JPH0499483A - 動物細胞の潅流培養方法 - Google Patents
動物細胞の潅流培養方法Info
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- JPH0499483A JPH0499483A JP2215213A JP21521390A JPH0499483A JP H0499483 A JPH0499483 A JP H0499483A JP 2215213 A JP2215213 A JP 2215213A JP 21521390 A JP21521390 A JP 21521390A JP H0499483 A JPH0499483 A JP H0499483A
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Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、浮遊性の動物細胞を長期間高密度で培養する
方法に関する。
方法に関する。
[従来の技術]
動物細胞は、リンパ球系の細胞のように、浮遊状態で増
殖する細胞と、培養容器表面やコラーゲンマトリックス
などに付着して増殖する細胞とに、生育上の性質から分
類できる。浮遊性の細胞としては、ハイブリドーマなど
物質生産上有用な細胞が多いため大量培養の方法が多数
考案されている。
殖する細胞と、培養容器表面やコラーゲンマトリックス
などに付着して増殖する細胞とに、生育上の性質から分
類できる。浮遊性の細胞としては、ハイブリドーマなど
物質生産上有用な細胞が多いため大量培養の方法が多数
考案されている。
−船釣には細胞培養は、培養液1d当りの密度をどの程
度まであげることができるかが最大の課題である。通常
の培養条件では動物細胞の場合は、培養液1I21!当
り105〜106個程度である。このために培養液を定
期的に交換し、また、ガス置換を行うことにより、10
6〜10″の細胞密度を達成することが可能となること
が知られている。
度まであげることができるかが最大の課題である。通常
の培養条件では動物細胞の場合は、培養液1I21!当
り105〜106個程度である。このために培養液を定
期的に交換し、また、ガス置換を行うことにより、10
6〜10″の細胞密度を達成することが可能となること
が知られている。
このために連続的に培養液を交換するための方法として
、培養液を常時循環潅流し、この循環回路において培養
液を交換し、また培地中に生産された有用物質をあわせ
て回収する方法が開発されている。当初この技術は、微
生物の高密度培養に使用されたのが始まりである0例え
ば特開昭61−8872号公報(特公昭63−6319
3号公報)には、乳酸菌の高密度培養方法が開示されて
いる。この方法によれば乳酸菌の培養槽より、培養液を
抜き出し、ホローファイバー濾過膜により低分子物質と
菌体とを分離し、菌体は新鮮培地とともに培養槽に戻し
、またホローファイバー濾過膜を定期的に逆洗浄するこ
とを特徴としている。この方法を浮遊性の動物細胞に応
用した例として、特開昭61−257181号公報には
、抗体生産ハイブリドーマを培養し、ホローファイバー
濾過膜を使用し、培地交換を行い、又ホローファイバー
に濾過膜を無血清培地により定期的に逆洗する方法が開
示されている。この方法によれば22日間ハイブリドー
マを培養し、培養液1111当り1.3X10’個の細
胞密度に到達したと述べている。このように浮遊性細胞
培養においては培養液の潅流とホローファイバー膜によ
る培地の交換、ホローファイバー膜の逆洗浄は、高密度
培養におけるポイントとも言える。 しかしこのような
ホローファイバー膜を使用する方法は、装置の膜面積を
上げる上では、有効ではあるが、細胞を含む培養液が、
ホローファイバーの細管内を流れるため、細胞に強い剪
断力が加わり細胞破砕の原因となることが指摘されてい
る。また濾過面に細胞が付着し、めづまりをおこし、長
期培養が困難となる事例がしばしば発生している。この
ため逆洗浄による効果を発揮させるために膜の孔サイズ
は、分子量10,000以下カツトの能力を有するよう
な小孔の濾過膜を使用することが一般的とされていた。
、培養液を常時循環潅流し、この循環回路において培養
液を交換し、また培地中に生産された有用物質をあわせ
て回収する方法が開発されている。当初この技術は、微
生物の高密度培養に使用されたのが始まりである0例え
ば特開昭61−8872号公報(特公昭63−6319
3号公報)には、乳酸菌の高密度培養方法が開示されて
いる。この方法によれば乳酸菌の培養槽より、培養液を
抜き出し、ホローファイバー濾過膜により低分子物質と
菌体とを分離し、菌体は新鮮培地とともに培養槽に戻し
、またホローファイバー濾過膜を定期的に逆洗浄するこ
とを特徴としている。この方法を浮遊性の動物細胞に応
用した例として、特開昭61−257181号公報には
、抗体生産ハイブリドーマを培養し、ホローファイバー
濾過膜を使用し、培地交換を行い、又ホローファイバー
に濾過膜を無血清培地により定期的に逆洗する方法が開
示されている。この方法によれば22日間ハイブリドー
マを培養し、培養液1111当り1.3X10’個の細
胞密度に到達したと述べている。このように浮遊性細胞
培養においては培養液の潅流とホローファイバー膜によ
る培地の交換、ホローファイバー膜の逆洗浄は、高密度
培養におけるポイントとも言える。 しかしこのような
ホローファイバー膜を使用する方法は、装置の膜面積を
上げる上では、有効ではあるが、細胞を含む培養液が、
ホローファイバーの細管内を流れるため、細胞に強い剪
断力が加わり細胞破砕の原因となることが指摘されてい
る。また濾過面に細胞が付着し、めづまりをおこし、長
期培養が困難となる事例がしばしば発生している。この
ため逆洗浄による効果を発揮させるために膜の孔サイズ
は、分子量10,000以下カツトの能力を有するよう
な小孔の濾過膜を使用することが一般的とされていた。
しかし、このようなサイズの孔を有する膜を使用した場
合は培養液中に分泌生産される蛋白質や抗体など、高分
子物質の分離・回収は効率よくできないなどの問題点が
指摘されていた。
合は培養液中に分泌生産される蛋白質や抗体など、高分
子物質の分離・回収は効率よくできないなどの問題点が
指摘されていた。
ちなみに抗体の代表的なサブクラスであるIgGは、M
W146,000 t−PAは69.000など有用物
質には分子量の高いものが多い。
W146,000 t−PAは69.000など有用物
質には分子量の高いものが多い。
本発明者らは浮遊性動物細胞の、長期連続培養方法と物
質生産について検討を行って来たところ、ホローファイ
バーによる濾過の欠点を改良した新しい培地交換と濾過
膜の最適な組合わせを見出し、本発明を完成するにいた
った。
質生産について検討を行って来たところ、ホローファイ
バーによる濾過の欠点を改良した新しい培地交換と濾過
膜の最適な組合わせを見出し、本発明を完成するにいた
った。
従って本発明は、濾過膜を使用し浮遊性細胞を長期間連
続培養する場合の最適な培養方法を従供することを課題
とする。
続培養する場合の最適な培養方法を従供することを課題
とする。
本発明においては浮遊性動物細胞を長期連続培養するに
当り、細胞の浮遊する培養液の1部をぬきとり、培養液
と細胞を濾過膜を介して分離し、細胞を新鮮培地ととも
に培養槽に戻して連続的に培地交換を行う培養方法であ
って、 ■ 細胞の分離に0.2μm〜0.8μmの孔を有する
平板濾過膜を使用し、 ■ 該平板濾過膜を無血清基礎培地で間歇的に、培養液
の循環方向と同方向より洗浄する操作を行うことにより
目的とする細胞を高密度でかつ長期間培養することが可
能であることが判明した。
当り、細胞の浮遊する培養液の1部をぬきとり、培養液
と細胞を濾過膜を介して分離し、細胞を新鮮培地ととも
に培養槽に戻して連続的に培地交換を行う培養方法であ
って、 ■ 細胞の分離に0.2μm〜0.8μmの孔を有する
平板濾過膜を使用し、 ■ 該平板濾過膜を無血清基礎培地で間歇的に、培養液
の循環方向と同方向より洗浄する操作を行うことにより
目的とする細胞を高密度でかつ長期間培養することが可
能であることが判明した。
本発明の方法により培養を行うためには、第1図に示す
機能を有する培養装置を例示することができる。
機能を有する培養装置を例示することができる。
BRで示される培養槽においてスターラ−(Sll)に
より、浮遊性の動物細胞は、ゆるやかに撹拌培養される
。細胞浮遊液は、Llで示されるラインを通り、定常的
にPlで示されるポンプを通り濾過システム(FM)に
導入される。そして、この中に設置されている平板II
t18膜によって培養濾液と細胞を含んだ培養濃縮液と
に濾過分離される。
より、浮遊性の動物細胞は、ゆるやかに撹拌培養される
。細胞浮遊液は、Llで示されるラインを通り、定常的
にPlで示されるポンプを通り濾過システム(FM)に
導入される。そして、この中に設置されている平板II
t18膜によって培養濾液と細胞を含んだ培養濃縮液と
に濾過分離される。
細胞を含んだ培養濃縮液は、ラインL2を通り撹拌培養
槽(BR)に戻される。また撹拌培養槽(BR)から抜
き出された培養液は、液面計(LS)により検知され、
減少量だけポンプ(B2)を通り供給培地(SM)から
供給され撹拌培養槽(BR)内において常に定常を維持
される。撹拌培養1(BR)中のpH,O□濃度は、溶
存酸素計(DO)pHコントローラーにより検知され、
常に定常値に制御される。
槽(BR)に戻される。また撹拌培養槽(BR)から抜
き出された培養液は、液面計(LS)により検知され、
減少量だけポンプ(B2)を通り供給培地(SM)から
供給され撹拌培養槽(BR)内において常に定常を維持
される。撹拌培養1(BR)中のpH,O□濃度は、溶
存酸素計(DO)pHコントローラーにより検知され、
常に定常値に制御される。
細胞と培養液の分離に使用する濾過システムとしては平
面の濾過膜を備えてるものであればどのようなものでも
使用できる。濾過面の孔のサイズとしては浮遊性動物細
胞を通過させず高分子の蛋白質を通過させるような膜を
備えたものが好ましい、この点から孔サイズとしては、
0.2μm〜0.8μmが特に好ましい。
面の濾過膜を備えてるものであればどのようなものでも
使用できる。濾過面の孔のサイズとしては浮遊性動物細
胞を通過させず高分子の蛋白質を通過させるような膜を
備えたものが好ましい、この点から孔サイズとしては、
0.2μm〜0.8μmが特に好ましい。
潅流時はポンプ(B3)により吸引し濾過後培養液はラ
イン(LS)を通り回収培地槽(RM)に回収され、必
要に応じ精製回収工程へまわされる。
イン(LS)を通り回収培地槽(RM)に回収され、必
要に応じ精製回収工程へまわされる。
濾過膜表面は循環方向と同方向より定期的(間歇的)に
洗浄を行う、従来のホローファイバーを使用した濾過装
置においては、膜表面を洗浄することは困難であり、ま
た中空繊維内のつまりを除くために循環方向と逆方向の
洗浄が必要であったが、本発明の平膜による濾過方法で
は、1日1回循環方向と同方向に培養液と同成分の基礎
培地で洗浄することにより長期間の連続培養を維持でき
ることがわかった。
洗浄を行う、従来のホローファイバーを使用した濾過装
置においては、膜表面を洗浄することは困難であり、ま
た中空繊維内のつまりを除くために循環方向と逆方向の
洗浄が必要であったが、本発明の平膜による濾過方法で
は、1日1回循環方向と同方向に培養液と同成分の基礎
培地で洗浄することにより長期間の連続培養を維持でき
ることがわかった。
洗浄に当ってはポンプ(PI)、(B3)を停止し、バ
ルブ(B2)、(B3)を洗浄ラインに切り変え、ポン
プ(B4)を駆動し、洗浄液槽(CM)より洗浄液を潅
流流量の50〜100倍量の流速で10〜60秒間送っ
て洗浄し、次いで循環流路にパルプ(B2)、(B3)
を切り替え、ポンプ(Pi)、(B3)を駆動させて潅
流を再開すればよい。このような方法を採ることで、浮
遊性の動物細胞の長期間高密度培養と培養液の回収が可
能となる。
ルブ(B2)、(B3)を洗浄ラインに切り変え、ポン
プ(B4)を駆動し、洗浄液槽(CM)より洗浄液を潅
流流量の50〜100倍量の流速で10〜60秒間送っ
て洗浄し、次いで循環流路にパルプ(B2)、(B3)
を切り替え、ポンプ(Pi)、(B3)を駆動させて潅
流を再開すればよい。このような方法を採ることで、浮
遊性の動物細胞の長期間高密度培養と培養液の回収が可
能となる。
本発明における平板濾過膜は、ミクロ濾過膜(10−’
11−30〜50μ園濾過能力を有する)をフィルター
形状に、単層、もしくは多層とし、シート状に成形され
たものでミリポアフィルタ−(ミリポア社)、ウルトラ
フィルター、アイオプレート(アミコン社)などが例示
できる。またこれらのフィルターをセットした濾過シス
テムとしてミニタン(ミリポア社)、セルプロセンサー
(アミコン社)、アイオプレートシステム(アミコン社
)などをあげることができる、これを使用することによ
ってホローファイバーを使用したときのように洗浄液を
逆洗する必要がなく洗浄を容易に行うことができ、また
細胞の破砕、膜面の目づまり等を防止することができる
。
11−30〜50μ園濾過能力を有する)をフィルター
形状に、単層、もしくは多層とし、シート状に成形され
たものでミリポアフィルタ−(ミリポア社)、ウルトラ
フィルター、アイオプレート(アミコン社)などが例示
できる。またこれらのフィルターをセットした濾過シス
テムとしてミニタン(ミリポア社)、セルプロセンサー
(アミコン社)、アイオプレートシステム(アミコン社
)などをあげることができる、これを使用することによ
ってホローファイバーを使用したときのように洗浄液を
逆洗する必要がなく洗浄を容易に行うことができ、また
細胞の破砕、膜面の目づまり等を防止することができる
。
また、本発明は、FM3A、リンパ球、ナマルバ細胞、
ハイブリドーマ等の動物細胞の培養に使用され、これら
の生産する生理活性物質等を効率よく採取することがで
きる。
ハイブリドーマ等の動物細胞の培養に使用され、これら
の生産する生理活性物質等を効率よく採取することがで
きる。
以下に本発明の方法を実施例を挙げてさらに具体的に説
明する。
明する。
実施例
第1図に示した培養装置を用い浮遊性細胞FM3Aを培
養した例を示す。
養した例を示す。
FM3Aは小山らにより樹立されたマウス由来の細胞株
で我国では癌研究振興財団リサーチ リソースバンクに
JCRBO701として登録されており、容易に入手可
能である。
で我国では癌研究振興財団リサーチ リソースバンクに
JCRBO701として登録されており、容易に入手可
能である。
撹拌培養槽(BR)(容量11のものを使用)に5%仔
牛血清を含むDMEM (Dulbecco modi
fiedEagie 5edius)500−を入れ、
これにFM3Aを初期細胞密度lXl0’/dとなるよ
うに加え、培養を開始した。5%CO2を含む空気を液
面に通気しなから40rp−で培養槽をゆるやかに撹拌
しながら培養を行った。
牛血清を含むDMEM (Dulbecco modi
fiedEagie 5edius)500−を入れ、
これにFM3Aを初期細胞密度lXl0’/dとなるよ
うに加え、培養を開始した。5%CO2を含む空気を液
面に通気しなから40rp−で培養槽をゆるやかに撹拌
しながら培養を行った。
培養液は700〜800 d/hrの速度で循環させ、
また培養液の濾過システムによる透過回収は60d/h
rの量であった。培養液の減少量をレベルセンサー(L
S)により検知し、ライン(B4)より自動的に5%C
3含有DMEMを供給した。
また培養液の濾過システムによる透過回収は60d/h
rの量であった。培養液の減少量をレベルセンサー(L
S)により検知し、ライン(B4)より自動的に5%C
3含有DMEMを供給した。
培養開始24時間ごとにラインをバルブ(B2)。
(B3)により洗浄ラインに切りかえポンプ(Pl)、
(B3)を停止し、ポンプ(B4)を駆動して無血清D
?lEMを450d使用し、1000d/5in(循環
流速の50〜100倍)の速度で潅流と同方向で濾過シ
ステムを洗浄した。
(B3)を停止し、ポンプ(B4)を駆動して無血清D
?lEMを450d使用し、1000d/5in(循環
流速の50〜100倍)の速度で潅流と同方向で濾過シ
ステムを洗浄した。
本実施例において使用した濾過システムは、ミリボア社
製ミニタン(0,65μmの孔サイズ)を使用した。こ
のような方法を採用して培養を行ったところ、第2図(
−0−○−)に示すように細胞密度は最高3X10’を
超え、32日以上の長期間培養が可能であった。比較例
として、本装置を使用し膜面の洗浄を行なわず新鮮培地
の供給のみを行った場合の培養結果を示した(−ローロ
ー)。
製ミニタン(0,65μmの孔サイズ)を使用した。こ
のような方法を採用して培養を行ったところ、第2図(
−0−○−)に示すように細胞密度は最高3X10’を
超え、32日以上の長期間培養が可能であった。比較例
として、本装置を使用し膜面の洗浄を行なわず新鮮培地
の供給のみを行った場合の培養結果を示した(−ローロ
ー)。
この場合は短期間(10日間)、10’/dの細胞密度
に到達したが細胞は以後ゆるやかに死滅し、15日間し
か維持できなかった。
に到達したが細胞は以後ゆるやかに死滅し、15日間し
か維持できなかった。
また、Tフラスコにより行った回分培養の結果を(−△
−△−)で示した。培地は5%C8を含むDMBMを使
用し5%CO8雰囲気下のインキュベータ中で培養を行
った。細胞密度は2X10’/dにしか達せず、しかも
培養は8日間しか維持できなかった。
−△−)で示した。培地は5%C8を含むDMBMを使
用し5%CO8雰囲気下のインキュベータ中で培養を行
った。細胞密度は2X10’/dにしか達せず、しかも
培養は8日間しか維持できなかった。
このように、本発明方法により長期間高密度に浮遊細胞
を培養できることを確認した。また培養液は、はぼ毎日
1500af回収することができた。
を培養できることを確認した。また培養液は、はぼ毎日
1500af回収することができた。
本発明の実施により浮遊性動物細胞の高密度、潅流培養
が可能となった。本方法によれば培地交換と回収が連続
的にでき、また従来問題となっていた濾過孔のめづまり
や、細胞の破砕もなく良好な状態で細胞培養を行うこと
ができた。
が可能となった。本方法によれば培地交換と回収が連続
的にでき、また従来問題となっていた濾過孔のめづまり
や、細胞の破砕もなく良好な状態で細胞培養を行うこと
ができた。
第1図は、本発明の方法の工程を概略図で示す。
第2図は、本発明の方法による浮遊性細胞FM3Aを長
期間培養した結果を示す。また参考として従来法による
培養結果2例を示す。 図中、−〇−〇〜は本発明方法による培養結果を、−口
〜ローは従来法(循環培養法)による培養結果を、−△
−△−は従来法(回分培養法)による培養結果をそれぞ
れ示す。 細胞密度[cells/ml]
期間培養した結果を示す。また参考として従来法による
培養結果2例を示す。 図中、−〇−〇〜は本発明方法による培養結果を、−口
〜ローは従来法(循環培養法)による培養結果を、−△
−△−は従来法(回分培養法)による培養結果をそれぞ
れ示す。 細胞密度[cells/ml]
Claims (2)
- (1)浮遊性動物細胞の浮遊する培養液の1部をぬきと
り、培養液と動物細胞とを濾過膜によって分離し、動物
細胞を新鮮培地とともに培養槽に戻して連続的に培地交
換を行う長期連続培養方法において、 [1]細胞の分離に0.2μm〜0.8μmの孔を有す
る平板濾過膜を使用し、 [2]該平板濾過膜を培地で間歇的に、培養液の循環方
向と同方向より洗浄する ことを特徴とする、浮遊性動物細胞の長期連続潅流培養
方法。 - (2)浮遊性動物細胞がFM3A細胞である請求項(1
)記載の浮遊性動物細胞の長期連続潅流培養方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2215213A JPH0499483A (ja) | 1990-08-14 | 1990-08-14 | 動物細胞の潅流培養方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2215213A JPH0499483A (ja) | 1990-08-14 | 1990-08-14 | 動物細胞の潅流培養方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0499483A true JPH0499483A (ja) | 1992-03-31 |
Family
ID=16668572
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2215213A Pending JPH0499483A (ja) | 1990-08-14 | 1990-08-14 | 動物細胞の潅流培養方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0499483A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2004357694A (ja) * | 2003-05-15 | 2004-12-24 | Yukie Iwamoto | 組織プラグの製造方法 |
| JP2016131538A (ja) * | 2015-01-20 | 2016-07-25 | 富士フイルム株式会社 | 細胞培養装置および細胞培養方法 |
| WO2018186426A1 (ja) * | 2017-04-07 | 2018-10-11 | オリンパス株式会社 | 培地交換装置および培養システム |
-
1990
- 1990-08-14 JP JP2215213A patent/JPH0499483A/ja active Pending
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2004357694A (ja) * | 2003-05-15 | 2004-12-24 | Yukie Iwamoto | 組織プラグの製造方法 |
| JP2016131538A (ja) * | 2015-01-20 | 2016-07-25 | 富士フイルム株式会社 | 細胞培養装置および細胞培養方法 |
| WO2016117615A1 (ja) * | 2015-01-20 | 2016-07-28 | 富士フイルム株式会社 | 細胞培養装置および細胞培養方法 |
| US10479971B2 (en) | 2015-01-20 | 2019-11-19 | Fujifilm Corporation | Cell culture device and cell culture method |
| WO2018186426A1 (ja) * | 2017-04-07 | 2018-10-11 | オリンパス株式会社 | 培地交換装置および培養システム |
| JPWO2018186426A1 (ja) * | 2017-04-07 | 2019-04-11 | オリンパス株式会社 | 培地交換装置および培養システム |
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