JPH04287689A - 固定化酵素によるアルコールのアシル化方法 - Google Patents
固定化酵素によるアルコールのアシル化方法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/62—Carboxylic acid esters
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
- C12N11/08—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a synthetic polymer
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-
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- C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
- C12P17/02—Oxygen as only ring hetero atoms
- C12P17/04—Oxygen as only ring hetero atoms containing a five-membered hetero ring, e.g. griseofulvin, vitamin C
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】光学活性なアルコールは、生物活性物質、
たとえば医薬、天然物質、穀類有害生物殺滅剤のまたそ
のほか液晶成分の重要なキラル前駆体であることが多い
。
たとえば医薬、天然物質、穀類有害生物殺滅剤のまたそ
のほか液晶成分の重要なキラル前駆体であることが多い
。
【0002】したがって、酵素的なラセミ体分割すなわ
ち光学活性なアルコールの製造を保証する経済的な製造
方法は、きわめて重要である。同じことが、プロキラル
化合物の酵素による立体的識別、たとえば2−置換1,
3−プロパンジオールの鏡像異性ヒドロキシ基のエステ
ル化についてもいえる。さらに、酵素触媒によるアシル
化は、化学的アシル化と異なり、ある種の一級および二
級アルコールのようなとくに感受性の高い基質の場合、
重要である。
ち光学活性なアルコールの製造を保証する経済的な製造
方法は、きわめて重要である。同じことが、プロキラル
化合物の酵素による立体的識別、たとえば2−置換1,
3−プロパンジオールの鏡像異性ヒドロキシ基のエステ
ル化についてもいえる。さらに、酵素触媒によるアシル
化は、化学的アシル化と異なり、ある種の一級および二
級アルコールのようなとくに感受性の高い基質の場合、
重要である。
【0003】本発明の方法によって、その製造が容易に
なり、さらに経済的になる薬剤には、NSAID(非ス
テロイド性抗炎症剤)、β−遮断剤、気管支弛緩薬、抗
真菌剤、ピレスロイド、テトラミゾール、テトラハイド
ロゾリン、(R)−(−)−トモキセチン、および(S
)−(+)−フルオキセチン、ならびにプロスタグラン
ジン、および炭水化物のような製品がある。プロテアー
ゼ、たとえばレニンの、インヒビターの合成のための合
成用ブロックは、酵素過程の使用によりかなり簡単に得
られるようになる。
なり、さらに経済的になる薬剤には、NSAID(非ス
テロイド性抗炎症剤)、β−遮断剤、気管支弛緩薬、抗
真菌剤、ピレスロイド、テトラミゾール、テトラハイド
ロゾリン、(R)−(−)−トモキセチン、および(S
)−(+)−フルオキセチン、ならびにプロスタグラン
ジン、および炭水化物のような製品がある。プロテアー
ゼ、たとえばレニンの、インヒビターの合成のための合
成用ブロックは、酵素過程の使用によりかなり簡単に得
られるようになる。
【0004】ビニルエステルが、溶媒たとえばテトラヒ
ドロフランの存在下にアルコールを添加すると、酵素触
媒でエステル交換できることは既に知られている(M.
Degueil−Castaing et al,
Tetrahedron Lett., 28(9):
953−954,1987)。酵素としては、ブタ膵臓
リパーゼが使用された。しかしながら、立体選択性は認
められなかった。
ドロフランの存在下にアルコールを添加すると、酵素触
媒でエステル交換できることは既に知られている(M.
Degueil−Castaing et al,
Tetrahedron Lett., 28(9):
953−954,1987)。酵素としては、ブタ膵臓
リパーゼが使用された。しかしながら、立体選択性は認
められなかった。
【0005】ビニルエステルとの溶媒なしでの選択的酵
素触媒エステル交換反応に基づく、ラセミアルコールの
酵素的分離も知られている。使用された酵素は、ブタ肝
臓および膵臓、ならびにシュードモナス(Pseudo
monas)、カンジダ(Candida)、ムーコル
(Mucor)、クモノスカビ(Rhizopus)お
よびペニシリウム(Penicillium)からのリ
パーゼである(EP 032 19 18)。
素触媒エステル交換反応に基づく、ラセミアルコールの
酵素的分離も知られている。使用された酵素は、ブタ肝
臓および膵臓、ならびにシュードモナス(Pseudo
monas)、カンジダ(Candida)、ムーコル
(Mucor)、クモノスカビ(Rhizopus)お
よびペニシリウム(Penicillium)からのリ
パーゼである(EP 032 19 18)。
【0006】さらに、エステル交換のためにカルボン酸
エステル(G. Carpani, F. Orsin
a,M. Sisti & L. Verotta,
Gazz. Chim. Ital., 119:46
3−465,1989)およびアシル化のために環状カ
ルボン酸無水物(Y. Terao et al, C
hem.Pharm. Bull., 37:1653
−1655,1989)が使用できることも知られてい
る。
エステル(G. Carpani, F. Orsin
a,M. Sisti & L. Verotta,
Gazz. Chim. Ital., 119:46
3−465,1989)およびアシル化のために環状カ
ルボン酸無水物(Y. Terao et al, C
hem.Pharm. Bull., 37:1653
−1655,1989)が使用できることも知られてい
る。
【0007】欧州特許出願EP 0 25 42 43
では、キラル化合物がプロキラルジオールから、ヒドロ
ラーゼの存在下に酢酸ビニルとの反応で光学的に純粋に
製造されている。これは2個の鏡像異性一級OH基の一
方のみの選択的エステル化によって達成される。
では、キラル化合物がプロキラルジオールから、ヒドロ
ラーゼの存在下に酢酸ビニルとの反応で光学的に純粋に
製造されている。これは2個の鏡像異性一級OH基の一
方のみの選択的エステル化によって達成される。
【0008】固定化リパーゼが脂肪、油脂および類似化
合物の加水分解およびエステル交換に使用できることも
知られている(M. Mittelbach,J. A
m. Oil Chem. Soc.,67:168−
170,1990)。
合物の加水分解およびエステル交換に使用できることも
知られている(M. Mittelbach,J. A
m. Oil Chem. Soc.,67:168−
170,1990)。
【0009】Hsu et al(Tetrahedr
on Lett., 31(44):6403−640
6,1990)は、XAD−8に固定化されたシュード
モナスからのリパーゼを用いる二級アルコールの反応を
記載していて、基質の反応速度の増大を見出している。 しかしながら、この文献には、活性の喪失を無視できる
固定化酵素の有用な寿命(安定性)または熱安定性につ
いては全く記述がない。
on Lett., 31(44):6403−640
6,1990)は、XAD−8に固定化されたシュード
モナスからのリパーゼを用いる二級アルコールの反応を
記載していて、基質の反応速度の増大を見出している。 しかしながら、この文献には、活性の喪失を無視できる
固定化酵素の有用な寿命(安定性)または熱安定性につ
いては全く記述がない。
【0010】今回驚くべきことに、固定化シュードモナ
スリパーゼを用いるアルコールのO−アシル化が、酵素
をポリスチレンベースの吸着性樹脂のような疎水性担体
に結合させることにより固定化すると、とくに効率的に
実施できることが見出されたのである。
スリパーゼを用いるアルコールのO−アシル化が、酵素
をポリスチレンベースの吸着性樹脂のような疎水性担体
に結合させることにより固定化すると、とくに効率的に
実施できることが見出されたのである。
【0011】したがって、本発明は式I
【化3】
〔式中、R1は水素、ハロゲンで置換されていてもよい
C1〜C18−アルキル、またはフェニルもしくは(C
1〜C3)−アルコキシ−(C1〜C4)−アルキルで
あり、R2は水素もしくはメチルである〕で示されるビ
ニルエステル、もしくは式II
C1〜C18−アルキル、またはフェニルもしくは(C
1〜C3)−アルコキシ−(C1〜C4)−アルキルで
あり、R2は水素もしくはメチルである〕で示されるビ
ニルエステル、もしくは式II
【化4】
(R1は上述の意味であり、R7はすべてが同一である
場合にはフッ素、塩素もしくは水素であり、2個のR7
が水素である場合にはR7はフッ素、塩素、臭素もしく
はシアノおよび水素であり、R7の1個のみが水素であ
り他の2個が同一の場合にはR7はフッ素もしくは塩素
および水素である)で示されるカルボン酸エステル、ま
たは環状カルボン酸無水物の1つのコハク酸もしくはグ
ルタール酸無水物を、固定化シュードモナスリパーゼの
存在下にアルコールと反応させるアルコールのアシル化
方法において、ポリスチレンベースの吸着性樹脂に固定
化されたシュードモナスリパーゼを使用することを特徴
とする方法に関する。
場合にはフッ素、塩素もしくは水素であり、2個のR7
が水素である場合にはR7はフッ素、塩素、臭素もしく
はシアノおよび水素であり、R7の1個のみが水素であ
り他の2個が同一の場合にはR7はフッ素もしくは塩素
および水素である)で示されるカルボン酸エステル、ま
たは環状カルボン酸無水物の1つのコハク酸もしくはグ
ルタール酸無水物を、固定化シュードモナスリパーゼの
存在下にアルコールと反応させるアルコールのアシル化
方法において、ポリスチレンベースの吸着性樹脂に固定
化されたシュードモナスリパーゼを使用することを特徴
とする方法に関する。
【0012】本発明は、以下に詳細に、とくにその好ま
しい実施態様について説明する。本発明は、さらに、特
許請求の範囲によって定義される。
しい実施態様について説明する。本発明は、さらに、特
許請求の範囲によって定義される。
【0013】本発明の方法によれば、ビニルもしくはメ
チルビニルエステル、または式IIのカルボン酸エステ
ルもしくは環状カルボン酸無水物を、それ自体を溶媒と
しても作用させまたは他の有機溶媒に溶解させて、ケト
ン、アルデヒドまたはアルコールおよびアシルラジカル
に切断させると、後者が、添加されたアルコール(基質
)を酵素的にアシル化する。
チルビニルエステル、または式IIのカルボン酸エステ
ルもしくは環状カルボン酸無水物を、それ自体を溶媒と
しても作用させまたは他の有機溶媒に溶解させて、ケト
ン、アルデヒドまたはアルコールおよびアシルラジカル
に切断させると、後者が、添加されたアルコール(基質
)を酵素的にアシル化する。
【0014】適当な担体材料はポリスチレンベースの吸
着性樹脂である。すべての担体は市販品を入手できる。
着性樹脂である。すべての担体は市販品を入手できる。
【0015】本発明で使用されるポリスチレンベースの
担体材料は、細孔容積25〜75%、好ましくは35〜
55%、表面積100〜1000m2/g、好ましくは
200〜750m2/g、細孔径25〜1300Å好ま
しくは50〜250Åである。
担体材料は、細孔容積25〜75%、好ましくは35〜
55%、表面積100〜1000m2/g、好ましくは
200〜750m2/g、細孔径25〜1300Å好ま
しくは50〜250Åである。
【0016】酵素としてはシュードモナスリパーゼ〔P
seudomonascapaciaからのリパーゼP
(FPまたはPSとも呼ばれる)Amano Phar
maceuticals, Nagoya, Japa
n〕が使用される。
seudomonascapaciaからのリパーゼP
(FPまたはPSとも呼ばれる)Amano Phar
maceuticals, Nagoya, Japa
n〕が使用される。
【0017】酵素を固定化するためには、担体10ml
あたり0.01〜2g好ましくは0.1〜1.5gの酵
素を、pH5〜9好ましくはpH6〜8の0.005〜
1Mリン酸カリウム緩衝液中、1〜20時間撹拌する。 この反応時間ののち、ガラス濾斗を通して緩衝液を濾過
し、酵素/担体混合物を大量の水、アセトンおよび酢酸
ビニルで洗浄する。担体はこの状態でそのまま使用でき
るし乾燥状態で保存もできる。
あたり0.01〜2g好ましくは0.1〜1.5gの酵
素を、pH5〜9好ましくはpH6〜8の0.005〜
1Mリン酸カリウム緩衝液中、1〜20時間撹拌する。 この反応時間ののち、ガラス濾斗を通して緩衝液を濾過
し、酵素/担体混合物を大量の水、アセトンおよび酢酸
ビニルで洗浄する。担体はこの状態でそのまま使用でき
るし乾燥状態で保存もできる。
【0018】酵素とともに負荷する担体の量は、そのバ
ッチの規模、アルコールの反応性、期待される反応時間
、および変換の所望のレベルに依存して、自由に選択さ
れる。これは予備的な試験によって容易に決定すること
ができる。
ッチの規模、アルコールの反応性、期待される反応時間
、および変換の所望のレベルに依存して、自由に選択さ
れる。これは予備的な試験によって容易に決定すること
ができる。
【0019】購入できない式Iのビニルおよびメチルビ
ニルエステルは、簡単な方法で、たとえば酢酸ビニルの
、適当なカルボン酸との貴金属触媒エステル交換によっ
て製造できる。このエステル交換の好ましい触媒は、P
d+である。
ニルエステルは、簡単な方法で、たとえば酢酸ビニルの
、適当なカルボン酸との貴金属触媒エステル交換によっ
て製造できる。このエステル交換の好ましい触媒は、P
d+である。
【0020】ビニルエステルはまた、アセチレンのHg
2+触媒付加によっても合成できる。
2+触媒付加によっても合成できる。
【0021】式IIのカルボン酸エステルは、環状カル
ボン酸無水物(コハク酸およびグルタール酸無水物)も
同様に、購入できるか、または標準的な方法で製造でき
る。
ボン酸無水物(コハク酸およびグルタール酸無水物)も
同様に、購入できるか、または標準的な方法で製造でき
る。
【0022】購入できないアルコールは、たとえば大部
分購入できる相当するケトンから、または相当するケト
ンのα−ハロゲン化ついでアルコールへの還元によって
得られる。購入できない他のアルコールまたはケトンは
、文献公知の方法で簡単に、たとえばグリニャール反応
または他の慣用の付加反応で製造できる。
分購入できる相当するケトンから、または相当するケト
ンのα−ハロゲン化ついでアルコールへの還元によって
得られる。購入できない他のアルコールまたはケトンは
、文献公知の方法で簡単に、たとえばグリニャール反応
または他の慣用の付加反応で製造できる。
【0023】アルコールの語は、式III
【化5】
〔式中、R3はC1〜C18−アルキルまたはC3〜C
10−シクロアルキルであり(これらの基はハロゲンで
置換されていてもよい)、R4はエポキシ−C1〜C5
−アルキル(エポキシ基は式IIの基におけるOH基に
対してβ−位にある)であるか、またはR4はC1〜C
10−アルキル、C2〜C10−アルケニル、C2〜C
10−アルキニル、C3〜C8−シクロアルケニル(こ
の場合、アルキル、アルケニル、アルキニルおよびシク
ロアルケニル基は、COOH、ハロゲン、NO2、CN
、C1〜C4−アルコキシカルボニルまたはフェニルで
置換されていてもよく、一方フェニル基はハロゲン、N
O2、CN、C1〜C4−アルコキシで置換されていて
もよい)であるか、またはR4はアリールもしくはヘテ
ロアリール(この場合アリールもしくはヘテロアリール
基はC1〜C4−アルキル、C1〜C4−アルコキシ、
ハロゲン、NO2、CNまたはN−PGで置換されてい
てもよく、PGはアミノ保護基である)であるか、ある
いは、R3およびR4は両者で、式IVa、b
10−シクロアルキルであり(これらの基はハロゲンで
置換されていてもよい)、R4はエポキシ−C1〜C5
−アルキル(エポキシ基は式IIの基におけるOH基に
対してβ−位にある)であるか、またはR4はC1〜C
10−アルキル、C2〜C10−アルケニル、C2〜C
10−アルキニル、C3〜C8−シクロアルケニル(こ
の場合、アルキル、アルケニル、アルキニルおよびシク
ロアルケニル基は、COOH、ハロゲン、NO2、CN
、C1〜C4−アルコキシカルボニルまたはフェニルで
置換されていてもよく、一方フェニル基はハロゲン、N
O2、CN、C1〜C4−アルコキシで置換されていて
もよい)であるか、またはR4はアリールもしくはヘテ
ロアリール(この場合アリールもしくはヘテロアリール
基はC1〜C4−アルキル、C1〜C4−アルコキシ、
ハロゲン、NO2、CNまたはN−PGで置換されてい
てもよく、PGはアミノ保護基である)であるか、ある
いは、R3およびR4は両者で、式IVa、b
【0024】
【化6】
(式中、nは1、2または3であり、R5およびR6は
互いに同種または異種であって、水素、C2〜C4−ア
ルケニルまたはC1〜C4−アルキルであるか、R5お
よびR6は両者でフェニルまたはナフチルに融合してい
ることを示し、この場合フェニルまたはナフチル基はC
1〜C4−アルキル、C1〜C4−アルコキシ、NO2
、CNまたはハロゲンで置換されていてもよく、またア
ルキレン鎖のメチレン単位はカルボニル基で置換されて
いてもよい)である〕で示されるアルコール、または式
V
互いに同種または異種であって、水素、C2〜C4−ア
ルケニルまたはC1〜C4−アルキルであるか、R5お
よびR6は両者でフェニルまたはナフチルに融合してい
ることを示し、この場合フェニルまたはナフチル基はC
1〜C4−アルキル、C1〜C4−アルコキシ、NO2
、CNまたはハロゲンで置換されていてもよく、またア
ルキレン鎖のメチレン単位はカルボニル基で置換されて
いてもよい)である〕で示されるアルコール、または式
V
【0025】
【化7】
(式中、R8はハロゲンまたはアルキル基であり、R9
はアルキル、アラールキル、アリール、ベンジルまたは
ナフチルメチル基である)のアルコールを意味する。
はアルキル、アラールキル、アリール、ベンジルまたは
ナフチルメチル基である)のアルコールを意味する。
【0026】基質として、すべての多価アルコールを使
用することもできる。
用することもできる。
【0027】式IIIのアルコール中のハロゲンの語は
、フッ素、塩素、臭素、およびヨウ素、とくに塩素およ
び臭素を意味する。「アリール」の語は、たとえば、フ
ェニル、ナフチル、フェナンスリル、アンスリルおよび
フルオレニル、とくにフェニル、ナフチルおよびフェナ
ンスリルを意味する。「ヘテロアリール」の語は、たと
えば、フリル、チエニル、ピロリル、ピリジル、ピリミ
ジル、ピラジニル、ピリダジニル、ピラゾリル、イソキ
サゾリル、イミダゾリル、オキサゾリル、チアゾリルお
よびインドリル、とくにフリル、チエニル、ピロリルお
よびピリジルを意味する。アミノ保護基、「PG」は、
ペプチド化学において慣用されているアミノ保護基、た
とえばベンジルオキシカルボニル(Z)、ベンゾイル、
ベンジル、ブチルオキシカルボニル(Boc)、9−フ
ルオレニルメトキシカルボニル(Fmoc)、ベンズヒ
ドリル、アリルオキシカルボニル(Aloc)、トシル
、メトキシメチル(MOM)、テトラヒドロピラニル(
THP)、アセチルを意味するが、さらにはアルキルま
たはシクロアルキル基たとえば、N−メチル、N,N−
ジメチルも包含される。「フェニルに融合」または「ナ
フチルに融合」の語は、式IIIの基のC−C結合がフ
ェニルまたはナフチル基の一部であるフェニルまたはナ
フチル基を意味する。任意の置換基、R1、R3、R4
、R5およびR6は好ましくはモノ置換される。
、フッ素、塩素、臭素、およびヨウ素、とくに塩素およ
び臭素を意味する。「アリール」の語は、たとえば、フ
ェニル、ナフチル、フェナンスリル、アンスリルおよび
フルオレニル、とくにフェニル、ナフチルおよびフェナ
ンスリルを意味する。「ヘテロアリール」の語は、たと
えば、フリル、チエニル、ピロリル、ピリジル、ピリミ
ジル、ピラジニル、ピリダジニル、ピラゾリル、イソキ
サゾリル、イミダゾリル、オキサゾリル、チアゾリルお
よびインドリル、とくにフリル、チエニル、ピロリルお
よびピリジルを意味する。アミノ保護基、「PG」は、
ペプチド化学において慣用されているアミノ保護基、た
とえばベンジルオキシカルボニル(Z)、ベンゾイル、
ベンジル、ブチルオキシカルボニル(Boc)、9−フ
ルオレニルメトキシカルボニル(Fmoc)、ベンズヒ
ドリル、アリルオキシカルボニル(Aloc)、トシル
、メトキシメチル(MOM)、テトラヒドロピラニル(
THP)、アセチルを意味するが、さらにはアルキルま
たはシクロアルキル基たとえば、N−メチル、N,N−
ジメチルも包含される。「フェニルに融合」または「ナ
フチルに融合」の語は、式IIIの基のC−C結合がフ
ェニルまたはナフチル基の一部であるフェニルまたはナ
フチル基を意味する。任意の置換基、R1、R3、R4
、R5およびR6は好ましくはモノ置換される。
【0028】炭素原子3個もしくはそれ以上を有するア
ルキルおよびアルケニル基ならびに炭素原子4個もしく
はそれ以上を有するアルキニル基は、直鎖状でも分岐状
でもよい。
ルキルおよびアルケニル基ならびに炭素原子4個もしく
はそれ以上を有するアルキニル基は、直鎖状でも分岐状
でもよい。
【0029】アシル化されるアルコールは、ビニルエス
テルの容量に基づいて、濃度0.05〜200%、好ま
しくは0.5〜10%で使用される。
テルの容量に基づいて、濃度0.05〜200%、好ま
しくは0.5〜10%で使用される。
【0030】アルコールのアシル化には、少なくとも0
.5モル当量のビニル基を使用しなければならない。
.5モル当量のビニル基を使用しなければならない。
【0031】アルコールの反応は、回分式または連続法
で行われる。
で行われる。
【0032】アルコールのラセミ分割は、本発明の方法
においては、慣用の方法に比べて、活性が少なくとも9
0%増大して実施することができる。
においては、慣用の方法に比べて、活性が少なくとも9
0%増大して実施することができる。
【0033】担体上に固定化された酵素は、連続過程に
おける数か月もの使用後にさえも、活性の喪失はほとん
ど示さず、固定化酵素を使用しない場合と反応進行およ
び反応相には変化はない。これは、反応を加熱下に行う
場合でも同様である。
おける数か月もの使用後にさえも、活性の喪失はほとん
ど示さず、固定化酵素を使用しない場合と反応進行およ
び反応相には変化はない。これは、反応を加熱下に行う
場合でも同様である。
【0034】固定化シュードモナスリパーゼを用いる回
分式反応の場合には、式Iのビニルエステルもしくは式
IIのカルボン酸エステルまたは環状カルボン酸無水物
、好ましくは酢酸ビニルまたはビニルエステルの溶液を
(非極性)有機溶媒に導入し、反応させるアルコールを
添加する。適当かつ好ましい溶媒は、エーテルであり、
とくに対称および非対称、分岐状および直鎖状ジアルキ
ルエーテルが使用できる。同じく、適当かつ好ましい溶
媒は炭化水素であり、とくに直鎖状、分岐状または脂環
式のC4〜C8の炭化水素が使用できる。担体上に固定
化されたシュードモナスリパーゼを懸濁液に加え、一定
の温度で撹拌または振盪する。反応の完了はTLC、G
CまたはHPLCによってチェックされる。固定化酵素
をついで濾過し、溶媒(上述)または酢酸ビニルで完全
に洗浄し、溶液を真空中で濃縮する。ラセミ体分割の場
合には、残留物として得られるアルコール/エステル混
合物を、シリカゲル上クロマトグラフィーまたは抽出、
結晶化もしくは蒸留によって分離する。他のアシル化生
成物の場合は、多くの場合、十分な純度で得られ、した
がって、精製は不要である。
分式反応の場合には、式Iのビニルエステルもしくは式
IIのカルボン酸エステルまたは環状カルボン酸無水物
、好ましくは酢酸ビニルまたはビニルエステルの溶液を
(非極性)有機溶媒に導入し、反応させるアルコールを
添加する。適当かつ好ましい溶媒は、エーテルであり、
とくに対称および非対称、分岐状および直鎖状ジアルキ
ルエーテルが使用できる。同じく、適当かつ好ましい溶
媒は炭化水素であり、とくに直鎖状、分岐状または脂環
式のC4〜C8の炭化水素が使用できる。担体上に固定
化されたシュードモナスリパーゼを懸濁液に加え、一定
の温度で撹拌または振盪する。反応の完了はTLC、G
CまたはHPLCによってチェックされる。固定化酵素
をついで濾過し、溶媒(上述)または酢酸ビニルで完全
に洗浄し、溶液を真空中で濃縮する。ラセミ体分割の場
合には、残留物として得られるアルコール/エステル混
合物を、シリカゲル上クロマトグラフィーまたは抽出、
結晶化もしくは蒸留によって分離する。他のアシル化生
成物の場合は、多くの場合、十分な純度で得られ、した
がって、精製は不要である。
【0035】反応を連続法で実施する場合には、担体上
に固定化されたシュードモナスリパーゼ P/EP/P
Sをガラスカラムに充填し、反応を行う溶媒、すなわち
酢酸ビニル、他のビニルエステルまたは他の有機溶媒で
洗浄する。
に固定化されたシュードモナスリパーゼ P/EP/P
Sをガラスカラムに充填し、反応を行う溶媒、すなわち
酢酸ビニル、他のビニルエステルまたは他の有機溶媒で
洗浄する。
【0036】ついで基質溶液を、一定の速度、一定の温
度で通過させる。
度で通過させる。
【0037】担体(ml)と固定化リパーゼ(g)と酢
酸ビニル(ml)と基質(容量%)の比は、酢酸ビニル
を用いる場合(すなわち、さらに溶媒を添加しない場合
)、5〜100:1:5〜10,000:0.5〜20
0の範囲である。
酸ビニル(ml)と基質(容量%)の比は、酢酸ビニル
を用いる場合(すなわち、さらに溶媒を添加しない場合
)、5〜100:1:5〜10,000:0.5〜20
0の範囲である。
【0038】反応をビニルエステル中で実施する場合に
は、アシル化するアルコールは0.05〜200容量%
の濃度で使用される。
は、アシル化するアルコールは0.05〜200容量%
の濃度で使用される。
【0039】変換のレベルは、事実上、所望により、滴
下速度を調節することによって、制御することが可能で
、これは予備試験によって容易に決定される。
下速度を調節することによって、制御することが可能で
、これは予備試験によって容易に決定される。
【0040】空間−時間収率は上述のパラメーターに直
接依存するが、とくにカラムディメンションすなわちカ
ラム内の担体に固定化された酵素の量に依存する。
接依存するが、とくにカラムディメンションすなわちカ
ラム内の担体に固定化された酵素の量に依存する。
【0041】カラムディメンションは自由に選択できる
が、実験室規模では、10〜500mlのオーダーとす
ることが好ましい。担体に固定化された酵素50mlの
好ましいカラム充填で、基質溶液の濃度は1%、流速
10滴/分で、約0.5〜300g/リットル/hの空
間−時間収率が達成される。
が、実験室規模では、10〜500mlのオーダーとす
ることが好ましい。担体に固定化された酵素50mlの
好ましいカラム充填で、基質溶液の濃度は1%、流速
10滴/分で、約0.5〜300g/リットル/hの空
間−時間収率が達成される。
【0042】処理時の反応温度は−10〜+100℃、
好ましくは0〜60℃である。
好ましくは0〜60℃である。
【0043】反応時間は、反応させるアルコールの性質
、その濃度および担体上に固定された酵素の量に依存し
、1h〜4週の間で変動する。3h〜3日であることが
好ましい。
、その濃度および担体上に固定された酵素の量に依存し
、1h〜4週の間で変動する。3h〜3日であることが
好ましい。
【0044】本発明の方法で生じたアセトアルデヒドま
たはアセトン生成物、およびアシル化のために遊離した
アルコール、ならびに選択的アシル化の場合に生成した
鏡像異性アルコール(基質)すなわちカルボン酸エステ
ルおよび非反応アルコールは、すべての慣用方法を用い
て既知の方法で、ただし各場合について予備試験をして
、好ましくはシリカゲル上クロマトグラフィーまたは他
の上述の方法の1種によって分離することができる。
たはアセトン生成物、およびアシル化のために遊離した
アルコール、ならびに選択的アシル化の場合に生成した
鏡像異性アルコール(基質)すなわちカルボン酸エステ
ルおよび非反応アルコールは、すべての慣用方法を用い
て既知の方法で、ただし各場合について予備試験をして
、好ましくはシリカゲル上クロマトグラフィーまたは他
の上述の方法の1種によって分離することができる。
【0045】
【実施例】一般的方法
酵素を固定化するには、担体材料は、酵素の固定化後、
a)非処理で、またはb)ついでグルタールアルデヒド
で架橋して用いられる(表1)。
a)非処理で、またはb)ついでグルタールアルデヒド
で架橋して用いられる(表1)。
【0046】a)の場合、担体にリパーゼを固定化する
には、担体50mlをリン酸カリウム緩衝液pH7.0
、100mlに懸濁し、リパーゼP 500mgを加え
る。混合物を室温で3時間撹拌し、濾過し、水で完全に
洗浄する。
には、担体50mlをリン酸カリウム緩衝液pH7.0
、100mlに懸濁し、リパーゼP 500mgを加え
る。混合物を室温で3時間撹拌し、濾過し、水で完全に
洗浄する。
【0047】b)のついで架橋する場合、処理はa)に
記載したと同様に実施し、指示した固定化時間ののち、
4mlのグルタールアルデヒド溶液(濃度25%)で架
橋を行う。1時間後に、担体上に固定化された酵素を濾
過し、水洗する。
記載したと同様に実施し、指示した固定化時間ののち、
4mlのグルタールアルデヒド溶液(濃度25%)で架
橋を行う。1時間後に、担体上に固定化された酵素を濾
過し、水洗する。
【0048】好ましい担体としては次のような特徴を有
する担体を挙げることができる。
する担体を挙げることができる。
【0049】
R
XAD−2 RXAD−4 細孔容積(%
) 42
51 密度
1.02 1
.02 表面積(m2/g) 330
750 細孔径(Å)
90
50
XAD−2 RXAD−4 細孔容積(%
) 42
51 密度
1.02 1
.02 表面積(m2/g) 330
750 細孔径(Å)
90
50
【0050】担体は水中に、または乾燥状態
で保存することができる。
で保存することができる。
【0051】反応させるアルコール500mgを酢酸ビ
ニル20mlに懸濁する。これに固定化リパーゼを加え
、混合物を一定の温度で撹拌する。
ニル20mlに懸濁する。これに固定化リパーゼを加え
、混合物を一定の温度で撹拌する。
【0052】反応完了後、固定化酵素を濾過して除く。
残った溶液を真空中で完全に蒸発させる。
【0053】残留物中に存在するアシル化生成物は、標
準的方法、たとえばシリカゲルクロマトグラフィーによ
って分離することができる。
準的方法、たとえばシリカゲルクロマトグラフィーによ
って分離することができる。
【0054】出発原料および得られた生成物、変動可能
な工程パラメーター(酵素の量、担体の量、アルコール
の量、ビニルエステルの量、反応温度、反応時間)なら
びに生成物の特性および化学的収率を表2〜5に掲げる
。
な工程パラメーター(酵素の量、担体の量、アルコール
の量、ビニルエステルの量、反応温度、反応時間)なら
びに生成物の特性および化学的収率を表2〜5に掲げる
。
【0055】活性の正確な決定には、担体に結合した酵
素の量を正確に測定する必要がある。
素の量を正確に測定する必要がある。
【0056】本発明の方法に関して本明細書に記載した
試験における基本的な前提は、シュードモナスリパーゼ
が塩含量37%または蛋白質63%(重量%)の単一な
蛋白質であるということである。この塩含量は透析によ
って測定される。
試験における基本的な前提は、シュードモナスリパーゼ
が塩含量37%または蛋白質63%(重量%)の単一な
蛋白質であるということである。この塩含量は透析によ
って測定される。
【0057】固定化収率の測定には、20mlのXAD
−2担体および2gのシュードモナスリパーゼを用いて
既述の試験を実施する。固定化および洗浄溶液を集めて
合し、凍結乾燥する。酵素と緩衝塩からなる残留物1.
77gがこのプールから得られる。純粋な緩衝液の凍結
乾燥後に得られる重量から、使用された緩衝液の量の中
の塩の量は0.38gであることがわかっている。
−2担体および2gのシュードモナスリパーゼを用いて
既述の試験を実施する。固定化および洗浄溶液を集めて
合し、凍結乾燥する。酵素と緩衝塩からなる残留物1.
77gがこのプールから得られる。純粋な緩衝液の凍結
乾燥後に得られる重量から、使用された緩衝液の量の中
の塩の量は0.38gであることがわかっている。
【0058】したがって、残留物の1.77gから、ひ
とつには緩衝塩の0.38gと、次に酵素の塩0.74
g(=37%、上記参照)を差し引く必要がある。
とつには緩衝塩の0.38gと、次に酵素の塩0.74
g(=37%、上記参照)を差し引く必要がある。
【0059】残った量0.65gが固定化されなかった
酵素の量に相当する筈である。
酵素の量に相当する筈である。
【0060】残留物をついで透析すると、少量の塩がま
だ存在し、したがって残っている酵素の量は、理論量の
0.65gではなく、0.58gである。すなわち、固
定化された酵素の量は0.61〜0.68gである。こ
れは固定化収率が51%であることを意味する。
だ存在し、したがって残っている酵素の量は、理論量の
0.65gではなく、0.58gである。すなわち、固
定化された酵素の量は0.61〜0.68gである。こ
れは固定化収率が51%であることを意味する。
【0061】この計算を、例示のためにもう一度、表2
〜5に掲げた実施例1の場合(フェニルエタノール)に
ついて行う。
〜5に掲げた実施例1の場合(フェニルエタノール)に
ついて行う。
【0062】50mgのリパーゼP(市販品を入手)×
0.63 実際のリパーゼP酵素含量×0.51
固定化収率 →16mg 担体上に固定化されたリパーゼ50mg
の遊離リパーゼ ×0.63 実際のリパーゼP酵素含量→31.5m
g 実際のリパーゼP酵素量16mgの固定化酵素は
33.4%の変換率を与え、遊離の酵素31.5mgは
20.7%の変換率を与える:→活性:320%
0.63 実際のリパーゼP酵素含量×0.51
固定化収率 →16mg 担体上に固定化されたリパーゼ50mg
の遊離リパーゼ ×0.63 実際のリパーゼP酵素含量→31.5m
g 実際のリパーゼP酵素量16mgの固定化酵素は
33.4%の変換率を与え、遊離の酵素31.5mgは
20.7%の変換率を与える:→活性:320%
【0063】酵素的なラセミ体の分割は、上述のように
酢酸ビニルの存在下のみでなく、他のビニルエステル、
たとえばクロロ酢酸、ラウリン酸およびフェニル酢酸の
ビニルエステルの存在下にも実施できる。このためには
、担体に固定化したリパーゼPをガラスカラムに充填し
、以後の反応で溶媒として用いられるt−ブチルメチル
エーテル150mlで洗浄する。
酢酸ビニルの存在下のみでなく、他のビニルエステル、
たとえばクロロ酢酸、ラウリン酸およびフェニル酢酸の
ビニルエステルの存在下にも実施できる。このためには
、担体に固定化したリパーゼPをガラスカラムに充填し
、以後の反応で溶媒として用いられるt−ブチルメチル
エーテル150mlで洗浄する。
【0064】次にカラムに、それぞれ250mlのt−
ブチルメチルエーテル250mlに溶解した基質および
ビニルエステルの溶液を負荷する。この溶液をカラムを
徐々に通過させ、溶液が完全に通過したのちの組成をガ
スクロマトグラフィーで測定する。
ブチルメチルエーテル250mlに溶解した基質および
ビニルエステルの溶液を負荷する。この溶液をカラムを
徐々に通過させ、溶液が完全に通過したのちの組成をガ
スクロマトグラフィーで測定する。
【0065】使用された量、通過および反応時間、なら
びに結果は表6に示す。
びに結果は表6に示す。
【0066】酢酸エチルによるエステル交換:酢酸エチ
ル0.5mlを、t−ブチルメチルエーテル(10ml
)中2.5%濃度のフェニルエタノールおよび5mlの
XAD−2上固定化酵素(酵素の理論量:50mg)と
室温で撹拌する。この反応は5日後にフェニルエタノー
ルの50%変換を示した。
ル0.5mlを、t−ブチルメチルエーテル(10ml
)中2.5%濃度のフェニルエタノールおよび5mlの
XAD−2上固定化酵素(酵素の理論量:50mg)と
室温で撹拌する。この反応は5日後にフェニルエタノー
ルの50%変換を示した。
【0067】非固定化酵素による対照実験では7日後に
も明らかに低い変換率を示した。
も明らかに低い変換率を示した。
【0068】変換はTLCで測定した。
【0069】一級OH基のエステル化例:ゲラニオール
を酢酸ビニル10ml中2.5%の濃度に溶解し、XA
D−2上固定化酵素5ml(酵素の理論量50mg)を
加えて室温で撹拌する。わずか1時間後に固定化酵素で
は定量的なアシル化が達成されたが、遊離酵素ではさら
に50%の時間を要した。
を酢酸ビニル10ml中2.5%の濃度に溶解し、XA
D−2上固定化酵素5ml(酵素の理論量50mg)を
加えて室温で撹拌する。わずか1時間後に固定化酵素で
は定量的なアシル化が達成されたが、遊離酵素ではさら
に50%の時間を要した。
【0070】dl−パントラクトンのアセチル化例−連
続法における高温での長期安定性の試験:400mlの
XAD−2上固定化リパーゼPを、熱制御可能なジャケ
ット付きガラスカラムに充填する。0.1%濃度のdl
−パントラクトン溶液(酢酸ビニル/t−ブチルメチル
エーテル 1:9中;総容量2リットル)を、流速0.
11ml/分、50℃においてカラムを通過させる。カ
ラム容量はその後の同速度でのt−ブチルメチルエーテ
ルによる洗浄で補整する。反応溶液のGC分析で、第1
回目の試行ではパントラクトンアセテートへの変換率は
71.6%を示す。洗浄したカラムは乾燥状態で室温に
おいて保存し、新たな試行の開始に際してはその都度5
時間前に温度を平衡化させた。以後の5カ月間にさらに
11回の連続反応を同様の様式で行う。5カ月後に行っ
た12回目の試行におけるパントラクトンアセテートへ
の変換率は70.7%を示している。
続法における高温での長期安定性の試験:400mlの
XAD−2上固定化リパーゼPを、熱制御可能なジャケ
ット付きガラスカラムに充填する。0.1%濃度のdl
−パントラクトン溶液(酢酸ビニル/t−ブチルメチル
エーテル 1:9中;総容量2リットル)を、流速0.
11ml/分、50℃においてカラムを通過させる。カ
ラム容量はその後の同速度でのt−ブチルメチルエーテ
ルによる洗浄で補整する。反応溶液のGC分析で、第1
回目の試行ではパントラクトンアセテートへの変換率は
71.6%を示す。洗浄したカラムは乾燥状態で室温に
おいて保存し、新たな試行の開始に際してはその都度5
時間前に温度を平衡化させた。以後の5カ月間にさらに
11回の連続反応を同様の様式で行う。5カ月後に行っ
た12回目の試行におけるパントラクトンアセテートへ
の変換率は70.7%を示している。
【0071】
【表1】
【0072】
【表2】
【0073】
【表3】
【0074】
【表4】
【0075】
【表5】
【0076】
【表6】
【0077】本発明の方法は、アルコールのラセミ体の
分割のための慣用方法に比較して以下の利点を有する。 A) 酵素活性の増大により、空間−時間収率が著し
く上昇する。 B) 固定化酵素のきわめて長い有用寿命は、とくに
生物触媒の経済的な利用を可能にする。 C) 酵素活性の耐容性が高い(表1,下記(a)参
照)。 D) 固定化酵素の高い熱安定性。
分割のための慣用方法に比較して以下の利点を有する。 A) 酵素活性の増大により、空間−時間収率が著し
く上昇する。 B) 固定化酵素のきわめて長い有用寿命は、とくに
生物触媒の経済的な利用を可能にする。 C) 酵素活性の耐容性が高い(表1,下記(a)参
照)。 D) 固定化酵素の高い熱安定性。
【0078】トルエン中0.5%濃度のフェニルエタノ
ール溶液10mlを遊離リパーゼ100mgまたは固定
化酵素1mlと混合し、ついで各場合0.1mlのフェ
ニル酢酸ビニルエステルを加える。遊離のリパーゼは室
温で5時間撹拌後3.2%の変換率を示し、同じ時間1
10℃で還流したのちには最早活性を示さないのに対し
、固定化リパーゼは110℃でなお1〜2%の変換率を
示す。変換率はGC試験(RChromsorb 上
Reoplex)。
ール溶液10mlを遊離リパーゼ100mgまたは固定
化酵素1mlと混合し、ついで各場合0.1mlのフェ
ニル酢酸ビニルエステルを加える。遊離のリパーゼは室
温で5時間撹拌後3.2%の変換率を示し、同じ時間1
10℃で還流したのちには最早活性を示さないのに対し
、固定化リパーゼは110℃でなお1〜2%の変換率を
示す。変換率はGC試験(RChromsorb 上
Reoplex)。
【0079】(a) ラセミ体フェニルエタノール2
50mgを酢酸ビニル20ml中、固定化リパーゼ2m
lと50℃で6時間振盪する。ついで変換率をGCで測
定し、固定化酵素を濾過して除き、酢酸ビニルで完全に
洗浄する。次の日に同一条件で新たな反応を実施する。 (b) この方法を0.2gの遊離酵素を用いて同様
に行う。
50mgを酢酸ビニル20ml中、固定化リパーゼ2m
lと50℃で6時間振盪する。ついで変換率をGCで測
定し、固定化酵素を濾過して除き、酢酸ビニルで完全に
洗浄する。次の日に同一条件で新たな反応を実施する。 (b) この方法を0.2gの遊離酵素を用いて同様
に行う。
【0080】(a) 最初の試行では6時間後に48
.7%の変換がみられる。第10回目の試行では6時間
後に21.2%の変換がみられる。
.7%の変換がみられる。第10回目の試行では6時間
後に21.2%の変換がみられる。
【0081】(b) 最初の試行では6時間後に46
.1%の変換がみられる。7回目以後の試行では生成物
は最早認められない。
.1%の変換がみられる。7回目以後の試行では生成物
は最早認められない。
【0082】酵素の活性は長期にわたって確認される。
Claims (10)
- 【請求項1】 式I 【化1】 〔式中、R1は水素、ハロゲンで置換されていてもよい
C1〜C18−アルキル、またはフェニルもしくは(C
1〜C3)−アルコキシ−(C1〜C4)−アルキルで
あり、R2は水素もしくはメチルである〕で示されるビ
ニルエステル、もしくは式II 【化2】 (R1は上述の意味であり、R7はすべてが同一である
場合にはフッ素、塩素もしくは水素であり、2個のR7
が水素である場合にはR7はフッ素、塩素、臭素もしく
はシアノおよび水素であり、R7の1個のみが水素であ
り他の2個が同一の場合にはR7はフッ素もしくは塩素
および水素である)で示されるカルボン酸エステル、ま
たは環状カルボン酸無水物の1つのコハク酸もしくはグ
ルタール酸無水物を、固定化シュードモナスリパーゼの
存在下にアルコールと反応させるアルコールのアシル化
方法において、ポリスチレンベースの吸着性樹脂に固定
化されたシュードモナスリパーゼを使用する方法。 - 【請求項2】 反応は回分式で行われる請求項1記載
の方法。 - 【請求項3】 反応は連続法で行われる請求項1記載
の方法。 - 【請求項4】 細孔容積25〜75%、表面積100
〜1000m2/g、細孔径25〜1200Åのポリス
チレンベースの吸着性樹脂を担体材料として使用する請
求項1〜3のいずれかに記載の方法。 - 【請求項5】 担体は、その上に酵素をカップリング
したのち、a)固定化のための処置をせず、またはb)
ついでグルタールアルデヒドで架橋する、いずれかの形
で使用することができる請求項1〜4のいずれかに記載
の方法。 - 【請求項6】 反応温度は−10〜+100℃とする
請求項1〜5のいずれかに記載の方法。 - 【請求項7】 反応温度は−0〜+60℃とする請求
項1〜6のいずれかに記載の方法。 - 【請求項8】 請求項1〜7のいずれかに記載の方法
で得られるキラルな合成用ブロックの、プロテアーゼイ
ンヒビターの合成のための使用。 - 【請求項9】 請求項1〜7のいずれかに記載の方法
で得られる光学的に純粋なアルコールの、NSAID、
β−遮断剤、気管支弛緩薬、抗真菌剤、ピレスロイド、
テトラミゾール、テトラハイドロゾリン、(R)−(−
)−トモキセチン、(S)−(+)−フルオキセチン、
プロスタグランジンまたは炭水化物の製造のための使用
。 - 【請求項10】 NSAIDはイブプロフェンおよび
ナロキサン、β−遮断剤はニフェナロールおよびペンブ
トロール、気管支弛緩薬はトルブテロールおよびビトル
テロール、抗真菌剤はチオコナゾール、ピレスロイドは
アレスリンである請求項9記載の使用。
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|---|---|---|---|
| DE40417778 | 1990-12-24 | ||
| DE4041777 | 1990-12-24 |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04287689A true JPH04287689A (ja) | 1992-10-13 |
| JP3117157B2 JP3117157B2 (ja) | 2000-12-11 |
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|---|---|---|---|
| JP03340796A Expired - Fee Related JP3117157B2 (ja) | 1990-12-24 | 1991-12-24 | 固定化酵素によるアルコールのアシル化方法 |
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|---|---|
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| EP (1) | EP0492497B1 (ja) |
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Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| DE19505672A1 (de) * | 1995-02-20 | 1996-08-22 | Hoechst Ag | Verfahren zur enzymatischen Acylierung von Alkoholen mit Alkoxyvinylacetaten durch Umesterung |
| DE19931847A1 (de) * | 1999-07-09 | 2001-01-11 | Basf Ag | Immobilisierte Lipase |
| CN100415735C (zh) * | 2000-07-13 | 2008-09-03 | 三共株式会社 | 氨基醇衍生物 |
| KR100812578B1 (ko) * | 2000-07-13 | 2008-03-13 | 상꾜 가부시키가이샤 | 아미노알코올 유도체 |
| PT1471054E (pt) | 2002-01-11 | 2009-09-23 | Daiichi Sankyo Co Ltd | Derivado de aminoálcool ou derivado de ácido fosfónico e composição medicinal que os contém |
| US20050176118A1 (en) * | 2002-02-06 | 2005-08-11 | Oakeshott John G. | Esterases with lipase activity |
| KR100496476B1 (ko) * | 2003-05-02 | 2005-06-22 | 엔자이텍 주식회사 | 효소적 방법에 의한 광학활성 1,2-디올 유도체와 이의 에스테르 제조방법 |
| EP1715856B1 (en) * | 2003-12-31 | 2012-07-11 | Actavis Group PTC ehf. | Atomoxetine formulations |
| RU2332212C2 (ru) * | 2004-02-24 | 2008-08-27 | Санкио Компани, Лимитед | Аминоспирт |
| ES2343773B1 (es) * | 2008-11-07 | 2011-06-24 | Consejo Superior De Investigaciones Cientificas (Csic) | Procedimiento enzimatico para la acilacion en posicion 3- del resveratrol. |
| CN114196667A (zh) * | 2021-11-17 | 2022-03-18 | 武汉轻工大学 | 脂肪酶固定化载体、固定化脂肪酶及其制备方法、生物柴油的制备方法 |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| NL186239B (nl) * | 1975-06-05 | Hoechst Ag | Werkwijze voor de bereiding van een geneesmiddel met antiflogistische en/of analgetische werking, alsmede werkwijze voor de bereiding van een 2-hydroxyethylideencyaanazijnzuuranilide geschikt voor toepassing bij deze werkwijze. | |
| DK402583D0 (da) * | 1983-09-05 | 1983-09-05 | Novo Industri As | Fremgangsmade til fremstilling af et immobiliseret lipasepraeparat og anvendelse deraf |
| DK399387D0 (da) * | 1987-07-31 | 1987-07-31 | Novo Industri As | Immobiliseret lipase og dennes anvendelse |
| GB8729890D0 (en) * | 1987-12-22 | 1988-02-03 | Unilever Plc | Improvements in & relating to fat processes |
| DE3743824C2 (de) * | 1987-12-23 | 1997-03-06 | Hoechst Ag | Verfahren zur enzymatischen Racematspaltung von racemischen Alkoholen mit/in Vinylestern durch Umesterung |
| US5106750A (en) * | 1988-08-30 | 1992-04-21 | G. D. Searle & Co. | Enantio- and regioselective synthesis of organic compounds using enol esters as irreversible transacylation reagents |
| WO1990004033A1 (en) * | 1988-10-04 | 1990-04-19 | Enzytech, Inc. | Production of monoglycerides by enzymatic transesterification |
-
1991
- 1991-12-20 EP EP91121933A patent/EP0492497B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1991-12-20 CA CA002058185A patent/CA2058185A1/en not_active Abandoned
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- 1991-12-20 AT AT91121933T patent/ATE141950T1/de not_active IP Right Cessation
- 1991-12-20 DE DE59108123T patent/DE59108123D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1991-12-24 JP JP03340796A patent/JP3117157B2/ja not_active Expired - Fee Related
-
1993
- 1993-12-28 US US08/173,938 patent/US5387514A/en not_active Expired - Fee Related
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5508185A (en) * | 1993-09-27 | 1996-04-16 | Fuji Spinning Co., Ltd. | Lipase immobilized on a chitosan carrier |
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| Publication number | Publication date |
|---|---|
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| DE59108123D1 (de) | 1996-10-02 |
| DK0492497T3 (da) | 1997-01-06 |
| EP0492497A2 (de) | 1992-07-01 |
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| EP0492497B1 (de) | 1996-08-28 |
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| EP0492497A3 (en) | 1993-10-20 |
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|---|---|---|---|
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