JPH03199966A - 遊離型l鎖の測定方法 - Google Patents
遊離型l鎖の測定方法Info
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- JPH03199966A JPH03199966A JP33670689A JP33670689A JPH03199966A JP H03199966 A JPH03199966 A JP H03199966A JP 33670689 A JP33670689 A JP 33670689A JP 33670689 A JP33670689 A JP 33670689A JP H03199966 A JPH03199966 A JP H03199966A
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Landscapes
- Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、人の血液等の被検体中に存在する遊離型り鎖
(Free Light chain (以下、FLc
) )をff1l+定する方法に関する。
(Free Light chain (以下、FLc
) )をff1l+定する方法に関する。
従 来 技 術
り鎖とは、H鎖(lleavy chain )ととも
に免疫グロブリンを構成するものである。免疫グロブリ
ンは、H鎖及びL鎖をコードしたmRNAが細胞質に移
行し、H鎖とL鎖が核内で個々に構成され、4本領の免
疫グロブリン分子として産生されるものである。その後
、核外(細胞内)において各々がS−8結合で結びつい
て免疫グロブリンが生産される。
に免疫グロブリンを構成するものである。免疫グロブリ
ンは、H鎖及びL鎖をコードしたmRNAが細胞質に移
行し、H鎖とL鎖が核内で個々に構成され、4本領の免
疫グロブリン分子として産生されるものである。その後
、核外(細胞内)において各々がS−8結合で結びつい
て免疫グロブリンが生産される。
細胞の核中では、L鎖とH鎖は略々等量産生されること
が知られており、核外に放出された後、−時的に細胞内
に滞在してH鎖と結合する。そして、余剰のL鎖は細胞
外に放出される。なお、L鎖の滞在がH鎖の放出をコン
トロールしている可能性も示唆されている。
が知られており、核外に放出された後、−時的に細胞内
に滞在してH鎖と結合する。そして、余剰のL鎖は細胞
外に放出される。なお、L鎖の滞在がH鎖の放出をコン
トロールしている可能性も示唆されている。
FLcは、慢性関節リウマチ患者、結核患者等の血液中
において、高濃度で存在することが知られており、この
ようなFLcを測定することは、前ンの疾病の早期発見
の意義が大きい。また、FLcには腎毒性があり、腎不
全患者に多く認められることから、この種の患者にとっ
ても早期発見の意義は大きい。
において、高濃度で存在することが知られており、この
ようなFLcを測定することは、前ンの疾病の早期発見
の意義が大きい。また、FLcには腎毒性があり、腎不
全患者に多く認められることから、この種の患者にとっ
ても早期発見の意義は大きい。
従来の■、鎖の測定方法の代表的なものには、Sφll
ing法がある。この測定方法は、被検体をゲル濾過に
より免疫グロブリンL鎖(以下、IgLc)とFLcと
を分離し、にL鎖及びλL鎖に対して各々特異性を有す
る抗体を用い、かつアイソトープを使用する方法である
。
ing法がある。この測定方法は、被検体をゲル濾過に
より免疫グロブリンL鎖(以下、IgLc)とFLcと
を分離し、にL鎖及びλL鎖に対して各々特異性を有す
る抗体を用い、かつアイソトープを使用する方法である
。
発明が解決しようとする課題
f]Isφfling法では、前処理としてのゲル濾過
の工程が不可欠である。この工程は濾過に長時間を費や
し、その時間は一般的に7時間程度である。また、濾過
を行うための装置(5ephadexG−100)に磨
耗が発生するという問題もある。
の工程が不可欠である。この工程は濾過に長時間を費や
し、その時間は一般的に7時間程度である。また、濾過
を行うための装置(5ephadexG−100)に磨
耗が発生するという問題もある。
(2)1検体当り1装置を必要とし、長時間を要する問
題のほかに処理量にも制限がある。
題のほかに処理量にも制限がある。
(3)また、アイソトープを使用するために汚染物質を
生成し、特別な場所も必要となる。
生成し、特別な場所も必要となる。
発 明 の 目 的
本発明は、L鎖が細胞外に遊離した単体の形で放出され
、FLcのレセプター(receptor)が抗原性を
有することに着目した。そして、本発明の目的は、ある
種の抗体を使用して、このようなL鎖を比較的簡便で多
数検体を瞬時に測定できる方法を提供することである。
、FLcのレセプター(receptor)が抗原性を
有することに着目した。そして、本発明の目的は、ある
種の抗体を使用して、このようなL鎖を比較的簡便で多
数検体を瞬時に測定できる方法を提供することである。
課題を解決するための手段
本発明は、被検体に遊離型Ltt4のヒドゥンエピトー
プに対する抗体を加え、ネフェロメトリック法により前
記り鎖を測定することにより、前記課題を解決した。
プに対する抗体を加え、ネフェロメトリック法により前
記り鎖を測定することにより、前記課題を解決した。
作 用
本発明の測定の対象とすることができる被検体には、血
液、血清、尿、胸水、腹水、涙、汗、分泌物等がある。
液、血清、尿、胸水、腹水、涙、汗、分泌物等がある。
ヒドゥンエビトープとは、英語名をhidden ep
itoρeで表され、免疫グロブリン中のL鎖が遊離し
たときのみ抗原性を発揮する抗原決定基をいう。使用抗
体は、ヒドゥンエピトープと相補的に反応するもので、
代表的なものに、Bence−Jones Kappa
Light chian 、 Bence−Jone
sLamda Light chian (Gelc
o、 Diagnostic Inc、社II) 、R
abbit−anti−human Free Kap
pa chain。
itoρeで表され、免疫グロブリン中のL鎖が遊離し
たときのみ抗原性を発揮する抗原決定基をいう。使用抗
体は、ヒドゥンエピトープと相補的に反応するもので、
代表的なものに、Bence−Jones Kappa
Light chian 、 Bence−Jone
sLamda Light chian (Gelc
o、 Diagnostic Inc、社II) 、R
abbit−anti−human Free Kap
pa chain。
Rabbit−anti−human Free
Lamda chain(DAKOPATTS社製)
がある。
Lamda chain(DAKOPATTS社製)
がある。
被検体の中、特に、腎不全愚者等の被検体の中には、F
Lcが存在することは前述のとおりである。
Lcが存在することは前述のとおりである。
また、L鎖にはヒドゥンエピトープとして遊離したとき
に抗原性を発揮するレセプターの存在することも同様で
ある。このレセプターに対して上記のような抗体を使用
すると、被検体の溶液内沈降反応において抗原抗体複合
体が生成される。
に抗原性を発揮するレセプターの存在することも同様で
ある。このレセプターに対して上記のような抗体を使用
すると、被検体の溶液内沈降反応において抗原抗体複合
体が生成される。
次に、ネフェロメトリック法によって上記の抗原抗体複
合体を測定する。ネフエロメトリック法とは、発光ダイ
オードを光源とする波長的840nmの近赤外線光を用
い、上記抗原抗体複合物による散乱光を測定する比ろう
法である。具体的には、ネフェロメトリックアナライザ
ー(BehringNepherometer Ana
lyzer (以下、DNA ) ) が使用され、
一定時間の前後、例えば被検体への抗体の混和後10秒
後と12分後における散乱光の差(単位: bit )
からL鎖の濃度を算出する方法でちる。
合体を測定する。ネフエロメトリック法とは、発光ダイ
オードを光源とする波長的840nmの近赤外線光を用
い、上記抗原抗体複合物による散乱光を測定する比ろう
法である。具体的には、ネフェロメトリックアナライザ
ー(BehringNepherometer Ana
lyzer (以下、DNA ) ) が使用され、
一定時間の前後、例えば被検体への抗体の混和後10秒
後と12分後における散乱光の差(単位: bit )
からL鎖の濃度を算出する方法でちる。
以下、特に晰りがない限り、散乱光の差の測定時間は上
記の値に従うものとする。
記の値に従うものとする。
実 験 例
[試薬]
抗血清試薬はウサギ抗ヒトFLc抗体(に:Lot。
No、 058.λ: Lot No、 087. D
akopatts、 GlostrupDenmark
) をnormal rabbit serum
(Lot No、80401020、 Zymed、
San Francisco CA USA)でに:1
.8倍、λ:2.0倍に希釈調整した。標準蛋白はBe
nce−Jones蛋白(BJP) (g : Lo
t No、 EGI。
akopatts、 GlostrupDenmark
) をnormal rabbit serum
(Lot No、80401020、 Zymed、
San Francisco CA USA)でに:1
.8倍、λ:2.0倍に希釈調整した。標準蛋白はBe
nce−Jones蛋白(BJP) (g : Lo
t No、 EGI。
λ: Lot No、 E)II、 Ge1co 5h
revesport LA USA )を用いた。検体
の希釈及び反応液は、BNA専用試薬のN希釈液、N反
応緩衝液(Behring Werke。
revesport LA USA )を用いた。検体
の希釈及び反応液は、BNA専用試薬のN希釈液、N反
応緩衝液(Behring Werke。
Marburg FRG )を使用した。
[測定条件]
FLcの測定条件は、被検血清希釈倍数5倍、検体量1
00μm、抗血清量40μm、反応緩衝液量160μl
、反応時間12分間、標準曲線は2倍階段希釈で4.0
−0.125■g/diとした。
00μm、抗血清量40μm、反応緩衝液量160μl
、反応時間12分間、標準曲線は2倍階段希釈で4.0
−0.125■g/diとした。
[被検血清]
健常人血清及び透析患者血清、多発性骨11腫患者血清
を使用した。血清は測定直線まで一20℃に保存した。
を使用した。血清は測定直線まで一20℃に保存した。
[標準曲線]
標準蛋白BJPの蛋白量はプロティンアッセイ試薬(B
io−Rad Lab、、 Richmond CA
USA )により色素結合法で測定した。 10mg
/dlに調整したにBJP及びλ[lJPによる標準曲
線(4,0−0,125■g/dl)について5回測定
を行い、日差再現性を検討した。
io−Rad Lab、、 Richmond CA
USA )により色素結合法で測定した。 10mg
/dlに調整したにBJP及びλ[lJPによる標準曲
線(4,0−0,125■g/dl)について5回測定
を行い、日差再現性を検討した。
表1及び表2は、にBJP及びλBJPについて、各々
、平均値、標準偏差及び変動係数を示し、第1図はにB
JP標準曲線再現性、第2図はλBJP標準曲線再現性
を示している。表中、l1eanは平均値、SDは標準
偏差、Cvは変動係数である、に型では、0.5mg/
dl、0.25mg/dl 、及び0.125mg/d
iで変動係数が大であった。λ型では最低濃度0.12
5 mg/dlで高い変動係数であった。他は良好な再
現性であった。
、平均値、標準偏差及び変動係数を示し、第1図はにB
JP標準曲線再現性、第2図はλBJP標準曲線再現性
を示している。表中、l1eanは平均値、SDは標準
偏差、Cvは変動係数である、に型では、0.5mg/
dl、0.25mg/dl 、及び0.125mg/d
iで変動係数が大であった。λ型では最低濃度0.12
5 mg/dlで高い変動係数であった。他は良好な再
現性であった。
表 1
n=5
表
n=5
[希釈直線性]
濃度の異なる血清3検体とBJP溶液を用いてN希釈液
で希釈系列を作り直線性を検討した。希釈直線性は、g
FLcでは1−15mg/dlの範囲でγ=0.99
85±0.0009 (平均±ISD、n:4)、λF
Lcでは1.5−10w+g/diの範囲でγ= 0.
9986±0.0005 (平均±ISO,n=4)と
良好であった。これらの結果を第3図及び第4図に示す
。
で希釈系列を作り直線性を検討した。希釈直線性は、g
FLcでは1−15mg/dlの範囲でγ=0.99
85±0.0009 (平均±ISD、n:4)、λF
Lcでは1.5−10w+g/diの範囲でγ= 0.
9986±0.0005 (平均±ISO,n=4)と
良好であった。これらの結果を第3図及び第4図に示す
。
[再現性]
同時及び日差再現性は、濃度の異なる血清を試料として
検討した。同時再現性の結果を表3及び表4に示す。同
時再現性について5検体の血清を5回測定した。s:
FLc LtCV;2.1−9.2%、λFLcはCV
; 3.2−11.1%であった。
検討した。同時再現性の結果を表3及び表4に示す。同
時再現性について5検体の血清を5回測定した。s:
FLc LtCV;2.1−9.2%、λFLcはCV
; 3.2−11.1%であった。
日差再現性については4種試料を5回測定した。
その結果を表5及び表6に示す。λFLcが低濃度で高
い変動係数を示した。
い変動係数を示した。
表 3
表
に−FLc
表
λ−FLc
表
[添加口取試験]
濃度の異なる3検体の血清に、各種類の濃度のBJP溶
液を血清量の1/4量加えて、その回収率を求めた。そ
の結果を表7及び表8に示す。回収率は、pc FLc
が84.4−115.2%、λFLcが94.2−12
1.2%であった。
液を血清量の1/4量加えて、その回収率を求めた。そ
の結果を表7及び表8に示す。回収率は、pc FLc
が84.4−115.2%、λFLcが94.2−12
1.2%であった。
表
7
以下、本発明の方法により、2種の症状におけるFLc
を測定した。
を測定した。
[多発性骨髄腫症例における値]
多発性骨髄腫症例において、IgGK型8例。
IgGλ型6f!4、IgAK型2例、IgDλ型」例
、BJPに型1例の計18例につき測定した結果を表1 9に示す。IgLc濃度は■(鎖濃度を反映していると
考えられるが、Flcはそれ以外の動態をも反映してい
る様子がうかがおれる。
、BJPに型1例の計18例につき測定した結果を表1 9に示す。IgLc濃度は■(鎖濃度を反映していると
考えられるが、Flcはそれ以外の動態をも反映してい
る様子がうかがおれる。
表 9
+9D−λ
88
22
17
0.3
3.2
9.0
0.4
[血液透析療法中の患者血清における値]慢性腎炎(C
RF )で血液透析CHD) 療法前の5人と、)10
m法中0患者45人と、健常人45人(男20人、女2
5人)の合計95人のFLcを測定した。その結果を表
10に示す。
RF )で血液透析CHD) 療法前の5人と、)10
m法中0患者45人と、健常人45人(男20人、女2
5人)の合計95人のFLcを測定した。その結果を表
10に示す。
健常人では、にFLco、7±0.4mg/di (平
均士 2 1SD)、λFLc O,S±0.3+sg/di、
FLc−g /λ比2.1±0.4であった。g I
gLcは352±61mg/dl、λIgLcは205
±47mg/dl 、 IgLc −pc /λ比は1
.8±0.3であった。
均士 2 1SD)、λFLc O,S±0.3+sg/di、
FLc−g /λ比2.1±0.4であった。g I
gLcは352±61mg/dl、λIgLcは205
±47mg/dl 、 IgLc −pc /λ比は1
.8±0.3であった。
CRFで無FID療法では、にFLcは3.4±0.9
mg/dlであったが、λFLcは3.6±1.0mg
/diと健常人の約2倍値であった。HDでは透析年数
に関係なく、にFLcは約1.8倍濃度、λFLcは4
倍濃度であった。
mg/dlであったが、λFLcは3.6±1.0mg
/diと健常人の約2倍値であった。HDでは透析年数
に関係なく、にFLcは約1.8倍濃度、λFLcは4
倍濃度であった。
表 10
HD
CRF
(45)嬰竺旦旦3952131.9
456 2.5 2.8 0.1 110 61 0
.3(、+356 3.4 3.6 Co 336
174 2.0336 0.9 CD 0.1
81 56 0.2[本発明とSφllingとの
比較] 標準蛋白量を測定した0本発明ではBradfordの
dje−binding protejn assay
で。
.3(、+356 3.4 3.6 Co 336
174 2.0336 0.9 CD 0.1
81 56 0.2[本発明とSφllingとの
比較] 標準蛋白量を測定した0本発明ではBradfordの
dje−binding protejn assay
で。
Sφllingではmodified Folin p
rocedureで測定した。
rocedureで測定した。
Fol in法による標準蛋白量と、die−bind
ingprotein assayによる標!lI蛋白
量を280nmにおける吸光度(E1%/1cm= 1
2.4)とを対比した結果を表11に示す。その結果、
Sφllingの標準蛋白量は本発明のによる標準蛋白
量のに20.7倍、121.0倍であった。
ingprotein assayによる標!lI蛋白
量を280nmにおける吸光度(E1%/1cm= 1
2.4)とを対比した結果を表11に示す。その結果、
Sφllingの標準蛋白量は本発明のによる標準蛋白
量のに20.7倍、121.0倍であった。
表 11
die−biding
発 明 の 効 果
(1)本発明によると、被検体の前処理が不要となる。
従って、この観点から操作が容易である。
(2)抗体の混和後12分前後からBNAによる測定が
開始され、1時間径度で測定が完了する。
開始され、1時間径度で測定が完了する。
13) BNAは250検体を一時に測定する能力があ
り、上記単位当りの測定時間も勘案すると、短時間のう
ちに大量の検体を測定することができる。また、従来の
ようにゲル濾過の手法を用いないことから操作も簡便で
ある。
り、上記単位当りの測定時間も勘案すると、短時間のう
ちに大量の検体を測定することができる。また、従来の
ようにゲル濾過の手法を用いないことから操作も簡便で
ある。
(4)本発明は、腎不全患者のみならず、多発性骨11
腫、血液透析患者例、さらには健常人も対象とすること
ができることを確認した。
腫、血液透析患者例、さらには健常人も対象とすること
ができることを確認した。
(51BJ蛋白を用いた希釈直線性も、g FLc(1
−15mg/di範囲)でy = 0.9985、λF
Lc(1,5−10mg/dl範囲)でγ= 0.99
86と良好であった。
−15mg/di範囲)でy = 0.9985、λF
Lc(1,5−10mg/dl範囲)でγ= 0.99
86と良好であった。
(6)再現性について、同時ではg FLc CV:2
.I−9,2%、λFLc CV:3.2−11.1%
、日差ではにFLcCV:2.7−11.8%、L F
Lc CV:2.8−20.8%であった。
.I−9,2%、λFLc CV:3.2−11.1%
、日差ではにFLcCV:2.7−11.8%、L F
Lc CV:2.8−20.8%であった。
(7)添加回収試験での口取率は、にFLc 84.4
−115.2%、λFLc 94.2−121.2%で
あった。
−115.2%、λFLc 94.2−121.2%で
あった。
第1図はにFLc標準曲線再現性を示すグラフ、第2図
はλFLc標準曲線再現性を示すグラフ、第 5 3図は種々の被検体におけるにFLcの希釈直線性を示
すグラフ、第4図は種々の被検体におけるλFLcの希
釈直線性を示すグラフである。 6 第 3 図 希釈試験(KFLc) 第 図
はλFLc標準曲線再現性を示すグラフ、第 5 3図は種々の被検体におけるにFLcの希釈直線性を示
すグラフ、第4図は種々の被検体におけるλFLcの希
釈直線性を示すグラフである。 6 第 3 図 希釈試験(KFLc) 第 図
Claims (1)
- 被検体に遊離型L鎖のヒドゥンエピトープに対する抗体
を加え、ネフェロメトリック法により前記L鎖を測定す
る方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33670689A JPH03199966A (ja) | 1989-12-27 | 1989-12-27 | 遊離型l鎖の測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP33670689A JPH03199966A (ja) | 1989-12-27 | 1989-12-27 | 遊離型l鎖の測定方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH03199966A true JPH03199966A (ja) | 1991-08-30 |
Family
ID=18301952
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP33670689A Pending JPH03199966A (ja) | 1989-12-27 | 1989-12-27 | 遊離型l鎖の測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH03199966A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005062044A1 (ja) * | 2003-11-19 | 2005-07-07 | Yamasa Corporation | ベンスジョーンズ蛋白質の検定法 |
| JP2008528995A (ja) * | 2005-01-27 | 2008-07-31 | ザ バインディング サイト リミテッド | 悪性プラズマ細胞疾患の検出又はモニタリング方法 |
| US10845362B2 (en) | 2010-07-19 | 2020-11-24 | The Binding Site Group Limited | Competition assay |
-
1989
- 1989-12-27 JP JP33670689A patent/JPH03199966A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005062044A1 (ja) * | 2003-11-19 | 2005-07-07 | Yamasa Corporation | ベンスジョーンズ蛋白質の検定法 |
| US8415110B2 (en) | 2005-01-25 | 2013-04-09 | The Binding Site Group Limited | Method of detecting or monitoring a malignant plasma cell disease |
| JP2008528995A (ja) * | 2005-01-27 | 2008-07-31 | ザ バインディング サイト リミテッド | 悪性プラズマ細胞疾患の検出又はモニタリング方法 |
| US10845362B2 (en) | 2010-07-19 | 2020-11-24 | The Binding Site Group Limited | Competition assay |
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