JPH0329395B2 - - Google Patents

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JPH0329395B2
JPH0329395B2 JP57138335A JP13833582A JPH0329395B2 JP H0329395 B2 JPH0329395 B2 JP H0329395B2 JP 57138335 A JP57138335 A JP 57138335A JP 13833582 A JP13833582 A JP 13833582A JP H0329395 B2 JPH0329395 B2 JP H0329395B2
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cysteine
atc
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cystine
ferm
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    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は微生物の作用を利用してL−システイ
ンを効率良く生産する方法に関する。 従来、L−システイン(以下、システインと略
す)およびL−シスチン(以下、シスチンと略
す)は毛髪等のシステインやシスチンの含量の高
い天然物を鉱酸で加水分解し、生じたアミノ酸混
液よりシスチンを分離取得し、システインはこの
ようにして得られたシスチンを還元して製造され
ていた。 これに対し、本出願人においては既に、2−ア
ミノ−チアゾリン−4−カルボン酸(以下、
ATCと記す。)を原料とし、微生物の作用を利用
してシステイン又はシスチンを製造する方法(特
開昭51−70881、51−54983及び特公昭54−2272号
公報参照)を開発した。 この方法はL−システインの工業生産に適した
方法であるが、ATCのシステインへの水解反応
は反応液中に生成されるシステインによつて強く
阻害されるためシステインを直接得ることができ
ない。そこでこの方法に於てはATCを水解して
システインを生成する反応とシステインのシスチ
ンへの酸化反応を同時に行い、阻害作用のないシ
スチンを生成させ、生成したシスチンを還元して
システインを得る方法を採用せざるを得ない。従
つて、この製造法は工程が長く煩雑であり、かつ
収率の面でも必ずしも満足できるとはいえないの
で、これらの点について更に改善が望まれてい
た。 そこで本発明者等はATCから効率良くシステ
インを生成する方法を開発すべく鋭意研究を重ね
た結果、ATCからシステイン又はシスチンを生
成する能力を有する微生物をアセトンの存在下で
ATCに作用せしめると2,2−ジメチルチアゾ
リン−4−カルボン酸(以下、DTCと略す)が
収率良く生成され、このDTCを酸性下で水解す
ることによりシステインを短時間で、かつ高収率
で生成されることを発見した。本発明はこの発見
に基づいて完成されたものである。即ち、本発明
は2−アミノ−チアゾリン−4−カルボン酸を水
解してシステイン又はシスチンを生成する能力を
有する微生物をアセトンの存在下でATCに作用
させてDTCを生成せしめ、該DTCを酸性条件下
で水解してシステインを生成せしめることを特徴
とするシステインの製造方法に係るものである。 本発明で使用する微生物はATCを水解してシ
ステイン又はL−シスチンを生成する能力を有す
る微生物であり、例えば特開昭51−54983号、特
開昭51−70881号及び特公昭54−2272号公報に記
載されているアクロモバクター、アリカリゲネ
ス、バチルス、ブレビバクテリウム、エンテロバ
クター、エルビニア、エツシエリヒア、フラボバ
クテリウム、ミクロコツカス、ミコプラナ、シユ
ードモナス、サルシナあるいはセラチアの各属に
属し、ATCを水解してシステイン又はシスチン
を生成する能力を有する微生物であり、より具体
的に例示するならば次の如き菌株があげられる: サルシナ・ルテア(Sarcina lutea) ATCC 272 アクロモバクター・デルマルバア
(Achromobacter delmarvae) FERM−P3483 アルカリゲネス・デニトリフイカシス
(Alcaligenes denitrificans) ATCC 15173 バチルス・ブレビス(Bacillus brevis)
ATCC 8185 ブレビバクテリウム・フラバム
(Brevibacterium flavum) ATCC 13826 エンテロバクター・アエロゲネス
(Enterobacter aerogenes)
FERM P−2764、FERM BP−321 エルビニア・カロトボラ(Erwimia
carotovora) FERM−P2766 シユードモナス・チアゾリノフイラム
(Pseudomonas thiazolinophilum)
FERM P−2810、FERM BP−322 シユードモナス・デスモリチカ(Pseudomonas
desmolytica)
FERM P−2816、FERM BP−323 エツシエリヒア・ユリ(Escherichia coli)
FERM−P2763 ミクロコツカス・ソドネンシス(Micrococcus
sodonensis) ATCC 11880 ミコプラナ・ジモルフアー(Mycoplana
dimorpha) ATCC 4249 セラチア・マルセツセンス(Serratia
marcescens) FERM−P2765 フラボバクテリウム・アシドフイクム
(Flavobacterium acidoficum) ATCC 8366 シユードモナス・オバリス(Pseudomonas
ovlis) FERM P−2762、FERM BP−1328 等が挙げることができる。 微生物の培養するための培地は炭素源、窒素
源、無機イオン、更に要すれば有機微量栄養素を
適宜含有する培地であり、例えば、炭素源として
グルコース、シユクロース、キシロース、糖蜜等
の糖類、酢酸等の有機酸、エタノール、グリセロ
ール、メタノール等のアルコール類など、窒素源
として硫酸アンモニウム、塩化アンモニウムな
ど、有機栄養源として、酵母エキス、ペプトン、
肉エキス、コーン・ステイープリカーなど、無機
イオンとして、マグネシウム、鉄、マンガン、カ
リウム、ナトリウム、リン酸などのイオンが適宜
用いられる。 微生物の培養法は常法に従つて行えば良く、上
記培地のPHを6〜9とし、20〜40℃で好気的に培
養すれば良い。 培養に際してはATCを少量添加することが望
ましくATCの水解活性の高い微生物菌体が得ら
れる。本発明の方法では、このようにして得られ
た微生物を酵素源として使用する、酵素源として
は、このようにして得られた培養液、培養液から
分離した分離菌体、洗滌生菌体、凍結乾燥体、ア
セトン乾燥菌体、物理的、化学的もしくは生化学
的に破壊された菌体、抽出液、粗精製物、精製
物、精製蛋白標晶、または菌体もしくは精製処理
物の固定化物などが酵素源として使用される。 システインの原料であるATCは合成法にて供
給されるD−体、L−体、ラセミ体のいずれもが
使用される。 基質濃度は、バッチ式、連続式によつても異な
るが、バツチ式では一般に水性媒質中0.1〜30%、
好ましくは0.5〜10%程度で連続式では、これよ
りやや濃度を低下させた方が好ましい。 反応はアセトンを2〜40%含む水溶液中で行わ
れ、反応液にヒドロキシルアミンやセミカルバチ
ドを添加することによつて収率を向上することが
できる。 反応温度は15〜60℃、好ましくは30〜50℃、PH
は6〜10、好ましくは7.0〜9.5の範囲が良い。 このような条件下でATCに微生物を作用させ
るとATCはシステインに水解され反応液中のア
セトンと縮合してDTCを生成する、DTCは酸性
条件下で速やかにかつ定量的にシステインに水解
される。 ATCから生成されるDTCは、システインと異
り、ATCのシステインへの水解反応を全く阻害
しないので、DTCの反応収率即ちシステインの
収率が高く90%以上に達し、かつATCからDTC
への反応時間は短かく、1〜25時間でシステイン
を製造することができる。これは公知のATCか
らシスチンを製造する場合2〜50時間を要するの
に比べると約1/2に短縮される。更に、従来法で
は生成されるシステインが有害酵素により分解さ
れ硫化水素の発生を伴う恐れがあつたが、本発明
の方法では、このような硫化水素の発生恐れはな
く、この点に於ても工業生産する上で有利といえ
る。 DTCを酸性条件下で水解した後の水解液から
システインの採取はアセトンを除去した後、カチ
オン交換樹脂を用いる方法、晶析法等公知のシス
テインの分離方法により採取される。 システインの定量はカチオン交換樹脂を用いる
高速液体クロマトグラフイーあるいは乳酸菌(ロ
イコノストツク・チトロボラムATCC 8081)を
用いる微生物定量法によつて行われる。 以下、実施例にて説明する。 実施例 1 第1表に示す組成の培地を調製し、500ml容振
盪フラスコに50ml宛分注し、120℃にて10分間加
熱した。 第1表 培地組成(PH7.0) 成 分 含 量 グリセロール 1.0% 酵母エキス 0.5% ペプトン 0.5% 肉エキス 0.5% NaCl 0.5% DL−ATC 0.2% この培地にシユードモナス・デスモリチカAJ
3868 FERM P−2816、FERM BP−323を接種
し、30℃にて24時間振盪培養した。培養液を遠心
分離して菌体を採取し、これを下記組成の基質溶
液に添加し、30℃に保持し時々軽くかきまぜて16
時間反応を行つた。 第2表 基質溶液の組成(PH8.0) 成 分 含 量 DL−ATC 2.0g/dl KH2PO4 1.0g/dl ヒドロキシルアミン塩酸塩 0.15g/dl アセトン 0〜50% 反応終了後、反応液に塩酸を加えてPHを3.0に
調節してシステインを生成せしめ、反応液中のシ
ステインを定量した。その結果を第3表に示す。
The present invention relates to a method for efficiently producing L-cysteine using the action of microorganisms. Conventionally, L-cysteine (hereinafter abbreviated as cysteine) and L-cystine (hereinafter abbreviated as cystine) have been produced by hydrolyzing cysteine such as hair or natural products with a high cystine content with mineral acids, and using the resulting amino acid mixture to obtain cystine. Cysteine was produced by reducing the cystine thus obtained. In contrast, the present applicant has already developed 2-amino-thiazoline-4-carboxylic acid (hereinafter referred to as
It is written as ATC. ) as a raw material and a method for producing cysteine or cystine using the action of microorganisms (see JP-A-51-70881, JP-A-51-54983 and JP-B-Sho 54-2272). Although this method is suitable for the industrial production of L-cysteine, cysteine cannot be directly obtained because the hydrolysis reaction of ATC to cysteine is strongly inhibited by cysteine produced in the reaction solution. Therefore, in this method, the reaction of hydrolyzing ATC to generate cysteine and the oxidation reaction of cysteine to cystine are performed simultaneously to generate cystine that has no inhibitory effect, and then the generated cystine is reduced to obtain cysteine. I have no choice but to adopt it. Therefore, this production method requires long and complicated steps and is not necessarily satisfactory in terms of yield, so further improvements have been desired in these respects. Therefore, the present inventors conducted intensive research to develop a method for efficiently producing cysteine from ATC, and found that microorganisms capable of producing cysteine or cystine from ATC were used in the presence of acetone.
When reacted with ATC, 2,2-dimethylthiazoline-4-carboxylic acid (hereinafter abbreviated as DTC) is produced in good yield, and by hydrolyzing this DTC under acidic conditions, cysteine can be produced in a short time and in high yield. It was discovered that it is generated by The present invention was completed based on this discovery. That is, in the present invention, a microorganism capable of hydrolyzing 2-amino-thiazoline-4-carboxylic acid to produce cysteine or cystine is allowed to act on ATC in the presence of acetone to produce DTC, and the DTC is then subjected to acidic conditions. The present invention relates to a method for producing cysteine, which is characterized in that cysteine is produced by hydrolysis below. The microorganism used in the present invention is a microorganism that has the ability to hydrolyze ATC to produce cysteine or L-cystine, and is disclosed in, for example, JP-A-51-54983, JP-A-51-70881, and JP-B-Sho 54-2272. It belongs to the genera Achromobacter, Allicaligenes, Bacillus, Brevibacterium, Enterobacter, Erwinia, Etschierichia, Flavobacterium, Micrococcus, Mycoplana, Pseudomonas, Sarcina, or Serratia, which are listed in the official publication, and hydrolyzes ATC to produce cysteine. or microorganisms that have the ability to produce cystine, and more specific examples include the following strains: Sarcina lutea ATCC 272 Achromobacter delmarvae FERM-P3483 Alcaligenes・Alcaligenes denitrificans ATCC 15173 Bacillus brevis
ATCC 8185 Brevibacterium flavum ATCC 13826 Enterobacter aerogenes
FERM P-2764, FERM BP-321 Erwimia carotovora
carotovora) FERM−P2766 Pseudomonas thiazolinophilum
FERM P-2810, FERM BP-322 Pseudomonas desmolytica
desmolytica)
FERM P-2816, FERM BP-323 Escherichia coli
FERM−P2763 Micrococcus sodonensis
sodonensis ATCC 11880 Mycoplana dimorpha
dimorpha) ATCC 4249 Serratia marcetuscens (Serratia
marcescens) FERM−P2765 Flavobacterium acidoficum ATCC 8366 Pseudomonas
ovlis) FERM P-2762, FERM BP-1328, etc. A medium for culturing microorganisms is a medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic ions, and, if necessary, organic micronutrients. For example, as a carbon source, sugars such as glucose, sucrose, xylose, and molasses, acetic acid, etc. organic acids, alcohols such as ethanol, glycerol, and methanol; nitrogen sources such as ammonium sulfate and ammonium chloride; organic nutritional sources such as yeast extract, peptone,
Ions such as magnesium, iron, manganese, potassium, sodium, and phosphoric acid are appropriately used as inorganic ions in meat extracts, corn staple liquor, and the like. The microorganisms may be cultured according to a conventional method, and the pH of the medium may be adjusted to 6 to 9, and the microorganisms may be cultured aerobically at 20 to 40°C. During cultivation, it is desirable to add a small amount of ATC to obtain microbial cells with high ATC water-degrading activity. In the method of the present invention, the microorganism thus obtained is used as an enzyme source. As the enzyme source, the culture solution obtained in this way, isolated bacterial cells isolated from the culture solution, washed viable bacterial cells, Freeze-dried product, acetone-dried bacterial cells, physically, chemically or biochemically destroyed bacterial cells, extracts, crudely purified products, purified products, purified protein standards, or immobilized bacterial cells or purified products etc. are used as enzyme sources. ATC, which is a raw material for cysteine, can be used in any of the D-form, L-form, and racemic form, which are supplied by a synthetic method. The substrate concentration differs depending on whether it is a batch method or a continuous method, but in a batch method, it is generally 0.1 to 30% in the aqueous medium.
Preferably, it is about 0.5 to 10%, and in a continuous system, it is preferable to lower the concentration slightly. The reaction is carried out in an aqueous solution containing 2 to 40% acetone, and the yield can be improved by adding hydroxylamine or semicarbatide to the reaction solution. Reaction temperature is 15-60℃, preferably 30-50℃, PH
is preferably in the range of 6 to 10, preferably 7.0 to 9.5. When microorganisms act on ATC under these conditions, ATC is hydrolyzed to cysteine and condensed with acetone in the reaction solution to produce DTC. DTC is rapidly and quantitatively hydrolyzed to cysteine under acidic conditions. . Unlike cysteine, DTC produced from ATC does not inhibit the hydrolysis reaction of ATC to cysteine at all, so the reaction yield of DTC, that is, the yield of cysteine, is high, reaching over 90%, and the DTC is converted from ATC to cysteine.
The reaction time is short, and cysteine can be produced in 1 to 25 hours. This time is reduced to about 1/2 compared to the 2 to 50 hours required when producing cystine from ATC, which is known in the art. Furthermore, in the conventional method, there was a risk that the produced cysteine would be decomposed by harmful enzymes, resulting in the generation of hydrogen sulfide, but in the method of the present invention, there is no risk of generation of hydrogen sulfide. It can be said to be advantageous for industrial production. Cysteine is collected from the aqueous solution obtained by hydrolyzing DTC under acidic conditions by removing acetone and then using a known cysteine separation method such as a method using a cation exchange resin or a crystallization method. Cysteine is quantified by high performance liquid chromatography using a cation exchange resin or by a microbial assay using lactic acid bacteria (Leuconostoc titroborum ATCC 8081). Examples will be described below. Example 1 A culture medium having the composition shown in Table 1 was prepared, and 50 ml was dispensed into a 500 ml shaking flask, followed by heating at 120° C. for 10 minutes. Table 1 Medium composition (PH7.0) Component content Glycerol 1.0% Yeast extract 0.5% Peptone 0.5% Meat extract 0.5% NaCl 0.5% DL-ATC 0.2% Pseudomonas desmolytica AJ
3868 FERM P-2816 and FERM BP-323 were inoculated and cultured with shaking at 30°C for 24 hours. The culture solution was centrifuged to collect bacterial cells, which were added to a substrate solution with the following composition, kept at 30℃, and stirred occasionally.
A time reaction was performed. Table 2 Composition of substrate solution (PH8.0) Component content DL -ATC 2.0g/dl KH 2 PO 4 1.0g/dl Hydroxylamine hydrochloride 0.15g/dl Acetone 0-50% After the reaction is completed, the reaction solution is Hydrochloric acid was added to adjust the pH to 3.0 to generate cysteine, and the amount of cysteine in the reaction solution was quantified. The results are shown in Table 3.

【表】 実施例 2 実施例1の方法で得られた湿菌体5.0を凍結乾
燥したもの、あるいは湿菌体5.0を0.1M、PH7.0の
リン酸緩衝液50mlに懸濁し、これに超音波処理
(トミー精工社製LIR−200P型、20KC、5分間)
したもの、更には湿菌体5.0gを脱イオン水20ml
に懸濁し、これにアクリルアミド3.8gとメチレ
ンビスアクリルアミド225mgを加え、N2ガスを流
して酸素を除去し、過硫酸アンモニウム17.5mg及
びN′,N′−ジメチルアミノプロピオニトリル40μ
gを加えて固定化した固定化物を夫夫調製し、第
2表に示す組成の基質溶液(アセトンの量は5.0
%)100mlに加え、30℃に16時間保持して酵素反
応を行つた。反応終了後各反応液より不溶性物質
を除去し、PH3.0に調節してシステインを生成せ
しめ、システインを定量した。その結果を第4表
に示す。 第4表 システインの生成量 菌体処理物 (g/dl) 凍結乾燥標品 1.3 超音波処理標品 1.4固定化標品 1.2 実施例 3 第5表に示す微生物を第1表に示す培地で実施
例1の方法に従つて培養した。夫々の培養液を遠
心分離し、湿菌体5.0gを取つてこれを第2表に
示す基質溶液(アセトン量は5.0%)100mlに懸濁
し、30℃に24時間保持して反応を行つた。反応終
了後反応液のPHを3.0に調節し、システインを生
成せしめ、システイン生成量を求めた。その結果
を第5表に示す。
[Table] Example 2 Freeze-dry the wet bacterial cells 5.0 obtained by the method of Example 1, or suspend the wet bacterial cells 5.0 in 50 ml of 0.1 M, pH 7.0 phosphate buffer, and add super Sonication treatment (Tomy Seiko LIR-200P model, 20KC, 5 minutes)
In addition, add 5.0 g of wet bacterial cells to 20 ml of deionized water.
3.8 g of acrylamide and 225 mg of methylenebisacrylamide were added to this, oxygen was removed by flowing N 2 gas, and 17.5 mg of ammonium persulfate and 40 μ of N′,N′-dimethylaminopropionitrile were added.
Prepare the immobilized product by adding 5.0 g of
%) was added to 100 ml and kept at 30°C for 16 hours to perform an enzyme reaction. After the reaction was completed, insoluble substances were removed from each reaction solution, the pH was adjusted to 3.0 to generate cysteine, and cysteine was quantified. The results are shown in Table 4. Table 4 Production amount of cysteine ( g/dl) Freeze-dried sample 1.3 Ultrasonication sample 1.4 Fixed sample 1.2 Example 3 The microorganisms shown in Table 5 were used in the culture medium shown in Table 1. Cultivation was performed according to the method of Example 1. Each culture solution was centrifuged, 5.0 g of wet bacterial cells were suspended in 100 ml of the substrate solution shown in Table 2 (acetone amount: 5.0%), and the reaction was carried out by keeping at 30°C for 24 hours. . After the reaction was completed, the pH of the reaction solution was adjusted to 3.0 to generate cysteine, and the amount of cysteine produced was determined. The results are shown in Table 5.

【表】【table】

【表】【table】

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 2−アミノ−チアゾリン−4−カルボン酸を
水解してL−システイン又はL−シスチンを生成
する能力を有する微生物を、アセトンの存在下で
2−アミノ−チアゾリン−4−カルボン酸に作用
させて2,2−ジメチルチアゾリジン−4−カル
ボン酸を生成せしめ、該2,2−ジメチルチアゾ
リン−4−カルボン酸を酸性条件下で水解してL
−システインを生成せしめることを特徴とするL
−システインの製造法。
1 A microorganism capable of hydrolyzing 2-amino-thiazoline-4-carboxylic acid to produce L-cysteine or L-cystine is allowed to act on 2-amino-thiazoline-4-carboxylic acid in the presence of acetone. 2,2-dimethylthiazolidine-4-carboxylic acid is produced, and the 2,2-dimethylthiazoline-4-carboxylic acid is hydrolyzed under acidic conditions to produce L.
- L characterized by producing cysteine
- Method for producing cysteine.
JP57138335A 1982-08-09 1982-08-09 Preparation of l-cysteine Granted JPS5928485A (en)

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DE8383107857T DE3376341D1 (en) 1982-08-09 1983-08-09 Method for producing 2-substituted-thiazolidine-4-carboxylic acids
EP19830107857 EP0101052B1 (en) 1982-08-09 1983-08-09 Method for producing 2-substituted-thiazolidine-4-carboxylic acids

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