JPH0361492A - パッケージング欠陥hivプロウイルス、細胞系及びその使用 - Google Patents
パッケージング欠陥hivプロウイルス、細胞系及びその使用Info
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
ive)I(IVプロウィルスを含むベクター、)II
V包装欠陥細胞系を作製するためのかかるベクターの使
用、及び得られた細胞系の使用に係る。より好ましくは
、HIVプロウィルスがHIV−1プロウイルスである
。
、L^■またはI(TLV−I[I /LAVとも呼ば
れる)は後天性免疫不全症候群(エイズ(AIDS))
及び類縁疾患の病因物質である[Barre−Sino
ussi等、5cience 220:868〜871
(1983) ;Gal lo等、5cience 2
24:500−503(1984);Levy等、5c
ience 225:840−842(1984);P
opovic等、5cience 22±:497〜5
00 (1984) :5arnHadharan等、
5cience 224:506〜508;5ieHa
1等、N、 En 1. J。
。この疾患の特徴は、長い無症候期間後に免疫系及び中
枢神経系に進行性の変性を生じることである。ウィルス
の研究の結果から該ウィルスの複製が高度に調節されて
いることが判明し、組織培養ではCD4陽性ヘルパ−T
リンパ球サブセットへの潜伏性及び溶解性感染がともに
生じる(Zagury等、5cience 231:8
50〜853(1986))。また、感染患者において
はウィルスの発現が免疫応答を回避するように調節され
ると考えられる。nxy−iの調節及びゲノム構成の分
子論的研究から、該ウィルスが多数の遺伝子をコードし
ていることが判明した(Ratner等、Nature
313:277〜284 (1985) ; 5an
chez−Pescador等、5cience227
:4B4〜492(1985) :Muesing等、
Nature 313:450〜457(1985)
:Hain−Hobson等、廁月−40:9〜17(
1985))。
即ちオンコウイルス、スブーマウイルス及びレンチウィ
ルスのいずれかに所属する。オンコウイルスの感染は典
型的には悪性疾患を随伴する。これらのウィルスは典型
的には、約8,000〜io、oooのヌクレオチドか
ら戒りむ工、鰭±及び斐ヱ遺伝子とLTR(long
terminal repeat)配列とを包含するプ
ラス鎖の1本gRN^ゲノムを含む、いくつかのオンコ
ウイルスは腫瘍遺伝子を含む、スプーマウイルスは組織
培養で泡沫状:S胞変性を誘発するが、in vivo
では病原性でないと一般に考えられている。レンチウィ
ルスによる感染は一般に緩慢であり、長い潜伏期間後に
慢性の衰弱性疾患を発病させる。これらのウィルスは、
む工、回生及びenv遺伝子に加えて、更に調節機能を
有する多数の遺伝子を有する。
類されている。その理由は、感染が緩慢でありまたレン
チウィルスに共通の構造的特性を有するからて゛ある(
Ilnase、八、 T、、Nature 322:1
30〜136(1986)参照〕。
4−1とロエ及び卸ヱ遺伝子を有するCtlaselt
ine。
d Immune DeficiencySynd
rome、1:217〜240(1988):l。ur
v−tciまた、更にウィルス複製を調節する遺伝子を
有する。HIVlゲノムは、す工、すり、 ta工、r
ev 、■!及びUエタンバク質をコードしている(H
aseltine、 LAl、Journal or
Acquired Immune Deficienc
y Synd−rome、Jt11L〕、更に、HIV
のLTRは、組込み、転写及びポリアデニル化に重要な
cis作用(cis−actiB)配列を含む、付加的
な杉1作用シグナルは、新しいHIV遺伝子産物のいく
つかによってHIV配列の調節を可能にする(Hase
ltine、 H,A、、Journal of八へq
uirecl Immune Deficienc
y Syndrome+ 正[JL;5odrosk
i等、5cience 231:1549〜1553
(1986);へrya等、5cience 229:
69〜73(1985):5odroski等、5ci
ence 227:171〜173(1985);5o
droski等、Natureu上:412〜417(
1986) ;Feinberg等、廁旦−46:80
7〜817(1986) Jong−Staal等、A
IDS Res 、 and tlumanRetro
viruses 3:33〜39(1987):これら
の文献の記載内容はすべて本明細書に含まれるものとす
る〕。
、5′主要スプライス供与部位と四4伝子開始コドンど
の間の領域は高度に保存されている(Myers、 G
−等、Theoretical Biolo and
Bio−吐り山上、(1988))。
必要な産物をコードする0例えば、肋0゜遺伝子は、H
IV複製及び遺伝子発現に重要な14kDのタンパク質
をコードする(Rosen、 C,^1等、Natur
e 319:555〜559(1986);5odro
ski、 J、等、5cience 227:171〜
173(1985) :^rya等、5cience2
29 : 札炙: S o d r o s k i等
、5cience 229:fi;Dayton。
れらの文献の記載内容はすべて本明細書に含まれるもの
とする〕。
−r o−s k i等、Nature 321:41
2〜417(1986);この文献の記載内容は本明細
書に含まれるものとする〕。
ロエ遺伝子開始コドンとの間に存在する0王作用配列が
ウィルスRNへをビリオンに有効に包装するために必要
であることが知見された(Bender、 M、へ1等
、J、Virol 61:1639〜1646(19
87);Katz、R。
1986);Mann、 R,等、廁旦−33:153
−159(1983);Pugatsch、 T、等、
Vir。
atanabe、 S、等、Proc 。
990(1983);Eglitis。
14(198B)、これらの文献の記載内容は本明細書
に含まれるものとする〕、これらの配列に加えて、■工
遺伝子と部分的に重複する配列が、Mo1oneyマウ
スの白血病ウィルスにおいてウィルスRN^のキャプシ
ド封入効率に寄与することが知見された〔^dam、
M、^1等、J、 Virol、 62:3802〜3
806(1988))、レンチウィルスRN^(例えば
HIV RN八)をビリオン粒子に包装するために必要
なシグナルはまだ同定されていない。
、このレトロウィルスのライフサイクルは完全には解明
されていない。
多数行なわれているが、成功の報告はいまだ皆無である
。その理由の1つは、ウィルスの活性な抗原性部分の保
存の欠如にあり、いま1つは、ウィルスタンパク質及び
/または失活ウィルス粒子の機能的に重要な領域の免疫
原性が弱いことにある。
あり同時゛に、ウィルスRNAがビリオンに包装される
ことができないために致死性でないプロウィルスを開発
することは極めて重要である。この包装欠陥プロウィル
スベクターの使用によって、ウィルスの包装メカニズム
の研究、及び該包装メカニズムを妨害する戦略の開発の
ために有用な包装欠陥側胞系の作製が可能であろう。か
かる包装欠損(negative)プロウィルスによっ
て産生されるビリオンの重要性は、ワクチンとして使用
できること、また所望の遺伝子を哺乳類細胞に有効に導
入する系としても使用できることである。
Vゲノムに対応する十分な数のヌクレオチド配列(HI
Vヌクレオチド)を含むが、HIVゲノムの5゛主要ス
プライス供与部位とFiAL遺伝子開始コドンとの間の
ヌクレオチドに対応する、ウィルスRN^をビリオンに
有効に包装するための十分な数のヌクレオチド(HIV
包装配列)を含まないベクターの開発に成功した。好ま
しくはこのHIV包装配列は、5゛主要スプライス供与
部位とu主遺伝子開始コドンとの間の領域に対応する。
位の直ぐ下流からL4−開始コトンの約14塩基上流ま
でのセグメンl−に対応する。この配列の1つの具体例
は、配列昌^AATTTTGACTへGCGGへを有す
る19塩基から成るセグメントである。
換させるとHIV包装欠陥細胞系が得られる。好ましく
は、細胞系を形質転換するために少なくとも2つのベク
ターを用いる。これらのベクターは両者を合わせるとH
IVIL!i、L凰びenv産物を発現するために必要
なHIVヌクレオチドを含むが、各ベクター単独では上
記の3つの産生物全部を発現するために必要なヌクレオ
チドを含まない。更に、各ベクターは、HIVゲノムの
5″主要スプライス供与部位と01遺伝子との間のヌク
レオチドに対応する、HIV RN八を有効に包装する
ための十分な数のヌクレオチドを含まない、各ベクター
が異なるマーカー遺伝子を含むのが好ましい。
であろうが、これらのビリオン内にI(rV RNAを
包装することはできないだろう。従ってこれらのビリオ
ンは、抗体を産生するために使用でき、ワクチンとして
またはHIVに感染し得る別の細胞系に所望の遺伝子産
物を移入する手段として使用され得る。
が可能であることを知見した。発明者等は、1(IVウ
ィルスの5°主要スプライス供与部位とm遺伝子開始コ
ドンとの間の領域が、)IIV RNAをビリオンに包
装するために必要な配列を含んでいることを知見した。
HIVゲノム由来のヌクレオチドに対応するヌクレオチ
ド配列を含むが、5′主要スプライス供与部位とm遺伝
子開始コドンとの間の領域に対応する、HIV RNA
を有効に包装するための十分な数のヌクレオチドを含ま
ない包装欠陥1(IVプロウィルスを含むベクターを作
製することが可能である。
及びサル免疫不全ウィルス(SIV)に対応する(Ra
tner等、Nature 313、fi; S a
n c h e z −P e s c a d o
r等、5cience227、前LIL; M u e
s i n g等、Nature 313、前二[;
Ha i n −11o b s o n等、罰旦?
没、1iJ1;Guyader、 M、等、Natur
e326 :662〜669(1987) ;Chak
rabarti等、Nature 328:543〜5
47(1987);Hirsch、 V、等、Ce11
49:307〜319(1987) ;これらの文献の
記載内容はすべて本明細書に含まれるものとする〕。
直ぐ下流にあり且つu主遺伝子開始コドンの直ぐ上流に
あるセグメントに対応するHTV包装配列を含まない。
基から2塩基までの範囲、例えば上流約14塩基または
5塩基のヌクレオチドを含みなからも依然として包装欠
損であった。1つの実施態様ではベクターが、5°主要
スプライス供与部位の約9塩基下流から始まり■工開始
コドンの約14塩基上流まで続くヌクレオチド配列を含
まない、残存すべき塩基の数は大幅に違っていてもよい
0例えばHIV−1の■9塩基対の欠失即ち配列^^^
AATTTTにACTAGCGG^の欠失は十分に包装
能力を喪失させるが(第1図参照)、この領域のより小
さい欠失でさえも包装効果を喪失させる。実際、この領
域の約5塩基の小さい欠失が包装能力を除去できると予
測される。従って、当業者は本発明の開示に基づいて特
定の欠失のサイズを容易に決定できる。
Vゲノムのヌクレオチドに対応する十分な数のヌクレオ
チドを含むHIVヌクレオチドセグメントを含んでいな
ければならないが、前記のごとく5′主要スプライス供
与部位と1m!4m遺伝子開始コドンとの間の領域に対
応する、ウィルスRN^をビリオンに有効に包装するた
めの十分な数のヌクレオチドを含んでいてはならない。
立するために、かかる細胞系が感染性HIVを全く産生
しないのが好ましい。これらの包装欠陥ベクターによっ
て形質転換された細胞系は、細胞が包装欠陥であるため
感染力が弱いが、ある種のRD八は依然としてビリオン
に包装され得る。従って、HIVヌクレオチドセグメン
トが全HIVゲノムに対応せず、その結果として、ウィ
ルスRNAがビリオンに包装されても包装されたものが
複製コンピテントウィルスにならないのが好ましい。
ィルス包装に必要な配列を含まない2つ以上の異なるベ
クターを作製する。次いで、各ベクターを細胞にコトラ
ンスフエクトすると、細胞は全部のHIV構造タンパク
質を発現しビリオンを産生ずるであろう。1つの好まし
い実施態様では、ベクターがHIV LTRに対応する
配列を含まないがプロモーター領域及び/または別のゲ
ノムのポリアデニル化配列に対応する配列を含むであろ
う。
定宿主細胞に基づいて容易に決定され得る。
上流にHIVタンパク質を発現させ得る配列を含み、第
2のベクターが残りのタンパク質を発現させ得る配列を
含む0例えば1つのベクターが、辻−始コトンの上流か
ら蜆4伝配列列までの5′側の多くの遺伝子産物(5’
−most gene products)を発現させ
るのに十分な数のヌクレオチドに対応するHIVヌクレ
オチドセグメントを含み、他方のベクターが、む工遺伝
子配列の下流に存在し機能性斐ヱ遺伝子配列を含む十分
な数のヌクレオチドに対応するHIVヌクレオチドセグ
メントを含む。
中の既知の制限エンドヌクレアーゼ部位を利用し、これ
らのベクターをHIVゲノムの発表された配列から化学
的に合成するかまたは多くの入手可能なHIVプロウィ
ルスから誘導し得る。
してもよい、即ち、これらの異なるベクターを予め選択
した細胞系にコトランスフェクトし、両方のマーカーを
含む細胞を捜し出すことによって2つのベクターでコト
ランスフェクトされた細胞系を作製してもよい。かかる
細胞は全てのHIVタンパク質を産生し得る。しかしな
から、ビリオンは産生されるであろうが、全ウィルス配
列に対応するIINAはこれらのビリオンに包装されな
いであろう、必要に応じて3つ以上のベクター、例えば
むニーとり一ベクターとりヱベクターとviu■エベク
ターとを使用することも可能である。
は哺乳類細胞系、例えばCV−1、He1a、Raji
、RD、 SI’1480またはCIO細胞系を使用す
る。
LTR以外のプロモーターを使用してもよい。
トロール下に遺伝子を優先的に発現させるプロモーター
を使用する0例えば、ay−iまたはHe1a#胞中で
遺伝子を発現させるにはCMVプロモーターの使用が好
ましいであろう、当業者は、使用される特定の宿主細胞
系に基づいて、使用する特定プロモーターを容易に決定
し得る。
に、HIV LTR及び/またはプロモーターを増強す
るエンハンサ−配列をベクターに付加してもよい、当業
者は宿主細胞系に基づい゛C特定のエンハンサ−配列を
容易に決定し得る。
ンパク質のごとくウィルス産物のレベルを増進するため
にHIV LTRに作用するウィルス性エンハンサ−タ
ンパク質または細胞性トランスアクチベーションタンパ
ク質を発現するベクターを付加することも可能である。
F x−B、UV光反応性因子及び当業者に公知のその
他のT細胞活性化因子である。
ベクターを使用して、ビリオンがHIV RNAを含ま
ないことを除いてはHIVビリオンに等しいビリオンを
産生ずる細胞系を作製できる。ビリオンはこれらの細胞
から容易に得られる。Sえば、細胞を培養し上清を採集
する。所望の用途次第では、ビリオン含有上清を使用し
てもよく、またはこれらのビリオンを標準法で上清から
分離してもよい。典型的には、勾配遠心、濾過等で分離
する。
て有用である。これらのビリオンはHIVビリオンに対
する抗原性応答を生じさせるために使用でき、また、こ
れらのビリオンの内部がウィルスRN^を含まないこと
以外はこれらのビリオンは実際の■IVビリオンと同じ
であるので、製造されるワクチンは特に有効である。
するために使用でき、得られた抗体を種々の目的、例え
ば、ビリオンのスクリーニング、ビリオンに対する標的
系の開発、等に使用できる。
例えば異種遺伝子(heterologous gen
e)を哺乳類細胞に導入する手段として極めて有用であ
る。
細胞に所望の遺伝子配列を包装するための極めて有効な
手段として使用され得る。このためには、HIvウィル
スの包装ヌクレオチド(HIV包装領域〉に対応する十
分な数のヌクレオチドを含むヌクレオチドセグメントと
所定の遺伝子とを含むベクターを調製し、前記包装配列
と前記所定の遺伝子とを、包装、逆転写、組込み及び遺
伝子発現のための十分な数のHIV LTR由来の配列
に対応する配列と結合させる。使用される包装領域は好
ましくは、少なくとも5′主要スプライス供与部位とm
開始コドンの直ぐ上流との間の領域に対応し、より好ま
しくは、5゛主要スプライス供与部位と1+遺伝子のB
a11部位との間の領域に対応する。このベクターを使
用してHIV包装欠陥細胞の1つをトランスフェクトす
ると、このベクターに由来のヌクレオチド配列がビリオ
ンに包装されるであろう。これらの「包装されたHIV
、遺伝子は、HIVによって感染され得る細胞の標的と
なり得る。この形質転換方法は現行の方法よりもはるか
に効率がよいと期待される。更に、遺伝子を適当に選択
することによって、HIVの感染方法をモニターするこ
とも可能である。
。
クルの種qの時期を研究するために使用され得る。
がRNAを包装しないからである。
たものであり、本発明の範囲がこの実施例に限定される
と解釈してはならない。
を第1図に示す、第1図は、後述するベクターpHXB
A Pi中の5′主要スプライス供与部位(SD)及び
欠失部位を示す、この領域の19bpの欠失は、Fis
her、^、G。
)のプラスミドpHXBc2に含まれる感染性111V
−1プロウイルスクローン中で作製されたものである。
子発現を行なわせるSV40起源の複製を有する。 K
unkel、 T、 A、笠、Methods in
Enz molo 154:367〜382(198
7)に記載のごとき特定部位の突然変異誘発によって突
然変異を誘発し、DNA配列決定によってその配列を確
認した(Sanger、 F、等、Proc、 Nat
l、八cad、 Sci。
たプラスミドをpHXI3ΔP1ト命名した。
変異の効果を鑑定するために、DEAE−デキストラン
法(Lopata等、Nuc l 、^aids Re
s、 12:5707〜5717(1984) :Qu
een & Baltimore、 Ce旦−33ニア
41〜748(1983);5odroski 、 J
、等、5cience 231:1549〜1553(
1986) 、これらの文献の記載内容は本明細書に含
まれるものとする〕によってcos−を細胞にプラスミ
ドp!(XBc2及びp II X BΔP1をトラン
スフェクトした。トランスフェクションの48時間後に
、3SS−システィンで放射性標識したC05−IHI
胞の溶解液と上清とを19501工イズ患者血清で沈降
させた(Sodroski、 J、等、5cience
231、糺座〕、細胞溶解液中で検出されたウィルス
タンパク質の総レベルは、野性型HXBc2を含むベク
ター及び■IV包装欠陥HXBΔP1を含むベクターの
双方で同等であった。第2A図を参照されたい、第2A
図は、19501患者血清による3sS標識ウイルスタ
ンパク質の免疫沈降を、DNAによるトランスフェクシ
ョンなしくレーンl及び4〉、または10μgのpHX
Bc2でトランスフェクション(レーン2及び5)もし
くは10μgのpHXBΔP1でトランスフェクション
(レーン3及び6)を行なったCO5−1細胞の溶解液
(レーン1〜3)または上清(レーン4〜6〉で測定し
た結果を示す。
ルはpHXBc2またはpHXBΔP1でトランスフェ
クトされた細胞の両方で同等であった。CO5−1al
胞の上清から沈降したウィルスタンパク質の総レベルは
pHXBΔP1のほうがpHXBc2よりもやや低かっ
た。 pHXBΔP1でトランスフェクトされたCO5
−14jl胞の上清中で測定された逆転写酵素(RT)
活性の量は、p)IχBe2ベクターでトランスフェク
トされた細胞の上清中で測定された量の60%であった
(データ示さず)、 pHXBΔP1でトランスフェク
トされたcos−i細胞をトランスフェクションの48
時間後に固定して電子顕微鏡で観察した。正常HIV−
1形態をもち出芽形(budding form)を含
むウィルス粒子が観察された。第2B図はp)IXBA
PIでトランスフェクトされたCO5−1細胞の電子顕
微鏡写真を示す。
効果を鑑定するために、pHXBc2及びpHXBΔP
1でトランスフェクトされたcos−tm胞からの上清
をp過(0,2μ〉し、RTを測定した0等量のRT活
性を含む突然変異ウィルス及び野性型ウィルスの上清を
JurkatヒトTリンパ球に添加した。2日おきに培
地を交換しなからJurkat培養物を疑似(mock
)感染培養物と共に維持した。所定の時期にJurka
t細胞のアリコートを採取して標識し、19501工イ
ズ患者の血清で免疫沈降させてHIV−1タンパク質の
発現を鑑定した。第3図は、CO5−14a胞から得ら
れた上清に接触したJurkat T、1(tl胞の標
識ウィルスタンパク質の免疫沈降を、CO5−1411
胞を疑似(+1lock)トランスフェクトした場合(
レーン1.4.7.10.13及び16)、ptrχB
e2でトランスフェクトした場合(レーン2.5.8.
11.14及び17〉またはpnXBΔP1でトランス
フェクトした場合(レーン3.6.9.12.15及び
18)の夫々についてJurkat T細胞の溶解物(
レーン1〜3.7〜9及び13〜15)または上清(レ
ーン4〜6.10〜12及び16〜18)で測定した結
果である。Jurkat細胞を、感染の7日後(レーン
1〜6)、14日後(レーン7〜12)及び21日f&
(13〜18)に検査した。 p)IXBAPIに接触
したJurkat培養物は、野性型ウィルスpHXBc
2に接触した培養物に比較してウィルスタンパク質産生
の顕著な遅れ及びレベルの低下を示した。従って、pH
X[lΔP1でトランスフェクトされたヒトTリンパ球
中のウィルス複製は、pHXBc2によって1〜ランス
フエク1〜された細胞に比較して有意に弱められている
ことが判明した。
12000X9で20℃で1時間遠心することによって
均等量の逆転写酵素活性をペレット化した。バナジルリ
ボヌクレオチドの存在下にNP40によってウィルスベ
レットを溶解し、種々の希釈度のウィルスをニトロセル
ロースフィルターにドツトプロトした。ドツトプロット
する前にいくつかのサンプルを水酸化ナトリウム(5M
、60℃で15分間〉で処理した。 Maniatis
、 T、等、Mo1ecular Cloning、C
o1d 5prinFil(arbor Labora
tory(1982)、によって記載された方法で、フ
ィルターを、HIV−1のムエ逍伝子−及び牡ヱ遺伝子
の配列から成るDNAプローブとハイブリダイズし、洗
浄し、オートラジオグラフにかけた。野性型HXBc2
ウィルスの場合、100ORT単位の濾過上清のプロッ
ト後にRNAに特有のシグナルが検出された。 )IX
BΔPIの場合、5X 10’RT単位を有する上清か
らもシグナルが検出できなかった。第4図は、Jurk
at培養物の濾過上清のプロット後のRN八へツトプロ
ットを、水酸化ナトリウム非処理(カラム1)及び処理
(カラム2)の場合の夫々ニツイて示す、上清は、5X
10’cpmのHXBΔPi(A列)、5X 10’
cpmの)lXBc2(B列〉、I X 10’cpm
HXBc2(C列)のRT活性を含んでいた。にれらの
結果は、本発明の包装欠陥ウィルスベクターでトランス
フェクトされた細胞においてウィルス特異的RN^がビ
リオンに包装される効率は、野性型ウィルスの2%未満
であることを示す。
ためにはHIV−1の5’ t、TRとo工遺伝子との
間の領域が重要であることを示す、この領域の突然変異
はトランスフェクション後のタンパク質及びビリオン粒
子を産生ずるプロウィルスの能力に対して最小の影響を
示すが、ビリオンRN^のレベルを顕著に低下させてヒ
トCD4陽性リンパ球細胞系におけるウィルス複製を弱
める。 )IIV−1は培養されたCD4陽性細胞中で
無細胞伝達または細胞間伝達によって複製される。後者
は感染細胞と非感染細胞との接触を含む(Fisher
、^、G、笠、Nature316:262〜265(
1985);5odroski、 J、等、5cien
ce231:1549〜1553(198B);5tr
ebel、 K、等、Nature328 ニア28〜
730 (1987):]。
明の範囲内で可能であること、本発明の範囲及び思想は
特許請求の範囲のみによって限定されることは当業者に
容易に理解されよう。
XBΔP1中の、HIV−1ゲノムノ5°LTRカらg
ag開始コドンまでの5°主要スプライス供与部位(S
D)及び欠失部位を示す概略図、第2a図は、CO5−
1a胞からの35S標識ウイルスタンパク質のエイズ患
者血清による免疫沈降を示すオートラジオグラム、第2
b図はpHXBΔP1でCOS〜1m胞にトランスフェ
クトされた正常111V−1形態のビリオン粒子を示す
電子顕′Iri鏡写真、第3図は、トランスフェクトま
たは疑似(n+ock) )ランスフエクトされたCO
5−1細胞の上清に接触したJurkat T細胞の溶
解液または上清からの標識ウィルスタンパク質の免疫沈
降を示すオートラジオグラム、第4図4fRN^ドツト
プロツトテストである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)HIVゲノムに対応する、機能性HIVタンパク
質を発現するための十分な数のヌクレオチド即ちHIV
ヌクレオチドを含むが、HIVゲノムの5′主要スプラ
イス供与部位と¥gag¥遺伝子との間のヌクレオチド
に対応する、HIVRNAを有効に包装するための十分
な数のヌクレオチド即ちHIV包装ヌクレオチドを含ま
ないこと、及び、 (b)HIVヌクレオチドの上流にプロモーターを含む
ことを特徴とするベクター。 (2)プロモーターがHIVLTRであることを特徴と
する請求項1に記載のベクター。(3)プロモーターが
、特定細胞中で遺伝子産物を優先的に発現させるプロモ
ーターであることを特徴とする請求項1に記載のベクタ
ー。 (4)プロモーターがCMVプロモーターであることを
特徴とする請求項3に記載のベクター。 (5)ベクターに含まれないHIV包装ヌクレオチドが
、5′主要スプライス供与部位の下流から¥gag¥遺
伝子開始コドンの約5塩基上流までのヌクレオチド配列
であることを特徴とする請求項1に記載のベクター。 (6)ベクターに含まれないHIV包装ヌクレオチドが
、5′主要スプライス供与部位の約9塩基下流から¥g
ag¥遺伝子開始コドンの約14塩基上流までのヌクレ
オチド配列であることを特徴とする請求項1に記載のベ
クター。 (7)ベクターに含まれないHIV包装ヌクレオチドが
、配列AAAAATTTTGACTACCCCAである
ことを特徴とする請求項1に記載のベクター。 (8)HIVゲノムが、HIV−1、HIV−2及びS
IVから成るグループから選択されることを特徴とする
請求項1に記載のベクター。 (9)HIVゲノムがHIV−1ゲノムであることを特
徴とする請求項1に記載のベクター。 (10)HIVゲノムがHIV−1ゲノムであることを
特徴とする請求項7に記載のベクター。 (11)請求項1に記載のベクターによって形質転換さ
れた予め選択された細胞系を含むことを特徴とするHI
V包装欠陥細胞系。 (12)(a)予め選択された細胞系を少なくとも1つ
の請求項1に記載のベクターで形質転換させることを包
含するHIV包装欠陥細胞系の製造方法。 (13)予め選択された細胞系が哺乳類細胞であること
を特徴とする請求項12に記載の方法。 (14)少なくとも2つのベクターによって細胞を形質
転換させる段階を含み、前記2つのベクターは集合的に
、機能性HIV、¥gag¥、¥pol¥、¥env¥
及び調節産物を発現させるためのHIVヌクレオチドを
含むが、各ベクター単独ではHIV¥gag¥、¥po
l¥、¥env¥及び調節産物の全部を発現させるため
のHIVヌクレオチドを含まないこと、及び、前記ベク
ターが、HIVゲノムの5′主要スプライス供与部位と
¥gag¥遺伝子との間のヌクレオチドに対応する、H
IVRNAを有効に包装するための十分な数のヌクレオ
チ ドを含まないことを特徴とする請求項12に記載の方法
。 (15)細胞を2つのベクターによって形質転換させ、
1つのベクターが¥gag¥開始コドンの直ぐ上流から
¥env¥遺伝子配列の直ぐ上流までのヌクレオチド配
列を含み、第2のベクター¥gag¥遺伝子配列の下流
に機能性¥env¥配列を含むヌクレオチド配列を含む
ことを特徴とする請求項14に記載の方法。 (16)各ベクターが異なるマーカー遺伝子配列を含む
ことを特徴とする請求項14に記載の方法。 (17)請求項14の方法で形質転換された安定な細胞
系。 (18)請求項17に記載の細胞系を培養し、細胞系か
ら産生されたビリオンを採集し、所定の動物またはヒト
宿主にビリオンを注射してビリオンに対する抗体を増産
することを特徴とする抗HIV抗体の製造方法。 (19)請求項17に記載の細胞系を培養し、ワクチン
として使用するために細胞系から産生されたビリオンを
採集することを特徴とするHIVワクチンの製造方法。 (20)(a)HIVRNAを包装するための十分な数
のヌクレオチド即ちHIV包装配列に対応するヌクレオ
チド配列の下流に予め選択された遺伝子に対応するヌク
レオチド配列を含むベクターを請求項17に記載の細胞
系にトランスフェクションする段階を含み、前記ベクタ
ー中では、HIV包装配列によって包装されるべきHI
VLTRに対応する十分な数のヌクレオチド即ちHIV
LTR配列が、前記予め選択された遺伝子及び前記HI
V包装配列の双方に結合されており、HIV包装配列と
HIVLTR配列とがHIVヌクレオチドと同じHIV
ゲノムに対応しており、更に、 (b)段階(a)で形質転換された細胞系を培養し、(
c)段階(b)の細胞系から産生されたビリオンを採集
し、 (d)段階(c)で得られたビリオンを所定の標的哺乳
類細胞と接触させることを特徴とする遺伝子を哺乳類細
胞に移入する方法。 (21)HIV包装配列のヌクレオチドが、5′主要ス
プライス供与部位から¥gag¥遺伝子のBalI部位
までのヌクレオチドであり、HIVLTR配列が完全な
HIVLTRに対応することを特徴とする請求項20に
記載の方法。 (22)標的哺乳類細胞が組織培養で増殖されることを
特徴とする請求項20に記載の方法。 (23)標的哺乳類細胞がヒトまたは動物宿主に局在し
ていることを特徴とする請求項20に記載の方
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