JPH03190895A - 修飾ヌクレオチド化合物 - Google Patents
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の概要コ
相補的RNAとハイブリクイズし得るヌクレアーゼ耐性
ヌクレオチド化合物を開示する。
ヌクレオチド化合物を開示する。
その様式はこれがその機能を阻害するものであり、この
修飾ヌクレオチド化合物は、1 2 MN3M、B (N) XM、並びに M(N) Bよりなる群から選択される少なくとも1
つの成分を含む(式中、Nは、ホスホジエステル結合修
飾または未修飾2−−デオキシヌクレオシド部分であり
、Mは、前記成分にエンドヌクレアーゼ耐性を与え、少
なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を含有する部
分であり、Bは、付着する末端にエキソヌクレアーゼ耐
性を与える部分であり、Xは、少なくとも2の整数であ
る)。
修飾ヌクレオチド化合物は、1 2 MN3M、B (N) XM、並びに M(N) Bよりなる群から選択される少なくとも1
つの成分を含む(式中、Nは、ホスホジエステル結合修
飾または未修飾2−−デオキシヌクレオシド部分であり
、Mは、前記成分にエンドヌクレアーゼ耐性を与え、少
なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を含有する部
分であり、Bは、付着する末端にエキソヌクレアーゼ耐
性を与える部分であり、Xは、少なくとも2の整数であ
る)。
[産業上の利用分野]
本発明は、オリゴおよびポリヌクレオチドの分野に関し
、更に詳しくは、治療およびイメージング方法に適切な
修飾オリゴおよびポリヌクレオチドに関し、この種のオ
リゴおよびポリヌクレオチドの細胞または細胞表面への
配送を必要とするものを含む。
、更に詳しくは、治療およびイメージング方法に適切な
修飾オリゴおよびポリヌクレオチドに関し、この種のオ
リゴおよびポリヌクレオチドの細胞または細胞表面への
配送を必要とするものを含む。
[従来の技術と課題]
ヒト、動物、植物、微生物並びにウィルス染色体により
コードされるメツセンジャーRNAに相補的なオリゴヌ
クレオチドおよびオリゴヌクレオチドアナログは、例え
は翻訳のハイブリッドアレストにより、遺伝子発現を阻
害または制御するのに有効であることが示されている。
コードされるメツセンジャーRNAに相補的なオリゴヌ
クレオチドおよびオリゴヌクレオチドアナログは、例え
は翻訳のハイブリッドアレストにより、遺伝子発現を阻
害または制御するのに有効であることが示されている。
これは幾つかの研究者グループの試みを刺激し、種々の
種類の治療的「アンチセンス」オリゴおよびポリヌクレ
オチドが開発された。最近の総説として、ファン・デル
・クロールら、「相補的RNAまたはDNA配列による
真核遺伝子発現の調整」、B+otechniques
、 6: 958−976 (1988)を参照するこ
とができる。
種類の治療的「アンチセンス」オリゴおよびポリヌクレ
オチドが開発された。最近の総説として、ファン・デル
・クロールら、「相補的RNAまたはDNA配列による
真核遺伝子発現の調整」、B+otechniques
、 6: 958−976 (1988)を参照するこ
とができる。
ホスホジエステルオリゴデオキシヌクレオチドか翻訳の
ハイブリッドアレス1〜を促進することが認められた1
つの機構は、RNA、:オリゴデオキシヌクレオチドデ
ュープレックスのRNNアーゼ間裂を介するものである
。
ハイブリッドアレス1〜を促進することが認められた1
つの機構は、RNA、:オリゴデオキシヌクレオチドデ
ュープレックスのRNNアーゼ間裂を介するものである
。
ミンシュルとフン1へ、[網赤血球溶解物無細胞翻訳に
おけるm RN A / D N Aハイブリッドの定
量的ハイブリッドアレストを促進する3 4 なめの−本gDNAおよびRNNアーゼの使用」、Nu
cleic Ac1d Re5earch、 14:
6433−6451 f1986) 、カゼナベら、「
内位添加剤に共有結合したアンチメツセンジャーオリゴ
デオキシヌクレオチドにより媒介されたウサギβ−グロ
ビンmRNAの翻訳阻害の酵素的増幅J 、 Nucl
eic Ac1d Re5earch、 15: 47
17−4736 (1987) 、並びにタラシュら、
[生体内におけるmRNAの選択的除去:相補的オリゴ
ヌクレオチドは、RNアーゼ11様活性によりRNAJ
A−解を促進するJ 、 Proc、 NatAcad
、 Sci、 USA 84: 7896−7900
(1987)を参照することができる。
おけるm RN A / D N Aハイブリッドの定
量的ハイブリッドアレストを促進する3 4 なめの−本gDNAおよびRNNアーゼの使用」、Nu
cleic Ac1d Re5earch、 14:
6433−6451 f1986) 、カゼナベら、「
内位添加剤に共有結合したアンチメツセンジャーオリゴ
デオキシヌクレオチドにより媒介されたウサギβ−グロ
ビンmRNAの翻訳阻害の酵素的増幅J 、 Nucl
eic Ac1d Re5earch、 15: 47
17−4736 (1987) 、並びにタラシュら、
[生体内におけるmRNAの選択的除去:相補的オリゴ
ヌクレオチドは、RNアーゼ11様活性によりRNAJ
A−解を促進するJ 、 Proc、 NatAcad
、 Sci、 USA 84: 7896−7900
(1987)を参照することができる。
この観点では、RNNアーゼに対する感受性は、有効な
治療的アンチセンスオリゴヌクレオチドを開発するに際
して考慮すべき特性の1つである。ホスホジエステル結
合を有する未修飾オリゴヌクレオチドはRNAと複合し
てRNNアーゼ基質を形成することかできるが、ヌクレ
アーゼ耐性ではない。翻訳阻害の高度の効率を達成する
1つの方法は、オリゴヌクレオチドを化学的に改変し、
細胞内へのその侵入を促進すると共にその半減期の増加
を図るものであるが、同時に挿入物の特異的なRNAに
対する親和性を維持するものとする。よって、この企て
の他の観点には、修飾を有するアンチセンスオリゴヌク
レオチドまたはポリヌクレオチドの開発か含まれ、結果
として、その有効性を低減させるかこれらを不活性とす
るヌクレフアーゼに対するこれらの薬剤の感受性の低減
が企図される。
治療的アンチセンスオリゴヌクレオチドを開発するに際
して考慮すべき特性の1つである。ホスホジエステル結
合を有する未修飾オリゴヌクレオチドはRNAと複合し
てRNNアーゼ基質を形成することかできるが、ヌクレ
アーゼ耐性ではない。翻訳阻害の高度の効率を達成する
1つの方法は、オリゴヌクレオチドを化学的に改変し、
細胞内へのその侵入を促進すると共にその半減期の増加
を図るものであるが、同時に挿入物の特異的なRNAに
対する親和性を維持するものとする。よって、この企て
の他の観点には、修飾を有するアンチセンスオリゴヌク
レオチドまたはポリヌクレオチドの開発か含まれ、結果
として、その有効性を低減させるかこれらを不活性とす
るヌクレフアーゼに対するこれらの薬剤の感受性の低減
が企図される。
イノウニら、[修飾されたオリゴヌクレオチドスプリン
トおよびRNNアーゼを使用するRNAの配列依存性加
水分解J 、NucleicAcids 5ynpos
iulISeries、 18: 221−224(1
987)には、修飾オリゴヌクレオチドおよびRNNア
ーゼを使用し、部位特異的様式で試験管内でRNAを開
裂する方法が記載されている。
トおよびRNNアーゼを使用するRNAの配列依存性加
水分解J 、NucleicAcids 5ynpos
iulISeries、 18: 221−224(1
987)には、修飾オリゴヌクレオチドおよびRNNア
ーゼを使用し、部位特異的様式で試験管内でRNAを開
裂する方法が記載されている。
一部または完全に置換されたホスホロチ第5
6
エートについても、アンチセンス機能か試験されている
。マルクスーセクラら、[アルキルホスホトリエステル
メチルホスホネートおよびホスホロチオエート結合を有
するアンチセンスオリゴヌクレオチドアナログによるタ
ロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ遺伝子
発現の比較阻害J 、NucleicAcids Re
5earch、 15: 5749−5763 (19
87)、並びにアグラワルら「ヒト免疫疾患ウィルスの
阻害剤としてのオリゴデオキシヌクレオチドホスホルア
ミデー1〜およびホスホロチオエート J 、 Pr
oc、 Nat、 八cad、 sc+、 US
A、 857079−7083 (1988)を参照
することができる。
。マルクスーセクラら、[アルキルホスホトリエステル
メチルホスホネートおよびホスホロチオエート結合を有
するアンチセンスオリゴヌクレオチドアナログによるタ
ロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ遺伝子
発現の比較阻害J 、NucleicAcids Re
5earch、 15: 5749−5763 (19
87)、並びにアグラワルら「ヒト免疫疾患ウィルスの
阻害剤としてのオリゴデオキシヌクレオチドホスホルア
ミデー1〜およびホスホロチオエート J 、 Pr
oc、 Nat、 八cad、 sc+、 US
A、 857079−7083 (1988)を参照
することができる。
これらは、種々のヌクレアーゼに対して種々の程度の耐
性を示す。スティンら、「ホスホロチオエートオリゴヌ
クレオチドの生理化学的特性J 、Nucleic A
c1ds Re5earch、 163209−322
1 (1988)に報告されたように、十分に置換され
たホスホロチオエートオリゴデオキシヌクレオチドは、
R,NアーゼH感受性ハイブリッドを形成する。
性を示す。スティンら、「ホスホロチオエートオリゴヌ
クレオチドの生理化学的特性J 、Nucleic A
c1ds Re5earch、 163209−322
1 (1988)に報告されたように、十分に置換され
たホスホロチオエートオリゴデオキシヌクレオチドは、
R,NアーゼH感受性ハイブリッドを形成する。
これに対し、十分に置換されたヌクレアーゼ耐性糖リン
酸骨格を含有する多くのオリゴヌクレオチド、5は、標
的DNAとRNNアーゼ感受性ハイブリッドを形成する
ことはできない。例えば、サンら、[オリゴ−α−チミ
ジレートフエナンスロリン共役物による核酸の配列標的
開裂:平行および逆平行二本鎖へリックスは、それぞれ
DNAおよびRNAにより形成されるJ 、Bioch
emistry、 27: 6039−6045 (1
988)を参照することができる。α−ホスホジエステ
ルは相補的RNAと逆平行へリックスを形成するが、D
NAとは形成しない。しかしながら、α−結合はヌクレ
アーゼ耐性であるにも拘らず、αDNA−RNAハイブ
リッドはRNアーゼ)]の基質ではない。
酸骨格を含有する多くのオリゴヌクレオチド、5は、標
的DNAとRNNアーゼ感受性ハイブリッドを形成する
ことはできない。例えば、サンら、[オリゴ−α−チミ
ジレートフエナンスロリン共役物による核酸の配列標的
開裂:平行および逆平行二本鎖へリックスは、それぞれ
DNAおよびRNAにより形成されるJ 、Bioch
emistry、 27: 6039−6045 (1
988)を参照することができる。α−ホスホジエステ
ルは相補的RNAと逆平行へリックスを形成するが、D
NAとは形成しない。しかしながら、α−結合はヌクレ
アーゼ耐性であるにも拘らず、αDNA−RNAハイブ
リッドはRNアーゼ)]の基質ではない。
アミノホスホネートまたは1−ジエステルは、水素−ホ
スホネート合成の酸化工程を改変することにより形成す
ることができる。これらの無荷電結合は、RNNアーゼ
感受性パイプ7 リッドを形成する能力を妨害すべきものである。
スホネート合成の酸化工程を改変することにより形成す
ることができる。これらの無荷電結合は、RNNアーゼ
感受性パイプ7 リッドを形成する能力を妨害すべきものである。
メチルホスホネート結合を含有するオリゴデオキシヌク
レオチドアナログは、試験管内でアンチセンス効果を有
することが示された。
レオチドアナログは、試験管内でアンチセンス効果を有
することが示された。
ミラーら、[オリゴヌクレオシドメチルホスボネートに
よるリボ核酸機能の調節J、Biochimie、 6
7: 769−776 (1985)並びにマーバーと
ドルニック、「無細胞系におけるタンデムアンチセンス
オリゴデオキシリボヌクレオチドまたはオリゴチオキシ
リボヌクレオシドメチルホスホネートによる比較ハイブ
リッド安定性l−J 、Nucleic Ac1d R
e5earch、 16:3341−3358 (19
88)を参照することができる。
よるリボ核酸機能の調節J、Biochimie、 6
7: 769−776 (1985)並びにマーバーと
ドルニック、「無細胞系におけるタンデムアンチセンス
オリゴデオキシリボヌクレオチドまたはオリゴチオキシ
リボヌクレオシドメチルホスホネートによる比較ハイブ
リッド安定性l−J 、Nucleic Ac1d R
e5earch、 16:3341−3358 (19
88)を参照することができる。
生体内でアンチセンス効果が示されている。
ザリンら、「オリゴデオシヌクレオチドメチルホスホネ
−1〜による後天性免疫疾患症候群ウィルスの阻害J
、Proc、 Nat、八cad、 5c11sA、
85: 7448−7451 (1988) 、スミス
ら、「ヘルペスシンプレックスウィルスタイプ1直後初
期プレmRNA4および5のスプライス連結部に相補的
なオリゴデオキシヌクレオチドメチルホスボネートの抗
ウイルス効果」、Proc、 Nat、 八cad
、 Sci、 USA 83: 2789−
2791(1986) 、並びにアクリスら、「配列特
異的オリゴチオ六シヌクレオシドメチルポスポネー1−
による小胞口内炎ウィルス蛋白質合成および感染の阻害
J 、Biochellistry、 25: 187
4−1880 (1981)を参照することができる。
−1〜による後天性免疫疾患症候群ウィルスの阻害J
、Proc、 Nat、八cad、 5c11sA、
85: 7448−7451 (1988) 、スミス
ら、「ヘルペスシンプレックスウィルスタイプ1直後初
期プレmRNA4および5のスプライス連結部に相補的
なオリゴデオキシヌクレオチドメチルホスボネートの抗
ウイルス効果」、Proc、 Nat、 八cad
、 Sci、 USA 83: 2789−
2791(1986) 、並びにアクリスら、「配列特
異的オリゴチオ六シヌクレオシドメチルポスポネー1−
による小胞口内炎ウィルス蛋白質合成および感染の阻害
J 、Biochellistry、 25: 187
4−1880 (1981)を参照することができる。
メチルホスホンアミタイトヌクレオシドは、ホスホルア
ミツ41〜合成に際して組み込まれることができ、マル
クスーセクラ、前記文献に報告されたように部分的に置
換された構造を与える6多数のメチルホスホネート結合
の還元により、より大きいハイブリッド安定性が与えら
れるが、これはクアルチンとウニ)ヘムル、「メチルホ
スホネート結合による低減した荷電を有するオリゴデオ
キシヌクレオチドと相補的配列を含有する未修飾オリゴ
チオキシヌクレオチドとのハイブリダイゼーションに対
1つ 0 するイオン強度の効果J 、Biochemistry
。
ミツ41〜合成に際して組み込まれることができ、マル
クスーセクラ、前記文献に報告されたように部分的に置
換された構造を与える6多数のメチルホスホネート結合
の還元により、より大きいハイブリッド安定性が与えら
れるが、これはクアルチンとウニ)ヘムル、「メチルホ
スホネート結合による低減した荷電を有するオリゴデオ
キシヌクレオチドと相補的配列を含有する未修飾オリゴ
チオキシヌクレオチドとのハイブリダイゼーションに対
1つ 0 するイオン強度の効果J 、Biochemistry
。
28、:1040−1047 f1989)に報告され
ている。
ている。
無細胞翻訳系では、RNアーゼHの作用は、十分にメチ
ルホスポネー)−W換されたオリゴデオキシヌクレオチ
ドに見られるアンチセンス効果に関与せず、この種の化
合物は相補的RNAとRNアーゼH感受性ハイブリッド
を形成しないことが決定された。マーバーとドルニック
、前記文献を参照することができる。
ルホスポネー)−W換されたオリゴデオキシヌクレオチ
ドに見られるアンチセンス効果に関与せず、この種の化
合物は相補的RNAとRNアーゼH感受性ハイブリッド
を形成しないことが決定された。マーバーとドルニック
、前記文献を参照することができる。
修飾端部を有するオリゴデオキシヌクレオチドは、エキ
ソヌクレアーゼに対する相対的な耐性を有することが示
された。例えば、アグラワルとグツドチャイルド、「オ
リゴデオキシヌクレオチドメチルホスホネート二合成お
よび酵素的分解J 、Tetrahedron 1et
ters。
ソヌクレアーゼに対する相対的な耐性を有することが示
された。例えば、アグラワルとグツドチャイルド、「オ
リゴデオキシヌクレオチドメチルホスホネート二合成お
よび酵素的分解J 、Tetrahedron 1et
ters。
28: 3539−3542 (1987)を参照する
ことができる。
ことができる。
前記したような進歩がなされ報告されているにも拘らず
、これらの努力は、本発明の結果として今回可能となっ
たような、安定で治療的に有効なオリゴおよびポリヌク
レオチドの合理的な設計を可能とすることに十分には成
功していない。特に、アンチセンス機能を至適化する因
子としてのRNアーゼH感受性基質を形成する混合オリ
ゴデオキシヌクレオチドの能力を試験した者はいない。
、これらの努力は、本発明の結果として今回可能となっ
たような、安定で治療的に有効なオリゴおよびポリヌク
レオチドの合理的な設計を可能とすることに十分には成
功していない。特に、アンチセンス機能を至適化する因
子としてのRNアーゼH感受性基質を形成する混合オリ
ゴデオキシヌクレオチドの能力を試験した者はいない。
更に、従来、ヌクレアーゼ耐性を有するRNアーゼH感
受性基質を形成する能力を相関さぜな者はいない。
受性基質を形成する能力を相関さぜな者はいない。
[課題を解決するだめの手段]
本発明は、投与する生物または外来生物またはそのウィ
ルスのRNAの機能に対して有効に阻害し少なくともそ
の一部と相補的なオリゴおよびポリヌクレオチドアナロ
グ構成物を提供するものである。この発明は、オリゴデ
オキシヌクレオチドにおけるメチルホスホネートまたは
他の置換体の位置とこれらのエキソおよびエンドヌクレ
アーゼに対する感受性並びにこれらのRNアーゼH基質
を形成する能力との間の相関を検討することにより可1 2 能となったものである。
ルスのRNAの機能に対して有効に阻害し少なくともそ
の一部と相補的なオリゴおよびポリヌクレオチドアナロ
グ構成物を提供するものである。この発明は、オリゴデ
オキシヌクレオチドにおけるメチルホスホネートまたは
他の置換体の位置とこれらのエキソおよびエンドヌクレ
アーゼに対する感受性並びにこれらのRNアーゼH基質
を形成する能力との間の相関を検討することにより可1 2 能となったものである。
1つの観点では、この発明によれば、2以上のホスホジ
エステル結合ヌクレオシドの配列であってこの内部でヌ
クレアーゼ耐性であるものを有する化合物が提供される
。他の観点では、この発明によれば、MN3M、B(N
) M、並びにM(N) Bよりなるx
x群から選択され
る少なくとも1つの成分を含む修飾ヌクレアーゼ耐性ヌ
クレオチド化合物(式中、Nは、ホスホジエステル結合
修飾または未修飾2−−デオキシヌクレオシド部分であ
り、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレアーゼ耐性
を与え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を
含有する部分であり、Bは、付着する末端にエキソヌク
レアーゼ耐性を与える部分であり、Xは、少なくとも2
の整数である)が提供される。
エステル結合ヌクレオシドの配列であってこの内部でヌ
クレアーゼ耐性であるものを有する化合物が提供される
。他の観点では、この発明によれば、MN3M、B(N
) M、並びにM(N) Bよりなるx
x群から選択され
る少なくとも1つの成分を含む修飾ヌクレアーゼ耐性ヌ
クレオチド化合物(式中、Nは、ホスホジエステル結合
修飾または未修飾2−−デオキシヌクレオシド部分であ
り、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレアーゼ耐性
を与え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を
含有する部分であり、Bは、付着する末端にエキソヌク
レアーゼ耐性を与える部分であり、Xは、少なくとも2
の整数である)が提供される。
他の観点では、この発明によれば、RNAの機能を阻害
するに際し、ハイブリタイス可能な条件下で、RNAと
、MN、M、 B (N) 並びにM(N) Bよりなる群かx
xら選択される少
なくとも1つの成分を含む相補的修飾ヌクレオチド化合
物とを接触させる(式中、Nは、ホスホジエステル結合
修飾または未修飾2−−デオキシヌクレオシド部分であ
り、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレアーゼ耐性
を与え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を
含有する部分であり、Bは、付着する末端にエキソヌク
レアーゼ耐性を与える部分であり、Xは、少なくとも2
の整数である)ことからなるRNAの機能を阻害する方
法が提供される。前記した好適な態様は、特にこの化合
物の使用の方法に関する。
するに際し、ハイブリタイス可能な条件下で、RNAと
、MN、M、 B (N) 並びにM(N) Bよりなる群かx
xら選択される少
なくとも1つの成分を含む相補的修飾ヌクレオチド化合
物とを接触させる(式中、Nは、ホスホジエステル結合
修飾または未修飾2−−デオキシヌクレオシド部分であ
り、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレアーゼ耐性
を与え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を
含有する部分であり、Bは、付着する末端にエキソヌク
レアーゼ耐性を与える部分であり、Xは、少なくとも2
の整数である)ことからなるRNAの機能を阻害する方
法が提供される。前記した好適な態様は、特にこの化合
物の使用の方法に関する。
またこの発明によれば、RNAと複合した場合、増加し
たヌクレアーゼ耐性とRNアーゼH基質を形成する能力
との組合せを有するオリゴまたはポリヌクレオチドを同
定する方法が提供される。
たヌクレアーゼ耐性とRNアーゼH基質を形成する能力
との組合せを有するオリゴまたはポリヌクレオチドを同
定する方法が提供される。
この発明の更なる観点によれば、生体内に3
4
導入することかでき、治療または診断応用に有効な薬剤
として作用し得る前に分解され得ないヌクレオチド化合
物か提供される。この化合物には、MN3M、B (N
) XM、並びにM(N) Bよりなる群から選択さ
れる少なくとも1つの成分が含まれる(式中、Nは、ホ
スホジエステル結合修飾または未修飾2デオキシヌクレ
オシド部分であり、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌ
クレアーゼ耐性を与え、少なくとも1つの修飾または未
修飾核酸塩基を含有する部分であり、Bは、付着する末
端にエキソヌクレアーゼ耐性を与える部分であり、Xは
、少なくとも2の整数である)。
として作用し得る前に分解され得ないヌクレオチド化合
物か提供される。この化合物には、MN3M、B (N
) XM、並びにM(N) Bよりなる群から選択さ
れる少なくとも1つの成分が含まれる(式中、Nは、ホ
スホジエステル結合修飾または未修飾2デオキシヌクレ
オシド部分であり、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌ
クレアーゼ耐性を与え、少なくとも1つの修飾または未
修飾核酸塩基を含有する部分であり、Bは、付着する末
端にエキソヌクレアーゼ耐性を与える部分であり、Xは
、少なくとも2の整数である)。
この発明で記載する化合物は、治療的またはイメージ用
途の「アンチセンス」オリゴまたはポリヌクレオチドと
して有用であり、エンドおよびエキソヌクレアーゼに対
する組合せ改良された耐性の特性、並びにRNアーゼH
感受性ハイブリッドを形成する能力を有する。これらの
化合物を合成する特に有利な化学手段が、その使用の方
法として提供される。
途の「アンチセンス」オリゴまたはポリヌクレオチドと
して有用であり、エンドおよびエキソヌクレアーゼに対
する組合せ改良された耐性の特性、並びにRNアーゼH
感受性ハイブリッドを形成する能力を有する。これらの
化合物を合成する特に有利な化学手段が、その使用の方
法として提供される。
先に銘記したように、本発明によれは、2以上のホスホ
ジエステル結合ヌクレオシドの配列であってヌクレアー
ゼ耐性であるものを有するオリゴヌクレオチドまたはポ
リヌクレオチド化合物の層成物が提供される。またこの
発明によれば、RNAの発現、スプライシング並びに翻
訳に関する機能を含むRNAの機能を阻害する方法が提
供される。この発明の化合物は、多数の価値ある用途を
有し、これには、この配列により、有害な蛋白質生成物
の発現または病原体の複製または生存の阻害または回避
が可能となる治療的使用が包含される。よって、この発
明の治療的に有効量の化合物を投与することにより、外
来生物またはウィルスによる感染に対して生体を処置す
る方法が提供される。この化合物は、その治療的効果を
発揮することを意図する細胞、生体またはウィルスとこ
れとを接触させる経5 6 路により投与する。
ジエステル結合ヌクレオシドの配列であってヌクレアー
ゼ耐性であるものを有するオリゴヌクレオチドまたはポ
リヌクレオチド化合物の層成物が提供される。またこの
発明によれば、RNAの発現、スプライシング並びに翻
訳に関する機能を含むRNAの機能を阻害する方法が提
供される。この発明の化合物は、多数の価値ある用途を
有し、これには、この配列により、有害な蛋白質生成物
の発現または病原体の複製または生存の阻害または回避
が可能となる治療的使用が包含される。よって、この発
明の治療的に有効量の化合物を投与することにより、外
来生物またはウィルスによる感染に対して生体を処置す
る方法が提供される。この化合物は、その治療的効果を
発揮することを意図する細胞、生体またはウィルスとこ
れとを接触させる経5 6 路により投与する。
前記したように、Nはホスホジエステル結合未修飾また
は修飾2−−デオキシヌクレオシド部分である。好まし
くは、これは未修飾2−−デオキシヌクレオチド部分と
する。修飾する場合、典型的な修飾された形態には、2
.6−ジアミノプリン、ウラシル、イノシン、5−ハロ
ゲン化ウラシルまたはシトシン、置換または未置換7−
デアザグアニン、7デアサアデニン、7−デアザイノシ
ン、またはメチル化アデニン、チミン、シトシンまたは
グアニンか包含される。
は修飾2−−デオキシヌクレオシド部分である。好まし
くは、これは未修飾2−−デオキシヌクレオチド部分と
する。修飾する場合、典型的な修飾された形態には、2
.6−ジアミノプリン、ウラシル、イノシン、5−ハロ
ゲン化ウラシルまたはシトシン、置換または未置換7−
デアザグアニン、7デアサアデニン、7−デアザイノシ
ン、またはメチル化アデニン、チミン、シトシンまたは
グアニンか包含される。
Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレアーゼ耐性を与
え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を含有
する部分である。好ましくは、これはメチルホスホネー
トのようなC〜C4アルキルホスホネー1・とするが、
またはα−ホスホジエステル結合とする。Mの他の例に
は、アミノホスホネート、ホスホトリエステル、ホスポ
ルアミテート、カーバメートまたはモルホリノ置換ヌク
レオチドよりなる群から選択されるものが包含される。
え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を含有
する部分である。好ましくは、これはメチルホスホネー
トのようなC〜C4アルキルホスホネー1・とするが、
またはα−ホスホジエステル結合とする。Mの他の例に
は、アミノホスホネート、ホスホトリエステル、ホスポ
ルアミテート、カーバメートまたはモルホリノ置換ヌク
レオチドよりなる群から選択されるものが包含される。
またMはエキソヌクレアーゼ耐性を与えることもできる
。
。
Bは、付着する末端にエキソヌクレアーゼ耐性を与える
部分であり、好ましくは少なくとも1つの3−−および
5゛末端ヌクレオチドのデオキシリボース部分に対して
直接的または間接的なものとする6Bの例には、内位添
加剤、メチルチオホスフェート、カーポジイミド並びに
N−ヒドロキシベンゾ1へリアゾールが包含される。ま
なりは、イソウレア、ポリペプチドまたは蛋白質とする
こともできる。付加的な例として、修飾ヌクレオチドが
式M(N) Bを有する場合、Bは修飾または未修飾
2−.3−−ジテオキシリボースヌクレオチドとするこ
とができる。
部分であり、好ましくは少なくとも1つの3−−および
5゛末端ヌクレオチドのデオキシリボース部分に対して
直接的または間接的なものとする6Bの例には、内位添
加剤、メチルチオホスフェート、カーポジイミド並びに
N−ヒドロキシベンゾ1へリアゾールが包含される。ま
なりは、イソウレア、ポリペプチドまたは蛋白質とする
こともできる。付加的な例として、修飾ヌクレオチドが
式M(N) Bを有する場合、Bは修飾または未修飾
2−.3−−ジテオキシリボースヌクレオチドとするこ
とができる。
ここで使用するように、Xは少なくとも2、好ましくは
2または3の整数である。
2または3の整数である。
「ヌクレアーゼ耐性」という用語は、エン7
ドまたはエキソヌクレアーゼについての基質として作用
する化合物の能力の減少に言及するものであり、例えば
、これらの酵素と接触した場合、化合物が分解されない
が、未修飾ホスホジエステル結合ヌクレオシドと比較し
てゆっくりと分解されるものである。
する化合物の能力の減少に言及するものであり、例えば
、これらの酵素と接触した場合、化合物が分解されない
が、未修飾ホスホジエステル結合ヌクレオシドと比較し
てゆっくりと分解されるものである。
特に好適な態様は、式MN3Mの少なくとも1つの配列
を含むヌクレアーゼ耐性ヌクレオチド化合物である(式
中、Nは、アデニン、グアニン、チミン並びにシトシン
の群から選択される未修飾ホスホジエステル結合ヌクレ
オシド部分であり、Mは2−−デオキシヌクレオシドメ
チルホスホネートである)にの態様では、Mはエンドヌ
クレアーゼおよびエキソヌクレアーゼ耐性を与え、これ
によりBの機能が付加的に行われる。
を含むヌクレアーゼ耐性ヌクレオチド化合物である(式
中、Nは、アデニン、グアニン、チミン並びにシトシン
の群から選択される未修飾ホスホジエステル結合ヌクレ
オシド部分であり、Mは2−−デオキシヌクレオシドメ
チルホスホネートである)にの態様では、Mはエンドヌ
クレアーゼおよびエキソヌクレアーゼ耐性を与え、これ
によりBの機能が付加的に行われる。
またこの発明によれば、RNAの機能を阻害するに際し
、ハイブリダイズ可能な条件下で、RNAと、MN3M
,B (N) x並びにM(N)XBよりなる群から選
択される少なくとも1つの成分を含む相補的修飾ヌクレ
オチド化合物とを接触させる(式中、Nは、ホスホジエ
ステル結合修飾または未修飾2−デオキシヌクレオシド
部分であり、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレア
ーゼ耐性を与え、少なくとも1つの修#または未修飾核
酸塩基を含有する部分であり、Bは、付着する末端にエ
キソヌクレアーゼ耐性を与える部分であり、Xは、少な
くとも2の整数である)ことからなるRNAの機能を阻
害する方法が提供される。前記した好適な態様は、特に
この化合物の使用のこの方法に関する。
、ハイブリダイズ可能な条件下で、RNAと、MN3M
,B (N) x並びにM(N)XBよりなる群から選
択される少なくとも1つの成分を含む相補的修飾ヌクレ
オチド化合物とを接触させる(式中、Nは、ホスホジエ
ステル結合修飾または未修飾2−デオキシヌクレオシド
部分であり、Mは、ヌクレオチド成分にエンドヌクレア
ーゼ耐性を与え、少なくとも1つの修#または未修飾核
酸塩基を含有する部分であり、Bは、付着する末端にエ
キソヌクレアーゼ耐性を与える部分であり、Xは、少な
くとも2の整数である)ことからなるRNAの機能を阻
害する方法が提供される。前記した好適な態様は、特に
この化合物の使用のこの方法に関する。
またこの発明によれば、RNA:オリゴまたはポリヌク
レオチド複合体の場合にヌクレアーゼ耐性とRNアーゼ
H基質を形成する能力との組合せを有するオリゴまたは
ポリヌクレオチド化合物を同定する方法が提供される。
レオチド複合体の場合にヌクレアーゼ耐性とRNアーゼ
H基質を形成する能力との組合せを有するオリゴまたは
ポリヌクレオチド化合物を同定する方法が提供される。
この方法は、(1)修飾オリゴまたはポリヌクレオチド
化合物を調製し、(11)エキソおよびエンドヌクレア
ーゼ消化により、相補的ヌク9 0 レオチド化合物とデユープレックスを形成することがで
き電気泳動的に移動し得ることにより示されるヌクレア
ーゼ耐性である(1)のオリゴまたはポリヌクレオチド
のものを選択し、(iii) RNAアーゼH消化によ
り、相補的RNAとの複合体の場合にRNアー七トIの
基質として作用する(ii)のヌクレアーゼ耐性ヌクレ
オチド化合物のものを選択することからなる。
化合物を調製し、(11)エキソおよびエンドヌクレア
ーゼ消化により、相補的ヌク9 0 レオチド化合物とデユープレックスを形成することがで
き電気泳動的に移動し得ることにより示されるヌクレア
ーゼ耐性である(1)のオリゴまたはポリヌクレオチド
のものを選択し、(iii) RNAアーゼH消化によ
り、相補的RNAとの複合体の場合にRNアー七トIの
基質として作用する(ii)のヌクレアーゼ耐性ヌクレ
オチド化合物のものを選択することからなる。
割立■ニ
アブライド・バイオシステムズ・モデル380B D
NA合成装置によりオリゴデオキシヌクレオチドを合成
した。標準的ホスホルアミタイト化学手段によりホスホ
ジエステル結合を生成し、メチルホスホンアミダイト単
量体の共役によりメチルホスホネート結合を導入した。
NA合成装置によりオリゴデオキシヌクレオチドを合成
した。標準的ホスホルアミタイト化学手段によりホスホ
ジエステル結合を生成し、メチルホスホンアミダイト単
量体の共役によりメチルホスホネート結合を導入した。
塩基保護基の加水分解およびホスホジエステルオリゴチ
オキシヌクレオチドについての支持体からの開裂は、N
H40H処理により行い、その後エタノール沈殿を行
った。混合ホスホジエステルおよびメチルホスボネート
結合を含有するオリゴデオキシヌクレオチドを脱保護し
、エチレンジアミン:エタノール(1:1)中で7時間
室温にて放出させた。また、この処理に加えて、支持材
料をN H4,OH中で2時間室温にて処理した。
オキシヌクレオチドについての支持体からの開裂は、N
H40H処理により行い、その後エタノール沈殿を行
った。混合ホスホジエステルおよびメチルホスボネート
結合を含有するオリゴデオキシヌクレオチドを脱保護し
、エチレンジアミン:エタノール(1:1)中で7時間
室温にて放出させた。また、この処理に加えて、支持材
料をN H4,OH中で2時間室温にて処理した。
サリンら、前記文献を参照することができる。
これらのオリゴデオキシヌクレオチドを、NACSプレ
パックカラム(ベセスタ・リザーチ・ラボラ1〜リイス
、ベセスタ、MD>からの4M酢酸アンモニウム溶出に
よって精製した。
パックカラム(ベセスタ・リザーチ・ラボラ1〜リイス
、ベセスタ、MD>からの4M酢酸アンモニウム溶出に
よって精製した。
後記する検討において使用したオリゴデオキシヌクレオ
チドを第1表に示すが、ここでは、センスまたはアンチ
センスとして示した相補的群にこれらをグループ化した
。
チドを第1表に示すが、ここでは、センスまたはアンチ
センスとして示した相補的群にこれらをグループ化した
。
3 ]
2
第1表
1刀
GGATGCAGCTAAGTCAAGATGCAGC
TAAGTCA ATΩCAQCTAAQTCA A工GCAGC工AAG工CA ATGΩAGΩTA/lGTΩA ATGCAGCTAAG工ΩA CGCCATGCAGCCCCAGTC各称 18・P・4 4−P−4 4−G−4 47−4 14・C−4 14−Cバー4 配且 ■ CTTGACTTAGCTGCATCC18−P・3T
GACnAGCTGCAT +4・P・3
TGACTTΔGCTGC△T +4−
八−3TGKtnAGQTGΩAT +4−
C,3T13ACTIAGC工GΩAT 14
.Me”a−3TΩAQTIAGΩTGC△T
14−Me6b−3T、Q鳩TIAGCIGCAT
14−Me”a・3TΩKLTIA(3CTGC△
T 14−Me”b−3TGGGGCTGCAT
G 12.P、ITQGGGΩT%ΔTG
12−1/、e’−jCTQQGGΩTi:
iCΔT 12−Me5a−ITΩGGGIJ
GΩAIG +2−Me5・MTGGGGΩT
ΩCATG 2−Me5・jT二G
’ 12−Melo−11下線を付した塩基は、3−
メチルホスホホー1〜結合を有するものである。
TAAGTCA ATΩCAQCTAAQTCA A工GCAGC工AAG工CA ATGΩAGΩTA/lGTΩA ATGCAGCTAAG工ΩA CGCCATGCAGCCCCAGTC各称 18・P・4 4−P−4 4−G−4 47−4 14・C−4 14−Cバー4 配且 ■ CTTGACTTAGCTGCATCC18−P・3T
GACnAGCTGCAT +4・P・3
TGACTTΔGCTGC△T +4−
八−3TGKtnAGQTGΩAT +4−
C,3T13ACTIAGC工GΩAT 14
.Me”a−3TΩAQTIAGΩTGC△T
14−Me6b−3T、Q鳩TIAGCIGCAT
14−Me”a・3TΩKLTIA(3CTGC△
T 14−Me”b−3TGGGGCTGCAT
G 12.P、ITQGGGΩT%ΔTG
12−1/、e’−jCTQQGGΩTi:
iCΔT 12−Me5a−ITΩGGGIJ
GΩAIG +2−Me5・MTGGGGΩT
ΩCATG 2−Me5・jT二G
’ 12−Melo−11下線を付した塩基は、3−
メチルホスホホー1〜結合を有するものである。
マーカーのホスホ・ジエステルオリゴデオキシヌクレオ
チドは、T4ポリヌクレオチドキナーゼを使用して32
Pにより5−ラベルし、水中にてセファデックスG−5
0のスノにンカラムを使用して′Mt製した。マニアテ
イスら、「分子クローン化」、コールド・スプリング・
ハーバ−・ラボラトリイ、ニューヨーク(1982)を
参照することができる。
チドは、T4ポリヌクレオチドキナーゼを使用して32
Pにより5−ラベルし、水中にてセファデックスG−5
0のスノにンカラムを使用して′Mt製した。マニアテ
イスら、「分子クローン化」、コールド・スプリング・
ハーバ−・ラボラトリイ、ニューヨーク(1982)を
参照することができる。
乞ku憇透皿
前記したゲル移動分析により全てのメチルホスホネート
置換オリゴチオキシヌクレオチドを定量し、これらそれ
ぞれの5− 32Pラベル相補的ホスホジエステルオリ
ゴヌクレオチドを用いた。カーチンとウニ1−ムル、前
記文献を参照することがてきる。概説すれは、アッセイ
手順は次通っである。T4ポリヌクレオチドキナーゼを
使用し32Pによりマーカーのホスホジエステルオリゴ
チオキシヌクレオチドを5−−ラベルし、水中でセファ
テックスG−50のスパンカラム(マニフテイ3 4 スら、1982)を使用して精製した。ヌクレアーゼ処
理相補的オリゴデオキシヌクレオチドに対するアニーリ
ングは、電気泳動の前に室温で15分間行った。対照の
アニーリング反応は、適当な酵素M街液中で行った。2
.5%フィコール400中で20%アクリルアミドゲル
にサンプルを装填しな。ゲル電気泳動は、4°Cで40
0ポルl〜、5〜15ミリアンペアにて、TBEg街液
(89mMトリスCI、89mMボレート、1mMED
TA)中で2〜4時間行った。ゲルを乾燥させ、オート
ラジオクラフィにより試験した。
置換オリゴチオキシヌクレオチドを定量し、これらそれ
ぞれの5− 32Pラベル相補的ホスホジエステルオリ
ゴヌクレオチドを用いた。カーチンとウニ1−ムル、前
記文献を参照することがてきる。概説すれは、アッセイ
手順は次通っである。T4ポリヌクレオチドキナーゼを
使用し32Pによりマーカーのホスホジエステルオリゴ
チオキシヌクレオチドを5−−ラベルし、水中でセファ
テックスG−50のスパンカラム(マニフテイ3 4 スら、1982)を使用して精製した。ヌクレアーゼ処
理相補的オリゴデオキシヌクレオチドに対するアニーリ
ングは、電気泳動の前に室温で15分間行った。対照の
アニーリング反応は、適当な酵素M街液中で行った。2
.5%フィコール400中で20%アクリルアミドゲル
にサンプルを装填しな。ゲル電気泳動は、4°Cで40
0ポルl〜、5〜15ミリアンペアにて、TBEg街液
(89mMトリスCI、89mMボレート、1mMED
TA)中で2〜4時間行った。ゲルを乾燥させ、オート
ラジオクラフィにより試験した。
置換されたオリゴチオキシヌクレオチドに対する所定量
の酵素によるヌクレアーゼ作用を、等量の対照ホスホジ
エステルアナログによる結果と比較した。
の酵素によるヌクレアーゼ作用を、等量の対照ホスホジ
エステルアナログによる結果と比較した。
ラベルした18−P−4は、マーカーのオリゴチオキシ
ヌクレオチドとして働き、14−P−3または14−
M e 6a −3のようないずれかのその相補的配列
に対してハイブリクイズした場合、より低い移動度を有
する。
ヌクレオチドとして働き、14−P−3または14−
M e 6a −3のようないずれかのその相補的配列
に対してハイブリクイズした場合、より低い移動度を有
する。
酵素処理したオリゴチオキシヌクレオチドが18−P−
4の移動度を減少させない場合、これはもはやデユープ
レックスを形成するものてはなく、試験したヌクレアー
ゼに対する感受性を示す。
4の移動度を減少させない場合、これはもはやデユープ
レックスを形成するものてはなく、試験したヌクレアー
ゼに対する感受性を示す。
ヌクレアーゼ感受性の分析は、オリゴデオキシヌクレオ
チドがチュープレックスを形成2 し、 Pラベルした相補的オリゴチオキシヌクレオチ
ドのゲルを介する移動に影響を与える能力に基く6所定
量の酵素による置換されたオリゴデオキシヌクレオチド
に対するヌクレアーゼ作用を、対照ホスホジエステルア
ナログによる結果と比較する。
チドがチュープレックスを形成2 し、 Pラベルした相補的オリゴチオキシヌクレオチ
ドのゲルを介する移動に影響を与える能力に基く6所定
量の酵素による置換されたオリゴデオキシヌクレオチド
に対するヌクレアーゼ作用を、対照ホスホジエステルア
ナログによる結果と比較する。
DNアーゼ■およびDNアーゼ■エンドヌクレアーゼ感
受性について、主としてカーチンとウェトムル(198
9)、前記文献に記載さ5 6 れなようにして行い、ゲルシフトアッセイによりこれを
決定した。1−5隣接ホスホジ工ステル結合を有するメ
チルホスボネート含有オリゴデオキシヌクレオチドを次
のように試験した。
受性について、主としてカーチンとウェトムル(198
9)、前記文献に記載さ5 6 れなようにして行い、ゲルシフトアッセイによりこれを
決定した。1−5隣接ホスホジ工ステル結合を有するメ
チルホスボネート含有オリゴデオキシヌクレオチドを次
のように試験した。
オリゴチオキシヌクレオチドのヌクレアーセ消化を、そ
れぞれの酵素について後記する条件下で10μm容量に
て行った。ウシ膵臓D Nアーゼエ(1μg)(3,1
,4,,5)(ベセスダ・リサーチ・ラボラトリイス、
ベセスタ、MD)を、50mM酢酸すl−リウム(p
H6,5) 、10 m M M g CI 2並びに
2mMCaCl 2を含有する溶液中て37°Cで使用
した。ウシ牌臓DNアーゼ■(20単位)(3,1,4
,6>(ベセスタ・リサーチ・ラボラトリイス、前記)
を、0.8mMM g S O4および83 、3 m
I’A HOA c(pT(46)を含有する溶液中
で25°Cで使用した。消化反応についての酵素量は、
ホスホジエステルオリゴテオキシヌクレオチドを用いる
滴定により決定した。
れぞれの酵素について後記する条件下で10μm容量に
て行った。ウシ膵臓D Nアーゼエ(1μg)(3,1
,4,,5)(ベセスダ・リサーチ・ラボラトリイス、
ベセスタ、MD)を、50mM酢酸すl−リウム(p
H6,5) 、10 m M M g CI 2並びに
2mMCaCl 2を含有する溶液中て37°Cで使用
した。ウシ牌臓DNアーゼ■(20単位)(3,1,4
,6>(ベセスタ・リサーチ・ラボラトリイス、前記)
を、0.8mMM g S O4および83 、3 m
I’A HOA c(pT(46)を含有する溶液中
で25°Cで使用した。消化反応についての酵素量は、
ホスホジエステルオリゴテオキシヌクレオチドを用いる
滴定により決定した。
25mMまでEDTAを添加し、70°Cで10分間イ
ンキュベーl〜することによりDNアーゼエ反応を停止
さぜな。21mMまでのEDTAおよびpH6,0まで
の1−リスOHを添加し、その後70℃で30分間イン
キュベーl〜することによりDNアーゼ■反応を停止さ
ぜな。両者の反応溶液を、オリゴデオキシヌクレオチド
のアニーリングのため、少なくとも100mMNaCI
まで至らしめた。
ンキュベーl〜することによりDNアーゼエ反応を停止
さぜな。21mMまでのEDTAおよびpH6,0まで
の1−リスOHを添加し、その後70℃で30分間イン
キュベーl〜することによりDNアーゼ■反応を停止さ
ぜな。両者の反応溶液を、オリゴデオキシヌクレオチド
のアニーリングのため、少なくとも100mMNaCI
まで至らしめた。
第2表に、エンドヌクレアーゼDNアーゼエおよびDN
アーセ■によるオリゴデオキシヌクレオチドの消化につ
いての相対的半減期を示す。メチルホスホホー1〜結合
を有するオリゴヌクレオチドの半減期は、対照オリゴヌ
クレオチド、14−P−3に対するものとして示す。D
Nアーゼ■による1 4−P〜3の消化についての半減
期は、10分のオーターであった。14.−、!−3は
、5つのホスホン 7 8 エステル結合の内部スパンを有し、対照14P−3と同
様にDNNアーゼ−感受性である。14−Me6a−3
は交番ジエステルおよびメチルホスホネー1〜結合を有
し、14P−3よりDNアーゼ1に対して600倍附1
性であった。−船釣傾向として、ポスポジエステルスパ
ンが減少するにつれ、オリゴデオキシヌクレオチドはエ
ンドヌクレアーゼ活性に対してより耐性となる。DNア
ーゼ■反応は、DNアー七工についてのものより非常に
遅かった(14−1”3消化についての半減期10時間
)。実験の時間的枠組みの中で、最も耐性のメチルホス
ポネーl−についての相対的半減期は、5を越えるもの
として示され得るのみである。
アーセ■によるオリゴデオキシヌクレオチドの消化につ
いての相対的半減期を示す。メチルホスホホー1〜結合
を有するオリゴヌクレオチドの半減期は、対照オリゴヌ
クレオチド、14−P−3に対するものとして示す。D
Nアーゼ■による1 4−P〜3の消化についての半減
期は、10分のオーターであった。14.−、!−3は
、5つのホスホン 7 8 エステル結合の内部スパンを有し、対照14P−3と同
様にDNNアーゼ−感受性である。14−Me6a−3
は交番ジエステルおよびメチルホスホネー1〜結合を有
し、14P−3よりDNアーゼ1に対して600倍附1
性であった。−船釣傾向として、ポスポジエステルスパ
ンが減少するにつれ、オリゴデオキシヌクレオチドはエ
ンドヌクレアーゼ活性に対してより耐性となる。DNア
ーゼ■反応は、DNアー七工についてのものより非常に
遅かった(14−1”3消化についての半減期10時間
)。実験の時間的枠組みの中で、最も耐性のメチルホス
ポネーl−についての相対的半減期は、5を越えるもの
として示され得るのみである。
第2表
相対的半減期
i 4−P−3
4−A−3
〉5
14−C−3
14−Me5b−3
14−Me5a−3
14−Me6b−3
14−Me6a、3
2
00
〉600
〉600
9
0
大JI殊ユ
オリゴヌクレオチドのヌクレアーゼ耐性を、5−−およ
び3−−エキソヌクレアーゼを用いる次の消化により、
相補的ホスホジエステル結合オリゴデオキシヌクレオチ
ドの電気泳動移動度(「ゲルシフト」)の変化を引き起
こす能力によって検出した。
び3−−エキソヌクレアーゼを用いる次の消化により、
相補的ホスホジエステル結合オリゴデオキシヌクレオチ
ドの電気泳動移動度(「ゲルシフト」)の変化を引き起
こす能力によって検出した。
オリゴデオキシヌクレオチドのヌクレアーセ消化は、そ
れぞれの酵素について後記する条件下で10μm容量中
で行った。ウシ牌臓ホスホジェステラーゼ(3,1,4
,18)(シグマ、セン1〜ルイス、MO)を、01M
クエン酸ナトリウム(pH6,0)および5mMEDT
Aを含有する溶液中で37°Cで使用しな。Crota
lus adamanteus由来のヘビ毒ホスホジェ
ステラーゼ(3,1,4,]、)(シグマ、前記)を、
0.2M1〜リス−CI(pH9,0>を含有する溶液
中で37°Cで使用した。消化反応についての酵素量は
、ホスホジエステルオリゴデオキシヌクレオチドを用い
る滴定によって決定した。
れぞれの酵素について後記する条件下で10μm容量中
で行った。ウシ牌臓ホスホジェステラーゼ(3,1,4
,18)(シグマ、セン1〜ルイス、MO)を、01M
クエン酸ナトリウム(pH6,0)および5mMEDT
Aを含有する溶液中で37°Cで使用しな。Crota
lus adamanteus由来のヘビ毒ホスホジェ
ステラーゼ(3,1,4,]、)(シグマ、前記)を、
0.2M1〜リス−CI(pH9,0>を含有する溶液
中で37°Cで使用した。消化反応についての酵素量は
、ホスホジエステルオリゴデオキシヌクレオチドを用い
る滴定によって決定した。
ヘビ毒ホスホジェステラーゼ反応は、25mMまでED
TAを添加し70℃で10分間インキュベートすること
により停止した。胛臓ホスポジエステラーゼ反応は、7
0°Cで10分間インキュベー1・することにより停止
した。オリゴデオキシヌクレオチドのアニーリングの前
に、両者の反応液を少なくとも100mMNaclに至
らしめた。
TAを添加し70℃で10分間インキュベートすること
により停止した。胛臓ホスポジエステラーゼ反応は、7
0°Cで10分間インキュベー1・することにより停止
した。オリゴデオキシヌクレオチドのアニーリングの前
に、両者の反応液を少なくとも100mMNaclに至
らしめた。
牌臓およびヘビ毒エキソヌクレアーゼの検討結果を第3
表にまとめる。それぞれのオリゴヌクレオチドの半減期
は、そのそれぞれの対照、未修飾オリゴヌクレオチド配
列、]4P−3または14.− P−4のものに対する
ものとして示す。
表にまとめる。それぞれのオリゴヌクレオチドの半減期
は、そのそれぞれの対照、未修飾オリゴヌクレオチド配
列、]4P−3または14.− P−4のものに対する
ものとして示す。
対照オリゴチオキシヌクレオチドの牌朦エキソヌクレア
ーセ消化についての半減期は、使用した酵素濃度につい
て約30分であった。
ーセ消化についての半減期は、使用した酵素濃度につい
て約30分であった。
1
2
胛臓エキソヌクレアーゼを用いて試験した部分修飾オリ
ゴデオキシヌクレオチドの全ては、適切に増加させた酵
素濃度による一夜消化の後に検出し得る開裂の不存在に
基き、そのそれぞれの対照より200倍以上耐性であっ
た。
ゴデオキシヌクレオチドの全ては、適切に増加させた酵
素濃度による一夜消化の後に検出し得る開裂の不存在に
基き、そのそれぞれの対照より200倍以上耐性であっ
た。
オリゴヌクレオチド、14−C−4,14G−4並びに
14−T−4は、ハイブリッドの電気泳動移動度におけ
る僅かな増加により示されるように、明らかに短くなっ
ていた。
14−T−4は、ハイブリッドの電気泳動移動度におけ
る僅かな増加により示されるように、明らかに短くなっ
ていた。
対照オリゴチオキシヌクレオチドの毒エキソヌクレアー
ゼ消化についての半減期は、使用した酵素(シグマ)濃
度について約12分であった。最も短い相対的半減期を
有する修飾オリゴチオキシヌクレオチド(14−G−4
)は、3−−末端から3つ目の結合としてその最初のメ
チルホスホネート結合を有していたが、試験した他のオ
リゴチオキシヌクレオチドは、3−−末端から1つ目ま
たは2つ目の結合としてメチルホスホネートを有してい
た。
ゼ消化についての半減期は、使用した酵素(シグマ)濃
度について約12分であった。最も短い相対的半減期を
有する修飾オリゴチオキシヌクレオチド(14−G−4
)は、3−−末端から3つ目の結合としてその最初のメ
チルホスホネート結合を有していたが、試験した他のオ
リゴチオキシヌクレオチドは、3−−末端から1つ目ま
たは2つ目の結合としてメチルホスホネートを有してい
た。
他の検討では、ワージンクトンの毒エキソヌクレアーゼ
を使用し、3−−末端における2つの連続的なメチルホ
スホネート結合(14C/T−4)の存在により、3−
−末端に1つのみのメチルホスホネート結合を有する1
4−C−4と比教して、オリゴチオキシヌクレオチド
の半減期の約2倍の増加を与えた。
を使用し、3−−末端における2つの連続的なメチルホ
スホネート結合(14C/T−4)の存在により、3−
−末端に1つのみのメチルホスホネート結合を有する1
4−C−4と比教して、オリゴチオキシヌクレオチド
の半減期の約2倍の増加を与えた。
3
4
第」し光
寒」自吐ユ
’+4−P−3
”14−P−4
14−C−3
+4−G−4
4−A−3
4−T−4
14−Me6a−3
1
1
>>200 >500>>2
00 100>>200
ン〉500>>200
>500>>200
>>500上記のデータは、末端付近の
単一ヌクレアーゼ耐性インターヌクレオチド結合は、オ
リゴデオキシヌクレオチドのエキソヌクレオ分解酵素に
対する耐性を大きく増強するよう働くことを示す。
00 100>>200
ン〉500>>200
>500>>200
>>500上記のデータは、末端付近の
単一ヌクレアーゼ耐性インターヌクレオチド結合は、オ
リゴデオキシヌクレオチドのエキソヌクレオ分解酵素に
対する耐性を大きく増強するよう働くことを示す。
RNアーゼH基質として作用する、すなわち相補的RN
AのRNNアーゼ間裂を指向する能力を、プラスミドp
SP65−ALADを使用して次のように試験した。
AのRNNアーゼ間裂を指向する能力を、プラスミドp
SP65−ALADを使用して次のように試験した。
プラスミドpSP65−ALA−Dは、メルトンら、[
バクテリオファージSP6プロモーターを含有するプラ
スミドからの生物的に活性なRNAおよびRNAハイブ
リタイゼーショングローブの効率的な試験管内合成」、
Nucleic Ac1ds Re5earct+、
12: 7035−7056(1984)に記載された
SP6クローン化ベクタpSP65の誘導体である。こ
れは、ポリリンカのPstI部位にセンス方向に挿入さ
れたデルタ−アミルプリン酸テヒドロゲナーゼ(ALA
−D) 、ヘム生合成酵素のcDNA配列を含有する。
バクテリオファージSP6プロモーターを含有するプラ
スミドからの生物的に活性なRNAおよびRNAハイブ
リタイゼーショングローブの効率的な試験管内合成」、
Nucleic Ac1ds Re5earct+、
12: 7035−7056(1984)に記載された
SP6クローン化ベクタpSP65の誘導体である。こ
れは、ポリリンカのPstI部位にセンス方向に挿入さ
れたデルタ−アミルプリン酸テヒドロゲナーゼ(ALA
−D) 、ヘム生合成酵素のcDNA配列を含有する。
ALA−Dについては、ウェトムルら、[ヒトα−アミ
ルリプリン酸ヒドラターゼ:全長cDNAクローン5 6 のヌクレオチド配列J、 Proc、 Nat、 Ac
adSci、 US^、 83: 7703−7707
(1986)を参照することかできる。部分補遺は、
一般に次の通りである: (12マー) (14マー) 一/ /−− PN H ここで、12マーおよび14マーのラベルはオリゴヌク
レオチド結合部位上の中心に位置し、ランオフ転写につ
いての制限エンドヌクレアーゼ部位は次の通りである:
P− Pvu I[、N=NcoI、H=Hi ndlI[、
並びにS−転写開始。
ルリプリン酸ヒドラターゼ:全長cDNAクローン5 6 のヌクレオチド配列J、 Proc、 Nat、 Ac
adSci、 US^、 83: 7703−7707
(1986)を参照することかできる。部分補遺は、
一般に次の通りである: (12マー) (14マー) 一/ /−− PN H ここで、12マーおよび14マーのラベルはオリゴヌク
レオチド結合部位上の中心に位置し、ランオフ転写につ
いての制限エンドヌクレアーゼ部位は次の通りである:
P− Pvu I[、N=NcoI、H=Hi ndlI[、
並びにS−転写開始。
プラスミドpSP65−ALA−D (1μg)をHi
ndII[、NcoIまたはPvu■の1つにより消化
した後、フェノールにより抽出し、クロロホルム:イソ
アミルアルコール(24:1)により抽出し、エタノー
ル沈殿した。70%エタノールを用いてペレッ)・を洗
浄し、乾燥し、水中に再懸濁した(200ng/μ])
。試験管内転写反応物は、約200ngの線状化pSP
65−ALA−D、全ての4つのりボヌクレオシドトリ
リン酸(0,4mM、冷却)、20μCiα−32P−
CTP(比活性800Ci 7mll1ol) 、1
mMDTT、40mM)リス−MCI (pH7,9)
、6mM M g C] 2 、□ 2 m Mスペルミジン−[
MCI]並びに15単位の5P6RNAポリメラーゼを
含有し、37゛Cで1時間インキュベートした。サンプ
ルを抽出し、沈殿させて乾燥し、その往水(10〜20
μl)中に再懸濁した。
ndII[、NcoIまたはPvu■の1つにより消化
した後、フェノールにより抽出し、クロロホルム:イソ
アミルアルコール(24:1)により抽出し、エタノー
ル沈殿した。70%エタノールを用いてペレッ)・を洗
浄し、乾燥し、水中に再懸濁した(200ng/μ])
。試験管内転写反応物は、約200ngの線状化pSP
65−ALA−D、全ての4つのりボヌクレオシドトリ
リン酸(0,4mM、冷却)、20μCiα−32P−
CTP(比活性800Ci 7mll1ol) 、1
mMDTT、40mM)リス−MCI (pH7,9)
、6mM M g C] 2 、□ 2 m Mスペルミジン−[
MCI]並びに15単位の5P6RNAポリメラーゼを
含有し、37゛Cで1時間インキュベートした。サンプ
ルを抽出し、沈殿させて乾燥し、その往水(10〜20
μl)中に再懸濁した。
再懸濁した転写物(1μl)を、10単位のインヒビタ
ーRNアシン(9μl全量)(プロメカ・コープ、マデ
ィソン、WI)の存在下に、20mMトリス−MCI(
pH7,5)、10mMMgC1100mM2゛ KCI、10mMDTT並びに5%(W/V)ショ糖中
にてアンチセンスオリゴチオキシヌクレオチド(2On
、 g )とアニールさせた。
ーRNアシン(9μl全量)(プロメカ・コープ、マデ
ィソン、WI)の存在下に、20mMトリス−MCI(
pH7,5)、10mMMgC1100mM2゛ KCI、10mMDTT並びに5%(W/V)ショ糖中
にてアンチセンスオリゴチオキシヌクレオチド(2On
、 g )とアニールさせた。
7
8
60℃での1分間のインキュベートの後、アニール混合
物を室温(22°C)で30分間インキュベートした。
物を室温(22°C)で30分間インキュベートした。
その後、イー・コリRNアーゼH(1μl−2単位、3
.1..264 ; BRL)を添加し、反応物を37
°Cで60分間インキュベー1へした。EDTA(1μ
I、O,IM)を添加して反応を停止した。
.1..264 ; BRL)を添加し、反応物を37
°Cで60分間インキュベー1へした。EDTA(1μ
I、O,IM)を添加して反応を停止した。
サンプルを抽出し、エタノール沈殿し、乾燥し、RNA
装填緩衝液(10JLl、67%ホルムアミドおよび2
0%ホルムアミド)に再懸濁した。60°Cでの5分間
のインキュベートの後、350ホルト、45ミリアンペ
アで室温にて1時間、6%変性<8M尿素)アクリルア
ミドゲルにサンプルを供した。オートラジオグラフィに
より結果を視覚化した。
装填緩衝液(10JLl、67%ホルムアミドおよび2
0%ホルムアミド)に再懸濁した。60°Cでの5分間
のインキュベートの後、350ホルト、45ミリアンペ
アで室温にて1時間、6%変性<8M尿素)アクリルア
ミドゲルにサンプルを供した。オートラジオグラフィに
より結果を視覚化した。
psP−6−ALA−Dから32ラベルしたランオフ転
写物を作成し、RNアーゼHの存在下に種々のオリゴデ
オキシヌクレオチドとインキュベートした。対照オリゴ
デオキシヌクレオチド14−P−3およびメチルホスホ
ネート置換オリゴデオキシヌクレオチド14−A−3お
よび14−C−3はR,NアーゼH基質を形成したが、
10μg / m +の濃度に至るまで14−Me6a
−3は形成しなかっな。また、14−Me5a−3およ
び14−Me”b−3は、RNアーゼH基質を形成する
ことができた。しかしながら、14マ一結合部位は、R
NアーゼH消化には適さない部位と考えられた。RNA
の完全な開裂が全く認められなかったためである。恐ら
くこの領域におけるRNA中の二次vi造によると考え
られる。
写物を作成し、RNアーゼHの存在下に種々のオリゴデ
オキシヌクレオチドとインキュベートした。対照オリゴ
デオキシヌクレオチド14−P−3およびメチルホスホ
ネート置換オリゴデオキシヌクレオチド14−A−3お
よび14−C−3はR,NアーゼH基質を形成したが、
10μg / m +の濃度に至るまで14−Me6a
−3は形成しなかっな。また、14−Me5a−3およ
び14−Me”b−3は、RNアーゼH基質を形成する
ことができた。しかしながら、14マ一結合部位は、R
NアーゼH消化には適さない部位と考えられた。RNA
の完全な開裂が全く認められなかったためである。恐ら
くこの領域におけるRNA中の二次vi造によると考え
られる。
対照ホスホジエステルオリゴデオキシヌクレオチド、1
2−P’−1を含む一群の12マーのオリゴデオキシヌ
クレオチドを試験した。
2−P’−1を含む一群の12マーのオリゴデオキシヌ
クレオチドを試験した。
NcoIランオフ転写物を使用しくこれは12−P’−
1の存在下でRNアーゼHにより完全に開裂される)、
12−Me4−1およ9 0 び12−Me5a−1については大部分のRNAの開裂
か可能であるが、12 5 5− Meb−1,12−Mel並びに12 −Melo−1はRNアーゼH基質を形成しないことが
認められた。
1の存在下でRNアーゼHにより完全に開裂される)、
12−Me4−1およ9 0 び12−Me5a−1については大部分のRNAの開裂
か可能であるが、12 5 5− Meb−1,12−Mel並びに12 −Melo−1はRNアーゼH基質を形成しないことが
認められた。
作
B95−8細胞の懸濁培養物、ニブスティン・バールウ
ィルス陽性リンパ球セルラインを、10%熱失活ウシつ
児血清(Fe2)およびペニシリンおよびストレプトマ
イシン(全てギブコより)を含有するRPM 1164
0中で37°Cにて湿潤5%CO2インキユベータ中で
維持した。細胞は、4×105〜2×106/mlの濃
度で維持した。
ィルス陽性リンパ球セルラインを、10%熱失活ウシつ
児血清(Fe2)およびペニシリンおよびストレプトマ
イシン(全てギブコより)を含有するRPM 1164
0中で37°Cにて湿潤5%CO2インキユベータ中で
維持した。細胞は、4×105〜2×106/mlの濃
度で維持した。
安定性の検討のため、200μlの
RPM11640(のみ>、200μlの完全培地並び
に200JJ、lの細胞懸濁物を、96六組織培養プレ
ートの別々の穴に移した。
に200JJ、lの細胞懸濁物を、96六組織培養プレ
ートの別々の穴に移した。
終濃度的0.2μMで穴にオリゴヌクレオチドを添加し
、37°Cで種々の時間の間インキュベートした。ザン
プル(25μl)を除去し、70°Cで5〜10分間イ
ンキュベートして更なる分解を軽減し、その後ゲル移動
分析の前に一20℃で保存した。細胞懸濁物における安
定性試験の結果を第4表に示す。
、37°Cで種々の時間の間インキュベートした。ザン
プル(25μl)を除去し、70°Cで5〜10分間イ
ンキュベートして更なる分解を軽減し、その後ゲル移動
分析の前に一20℃で保存した。細胞懸濁物における安
定性試験の結果を第4表に示す。
第4表
14−P−3安定 、 1
14−Me5b−3安定 。。 3゜14−1
φe5a−3安定 303014−Me6b−3安定
3030 14−Me6a−3安定 30 30試験した
オリゴヌクレオチドの全ては、血清を含有しない培地中
のインキュベート、その後の37℃での24時間のイン
キュベ−1・に対して安定であった。個々のオリゴヌク
レ1 2 オチドの安定性は、完全培地および細胞懸濁物の両者に
おいて分解が類似するため、血清の存在により変化した
。
φe5a−3安定 303014−Me6b−3安定
3030 14−Me6a−3安定 30 30試験した
オリゴヌクレオチドの全ては、血清を含有しない培地中
のインキュベート、その後の37℃での24時間のイン
キュベ−1・に対して安定であった。個々のオリゴヌク
レ1 2 オチドの安定性は、完全培地および細胞懸濁物の両者に
おいて分解が類似するため、血清の存在により変化した
。
これらの結果は、ホスホジエステルオリゴヌクレオチド
は、細胞懸濁物(または完全培地)中で60分未満の半
減期を有することを示しな。短時間増強を使用する血清
補填またはコンディショニング培地における同様の実験
の結果は、約15分の半減期を示唆しな。
は、細胞懸濁物(または完全培地)中で60分未満の半
減期を有することを示しな。短時間増強を使用する血清
補填またはコンディショニング培地における同様の実験
の結果は、約15分の半減期を示唆しな。
メチルホスホネート置換を有するオリゴデオキシヌクレ
オチドは、それらのホスホジエステルアナログより顕著
に安定であり、メチルホスホネート結合の配置によらず
、約7.5時間の相対的に類似した半減期を示した。
オチドは、それらのホスホジエステルアナログより顕著
に安定であり、メチルホスホネート結合の配置によらず
、約7.5時間の相対的に類似した半減期を示した。
3−−エキソヌクレオ分解活性は、オリゴチオキシヌク
レオチド1.4−M e 6a−2および14−Me5
a−2(このそれぞれは3末端−ホスホジエステル結合
チミジン残基を含有する)の単独の段階的開裂により示
され、またオリゴデオキシヌクレオチド14Me’b−
2および14−Me’ b−2(このそれぞれは3−−
末端一メチルホスホネート結合チミジン残基を含有する
)の不存在により示された。
レオチド1.4−M e 6a−2および14−Me5
a−2(このそれぞれは3末端−ホスホジエステル結合
チミジン残基を含有する)の単独の段階的開裂により示
され、またオリゴデオキシヌクレオチド14Me’b−
2および14−Me’ b−2(このそれぞれは3−−
末端一メチルホスホネート結合チミジン残基を含有する
)の不存在により示された。
3
4
Claims (50)
- (1)MN_3M、B(N)_XM、並びにM(N)_
XBよりなる群から選択される少なくとも1つの成分を
含む修飾ヌクレオチド化合物(式中、 Nは、ホスホジエステル結合修飾または未 修飾2^−−デオキシヌクレオシド部分であり、Mは、
前記成分にエンドヌクレアーゼ耐性 を与え、少なくとも1つの修飾または未修飾核酸塩基を
含有する部分であり、 Bは、付着する末端にエキソヌクレアーゼ 耐性を与える部分であり、 Xは、少なくとも2の整数である)。 - (2)MおよびBが同一部分である請求項1記載の修飾
ヌクレオチド化合物。 - (3)相補的RNAと複合する場合、RNAに対してR
NアーゼH感受性を与える請求項1記載の修飾ヌクレオ
チド化合物。 - (4)Nが少なくとも1つのアデニン、グアニン、チミ
ンまたはシトシン部分を含有する請求項1記載の修飾ヌ
クレオチド化合物。 - (5)Nが少なくとも1つのウラシル、イノシンまたは
2,6−ジアミノプリン部分を含有する請求項1記載の
修飾ヌクレオチド化合物。 - (6)Nが少なくとも1つの5−ハロゲン化ウラシルま
たはシトシンまたは置換または未置換7−デアザグアニ
ン、7−デアザアデニンまたは7−デアザイノシン部分
を含有する請求項1記載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (7)Nが少なくとも1つのメチル化アデニン、グアニ
ン、チミンまたはシトシン部分を含有する請求項1記載
の修飾ヌクレオチド化合物。 - (8)MがC_1〜C_4アルキルホスホネートデオキ
シヌクレオチドである請求項1記載の修飾ヌクレオチド
化合物。 - (9)Mがメチルホスホネートデオキシヌクレオチドで
ある請求項8記載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (10)Mがα−ホスホジエステル2^−−デオキシヌ
クレオシドである請求項1記載の修飾ヌクレオチド化合
物。 - (11)Mが、アミノホスホネート、ホスホトリエステ
ル、ホスホルアミデート、カーバメートまたはモルホリ
ノ置換ヌクレオチドよりなる群から選択される請求項1
記載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (12)Bが、少なくとも1つの3^−−および5^−
−末端ヌクレオチドのデオキシリボース部分に直接的ま
たは間接的に付着する請求項1記載の修飾ヌクレオチド
化合物。 - (13)Bが、少なくとも1つの3^−−および5^−
−末端ヌクレオチドのデオキシリボースの水酸基に直接
的または間接的に付着する請求項12記載の修飾ヌクレ
オチド化合物。 - (14)Bが、少なくとも1つの3^−−および5^−
−末端ヌクレオチドのデオキシリボース部分に付着した
リン酸部分に直接的または間接的に付着する請求項1記
載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (15)Bが、内位添加剤、イソウレア、カルボジイミ
ド並びにN−ヒドロキシベンゾトリアゾールよりなる群
から選択される請求項13または14記載の修飾ヌクレ
オチド化合物。 - (16)Bがメチルチオホスホネートである請求項13
記載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (17)Bがポリペプチドまたは蛋白質である請求項1
3または14記載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (18)式M(N)_XB(式中、Bは修飾または未修
飾2^−、3^−−ジデオキシリボースヌクレオチドで
ある)の少なくとも1つの配列を含む請求項1記載の修
飾ヌクレオチド化合物。 - (19)Xが2または3よりなる群から選択される整数
である請求項1記載の修飾ヌクレオチド化合物。 - (20)式MN_3M(式中、Nは少なくとも1つのグ
アニン、アデニン、シトシンまたはチミン部分を含有す
るホスホジエステル結合未修飾2^−−デオキシヌクレ
オシド部分であり、Mはメチルホスホネート含有デオキ
シヌクレオチドである)を有する少なくとも1つの配列
を含有する修飾ヌクレオチド化合物。 - (21)RNAの機能を阻害するに際し、ハイブリダイ
ズ可能な条件下で、前記RNAと、 MN_3M、B(N)_X並びにM(N)_XBよりな
る群から選択される少なくとも1つの相補的成分を含む
修飾ヌクレオチド化合物とを接触させる(式中、 Nは、ホスホジエステル結合修飾または未 修飾2^−−デオキシヌクレオシド部分であり、Mは、
その存在により前記成分にエンドヌ クレアーゼ耐性を与え、少なくとも1つの修飾または未
修飾核酸塩基を含有する部分であり、 Bは、その存在により付着する末端にエキ ソヌクレアーゼ耐性を与える部分であり、 Xは、少なくとも2の整数である)ことか らなるRNAの機能を阻害する方法。 - (22)RNAを、MおよびBが同一部分である化合物
と接触させる請求項21記載の方法。 - (23)RNAを、Nが少なくとも1つのアデニン、グ
アニン、チミンまたはシトシン部分を含有する化合物と
接触させる請求項21記載の方法。 - (24)RNAを、Nが少なくとも1つのウラシル、イ
ノシンまたは2,6−ジアミノプリン部分を含有する化
合物と接触させる請求項21記載の方法。 - (25)RNAを、Nが少なくとも1つの5−ハロゲン
化ウラシルまたはシトシンまたは置換または未置換7−
デアザグアニン、7−デアザアデニンまたは7−デアザ
イノシン部分を含有する化合物と接触させる請求項21
記載の方法。 - (26)RNAを、Nが少なくとも1つのメチル化アデ
ニン、グアニン、チミンまたはシトシン部分を含有する
化合物と接触させる請求項 21記載の方法。 - (27)RNAを、MがC_1〜C_4アルキルホスフ
ェートである化合物と接触させる請求項21記載の方法
。 - (28)RNAを、Mがメチルホスホネートである化合
物と接触させる請求項27記載の方法。 - (29)RNAを、Mがα−ホスホジエステル2^−−
デオキシヌクレオシドである化合物と接触させる請求項
21記載の方法。 - (30)RNAを、Mがアミノホスホネート、ホスホト
リエステル、ホスホルアミデート、カーバメートまたは
モルホリノ置換ヌクレオチドよりなる群から選択される
化合物と接触させる請求項21記載の方法。 - (31)RNAを、Bが少なくとも1つの3^−−およ
び5^−−末端ヌクレオチドのデオキシリボース部分に
直接的または間接的に付着した化合物と接触させる請求
項21記載の方法。 - (32)RNAを、Bが少なくとも1つの3^−−およ
び5^−−末端ヌクレオチドのデオキシリボースの水酸
基に直接的または間接的に付着した化合物と接触させる
請求項31記載の方法。 - (33)RNAを、Bが少なくとも1つの3^−−およ
び5^−−末端ヌクレオチドのデオキシリボース部分に
付着したリン酸基に直接的または間接的に付着した化合
物と接触させる請求項31記載の方法。 - (34)RNAを、Bが内位添加剤、イソウレア、カル
ボジイミド並びにN−ヒドロキシベンゾトリアゾールよ
りなる群から選択される化合物と接触させる請求項32
または33記載の方法。 - (35)RNAを、Bがメチルチオホスホネートである
化合物と接触させる請求項32記載の方法。 - (36)RNAを、Bがポリペプチドまたは蛋白質であ
る化合物と接触させる請求項32または33記載の方法
。 - (37)RNAを、式M(N)_XB(式中、Bは修飾
または未修飾2^−、3^−−ジデオキシリボースヌク
レオチドである)を有する少なくとも1つの配列を含む
化合物と接触させる請求項21記載の方法。 - (38)RNAを、Xが2または3よりなる群から選択
される化合物と接触させる請求項21記載の方法。 - (39)RNAを、式MN_3M(式中、Nは少なくと
も1つのグアニン、アデニン、シトシンまたはチミン部
分を含有するホスホジエステル結合未修飾2^−−デオ
キシヌクレオシド部分であり、Mはメチルホスホネート
含有デオキシヌクレオシドである)を有する少なくとも
1つの配列を含む修飾ヌクレオチド化合物と接触させる
請求項21記載の方法。 - (40)RNAと複合した場合にヌクレアーゼ耐性とR
NアーゼH基質を形成する能力との組合せを有するヌク
レオチド化合物を同定する方法であって、 (i)修飾ヌクレオチド化合物を調製し、 (ii)エキソおよびエンドヌクレアーゼ消化により、
相補的ヌクレオチド化合物とデュープレックスを形成す
ることができ電気泳動的に移動し得ることにより示され
るヌクレアーゼ耐性である(i)の修飾ヌクレオチド化
合物のものを選択し、 (iii)RNAアーゼH消化により、相補的RNAと
ハイブリダイズする場合にRNアーゼHの基質として作
用する(ii)のヌクレアーゼ耐性ヌクレオチド化合物
のものを選択することからなる方法。 - (41)標的RNAの機能を阻害するためにヒトまたは
動物を処置する方法であって、治療的に有効量の修飾ヌ
クレオチド化合物を投与して標的RNAの機能を阻害し
、この修飾ヌクレオチド化合物は、MN_3M、B(N
)_XM並びにM(N)_XBよりなる群から選択され
る少なくとも1つの成分を含むことからなる方法(式中
、Nは、ホスホジエステル結合修飾または未修飾2^−
−デオキシヌクレオシド部分であり、Mは、前記成分に
エンドヌクレアーゼ耐性を与え、少なくとも1つの修飾
または未修飾核酸塩基を含有する部分であり、Bは、付
着する末端にエキソヌクレアーゼ耐性を与える部分であ
り、Xは、少なくとも2の整数である)。 - (42)2以上の隣接ホスホジエステル結合2^−−デ
オキシヌクレオシドよりなる少なくとも1つのエキソヌ
クレアーゼおよびエンドヌクレアーゼ耐性成分を含有す
る化合物。 - (43)挿入物の核酸配列と特異的に結合してその機能
を阻害し得る請求項42記載の化合物。 - (44)相補的RNAと複合した場合、RNAに対しR
NアーゼH感受性を与える請求項42記載の化合物。 - (45)オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドか
らなる請求項42記載の化合物。 - (46)オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドが
修飾された請求項45記載の化合物。 - (47)修飾オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチ
ドがエンドヌクレアーゼ耐性を与える少なくとも1つの
部分およびエキソヌクレアーゼ耐性を与える少なくとも
1つの部分よりなる請求項46記載の化合物。 - (48)エンドヌクレアーゼ耐性付与部分が、修飾ヌク
レオチド成分にエキソヌクレアーゼ耐性をも与える請求
項47記載の化合物。 - (49)RNアーゼH基質として機能し得る化合物の部
分が、エキソヌクレアーゼ耐性を与える部分とエンドヌ
クレアーゼ耐性を与える部分との間に位置する請求項4
7記載の化合物。 - (50)2または3の隣接ホスホジエステル結合2^−
−デオキシヌクレオシドよりなるエンドおよびエキソヌ
クレアーゼ耐性配列を含有する化合物。
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|---|---|---|---|
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| US446,235 | 1989-12-04 |
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|---|---|
| JPH03190895A true JPH03190895A (ja) | 1991-08-20 |
Family
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|---|---|---|---|
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