JPH0358903A - 植物の病気及び植物の蓄積症を除去する方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 （産業上の利用分野） 本発明は、有効な薬剤を生或するストレブトミ！スｌｓ
ｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）属の微生物で，種、基質若し
くは植生を処理することにより、植物の病気及び植物の
蓄積症を除去する方法に関する。

（従来の技術及び発明が解決しようとする課題）温室に
おける植物の病気をくいとめるために、消毒法や基質の
交代作用（ｒｅｐｌａｃｅｕ＋ｅｎｔ　ｏｆ　ｔｈｅｓ
ｕｂｓｔｒａｔｅ）を用いたり、様々な栽培法を試るこ
と，或いは薬剤によって抑制すること、等の努力がなさ
れて来た。しかしながら、これらの方法は不便且つ高価
であり、特に薬剤によって抑制する場合は、周囲に不適
切な物質を持ち込むことになってしまう。このため、生
物学的な抑制方法に多くの注目が向けられるようになっ
た。特に、植物の病気の抑制は、化学的抑制剤の使用制
限があるために，残留物による薬害期間が存７Ｅするた
めに、更には，有効性についての充分な下調べがなされ
ないために、困難なことが尾多かった。

フィンランド特許第８２１，０９９号では，十壌性或い
は種子性の病気を除去するために、土壌中にス１−レプ
トミセス属のアクチノマイシ−１〜菌（ａｃｔｉｎｏｍ
ｙｃｅｔｅ　ｆｕｎｇｉ）を加える方法が使用されてい
る。これらのストレプトミセス属のアクチノマイシ一ト
菌は、種での病気の活動を抑制する他、病気にかかった
苗木から健康な苗木への病気の伝染を抑制したりする。

英国特許第１，３５７，５３８号は、植物の病気に明ら
かに作用するもので５ストレブトミセス属のオーレオ系
微生物（ｉｕｒｅｏｆａｃｉｅｎｔｓ　ｍｉｃｒｏＬ＋
ｅ）により生成される新しい抗生物質を開示している。

その有効な薬剤は、微生物の菌糸体から純粋分離される
。

米国特許第２，９９２，１６２号は、ストレプトミセス
属グリセウス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ　ｇｒｉｓｅ
ｕｓ）を用いることにより，菌増殖を抑止する抗生物質
、カンジシジン（ｃａｎｄｉｃｉｄｉｎ　）を生成する
方法について述べている。

芳香族へプタエン構造の抗生物質を生成するストレプト
ミセス　グリセオビリディス（ｇｒ　ｉ　ｓｅｏｖ−ｉ
ｒｊｄｉｓ）アクチノマイシート菌株を、種、基質或い
は植物に加える方法が植物の病気の抑制に有効であると
云うことは、現在も驚くべきこととして認識されている
。

Ｓ（ストレプトミセス）．グリセオビリディスアクチノ
マイシ一ト菌株は、例えば、Ａｎｄｅｒｓｏｎ等による
Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ　ａｎｄ　Ｃｈｅｎ＋ｏｔｈｅ
ｒａｐｙ　６（１９５６）１００−１１５中に述べられ
ている。

以前は、Ｓ．グリセオビリディスが芳香族へブタエンを
生或するとは認識されていなかった。

文献によると、抗生物質として大環状芳香族へプタエン
は次のようなタイプの一般構造を有する。

（以下余白） 糖誘導体 （ｓｕｇａｒ　ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ）ここで，ＲはＣ
ＨＪ，Ｏ｝Ｉ，Ｈ若しくはケトグループのいずれか、Ｒ
′はＣＨ，若しくはＩ−１である． 芳香族へプタエンが菌増殖を抑止する作用を有すること
は知られている。

（ａ題を解決する為の手段並びに作用）本発明の植物の
病気及び植物の蓄積症を除去する方法は、種、基質若し
くは植生を，ストレブ１へミセス　グリセオビリディス
　アクチノマイシ一ト菌株を添加することにより処理す
ることを特長とし，上記菌株が、上記式を有する放香族
ヘブタエン構造の抗生物質を生成するものであり，該抗
生物質が、約３６８，３８８及び４　１　２ｎｍ　（ｒ
ｌｇ媒としてＤＭＳＯを用いた場合）の波長で紫外線吸
収の極大値を有すること、及び赤外スペクトルでカルボ
ニル範囲１７５０−１５００ｃ＋ｎ−’で吸収すること
，で特徴付けられ、且つ、該抗生物質が、水を含有する
極性イＩ機溶媒及びジメチルスルホキシドに可溶性であ
ることを要旨とするものである。

本発明方法においては、有効な薬剤は、それを生成する
ストレプトミセスグリセオビリディスの菌糸体から純粋
分離する必要はなく、これに代って植物の病気を抑制す
るにおいて、Ｓ．グリセオビリディス懸濁液が種、基質
或いは植生に１０４胞子／　ｍ　Ｑと云う極めて低い濃
度で且つ１　ｄＱ　／　ｒｎと云う極めて低い度合いで
添加され、これにより経済的となり、また利用が簡単と
なる９芳香族へプタエンを生成するＳ．グリセオビリデ
ィスは，少なくとも下記の病原体に対して有効であるこ
とが知られている。即ち、アルテルナリア　ブラシシコ
ーラ（Ａｌｔｅｒｎａｒｉａ　ｂｒａｓｓｉｃｉｃｏｌ
ａ）、リゾクトニ　アソラニ（Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ
　ｓｏｌａｎｉ）　％　フサリウム　カルモルム（Ｆｕ
ｓａｒｉｕｍ　ｃｕｌｍｏｒｕｍ）　．　　Ｆ　．オキ
スポルム（Ｆ　．　ｏｘｙｓｐｏｒｕｌＩ１）、アグロ
ノベクテリウムタムファシエンス（Ａｇｒｏａｏｃｔｅ
ｒｉｕｍ　ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓ）、ピズイウムＳ　
Ｐ　（Ｐｙｔｈｉｕｍ　ＳＰ．）ボ１・リチイス　シネ
ラ（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ　ｃｉｎｅｒｅａ）　、フオモオ
プシス　スクレロチオデイス（Ｐｈｏｍｏｐｓｉｓ　ｓ
ｃｌｅｒｏｔｉｏｉｄｅｓ）ｔ”ある。上記例で用いら
れたストレプトミセス　グリセオビリディスの菌株は泥
炭（ｐｅａｔ）から純粋分離されたものである。

本発明を以下に実施例に基づきより詳細に述べる。

矢４１生Ｌ 有効薬剤の純粋分離 有効薬剤や抗生物質の純粋分離のため、一般的に使用さ
れている方法は、細胞マス（ｃｅｌｌ　ｍａｓｓ）及び
／若しくは培養液から直接抽出し、その後抽出物を濃縮
し且つ精製する方法である。Ｓ．グリセオビリディスは
、グルコース４ｇ／Ｑを含む培養基，イースト抽出物４
ｇ／ｆｌ及びモルト抽出物１　０　ｇ　／　Ｑ上で醗酵
させ細胞マスを分離した。

細胞マス若しくは培養液にアセトニトリル０．５−１容
量部加え、その混合物を振とうした。得られたＳ濁液を
３．００Ｏｒｐｍで１０分間遠心分離した。

上澄液を化合させ蒸発乾固させた。シロップ状の残留物
を水中にＳ濁させ、ＨＣＲによりＰ　Ｈを３．０に調整
した後、同容量のアセトニトリルをこれに加えその混合
物を振とうした。８０ｇ／ＱのＮａＣＱをこの混合物に
加え、その後アセトニトリルの大半を上澄液として分離
した。更に０．５容量部のアセトニトリルを用い低位相
を抽出し、上澄液を化合させた。必要によって、Ｎ　ａ
　Ｏ　Ｌ｛により上澄液を洗浄した。上澄液（ＰＨ７）
を環状蒸発罐中で蒸発乾固させ、メタノール（１０−２
０ｍＱ）中に溶解させた。得られた溶液をテストチュー
ブに移し、窒素気流中で約１ｍＱに濃縮し、その後該チ
ューブの底に沈殿物が生成した。ｌｍｋのメタノールそ
のチューブに加え，その後有効薬剤の大半部分が溶解し
、ほとんどの沈殿物が溶けずに残った。鮮明なダークブ
ラウンの溶液をＳｅｐｈａｄｅｘ　　Ｌ　Ｈ　２　０ゲ
ル力ラム中に入れクロマトグラフによる分析を行なった
。

失迩旌又 有効薬剤の精製 純粋分離された有効薬剤を、Ｓａｐｈａｄｅｘ　Ｌ　Ｈ
　−２０カラムを用いてカラムクロマトグラフイーによ
り精製した。使用された溶離剤はリン酸塩緩衝剤（０．
０６Ｍ，ＰＨ７．２）であり、各段階でこれにメタノー
ル（０−１００％）を加えた。混合物を０．４−０．６
ｍＱ／＋ｎｉｎの流量で溶離した。２若しくは４ｍＱの
留分を集め、その上えでフザリウム若しくはアルテリナ
リアに対する効力を調べた。更に、該留分の吸光度を不
純物については２５４ｎＩ１の波長で、有効薬剤につい
ては３８０ｎｍの波長で測定した。そして、クロマトグ
ラｌ２をプロット、Ａ２、。若しくはＡ３．。を留分ナ
ンバーの関数として示している（第１図）。

失見盤主 薄層クロマトグラフィーによる分析（ＴＬＣ）純粋分離
された留分の純度を評価するために、又，一方バイオオ
ートグラフィー及びＨ　Ｐ　Ｌ　Ｃ分析の為、薄層クロ
マ１−グラフィーによる分離方法を用いた。薄層クロマ
トグラフ分析を、定常相分質（ｓｔａｔｉｏｎａｒｙ　
ｐｈａｓｅ　ｎ＋ａｔｅｒｉａｌ）　　としてシリカ６
０を、また移動相（ｍｏｂｉｌ　ｐｈａｓｅ）としてク
ロロホルム、エタノール及び水の５０　：　５０　：　
８溶液を用いて行なった。薄層部（ｔｈｉｎ　ｌａｙｅ
ｒ）は可視光域及び紫外線領域で試験し、有効薬剤のＲ
ｆ値をバイオオートグラフィー法により決定した。バイ
オオートグラフィーに於いては、供試有機物（アルテル
ナリア　ブラシシコーラ）を含む栄養寒天（ｎｕｔｒｉ
ｅｎｔ　ａｇａｒ）を当該相の表面に施与し、その後２
８℃で培養することにより、有効薬剤を偏析させた．結
果は３−４日後に判明し、その時には有効薬剤のスポッ
トの位置を｛Ｂ試有機物が成長していない領域として観
測した。有効薬剤の試料をＳｅｐｈａｄｅｘ　Ｌ　Ｈ　
−　２　０カラムに通過させる際に得られたＲｆ値は０
．３３であった。

有効薬剤の液体クロマトグラフ分析の為、調整層（ｐｒ
ｅｐａｒａｔｉｖｅ　ｌａｙｅｒ）クロマトグラフィー
を分析層（ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　ｌａｙｅｒ）クロマ
トグラフィーと同じ方法で行ｋった。分離留分のＲｆ値
を測定し、各Ｒｆ値の領域に対応する試料を取り除き，
その試料から、テ１−ラヒドロフラン若しくはアセトニ
トリル及び水（５０：５０）の混合物により有効薬剤を
抽出した。その抽出物を効能試験及び液体クロマトグラ
フの評価に供した。

失見鮭士 高圧液体クロマトグラフィ−（ＨＰＬＣ）液体クロマト
グラフィーを．　Ｂｉｓｃｈｏｆｆ　ＯＤＳ｝１ｙｐｓ
ｒｓｉｌ　　Ｒ　Ｐ　＝　１　８逆相カラム及び等濃度
溶離法（ｉｓｏｃｒａｔｉｃ　ｅｌｕｔｉｏｎ）を用い
て行なった。溶離液として、ＥＤＴＡ水溶液又はアセｌ
・ニトリル若しくはテトラヒドロフランで混合したアン
モニウムアセテートを使用した。比較薬剤としてアンホ
テリシン（ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎ）　Ｂを使用した
。これは、非芳香族へプタエンタイプではあるが、アク
チノマイシ一ト菌により生威される有効薬剤と類似の化
合物である。有効薬剤のクロマトグラムを第２図に示す
。有効薬剤の主戊分を符号Ａ，Ｂ．Ｃで示す。含有物は
多或分ポリエンの混合物であり、分離されたポリエン或
分の全ては、ＵＶスペクトルによると、ヘプタエンであ
る。

上記有効薬剤は、ｔＪＶ光で処理すると分解する。

ＨＰＬＣに於いて明瞭なポリエンのピークは、ＵＶ一処
理サンプルの分析では消滅した。即ち、ＵＶ処理すると
、有効薬剤は活性を失い、その結果効力のなくなった薬
剤は有効薬剤のような特徴的なピークを示さなかった． このことから、その効能は上記ボリエンの構造に関係し
ていると結論付けることが出来る。

失嵐班旦 有効薬剤のＵＶ及びＩＲスペクトル 有効薬剤の紫外線スペクトルでは、ヘプタエンポリエン
の特性曲線が顕著である。アクチノマイシ一ト試料から
抽出した有効薬剤の混合物（ジメチルスルオキシド中４
０μｇ／ｍＱ）のＵＶスペクトルを第３図に示す。この
ＵＶスペクトルから判断すると、有効薬剤成分は、典型
的なヘプタン構造を形戊する７つの共役二重結合を含み
、而してこれらの極大波長はλ値で約３６８，３８８及
び４１２である（溶媒としてＤＭＳＯを用いた場合）。

ＩＲを用いた有効薬剤の特性測定を、細胞マスから油出
した溶液を濃縮して得られ且つ様々な溶媒で抽出するこ
とにより精製された結晶質の物質上で実施した。

赤外線スペクトルは、カルボニル領＠１，７５０−１，
５００ａｍ’出吸収を示した（第４図）。

失益班旦 有効薬剤が芳香族であることの確認 科学誌に掲載された記事によると、ヘブタエンが芳香族
であるか否かは、少むくとも，ヘプタエンをアルカリで
加水分解することにより、遊離パラーアミノアセトフエ
ノン（ＰＡＡＰ）を検出することにより、若しくは生合
成で有効薬剤分子に対し結鎖したパラーアミノ安息香酸
（ＰＡＢＡ）を検出することにより、実証され得る。Ｐ
ＡＢＡのラベリング（　Ｐ　Ａ　Ｂ　Ａ　−　ｌａｂｅ
ｌｉｎｇ）は、例えば放射性ＰＡＢＡを用い且つ有効薬
剤分子から放躬能を検出することにより、検出され得る
。加水分解テストの結果及び放射性ＰＡＢＡによりラベ
゛ル化された有効薬剤の放射能を以下に述べる。

ヘプタエン錯体中のパラーアミノアセトフェノンの確認 原理：純粋分離されたヘプタエン錯体の少量をアルカリ
加水分解し、クロロホルｌ１を用いて抽出した。パラー
アミノアセ１−フェノン（ＰＡＡＰ）を半調合（ｓｅｎ
＋ｅ−ｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ）　Ｈ　Ｐ　Ｌ　Ｃ力ラ
ムを用いてクロロホルム抽出物から純粋分離し，そして
このＰＡＡＰをガスクロマ１〜グラフィー及び質量分析
技術を用い分子量１３５に対応するシグナルを選択的に
ＩｌＩＯすることにより純粋分離成分中に確認した。分
析結果は、有効薬剤のアルカリ処理がパラーアミノアセ
トフェノンを溶液中に分離させたことを示した。このこ
とは保持時間と質量スペクトルの関係（第５図）での基
部で（ｏｎｔｈｅ　ｂａｓｉｓ）検出することができた
。第５図は、ＨＰＬＣを用いて純粋分離されたパラーア
ミノアセトフエノンに対応する戒分のＧＣ（ガスクロマ
グラフイー）一質量クロマトグラム（Ａ）と、ＰＡＡＰ
のＧＣ保持時間に対応する質量スベク１゛ル（Ｂ）とを
表す。

有効薬剤中の放射性”Ｃ−ＰＡＢＡの検出原理：菌株６
　１　（ｓｔｒａｉｎ　６１）をＹ　Ｍ　Ｇ　（ｙｅａ
ｓｔｅｘｔｒａｃｔ，　ｍａｌｔ　ｅｘｔｒａｃｔ，ｇ
ｌｕｃｏｓｅ　ｍｅｄｉｕｍ）培養基（実施例１と同様
の組成）中で戊長させ、且つ培養の最初に”Ｃ−ＰＡＢ
Ａ５００．０００−１，５００，ＯＯＯｄｐｍ／培養物
（ｄｐｍ　／　ｃｕｌｔｕｒｅ）を加えた。テストチュ
ーブを２８℃で約５０ｈ振とうし，その後有効薬剤を細
胞マスから抽出した。細胞マス抽出物及び培養基での有
効薬剤含有量をｉｉｌｌＪ定した。生合成の間に於ける
放射能の有効薬剤への移行を、放射能を測定するＨ　Ｐ
　Ｌ　Ｃ検出器（放射計−Ｒａｄｉｏｍａｔｉｃ）によ
り有効薬剤の放射能を決定することにより立証した。ラ
ベリングの結果を表１に示す。第６図は典型的なラジオ
クロマトグラムを示し、本図では最初のピークが１４Ｃ
−ＰＡＢＡを、次の幅広ピークが有効薬剤を示す。この
クロマトグラムは放射能が有効薬剤に混和したことを示
し、このことは有効薬剤が芳香性であることも示唆して
いる。このクロマトグラムは、また全ての有効薬剤或分
が識別され（ｌａｂｅｌｅｄ）且つ芳香性であることを
示している。

但し、率は；＠養基の活性度であり、その一部は有効薬
剤に混和している。ラベリング効率（ｌａｂｅｌｉＢ　
ｅｆｆｉｃａｃｙ）は添加された放射能に対する生成さ
れた有効薬剤の放射能比を基本として計算した。

有効薬剤の収量（ｙｉｅｌｄ　ｏｆ　ｅｆｆｅｃｔｉｖ
ｅ　ａｇｅｎｔ）　＝細胞マス中の有効薬剤μｇ／ｇ 比放射能（ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ）　＝
ｄｐｍ量／細胞１グラムに対する有効薬剤量 放射能（ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｄｐｍ）　二計算上の効能
（６５．２％）を用いてｃｐｍ表示度数（ｒｅａｄｉｎ
ｇ）がら計算されたｄｐｉ＋表示度数 ラベリングテストの結果は，放射能の一部が有効薬剤に
侵入していることを示す。ラジオクロマトグラムによれ
ば、有効薬剤は１４Ｃ一放射能で識別され、しかしＰＡ
ＢＡの一部はそのまま残り且つ有効薬剤と共に細胞マス
から抽出された。このように，細胞マス抽出物中の識別
された有効薬剤の放射能に対する１４Ｃ−ＰＡＢＡの放
射能の比はおよそ０．５６であった。加えて、混和して
いない多量のＰＡＢＡが、培養基中に、抽出物に比八で
約１．７倍検出された。上記方法によって分析されたサ
ンプル中に、全部で６２２，０００ｄｐｉ＋（サンプル
２〉及び８４０，ＯＯＯｄｐｍ　（サンプル３）、即ち
培養物に加えられた放射能の６１％及び５５％が検出さ
れた。放射能の残り（ｂａｌａｎｃｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　
ａｃｔｉｖｉｔｙ）は細胞マス中に抽出されなかった物
質中に大半が残存した（その放射能は測定されなかった
）。

結果は、有効薬剤が識別された・ことを示し、刊行され
た調査データの存在に基づき、その放剥能は芳香族グル
ープ（パラーアミノアセトフェノン）の薬物作用（ｍｅ
ｄｉｃａｔｉｏｎ）により有効薬剤分子に関係している
と結論付けることができる。このように、研究対象とさ
れたアクチノマイシ−１ヘ閑株が芳香族へプタエンを生
處することは明らかである。

大黒ｆｆｉ 有効薬剤の溶解性 有効薬剤を含む細胞マスから抽出された蒸発残渣につい
ての各種溶媒中での１８解性を、０．１＋ｎＱバッチの
検討対象とされた溶媒に２■の沈殿物を加えることによ
り検討した。

有効薬剤は、アセトニトリル、メタノール，アセトン及
びテトラヒド口フラン更にＤＭＳ○の水溶液のような水
を含む極性有機溶媒に溶解した。

失見鼻炙 純粋分離された有効薬剤沈殿物の効能 純粋分離され且つ凍結乾燥された有効薬剤を，デイメチ
ルスルホキシド（ＤＭＳＯ）ｌｍｇ／１＋ｏ（１に溶解
し、それらのＭｕＣ値（極小の抑制０５度、ｍｉｎｉｍ
ａｌ　ｉｎｈｊｂｉｔｏｒｙ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉ
ｏｎ）　　を溶液希釈広によりｉｉｌ！定した９、結果
を表２に示す。

Ｋ一主 ＭＩＣ値（μｇ／ｍｕ）を用いて評価した各鈍枠分離さ
れたヘプタエンｔ４体及び基準薬剤の溶解能溶液希釈テ
ス１・ ここで、 Ｃａｎはカンジシジン（Ｃａｎｄｉｃｉｄｉｎ）、Ａｍ
Ｂ はアンホテリシン（Ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎ）　Ｂを
表す。

上記溶液希釈テストによると、有効薬剤試料ＴＡ５４及
びＴＡ５４１．１（両者共アルカリ洗浄された有機相か
ら得られる）は、カンジシジンとほとんど同じ効果があ
り、アンホテリシンＢよりは幾分効果がある。

ボリエン含有量（ＨＰＬＣ分析におけるピーク高さの総
和）の関数としての純粋分離された沈殿物のＭＩＣ値は
，カンジシジンと比較した（第７図）試料の純度と云う
考えを提偶する。図は、ポリエン含有量が効能の増加（
Ｍ　Ｉ　Ｃ値の減少）に伴いどのように増加しているか
を明瞭に示している。純粋分離された有効薬剤ＴＡ５４
及びＴ　Ａ　５４１１の純度は、参照薬剤として用いた
カンジシジンのオーダーにほとんど同じである。

夷見鮭ユ ビート基質上でのカリフラワーを立ち枯れさせるアルテ
ルナリアに対するＳ，グリセオビリディス及び他のアク
チノマイシ一ト菌株（１−１０）の作用、及び液状培養
物中でのこれらの菌株にょる有効薬剤の生戊状況につい
て検討した。種をアルテルナリアにより汚染させ且つ種
々のアクチノマイシ一ト菌株（１０“胞子／　ｍ　Ｑ　
）の懸濁水溶液で処理した。結果を表３に示す。参照菌
株８−１０はＳ．グリセオビリディス　アクチノマイシ
一ト菌株の場合もあり得る。

（以下余白） 表一升 Ｓ．グリセオビリディス 参照菌株 ここで、 ネにおけるＯは健全であること、 １は 発病したこと、 ２は枯れてしまったことを表す。

発病抑制効果を次の式に基づき計算した。

表は、有効薬剤を生成する菌株は高い抑制効果を提供し
ていることを示す。

失適舅上立 有効薬剤を生成するグリセオビリデイス　アクチノマイ
シ一ト菌株（菌株１．４及び５）の脂肪種子性セイヨウ
アブラナを立枯れさせるリゾクｌ・ニア（Ｒｈｉｚｏｃ
ｔｏｎｉａ）に対する作用を蒸気処理された土壌基質上
で検討した。該基質をリゾクトニアで汚染させ且つ種を
アクチノマイシ一ト懸濁水溶液（濃度１０“胞子／　ｍ
　Ｑ　）で処理した。結果を表４ｌこ示す。

勇　４ 脂肪種子性セイヨウアブラナを立枯れさせるリゾクトニ
アを抑制することは難しく、それに対し化学的に抑制す
る適当な方法は存しない。而して、本発明方法によって
得た結果は非常に優れている。

失旌輿圭ユー 化学薬剤により抑制することが、カーネーションに用い
られて来たが、これは満足するものではかかった。カー
ネーションのフサリウム立枯病をＳ．グリセオビリディ
ス（菌株１及び２）により抑制することについて検討し
た。その実験を，市販されている温室内でピー１〜基質
上でＩｉ培することにより行なった。結果を表５に示す
。

表　　５ 処理Ｎαについて： １；非処理例 ２；或長期の１ｍに、１％アクチノマイシ一ト懸濁液（
１　０’胞子／　ｒｇＱ　）を２回噴霧した。

３；植付ける前に根を１％懸濁液に浸し、成長期に０．
１％懸濁液（１０４胞子／　ｌＩＩＱ　）を２回噴霧し
た。

４；根を１％懸濁液に浸し、成長期に０．１％懸濁液（
１０４胞子／　ｍ　Ｑ　）を２回噴霧した。

５：１％懸濁液により根の浸漬と噴霧を月１回づつ行な
った。

失凰舊実業 脂肪柚子性セイヨウアブラナの収穫量に対する各種スト
レプトミセス　グリセオビリディスの数的効果を、畑で
のテストにより検討した。結果を表６に示す。

（以下余白） 表　　６ 但し、　実施例１０−１２に既述されたアクチノマイシ
一ト菌株の番号付けは、実施例９の表３中でした番号付
けに対応している。

（発明の効果） 本発明方法においては、植物の病気や植物の蓄積症を除
去するに有効な薬剤として、Ｓ．グリセオビリディスの
懸濁液が使用され、しかもこの懸濁液は種、基質或いは
植生に対し極めて低濃度且つ低頻度で添加されるだけで
有効であるから経済的であり且つ簡易である。

【図面の簡単な説明】

第ｌ図はグロマトグラムをスポットし留分ナンバーの関
数として表わした図、第２図は有効薬剤のクロマトグラ
ム，第３図は有効薬剤混合物のＵＶスペクトル、第４図
は赤外線スペクトル、第５図は保持時間と質量スペクト
ルの関係を表す図、第６図は典型的なラジオクロマトグ
ラム、第７冒１は有効薬剤濃度とＭＩＣ値との関係を示
す図である。 一以上一

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １、種、基質若しくは植生を、ストレプトミセスグリセ
   オビリディスアクチノマイシート菌株を添加することに
   より処理することを特長とし、上記菌株が、式 ▲数式、化学式、表等があります▼ （但し、ＲはＣＨ＿３、ＯＨ、Ｈ若しくはケトグループ
   のいずれか、Ｒ′はＣＨ＿３若しくはＨである）を有す
   る放香族ヘプタエン構造の抗生物質を生成するものであ
   り、 該抗生物質が、約３６８、３８８及び４１２ｎｍ（溶媒
   としてＤＭＳＯを用いた場合）の波長で紫外線吸収の極
   大値を有すること、及び赤外スペクトルでカルボニル範
   囲１７５０−１５００ｃｍ＾−＾１で吸収すること、で
   特徴付けられ、 且つ、該抗生物質が、水を含有する極性有機溶媒及びジ
   メチルスルホキシドに可溶性であること、を特徴とする
   植物の病気及び植物の蓄積症を除去する方法。 ２、種、基質及び植生に、Ｓ．グリセオビリディス菌株
   が懸濁液として添加されることを特徴とする請求項１記
   載の方法。 ３、Ｓ．グリセオビリディス菌株を、少なくともおよそ
   １０＾３胞子／ｍｌを含む懸濁液として添加することを
   特徴とする請求項１又は２記載の方法。 ４、Ｓ．グリセオビリディス菌株を基質に対し最低１ｌ
   ｄ／ｍ＾２の割合で施与することを特徴とする請求項３
   記載の方法。 ５、Ｓ．グリセオビリディス菌株を、植え付ける前にア
   クチノマイシート懸濁液に苗木の根を浸漬することによ
   り及び／若しくは植生にアクチノマイシート懸濁液で噴
   霧することにより添加することを特徴とする請求項１、
   ２又は３記載の方法。