JPH0339019A - 植物胚の貯蔵方法 - Google Patents
植物胚の貯蔵方法Info
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- JPH0339019A JPH0339019A JP2128092A JP12809290A JPH0339019A JP H0339019 A JPH0339019 A JP H0339019A JP 2128092 A JP2128092 A JP 2128092A JP 12809290 A JP12809290 A JP 12809290A JP H0339019 A JPH0339019 A JP H0339019A
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-
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は植物の体細胞胚又は接合体肝の貯蔵方法に関す
る。
る。
従来の技 および発明が解 しようとする多くの種は$
[胞懸濁体、カルス又は分裂!]組織形も低温で貯蔵で
きる。
[胞懸濁体、カルス又は分裂!]組織形も低温で貯蔵で
きる。
胚の低温貯蔵は多くの場合、例えば季ll1)性植物の
生産を調整したり又はり]」−ン系を維持するために正
当とされる。
生産を調整したり又はり]」−ン系を維持するために正
当とされる。
胚を低温貯蔵することにJ:り一時的に胚の発育を停止
させうるし、苗床へのこれらの輸送又はη蔵に要する時
間を与えることができまた遺伝的素質が徐々に低落する
のをWiJるために遺伝丁型のバンクをB1成しうる。
させうるし、苗床へのこれらの輸送又はη蔵に要する時
間を与えることができまた遺伝的素質が徐々に低落する
のをWiJるために遺伝丁型のバンクをB1成しうる。
体細胞胚は植物の増加に対しある利点を有する。
これらは原則として1個の細胞に由来するから、遺伝学
的に均一な植物を供する。これらの形成期+11Jから
、体細胞胚は二分裂極構造を右する。即ち、植物の生産
に必要な幹および根の2つの分裂11械を有する。従っ
て、体I8胞不定胚形成は植物の増殖にス4し興味あ、
る別径路と思われる:生産経費のかかる種又は試1管培
養に由来する高性能固体又は例えば、交配により取扱い
が困難な形質転換植物の急速tti殖に使用できる。
的に均一な植物を供する。これらの形成期+11Jから
、体細胞胚は二分裂極構造を右する。即ち、植物の生産
に必要な幹および根の2つの分裂11械を有する。従っ
て、体I8胞不定胚形成は植物の増殖にス4し興味あ、
る別径路と思われる:生産経費のかかる種又は試1管培
養に由来する高性能固体又は例えば、交配により取扱い
が困難な形質転換植物の急速tti殖に使用できる。
胚の貯蔵時におきる問題は複雑である。特に、根や幹の
仲良および器′占形成を再開しつる2つの分裂組織の分
裂極は生ぎた状態で保qしなければならない。
仲良および器′占形成を再開しつる2つの分裂組織の分
裂極は生ぎた状態で保qしなければならない。
胚には各種の既知の低温貯蔵方法がある。
これらの方法のうちの1つは、ンルごトール、プロリン
又はマンニ1−−ルを強化した培地に胚を予備培養し、
0℃でジメチルスルホキシドおよび/又はグリl?ロー
ルを添加したIg地に含浸し、−40℃まで緩慢凍結し
、次に液体窒素中で急速凍結するものである。解凍後、
不定胚形成過程を再DiIするには、培地に2,4−ジ
クr−I Clフェノキシ酢酸を添加り゛る必要がある
。
又はマンニ1−−ルを強化した培地に胚を予備培養し、
0℃でジメチルスルホキシドおよび/又はグリl?ロー
ルを添加したIg地に含浸し、−40℃まで緩慢凍結し
、次に液体窒素中で急速凍結するものである。解凍後、
不定胚形成過程を再DiIするには、培地に2,4−ジ
クr−I Clフェノキシ酢酸を添加り゛る必要がある
。
寒天培地で18養する体細胞胚に適用できる別法は、1
週間蔗糖強化培地で胚をr備培養し、液体窒素で冷却管
中に乾燥状態に入れた胚を直接凍結するものである。
週間蔗糖強化培地で胚をr備培養し、液体窒素で冷却管
中に乾燥状態に入れた胚を直接凍結するものである。
別の既知方法では、休[l胞胚は少なくと62.5%の
ジメチルスルホキシドを徐々に添加する培地で予備培養
し、次に一100℃に緩慢凍結し、次に液体窒素中で急
速凍結する。不定胚形成過程を再開するには、0.1m
g1−’2.4−ジクロロフェノキシ酢酸を含りする培
地で培養することにより促進される。
ジメチルスルホキシドを徐々に添加する培地で予備培養
し、次に一100℃に緩慢凍結し、次に液体窒素中で急
速凍結する。不定胚形成過程を再開するには、0.1m
g1−’2.4−ジクロロフェノキシ酢酸を含りする培
地で培養することにより促進される。
ジメチルスルホキシド又はグリセ1」−ルのような冷が
保護剤の機能let凍結凍結中形成を防止す゛ることで
ある。しかし、このような物質の使用にはある不利があ
る。一つは、−・般に易昇革性ではないから、次の凍結
乾燥処理には供しえない。他方、t/fJ胞障害を示し
うる。
保護剤の機能let凍結凍結中形成を防止す゛ることで
ある。しかし、このような物質の使用にはある不利があ
る。一つは、−・般に易昇革性ではないから、次の凍結
乾燥処理には供しえない。他方、t/fJ胞障害を示し
うる。
2.4−ジクロロフェノキシ酢酸のようなオーキシンの
機能は、カルス形成(Ca l Iogenes i
S )小中性状態にm胞を保持し、胚の解m後細胞増殖
の再開を促進することである。凍結により胚の発生が停
止すると、しばしば異常な成育再開を誘発する。オーキ
シンは不定胚形成過程の再開中細脂分glI、1′より
不定胚の形成を助長し、第2不定胚形成の危険性を増大
しうる。
機能は、カルス形成(Ca l Iogenes i
S )小中性状態にm胞を保持し、胚の解m後細胞増殖
の再開を促進することである。凍結により胚の発生が停
止すると、しばしば異常な成育再開を誘発する。オーキ
シンは不定胚形成過程の再開中細脂分glI、1′より
不定胚の形成を助長し、第2不定胚形成の危険性を増大
しうる。
課題を解決するための手段
従来技術の不利を除くために、本発明は凍結により胚の
発生を停止し、次に第2不定胚形成又はカルス形成のよ
うな形態形成の他の形態を出現させずに再開できる体細
胞胚又は接合体肢の貯蔵方法を供するものである。
発生を停止し、次に第2不定胚形成又はカルス形成のよ
うな形態形成の他の形態を出現させずに再開できる体細
胞胚又は接合体肢の貯蔵方法を供するものである。
このために、本発明方法は
−胚を浸透圧上界剤含右予備処理培地で予備処理し、そ
の後 一予備処理胚を冷却し、−15〜−40℃の湿度に凍結
することを特徴とする。
の後 一予備処理胚を冷却し、−15〜−40℃の湿度に凍結
することを特徴とする。
15〜−40℃に凍結した胚はその温度で貯蔵でき、又
Iよ次に液体冷媒に浸漬し、かつ低温で貯蔵できる。
Iよ次に液体冷媒に浸漬し、かつ低温で貯蔵できる。
この方法の1利点は、6毒および/又は非昇華性冷却保
護剤の使用を回避することである。別の利点は凍ti!
1iyiおよび解凍後の成育再開小便用培地にオーキシ
ンの使用を回避することである。この方法の別の利点は
高価な装釘を何ら必要とじずに容易に到達しうる低温(
−15/−40℃〉 (例えば家庭用フリーシーで)で
貯蔵できることである。
護剤の使用を回避することである。別の利点は凍ti!
1iyiおよび解凍後の成育再開小便用培地にオーキシ
ンの使用を回避することである。この方法の別の利点は
高価な装釘を何ら必要とじずに容易に到達しうる低温(
−15/−40℃〉 (例えば家庭用フリーシーで)で
貯蔵できることである。
本発明の別の利点は急速かつ容易に実施しうる貯蔵方法
を供することである。
を供することである。
別の利点は胚をその後の凍結乾燥に供することである。
本発明の貯蔵方法により、胚は成育促進剤を必要とせず
に通常の成育再開を示し、偶生附増加をしない胚を得る
ことができる。何/&なら第2不定胚形成は生成物の産
業的分配に有害であるが(望まない多肢種子が得られる
ので)本貯蔵方?λ口生産種子の品質を改良するからで
ある。
に通常の成育再開を示し、偶生附増加をしない胚を得る
ことができる。何/&なら第2不定胚形成は生成物の産
業的分配に有害であるが(望まない多肢種子が得られる
ので)本貯蔵方?λ口生産種子の品質を改良するからで
ある。
本発明で使用する胚は任意種および各種配属のものでよ
い。例えば、胚1.1にんじんの胚でよい。
い。例えば、胚1.1にんじんの胚でよい。
胚は体細胞胚又(よ接合体肢でよい。
体細胞胚は未分化II胞懸濁体から1qることができる
。この場合、例えば、バイブリドペアレントの種子は無
菌的に発芽させることができる。胚軸を切断し、次にオ
ーキシン含有培地に置くことができる。得たカルスは次
に液体培地中で解離できる。これにより数回の継代培養
後培地に移すことができる未分化細胞懸濁体を得る。約
10日後、細胞懸濁液を濾過して、所aの大きさの細胞
塊のみを保持することができる。これらの集塊【よ数1
1間オーキシンを含まない培地で培養し、胚の形成を誘
発できる。
。この場合、例えば、バイブリドペアレントの種子は無
菌的に発芽させることができる。胚軸を切断し、次にオ
ーキシン含有培地に置くことができる。得たカルスは次
に液体培地中で解離できる。これにより数回の継代培養
後培地に移すことができる未分化細胞懸濁体を得る。約
10日後、細胞懸濁液を濾過して、所aの大きさの細胞
塊のみを保持することができる。これらの集塊【よ数1
1間オーキシンを含まない培地で培養し、胚の形成を誘
発できる。
接合体肢は成熟又は僅かに未熟の段階で種子を切開して
試料を採取することにより得ることができる。
試料を採取することにより得ることができる。
得た体細胞胚a3よび接合体肢【よこれらの発生の段階
に従って分類できる。好ましい胚はこれらの大きさが1
50〜600μ肌である場合の発生の初II段階にある
もので、この段階では凍結に苅し−・府安定であるから
である。これらの大きさは体1[胞胚発生の心11a型
胚(150〜300uTrL)又は魚雷を胚(300〜
600μTrL)段階に相γ1する。
に従って分類できる。好ましい胚はこれらの大きさが1
50〜600μ肌である場合の発生の初II段階にある
もので、この段階では凍結に苅し−・府安定であるから
である。これらの大きさは体1[胞胚発生の心11a型
胚(150〜300uTrL)又は魚雷を胚(300〜
600μTrL)段階に相γ1する。
次に得た胚は予備処理培地と呼ばれる培地で予備処理す
る。この培地は例えばHurashige l′3よび
5ttooa培地のような胚培養分野における代表的培
地で、この培地に浸透圧上昇剤を添加し、ビタミンB1
、ニコチン酸又【Jアデニンのような有機物質も添加で
きる。
る。この培地は例えばHurashige l′3よび
5ttooa培地のような胚培養分野における代表的培
地で、この培地に浸透圧上昇剤を添加し、ビタミンB1
、ニコチン酸又【Jアデニンのような有機物質も添加で
きる。
凍結中直接胚をJfl(Mさせない場合でも、解凍中破
壊的再結晶を誘発できる細胞内水の形成を防止すること
は低温貯蔵方法で必要である。本発明り法では、胚は浸
透圧上昇剤を含右寸−る培地で予備処理することにより
部分脱水するので受【)うる伺らかの罰傷が軽減される
。
壊的再結晶を誘発できる細胞内水の形成を防止すること
は低温貯蔵方法で必要である。本発明り法では、胚は浸
透圧上昇剤を含右寸−る培地で予備処理することにより
部分脱水するので受【)うる伺らかの罰傷が軽減される
。
組織に浸透し、十分な浸透圧を供し、膜透過性に彰費を
与えずに細胞の正しい脱水をなしIる物質のうらから、
この上昇剤は専門家により選択できる。さらに、この剤
は胚に対し決して有毒であって【よならない。この剤は
蔗糖又はトレハロースのような粘又は同じ機能を果しう
る任息の他の既知物質でよい。
与えずに細胞の正しい脱水をなしIる物質のうらから、
この上昇剤は専門家により選択できる。さらに、この剤
は胚に対し決して有毒であって【よならない。この剤は
蔗糖又はトレハロースのような粘又は同じ機能を果しう
る任息の他の既知物質でよい。
予備処理培地における浸透圧上昇剤の濃度は細胞の正し
い脱水を確保するために低すぎてはならない。胚に損傷
を与えずに、又は解凍後これらの成育再開を阻害しない
ために高すぎてもならない。
い脱水を確保するために低すぎてはならない。胚に損傷
を与えずに、又は解凍後これらの成育再開を阻害しない
ために高すぎてもならない。
本発明による貯蔵方法の好ましい−・態様では、予備処
理培地tよ75〜190gl”の濃度、好ましくは10
0〜150gl−’の濃度の蔗糖を含有する。
理培地tよ75〜190gl”の濃度、好ましくは10
0〜150gl−’の濃度の蔗糖を含有する。
単に予備処理を行ない、次いで指示温度までの凍結工程
により所望の目的を簡単、有効で信頼しつる仕方で達成
しうることが分った。
により所望の目的を簡単、有効で信頼しつる仕方で達成
しうることが分った。
予備処理は30秒〜36rR間継続できる。予備処理は
浸透圧上昇剤によりm +aを部分脱水し、凍結に対す
るこれらの安定性を増加させるために短かすぎてはなら
ない。予備IjBJ!l!が36時1M+を越える場合
、解凍後肢の生存数の減少に反映するように、凍結に対
する胚の安定性が低下づるので、予備処理は長ずぎては
ならない。艮峙間予偏処即の場合には、胚は多分形態学
的変化を受けるのであろう。これは胚が成長を続(J、
凍結に対し適合性の少ないg2階に到達する事から凍結
に対する安定性が減少する。他方、長時間の予備処即中
に浸透圧上昇剤の保護効果が減少するのは、浸透圧上?
?効果を減少させる予備処理培地に胚を適応させること
により説明することもできる。
浸透圧上昇剤によりm +aを部分脱水し、凍結に対す
るこれらの安定性を増加させるために短かすぎてはなら
ない。予備IjBJ!l!が36時1M+を越える場合
、解凍後肢の生存数の減少に反映するように、凍結に対
する胚の安定性が低下づるので、予備処理は長ずぎては
ならない。艮峙間予偏処即の場合には、胚は多分形態学
的変化を受けるのであろう。これは胚が成長を続(J、
凍結に対し適合性の少ないg2階に到達する事から凍結
に対する安定性が減少する。他方、長時間の予備処即中
に浸透圧上昇剤の保護効果が減少するのは、浸透圧上?
?効果を減少させる予備処理培地に胚を適応させること
により説明することもできる。
予備処理は環境温度、すなわら約18°〜24℃、例工
Gf 150〜250 )L/ ”/ クス+7) e
il (7)照明下で行なうことが好ましい。
Gf 150〜250 )L/ ”/ クス+7) e
il (7)照明下で行なうことが好ましい。
予備処理胚は冷却し、次に−156〜−40℃の温度に
凍結する。これらは約−20℃の湿度に凍結することが
好ましい。凍結方法は胚を予備処理培地と共に冷W管に
移し、冷却管を例えば家庭用フリーザーに入れることに
より行なうことができる。凍結中適用する冷却速度u1
氷が生成する速度および氷が形成するその時の胚の脱水
度に彰費する。冷却速度は胚の続く成長再開を促進する
ために一6°〜−40℃の温度範囲では0.1゜〜1℃
/分の穏かなものが好ましい、、環塊温度から一6℃の
温度までの冷却では、冷却速度は一府急速で、例えば1
″〜5℃/分でよい。
凍結する。これらは約−20℃の湿度に凍結することが
好ましい。凍結方法は胚を予備処理培地と共に冷W管に
移し、冷却管を例えば家庭用フリーザーに入れることに
より行なうことができる。凍結中適用する冷却速度u1
氷が生成する速度および氷が形成するその時の胚の脱水
度に彰費する。冷却速度は胚の続く成長再開を促進する
ために一6°〜−40℃の温度範囲では0.1゜〜1℃
/分の穏かなものが好ましい、、環塊温度から一6℃の
温度までの冷却では、冷却速度は一府急速で、例えば1
″〜5℃/分でよい。
−15°〜−40℃の範囲の温度に凍結した胚は少なく
とも1ケ月そのまま貯蔵できる。−層長用の貯蔵時間に
対しては、胚は更に低温で、例えば液体冷媒中でy?蔵
することが好ましい。これは・−15°/−40℃の長
期貯iは成長再b1、そのための解凍後の胚の生存能力
に適合しないらしいからである。−15°/−40℃の
温度は胚の代謝の完全な停止を確保するには高すぎるら
しい。
とも1ケ月そのまま貯蔵できる。−層長用の貯蔵時間に
対しては、胚は更に低温で、例えば液体冷媒中でy?蔵
することが好ましい。これは・−15°/−40℃の長
期貯iは成長再b1、そのための解凍後の胚の生存能力
に適合しないらしいからである。−15°/−40℃の
温度は胚の代謝の完全な停止を確保するには高すぎるら
しい。
長期貯蔵が必要の場合、−15°/−40℃の凍結は第
1工程と見做すべきで、・−層低温の液体冷媒中で凍結
するのがよい。
1工程と見做すべきで、・−層低温の液体冷媒中で凍結
するのがよい。
この場合、凍結を全うするように、胚を一15°/−4
0℃で、18・〜24時間保持することが好ましい。
0℃で、18・〜24時間保持することが好ましい。
次に胚を例えば−70℃のメタノール浴中に、又は−1
96℃の液体窒素浴中に、又は仔魚の他の手段により非
常にO(い温度に冷却した、液体冷媒中に直接浸漬でき
る。
96℃の液体窒素浴中に、又は仔魚の他の手段により非
常にO(い温度に冷却した、液体冷媒中に直接浸漬でき
る。
この場合凍結胚は数年までの長1!11間悟゛蔵できる
。
。
次に凍結肝は人工又ロ天然ポリマー、例えLl’フルギ
ネートタイプのポリマーによりカブヒル化し、人]ニ挿
子を得ることができる。
ネートタイプのポリマーによりカブヒル化し、人]ニ挿
子を得ることができる。
胚は例えば40℃の水浴中に2分片JJI管を浸Wlす
ることにより解凍できる。管は氷が完やに1.11!解
する前に水浴か13回収して温lαの過大り魚汁−1y
Iを回避づることができる。完全解凍後、Il+【よ曲
中な洗滌により予備処理培地を除くことができ、洗滌肝
は例えばHurashigc 63よび5kOOfJ
I8地のような胚培養分野にお番ノる代表的its 養
Mに入れることがて”きる。
ることにより解凍できる。管は氷が完やに1.11!解
する前に水浴か13回収して温lαの過大り魚汁−1y
Iを回避づることができる。完全解凍後、Il+【よ曲
中な洗滌により予備処理培地を除くことができ、洗滌肝
は例えばHurashigc 63よび5kOOfJ
I8地のような胚培養分野にお番ノる代表的its 養
Mに入れることがて”きる。
この培地は蔗糖のような同化竹炭系−含1−JjJ貿を
例えば1〜10’JI”の濃度で含有でさる。
例えば1〜10’JI”の濃度で含有でさる。
このJtS#!Iはオーキシンを含まない点で注0ずべ
きである。
きである。
この再培養後、胚は非凍結胚に匹敵しうる発生を再開す
る。
る。
凍結および再培養後の生存は胚の二分裂槓成長に反映す
る。胚はカルス形成又は不定胚形成のような形態形成の
他の形態を現わづことなく次の発生中その構造の完全性
を4効に保有り゛る。
る。胚はカルス形成又は不定胚形成のような形態形成の
他の形態を現わづことなく次の発生中その構造の完全性
を4効に保有り゛る。
従って、本発明による貯蔵7J法U一方でほらとのまま
の形堰学的完全竹を右する胚の生存を供し、他方胚は苗
を再生する能力をh効に保持できる。
の形堰学的完全竹を右する胚の生存を供し、他方胚は苗
を再生する能力をh効に保持できる。
本発明は法例に上りさらに:を糟に説明する。これらの
例にタ、立って1.1存能力試験の記載おJ:び好まし
いf廂処即J3よび培地の組成を示す第1表により、体
肢の通例的製造例を示す。
例にタ、立って1.1存能力試験の記載おJ:び好まし
いf廂処即J3よび培地の組成を示す第1表により、体
肢の通例的製造例を示す。
体[1胞胚の製造例
にんじん細胞(Daucus Carota L、 )
の未分化細wAm濁体は第1表に示す組成を有するHU
raShiOeRヨヒ5kooa 液体1m (、:
しTsニー 20 !71−’1ptt?よび0.1M
1l−12,4−ジクロロフェノキシ酢酸を添加)に1
2日毎に継代j8養したく100IIlの培地に19の
バイオマス〉。すべでの操作は病魔フードの下で無菌條
件下で行13う。懸濁体は100 r、p、m、の偏心
回転運動する度拌機上に置き、24℃で200ルツクス
の照明下で16時間の照明時間培養する。
の未分化細wAm濁体は第1表に示す組成を有するHU
raShiOeRヨヒ5kooa 液体1m (、:
しTsニー 20 !71−’1ptt?よび0.1M
1l−12,4−ジクロロフェノキシ酢酸を添加)に1
2日毎に継代j8養したく100IIlの培地に19の
バイオマス〉。すべでの操作は病魔フードの下で無菌條
件下で行13う。懸濁体は100 r、p、m、の偏心
回転運動する度拌機上に置き、24℃で200ルツクス
の照明下で16時間の照明時間培養する。
8〜10日の培養後、III胞懸濁体は50〜180μ
汎の大きざのa胞塊のみを保苗するように濾過する。こ
れらの小集塊は心臓型胚、魚雷型肝および苗木段階まで
発生を継続ダる胚の前肢段階を表わす。小塊は洗滌し、
約1.5X103小塊/d培地の吊で2.4−ジクロロ
フェノキシ酢酸を含有しないHurashigeおよび
5kOO(+培地に入れる。
汎の大きざのa胞塊のみを保苗するように濾過する。こ
れらの小集塊は心臓型胚、魚雷型肝および苗木段階まで
発生を継続ダる胚の前肢段階を表わす。小塊は洗滌し、
約1.5X103小塊/d培地の吊で2.4−ジクロロ
フェノキシ酢酸を含有しないHurashigeおよび
5kOO(+培地に入れる。
10日間培養後、胚が形成した。mN4体は150〜6
00μ流の大ぎさの胚のみを保菌するように濾過する。
00μ流の大ぎさの胚のみを保菌するように濾過する。
生存能力試験
急速かつ簡単な生存能力試験は凍結後肢の生存能力割合
を評価するために開発された。
を評価するために開発された。
胚の生存能力割合を評価するために使用できる各種基準
のうち、 一胚の大ぎさの増加、および クロロフィル着色の外観、 は特に適する。
のうち、 一胚の大ぎさの増加、および クロロフィル着色の外観、 は特に適する。
これらの基準は各種方法、例えば目にJ:る計数又番よ
生化学試験(例えば着色試験)により評価できる。
生化学試験(例えば着色試験)により評価できる。
この試験の原理下で、解凍胚↓よ液体培!!i基に入れ
る。10日間の培avA、大きさが増加し、クロロフィ
ル着色の徴候を示す胚の数を記録1゛る。この数と存在
する胚の総数間の比は胚の生存能力割合を決定できる。
る。10日間の培avA、大きさが増加し、クロロフィ
ル着色の徴候を示す胚の数を記録1゛る。この数と存在
する胚の総数間の比は胚の生存能力割合を決定できる。
次に胚はこれらが苗木段階までその発生を継続できるよ
うに前記液体培地と同じ組成を有する固体培?1基に入
れる。
うに前記液体培地と同じ組成を有する固体培?1基に入
れる。
この同体j8地で10日間培養後、再生割合は苗木段階
まで発生した胚の数と胚の総数間の比として測定する。
まで発生した胚の数と胚の総数間の比として測定する。
第1表
HtlraShi(leおよびSkoog培地(p+1
5.8〜6)の組成 多ffi要素 N+14NO3 C,act −21120 MqSo ・71120 N03 K ト12 P O4 機番要素 0C12 CuSO−5120 Fe50 −7 112 0 Na2−EDTA MnSO4・4020 l Na2M0O4 ZnSO−70,O 3BO3 他の要素 ニコチン酸 ヂアミン(ビタミンB1) アデニン + 浸透圧上昇剤(予備処I!I!培地)■1 650 40 10 900 70 025 0.025 27゜8 31.3 22.3 0.83 0.25 06 6.2 素含有基質(培養M) 上記のように得た平均的大きさが550μmの魚雷型胚
の段階にあるにんじん体細胞胚は13591”の蔗糖を
含有し、オーキシンを含まないベトリ佃の液体Hura
Shige a3よび5kOO(l予備処理培地に約1
00個の胚/10d培地の開で入れる。
5.8〜6)の組成 多ffi要素 N+14NO3 C,act −21120 MqSo ・71120 N03 K ト12 P O4 機番要素 0C12 CuSO−5120 Fe50 −7 112 0 Na2−EDTA MnSO4・4020 l Na2M0O4 ZnSO−70,O 3BO3 他の要素 ニコチン酸 ヂアミン(ビタミンB1) アデニン + 浸透圧上昇剤(予備処I!I!培地)■1 650 40 10 900 70 025 0.025 27゜8 31.3 22.3 0.83 0.25 06 6.2 素含有基質(培養M) 上記のように得た平均的大きさが550μmの魚雷型胚
の段階にあるにんじん体細胞胚は13591”の蔗糖を
含有し、オーキシンを含まないベトリ佃の液体Hura
Shige a3よび5kOO(l予備処理培地に約1
00個の胚/10d培地の開で入れる。
これらの胚は1時+2!] 20℃で200ルツクス照
明下で予備処理する。次にこれら111.8−の予備処
理培地を含有する冷N1管に移す。寒冷管は家庭用フリ
ーザーに入れ、これらの内容物を1℃/分の割合で一6
℃に冷却し、次に0.4℃/分の割合で一6℃から一2
0℃に冷却する。
明下で予備処理する。次にこれら111.8−の予備処
理培地を含有する冷N1管に移す。寒冷管は家庭用フリ
ーザーに入れ、これらの内容物を1℃/分の割合で一6
℃に冷却し、次に0.4℃/分の割合で一6℃から一2
0℃に冷却する。
−20℃で24時間後、冷却管は2群に分離する。第1
群は2分間40℃の水浴中に凍結冷却管を浸漬すること
により解凍する。第2群は一196℃の液体窒素に浸漬
し、そこで1時間保持してから第1群と同じ方法で解凍
する。
群は2分間40℃の水浴中に凍結冷却管を浸漬すること
により解凍する。第2群は一196℃の液体窒素に浸漬
し、そこで1時間保持してから第1群と同じ方法で解凍
する。
全体の解凍後、胚は洗滌して予備処理培地を除き、53
F Il−11Aを含有し、オーキシンを含まない液体
HuraShiQeおよび5kOO(l培!1基に10
日問置く。次にこれらは同じ組成を有ケる固体培a基に
移す。
F Il−11Aを含有し、オーキシンを含まない液体
HuraShiQeおよび5kOO(l培!1基に10
日問置く。次にこれらは同じ組成を有ケる固体培a基に
移す。
予備処理又は凍結しなかった対照胚は同じ培養基に置く
。
。
固体培地で10日培養後、にlυじん苗を再生刀る胚の
能力を比較する。
能力を比較する。
対照胚のうち、46%は苗を再生できる。−20℃およ
び−196℃に凍結した胚では、再生割合はそれぞれ4
4%および43%である。
び−196℃に凍結した胚では、再生割合はそれぞれ4
4%および43%である。
苗を再生する胚の能力は予備処理することを条件として
凍結により彰胃を受けない。
凍結により彰胃を受けない。
毀1
DallCtlS CarOta L、にんじん体lf
I胞訃の2詳を選択する。
I胞訃の2詳を選択する。
1群は平均的大きさ300μ卯を有する心臓3IJ胚段
階の胚から成り、もう1つの群は平均的大ぎさ500μ
風を有する魚雷5°J胚段階の胚から成る。
階の胚から成り、もう1つの群は平均的大ぎさ500μ
風を有する魚雷5°J胚段階の胚から成る。
約100個の胚を含有する各5試料(A、B。
C,Dおよび対照)を胚の各群から採取する。
心臓型胚段階の胚の試料Ah、Bhおよびchおよび魚
雷型胚段階の胚の試料At、B仁およctは135 !
7 ! −’蔗糖を含有するNurashigcヨヒ5
koo(11BaMテ1 RFj、20℃で2ooルク
ス照明下で予備処理J゛る。
雷型胚段階の胚の試料At、B仁およctは135 !
7 ! −’蔗糖を含有するNurashigcヨヒ5
koo(11BaMテ1 RFj、20℃で2ooルク
ス照明下で予備処理J゛る。
次に試FIAh、nh、AtおよびF3tは約0.5℃
/分の割合で一20℃に冷却する。次これらは一20℃
に24時間保持する。試料AおよびAtは解凍し、一方
試料BhおよびBt−196℃の液体窒素に浸漬し、そ
こで解凍前時間保持する。
/分の割合で一20℃に冷却する。次これらは一20℃
に24時間保持する。試料AおよびAtは解凍し、一方
試料BhおよびBt−196℃の液体窒素に浸漬し、そ
こで解凍前時間保持する。
比較するため、試料chおよびCtは予備処J後−19
6℃の液体′iM素にI7J′接浸漬する。比較するた
め、試14o1”lF3よびDtは予備処理せずにIO
,5℃/分の割合で一20℃に冷却する。こ才らは24
時間後解凍する。
6℃の液体′iM素にI7J′接浸漬する。比較するた
め、試14o1”lF3よびDtは予備処理せずにIO
,5℃/分の割合で一20℃に冷却する。こ才らは24
時間後解凍する。
心N型胚および魚雷型胚試料は″P備処理も原本もしな
い。
い。
次に各種胚試料を591 ”1蔗糖を含有するHura
shige lよび5kOOQ ’a体培地に再培養す
る。
shige lよび5kOOQ ’a体培地に再培養す
る。
10日u!i養後、次の結果を得る:
胚の生作能力の割合(%)
試料
比較
予備処理を行なわないと、−20’Cの凍結胚(0)は
生存しないが、予備処P!!培地に1時間含浸すると一
20℃に凍結した心臓型胚および魚雷型胚段階のほとん
どすべての肝(A>の生存が確保される。同様に、液体
窒素に直接浸油した胚は1時間予備処理後でさえ生存し
ない(C)。
生存しないが、予備処P!!培地に1時間含浸すると一
20℃に凍結した心臓型胚および魚雷型胚段階のほとん
どすべての肝(A>の生存が確保される。同様に、液体
窒素に直接浸油した胚は1時間予備処理後でさえ生存し
ない(C)。
予備処理し、−20℃に速結後−196℃に凍結した胚
(8)は非常に満足できる生存能力′A11合を有する
。
(8)は非常に満足できる生存能力′A11合を有する
。
従って、胚を一196℃で貯蔵したい場合、これらは予
備IIB理し、−20℃に凍結4”る段階を経な番ブれ
ばならない。
備IIB理し、−20℃に凍結4”る段階を経な番ブれ
ばならない。
次に胚は液体培地と同じlfl成を有する固体培地に入
れる。
れる。
10日I8養後、試FIAおよびB、および対照試料の
胚の大部分は明白な分化根nIおよびクロロフィルイ菓
頂点をfする苗段階に発生した。
胚の大部分は明白な分化根nIおよびクロロフィルイ菓
頂点をfする苗段階に発生した。
これらの肝はカルス形成又は第2胚形成の徴候を全く示
さない。
さない。
143
心臓型胚段帛および魚ffl型胚段階のにんじん体11
f LJ 200 ルッ’) ス照IQ 下テ20 ’
C”C−各種1fl閤135 !J 1 ”1M糖を含
有するHurashigeおよびSkoog液体J8a
基で予備処理する。
f LJ 200 ルッ’) ス照IQ 下テ20 ’
C”C−各種1fl閤135 !J 1 ”1M糖を含
有するHurashigeおよびSkoog液体J8a
基で予備処理する。
次にこれらの胚は約0.5℃/分の割合で一20℃に冷
却する。−20℃で24時間後、いくつかの胚は液体窒
素に浸漬し、1時間保持する。
却する。−20℃で24時間後、いくつかの胚は液体窒
素に浸漬し、1時間保持する。
解凍後、胚(よ591 ”の蔗糖を含有するHuras
higeおよび5kooa液体培地上に冑く。
higeおよび5kooa液体培地上に冑く。
予#!処理又は凍結しなかった対照胚も培養する胚の生
存能力割合は10日培!l後測定する。
存能力割合は10日培!l後測定する。
次の結果を得る:
心臓型胚段階の胚の生存能力割合(%〉対照胚は90%
の生存能11割合を右する。
の生存能11割合を右する。
魚雷型胚段階の胚の生存能力割合、(%)対照胚1より
1%の生存能力割合を有する。
1%の生存能力割合を有する。
10日jF養後生存能力割合は心M型胚段階isよび魚
雷型胚段階の双方の胚に対し30分、1allv間又は
24時間の予備処]!I!時間では実際上同一であるこ
とがわかる。
雷型胚段階の双方の胚に対し30分、1allv間又は
24時間の予備処]!I!時間では実際上同一であるこ
とがわかる。
対照的に、24時間を超えると、生存能カ割tは予備処
理時間の増加につれて徐々に但十する。
理時間の増加につれて徐々に但十する。
この割合【よ72時間の予備処理時間後約35%ε下に
なる。従って、凍結に対づる胚の耐性は長W間の予備処
理の場合減少する。
なる。従って、凍結に対づる胚の耐性は長W間の予備処
理の場合減少する。
姓1
魚雷型胚段階のにんじん体細胞胚は135グ1−1の蔗
糖を含有するHurashigcおよびSkoog液体
培地で200ルツクス照明■で20’Cで各種時間予備
処理する。
糖を含有するHurashigcおよびSkoog液体
培地で200ルツクス照明■で20’Cで各種時間予備
処理する。
これらの胚lよ冷u1シ、約0.5℃/分の91合で一
20℃に凍結する。
20℃に凍結する。
一20℃で72時間後、胚は解凍し、5g1〜1の蔗糖
を含有するHurashigeおよび5kOQ(l液体
培養塁に入れる。
を含有するHurashigeおよび5kOQ(l液体
培養塁に入れる。
予備処理又は凍結しなかった対照胚も培養する胚の生存
能力割合は10BI5i培養後測定する。
能力割合は10BI5i培養後測定する。
次の結果を得る:
予備処@!R1m (分) 1 15 30 45
60生存能力削合(%)86 85 73 68 83
8020℃に凍結後、胚の生存能力割合はこれらのす
べての予備処理時間で良好であることがわかる。凍結に
対する胚の安定例は非常に急速に得られる。
60生存能力削合(%)86 85 73 68 83
8020℃に凍結後、胚の生存能力割合はこれらのす
べての予備処理時間で良好であることがわかる。凍結に
対する胚の安定例は非常に急速に得られる。
例5
550μ扉の平均的大きさを有する魚雷夕1胚段階のに
んじん体m胞胚を予備処理し、−20℃に凍結する。次
にいくつかの胚は例1記載の方法により液体窒素中に浸
漬する。
んじん体m胞胚を予備処理し、−20℃に凍結する。次
にいくつかの胚は例1記載の方法により液体窒素中に浸
漬する。
胚はこれらの温度で各種時間貯蔵する。次にこれらをW
凍し、5 gI−’のグルコースを含有するHtlra
Shi(10および5kooO液体培地に入れる。胚の
生存能力割合は一20℃又は−196℃でこれらの貯蔵
時間のII数として測定する。
凍し、5 gI−’のグルコースを含有するHtlra
Shi(10および5kooO液体培地に入れる。胚の
生存能力割合は一20℃又は−196℃でこれらの貯蔵
時間のII数として測定する。
予備処理又は?@結しなかった対照胚は72%の生存能
力割合を有する。
力割合を有する。
次の結果を得るニ
−20℃に凍結した胚の場合:
貯R時間 24 1ケ 2ケ月生存
能力割合(%) 611 69 0196
℃に凍結した胚の場合: 貯a時 24 間 1ケ月 2ケ
月生存能力割合(%) 66 67 67
−20℃又は−196℃に凍結後平均生存能力割合は1
日以下の貯NI時181では約67%である。
能力割合(%) 611 69 0196
℃に凍結した胚の場合: 貯a時 24 間 1ケ月 2ケ
月生存能力割合(%) 66 67 67
−20℃又は−196℃に凍結後平均生存能力割合は1
日以下の貯NI時181では約67%である。
この割合は一20’C又は−196℃で1ケ月貯蔵後も
変らない。2ケ月貯蔵後、−20’Cで貯蔵した胚のう
ちには生存はないが・、−196℃で貯蔵した胚では生
存能力割合(よ尚変らない。
変らない。2ケ月貯蔵後、−20’Cで貯蔵した胚のう
ちには生存はないが・、−196℃で貯蔵した胚では生
存能力割合(よ尚変らない。
K1
500μ屏の平均的大きさを有する魚雷fill肝段1
M(1)ニ1vUkA/ljfPfAi35g1 〜2
05’JJl−16)atsrJ度を含有するHura
shigeおよびSkoog液体培地で200ルツクス
照明下で1時間20”Cで予備処理する。
05’JJl−16)atsrJ度を含有するHura
shigeおよびSkoog液体培地で200ルツクス
照明下で1時間20”Cで予備処理する。
次に胚4よ冷却し、−20”Cに凍結ηる。−20℃で
1時間後、胚は解凍し、5gI 蔗糖を含有するHu
rash+geおよびSkoog液体培地に入れる。
1時間後、胚は解凍し、5gI 蔗糖を含有するHu
rash+geおよびSkoog液体培地に入れる。
予備処理又は諌結しなかった対照胚も培養する。
胚の生存能力割合は予備処理培地の蔗糖濃度の1廁数と
して10日培養後脚1足する。
して10日培養後脚1足する。
次の結果を得る:
生存能力割合(X) 22 41 77 82 65
14 88135 gI ”の蔗糖を含1−Jする培地
で予備処理した胚の生存能力割合(よ対照胚のものに匹
敵でさる。
14 88135 gI ”の蔗糖を含1−Jする培地
で予備処理した胚の生存能力割合(よ対照胚のものに匹
敵でさる。
この割合は100又は170!?j!”の蔗11濃度で
は尚かなり高い。
は尚かなり高い。
胚の生存能力は蔗gIim度が高すぎるが(2o51
’11 ’)又は低すぎる(35g1 >場合影響
を受ける。
を受ける。
Claims (10)
- (1)胚を浸透圧上昇剤を含有する培地で予備処理し、
予備処理後冷却し、−15〜−40℃の範囲の温度に凍
結することを特徴とする、植物胚の貯蔵方法。 - (2)浸透圧上昇剤は蔗糖である、請求項1記載の方法
。 - (3)予備処理培地は75〜190gl^−^1の濃度
の蔗糖を含有する、請求項2記載の方法。 - (4)−15/−40℃に凍結した胚は液体冷媒に浸漬
する、請求項1記載の方法。 - (5)予備処理は30秒〜36時間行なう、請求項1記
載の方法。 - (6)−6〜−40℃問の冷却速度は0.1〜1℃/分
である、請求項1記載の方法。 - (7)予備処理培地は浸透圧上昇剤を添加したHura
shigeおよびSkoog培地である、請求項1記載
の方法。 - (8)凍結胚を解凍し、洗滌して予備処理培地を除去し
、洗滌胚を培地で培養して苗に発育させることを特徴と
する、苗の生産に請求項1記載の方法の適用。 - (9)凍結胚を人工又は天然ポリマーにカプセル化する
ことを特徴とする、人工種子の生産に請求項1記載の方
法の適用。 - (10)請求項9により得た人工種子。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR8906738 | 1989-05-23 | ||
| FR8906738A FR2647465B1 (fr) | 1989-05-23 | 1989-05-23 | Procede de conservation d'embryons vegetaux |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0339019A true JPH0339019A (ja) | 1991-02-20 |
Family
ID=9381927
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2128092A Pending JPH0339019A (ja) | 1989-05-23 | 1990-05-17 | 植物胚の貯蔵方法 |
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|---|---|
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| JP (1) | JPH0339019A (ja) |
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| BR (1) | BR9002404A (ja) |
| CA (1) | CA2013821A1 (ja) |
| DE (1) | DE69017078T2 (ja) |
| DK (1) | DK0399158T3 (ja) |
| ES (1) | ES2068929T3 (ja) |
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| MX (1) | MX171279B (ja) |
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