JPH0542408B2 - - Google Patents
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- JPH0542408B2 JPH0542408B2 JP59185460A JP18546084A JPH0542408B2 JP H0542408 B2 JPH0542408 B2 JP H0542408B2 JP 59185460 A JP59185460 A JP 59185460A JP 18546084 A JP18546084 A JP 18546084A JP H0542408 B2 JPH0542408 B2 JP H0542408B2
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- cirsii
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- plants
- conidia
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P1/00—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
- C12P1/02—Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using fungi
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
- A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
- A01N63/30—Microbial fungi; Substances produced thereby or obtained therefrom
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungi isolates
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
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- Cultivation Of Plants (AREA)
Description
(1) 産業上の利用分野
本発明は真菌フオモプスイスシルシー
（Phomopsis cirsii）又はセプトリアシルシー
（Septoria cirsii）の培養によつて得られる疾患
原因物質の有効量、および所望により他の有効物
質並びに農耕学的に適合し得る希釈剤又は担体を
含んでなる、除草剤組成物並びに、キク科
（Compositae）に帰属する植物に対する除草剤組
成物の使用に関する。 好ましくは、フオモプスイスシルシー
（Phomopsis cirsii）が用いられる。 (2) 従来技術 真菌は栄養源物質上で増殖し、しかる後得られ
た新鮮なもしくは保存された疾患原因物質を、圃
場中の雑草に適当量散布する。 他のタイプの雑草に対し同様に用いられる、他
の人工的に増殖した種類の真菌は、公知であり、
（Weed Science 21巻（1973年）、303頁以降、
Ann.Rev.Phytopatol、17巻（1979年）、301頁以
降、およびPlant Pirease58巻（1974年）、335頁
以降、参照）更にこれらのいわゆる微生物除草剤
は商標DevineTMおよびCollegoTM
（Phytopathology、73巻（1983年）、774頁）の名
のもとに市販されている。 キク科に属する雑草は、現在化学的除草剤によ
り除草されている。これらは、しばしば雑草に対
して効果がない。この事実は、噴霧時において好
ましくない気候的条件に起因するか、又は長期に
わたる公知の除草剤の使用のため除草剤の耐性タ
イプの雑草の出現に起因する。これらの理由およ
び特に環境的理由により、微生物除草剤を使用す
ることが好ましい。 真菌フオモプスイスシルシーグルーブ
（Phomopsis cirsii Grove）は、British Stem−
and Leaf−fangi（Coelomy cetes）１巻（1935
年）、177頁にGroveによつて最初に発表され、さ
らに真菌セプトリアシルシーニーズル（Septoria
cirsii Nissl）はSylloge Fungorum3巻（1884
年）、550頁にSaccaadoによつて記載されている。 1983年、フオモプスイスシルシー（Phomopsis
cirsii）菌株は、コモンウエルスマイコロジカル
インステイテユート カルチユアーコレツクシ
ヨン（CMI）（フエリーレーン、キユー市、英
国）に葉標本第278416号のもとに寄託された。
1983年、セプトリアシルシー（Septoria cirsii）
菌株は、第280201号としてCMIに寄託された。
1984年７月17日、４種のセプトリアシルシー（菌
株は第287566号〜第287569号としてCMIに寄託
され次いで1984年７月27日に更に２種のセプトリ
アシルシーの菌株が第287750号および第287751号
としてCMIに寄託された。 (3) 発明の構成 フオモプスイスシルシー（Phomopsis cirsii）
およびセプトリアシルシー（Septoria cirsii）の
植物に対する病源的作用は、これまで知られてい
なかつた。驚くべきことに、フオモプスイスシル
シーは、疾患増進をして収縮し更に枯死するであ
ろう寄生植物の葉脈および茎を攻撃することが見
出された。このような病徴は植物内の毒素の形成
にまで追跡できる。真菌又は、植物と真菌との相
互作用に由来する特定の植物要素物質の分泌もま
た、真菌による侵入の病徴を示さない植物の感染
部位が黄変し次いで正常よりも早く枯死する点化
からも認められる。このことは、加えて、植物毒
素生産物が宿主植物に対し除草作用を有すること
を意味する。 植物は、例えばミセリウム（mycelium）、ス
クレロチア（sclerotia）、ピクニジア
（pycnidia）、コニデイア（conidia）のフラグメ
ントおよびこれらからの植物毒素生産物の如き、
フオモプスイスシルシー（Phomopsis cirsii）の
培養によつて得られる疾患原因物質を噴霧するこ
とにより除草され得る。 植物はピクニデイア（pycnidia）、コニデイア
（conidia）およびこれらからの植物毒素生産物の
如きセプトリアシルシー（Septoria sirsii）の培
養によつて得られる疾患原因物質を噴霧すること
により除草され得る。 これらの各々の真菌構造は、疾患原因物質とし
て単独で又は共同して用いることができる。疾患
原因物質は又、異つた菌株の真菌からも得ること
ができる。 本発明の除草剤組成物において、フオモプスイ
スシルシー（Phomopsis cirsii）又はセプトリア
シルシー（Septoria cirsii）のいずれかを培養し
て得られる疾患原因物質は別々に使用できるが、
もし両真菌から得られる疾患原因物質を使用する
場合、広範囲の宿主植物およびより高度の生態学
的豊富さを得る。これらを全て考慮すると、これ
は最上に適した除草作用を有するであろう。 植物生長抑制剤又は除草剤として使用できるフ
オモプスイスシルシー又はセプトリアシルシーの
培養により疾患原因物質を製造することができる
ことは、従来知られていなかつた。更に、別の植
物に対する、本発明で説明される疾患原因物質の
特異性は驚くべきである。 フオモプスイスシルシー由来の未熟粉胞子器
は、無毛で、レンズ豆状でかつ表皮におおわれて
いる。後には、湿潤状態で、粉胞子器は長い突出
した頚部を生産し、これは表皮を貫通する。成熟
粉胞子器は、洋梨形で、一室であり基部で幅広
く、平らでかつ薄壁を有する。腔は最も単純であ
るが時として（乾燥物質においては優先的に）内
壁からの侵入により分割されている。 圃場および培養においてフオモプスイスシルシ
ー由来の粉胞子器の形態においていくつかの不一
致があるが、圃場で生産されるタイプの分生子の
更新および分生子の特徴は、培養中の真菌の特徴
と同一である。 セルシウムアルベンス（Cirsium arvense）の
感染植物から単離した菌糸体から培養された、フ
オモプスイスシルシーのコロニーは、２％じやが
いもデキストロース寒天（以下、PDAという）
上で急速に増殖し20℃で３日後直径約９cmに達す
る。基質１当たりノボビオチン（Novobiocin）
１ｇをPDAに添加すると、増殖は急速に抑制さ
れ更に直径約２cmで停止し、脱色媒質のレモン黄
色帯（ハロ）を残す。 一般に（２％PDA上で）、PDA上のコロニー
は培養物のエイジング中色彩のある種の変化をみ
せる。初期には、該コロニーはやや白く、コロニ
ーの周囲から中心に向けて２cmまで伸びる地帯又
は部分内で帯緑黄色の菌糸をしばしば過渡的に有
する。後期には、コロニーは灰褐色となる。表面
は羊毛のようである。多くの気生菌糸の初期のヘ
リ部は、エイジングと共にぴつたりと押しつけら
れる。古い培養物は、直径約３〜５mmの濃い白色
菌糸の浮き出した円形の小さい束である。 反対に最初は無色又は灰かつ色で、過渡的に褐
色部分を伴う。最後には、淡褐色、くり色かつ色
又は黒色である。 菌糸片から産生する培養物中、粉胞子器は室温
で約35〜40日後PDA中で埋められて成長する。 初期の段階では、粉胞子器は群居せず、比較的
小さく、薄壁を有しかつ暗褐ないし黒色である。
エイジングに伴つて、より長くかつより濃壁の粉
胞子器は、一団（群）で又は１個のオスチオール
のみをしばしば共有する相互連結した壁を有する
複合体のいずれかで成長する。 湿潤条件のもと、優勢的にきわ立つて伸長し
た、頂端オスチオールを有する単純もしくは分枝
頸が形成されそこから分子胞子が不透明の小球に
押し出される。PDAプレート上では、これらの
分生胞子から由来したコロニー（小球）は菌糸体
からのコロニーに似ていた。分生胞子を用いる
と、粉胞子器形成が約14〜20日後に発生した。 最良のフオモプスイス種として、フオモプスイ
スシルシーは分生胞子の三種のタイプを生産でき
る。圃場並びに培養において、分生胞子（分生
子）のタイプは粉胞子器エイジ（Ａ−分生胞子、
Ｂ−分生胞子およびＣ−分生胞子を示す第１図参
照）の結果として変化する。Ｂ−分生胞子は典型
的に最初に生産される分生胞子である。後には、
同じ粉胞子器にはＡ−分生胞子が形成され更に
徐々にその量が増す。Ａ−分生子が生じた場合、
Ａ−およびＢ−分生子間の中間体であるＣ−分生
子は小数見出され得る。分生子の大きさは、真菌
が培養される基質に依存するようである。分生子
の次の記載は、PDA、V8寒天およびオートミル
寒天上の培養物並びに植物から採取した分生子に
ついて行つた観察および測定に基づく。 Ａ−分生子はガラス様で、単細胞で、ギユトウ
レート（guttulate）であり更に楕円形であり、
しばしば中間部でわずかにくびれており、大きさ
は約７〜10×２〜3μｍである。Ｂ−分生子はガ
ラス様で、通常一方の端部で曲つているか屈曲し
ており；大きさ約18〜35×0.5〜1μｍである。Ｃ
−分生子は、ガラス様で、丸味又は鋭敏な端部を
持つてわずかにカーブし、時として楕円形であ
り、長さはＡ−分生子に似ているか、大部分マル
チグトウレートであり；大きさは約14〜30×2.5
〜3μｍである。 室温でPDA上で、粉胞子器の形成におけるウ
イリーングにおいて、成長特性において、および
Ａ−およびＢ−分生子が生産される遷移において
偏差がフオモプスイスシルシーの異つた菌株間で
見出された。 15菌株のフオモプスイスシルシーの内２種は、
顆粒の、ぴつたりくつついた、白色の菌糸体を生
産しこれは非常に少数の群居しない粉胞子器を有
する。 典型的にコロニー特性を示すけれども、他の菌
株はＢ−分生子の前にＡ−分生子を生産する。 数種のフオモプスイスは、アスコマイコチナ
（Ascomycotina）におけるパイレノマイセーテ
（Pyrenomycetes）の綱における属デイアポルテ
（Diaporthe）Nits.の分生子のステージである。
子嚢果又は他の性構造は、子嚢果が室温で、40℃
で又は実験室内又は自然の交互の条件で１年間保
存される時でさえも、フオモプスイスシルシーの
培養に関し見出されなかつた。 セプトリアシルシー由来の粉胞子器はシングル
でありかつ埋没しており、形状は直径40〜100μ
ｍの球形又は扁平の球形であり、乳頭突起又は頚
部がない。分生子生産層は腔の全内表面をライニ
ングしている。粉胞子器壁は基質状であり、強く
色づいた数種の層および比較するに厚い壁細胞か
らなる。 分生子（約20〜80×２〜3μｍ）は、円柱状で、
幾分屈曲性があり更に６〜12個の隔膜を通常有す
る。一方端は丸くなつており、他方端は狭く更に
急峻である。時として、分生子は隔膜の形跡がな
いか、あるいはわずが５個あるいはそれ以下の隔
膜があり全て同じ粉胞子器内にある（PDA上で
培養して得たセプトリアシルシーの分生子を示す
第２図参照）。 セプトリアシルシーは、液体および固体PDA
上では良く増殖するが、クザペツクドツクスブロ
ス（デイフ研究所、デトロイト、USA）上では
増殖しない。PDAプレートでは、菌糸体由来の
コロニーは、非常にゆつくり増殖し、白色の平骨
なへりを有し時として銀色の浮き出した頭毛様の
コロニーはNUV光により又はNUV光なしで室
温で１カ月インキユベーシヨン後直径約４cmに達
する。このコロニータイプにおいては、極くわず
か少数のあるいは全く粉胞子器は生産しない。分
生子から由来するコロニーは、微少の菌糸体と共
に媒質中に直ちに埋没した粉胞子器を生産する。
室温で約７日間インキユベーシヨンした後、熟成
粉胞子器はオスチオールから、透明又は非常にま
れにはローズピンク色の小球で押出された分生子
に形成される。 粉胞子器および分生子の形状並びにそれらの培
養中の大きさは、シルシウムアルベンス
（Cirsium arvense）に関しての真菌の特徴と一
致する。 オーデマンスにより（Enumeratio
Systematica Fungorum ４巻（1923年）、1073頁
以降）、セプトリアシルシはCirsium sp.、
Cirsium arvense（L.）Scop.、Carthamus
lanatus L.（Kentrophyllum lanatum D.C.）お
よびSerratula glauca Ledebについてすでに見
出された。 Ohio Agricultural Experimental station1927
からBulletin414における43頁によれば、セプト
リアシルシーはシルシウムアルベンス（Cirsium
arvense）を著るしく損うことなく、従つて除草
剤組成物に対する真菌の有用性は驚くべきもので
ある。 フオモプスイスシルシーおよびセプトリアシル
シーは表面培養および液内培養により培養でき
る。 表面培養は、同化窒素および炭素源並びに必須
の栄養源を含む液体培地で行なわれる。 液内培養は、同化窒素、炭素源および必須の栄
養源を含む発酵培地中嫌気的条件下で行なわれ、
しかる後、疾患原因物質を単離する。更にPH値、
温度、嫌気および撹拌の如き条件は当業者により
容易に選択できる。 本発明で述べる疾患原因物質は、出芽前施用と
して直後土壌に又は出芽後施用として直接植物の
茎葉に適用することにより、あるいは又該土壌を
密に混合することにより、処理すべき地域に適用
できる。好ましい処理は、植物茎葉の出芽前であ
り更に本発明で説明される疾患原因物質は例え
ば、１ヘクタール当り約100ｇ〜100Kgの量で土壌
又は植物茎葉に適用できる。 有効成分として本発明で説明される疾患原因物
質を有する除草剤組成物は、該物質を農業上通常
用いられる組成物例えば、水和剤、乳剤、粒剤、
水可溶粉末剤、アルギン酸塩剤、キサンタンゴム
剤およびエーロゾル剤を得るため、適当な不活性
担体と混合して製剤化される。固体担体として、
ベントナイト、珪藻土、アパタイト、石こう、タ
ルク、ピロフイライト、ヴエルミキユライトおよ
び粘土が用いられる。均質でかつ安定な製造を得
るため、界面活性剤も又使用される。 本発明でのべる疾患原因物質は又、農耕および
園芸経営において用いられる他の活性物質と混合
することもでき、これらは該物質と協同しうる。
このような活性物質は、植物栄養剤、肥料、殺虫
剤、殺ダニ剤、殺菌剤、除草剤および殺線虫剤で
ある。 本発明の除草剤組成物における疾患原因物質の
濃度は製剤の種類により異なり、例えば水和剤に
おいては濃度は５〜80％、好ましくは10〜60％で
あり、粒剤においては５〜70％、好ましくは20〜
60％である。 このようにして得られた水和剤又は乳剤は水を
用いて特定の濃度に希釈され更に土壌又は植物の
茎葉の処理のため液体、懸濁液又は液体エマルシ
ヨンとして使用される。更に、粒剤は土壌又は茎
葉処理のため直接使用される。 PDA、オートミル寒天およびクザペツクドツ
クスブロスはデイフラボラトリー（デトロイト、
USA）より市販されている。V8アガーは多くの
スーパーマケツトで売られているV8ジユースか
ら作られている。 温室実験 純粋な菌糸体、ミクロスクレロチア（例１）と
組合せた菌糸体又はフオスモスイスシルシー由来
の粉胞子器および分生子と組合わせた菌糸体のい
ずれかの懸濁液で接種した場合、14〜35℃の温度
の温室で成長させたあざみ植物を感染させた。 (4) 実施例 例 １ 培地１当たり、1.0ｇのデイフユパクト寒天
（デイフユラボラトリー）を添加したクザペツク
ドツクス（Czapex Dox）ブロス上の表面培養と
してロウクス（Roux）フラスコ内で増殖させた、
フオモプスイスシルシー（CMI No.287569）の
６〜10日培養物由来の若菌糸体又はフオモプスイ
スシルシーの42日までの培養物由来のミクロスク
レオテイアを有する菌糸体を、水道水で洗い培地
残留物を除いた。 菌糸体をとり更に高速度で２分間ワーリングブ
レンダー中で蒸留水を用いて混合した。懸濁液
を、蒸留水を用い、懸濁液１当たり菌糸体80ｇ
を含有するように調節した。 圧縮空気を入れた噴霧用ピストルにより（操作
圧力：２Kg／cm2、ランオフを得るのに十分な量を
用い、種々の発育段階であざみ植物に噴霧した。 植物を露室内で24時間インキユベートした。接
種後５〜７日目に、感染のしるしが現われた。こ
れは、典型的には、若葉の葉脈上の黒色点又はス
トライブ（stribes）であつた。真菌は、葉から
茎を全体的に冒した。茎の環状剥皮後、根の下方
に移行し徐々に苗条の枝枯れ病を引きおこした。 免疫から植物の完全な枯死まで13段階での疾患
度点を作成した（下記の第１表）。 フオモプスイスシルシーが葉基部を冒した場
合、最初の黒点が見られてから感染地上部が枯死
するか（多年生植物）又は植物全体が枯死する
（１年生植物）まで通常約10日必要とした。 感染が葉の末端部で生じた場合、該結果の同じ
傾向をとるには約14〜17日必要であつた。 フオモプスイスシルシーは又、芽又は開花頭部
の総苞状包葉を経由して茎を冒すこともでき更に
これにより、植物の開花を防ぐことができる。 疾患は植物の種類間および種類内で多様であつ
た（フオスモスイスシルシーの特異性に関する、
下記の第表および第表参照）。 第表 疾患度点 ０：徴候なし（免疫） １：制限された葉の斑点 ２：葉の葉脈の幾分の懐死を伴つた葉の斑点 ３：二次的葉脈懐死 ４：二次的および幾分の中央脈懐死 ５：葉懐死までの中央脈黒化 ６：全葉死 ７：直接又は葉脈を介して茎への侵入 ８：縦方向に茎皮層の懐死 ９：茎の環状剥皮、根出葉の心腐れ 10：環状剥皮点から苗条基部への懐死 11：苗条の死又は全の植物の死（それぞれ、１
年生植物および多年生植物） 12：新苗条の枝枯れ条 13：全植物の死（多年生植物に対してのみ） 例 ２ フオモプスイスシルシーを用いた圃場における
接種は、シルシウムアルベンス（Cirsium
arvense）に対しアントロクノース
（anthrocnose）徴候をもたらした。多くの胞子
形成は、茎および時として葉脈の広い黒色部位内
で、白くなり、わら色のはん点全体に広がつた単
性粉胞子器から生じる。熟成植物の茎には、葉え
きからしばしば発生するこれらの病斑は、１〜15
cmの大きさにわたり、時として合着する。一般
に、若く更に時として熟成植物において枝枯れ病
が起こる。 例 ３ フオモプスイスシルシーの特異性試験 例１で説明したと同様の接種手順およびフオモ
プスイスシルシーの菌株を用い、次の４群：野生
植物（雑草および野生植物相）、農耕植物、園芸
植物および工芸用植物から選ばれた147種の異つ
た種の採集物について温室内での真菌の特異性を
調べた。 植物種に対する選抜規準は、シルシウムアルベ
ンス（Cirsium arvense）に対するそれらの関係
および作物もしくは野生植物又は雑草としてのそ
れらの発生であつた。 各種からの18種類の植物を、それらの発芽状態
の第６〜第８段階において接種した。対照とし
て、各種からの６種類の植物を蒸留水のみで散布
した。最後に乾燥室で植物を48時間インキユベー
トした。 カルデユアエ（Cardueae）族由来の植物の感
染性を、上記の０（免疫）ないし11（全ての１年生
植物の死）又は13（全ての多年生植物の死）にい
たる、第１表の疾患度点を用いて、接種後１カ月
目に評価した。結果を次の第二表に示す。
（Phomopsis cirsii）又はセプトリアシルシー
（Septoria cirsii）の培養によつて得られる疾患
原因物質の有効量、および所望により他の有効物
質並びに農耕学的に適合し得る希釈剤又は担体を
含んでなる、除草剤組成物並びに、キク科
（Compositae）に帰属する植物に対する除草剤組
成物の使用に関する。 好ましくは、フオモプスイスシルシー
（Phomopsis cirsii）が用いられる。 (2) 従来技術 真菌は栄養源物質上で増殖し、しかる後得られ
た新鮮なもしくは保存された疾患原因物質を、圃
場中の雑草に適当量散布する。 他のタイプの雑草に対し同様に用いられる、他
の人工的に増殖した種類の真菌は、公知であり、
（Weed Science 21巻（1973年）、303頁以降、
Ann.Rev.Phytopatol、17巻（1979年）、301頁以
降、およびPlant Pirease58巻（1974年）、335頁
以降、参照）更にこれらのいわゆる微生物除草剤
は商標DevineTMおよびCollegoTM
（Phytopathology、73巻（1983年）、774頁）の名
のもとに市販されている。 キク科に属する雑草は、現在化学的除草剤によ
り除草されている。これらは、しばしば雑草に対
して効果がない。この事実は、噴霧時において好
ましくない気候的条件に起因するか、又は長期に
わたる公知の除草剤の使用のため除草剤の耐性タ
イプの雑草の出現に起因する。これらの理由およ
び特に環境的理由により、微生物除草剤を使用す
ることが好ましい。 真菌フオモプスイスシルシーグルーブ
（Phomopsis cirsii Grove）は、British Stem−
and Leaf−fangi（Coelomy cetes）１巻（1935
年）、177頁にGroveによつて最初に発表され、さ
らに真菌セプトリアシルシーニーズル（Septoria
cirsii Nissl）はSylloge Fungorum3巻（1884
年）、550頁にSaccaadoによつて記載されている。 1983年、フオモプスイスシルシー（Phomopsis
cirsii）菌株は、コモンウエルスマイコロジカル
インステイテユート カルチユアーコレツクシ
ヨン（CMI）（フエリーレーン、キユー市、英
国）に葉標本第278416号のもとに寄託された。
1983年、セプトリアシルシー（Septoria cirsii）
菌株は、第280201号としてCMIに寄託された。
1984年７月17日、４種のセプトリアシルシー（菌
株は第287566号〜第287569号としてCMIに寄託
され次いで1984年７月27日に更に２種のセプトリ
アシルシーの菌株が第287750号および第287751号
としてCMIに寄託された。 (3) 発明の構成 フオモプスイスシルシー（Phomopsis cirsii）
およびセプトリアシルシー（Septoria cirsii）の
植物に対する病源的作用は、これまで知られてい
なかつた。驚くべきことに、フオモプスイスシル
シーは、疾患増進をして収縮し更に枯死するであ
ろう寄生植物の葉脈および茎を攻撃することが見
出された。このような病徴は植物内の毒素の形成
にまで追跡できる。真菌又は、植物と真菌との相
互作用に由来する特定の植物要素物質の分泌もま
た、真菌による侵入の病徴を示さない植物の感染
部位が黄変し次いで正常よりも早く枯死する点化
からも認められる。このことは、加えて、植物毒
素生産物が宿主植物に対し除草作用を有すること
を意味する。 植物は、例えばミセリウム（mycelium）、ス
クレロチア（sclerotia）、ピクニジア
（pycnidia）、コニデイア（conidia）のフラグメ
ントおよびこれらからの植物毒素生産物の如き、
フオモプスイスシルシー（Phomopsis cirsii）の
培養によつて得られる疾患原因物質を噴霧するこ
とにより除草され得る。 植物はピクニデイア（pycnidia）、コニデイア
（conidia）およびこれらからの植物毒素生産物の
如きセプトリアシルシー（Septoria sirsii）の培
養によつて得られる疾患原因物質を噴霧すること
により除草され得る。 これらの各々の真菌構造は、疾患原因物質とし
て単独で又は共同して用いることができる。疾患
原因物質は又、異つた菌株の真菌からも得ること
ができる。 本発明の除草剤組成物において、フオモプスイ
スシルシー（Phomopsis cirsii）又はセプトリア
シルシー（Septoria cirsii）のいずれかを培養し
て得られる疾患原因物質は別々に使用できるが、
もし両真菌から得られる疾患原因物質を使用する
場合、広範囲の宿主植物およびより高度の生態学
的豊富さを得る。これらを全て考慮すると、これ
は最上に適した除草作用を有するであろう。 植物生長抑制剤又は除草剤として使用できるフ
オモプスイスシルシー又はセプトリアシルシーの
培養により疾患原因物質を製造することができる
ことは、従来知られていなかつた。更に、別の植
物に対する、本発明で説明される疾患原因物質の
特異性は驚くべきである。 フオモプスイスシルシー由来の未熟粉胞子器
は、無毛で、レンズ豆状でかつ表皮におおわれて
いる。後には、湿潤状態で、粉胞子器は長い突出
した頚部を生産し、これは表皮を貫通する。成熟
粉胞子器は、洋梨形で、一室であり基部で幅広
く、平らでかつ薄壁を有する。腔は最も単純であ
るが時として（乾燥物質においては優先的に）内
壁からの侵入により分割されている。 圃場および培養においてフオモプスイスシルシ
ー由来の粉胞子器の形態においていくつかの不一
致があるが、圃場で生産されるタイプの分生子の
更新および分生子の特徴は、培養中の真菌の特徴
と同一である。 セルシウムアルベンス（Cirsium arvense）の
感染植物から単離した菌糸体から培養された、フ
オモプスイスシルシーのコロニーは、２％じやが
いもデキストロース寒天（以下、PDAという）
上で急速に増殖し20℃で３日後直径約９cmに達す
る。基質１当たりノボビオチン（Novobiocin）
１ｇをPDAに添加すると、増殖は急速に抑制さ
れ更に直径約２cmで停止し、脱色媒質のレモン黄
色帯（ハロ）を残す。 一般に（２％PDA上で）、PDA上のコロニー
は培養物のエイジング中色彩のある種の変化をみ
せる。初期には、該コロニーはやや白く、コロニ
ーの周囲から中心に向けて２cmまで伸びる地帯又
は部分内で帯緑黄色の菌糸をしばしば過渡的に有
する。後期には、コロニーは灰褐色となる。表面
は羊毛のようである。多くの気生菌糸の初期のヘ
リ部は、エイジングと共にぴつたりと押しつけら
れる。古い培養物は、直径約３〜５mmの濃い白色
菌糸の浮き出した円形の小さい束である。 反対に最初は無色又は灰かつ色で、過渡的に褐
色部分を伴う。最後には、淡褐色、くり色かつ色
又は黒色である。 菌糸片から産生する培養物中、粉胞子器は室温
で約35〜40日後PDA中で埋められて成長する。 初期の段階では、粉胞子器は群居せず、比較的
小さく、薄壁を有しかつ暗褐ないし黒色である。
エイジングに伴つて、より長くかつより濃壁の粉
胞子器は、一団（群）で又は１個のオスチオール
のみをしばしば共有する相互連結した壁を有する
複合体のいずれかで成長する。 湿潤条件のもと、優勢的にきわ立つて伸長し
た、頂端オスチオールを有する単純もしくは分枝
頸が形成されそこから分子胞子が不透明の小球に
押し出される。PDAプレート上では、これらの
分生胞子から由来したコロニー（小球）は菌糸体
からのコロニーに似ていた。分生胞子を用いる
と、粉胞子器形成が約14〜20日後に発生した。 最良のフオモプスイス種として、フオモプスイ
スシルシーは分生胞子の三種のタイプを生産でき
る。圃場並びに培養において、分生胞子（分生
子）のタイプは粉胞子器エイジ（Ａ−分生胞子、
Ｂ−分生胞子およびＣ−分生胞子を示す第１図参
照）の結果として変化する。Ｂ−分生胞子は典型
的に最初に生産される分生胞子である。後には、
同じ粉胞子器にはＡ−分生胞子が形成され更に
徐々にその量が増す。Ａ−分生子が生じた場合、
Ａ−およびＢ−分生子間の中間体であるＣ−分生
子は小数見出され得る。分生子の大きさは、真菌
が培養される基質に依存するようである。分生子
の次の記載は、PDA、V8寒天およびオートミル
寒天上の培養物並びに植物から採取した分生子に
ついて行つた観察および測定に基づく。 Ａ−分生子はガラス様で、単細胞で、ギユトウ
レート（guttulate）であり更に楕円形であり、
しばしば中間部でわずかにくびれており、大きさ
は約７〜10×２〜3μｍである。Ｂ−分生子はガ
ラス様で、通常一方の端部で曲つているか屈曲し
ており；大きさ約18〜35×0.5〜1μｍである。Ｃ
−分生子は、ガラス様で、丸味又は鋭敏な端部を
持つてわずかにカーブし、時として楕円形であ
り、長さはＡ−分生子に似ているか、大部分マル
チグトウレートであり；大きさは約14〜30×2.5
〜3μｍである。 室温でPDA上で、粉胞子器の形成におけるウ
イリーングにおいて、成長特性において、および
Ａ−およびＢ−分生子が生産される遷移において
偏差がフオモプスイスシルシーの異つた菌株間で
見出された。 15菌株のフオモプスイスシルシーの内２種は、
顆粒の、ぴつたりくつついた、白色の菌糸体を生
産しこれは非常に少数の群居しない粉胞子器を有
する。 典型的にコロニー特性を示すけれども、他の菌
株はＢ−分生子の前にＡ−分生子を生産する。 数種のフオモプスイスは、アスコマイコチナ
（Ascomycotina）におけるパイレノマイセーテ
（Pyrenomycetes）の綱における属デイアポルテ
（Diaporthe）Nits.の分生子のステージである。
子嚢果又は他の性構造は、子嚢果が室温で、40℃
で又は実験室内又は自然の交互の条件で１年間保
存される時でさえも、フオモプスイスシルシーの
培養に関し見出されなかつた。 セプトリアシルシー由来の粉胞子器はシングル
でありかつ埋没しており、形状は直径40〜100μ
ｍの球形又は扁平の球形であり、乳頭突起又は頚
部がない。分生子生産層は腔の全内表面をライニ
ングしている。粉胞子器壁は基質状であり、強く
色づいた数種の層および比較するに厚い壁細胞か
らなる。 分生子（約20〜80×２〜3μｍ）は、円柱状で、
幾分屈曲性があり更に６〜12個の隔膜を通常有す
る。一方端は丸くなつており、他方端は狭く更に
急峻である。時として、分生子は隔膜の形跡がな
いか、あるいはわずが５個あるいはそれ以下の隔
膜があり全て同じ粉胞子器内にある（PDA上で
培養して得たセプトリアシルシーの分生子を示す
第２図参照）。 セプトリアシルシーは、液体および固体PDA
上では良く増殖するが、クザペツクドツクスブロ
ス（デイフ研究所、デトロイト、USA）上では
増殖しない。PDAプレートでは、菌糸体由来の
コロニーは、非常にゆつくり増殖し、白色の平骨
なへりを有し時として銀色の浮き出した頭毛様の
コロニーはNUV光により又はNUV光なしで室
温で１カ月インキユベーシヨン後直径約４cmに達
する。このコロニータイプにおいては、極くわず
か少数のあるいは全く粉胞子器は生産しない。分
生子から由来するコロニーは、微少の菌糸体と共
に媒質中に直ちに埋没した粉胞子器を生産する。
室温で約７日間インキユベーシヨンした後、熟成
粉胞子器はオスチオールから、透明又は非常にま
れにはローズピンク色の小球で押出された分生子
に形成される。 粉胞子器および分生子の形状並びにそれらの培
養中の大きさは、シルシウムアルベンス
（Cirsium arvense）に関しての真菌の特徴と一
致する。 オーデマンスにより（Enumeratio
Systematica Fungorum ４巻（1923年）、1073頁
以降）、セプトリアシルシはCirsium sp.、
Cirsium arvense（L.）Scop.、Carthamus
lanatus L.（Kentrophyllum lanatum D.C.）お
よびSerratula glauca Ledebについてすでに見
出された。 Ohio Agricultural Experimental station1927
からBulletin414における43頁によれば、セプト
リアシルシーはシルシウムアルベンス（Cirsium
arvense）を著るしく損うことなく、従つて除草
剤組成物に対する真菌の有用性は驚くべきもので
ある。 フオモプスイスシルシーおよびセプトリアシル
シーは表面培養および液内培養により培養でき
る。 表面培養は、同化窒素および炭素源並びに必須
の栄養源を含む液体培地で行なわれる。 液内培養は、同化窒素、炭素源および必須の栄
養源を含む発酵培地中嫌気的条件下で行なわれ、
しかる後、疾患原因物質を単離する。更にPH値、
温度、嫌気および撹拌の如き条件は当業者により
容易に選択できる。 本発明で述べる疾患原因物質は、出芽前施用と
して直後土壌に又は出芽後施用として直接植物の
茎葉に適用することにより、あるいは又該土壌を
密に混合することにより、処理すべき地域に適用
できる。好ましい処理は、植物茎葉の出芽前であ
り更に本発明で説明される疾患原因物質は例え
ば、１ヘクタール当り約100ｇ〜100Kgの量で土壌
又は植物茎葉に適用できる。 有効成分として本発明で説明される疾患原因物
質を有する除草剤組成物は、該物質を農業上通常
用いられる組成物例えば、水和剤、乳剤、粒剤、
水可溶粉末剤、アルギン酸塩剤、キサンタンゴム
剤およびエーロゾル剤を得るため、適当な不活性
担体と混合して製剤化される。固体担体として、
ベントナイト、珪藻土、アパタイト、石こう、タ
ルク、ピロフイライト、ヴエルミキユライトおよ
び粘土が用いられる。均質でかつ安定な製造を得
るため、界面活性剤も又使用される。 本発明でのべる疾患原因物質は又、農耕および
園芸経営において用いられる他の活性物質と混合
することもでき、これらは該物質と協同しうる。
このような活性物質は、植物栄養剤、肥料、殺虫
剤、殺ダニ剤、殺菌剤、除草剤および殺線虫剤で
ある。 本発明の除草剤組成物における疾患原因物質の
濃度は製剤の種類により異なり、例えば水和剤に
おいては濃度は５〜80％、好ましくは10〜60％で
あり、粒剤においては５〜70％、好ましくは20〜
60％である。 このようにして得られた水和剤又は乳剤は水を
用いて特定の濃度に希釈され更に土壌又は植物の
茎葉の処理のため液体、懸濁液又は液体エマルシ
ヨンとして使用される。更に、粒剤は土壌又は茎
葉処理のため直接使用される。 PDA、オートミル寒天およびクザペツクドツ
クスブロスはデイフラボラトリー（デトロイト、
USA）より市販されている。V8アガーは多くの
スーパーマケツトで売られているV8ジユースか
ら作られている。 温室実験 純粋な菌糸体、ミクロスクレロチア（例１）と
組合せた菌糸体又はフオスモスイスシルシー由来
の粉胞子器および分生子と組合わせた菌糸体のい
ずれかの懸濁液で接種した場合、14〜35℃の温度
の温室で成長させたあざみ植物を感染させた。 (4) 実施例 例 １ 培地１当たり、1.0ｇのデイフユパクト寒天
（デイフユラボラトリー）を添加したクザペツク
ドツクス（Czapex Dox）ブロス上の表面培養と
してロウクス（Roux）フラスコ内で増殖させた、
フオモプスイスシルシー（CMI No.287569）の
６〜10日培養物由来の若菌糸体又はフオモプスイ
スシルシーの42日までの培養物由来のミクロスク
レオテイアを有する菌糸体を、水道水で洗い培地
残留物を除いた。 菌糸体をとり更に高速度で２分間ワーリングブ
レンダー中で蒸留水を用いて混合した。懸濁液
を、蒸留水を用い、懸濁液１当たり菌糸体80ｇ
を含有するように調節した。 圧縮空気を入れた噴霧用ピストルにより（操作
圧力：２Kg／cm2、ランオフを得るのに十分な量を
用い、種々の発育段階であざみ植物に噴霧した。 植物を露室内で24時間インキユベートした。接
種後５〜７日目に、感染のしるしが現われた。こ
れは、典型的には、若葉の葉脈上の黒色点又はス
トライブ（stribes）であつた。真菌は、葉から
茎を全体的に冒した。茎の環状剥皮後、根の下方
に移行し徐々に苗条の枝枯れ病を引きおこした。 免疫から植物の完全な枯死まで13段階での疾患
度点を作成した（下記の第１表）。 フオモプスイスシルシーが葉基部を冒した場
合、最初の黒点が見られてから感染地上部が枯死
するか（多年生植物）又は植物全体が枯死する
（１年生植物）まで通常約10日必要とした。 感染が葉の末端部で生じた場合、該結果の同じ
傾向をとるには約14〜17日必要であつた。 フオモプスイスシルシーは又、芽又は開花頭部
の総苞状包葉を経由して茎を冒すこともでき更に
これにより、植物の開花を防ぐことができる。 疾患は植物の種類間および種類内で多様であつ
た（フオスモスイスシルシーの特異性に関する、
下記の第表および第表参照）。 第表 疾患度点 ０：徴候なし（免疫） １：制限された葉の斑点 ２：葉の葉脈の幾分の懐死を伴つた葉の斑点 ３：二次的葉脈懐死 ４：二次的および幾分の中央脈懐死 ５：葉懐死までの中央脈黒化 ６：全葉死 ７：直接又は葉脈を介して茎への侵入 ８：縦方向に茎皮層の懐死 ９：茎の環状剥皮、根出葉の心腐れ 10：環状剥皮点から苗条基部への懐死 11：苗条の死又は全の植物の死（それぞれ、１
年生植物および多年生植物） 12：新苗条の枝枯れ条 13：全植物の死（多年生植物に対してのみ） 例 ２ フオモプスイスシルシーを用いた圃場における
接種は、シルシウムアルベンス（Cirsium
arvense）に対しアントロクノース
（anthrocnose）徴候をもたらした。多くの胞子
形成は、茎および時として葉脈の広い黒色部位内
で、白くなり、わら色のはん点全体に広がつた単
性粉胞子器から生じる。熟成植物の茎には、葉え
きからしばしば発生するこれらの病斑は、１〜15
cmの大きさにわたり、時として合着する。一般
に、若く更に時として熟成植物において枝枯れ病
が起こる。 例 ３ フオモプスイスシルシーの特異性試験 例１で説明したと同様の接種手順およびフオモ
プスイスシルシーの菌株を用い、次の４群：野生
植物（雑草および野生植物相）、農耕植物、園芸
植物および工芸用植物から選ばれた147種の異つ
た種の採集物について温室内での真菌の特異性を
調べた。 植物種に対する選抜規準は、シルシウムアルベ
ンス（Cirsium arvense）に対するそれらの関係
および作物もしくは野生植物又は雑草としてのそ
れらの発生であつた。 各種からの18種類の植物を、それらの発芽状態
の第６〜第８段階において接種した。対照とし
て、各種からの６種類の植物を蒸留水のみで散布
した。最後に乾燥室で植物を48時間インキユベー
トした。 カルデユアエ（Cardueae）族由来の植物の感
染性を、上記の０（免疫）ないし11（全ての１年生
植物の死）又は13（全ての多年生植物の死）にい
たる、第１表の疾患度点を用いて、接種後１カ月
目に評価した。結果を次の第二表に示す。
【表】
第表から明らかなように、カルデユアエ族由
来の植物を真菌により感染せしめた。フオモプス
イスシルシーに対し感染性を有していた。この群
に属する唯一の重要な作物はちようせんあざみ
（Cyndra scolymus）である。しかし、この感染
性は作物の種類に関係しているように思われる。 同様に、カルデユアエ族に帰属しない植物の感
染性を評価した。これらの試験結果は、試験した
全植物が免疫（上記第１表の疾患度で０）であつ
た。植物の群および試験した植物の各群における
種の数は次の第表に示される。
来の植物を真菌により感染せしめた。フオモプス
イスシルシーに対し感染性を有していた。この群
に属する唯一の重要な作物はちようせんあざみ
（Cyndra scolymus）である。しかし、この感染
性は作物の種類に関係しているように思われる。 同様に、カルデユアエ族に帰属しない植物の感
染性を評価した。これらの試験結果は、試験した
全植物が免疫（上記第１表の疾患度で０）であつ
た。植物の群および試験した植物の各群における
種の数は次の第表に示される。
【表】
【表】
【表】
例 ４
セプトリアシルシーを用い圃場内で接種し、直
径約0.3〜1.0cmにわたる、帯灰色の懐死の葉の斑
点を得た。斑点は、通常角張つているが、湿潤状
態ではそれらは円形であつた。植物についての胞
子形成は、観察されなかつたが、乾燥した感染葉
を約５℃で２、３週間湿潤状態でインキユベート
した場合、多くの分生子を有する小数の散在した
粉胞子器を、葉の斑点内で得ていることが実験の
結果判明した。 例 ５ セプトリアシルシーに対する特異性試験 セプトリアシルシー（Septoria cirsil）（CMI
No.287751）の病原性を、PDAプレート上で増殖
した培養物から得た、分生子および圧搾粉胞子器
（濃度：１ml当たり106個の胞子）の懸濁液を用い
てシルシウムアルベンス（Cirsium arvense）の
植物を接種することにより調査した。蒸留水をプ
レートに添加し次いで分生子および粉胞子器を、
培地表面を静かにけずり落とすことにより培地か
ら分離した。 圧縮空気供給噴霧ピストル（作動圧：２Kg／
cm2）を用いて接種を行つた。流れるまで各植物を
噴霧した。 植物を、露室内で48時間インキユベートした。
感染による効果は、第表から明らかである。 第 表感染からの日数 病徴 ５ 黄白化により囲まれた微細懐死 斑点（クロロシスハロ） ７ 黄白化合体。懐死は、約0.5cm の直径を有し目立つてかつ角張 つた状態になつた。 12 最も若い葉を除き、全ての葉は 著るしく黄白化した。 14〜16 感染葉はしおれた。 上記の如く得られかつ操作した接種源材料につ
いて、セプトリアシルシーの特異性を、採取した
56個の異つた植物種について温室内で調査した。 種の感染性を、感染の発生として又は接種から
１カ月の期間中感染なしとして評価した。葉の斑
点からのセプトリアシルシーの単離により、評価
を確認した。 カルデユアエ（Carduae）族から得た植物に対
する試験結果を、第表に示すが、ここで「−」
は感染の徴候がないことを意味し、「＋」は感染
を示す。同表から明らかなように、セプトリアシ
ルシー（Septoria cirsii）はシルシウム
（Cirsium）属内で分化されているが、感染は又
シナラスコリムス（Cynara scolymus）および
ノトバスイスシリアカ（Notobasis）についても
見られた。セントアウレアマクロセフアラ
（Centaurea macrocephala）は典型的な病徴で
あるが、セプトリアシルシーは再単離できなかつ
た。
径約0.3〜1.0cmにわたる、帯灰色の懐死の葉の斑
点を得た。斑点は、通常角張つているが、湿潤状
態ではそれらは円形であつた。植物についての胞
子形成は、観察されなかつたが、乾燥した感染葉
を約５℃で２、３週間湿潤状態でインキユベート
した場合、多くの分生子を有する小数の散在した
粉胞子器を、葉の斑点内で得ていることが実験の
結果判明した。 例 ５ セプトリアシルシーに対する特異性試験 セプトリアシルシー（Septoria cirsil）（CMI
No.287751）の病原性を、PDAプレート上で増殖
した培養物から得た、分生子および圧搾粉胞子器
（濃度：１ml当たり106個の胞子）の懸濁液を用い
てシルシウムアルベンス（Cirsium arvense）の
植物を接種することにより調査した。蒸留水をプ
レートに添加し次いで分生子および粉胞子器を、
培地表面を静かにけずり落とすことにより培地か
ら分離した。 圧縮空気供給噴霧ピストル（作動圧：２Kg／
cm2）を用いて接種を行つた。流れるまで各植物を
噴霧した。 植物を、露室内で48時間インキユベートした。
感染による効果は、第表から明らかである。 第 表感染からの日数 病徴 ５ 黄白化により囲まれた微細懐死 斑点（クロロシスハロ） ７ 黄白化合体。懐死は、約0.5cm の直径を有し目立つてかつ角張 つた状態になつた。 12 最も若い葉を除き、全ての葉は 著るしく黄白化した。 14〜16 感染葉はしおれた。 上記の如く得られかつ操作した接種源材料につ
いて、セプトリアシルシーの特異性を、採取した
56個の異つた植物種について温室内で調査した。 種の感染性を、感染の発生として又は接種から
１カ月の期間中感染なしとして評価した。葉の斑
点からのセプトリアシルシーの単離により、評価
を確認した。 カルデユアエ（Carduae）族から得た植物に対
する試験結果を、第表に示すが、ここで「−」
は感染の徴候がないことを意味し、「＋」は感染
を示す。同表から明らかなように、セプトリアシ
ルシー（Septoria cirsii）はシルシウム
（Cirsium）属内で分化されているが、感染は又
シナラスコリムス（Cynara scolymus）および
ノトバスイスシリアカ（Notobasis）についても
見られた。セントアウレアマクロセフアラ
（Centaurea macrocephala）は典型的な病徴で
あるが、セプトリアシルシーは再単離できなかつ
た。
【表】
【表】
更に、カルデユアエ（Cardueae）族に属しな
い植物の感染性を評価した。試験したどの植物に
ついても感染の徴候は認められなかつた。植物の
群および試験した植物の各群における種の数を次
の第表に示す。 第 表植物の群 試験した種の数 コンポズターエ （COMPOSITAE） ツブリフロアエ （Tubuliflorae） ヘリアンテーエ （Heliantheae） ４ アンテミデーエ （Anthemideae） ２ ヘレニアエ（Helenieae） １ イヌレアエ（Inuleae） ２ セネシオネアエ （Senecioneae） ３ リグリフオアエ （Liguliflorae） 10 ケノポデアセア （CHENOPODIACEAE） ２ パピリオナセアエ （PAPILION ACEAE）（LECUMINOSAE） １ ウベレオフアセラエ （UMBELLIFERAE） １ 本発明の除草剤組成物の実施例を非制限的に説
明する。 例 ６ 水和剤成分 重量部 疾患原因物質 30 白カーボン 30 珪藻土 32 アルカリ硫酸ナトリウム ８ 上記成分を均質に混合し次いで微細粒子とし水
和剤を得る。使用に際しては、水で所望濃度に希
釈し、次いで懸濁剤として散布する。 例 ７ 粒剤成分 重量部 疾患原因物質 ７ タルク 38 ベントナイト 10 粘土 38 アルカリ硫酸ナトリウム ７ 上記成分を均質に混合し次いで微細粒子とす
る。微細粒子を、約0.5〜1.0mmの直径を有する顆
粒とし、粒剤とする。使用する場合、直接施用す
る。
い植物の感染性を評価した。試験したどの植物に
ついても感染の徴候は認められなかつた。植物の
群および試験した植物の各群における種の数を次
の第表に示す。 第 表植物の群 試験した種の数 コンポズターエ （COMPOSITAE） ツブリフロアエ （Tubuliflorae） ヘリアンテーエ （Heliantheae） ４ アンテミデーエ （Anthemideae） ２ ヘレニアエ（Helenieae） １ イヌレアエ（Inuleae） ２ セネシオネアエ （Senecioneae） ３ リグリフオアエ （Liguliflorae） 10 ケノポデアセア （CHENOPODIACEAE） ２ パピリオナセアエ （PAPILION ACEAE）（LECUMINOSAE） １ ウベレオフアセラエ （UMBELLIFERAE） １ 本発明の除草剤組成物の実施例を非制限的に説
明する。 例 ６ 水和剤成分 重量部 疾患原因物質 30 白カーボン 30 珪藻土 32 アルカリ硫酸ナトリウム ８ 上記成分を均質に混合し次いで微細粒子とし水
和剤を得る。使用に際しては、水で所望濃度に希
釈し、次いで懸濁剤として散布する。 例 ７ 粒剤成分 重量部 疾患原因物質 ７ タルク 38 ベントナイト 10 粘土 38 アルカリ硫酸ナトリウム ７ 上記成分を均質に混合し次いで微細粒子とす
る。微細粒子を、約0.5〜1.0mmの直径を有する顆
粒とし、粒剤とする。使用する場合、直接施用す
る。
第１図はＡ−分生胞子、Ｂ−分生胞子およびＣ
−分生胞子を示す模式図、第２図はセプトリアシ
ルシー（Septoria cirsii）の分生胞子を示す模式
図である。
−分生胞子を示す模式図、第２図はセプトリアシ
ルシー（Septoria cirsii）の分生胞子を示す模式
図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ 真菌フオモプスイスシルシー（Phomopsis
cirsii）又はセプトリアシルシー（Septoria
cirsii）の培養によつて得られる疾患原因物質の
有効量、および所望により他の有効物質並びに適
合し得る希釈剤又は担持体を含んでなる、除草剤
組成物。 ２ 前記疾患原因物質を５〜80％、好ましくは10
〜60％含有する、特許請求の範囲第１項記載の除
草剤組成物。 ３ 前記真菌がフオモプスイスシルシー
（Phomopsis cirsii）である、特許請求の範囲第
１項又は第２項記載の除草剤組成物。 ４ 真菌フオモプスイスシルシー（Phomopsis
cirsii）又はセプトリアシルシー（Septoria
cirsii）の培養によつて得られる疾患原因物質の
有効量を、処理すべき領域に施用することを含ん
でなる、雑草の除草方法。 ５ 前記第１〜３項のいずれかの除草剤組成物
を、保護すべき地域に適用することを含んでな
る、雑草の除草方法。 ６ 疾患原因物質を、１ヘクタール当り約100ｇ
〜100Kgの範囲内で領域に施用する、特許請求の
範囲第４項又は第５項記載の方法。 ７ 除草される雑草がキク科植物に属する、特許
請求の範囲第４項から第６項までのいずれかに記
載の方法。 ８ 除草される雑草がカルデユアエ（Cardueae）
に帰属する、特許請求の範囲第７項記載の方法。 ９ 植物が明細書第２表に掲げられている植物で
ある、特許請求の範囲第７項記載の方法。
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