.,vol217,710―711(1949))により濃
度を決定したイヌリン―ヘモグロビン結合体溶液
(濃度Co)の一定量(Vo)をとり、凍結乾燥後、
重量を測定した。使用したイヌリンの平均分子量
をMI、ヘモグロビンの分子量をMHとすると、イ
ヌリンの結合数nは次式により求められる。
n=(mo―CoVo)/MI/CoVo/MH
但し、分子量はサブユニツト当たりの平均値で
ある。これより、イヌリン―ヘモグロビン結合物
の分子量Mを次式により求めた。
M=MH+nMI
〔血管内滞留時間〕
一試料につきラツト2匹を用い、ラツトの体重
に対し5ml/Kgの4〜6%試料を静注後、5分、
30分、60分、90分および120分経過時に0.5mlずつ
採血し、遠心上清中の試料の濃度をシアンメトヘ
モグロビン法で定量した。そのグラフから注入し
た試料の血漿中での半減期を計算した。
〔50%酸素解離圧〕
同試料溶液について今井らの方法(K.Imai,
H.Morimoto,M.Kotani,H.Watari,H.
Waka,and M.Kuroda,Biochim.Biophys.
Acta,200,189―196(1970))により、酸素平衡
曲線を描き、それより50%酸素解離圧(P50)を
求めた。
結果を表1に示した。
The present invention relates to a novel oxygen transport agent for artificial blood. The present inventor has discovered that a hemoglobin-inulin conjugate has the following properties and is excellent as an oxygen carrier for artificial blood, and has completed the present invention. Long residence time in blood vessels. It has the same oxygen carrying capacity as hemoglobin. Not bioaccumulative in humans. It is harmless. The hemoglobin used in the production of the hemoglobin-inulin conjugate used in the present invention is human, bovine, porcine, ovine, equine, canine, monkey, rabbit,
Any animal that has hemoglobin, such as chicken, may be used. In this specification, when referring to hemoglobin, it refers to hemoglobin derivatives, such as
Hemoglobin and pyridoxal phosphate, pyridoxal sulfate, 2,3-diphosphorylated glyceric acid,
It includes covalent bonds with inositol phosphate, sugar phosphate esters, phosphoenolpyruvate, covalent bonds with monosaccharides or polysaccharides such as glucose, and covalent bonds with amino sugars. Among these, derivatives modified with pyridoxal derivatives such as pyridoxal phosphate and pyridoxal sulfate are preferred in that they provide target conjugates with particularly excellent oxygen transport ability. On the other hand, inulin is not particularly limited, but has a molecular weight of
The number is preferably 3,000 to 6,000, and it may also have branches. Any method may be used to bond hemoglobin and inulin, but it is preferable to use a chemical bonding agent to form a covalent bond. For example, using a chemical binder such as cyanogen bromide,
By bonding between the amino group of hemoglobin and the hydroxyl group of inulin, cyanuric chloride, 2,2'-dichlorobenzidine, p,p'-difluoro-m,m'-
There is a method of bonding using a chemical binder such as dinitrodiphenyl sulfone or 2,4-dichloronitrobenzene. In particular, carboxylic acids are good as chemical binders;
For example, halogenated monocarboxylic acids, monocarboxylic acids such as amino group-containing monocarboxylic acids, succinic acid,
Dicarboxylic acids that do not have functional groups other than carboxyl groups such as glutaric acid and adipic acid; dicarboxylic acids that have functional groups other than carboxyl groups such as malic acid, aspartic acid, and glutamic acid; tricarboxylic acids such as nitriacetic acid and tricarbalyllic acid; acid, ethylenediaminetetraacetic acid and other polycarboxylic acids. For example, when using halogenated monocarboxylic acids such as iodoacetic acid, chloroacetic acid, bromoacetic acid, etc.
It is preferable to carry out dehydrohalogenation with the hydroxyl group of inulin to produce an inulin derivative having a carboxyl group, and then bind this to hemoglobin. Furthermore, when using a polycarboxylic acid, it is preferable to condense the acid anhydride with the hydroxyl group of inulin to similarly produce an inulin derivative having a carboxyl group, and bind this to hemoglobin. When using polycarboxylic acids having functional groups other than carboxyl groups, such as hydroxydicarboxylic acid and aminodicarboxylic acid, protect the functional groups in advance with a protective reagent that is commonly used to protect each functional group. For example, it is desirable to protect a hydroxyl group or an amino group with carbobenzyloxychloride or the like before carrying out the above reaction.
Of course, the protecting group can be removed by a commonly used deprotection method such as hydrogenation. Next, as a method for forming an amide bond between an inulin derivative into which a carboxyl group has been introduced and hemoglobin, N-hydroxysuccinimide,
Active esters using carboxyl group activators in peptide synthesis such as p-nitrophenol, pentachlorophenol, succinimide, N-hydroxyphthalimide, carbodiimidazole, imidazole, etc., and reacting with hemoglobin to form amide bonds. You can force it.
Alternatively, for example, the carboxyl group can be reacted with an acid halogenating agent such as thionyl chloride or phosphorus oxychloride to form an acid halide, which can then be reacted with hemoglobin. The hemoglobin-inulin conjugates used in the present invention are those in which about 1 to 15 inulins are bound to hemoglobin per hemoglobin subunit, those in which about 1 to 10 hemoglobins are bound to inulin, and those in which inulin and hemoglobin are cross-linked with each other. or a mixture thereof can be used. The oxygen transport agent for artificial blood of the present invention includes one consisting essentially of a hemoglobin-inulin conjugate, a mixture of this and other substances having oxygen transport ability, or a plasma expander, glucose, salts, etc. All oxygen carriers for artificial blood containing a hemoglobin-inulin conjugate, such as a mixture, are included. Hereinafter, the present invention will be explained in detail with reference to Examples. Example 1 10g (0.002 mol) of inulin (Tokyo Kasei Co., Ltd.) was added to water.
Dissolve in 100ml, cool on ice, add 1g of cyanogen bromide (0.01
mol) dissolved in 10 ml of dioxane was added dropwise. At this time, the pH was maintained at 9 to 10 with a 2N caustic soda aqueous solution. It was added dropwise over about 30 minutes, and then stirred for 20 minutes. Add this reaction solution to ice-cold acetone.
The activated inulin prepared above was precipitated. After standing still for a while, the supernatant was removed, and residual cyanogen bromide was washed away with 300 ml of ice-cold acetone.
After completely removing acetone, add an aqueous solution (50 ml) containing 5.2 g (0.08 mmol) of hemoglobin under ice cooling.
After stirring for 4 hours, dialysis and concentration were performed using an "XM-100" membrane manufactured by Amicon. The product was converted into water-based gel “G-” manufactured by Toyo Soda Co., Ltd.
3000SW" column, and if necessary, molecular weight fractionation was performed by gel filtration using Pharmacia's "Sephadex G-100", and two types of fractions (hereinafter referred to as
They are called "inulin-Hb1" and "inulin-Hb2." ) was obtained. Example 2 To a solution of 5 g (0.001 mol) of inulin dissolved in 100 ml of water, 1 g (0.005 mol) of cyanuric chloride was added.
A solution dissolved in a mixed solvent of 10 ml of water and 20 ml of acetone was added dropwise. At this time, the pH value was maintained at 10 to 11 with a 2N caustic soda aqueous solution. 5 after completion of dripping
After stirring for a minute, the pH value was brought to 3 with 2N hydrochloric acid. 500 ml of acetone was added to this, and the resulting precipitate was filtered off and further washed thoroughly with acetone. After removing the acetone well, add 0.2M borate buffer 100
ml, then add 15 ml of 5.6% membrane component-free hemoglobin solution (stroma-free hemoglobin).
was added and stirred for 3 hours under ice cooling. The subsequent treatments were performed in the same manner as in Example 1. Molecular weight fractionation was performed by gel filtration, and two types of fractions (hereinafter referred to as "inulin-Hb3") were
and “inulin-Hb4”. ) was obtained. Example 3 In Example 2, instead of hemoglobin
6.3% pyridoxal phosphorylated hemoglobin 13.3
ml was used to carry out the same reaction as in Example 2 to obtain an inulin-hemoglobin-pyridoxal phosphate conjugate (referred to as "inulin-Hb5"). Example 4 Inulin 5.0g (0.001 mol) and succinic anhydride 3
g (0.03 mol) was dissolved in 50 ml of pyridine and heated under reflux for 2 hours. After cooling, add 200ml of hexane,
The resulting precipitate was filtered. 2.8 g of this precipitate, 2.4 g (0.021 mol) of N-hydroxysuccinimide and 4.2 g (0.021 mol) of dicyclocarbodiimide were added.
It was dissolved in 60 ml of dimethylformamide (DMF) and stirred for 1 hour. After filtering off the formed precipitate, 300 ml of hexane was added to the filtrate to obtain 3.5 g of inulin succimidyl succinate crystals. 2.1 g (0.0004 mol) of these crystals were added to a 1% hemoglobin solution (0.2 M, borate buffer, PH 8.5) with stirring. After stirring at 4° C. for 16 hours, unreacted inulin and salts were removed by ultraviolet 3 filtration using Amicon's "PM-30" membrane, and concentrated to obtain an inulin-hemoglobin conjugate (referred to as "inulin-Hb6"). ) was obtained. Example 5 In Example 4, a reaction was carried out in the same manner as in Example 4 using pyridoxalic acid-bound hemoglobin instead of hemoglobin, and an inulin-hemoglobin-pyridoxal phosphate conjugate ("inulin-
Hb7”. ) was obtained. Example 6 Inulin 10g (0.002 mol) and succinic anhydride 6.2
g (0.062 mol) in a mixed solvent of 40 ml of dimethylformamide and 4 ml of pyridine to give 110
Stirring was carried out at ℃ for 2 hours. After cooling, acetone was added and the resulting crystals were filtered to obtain 8 g of inulin succinate crystals. 8g (0.0013mol) of this crystal
and N-hydroxysuccinimide 1.76g (0.015
Dissolve mol) in 60ml of DMF and add 3.16g to it.
(0.015 mol) of dicyclohexylcarbodiimide was added and stirred overnight at room temperature. After filtering the precipitate,
When 120 ml of ethyl ether was added to the filtrate, 5.2 g of inulin succimidyl succinate was obtained. Add this to 30ml (0.00006 mol) of 13% hemoglobin solution.
Dissolve in 200ml of 0.1M borate buffer (PH8.5) and add the above inulin succimidyl succinate 3 to this.
g (0.0006 mol) and stirred at 4°C for 1 hour. After the reaction solution was dialyzed against distilled water, it was desalted and concentrated by ultrafiltration using a membrane with a molecular weight of 30,000 (PM30, manufactured by Amicon), and then
Sterile filtration is performed using Millipore's "GS" membrane.
Inulin-hemoglobin conjugate (inulin-hemoglobin conjugate)
Hb8”. ) was obtained. Example 7 5.1 g of inulin succinate was obtained in the same manner as in Example 6 using 10 g (0.002 mol) of inulin and 4 g (0.04 mol) of succinic anhydride.
Mol) from inulin succimidyl succinate
4.8g was obtained. Using this inulin succimidyl succinate, an inulin-hemoglobin conjugate ("inulin-Hb9") was prepared by the same reaction as in Example 6.
That's what it means. ) was obtained. Example 8 2 g (0.02 mol) of succinic anhydride and 0.73 g of N-hydroxysuccinimide as in Example 6
(0.0063 mol), 4.4 g of inulin succimidyl succinate was obtained. Further, using this product, an inulin-hemoglobin conjugate (referred to as "inulin-Hb10") was obtained by the same reaction as in Example 6. Example 9 Same as Example 6, 1 g (0.01 mol) of succinic anhydride and 0.58 g of N-hydroxysuccinimide.
(0.005 mol), 4.1 g of inulin succinimidisuccinate was obtained. Furthermore, using this, in Example 6, a reaction similar to that of Example 6 was carried out using pyridoxal phosphorylated hemoglobin (8%, 49 ml) instead of hemoglobin, thereby producing an inulin-hemoglobin conjugate (referred to as "inulin-Hb11"). ) was obtained. Example 10 Add potassium dihydrogen phosphate to 225 ml of distilled water for injection.
1.7g and 26.6ml of 13.2% hemoglobin solution (0.000054
After adding mol), the pH was adjusted to 6.8 with a 2N aqueous solution of caustic soda. In this, pyridoxal
Add 51 mg (0.0002 mol) of 5'-phosphoric acid and stir at 4°C.
After stirring for an hour, add sodium borohydride to this
36 mg (0.00097 mol) was added. After further stirring for 1 hour, PH was added with 2N caustic soda aqueous solution.
8.5, 6 g (0.0011 mol) of inulin succimidyl succinate prepared by the method described in Example 4 was added under ice cooling. After stirring this at 4°C overnight, it was ultrafiltered and concentrated using a "Pallicon" concentrator manufactured by Millipore, resulting in 6.5% of the inulin-hemoglobin complex (referred to as "inulin-Hb12"). A solution was obtained. Example 11 Regarding the inulin-hemoglobin conjugate obtained above, the number of inulin bound per hemoglobin subunit was determined, and the molecular weight per subunit was determined. In addition, the intravascular residence time and 50% oxygen dissociation pressure were determined for the same sample. [Molecular weight measurement method] Cyanmethemoglobin method (D. Drabkin, Am.
Take a certain amount (Vo) of the inulin-hemoglobin conjugate solution (concentration Co) whose concentration was determined according to J.Med.Sci., vol217, 710-711 (1949)), freeze-dry it,
The weight was measured. When the average molecular weight of the inulin used is M I and the molecular weight of hemoglobin is M H , the number n of inulin bonds can be determined by the following formula. n=(mo-CoVo)/M I /CoVo/M H However, the molecular weight is the average value per subunit. From this, the molecular weight M of the inulin-hemoglobin conjugate was determined using the following formula. M=M H +nM I [Intravascular residence time] Two rats were used for each sample, and after intravenously injecting 5 ml/Kg of the 4-6% sample based on the rat's body weight, 5 min.
0.5 ml of blood was collected after 30, 60, 90, and 120 minutes, and the concentration of the sample in the centrifuged supernatant was determined by the cyanmethemoglobin method. From the graph, the half-life of the injected sample in plasma was calculated. [50% oxygen dissociation pressure] For the same sample solution, the method of Imai et al.
H.Morimoto, M.Kotani, H.Watari, H.
Waka, and M. Kuroda, Biochim. Biophys.
Acta, 200 , 189-196 (1970)), an oxygen equilibrium curve was drawn and the 50% oxygen dissociation pressure (P 50 ) was determined from it. The results are shown in Table 1.
【表】
実施例 12
イヌリン―Hb12を腎臓還流液(NaCl570mg/
dl、NaHCO348.8mg/dl、KCl4.9mg/dl、
CaCl24.6mg/dl、MgCl2・6H2O2.4mg/dl、グル
コース1.8g/dl)の5.7%溶液とした後、ラツト
に交換輸血実験を行つた。交換は、SD系ラツト
の尾静脈にポリエチレンチユーブ(外径1 1/3
mm)でカニユレを挿入して行つた。そこから1分
かけて血液1mlを脱血した後、同カニユレから1
分かけて1mlの試料液を注入し、更にその後1分
間休むという操作を20〜30回繰返して交換を行
い、85%の交換まで行つた。
同交換率では対照として用いたデキストラン70
溶液では5分以内に死亡するのに対し本試料溶液
では2時間以上生存していた。
以上の結果より、ヘモグロビン―イヌリン結合
体は、血中からの消失速度(半減期)はヘモグロ
ビンの2倍に延長し、かつ酸素親和性の点でもヘ
モグロビンと同程度の値を維持しており、人工血
液用の酸素運搬剤として好適であることが理解さ
れる。[Table] Example 12 Inulin-Hb12 was added to renal reflux fluid (NaCl570mg/
dl, NaHCO 3 48.8mg/dl, KCl4.9mg/dl,
After preparing a 5.7% solution containing 4.6 mg/dl of CaCl 2 , 2.4 mg/dl of MgCl 2 .6H 2 O, and 1.8 g/dl of glucose, an exchange transfusion experiment was conducted in rats. For replacement, insert a polyethylene tube (outer diameter 1 1/3
mm) and inserted a cannula. After removing 1 ml of blood over 1 minute, 1 ml of blood was removed from the same crab urea.
The procedure of injecting 1 ml of the sample solution over several minutes and then resting for 1 minute was repeated 20 to 30 times to achieve 85% exchange. Dextran 70 was used as a control at the same exchange rate.
In the solution, the animals died within 5 minutes, but in this sample solution, they survived for more than 2 hours. From the above results, the hemoglobin-inulin conjugate has a disappearance rate (half-life) from the blood that is twice as long as that of hemoglobin, and maintains a value similar to that of hemoglobin in terms of oxygen affinity. It is understood that it is suitable as an oxygen carrier for artificial blood.
Claims (1)
ヌリン結合体を含有する人工血液用酸素運搬剤。 2 酸素運搬活性成分が実質的にヘモグロビン―
イヌリン結合体より成る特許請求の範囲第1項記
載の酸素運搬剤。 3 ヘモグロビンが、ピリドキサール誘導体で修
飾されている特許請求の範囲第1項記載の酸素運
搬剤。 4 カルボン酸が、モノハロゲン化カルボン酸お
よびジカルボン酸からなる群より選ばれたカルボ
ン酸である特許請求の範囲第1項記載の酸素運搬
剤。[Scope of Claims] 1. An oxygen transport agent for artificial blood containing a hemoglobin-inulin conjugate using a carboxylic acid as a binding agent. 2 The oxygen-carrying active ingredient is substantially hemoglobin.
The oxygen transport agent according to claim 1, which comprises an inulin conjugate. 3. The oxygen transport agent according to claim 1, wherein the hemoglobin is modified with a pyridoxal derivative. 4. The oxygen transport agent according to claim 1, wherein the carboxylic acid is a carboxylic acid selected from the group consisting of monohalogenated carboxylic acids and dicarboxylic acids.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56195301A JPS5899420A (en) | 1981-12-04 | 1981-12-04 | Oxygen transporting agent for artificial blood |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56195301A JPS5899420A (en) | 1981-12-04 | 1981-12-04 | Oxygen transporting agent for artificial blood |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5899420A JPS5899420A (en) | 1983-06-13 |
| JPH029564B2 true JPH029564B2 (en) | 1990-03-02 |
Family
ID=16338871
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP56195301A Granted JPS5899420A (en) | 1981-12-04 | 1981-12-04 | Oxygen transporting agent for artificial blood |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5899420A (en) |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CA1055932A (en) * | 1975-10-22 | 1979-06-05 | Hematech Inc. | Blood substitute based on hemoglobin |
| JPS52154515A (en) * | 1976-04-23 | 1977-12-22 | Biotest Serum Institut Gmbh | Hemoglobin preparation strengthening oxygen release property |
-
1981
- 1981-12-04 JP JP56195301A patent/JPS5899420A/en active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS5899420A (en) | 1983-06-13 |
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