JPH053797A - ピルビン酸測定方法 - Google Patents
ピルビン酸測定方法Info
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Abstract
(57)【要約】
【目的】ピルビン酸の測定において、安定かつ簡便かつ
精度よく安価に測定できる方法を提供する。 【構成】金属イオンとフラビンモノヌクレオチドと無機
リン酸、さらにチアミンピロリン酸を含む緩衝液を連続
的に送液し、その緩衝液に試料を注入し、さらに固定化
したピルビン酸オキシダーゼに導き、生成する過酸化水
素もしくは減少する酸素の量を過酸化水素電極もしくは
酸素電極で、電気化学的に定量することによりピルビン
酸を測定する。
精度よく安価に測定できる方法を提供する。 【構成】金属イオンとフラビンモノヌクレオチドと無機
リン酸、さらにチアミンピロリン酸を含む緩衝液を連続
的に送液し、その緩衝液に試料を注入し、さらに固定化
したピルビン酸オキシダーゼに導き、生成する過酸化水
素もしくは減少する酸素の量を過酸化水素電極もしくは
酸素電極で、電気化学的に定量することによりピルビン
酸を測定する。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、固定化酵素を用いた測
定法に関し、特に血液、培養液、発酵液等に含まれるピ
ルビン酸を酵素法によって、安定で簡便かつ精度よく測
定できる方法に関する。
定法に関し、特に血液、培養液、発酵液等に含まれるピ
ルビン酸を酵素法によって、安定で簡便かつ精度よく測
定できる方法に関する。
【0002】
【従来の技術】ピルビン酸は、生体内の代謝系において
解糖系、クエン酸回路、脂肪酸代謝経路の中間代謝物
で、さまざまな酵素の基質もしくは生成物となる。その
ためピルビン酸濃度を測定することにより、生体液中の
酵素活性の測定を行うことができ、代謝異常や疾患の診
断に利用されている。例えば、心筋、肝臓、骨格筋、腎
臓に含まれるグルタミン酸オキサロ酢酸トランスアミナ
ーゼもしくは肝臓、腎臓に含まれるグルタミン酸ピルビ
ン酸トランスアミナーゼ等の酵素活性を測定することは
肝炎、肝硬変等の肝疾患、心筋硬塞、感染性疾患の診断
に有用である。これらの酵素は、単独、または他の酵素
と組み合せることによりピルビン酸を生成する。
解糖系、クエン酸回路、脂肪酸代謝経路の中間代謝物
で、さまざまな酵素の基質もしくは生成物となる。その
ためピルビン酸濃度を測定することにより、生体液中の
酵素活性の測定を行うことができ、代謝異常や疾患の診
断に利用されている。例えば、心筋、肝臓、骨格筋、腎
臓に含まれるグルタミン酸オキサロ酢酸トランスアミナ
ーゼもしくは肝臓、腎臓に含まれるグルタミン酸ピルビ
ン酸トランスアミナーゼ等の酵素活性を測定することは
肝炎、肝硬変等の肝疾患、心筋硬塞、感染性疾患の診断
に有用である。これらの酵素は、単独、または他の酵素
と組み合せることによりピルビン酸を生成する。
【0003】また発酵工程管理においてもピルビン酸の
測定は不可欠である。例えば日本酒の製造工程管理にお
いてピルビン酸量を測定し、発酵工程の停止時期を調整
することにより、清酒の異臭発生を防げることが知られ
ている。従来、乳酸脱水素酵素を用いピルビン酸の還元
の際にニコチンアミドアデニンジヌクレオチド還元型
(NADH)から生じるニコチンアミドアデニンジヌク
レオチド(NAD)を測定する方法がある。しかしこの
方法では操作が煩雑で高価な補酵素を大量に消費すると
いう欠点がある。また、ピルビン酸を含む試料にピルビ
ン酸オキシダーゼ(Pyruvate oxidase
EC.1.2.3.3.)を作用させ、生成した過酸
化水素の量を発色剤を用いて比色法により定量するとい
う方法があった(特公昭59−15637号)。しかし
この方法では、測定操作が煩雑であること、また試料が
着色している場合には分光光度計を用いた測定は困難で
あること、酵素を使い捨てにするため測定コストがかか
ること、ピルビン酸オキシダーゼ自身が溶液中では不安
定なため測定の再現性が悪いこと、ピルビン酸自体によ
り発色反応が阻害される可能性がある、等の問題があっ
た。
測定は不可欠である。例えば日本酒の製造工程管理にお
いてピルビン酸量を測定し、発酵工程の停止時期を調整
することにより、清酒の異臭発生を防げることが知られ
ている。従来、乳酸脱水素酵素を用いピルビン酸の還元
の際にニコチンアミドアデニンジヌクレオチド還元型
(NADH)から生じるニコチンアミドアデニンジヌク
レオチド(NAD)を測定する方法がある。しかしこの
方法では操作が煩雑で高価な補酵素を大量に消費すると
いう欠点がある。また、ピルビン酸を含む試料にピルビ
ン酸オキシダーゼ(Pyruvate oxidase
EC.1.2.3.3.)を作用させ、生成した過酸
化水素の量を発色剤を用いて比色法により定量するとい
う方法があった(特公昭59−15637号)。しかし
この方法では、測定操作が煩雑であること、また試料が
着色している場合には分光光度計を用いた測定は困難で
あること、酵素を使い捨てにするため測定コストがかか
ること、ピルビン酸オキシダーゼ自身が溶液中では不安
定なため測定の再現性が悪いこと、ピルビン酸自体によ
り発色反応が阻害される可能性がある、等の問題があっ
た。
【0004】そこでこれらの問題点を解決するために、
ピルビン酸オキシダーゼを固定化し、過酸化水素電極ま
たは酸素電極と組み合せて電気化学的に測定する方法が
研究されている(特公平2−48059号)。ピルビン
酸オキシダーゼはピルビン酸、リン酸および酸素からア
セチルリン酸、二酸化炭素および過酸化水素を生成する
反応を触媒する酵素であり、ペディオコッカス、ストレ
プトコッカスおよびアエロコッカス等の微生物の菌体内
に見られる酵素である。この酵素はマグネシウムイオ
ン、カルシウムイオン、マンガンイオンおよびコバルト
イオン等の金属イオンにより活性化され、エチレンジア
ミン四酢酸によりこれらの金属イオンをキレートすると
阻害される性質がある。またこの反応においては、基質
として無機リン酸が必要であり、またコファクターとし
てチアミンピロリン酸(以下TPPと略す)、フラビン
アデニンジヌクレオチド(以下FADと略す)が必要で
あることは知られている(特公昭59−15637
号)。そのためピルビン酸オキシダーゼを固定化し、過
酸化水素電極または酸素電極と組み合せて電気化学的に
測定する方法では、酵素反応を安定に行うために、これ
らの成分を含んだ緩衝液を用いなければならない。
ピルビン酸オキシダーゼを固定化し、過酸化水素電極ま
たは酸素電極と組み合せて電気化学的に測定する方法が
研究されている(特公平2−48059号)。ピルビン
酸オキシダーゼはピルビン酸、リン酸および酸素からア
セチルリン酸、二酸化炭素および過酸化水素を生成する
反応を触媒する酵素であり、ペディオコッカス、ストレ
プトコッカスおよびアエロコッカス等の微生物の菌体内
に見られる酵素である。この酵素はマグネシウムイオ
ン、カルシウムイオン、マンガンイオンおよびコバルト
イオン等の金属イオンにより活性化され、エチレンジア
ミン四酢酸によりこれらの金属イオンをキレートすると
阻害される性質がある。またこの反応においては、基質
として無機リン酸が必要であり、またコファクターとし
てチアミンピロリン酸(以下TPPと略す)、フラビン
アデニンジヌクレオチド(以下FADと略す)が必要で
あることは知られている(特公昭59−15637
号)。そのためピルビン酸オキシダーゼを固定化し、過
酸化水素電極または酸素電極と組み合せて電気化学的に
測定する方法では、酵素反応を安定に行うために、これ
らの成分を含んだ緩衝液を用いなければならない。
【0005】上記の文献では、緩衝液中にこれらの補酵
素を加えている。そして、ピルビン酸オキシダーゼの固
定化法としては、コラーゲン、アセチルセルロース、ポ
リカーボネート等の多孔性の高分子膜に固定化し、この
膜を酸素電極、もしくは過酸化水素電極上に装着してい
る。この方法では、緩衝液中の補酵素は分子量が大きい
ため膜内へ浸透しにくく、酵素と補酵素が接触しにくい
ため酵素反応を安定に行うことが難しい。そのため緩衝
液中の補酵素の濃度を高くする必要があるが、FADは
非常に高価であるため、測定コストが非常に高価になる
という欠点があった。
素を加えている。そして、ピルビン酸オキシダーゼの固
定化法としては、コラーゲン、アセチルセルロース、ポ
リカーボネート等の多孔性の高分子膜に固定化し、この
膜を酸素電極、もしくは過酸化水素電極上に装着してい
る。この方法では、緩衝液中の補酵素は分子量が大きい
ため膜内へ浸透しにくく、酵素と補酵素が接触しにくい
ため酵素反応を安定に行うことが難しい。そのため緩衝
液中の補酵素の濃度を高くする必要があるが、FADは
非常に高価であるため、測定コストが非常に高価になる
という欠点があった。
【0006】また、電極上の固定化酵素膜がリアクター
であるため、固定化できる酵素の量が非常に少なく、検
出に必要な充分な感度を得ることが難しい等の問題があ
った。
であるため、固定化できる酵素の量が非常に少なく、検
出に必要な充分な感度を得ることが難しい等の問題があ
った。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記の問題
を解決し、簡便に安定で精度良く、かつ安価にピルビン
酸を測定する方法を提供することを目的とする。
を解決し、簡便に安定で精度良く、かつ安価にピルビン
酸を測定する方法を提供することを目的とする。
【0008】
【課題を解決するための手段】本発明は、金属イオン、
フラビンモノヌクレオチド(以下FMNと略す)、無機
リン酸、およびTPPを含む緩衝液を連続的に送液し、
その緩衝液に試料を注入して、固定化したピルビン酸オ
キシダーゼに導き、生成する過酸化水素もしくは減少す
る酸素の量を、それぞれ過酸化水素電極もしくは酸素電
極で電気化学的に定量することによるピルビン酸測定方
法である。またこの測定法において緩衝液の金属イオン
はマグネシウムイオン、カルシウムイオン、マンガンイ
オンおよびコバルトイオンより選ばれる少なくとも1種
であることが望ましい。さらに、緩衝液の金属イオンが
マグネシウムイオンで、かつ濃度が0.01〜10mM
であり、無機リン酸の濃度が0.1〜20mMであるこ
とが望ましい。またピルビン酸オキシダーゼは粒状担体
に固定化されていて、その粒状担体がカラム中に充填さ
れており、前記カラムの下流側に過酸化水素電極もしく
は酸素電極が配置されていることが望ましい。
フラビンモノヌクレオチド(以下FMNと略す)、無機
リン酸、およびTPPを含む緩衝液を連続的に送液し、
その緩衝液に試料を注入して、固定化したピルビン酸オ
キシダーゼに導き、生成する過酸化水素もしくは減少す
る酸素の量を、それぞれ過酸化水素電極もしくは酸素電
極で電気化学的に定量することによるピルビン酸測定方
法である。またこの測定法において緩衝液の金属イオン
はマグネシウムイオン、カルシウムイオン、マンガンイ
オンおよびコバルトイオンより選ばれる少なくとも1種
であることが望ましい。さらに、緩衝液の金属イオンが
マグネシウムイオンで、かつ濃度が0.01〜10mM
であり、無機リン酸の濃度が0.1〜20mMであるこ
とが望ましい。またピルビン酸オキシダーゼは粒状担体
に固定化されていて、その粒状担体がカラム中に充填さ
れており、前記カラムの下流側に過酸化水素電極もしく
は酸素電極が配置されていることが望ましい。
【0009】
【作用】ピルビン酸オキシダーゼを作用させる際、補酵
素FADと、TPPが必要である。ところが本発明者ら
は、緩衝液の組成について検討した結果、FADにかわ
るコファクターとしてFMNが有効であることを見いだ
した。本発明ではFMNを補酵素として用いるが、FM
Nは分子量が456であり、FADの分子量が786で
あるのに比べて小さく、結果的に拡散性に優れており安
定した測定を行えるという点でFMNはFADに比べて
優れている。
素FADと、TPPが必要である。ところが本発明者ら
は、緩衝液の組成について検討した結果、FADにかわ
るコファクターとしてFMNが有効であることを見いだ
した。本発明ではFMNを補酵素として用いるが、FM
Nは分子量が456であり、FADの分子量が786で
あるのに比べて小さく、結果的に拡散性に優れており安
定した測定を行えるという点でFMNはFADに比べて
優れている。
【0010】また、FADは非常に高価なため、緩衝液
に高濃度加えて使い捨てにしていたのでは、コストが高
くて実用には向かない。コスト面においてもFMNはF
ADに比べて非常に安価であることから実用に向いてい
る。また、緩衝液としてはリン酸緩衝液、クエン酸リン
酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液等が使用される。また本発
明者等は緩衝液中のリン酸濃度が高すぎても、マグネシ
ウム等の金属イオン濃度が高すぎても、可逆的阻害を受
けピルビン酸オキシダーゼが失活することを見いだし
た。緩衝液中での望ましい濃度はリン酸では0.1〜2
0mM程度、金属イオンはマグネシウムの場合、0.0
1〜50mM程度である。補酵素のFMNおよびTPP
の濃度については特に限定するものではないが、例えば
FMNでは0.1〜50μM程度、TPPでは0.05
〜1mM程度加えられていれば充分である。またpHは
用いるピルビン酸オキシダーゼの最適pH付近で用いる
ことが望ましい。
に高濃度加えて使い捨てにしていたのでは、コストが高
くて実用には向かない。コスト面においてもFMNはF
ADに比べて非常に安価であることから実用に向いてい
る。また、緩衝液としてはリン酸緩衝液、クエン酸リン
酸緩衝液、トリス塩酸緩衝液等が使用される。また本発
明者等は緩衝液中のリン酸濃度が高すぎても、マグネシ
ウム等の金属イオン濃度が高すぎても、可逆的阻害を受
けピルビン酸オキシダーゼが失活することを見いだし
た。緩衝液中での望ましい濃度はリン酸では0.1〜2
0mM程度、金属イオンはマグネシウムの場合、0.0
1〜50mM程度である。補酵素のFMNおよびTPP
の濃度については特に限定するものではないが、例えば
FMNでは0.1〜50μM程度、TPPでは0.05
〜1mM程度加えられていれば充分である。またpHは
用いるピルビン酸オキシダーゼの最適pH付近で用いる
ことが望ましい。
【0011】ピルビン酸オキシダーゼの固定化法は主に
2通り考えられる。第1の方法は、過酸化水素電極もし
くは酸素電極の表面にピルビン酸オキシダーゼを固定化
する方法で、例えば多孔性の高分子膜上にピルビン酸オ
キシダーゼを固定化して前記の電極上に固定する方法で
ある。第2の方法は、過酸化水素電極もしくは酸素電極
とは別にピルビン酸オキシダーゼ固定化リアクターを設
けて反応させる方法で、さまざまな固定化法を用いるこ
とができる。第1の方法では電極上にのみ固定化される
のに対して、第2の方法では担体に粒状物質を用いた場
合はその担体量や粒度を変化させることにより固定化す
るピルビン酸オキシダーゼの量を調節することができ、
さまざまな活性のものが得られる利点がある。特に第2
の方法ではピルビン酸オキシダーゼのように酵素活性が
低い場合でも、実用に適する酵素活性にまで活性を高め
ることができ、また、補酵素との接触のしやすさの点か
らも適している。
2通り考えられる。第1の方法は、過酸化水素電極もし
くは酸素電極の表面にピルビン酸オキシダーゼを固定化
する方法で、例えば多孔性の高分子膜上にピルビン酸オ
キシダーゼを固定化して前記の電極上に固定する方法で
ある。第2の方法は、過酸化水素電極もしくは酸素電極
とは別にピルビン酸オキシダーゼ固定化リアクターを設
けて反応させる方法で、さまざまな固定化法を用いるこ
とができる。第1の方法では電極上にのみ固定化される
のに対して、第2の方法では担体に粒状物質を用いた場
合はその担体量や粒度を変化させることにより固定化す
るピルビン酸オキシダーゼの量を調節することができ、
さまざまな活性のものが得られる利点がある。特に第2
の方法ではピルビン酸オキシダーゼのように酵素活性が
低い場合でも、実用に適する酵素活性にまで活性を高め
ることができ、また、補酵素との接触のしやすさの点か
らも適している。
【0012】この粒状固定化担体には、ケイソウ土、シ
リカゲル、ガラスビーズ、アルミナ、セラミック、カー
ボン、活性炭、モレキュラーシーブ、シリコンゴム、セ
ルロース、アガロース、アミノ酸系ポリマー等が例示で
き、固定化法には共有結合法、吸着法等が考えられる。
生成した過酸化水素を測定する過酸化水素電極は、アノ
ード側では、 H2 O2 →O2 +2H+ +2e- カソード側では、 2AgCl+2e- →2Ag+2Cl- の反応が起こり電流が生じる。電極の基体としては、ア
ノード側では炭素、白金、ニッケル、パラジウム等を用
いることができる。過電圧が低く高感度が得られる、電
位窓が広いという理由から白金を用いることが望まし
い。そして電極表面にポリシロキサン、アクリル樹脂、
蛋白膜、アセチルセルロース膜等の選択透過膜を有して
もよい。カソード側では一般に銀または銀/塩化銀電極
を用いる。
リカゲル、ガラスビーズ、アルミナ、セラミック、カー
ボン、活性炭、モレキュラーシーブ、シリコンゴム、セ
ルロース、アガロース、アミノ酸系ポリマー等が例示で
き、固定化法には共有結合法、吸着法等が考えられる。
生成した過酸化水素を測定する過酸化水素電極は、アノ
ード側では、 H2 O2 →O2 +2H+ +2e- カソード側では、 2AgCl+2e- →2Ag+2Cl- の反応が起こり電流が生じる。電極の基体としては、ア
ノード側では炭素、白金、ニッケル、パラジウム等を用
いることができる。過電圧が低く高感度が得られる、電
位窓が広いという理由から白金を用いることが望まし
い。そして電極表面にポリシロキサン、アクリル樹脂、
蛋白膜、アセチルセルロース膜等の選択透過膜を有して
もよい。カソード側では一般に銀または銀/塩化銀電極
を用いる。
【0013】減少した酸素を測定する酸素電極は、カソ
ード側では O2 +4e- +2H2 O→4OH- アノード側では、 4Ag+4Cl- →4AgCl+4e- の反応が起こり電流が生じる。電極の基体としては、ア
ノード側では炭素、金、白金、鉛等を用いることがで
き、内部液として塩化カリウム等の電解質を有する。そ
して電極表面にテフロン、ポリエチレン、ポリプロピレ
ン等の選択透過膜を有してもよい。カソード側では一般
に銀または銀/塩化銀電極を用いる。
ード側では O2 +4e- +2H2 O→4OH- アノード側では、 4Ag+4Cl- →4AgCl+4e- の反応が起こり電流が生じる。電極の基体としては、ア
ノード側では炭素、金、白金、鉛等を用いることがで
き、内部液として塩化カリウム等の電解質を有する。そ
して電極表面にテフロン、ポリエチレン、ポリプロピレ
ン等の選択透過膜を有してもよい。カソード側では一般
に銀または銀/塩化銀電極を用いる。
【0014】これらは2電極の過酸化水素電極、酸素電
極についてであるが、安定性、精度の点から3電極のも
のがより望ましい。尚、本発明でピルビン酸測定とは、
ピルビン酸およびその塩の測定を意味する。
極についてであるが、安定性、精度の点から3電極のも
のがより望ましい。尚、本発明でピルビン酸測定とは、
ピルビン酸およびその塩の測定を意味する。
【0015】
【実施例】以下に実施例を挙げて、本発明の内容をさら
に詳細に説明するが、もちろん本発明はこれらに限定さ
れるものではない。
に詳細に説明するが、もちろん本発明はこれらに限定さ
れるものではない。
【0016】実施例1
「ピルビン酸オキシダーゼ固定化カラムの製造方法」
耐火レンガ(30〜60メッシュ)150mgをよく乾
燥し、10%γ−アミノプロピルトリエトキシシランの
無水トルエン溶液に1時間浸漬した後、よくトルエンで
洗浄し、乾燥する。こうしてアミノシラン化処理した担
体を5%グルタルアルデヒドに1時間浸漬した後、よく
蒸留水で洗浄し、最後にpH7.0、10mMのリン酸
ナトリウム緩衝液で置き換え、この緩衝液をできるだけ
除いておく。このホルミル化した耐火レンガに10μM
FADを含むpH7.0H、10mMリン酸ナトリウム
緩衝液にペディオコッカス属のピルビン酸オキシダーゼ
100ユニット/mlの濃度で溶解した溶液200μl
を接触させ、0〜4°Cで1日放置し固定化する。この
酵素固定化担体を内径3.5mm、長さ30mmのカラ
ムに充填しピルビン酸オキシダーゼ固定化カラムとす
る。
燥し、10%γ−アミノプロピルトリエトキシシランの
無水トルエン溶液に1時間浸漬した後、よくトルエンで
洗浄し、乾燥する。こうしてアミノシラン化処理した担
体を5%グルタルアルデヒドに1時間浸漬した後、よく
蒸留水で洗浄し、最後にpH7.0、10mMのリン酸
ナトリウム緩衝液で置き換え、この緩衝液をできるだけ
除いておく。このホルミル化した耐火レンガに10μM
FADを含むpH7.0H、10mMリン酸ナトリウム
緩衝液にペディオコッカス属のピルビン酸オキシダーゼ
100ユニット/mlの濃度で溶解した溶液200μl
を接触させ、0〜4°Cで1日放置し固定化する。この
酵素固定化担体を内径3.5mm、長さ30mmのカラ
ムに充填しピルビン酸オキシダーゼ固定化カラムとす
る。
【0017】「過酸化水素電極の製造方法」
直径2mmの白金線の側面を熱収縮テフロンで被覆し、
その線の一端をやすりおよび1500番のエメリー紙で
平滑に仕上げる。この白金線を作用極、1cm角型白金
板を対極、飽和カロメル電極を参照極として、0.1M
硫酸中、+2.0Vで10分間の電解処理を行う。その
後白金線をよく水洗した後、40℃で10分間乾燥し、
10%γ−アミノプロピルトリエトキシシランの無水ト
ルエン溶液に1時間浸漬後、洗浄する。牛血清アルブミ
ン(シグマ社製、FractionV)20mgを蒸留
水1mlに溶解し、その中にグルタルアルデヒドを0.
2%になるように加える。この混合液を手早く先に用意
した白金線上に5μlのせ、40℃で15分間乾燥硬化
する。これを過酸化水素電極とする。また参照電極とし
てはAg/AgCl参照電極を用い、対極には導電性の
配管を用いた。
その線の一端をやすりおよび1500番のエメリー紙で
平滑に仕上げる。この白金線を作用極、1cm角型白金
板を対極、飽和カロメル電極を参照極として、0.1M
硫酸中、+2.0Vで10分間の電解処理を行う。その
後白金線をよく水洗した後、40℃で10分間乾燥し、
10%γ−アミノプロピルトリエトキシシランの無水ト
ルエン溶液に1時間浸漬後、洗浄する。牛血清アルブミ
ン(シグマ社製、FractionV)20mgを蒸留
水1mlに溶解し、その中にグルタルアルデヒドを0.
2%になるように加える。この混合液を手早く先に用意
した白金線上に5μlのせ、40℃で15分間乾燥硬化
する。これを過酸化水素電極とする。また参照電極とし
てはAg/AgCl参照電極を用い、対極には導電性の
配管を用いた。
【0018】「ピルビン酸測定装置」
本発明に従う測定には、図1に示されるフロー型測定装
置を使用した。まず緩衝液槽(1)より緩衝液が送液ポ
ンプ(2)により連続的に送液されサンプラ(3)より
注入されたピルビン酸を含む試料は、恒温槽(6)に送
られる。恒温槽内のピルビン酸オキシダーゼ固定化カラ
ム(4)中に詰められた粒状担体に固定化されたピルビ
ン酸オキシダーゼにより試料中のピルビン酸より酸素が
消費され過酸化水素が生成する。この増減を過酸化水素
電極を有する測定部(5)で感知し電流値の変化が、検
出器(7)によって検知され、信号がシングルボードコ
ンピュータ(8)に送られピルビン酸濃度に換算され
る。なお、図1の(9)はRS232Cコードを、(1
0)はパーソナルコンピュータ、(11)はサンプラ制
御信号、(12)はポンプ制御信号、(13)は廃液を
示している。
置を使用した。まず緩衝液槽(1)より緩衝液が送液ポ
ンプ(2)により連続的に送液されサンプラ(3)より
注入されたピルビン酸を含む試料は、恒温槽(6)に送
られる。恒温槽内のピルビン酸オキシダーゼ固定化カラ
ム(4)中に詰められた粒状担体に固定化されたピルビ
ン酸オキシダーゼにより試料中のピルビン酸より酸素が
消費され過酸化水素が生成する。この増減を過酸化水素
電極を有する測定部(5)で感知し電流値の変化が、検
出器(7)によって検知され、信号がシングルボードコ
ンピュータ(8)に送られピルビン酸濃度に換算され
る。なお、図1の(9)はRS232Cコードを、(1
0)はパーソナルコンピュータ、(11)はサンプラ制
御信号、(12)はポンプ制御信号、(13)は廃液を
示している。
【0019】「測定方法」
上記のピルビン酸測定装置を用いて、5μlの試料を注
入し、カラムの温度を25℃として反応させた。緩衝液
は、リン酸10mM、TPP0.2mM、塩化マグネシ
ウム10mMおよびFMN10μMを含むpHが7.0
の緩衝液を用いた。試料としてはピルビン酸標準液(1
0mMのピルビン酸リチウム)を用い、20回測定して
安定性について実験した。
入し、カラムの温度を25℃として反応させた。緩衝液
は、リン酸10mM、TPP0.2mM、塩化マグネシ
ウム10mMおよびFMN10μMを含むpHが7.0
の緩衝液を用いた。試料としてはピルビン酸標準液(1
0mMのピルビン酸リチウム)を用い、20回測定して
安定性について実験した。
【0020】第1回目測定の電流密度を100とし測定
値よりピルビン酸オキシダーゼの相対活性を求めた。2
0回の測定において相対活性はほぼ100%であり、安
定に測定を行うことができた。結果を表1に示す。
値よりピルビン酸オキシダーゼの相対活性を求めた。2
0回の測定において相対活性はほぼ100%であり、安
定に測定を行うことができた。結果を表1に示す。
【0021】比較例1
実施例1と同様のピルビン酸測定装置を用いて、5μl
の試料を注入し、同様に25℃で反応させた。緩衝液と
してはFMNを含まず、リン酸10mM、TPP0.2
mM、塩化マグネシウム10mMを含みpHが7.0の
緩衝液を送液し、ピルビン酸標準液の測定を行い、20
回測定の安定性について実験した。
の試料を注入し、同様に25℃で反応させた。緩衝液と
してはFMNを含まず、リン酸10mM、TPP0.2
mM、塩化マグネシウム10mMを含みpHが7.0の
緩衝液を送液し、ピルビン酸標準液の測定を行い、20
回測定の安定性について実験した。
【0022】第1回目測定の電流密度を100とし測定
値よりピルビン酸オキシダーゼの相対活性を求めた。2
0回の測定で相対活性が70%程度に低下しFMNを加
えない緩衝液中での測定では、固定化ピルビン酸オキシ
ダーゼの活性が不安定であるため正確に行うことができ
ないことが確認された。
値よりピルビン酸オキシダーゼの相対活性を求めた。2
0回の測定で相対活性が70%程度に低下しFMNを加
えない緩衝液中での測定では、固定化ピルビン酸オキシ
ダーゼの活性が不安定であるため正確に行うことができ
ないことが確認された。
【0023】
【表1】
【0024】実施例2
実施例1のピルビン酸オキシダーゼ固定化カラムの製造
方法と同様に固定化したピルビン酸オキシダーゼ固定化
担体を、実施例1と同様の緩衝液に接触させ0〜4℃で
3日間保存した。この固定化ピルビン酸オキシダーゼ担
体をカラムに充填し、実施例1と同様のピルビン酸測定
装置に配置し、ピルビン酸標準液の測定を行い、初期活
性と3日後の活性について調べた。
方法と同様に固定化したピルビン酸オキシダーゼ固定化
担体を、実施例1と同様の緩衝液に接触させ0〜4℃で
3日間保存した。この固定化ピルビン酸オキシダーゼ担
体をカラムに充填し、実施例1と同様のピルビン酸測定
装置に配置し、ピルビン酸標準液の測定を行い、初期活
性と3日後の活性について調べた。
【0025】初期活性を100とすると3日後の活性は
98でありこの固定化ピルビン酸オキシダーゼは、FM
Nを含む緩衝液中で安定に保存できることが確認でき
た。表2に結果を示す。
98でありこの固定化ピルビン酸オキシダーゼは、FM
Nを含む緩衝液中で安定に保存できることが確認でき
た。表2に結果を示す。
【0026】比較例2
実施例1のピルビン酸オキシダーゼ固定化カラムの製造
方法と同様に固定化したピルビン酸オキシダーゼ固定化
担体を、比較例1と同様の緩衝液に接触させ0〜4℃で
3日間保存した。この固定化ピルビン酸オキシダーゼ担
体をカラムに充填し、実施例1と同様のピルビン酸測定
装置に配置し、ピルビン酸標準液の測定を行い、初期活
性と3日後の活性について調べた。
方法と同様に固定化したピルビン酸オキシダーゼ固定化
担体を、比較例1と同様の緩衝液に接触させ0〜4℃で
3日間保存した。この固定化ピルビン酸オキシダーゼ担
体をカラムに充填し、実施例1と同様のピルビン酸測定
装置に配置し、ピルビン酸標準液の測定を行い、初期活
性と3日後の活性について調べた。
【0027】初期活性を100とすると3日後の活性は
20でありこの固定化ピルビン酸オキシダーゼは、FM
Nを含まない緩衝液中では不安定であることが確認でき
た。
20でありこの固定化ピルビン酸オキシダーゼは、FM
Nを含まない緩衝液中では不安定であることが確認でき
た。
【0028】
【表2】
【0029】
【発明の効果】本発明によりピルビン酸濃度の測定が安
定かつ簡便かつ精度よく安価に行うことが可能となっ
た。
定かつ簡便かつ精度よく安価に行うことが可能となっ
た。
【図1】図1は実施例1において用いた本発明のピルビ
ン酸測定方法で用いる装置の一例である。
ン酸測定方法で用いる装置の一例である。
1・・・緩衝液槽
2・・・送液ポンプ
3・・・サンプラ
4・・・ピルビン酸オキシダーゼ固定化カラム
5・・・過酸化水素電極を有する測定部
6・・・恒温槽
7・・・検出器
8・・・シングルボードコンピュータ
9・・・RS232Cコード
10・・・パーソナルコンピュータ
11・・・サンプラ制御信号
12・・・ポンプ制御信号
13・・・廃液
Claims (4)
- 【請求項1】 金属イオン、フラビンモノヌクレオチ
ド、無機リン酸、およびチアミンピロリン酸を含む緩衝
液を連続的に送液し、その緩衝液に試料を注入して、固
定化したピルビン酸オキシダーゼに導き、生成する過酸
化水素もしくは減少する酸素の量を、過酸化水素電極も
しくは酸素電極で電気化学的に定量することによるピル
ビン酸測定方法。 - 【請求項2】 緩衝液の金属イオンがマグネシウムイオ
ン、カルシウムイオン、マンガンイオンおよびコバルト
イオンより選ばれる少なくとも1種である請求項1記載
のピルビン酸測定方法。 - 【請求項3】 緩衝液の金属イオンがマグネシウムイオ
ンで、かつ濃度が0.01〜50mMであり、無機リン
酸の濃度が0.1〜20mMである請求項2記載のピル
ビン酸測定方法。 - 【請求項4】 ピルビン酸オキシダーゼが粒状担体に固
定化されていて、その粒状担体がカラム中に充填されて
おり、前記カラムの下流側に過酸化水素電極もしくは酸
素電極が配置されている請求項1記載のピルビン酸測定
方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15681291A JPH053797A (ja) | 1991-06-27 | 1991-06-27 | ピルビン酸測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP15681291A JPH053797A (ja) | 1991-06-27 | 1991-06-27 | ピルビン酸測定方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH053797A true JPH053797A (ja) | 1993-01-14 |
Family
ID=15635871
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP15681291A Pending JPH053797A (ja) | 1991-06-27 | 1991-06-27 | ピルビン酸測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH053797A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5423971B1 (ja) * | 1970-07-27 | 1979-08-17 |
-
1991
- 1991-06-27 JP JP15681291A patent/JPH053797A/ja active Pending
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5423971B1 (ja) * | 1970-07-27 | 1979-08-17 |
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