JPH04501849A - 脂肪合成の阻止 - Google Patents
脂肪合成の阻止Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
脂肪合成の阻止
皿1血藍
本出願は、1988年7月8日に出願された米国特許出願216379号、19
88年5月9日に出願された米国特許出願191986号および1987年12
月1これら三つの出願のおのおのは、参照により本明細書に含まれる。
1且
脂肪細胞の中への脂質の過剰蓄積は、ヒトおよび動物の肥満の重要な特徴の一つ
である。脂肪細胞の脂肪合成は、インシュリン、ホルボールエステル、および成
る条件下では成長ホルモンによって刺激される。
インシュリンリセプターチロシルキナーゼは、インシュリンの活性に重要である
ことが知られている。さらに、キナーゼCはインシュリンおよび成長ホルモンの
、ラット脂肪細胞への刺激効果に関与する事が最近示された(J、Smalおよ
びP、DeMeyts、Bioch−免凹ユー戊」」しL上」−L工Jし艷1工
」;旦jす1旦」工、+ 147 :1232 (1987)。ホルボールエス
テル12−ミリステート 13−アセテートはキナーゼCの活性化剤であるが、
脂肪合成を刺激する。その効果はインシュリンまたは成長ホルモンの効果をさら
に付加するものではない。キナーゼCの抑制調節は両ホルモンの効果を阻害する
(J、Sma 1およびP、DeMeyts、上記)。
従って、複雑な脂肪合成代謝経路の第一過程であるグルコース吸収に対するプロ
ティンキナーゼ拮抗剤の影響を評価するために研究を行った。
一ゼCおよびインシュリンリセブターチロシンキナーゼの拮抗剤を含む)が、通
常のおよび基礎的動物脂肪細胞の脂肪合成を阻止もしくは完全抑制するという発
見に関する。脂肪合成の禁止の程度は、脂質細胞が利用できる拮抗剤の実質有効
量の関数である。ホルモン−刺激脂肪合成は比較的低濃度でブロックされるが、
高濃度においては基礎的脂肪合成も完全に抑制される。
本発明の他の観点は、哺乳類、例えばヒトにおける脂肪合成を抑制するために、
治療上有効な量のプロティンキナーゼ拮抗剤の投与にも関する。
好ましいプロティンキナーゼ拮抗剤は、リソフィンゴリピッド(lysosph
ingolipid)類、スタウロスポリン(staurosporine)お
よびアミノアクリジン(aminoacridine)類を含む。
式Iは、本発明に有効なある種のりソフィンゴリピッドである。
(I)
(式中、Xは例えばH(スフィンゴシン)、ガラクトース(サイコシン:psy
chosine)、スルホガラ5ia−Gal−Glc−(lyso GMs)
、およびそれらの誘導体を表す)
式■は、本発明のこの態様に使用するために有用な好ましい化合物、スフィンゴ
シンの分子構造である:H
スタウロスポリンは、日本国東京の協和発酵(株)から入手でき、次の構造式■
を有する微生物アルカロイドである:
NHCH。
(m)
スタウロスポリン
アミノアクリジンは、本発明の実施に有用なさらに別のキナ、−ゼC阻害剤の群
を形成する。本発明のこの態様には、他のアミノアクリジンに加えて、プロティ
ンキナーゼC拮抗剤として、特にハンナンおよびベル(Ha n nun an
d Be1l)、J、Biol、Chem。
、263.5124−5131 (1988)により記載された化合物を含む。
アクリジンオレンジが好ましく、ラット脂肪細胞における基礎脂肪合成およびイ
ンシュリン−刺激脂肪合成の両方を阻害することが判明した。その阻害作用は1
0μMで最高である。
又肌立亘丞
本発明はプロティンキナーゼ拮抗剤、好ましくはスフィンゴリビッド類および(
リソ)スフィンゴシン・ノド類、スタウロスポリンおよびアミノアクリジン類が
、哺乳類の脂肪細胞の脂肪合成を阻止もしくは完全抑制するという発見に関する
。脂肪合成の阻害の程度は、脂質細胞中の若しくは該細胞が利用できるプロティ
ンキナーゼ拮抗剤、例えばスフィンゴリピッドまたは(リン)スフィンゴリピッ
ドまたはスタウロスポリンまたはアミノアクリジンの有効量の関数である。
より詳しくは、インシュリン、成長ホルモンおよびホルボールエステルによる脂
質細胞の脂肪合成の刺激が、そのようなプロティンキナーゼ拮抗剤の有効且つ比
較的低濃度で可逆的にブロックされ、他方、高濃度においては基礎脂肪合成(ホ
ルモンの不存在下での脂肪合成)も完全に抑制されることが発見された。
実施例1
スフ ンゴシンによる 八 の
第1A図および第1B図は、ホルボールエステル(PMA)、ヒト成長ホルモン
(hGH)およびインシュリンによるラットの脂肪細胞(アジボサイト)での脂
肪合成の最大刺激に対するスフィンゴシンの効果を示すグラフである。
トレーサーとしてD−3[3Hl−グルコースの脂質への取込みを、試験管当た
りの放射活性の1分間のカウント数(cpm)として示している。値は3回の測
定の平均であり、上方および下方へのばらつきは標準偏差(Is、D、)である
。得られた値はグラフを単純化するために1000で割って表示した。従って、
第1A図のグラフにおける3の値は、実際には3.OOOcpmの測定値を表す
。
細胞を、50gMのスフィンゴシンを加えずに(Oの棒グラフ)またはこれを加
えて(50の棒グラフ)、ホルモンの不存在下(基礎脂質合成:斜線を付した棒
グラフ)または各々1100n/dのPMA、 1000Bg/d100μMス
フィンゴシンにおいて、基礎脂肪合成およびホルモン刺激脂肪合成のいずれもが
、ゼロの値まで減少した。
この脂肪合成アッセイは、スマル(Sma l) ら、J、Biol Chem
、、262:11071−11079 (1987)の方法で行った。要約して
述べれば、解剖して取り出した精巣上体および腹膜後の脂肪パッド(fat p
ads)を、37℃で30分間激しく撹拌しながら、クレブスーリンゲルーヘベ
ス(KRH)でpH7,4に緩衝化され、35Ing/w11の透析ウシ血清ア
ルブミン(B S A)および0.27mMグルコースを含む液中のコラゲナー
ゼで(1,0■/Id)で消化した。チーズ濾布で濾過し、10■/dBSAを
含むKRHで4回洗浄した後、この脂肪細胞を同じ緩衝液中で37℃、4時間ブ
レインキュベートした。この細胞に、脂肪合成のアッセイの10分間前に、スフ
ィンゴシン(エタノール中の100mMのストック溶液)を添加して最終濃度を
第1A図では50gMとし、第1B図では0〜100μMとした。対照細胞には
、スフィンゴシンを含まない同濃度のエタノールを添加した。
脂肪合成のアッセイは、6−のポリエチレン製バイアル中で、順次400μmの
脂肪細胞懸濁液(80X104細胞/−)、ホルモンを含まない(基礎脂肪合成
)またはヒト成長ホルモンを1000Bg/d、インシュリンを1100n/i
dまたはホルボールエステルPMAを1100n/−を含む50μlのKRH緩
衝液、pH7,4(1%BSA、0.27mMグルコース)、および50μmの
D (3−” H)−グルコースを全量0.5mとなるように加えて3回づつ実
施した。バイアルを穏やかに振とうしながら37℃で2時間インキュベートした
。反応停止のため、激しい撹拌下(細胞を破壊するために30g)でトルエンシ
ンチレータ−液(トルエン1リツトル+0.3gの1.4−ビス(2−(4−メ
チル−5−フェニルオキサシリル)ベンゼンを試験管当たり5dおよび5gの2
,5−ジフェニルオキサゾール)を添加し、さらに少なくとも1時間静置して、
放射線カウント前に脂質をトルエン層に抽出した。カウントはベックマンLSI
880ベータカウンターで行った。種々のサンプルのカウント効率は、冷却トリ
チウムの内部標準化により測定した。D−[3−3H)−グルコースの脂質中へ
の取込みは、c pmXl 0−a/試試験管様標準偏差より表示する。
第1A図は、50gMスフィンゴシンがPMAによる脂肪合成の増大を完全にブ
ロックし、hGHの効果を顕著に減少させ(65%)、そしてインシュリンの効
果も顕著に減少させた(89%)ことを示す。
第1B図は、スフィンゴシンの効果の用量一応答曲線は種々の細胞タイプに関し
て、キナーゼCのインビボおよびインビトロ阻害に関していたるところで記載さ
れている(Y、A、Hnnun、C,R,Loomis、A、H,Merril
JR,およびR,M、Be 11゜上、l工且土、立上!工、、261 :1
2504 (1986);E、Wi 1son、M、C,01cot t、Ro
M、Be1l、A、H,Merril Jr、およびJ、D、Lambeth、
J、旦上且上 Chem、。
261 :12616 (1986);Y、A、Hannun、C,S、Gre
enbergおよびR,M、Be11、J、Biol Chem、、262:1
3620 (1987))のと同じ範囲であることを示す。この図はさらに、1
00μMスフィンゴシンが基礎脂肪合成並びにインシュリン、PMAおよびhG
Hの効果を完全に消失させることを示す。
トリパンブルー排除法により評価した、脂肪細胞の生存度(パイアビリティ−)
は、100μMスフィンゴシンの存在下で変化しなかった。細胞の洗浄後に、基
礎脂肪合成に対するスフィンゴシンの効果は完全に可逆的であり、そして刺激さ
れた脂肪合成に対するその効果は部分的に可逆的であった。
実施例■
スフ ンゴシンによる 八 の
スフィンゴシンによる脂肪合成の阻害の特異性をスフィンゴミエリンの効果と比
較して試験した。プロティンキナーゼCの特異的阻害に関してリソスフィンゴリ
ピッドに要求される重要な構造要件は、式Iに示すとおり、第一アミノ基および
疏水性の長鎖である。第2図が示すとおり、スフィンゴミエリンは下記式■を参
照するとわかるように、スフィンゴイド塩基の2−アミノ位置にアミド結合脂肪
酸を有するが、
(IV)
250μM迄の濃度において、基礎脂肪合成もホルモン刺激脂肪合成も阻害しな
い。従って、脂肪合成の阻害はキナーゼC阻害と同様の特異性を有する。
第2図に反映されるデータを得るために、増加する濃度のスフィンゴシンの存在
下(閉じた記号)のみならず、増加する濃度のスフィンゴミエリンの存在下(開
いた記号)において、詳細は上記したようにして第1B図のように脂肪合成を測
定した。
実施例■
A およびグルコース °みに・ るスフ ンゴシ之旦且l立皇笠
本実施例は同じバッチのラット脂肪細胞に対して同時に実施した実験を包含する
。第3図は、脂肪合成およびグルコースの取り込みが同程度阻害されたことを示
す。
このデータは、スフィンゴシンの脂肪合成に対する観察された効果は、脂肪合成
の代謝経路でのグルコースの取り込みに衝撃を及ぼすことを示唆している。
第3図に反映されているデータを得るために、各実験において脂肪合成およびグ
ルコース取り込みを平行して同じ脂肪細胞のバッチについて測定した。脂肪合成
のプロトコールは第1図に関して説明した。グルコース取り込み測定のために、
単離した脂肪細胞(16X10’細胞/−)を、脂肪合成過程の後、増加する濃
度のスフィンゴシン(θ〜100μM)で37℃10分間インキュベートし、飽
和用量のインシュリン(100ng/d)、hGH(1μg/M1)、またはホ
ルボールエステルPMA (100ng/id)および9nMのD−(3−’
H)−グルコースを添加してから、2時間37℃でインキュベートした。インキ
ュベートを中断するために、試験管当たり3−の水冷9%oNaC1および11
1&のジノニルフタレートを連続して添加した。試験管を直ちに4℃、3000
rpa+で5分間遠心分離した。浮遊細胞を切断先端のチップを備えた500μ
lピペツトで回収し、10IKgの汎用シンチレーション用液(Aqua−so
l n、NEN リサーチプロダクト社、ボストン、MA)を1〇−含むシンチ
レーションバイヤルに移し、カウント前に細胞を破壊するため十分に振とうした
。スフィンゴシンを用いない場合(コントロール)の効果に対する%で表示した
結果は、用いたスフィンゴシンの濃度の関数としてプロットした(棒グラフの下
にその濃度は示されている)、、黒捧は脂肪合成を示し、白樺はグルコース取り
込みを示す。
実施例■
ホルモンーリセブター Aの の ではないスフ−とゴj仁mに
インシュリンおよび成長ホルモンのそれらリセブターへの結合は、J、Smal
、J、C1osset、G。
HennenおよびP、DeMeyts、により研究され、J、Bfol、Ch
em、、262:11071 (1987)1.:記載されティる。1!Is
I −A 14Tyr−インシュリンおよび”’I−hGHは、JoMarku
ssenおよびV、D、Larsen、rインシュリン:インシュリンおよび関
連ホルモンの化学、構造および機能(Insulin:Chemistry、
5tructure and Function of In5ufin an
d Re1ated Hormones)J (D、Brandenburgお
よびA、Wol1mer編) 、 W、 DeGruy t e r、ベルリン
、161頁(1980)およびJ、C1osset、J、Smal、F、Gom
ezおよびG、Hennen、Biochem、J、、214:885 (19
83)に記載されたようにして調製した。単離した脂肪細胞(インシュリン結合
には8 X 105細胞/−1hGH結合には16X10IS細胞/−)のブレ
インキュベーションは、二連で(最終量0.5N1/試験管)結合緩衝液(クレ
ブス リンゲル ヘペX pH7,4,0,27mM、5%BSA (W/W)
+0.5■/1111バシトラシンおよび0.5μg/dアプロチニン)中で、
増加する濃度のスフィンゴシン(0−200μM)とともに、37℃で10分間
行い、その後1211I−インシユリン(30,OOOcpm/試験管、最終濃
度30pMに相当)または1!+5t−hGH(50,000cpm/試験管、
最終濃度45pMに相当)を添加した。インキュベーション時間はインシュリン
においては37℃45分、hGHにおいては37℃75分とした。インキュベー
ションを中断するために、試験管当たり水冷9%。NaC1を3dおよびジノニ
ルフタレートを1M1連続して添加した。試験管を直ちに4℃で5分間3000
rpmで遠心した。浮遊細胞を先の切断されたチップをつけた500μlのピペ
ットで回収し、細胞の放射能の活性をカウントした(全結合)。同じ方法を繰り
返して、それぞれ10μg/−の未標識インシュリンおよびhGHの存在下で1
25■−インシュリンおよび”’I−hGHの結合を測定した。
結果は第4A図および第4B図に、未標識ホルモン10μg/idの不存在下(
全結合)または存在下(N、S、結合)において結合したトレーサーが、cpm
Xlo−3/試験管の値で、スフィンゴシンの増加する濃度(0〜200μM)
の関数として示されている。
第4A図および第4B図が示すとおり、スフィンゴシンは、200μMにおいて
インシュリン結合に対して有意な影響を示さなかった(第4A図)。これとは対
照的に成長ホルモンのそのリセブターへの結合はスフィンゴシンの濃度の増大と
共に次第に減少した(第4A図)。
しかしながら、脂肪合成を完全に阻害するスフィンゴシンの濃度(100μM)
においても、成長ホルモンの特異的結合は対照値の43%を下回ることはなかっ
た。
実施例V
第5図は、単離されたラットの脂肪細胞でのインシュリンによる脂肪合成の最大
刺激に対する、スタウロスポリンの影響を示している。トレーサーであるD−3
[”H]−グルコースの脂肪への取り込みは、試験管当たりの放射能の1分当た
りのカウント(cpm)で表されている。この値は二連の結果であり、上下1標
準偏差(IS、D、)も示されている。細胞は増加する用量のスタウロスポリン
(0〜21.4μM)の存在下で1100n/−のインシュリンの不存在下(基
礎曲線)および存在下(インシュリン曲線)にインキュベートした。脂肪合成ア
ッセイは前記Sma 1の方法で行った。第5B図において第5A図に示された
実験の結果が、標準化されて示されている。即ち、増加する用量のスタウロスポ
リンの存在下での、インシュリン刺激脂肪合成および基礎脂肪合成が、スタウロ
スポリンの存在しない初期値に対する百分率で示されている。ラット脂肪細胞で
の刺激脂肪合成は、スタウロスポリンによって用量依存的に阻害されている。ス
タウロスポリンのそれぞれ約2.5マイクロモルおよび25マイクロモルにおい
て、基礎およびインシュリン刺激脂肪合成・は完全に阻害されたが、固定度の阻
害効果をスフィンゴシンで得るには100マイクロモルの濃度が必要である。
実施例■
第6A図および6B図は、インシュリン、ホルボールエステル、PMAおよびヒ
ト成長ホルモンによるラット脂肪細胞での脂肪合成の最大刺激に対するスタウロ
スポリンの影響を示す。
第6A図および6B図の実験は、上で詳細に説明した第1A図および18図と厳
密に同じ方法で行ったが、但しスフィンゴシンの代わりにスタウロスポリンを、
横軸の下に示した濃度で(第6A図では2.14μM、第6B図ではO〜21.
4μM)用いた。第6A図は、スタウロスポリンが2.14μ鉦の濃度で、基礎
脂肪合成を変化させること無しに、脂肪合成に対するPMAおよびhGHの効果
をほぼ完全に阻害し、そしてインシュリンの効果を顕著に抑制することを示して
いる。第6B図は基礎脂肪合成およびhGH刺激、PMA刺激およびインシュリ
ン刺激脂肪合成に対するスタウロスポリンの効果の、用量応答曲線を示す。21
.4μ舅でスタウロスポリンは基礎脂肪合成および刺激脂肪合成の両者を完全に
阻害する。
実施例■
第7A図および7B図は、それぞれスタウロスポリンの効果に起因する脂肪合成
の阻害の百分率およびホスホリル化の阻害の百分率を示す。第7A図は第6B図
と同じデータを標準化したものであり、第7B図の各曲線は脂肪合成の阻害の百
分率として強調されており(io。
%はスタウロスポリンの不存在下で測定した脂肪合成であり、PMA刺激、hG
H刺激またはインシュリン刺激脂肪合成から基礎脂肪合成を引いたものである)
、スタウロスポリンの濃度(0〜21.4μM)の関数である。第7B図はスタ
ウロスポリン濃度(0〜21.4μM)の関数として、精製キナーゼCおよび精
製インシュリンリセブターチロシンキナーゼのキナーゼ活性に対する阻害の百分
率を示す。キナーゼ活性は精製キナーゼが合成ペプチド、Arg−Arg−Le
u−I Ie−Glu−Asp−Ala−Glu−Tyr−Ala−Ala−G
ly、をホスホリル化する能力によって測定され、その詳細はY、Fujita
−YamaguchiおよびS、Kathuria、Biochem、Bio
hs、Res、Commun 、157:955−962(1988)に記載さ
れている。
インシュリン1セブターキナーゼの 1=インシユリンリセブターは、トリトン
x−iooで溶解したヒト胎盤の膜から、Y、Fu j i t a−Yama
guchi、S、Chou、Y、Sakamotoおよびに、Itakura、
J Biol Chem、、258 : 5045−5049 (1983)に
記載されているようにして、WGA−セファロースおよびインシエリンーセフ7
0−スの連続アフィニティークロマトグラフィーで、2400倍に精製された。
チロシン ・プロティンキナーゼアッセイホスホリル化の活性は25℃で40分
間、30μlの50a+M)リス−HCl緩衝液、pH7,4中で行った。該緩
衝液には、1mMの5rc−関連ペプチド、2mMのMnCf、、15mMのM
gC1*、0.1%のトリトンX−1001および40μMの[γ−”Pl A
TP (〜12、OOOcpm /pmole)および精製インシュリンリセブ
タ−(0,1μg)を含ませ、予め0.1μMのインシュリンまたはI GF−
Iの存在下または不存在下で阻害剤の1つの種々の濃度で25℃1時間予備イン
キュベーションしておいた。反応は50μlの5%トリクロロ酢酸および20μ
lのウシ血清アルブミン(19■/nl)を添加して停止した。この溶液を0℃
で30分間インキュベートした後、蛋白質を遠心で沈澱させた。上澄から35μ
lのアリコートを二連で、ホスホセルロース紙(ワットマン、P−81)の片に
スポットした。この紙片を75■M燐酸中で充分に洗浄した。82pのペプチド
への取り込みは液体シンチレーションカウンターでカウントして定量した。精製
プロティンキナーゼCのキナーゼ活性は、基質としてヒストン■S(シグマ社)
を用いて、T、Akiyama、E、N15hida、J、l5hida、N、
5oyi、H,Ogarawa、M、Ho5hi、Y、MiyataおよびS、
5akai、J Bi o 1.Chem、、2’61 :15648−156
51(1986)に記載されたようにして調べた。第7A図および第7B図の比
較は、スタウロスポリンによるインシュリン刺激脂肪合成の阻害に関する用量一
応答曲線は、該薬剤によるインシュリンリセブターチロシンキナーゼの阻害と平
行し、一方、hGHおよびPMA刺激の阻害はプロティンキナーゼCの阻害に平
行することを示している。
実施例■
第8A図および8B図は、単離されたラットの脂肪細胞における、インシュリン
およびhGHのそれらのりセブターへの結合に対するスタウロスポリンの効果を
説明するものである。実験は第4A図および4B図と同様に行ったが、スフィン
ゴシンの代わりにスタウロスポリン(0〜21.4μM)を用いた。このデータ
によると、スタウロスポリンはホルモン刺激脂肪合成をほぼ完全に阻害する濃度
でホルモンの結合に対しては、殆どもしくは全く影響しない。
実施例■
第9図は、基礎脂肪合成ならびにhGH,PMAおよびインシュリン刺激脂肪合
成に対して、アクリジンオレンジ(プロティンキナーゼCに対する活性な阻害剤
jは影響を有し、および9−アクリジンカルボン酸(プロティンキナーゼCに対
して不活性)は無効果であることを説明する。このアッセイはSmal、J、、
S、KathuriaおよびP、DeMeyts、FEBS Let t、、2
44 : 465−468 (1989)に詳細に説明されている。この実験は
第1B図に関して説明したようにして行ったが、但しスフィンゴシンの代わりに
、アクリジンオレンジ(閉じた記号)または9−アクリジン−カルボン酸をO〜
100μMで用いた。このデータはインシュリン、PMAおよびhGHで刺激さ
れる脂肪合成並びに基礎脂肪合成を、アクリジンオレンジが完全に阻害したこと
を示す。
実施例X
第10A図および108図は、単離されたラット脂肪細胞中でのインシュリンお
よびhGHがそれらのりセブターに結合することに対する、アクリジンオレンジ
の影響を示す。実験は第4A図および4B図と同様に行ったが、但しスフィンゴ
シンの代わりにアクリジンオレンジ(O〜100μM)を用いた。このデータは
、脂肪合成の阻害がほぼ最高になる10pMの用量において、この薬剤はホルモ
ン結合に何の影響も持たないが、100μMでは両者のホルモンの結合を50%
抑制することを示す。
上記実施例において示した脂肪合成阻害を証明するデータを与えた、遊離脂肪細
胞によるアッセイ方法は、薬品工業分野で開発されたもので、現在では工業規格
の一つにされている。このデータはヒトを含む哺乳類において脂肪合成を阻害し
、したがって肥満を抑制するために本発明が有用であることを、当業者が肯定す
るであろう有力な証拠である。
反亙亙圭仄朋l
投与方法および用量の選択は、当業者にとって容易であり、適宜決定される。本
発明はその広い観点において、ヒトを含む哺乳類の脂質代謝を阻害するために有
用な、プロティンキナーゼ拮抗剤、例えばスタウロスポリンまたはスフィンゴリ
ビッドまたはリンスフィンゴリビッドまたはアミノアクリジンを含有する治療用
組成物にも関する。この拮抗剤は、それ自体でまたは治療上許容される担体とと
もに、例えばリポソームの形で投与することができる。
非経口投与が好ましい。経皮投与はジメチルスルホキシドのような透過促進剤を
含むゲルまたはクリームで行ってよい。プロティンキナーゼ拮抗剤、即ちスタウ
ロスポリンまたはスフィンゴリピッドまたはりソスフィンゴリピッドまたはアミ
ノアクリジンは、哺乳類の脂肪細胞の脂肪合成のホルモン刺激もしくは基礎刺激
を、部分的にもしくは完全に抑制するために治療上有効な量で投与される。
抑制の程度は用量の関数である。好ましくはスフィンゴリピッドについては、約
15〜約100■/kg患者体重のキナーゼ拮抗剤が適当である。少なくとも約
15■/kgの投与が脂肪合成を部分的に抑制するために十分である。少なくと
も約60mg/kgの投与が基礎脂肪合成を完全に抑制するために提唱される。
スタウロスポリンのためには少なくとも約15■/kgが基礎脂肪合成の完全抑
制のために提唱される。投与は、所望の治療効果が観察されるまで適当な期間継
続される。
脂肪合成を阻止する種々の薬剤、例えばホルモン(カテコールアミン、グルカゴ
ン、八〇TH)、クロフィブレート(clofibtate)、ハロゲネート(
halogenate)、フェンフルラミン(fenfluramine)、ア
ンフェタミン(amphe t amine)、シンコカイン(c 1ncho
ca 1ne) 、クロルプロマジン(chlorpomazine)およびそ
れらの成る種の誘導体が知られている。しかしながら、これらの薬剤はいずれも
、本発明のプロティンキナーゼ拮抗剤のように効果的には脂肪合成を促成するこ
とができない。
濠 7j(μMン
第5A回
スタウロスrリン(μM)
第58凹
第7A回
第78VJ
手続補正書(j5炙
平成 3年17月、8日国
Claims (11)
- 1.哺乳類の脂肪合成(リポゲネシス)を抑制するために治療上有効な量のプロ テインキナーゼ拮抗剤を哺乳類に投与することよりなる方法。
- 2.プロテインキナーゼ拮抗剤が、リソスフィンゴリビッド、アミノアクリジン またはスタウロスポリンである、請求項1記載の方法。
- 3.哺乳類がヒトである、請求項2記載の方法。
- 4.プロテインキナーゼ拮抗剤がスフィンゴシン、スタウロスポリンまたはアク リジンオレンジである、請求項3記載の方法。
- 5.プロテインキナーゼ拮抗剤が、ホルモンにより刺激される脂肪合成の抑制の ために治療上十分な量でヒトに投与される、請求項1、2または3記載の方法。
- 6.基礎脂肪合成を抑制するのに治療上十分な量でプロテインキナーゼ拮抗剤が 投与される、請求項1、2または3記載の方法。
- 7.基礎脂肪合成を阻止するために治療上有効な量のプロテインキナーゼ拮抗剤 を哺乳類に投与することよりなる、哺乳類の肥満を治療する方法。
- 8.プロテインキナーゼ拮抗剤が、リソスフィンゴリビッド、アミノアクリジン またはスタウロスポリンである、請求項7記載の方法。
- 9.インシュリンにより刺激される脂肪蓄積を阻止するために、治療上有効な量 のプロテインキナーゼ拮抗剤を哺乳類に投与することよりなる、哺乳類の肥満の 治療方法。
- 10.哺乳類がヒトである、請求項7、8または9記載の方法。
- 11.哺乳類がヒトであり、アミノアクリジンがアクリジンオレンジである、請 求項3記載の方法。
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| EP0372062A1 (en) | 1990-06-13 |
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