JPH0330691A - 形質転換酵母細胞からb型肝炎表面抗原を単離する方法 - Google Patents
形質転換酵母細胞からb型肝炎表面抗原を単離する方法Info
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- JPH0330691A JPH0330691A JP15662489A JP15662489A JPH0330691A JP H0330691 A JPH0330691 A JP H0330691A JP 15662489 A JP15662489 A JP 15662489A JP 15662489 A JP15662489 A JP 15662489A JP H0330691 A JPH0330691 A JP H0330691A
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
免呼匹11
本発明は形質転換酵母細胞からB型肝炎表面抗原(HB
sAfI)を単離する方法に係る。
sAfI)を単離する方法に係る。
B型肝炎表面抗原(HBsAg)タンパク質は感染ヒト
血漿から精製できB型肝炎ウィルス(HBV>感染の予
防ワクチンとして使用し得ることが知られている。 H
BsAy遺伝子は血漿依存性を軽減するために大腸菌、
酵母細胞及び哺乳類細胞中でクローニングされ発現され
てきた。酵母細胞、例えばSaccharom ces
cerevisiaeから22nmの粒子として回収
されたHBsAgの合成はValenzuela等、N
ature、298:347〜350(1982) ;
Hitzeman等、Nucleic Ac1dRes
earch、11:2745〜2フロ3(1983)及
びMi yanohara等、PNAS、80:1〜5
(1983)に報告されている。
血漿から精製できB型肝炎ウィルス(HBV>感染の予
防ワクチンとして使用し得ることが知られている。 H
BsAy遺伝子は血漿依存性を軽減するために大腸菌、
酵母細胞及び哺乳類細胞中でクローニングされ発現され
てきた。酵母細胞、例えばSaccharom ces
cerevisiaeから22nmの粒子として回収
されたHBsAgの合成はValenzuela等、N
ature、298:347〜350(1982) ;
Hitzeman等、Nucleic Ac1dRes
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びMi yanohara等、PNAS、80:1〜5
(1983)に報告されている。
形質転換されたSaccharon ces cere
visiaeパン酵母)によって産生された組換えHB
sAgタンパク質粒子は米国特許第4,707,542
号に記載のように単離されている0通常は、発現された
HBsAgを細胞ホモジネートから分離し精製するため
に、プロテアーゼインヒビターであるフェニルメチルス
ルホニルフルオリド(PMSF)及び非イオン性界面活
性剤であるポリオキシエチレン(9,5)−p−t−オ
クチル−フェノール(Triton(登録商標)X−1
00)を細胞ホモジネートに添加する0次に、チオシア
ン酸カリウムもしくはナトリウム(KSCNもしくはN
a5CN)または尿素のごときカオトロピック剤を使用
して種々の形態の表面抗原タンパク質集塊を形成させ、
次いで溶融シリカに吸着、ボレートN−モルホリノプロ
パンスルホン酸(MOPS)バッファによる溶出、ブチ
ルアガロースを用いる疎水性相互作用クロマトグラフィ
ー、ジビニルベンゼン架橋ポリスチレンビーズ(八mb
erlite XA[l−2樹脂)による処理、限外−
過、セファロース6Bクロマトグラフイー、並びに、イ
ムノアフィニティー及びECTI(AMセルロースクロ
マトグラフィー等で精製処理する。
visiaeパン酵母)によって産生された組換えHB
sAgタンパク質粒子は米国特許第4,707,542
号に記載のように単離されている0通常は、発現された
HBsAgを細胞ホモジネートから分離し精製するため
に、プロテアーゼインヒビターであるフェニルメチルス
ルホニルフルオリド(PMSF)及び非イオン性界面活
性剤であるポリオキシエチレン(9,5)−p−t−オ
クチル−フェノール(Triton(登録商標)X−1
00)を細胞ホモジネートに添加する0次に、チオシア
ン酸カリウムもしくはナトリウム(KSCNもしくはN
a5CN)または尿素のごときカオトロピック剤を使用
して種々の形態の表面抗原タンパク質集塊を形成させ、
次いで溶融シリカに吸着、ボレートN−モルホリノプロ
パンスルホン酸(MOPS)バッファによる溶出、ブチ
ルアガロースを用いる疎水性相互作用クロマトグラフィ
ー、ジビニルベンゼン架橋ポリスチレンビーズ(八mb
erlite XA[l−2樹脂)による処理、限外−
過、セファロース6Bクロマトグラフイー、並びに、イ
ムノアフィニティー及びECTI(AMセルロースクロ
マトグラフィー等で精製処理する。
種々の疎水性基を固定用担体として使用する改良された
疎水性相互作用クロマトグラフィーは欧州特許第017
9485^2号に報告されている。また、亭 米国特許第4,624,918%号は、濃縮、沈降、イ
ムノアフィニティーカラム、アニオン交換及びゲル透過
クロマトグラフィーによって組換え細胞培養物からHB
sAgを精製する方法が記載されている。
疎水性相互作用クロマトグラフィーは欧州特許第017
9485^2号に報告されている。また、亭 米国特許第4,624,918%号は、濃縮、沈降、イ
ムノアフィニティーカラム、アニオン交換及びゲル透過
クロマトグラフィーによって組換え細胞培養物からHB
sAgを精製する方法が記載されている。
本発明の目的は、ポリエチレングリコールによる選択的
沈降(precipitation)及び後均質化(p
osthomogen 1zat 1on)を用いるこ
とによってHBsAyの単離方法を改良することである
。
沈降(precipitation)及び後均質化(p
osthomogen 1zat 1on)を用いるこ
とによってHBsAyの単離方法を改良することである
。
11へ11
本発明の目的は、形質転換酵母細胞から)l B s
Agタンパク質精粒子分離及び回収する改良方法を提供
することである。
Agタンパク質精粒子分離及び回収する改良方法を提供
することである。
本発明の別の目的は、インヒビターまたは界面活性剤を
添加することなく細胞ホモジネートからHBsAyを抽
出する方法を提供することである。
添加することなく細胞ホモジネートからHBsAyを抽
出する方法を提供することである。
本発明の更に別の目的は、より迅速でより経済的な高純
度HBsAgの効率的な回収方法を提供することである
。
度HBsAgの効率的な回収方法を提供することである
。
本発明は、形質転換酵母細胞により産生されたHBsA
9タンパク質粒子が質重子エチレングリコール(PEG
)による選択的沈降及び後均質化によって細胞ホモジネ
ートから高収率で選択的に回収されるという知見に基づ
く、使用したPEGは透析濾過(diariltrat
ion)及びゾーン超遠心によって容易に除去できる。
9タンパク質粒子が質重子エチレングリコール(PEG
)による選択的沈降及び後均質化によって細胞ホモジネ
ートから高収率で選択的に回収されるという知見に基づ
く、使用したPEGは透析濾過(diariltrat
ion)及びゾーン超遠心によって容易に除去できる。
f&均質化によって混合が容易になりまた以降の処理
手順が簡単になる。このため、前処理操作工程を減らし
てtlBsAgタンパク質の回収効率を向上させること
が可能である。更に精製することによって高純度のfl
BsAglBsAgタンバクられる。
手順が簡単になる。このため、前処理操作工程を減らし
てtlBsAgタンパク質の回収効率を向上させること
が可能である。更に精製することによって高純度のfl
BsAglBsAgタンバクられる。
1乱r支1
本発明は形質転換酵母細胞からB型肝炎表面抗原(IB
sAg)を単離する方法であって、(a)前記細胞を破
壊し均質化して細胞ホモジネートを調製する段階と、 (b)(細胞抽出物重量に対して)1〜10重量%のポ
リエチレングリコール(PEG)を添加することによる
順次沈降と後均質化とを含む抽出によって前記細胞ホモ
ジネートから前記タンパク質を分離する段階と、 (c)前記HBs八gへンパク質をより高度に精製する
段階とを含むことを特徴とする方法を提供する。
sAg)を単離する方法であって、(a)前記細胞を破
壊し均質化して細胞ホモジネートを調製する段階と、 (b)(細胞抽出物重量に対して)1〜10重量%のポ
リエチレングリコール(PEG)を添加することによる
順次沈降と後均質化とを含む抽出によって前記細胞ホモ
ジネートから前記タンパク質を分離する段階と、 (c)前記HBs八gへンパク質をより高度に精製する
段階とを含むことを特徴とする方法を提供する。
組換えB型肝炎表面抗原タンパク粒子は、形質転換酵母
細胞、特にSaccharom ces eerevi
siaeによって合成される。 IBsAyタンパク質
をコードするDNA分子を含む組換え遺伝子プラスミド
によって酵母細胞を形質転換し、適当な条件下の発酵培
地で培養する。II B s A g !!伝転子酵f
f1−細胞中で構成的に発現され得る。
細胞、特にSaccharom ces eerevi
siaeによって合成される。 IBsAyタンパク質
をコードするDNA分子を含む組換え遺伝子プラスミド
によって酵母細胞を形質転換し、適当な条件下の発酵培
地で培養する。II B s A g !!伝転子酵f
f1−細胞中で構成的に発現され得る。
発現酵母細胞を繰り返し洗浄し、遠心して随伴した発酵
培地成分を除去する。ポリオキシエチレン(9,5)p
−t−オクチルフェノール(Triton X−100
)のごとき界面活性剤の存在下または非存在下に細胞を
トリスバッファ溶液に懸濁させる。通常は、細胞を懸濁
させるバッファが、タンパク質の分離を促進する界面活
性剤を含有することが必要であるが、本発明の方法によ
れば、バッファが必ずしも界面活性剤を含む必要がない
。
培地成分を除去する。ポリオキシエチレン(9,5)p
−t−オクチルフェノール(Triton X−100
)のごとき界面活性剤の存在下または非存在下に細胞を
トリスバッファ溶液に懸濁させる。通常は、細胞を懸濁
させるバッファが、タンパク質の分離を促進する界面活
性剤を含有することが必要であるが、本発明の方法によ
れば、バッファが必ずしも界面活性剤を含む必要がない
。
細胞懸濁液を好ましくは600nmの光学密度的250
〜350に調整し、次にDyno−Millのごときガ
ラスピーズホモジナイザーに細胞の破壊が最も多く生じ
るような最″a流量及びガラスピーズ濃度において導入
する1以上の処理によって細胞ホモジネートが得られる
。
〜350に調整し、次にDyno−Millのごときガ
ラスピーズホモジナイザーに細胞の破壊が最も多く生じ
るような最″a流量及びガラスピーズ濃度において導入
する1以上の処理によって細胞ホモジネートが得られる
。
得られた細胞ホモジネートを遠心分離する。細胞の上清
に対して、選択的沈降と後均質化とを含む抽出処理を行
なう。選択的沈降は、分子量的#り、000〜to、0
00好ましくは、6,000のポリエチレングリコール
(PEG)約1〜10重量%(細胞抽出物の重量に対す
るPEGの重量として)を順次添加することにより行な
う。後均質化ではPo1ytron細胞ホモジナイザー
(Kine+5atics)を使用する。好ましい手順
によれは、細胞抽出物に3重量%のPEGを添加して細
胞タンパク質を沈降させ、遠心し、第1沈降物の上清に
8重量%のPECを添加する。得られた沈降物を後均質
化する。く活性によって示される)HBsAiFのレベ
ルは、第2のPEG沈降後の沈降物中において90%以
上回収される。別の好ましい手順によれば、細胞抽出物
に8重量%のPECを添加し、後均貫化し、次いで後均
質化したベレット懸濁液に3重量%のPEGを添加し、
次に第2のPEG処理上清に8重量%のPEGを添加す
る。
に対して、選択的沈降と後均質化とを含む抽出処理を行
なう。選択的沈降は、分子量的#り、000〜to、0
00好ましくは、6,000のポリエチレングリコール
(PEG)約1〜10重量%(細胞抽出物の重量に対す
るPEGの重量として)を順次添加することにより行な
う。後均質化ではPo1ytron細胞ホモジナイザー
(Kine+5atics)を使用する。好ましい手順
によれは、細胞抽出物に3重量%のPEGを添加して細
胞タンパク質を沈降させ、遠心し、第1沈降物の上清に
8重量%のPECを添加する。得られた沈降物を後均質
化する。く活性によって示される)HBsAiFのレベ
ルは、第2のPEG沈降後の沈降物中において90%以
上回収される。別の好ましい手順によれば、細胞抽出物
に8重量%のPECを添加し、後均貫化し、次いで後均
質化したベレット懸濁液に3重量%のPEGを添加し、
次に第2のPEG処理上清に8重量%のPEGを添加す
る。
PEGの順次添加によって細胞タンパク質の除去が容易
になり、HBsAgの回収率が向上する。順次沈降によ
って通常の方法の約150〜200倍の精製が得られる
。HBsAyの回収に対する順次沈降の効果を表1−1
及び1−2に示す。表1−1によれば、8重量%のPE
Gの添加によってHBsAgの最適回収率が得られるが
、所望でないタンパク質のレベルも極めて高い。2段階
沈降によってHBshを回収すると、所望でないタンパ
ク質が減少する(表1−2)。従って、tlBsAgの
最適回収率は3%のPEGの添加に続いて8%のPEG
を添加する順次沈降平原によって得られる。
になり、HBsAgの回収率が向上する。順次沈降によ
って通常の方法の約150〜200倍の精製が得られる
。HBsAyの回収に対する順次沈降の効果を表1−1
及び1−2に示す。表1−1によれば、8重量%のPE
Gの添加によってHBsAgの最適回収率が得られるが
、所望でないタンパク質のレベルも極めて高い。2段階
沈降によってHBshを回収すると、所望でないタンパ
ク質が減少する(表1−2)。従って、tlBsAgの
最適回収率は3%のPEGの添加に続いて8%のPEG
を添加する順次沈降平原によって得られる。
入ユ」2
ポリエチレングリ1− ルー6000(PEG−600
0) ヲ用イる1段階沈降によるII B s A g
の回収率PEG% 1% 2% 3% 4%
8%llBsΔg回収率(5%) 3,9 1
0.3 17.1 21.2 86.5不要タンパク質
(%) 7.5 16.9 34.0 35.0 46
.7ポリエチレングリ:7− ルー6000(PEG−
8000)を用イる2段階沈降によるHBsAgの回収
率PEG% 1%+8% 2%+8% 3%
+8%11BsAF1回収賦%) 86.3
85.1 83.2不要タンパク質砒) 38.6
27.1 15.3また後均質化処理もHB
sAg回収率を向上させる。
0) ヲ用イる1段階沈降によるII B s A g
の回収率PEG% 1% 2% 3% 4%
8%llBsΔg回収率(5%) 3,9 1
0.3 17.1 21.2 86.5不要タンパク質
(%) 7.5 16.9 34.0 35.0 46
.7ポリエチレングリ:7− ルー6000(PEG−
8000)を用イる2段階沈降によるHBsAgの回収
率PEG% 1%+8% 2%+8% 3%
+8%11BsAF1回収賦%) 86.3
85.1 83.2不要タンパク質砒) 38.6
27.1 15.3また後均質化処理もHB
sAg回収率を向上させる。
後均質化によって得られる回収率(表2)は、酵母細胞
中のIt B s A gタンパク質合成及びタンパク
質粒子形成が小胞体めごときオルガホラ中で行なわれる
ことを示唆する。後均質化によって、沈降した小胞体ま
たはミクロソームからII B s A 2粒子が遊離
し易くなる。
中のIt B s A gタンパク質合成及びタンパク
質粒子形成が小胞体めごときオルガホラ中で行なわれる
ことを示唆する。後均質化によって、沈降した小胞体ま
たはミクロソームからII B s A 2粒子が遊離
し易くなる。
人」し
後均質化によるHBsAy回収率の改良試験No、処理
前 ベレット/バッファ処理後1 82.81
115 102.312 89.6$
1/4 117.8$3 88
.51 1/3 130.51上記手順
によってHBsAyタンパク粒子が部分精製される。よ
り高度に精製する段階では、ショ糖及び塩化セシウム(
Cs(J)密度勾配超遠心法、プロセススケール連続的
ゾーン超遠心法、サイズ排除クロマトグラフィー、段階
的塩化セシウム密度勾配超遠心法、等を用いる。精製さ
れたHBsAg粒子はヒト血漿に由来するII B s
A 2粒子と同じ物理的及び化学的特性を有する。
前 ベレット/バッファ処理後1 82.81
115 102.312 89.6$
1/4 117.8$3 88
.51 1/3 130.51上記手順
によってHBsAyタンパク粒子が部分精製される。よ
り高度に精製する段階では、ショ糖及び塩化セシウム(
Cs(J)密度勾配超遠心法、プロセススケール連続的
ゾーン超遠心法、サイズ排除クロマトグラフィー、段階
的塩化セシウム密度勾配超遠心法、等を用いる。精製さ
れたHBsAg粒子はヒト血漿に由来するII B s
A 2粒子と同じ物理的及び化学的特性を有する。
以下の実施例によって本発明がより十分に理解されよう
、但し、本発明の範囲はこれらの実施例に限定されるも
のではない。特に注釈がなければすべての部及びパーセ
ンテージは重量部及び重量%である。
、但し、本発明の範囲はこれらの実施例に限定されるも
のではない。特に注釈がなければすべての部及びパーセ
ンテージは重量部及び重量%である。
Beckman J2−21遠心機でJ^−10ロータ
を使用し、形質転換酵母細胞Saccharom ce
s cereviciaeの発酵ブイヨン601を遠心
力9000g(8000rpm)で5分間バッチ遠心し
くバッチ当たりの容M31)、湿潤重量6250g(ま
たは乾燥重量的15601?)の細胞を収集した。遠心
管の細胞ペレットをTBSIバッファ溶液(10mMの
Tris−tlcl、Tris<ヒドロキシメチル〉ア
ミノメタンpH7,5,0,148のNaC1)に懸濁
させ、再度ペレッI・化し、随伴した発酵培地成分を除
去した。ペレット化した酵母細胞をTBS2バッファ
(10mMのTrisHCN pH7,5,0,5Mの
NaC1,0,1%のTriton X−100)に再
懸濁させ660nm<0Ds6゜)での最終光学密度3
00にし、細胞懸濁液を螺動ポンプでホモジナイザー(
Dyno−Mill、Hilly、Model KDL
)に流量7(h17分で導入した。19 、100yの
細胞ホモジネートを回収し、J2−21遠心機で遠心力
12,000y(9000rpm)で15分間遠心し、
合計15,400gの上清を得た。^usria(登録
商標)法(^bboLt Radioimmuno A
s5ay)で測定した上清中のB型肝炎表面抗原(HB
sAg)の濃度は1ozg/lであり、Lowry法に
よって分析した総タンパク質濃度は28g/lであった
。
を使用し、形質転換酵母細胞Saccharom ce
s cereviciaeの発酵ブイヨン601を遠心
力9000g(8000rpm)で5分間バッチ遠心し
くバッチ当たりの容M31)、湿潤重量6250g(ま
たは乾燥重量的15601?)の細胞を収集した。遠心
管の細胞ペレットをTBSIバッファ溶液(10mMの
Tris−tlcl、Tris<ヒドロキシメチル〉ア
ミノメタンpH7,5,0,148のNaC1)に懸濁
させ、再度ペレッI・化し、随伴した発酵培地成分を除
去した。ペレット化した酵母細胞をTBS2バッファ
(10mMのTrisHCN pH7,5,0,5Mの
NaC1,0,1%のTriton X−100)に再
懸濁させ660nm<0Ds6゜)での最終光学密度3
00にし、細胞懸濁液を螺動ポンプでホモジナイザー(
Dyno−Mill、Hilly、Model KDL
)に流量7(h17分で導入した。19 、100yの
細胞ホモジネートを回収し、J2−21遠心機で遠心力
12,000y(9000rpm)で15分間遠心し、
合計15,400gの上清を得た。^usria(登録
商標)法(^bboLt Radioimmuno A
s5ay)で測定した上清中のB型肝炎表面抗原(HB
sAg)の濃度は1ozg/lであり、Lowry法に
よって分析した総タンパク質濃度は28g/lであった
。
分子量6,000(PEG−6000)のポリエチレン
グリコール溶液(50%)を150y/分の速度で最終
濃度8重量%まで上清に添加し、4℃で16時間攪拌し
てHBsAyを沈降させた。 12,000gで15分
間遠心後、1365gの沈降物をTBSIに溶解しt初
期重量の3倍にし、次に懸濁液をPo1ytronホモ
ジナイザーで4℃にて4.500rpmで30秒間ずつ
3回均質化した。ホモジネートを最終濃度3重量%まで
のPEG−6000で処理し酵母細胞タンパク質を4°
Cで6時間沈降させた。沈降したタンパク質を12,0
00!?(9000rpm)で15分間遠心して除去し
た。得られた上清を最終濃度8重量%までのPEG−6
000で再度処理し4℃で16時間攪拌しながらIt
[1s A gを沈降させた。第2沈降物を12,00
09で15分間遠心処理した。上清を除去しペレット(
約4551?)をTBSIに溶解して重量を3倍にし次
にPo1yLronで均質化した。次にタンパク質懸濁
液を0.22μの多孔膜で濾過した。膜をTBSIで連
続的に洗浄してP液を収集した。分画分子量(MWCO
)too、000の膜(Millipore Pe1l
icon Unit)を用いて限外濾過してP液を濃縮
した。非沢過物を収集したく約2.0001?>。
グリコール溶液(50%)を150y/分の速度で最終
濃度8重量%まで上清に添加し、4℃で16時間攪拌し
てHBsAyを沈降させた。 12,000gで15分
間遠心後、1365gの沈降物をTBSIに溶解しt初
期重量の3倍にし、次に懸濁液をPo1ytronホモ
ジナイザーで4℃にて4.500rpmで30秒間ずつ
3回均質化した。ホモジネートを最終濃度3重量%まで
のPEG−6000で処理し酵母細胞タンパク質を4°
Cで6時間沈降させた。沈降したタンパク質を12,0
00!?(9000rpm)で15分間遠心して除去し
た。得られた上清を最終濃度8重量%までのPEG−6
000で再度処理し4℃で16時間攪拌しながらIt
[1s A gを沈降させた。第2沈降物を12,00
09で15分間遠心処理した。上清を除去しペレット(
約4551?)をTBSIに溶解して重量を3倍にし次
にPo1yLronで均質化した。次にタンパク質懸濁
液を0.22μの多孔膜で濾過した。膜をTBSIで連
続的に洗浄してP液を収集した。分画分子量(MWCO
)too、000の膜(Millipore Pe1l
icon Unit)を用いて限外濾過してP液を濃縮
した。非沢過物を収集したく約2.0001?>。
非濾過物を更に処理して酵母細胞タンパク質からHBs
Agを精製した。分画遠心によって沈降させ分離を行な
った。煽動ポンプを使用し、1,800mt’の40%
ショ糖溶液と1,400zlのTBSI溶液とをENI
(Electro−Nucleonic Inc、、K
−3コア)超遠心機に充填した。21の試料を1017
時間の一定流量でロータの底部から導入した。4℃、3
5.OOOrpm(90,OOOg)にて遠心機のグイ
ナミックリオリエンテーション(dynamic re
−orientation)によって2〜40%のショ
糖密度勾配を形成した。3時間処理した後に各200m
1の複数の分画を収集した。
Agを精製した。分画遠心によって沈降させ分離を行な
った。煽動ポンプを使用し、1,800mt’の40%
ショ糖溶液と1,400zlのTBSI溶液とをENI
(Electro−Nucleonic Inc、、K
−3コア)超遠心機に充填した。21の試料を1017
時間の一定流量でロータの底部から導入した。4℃、3
5.OOOrpm(90,OOOg)にて遠心機のグイ
ナミックリオリエンテーション(dynamic re
−orientation)によって2〜40%のショ
糖密度勾配を形成した。3時間処理した後に各200m
1の複数の分画を収集した。
11^U(血球凝集単位)、0D26゜及び屈折率の検
出によって分画を選択し、合わせてプールした。分画分
子量100,000の限外濾過膜で濃縮及び透析濾過し
てショ糖を除去した。得られた溶液を容量800xiに
調整した。
出によって分画を選択し、合わせてプールした。分画分
子量100,000の限外濾過膜で濃縮及び透析濾過し
てショ糖を除去した。得られた溶液を容量800xiに
調整した。
密度1.1(1−1,25g/c+m’の塩化セシウム
(CsCi’)密度勾配限外濾過によってIt B s
A g粒子を分離した。
(CsCi’)密度勾配限外濾過によってIt B s
A g粒子を分離した。
分画を選択し、透析濾過及び限外濾過によって(約10
0z1に)濃縮した。酵母タンパク質から得られたHB
sAyタンパク質粒子を更に精製するために、サイズ排
除クロマトグラフィー(TSK IIL65)を行なっ
た。選択された分画を合わせてプールし、Beckma
nゾーンロータ(Ti−15型)で段階的塩化セシウム
密度勾配超遠心を行なった。密度1.30.1.25.
1.2o、1.10のCs5lの階段希釈溶液を使用し
1.15を出発点とした。31.000rpm(100
,0OOFI)、4℃にて44時間超遠心後、選択され
たllBsAg分画を透析してC5Ct’を除去し、限
外濾過によって濃縮して精製HBsAyタンパク粒子を
得た。
0z1に)濃縮した。酵母タンパク質から得られたHB
sAyタンパク質粒子を更に精製するために、サイズ排
除クロマトグラフィー(TSK IIL65)を行なっ
た。選択された分画を合わせてプールし、Beckma
nゾーンロータ(Ti−15型)で段階的塩化セシウム
密度勾配超遠心を行なった。密度1.30.1.25.
1.2o、1.10のCs5lの階段希釈溶液を使用し
1.15を出発点とした。31.000rpm(100
,0OOFI)、4℃にて44時間超遠心後、選択され
たllBsAg分画を透析してC5Ct’を除去し、限
外濾過によって濃縮して精製HBsAyタンパク粒子を
得た。
火韮1j工
発酵酵母細胞を収集し実施例1に記載の手順で破壊した
。遠心(12,000g、15分)して酵母細胞破片を
除去し、PEG−6000を最終濃度3重量%まで上清
に添加し、得られた溶液を4℃で6時間攪拌し、次に4
℃で遠心(12,000g、15分間)して沈降物を除
去した。PEG−6000溶液(50%)を最終濃度8
重量%まで上清に添加し、4℃で16時間攪拌した。遠
心後、Po1ytonを用い沈降物を4℃で後均質化(
4,500rpm、30秒間)した。ホモジネートを実
施例1の手順で精製して精製HBsAI?タンパク質粒
子を得た。
。遠心(12,000g、15分)して酵母細胞破片を
除去し、PEG−6000を最終濃度3重量%まで上清
に添加し、得られた溶液を4℃で6時間攪拌し、次に4
℃で遠心(12,000g、15分間)して沈降物を除
去した。PEG−6000溶液(50%)を最終濃度8
重量%まで上清に添加し、4℃で16時間攪拌した。遠
心後、Po1ytonを用い沈降物を4℃で後均質化(
4,500rpm、30秒間)した。ホモジネートを実
施例1の手順で精製して精製HBsAI?タンパク質粒
子を得た。
Claims (8)
- (1)形質転換酵母細胞からB型肝炎表面抗原(HBs
Ag)タンパク質を単離する方法であって、(a)前記
細胞を破壊し均質化して細胞ホモジネートを調製する段
階と、 (b)(細胞抽出物重量に対して)1〜10重量%のポ
リエチレングリコール(PEG)を添加することによる
順次沈降と後均質化とを含む抽出によって前記細胞ホモ
ジネートから前記タンパク質を分離する段階と、 (c)前記HBsAgタンパク質をより高度に精製する
段階とを含むことを特徴とする方法。 - (2)前記抽出が、前記細胞ホモジネートに3重量%の
PEGを添加して酵母細胞タンパク質を沈降させ、遠心
し、上清に8重量%のPEGを添加し、後均質化する手
順を含むことを特徴とする請求項1に記載の方法。 - (3)前記抽出が、前記細胞ホモジネートに8重量%の
PEGを添加し、後均質化し、次にこの後均質化した懸
濁液に3重量%のPEGを添加し、この第2のPEG処
理上清に8重量%のPEGを添加する手順を含むことを
特徴とする請求項1に記載の方法。 - (4)沈降のために使用される前記ポリエチレングリコ
ールが分子量2,000〜10,000であることを特
徴とする請求項1から3のいずれか一項に記載の方法。 - (5)前記ポリエチレングリコールが好ましくは分子量
6,000であることを特徴とする請求項4に記載の方
法。 - (6)前記の後均質化がPolytron細胞ホモジナ
イザーで行なわれることを特徴とする請求項1に記載の
方法。 - (7)前記のより高度な精製が、ショ糖及び塩化セシウ
ム密度勾配超遠心法、プロセススケール連続的ゾーン超
遠心法、サイズ排除クロマトグラフィー及び段階的塩化
セシウム密度勾配超遠心法によって行なわれることを特
徴とする請求項1に記載の方法。 - (8)前記HBsAgタンパク質が形質転換Sacch
aro−¥myces¥¥cerevisiae¥中で
合成されることを特徴とする請求項1に記載の方法。
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US30844189A | 1989-02-09 | 1989-02-09 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0330691A true JPH0330691A (ja) | 1991-02-08 |
Family
ID=23194016
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15662489A Pending JPH0330691A (ja) | 1989-02-09 | 1989-06-19 | 形質転換酵母細胞からb型肝炎表面抗原を単離する方法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0384058A1 (ja) |
| JP (1) | JPH0330691A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US8198067B2 (en) * | 2001-03-23 | 2012-06-12 | Advanced Bionutrtion Corporation | Delivery of disease control in aquaculture and agriculture using microbes containing bioactive proteins |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5462863A (en) * | 1989-02-09 | 1995-10-31 | Development Center For Biotechnology | Isolation of Hepatitis B surface antigen from transformed yeast cells |
| KR960023066A (ko) * | 1994-12-10 | 1996-07-18 | 성재갑 | 전에스 (s) 2 펩티드 함유 비 (b) 형 간염 표면항원의 정제 방법 |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0168234A2 (en) * | 1984-07-09 | 1986-01-15 | Genentech, Inc. | Purification process for hepatitis surface antigen and product thereof |
| EP0235430A1 (en) * | 1985-08-20 | 1987-09-09 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Novel protein and production thereof |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| DE3150935A1 (de) * | 1981-12-23 | 1983-06-30 | Uwe Dr.med. 3400 Göttingen Böttcher | Verfahren zur herstellung eines hepatitis-b impfstoffes |
-
1989
- 1989-06-13 EP EP89305958A patent/EP0384058A1/en not_active Withdrawn
- 1989-06-19 JP JP15662489A patent/JPH0330691A/ja active Pending
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0168234A2 (en) * | 1984-07-09 | 1986-01-15 | Genentech, Inc. | Purification process for hepatitis surface antigen and product thereof |
| EP0235430A1 (en) * | 1985-08-20 | 1987-09-09 | Takeda Chemical Industries, Ltd. | Novel protein and production thereof |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US8198067B2 (en) * | 2001-03-23 | 2012-06-12 | Advanced Bionutrtion Corporation | Delivery of disease control in aquaculture and agriculture using microbes containing bioactive proteins |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0384058A1 (en) | 1990-08-29 |
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