JPH0588686B2 - - Google Patents

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JPH0588686B2
JPH0588686B2 JP62162201A JP16220187A JPH0588686B2 JP H0588686 B2 JPH0588686 B2 JP H0588686B2 JP 62162201 A JP62162201 A JP 62162201A JP 16220187 A JP16220187 A JP 16220187A JP H0588686 B2 JPH0588686 B2 JP H0588686B2
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tumor
antibody
immunoconjugate
group
lysine
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Eritsuku Herusutoromu Kaaru
Ii Herusutoromu Ingegaado
Rauii Efureimu
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Oncogen LP
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Description

【発明の詳細な説明】
発明の分野 本発明は低PHで不安定な新規免疫結合体
（immunoconjugate）の生成、殊に化学療法薬を
含む上記免疫結合体および化学療法における上記
免疫結合体の使用法に関する。 発明の背景 種々の化学療法薬は一定腫瘍に対して有効であ
り、若干のものに対する治効性さえ認められ〔デ
ビタほか（Devita and Hellman）編、「腫瘍学
の癌、原理および診断（Cancer，Principle and
Practice of Oncology）」、リピンコツト社
（Lipincott ＆ Co）（1982）〕たけれども、癌細
胞を一層有効かつ一層選択的に殺す治療薬に対す
る大きな要求が存在する。この要求を満たす魅力
的な方法は抗体を用いて抗癌薬を腫瘍に向かわせ
るかまたは「標的する」抗体−薬物複合体または
「免疫結合体」を製造することである。癌細胞上
に発現される抗原を認識する抗体例えばヒト黒色
腫のp97抗原と反応する抗体96.5が知られている
〔ブラウン（Brown）ほか、ジヤーナル・オブ・
イムノロジー（J.Immunol.）127、p.537（1981）〕。
この型の若干の免疫結合体は試験管内で抗原陽性
腫瘍細胞に対し選択的に細胞毒であり、生体内で
腫瘍中に局在し、マウスでは薬物又は抗体単独よ
りも大きい抗腫瘍性を有することが示された〔ロ
ウランド（Rowland）ほか、カンサー・イムノ
ロジー・アンド・イムノセピー（Cancer
Immunol.Immunotherapy）、19、p.1（1985）〕。
そのような免疫結合体のヒト腫瘍を治療する能力
を実証することが残つているけれども、腫瘍標的
化における改良が最近の研究努力の焦点であつ
た。 腫瘍に対して効果を示すことができる化学療法
薬であるためには腫瘍細胞により取り込まればな
らず、そうでないと癌薬は細胞毒性があるとして
も非常に少ないからである。従つて免疫結合体
は、例えば腫瘍関連抗原の抗体認識により癌細胞
に向けられ癌細胞により（活性薬物が細胞内部に
遊離されて）取り込まねばならないか、または活
性薬物が癌細胞の密接な近傍に遊離され、薬物が
普通に使用されるときと同様に内部移行されねば
ならない。第２の方法は若干の利点を有する。第
１に、抗癌薬が大部分の細胞により取り込まれる
ことができるけれども、免疫結合体の内部移行は
それぞれの抗体の抗原標的および抗原を発現する
細胞の両方による。変調される抗原に対する抗体
すなわち抗原−抗体複合体の形態で内面化される
（内部に取り込まれる）抗体〔オルド（Old）ほ
か、プロシーデイングズ・オブ・ザ・ソサイエテ
イ・フオ・エクスペリメンタル・バイオロジー、
アンド・メデイシン（Proc.Soc.Exp.Biol.
Med.）、124、p.63（1967）〕は薬物を標的に向か
わさせるために最も容易に使用されるものである
〔ヤンセン（Jansen）en）ほか、イムノロジカ
ル・レビユーズ（Immunol.Rev.）62、p.185
（1982）〕。第２に、多くの腫瘍抗原の細胞による
発現に異質性があるので一定の抗原を発現しな
い、すなわち抗原陰性である、細胞がしばしば腫
瘍内に生ずる〔イエー（Yeh）ほか、ジヤーナ
ル・オブ・イムノロジー（J.Immunol.）、126、
p.1312（1981）；アルビノ（Albino）ほか、ジヤー
ナル・オブ・エクスペリメンタル・メデイシン
（J.Exp.Med.）、154、p.1764（1981）〕。腫瘍細胞
異質性の結果としての腫瘍内に有効水準の化学療
法薬を蓄積することの困難は、同一腫瘍細胞によ
り発現された種々の抗原に対する抗体を組合せ、
免疫結合体を形成することにより低下できるけれ
ども、腫瘍内の一定の抗原を有するある最少量の
細胞の存在が有効量の免疫結合体の局在を可能に
する治療法が開発されればそれをさらに最小化す
ることができよう。第３に、例えば細胞膜よりも
細胞外に多量に存在する若干の腫瘍抗原例えばム
チンが存在し〔リツテンハウス（Rittenhouse）
ほか、ラボラトリー・メデイシン（Laboratory
Medicine）、16、p.556（1985）〕、腫瘍領域を標的
とする可能性を示唆する。 腫瘍細胞の酸性度（PH）正常細胞よりり低いと
思われる。半世紀以上前に行なわれた研究は悪性
腫瘍が主に嫌気性解糖により、好気性条件下でも
炭水化物を代謝すにることを示した〔ウオーバー
グ（Warburgほか、Biochem.A.，152、p.309
（1924）〕。グルコースの酸化はグルコースをピル
ビン酸に酸化する段階で停止し、次いで乳酸に還
元される〔ボキサーほか（Boxer and Devlin）、
サイエンス（Science）、134、p.1495（1961）〕。こ
の乳酸の大部分は周囲の細胞外液により除去また
緩衝されるが、しかしその一部は細胞外に蓄積さ
れる。その結果、腫瘍内に正常組織内よりも低い
PHをもたらす。グルコースの静脈内注入による血
糖の上昇は嫌気性代謝を促進して腫瘍内にさらに
多くの乳酸を生じ、これがさらに腫瘍と正常組織
との間のPH差を増加する。 ウオーバーグ（Warburg）の研究後、実験動
物〔ベオーグトリン（Voegtlin）ほか、ナシヨ
ナル・インステイチユート・オブ・ヘルス・ビユ
レチン（Nat′l.Inst.Hlth.Bull.）、164、p.1
（1935）；カーラーほか（Kahler and
Robertson）、ジヤーナル・オブ・ザ・ナシヨナ
ル・カンサー・インステイチユート（J.Nat.
Cancer Inst.）、３、p.495（1943）〕およびヒト患
者〔ヘスルンド（Haeslund）、アクタ・ソシエタ
テイス・メデイコルム・ウプサリエンシス
（Acta Soc.Med.Upsal.）、60、p.150（1955）；パ
ンパス（Pampus）、アクタ・ノイロキルルギカ
（Acta Neurochir.）、11、p.305（1963）〕両者の
腫瘍中の低いPHが若干報告された。 メイヤー（Meyer）ほかはカンサー・リサーチ
（Cancer Res.）８、p.513（1948）に悪性ヒト腫
瘍のPHが正常組織中より低いことを報告した。同
じ患者の正常細胞および腫瘍細胞の両方を生体内
で調べることができた）４例中の12例において平
均0.49で、0.17〜1.15の範囲内でPHに差異があつ
た。 アシユバイ（Ashby）〔ランセツト（Lancet）、
August6、p.312（1966）〕は９患者の悪性腫瘍の
平均PHが6.8（6.6〜6.9の範囲）であつたことを認
めた。デキストロースの静脈内注入によ血糖を高
めると腫瘍のPHは平均6.5（6.3〜6.8の範囲）に低
下した。 フアン・デン・ビールグ（Van Den Beerg）
ほか、Bur.J.Cancer Clim.Oncol.，18、p.457
（1982）は22のヒト乳癌のPHが、ヒト皮下組織中
の7.63（±0.03、SEM）に比し7.29（±0.05、
SEM）であり、ラツト腫瘍中で同様の差異か認
められたことを示した。腫瘍組織および正常組織
中のPH間の差異は、それらが前記研究に報告され
たものより低かつたけれども高度に統計的に有意
であつた。 チストレスウエイト（Thistlethwaite）ほか、
インタナシヨナル・ジヤーナル・オブ・ラデイエ
ーシヨン・オンコロジー・バイオロジー・フイジ
ツクス（Int.J.Radiation Oncology Biol.
Phys.）、11、p.1647（1985）は同様に14腫瘍の読
みにより測定したヒト腫瘍のPHが生理学的水準よ
り低く、平均6.8±0.09（SEM）であつたことを示
した。彼らは報告された高体温の治療有効性が正
常組織に比較して低い腫瘍の細胞外PHによると推
測した。 トロート（Trouet）ほかの米国特許第4376765
号にはペプチド鎖（「スペーサー・アーム」）を経
て薬物のアミノ官能基に結合したタンパク質高分
子（担体）からなる薬物化合物が記載されてい
る。担体は標的細胞による細胞封入体の取り込み
を促進し、スペーサーアームは細胞内で開裂され
ることができる。最近結合体が細胞膜と交差し、
細胞内の酸性PH（3.5〜5.5）に遭遇すると腫瘍細
胞内に薬物を遊離する抗体薬物結合体の開発に関
心が向けられた。ブラツトラー（Blattler）ほか
による米国特許第4569789号にはアミノ基物質例
えば化学療法薬を、腫瘍細胞膜を交差できる腫瘍
細胞表面抗原と反応性の化合物例えば抗体のスル
フヒドリル部分に結合できる橋かけ構造を用いる
結合体の化学的形成が記載されている。結合体を
形成するそのような方法の１つの制限は抗体がス
ルフヒドリル基を有さねばならないことである。
これはそのような操作を用いて形成できる可能な
薬物−抗体結合体の数を減少する。 腫瘍が正常組織より低いPHを有すること、およ
び酸開裂複合体が抗体と薬物との間に形成できる
ことの公表された証拠にもかかわらず、この証拠
はまだ腫瘍関連抗原と反応性の抗体および化学療
法薬からなり、腫瘍組織を標的とし、腫瘍細胞に
よる取り込みのために癌組織の低PHの存在下に、
しかし正常組織のPHにおいてではなく、化学療法
薬を選択的に遊離できる免疫結合体の開裂をもた
らさなかつた。 発明の概要 本発明において、PH感受性免疫結合体が化学療
法薬を腫瘍組織に供給することにより哺乳動物中
の腫瘍を治療するために提供される。。該免疫結
合体は結合体を低PHで不安定にする連鎖を経て化
学療法薬に結合した腫瘍関連抗原と反応性の抗体
を含む。殊に、免疫結合体は腫瘍細胞により内部
移行されるべきでない単クローン性抗体を含み、
化学療法薬は腫瘍の治療に有効な、少なくとも１
個の遊離アミノ残基を有する化合物例えばアント
ラサイクリン（anthracycline）化合物である。
ヒト腫瘍組織のPH範囲におけるPH感受性に対し殊
に望ましい性質を示す免疫結合体の種は薬物ダウ
ノマイシンにポリＬ−リシンスペーサーにより結
合したL6単クローン性抗体からなるものである。 本発明に図面に関連して説明される。 従つて本発明は、腫瘍組織を標的するため腫瘍
関連抗原と選択的に反応性の、化学療法薬に結合
した抗体からなる新規な免疫結合体を提供する。
該免疫結合体は低PH腫瘍組織中で不安定である。
該結合体は正常組織のPHで毒性が低いが、しかし
結合体が腫瘍細胞に関連する抗原の抗体による認
識の結果低PH腫瘍細胞中に局在すると、結合体の
化学的不安定のために化学療法薬が遊離され、腫
瘍細胞により取り込まれることができる。従つ
て、細胞死を生ずるために全結合体が腫瘍細胞内
に内面化されること、すなわち抗体が細胞膜を交
差すること、が必要でない。さらに、腫瘍内の十
分な数の細胞が免疫結合体の抗体により認識され
る抗原を発現すれば、標的抗原のない腫瘍細胞も
やはり化学療法薬により殺されることができる。
さらに、本発明は結合体を患者に導入することに
よりこれらのPH感受性免疫結合体を化学療法に用
いて低PH腫瘍組織中に局在させ、そこで化学療法
薬を遊離させ、腫瘍細胞中へ拡散させる方法を含
む。従つて、単に最少数の標的腫瘍細胞または腫
瘍関連組織中の腫瘍関連抗原の発現が本発明を用
いる腫瘍療法に必要である後記実施例は本発明に
より調製された免疫結合体の、動物モデル中の腫
瘍細胞中に局在する能力を示す。 本発明の免疫結合体を形成するため適当な抗体
を選ぶかまたか開発しなければならない。結合体
に用いる抗体は、腫瘍細胞の表面および（また
は）腫瘍細胞の密接な近傍（すなわち細胞膜の外
部）に最も強く発現される抗原と反応性の、好ま
しくはマウスまたはヒト由来の単クローン性抗体
である。単クローン性抗体はコーラーほか
（Kohler and Milstein）によりネーチヤー
（Nature）、256、p.495（1975）に記載されたよう
な操作を用いて生成させることができる。そのよ
うな単クローン性抗体の１つで本発明の使用に好
ましい抗体の例はL6抗体〔アメリカン・タイ
プ・カルチヤー・コレクシヨン（American
type Culture Collection）「ATCC」No.
HB8677〕、ガングリオシド抗原に特異性であり、
ヒト癌腫の大部分と反応するIgG 2aマウス免疫
グロブリン、である。ガングリオシド抗原（「L6
抗原」として示す）は非小肺癌、乳癌、結腸癌お
よび卵巣癌を含む多くのヒト癌腫の細胞の表面に
発現される。L6抗体およびL6抗原は1984年12月
21日および1985年10月18日にそれぞれ提出され、
本発明と同一の譲受人に譲渡された同時係属米国
特許出願第684759号および一部継続出願第776321
号に記載され、その開示はここに参照される。
L6抗原はL6抗体の存在下に変調されず（すなわ
ち、抗原抗体複合体が内面化されない）、L6抗体
が細胞表面に保持され、腫瘍細胞により取り込ま
れない マウス、ラツト、ヒトまたは他に由来する他の
単クローン性抗体がL6抗原または他の腫瘍関連
抗原に対して生ずることができる。モリソン
（Morrison）ほか、プロシーデイングズ・オブ・
ザ・ナシヨナル・アカデミー・オブ・サイエンス
（Proc.Natl.Acad.Scl.）、81、p.6851（1984）およ
びタケダ（Takeda）ほか、ネーチヤー
（Nature）、314、p.452（1985）の研究により示さ
れた抗体分子（例えばマウス由来）の可変領域に
対する遺伝子および恒常領域（ヒト由来）に対す
る遺伝子を一緒にスプライシングすることにより
得られたキメラ抗体もまた使用できる。免疫結合
体はまたウサギおよびサルを含む種々の種中に調
製される多クローン性血清の使用により作ること
ができる。例ば抗体分子のタンパク質分解消化に
より得られ、Fab、Ｆ（ab′）2およびFcフラグメン
トを含む種々のフラグメントもまた使用できる。
本発明は、抗体およびフラグメントが高い親和定
数（108Mまたはそれ以上）を有し、抗原が腫瘍
細胞表面に高水準（少なくとも50000分子毎細胞）
に発現されるか、または腫瘍細胞のすぐ近くに比
較的高い水準で存在すればL6抗原以外の抗原に
特異的である抗体およびフラグメントを用いて同
様に良好に行なうことができる。 本発明における使用に適する化学療法薬は癌細
胞に対し細胞毒性および（または）増殖抑制効果
を有するものである。これらには抗腫瘍薬例えば
アントラサイクリン化合物、ダウノマイシン、マ
イトマイシンＣ、アドリアマイシン、および代謝
拮抗薬例えば葉酸拮抗薬例えばメトトレキサート
を含めてヒト癌の通常使用される型の治療薬が含
まれる。 本発明において免疫結合体は低PHで不安定で、
化学療法薬を遊離しなければならない。これは化
学合成の若干の方法を用いて達成することができ
る。１つの方法において、PH感受性連鎖例えばア
コニツト酸無水物を化学療法薬に結合させ、次い
で試薬のカルボキシル基（−COOH）を抗体の
リシン基に結合させる。この方法は、ここに参照
されるシエンほか（Shen and Ryser）、バイオ
ケミカル・アンド・バイオフイジカル・リサー
チ・コミユニケーシヨンズ（Biochem.Biophs.
Res.Comm.）、102、p.1048（1981）に記載された
化学に類似する。毒素と、標的細胞中へ結合体を
運ぶための一定リンパ球集団に対する抗体との間
の安定な免疫結合体がそのような操作を用いて開
発され；これらの抗毒素は免疫抑制性であると認
められた、デイーナー（Diener）ほか、サイエ
ンス（Science）、231、p.148（1885）。 本発明のPH不安定性免疫結合体はまた化学療法
薬を抗体に結合するアコニツト酸無水物連鎖を用
いて形成することができる。これらの反応は次に
示される。そのような操作の段階において、ア
コニツト酸無水物の不安定なγ−カルボキシル基
を、少くとも１個の遊離アミノ基を含む適当な化
学療法薬例えばダウノマイシンと反応させて中間
体化合物(1)形成させる。次の段階において、こ
の中間体を少くとも１個のリシン基を含む利用可
能な抗体とカルボジイミド試薬の存在下に反応さ
せて連鎖により結合されたダウノマイシンおよび
抗体からなる免疫結合体を形成させる。この免疫
結合体(2)は低PH媒質例えば腫瘍組織中で段階に
示すように解離する。
【化】
【化】
【化】 上記の化学を用いて単クローン性抗体例えば
L6を化学療法薬例えばアントラサイクリン系の
ダウノマイシンに結合させると反応収率が比較的
低いので、抗体に結合され、遊離される薬物の量
は最適治療効果に対して低すぎるかもしれない。
さらに、抗体の反応性は上記反応に用いるカルボ
ジイミド試薬により誘導される重合反応により影
響をうけるかも知れない。従つて、該反応を本発
明の免疫結合体の形成に使用できるけれども、上
記反応を例えば活性化試薬の使用により、または
スペーサー分子の使用により改良することが好ま
しい。 従つて、反応を改良するために酸無水物で修正
した化学療法薬とＮ−ヒドロキシスクシンイミド
とのスクシネート化中間体をカルボジイミド試薬
例えば１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプ
ロピル）カルボジイミド塩酸塩（EDC）を用い
て製造しアコニツト酸無水物のカルボキシル基の
活性化を促進することができる。次いでこの中間
体を抗体の利用可能リシンのアミノ基と反応さ
せ、アミド結合を有する免疫結合体を形成させ
る。そのような免疫結合体は実施例に記載さ
れ、反応が示されている。 少なくとも３個のアミノ酸例えばポリＬ−リシ
ンおよびポリＬ−グルタミン酸を含む、またタン
パク質分子例えばアルブミンを含むスペーサー分
子、好ましくはポリアミノ酸を組込んだ殊に有用
な免疫結合体を調製することができる。好ましい
結合プロセスにおいて、リシン含有抗体中のリシ
ンのアミノ基をチオール化により、例えばＳ−ア
セチルメルカプトコハク酸無水物（SACA）を用
いて修性し、遊離スルフヒドリル基（−SH）を
与える。スペーサー分子例えばポリＬ−リシン
を、前記のように調製した無水物変性化学療法薬
と複合体になし、次いで複合体のスペーサー分子
のリシン基を試薬例えばマレイミド試薬例えばス
ルホスクシンイミジル−４−（Ｎ−マレイミドメ
チル）シクロヘキサン−１−カルボキシラートで
変性する。次いでチオール化した抗体をマレイミ
ド変性スペーサー分子−化学療法薬と結合させて
低PHで解離できる免疫結合体を形成させる。 あるいは試薬例えばＮ−スクシンイミジル３−
（２−ピリジルチオ）ピロピオナート（SPDP）
により仲介させる一連の反応において、スペーサ
ー分子例えばアルブミン中のリシン基を酸無水物
変性化学療法薬（前記のように得られた）および
抗体中のリシンのアミノ基に結合させる。スペー
サー分子を含む免疫結合体は実施例およびに
示される。 スペーサー連鎖を有する免疫結合体は従つて抗
体分子当り数モルの化学療法薬（抗体分子当り50
モルまでの薬物）で調製することができ、それは
抗体の反応性を有意に変化させることなく腫瘍組
織に対する薬物供給を高める。 上記操作を用いる結合体の水準は、PHが6.5〜
8.5の範囲内にあるように反応のPHを変更するこ
とにより、または４〜37℃の範囲内で反応中の温
度を高めることにより、さらに改良することがで
きる。あるいは、インキユベーシヨンの時間を３
時間から24時間まで変化させて抗体に結合する薬
物の量を高めることができる。さらに、抗体と化
学療法薬との間の反応の段階中の化学療法薬と
抗体との割合を変えることができ、10〜50の薬剤
と抗体との最終割合が好ましい。 アコニツト酸無水物連鎖を用いる低PH不安定性
免疫結合体を製造する前記方法のために化学療法
薬は少くとも１個の遊離アミノ基を有すべきであ
る。アミノ基は生物活性に必要と思われるので、
スペーサーは好ましくは化学療法薬から遊離アミ
ノ基に完全に加水分解される。これらの要件に適
する適当な化学療法薬はアントラサイクリン化合
物、ダウノマイシン、マイトマイシンＣ、アドリ
アマイシン、およびメトトレキサートである。こ
れらの化合物はまたキノン構造およびアシル（−
COR）部分を含み、それらはともに腫瘍細胞の
破壊に重要であると思われる。対照としてPH安定
性結合体を、他のスペーサー、無水マレイン酸、
をアコニツト酸の代りに用いることにより作るこ
とができる。 化学療法薬を抗体に結合させてPH不安定性免疫
結合体を形成させる第２の方法は、ここに参照さ
れるアキセン（Axen）ほか、ネーチヤ
（Nature）、214、p.1302（1967）に記載されたも
のに類似するブロモシアンを用いる化学反応に基
く。アキセン（Axen）ほかはタンパク質を多糖
樹脂例えばセフアデツクス（Sephadex）に結合
させることを記載している。これらの反応を行な
うために、化学療法薬例えばダウノマイシンをブ
ロモシアノ（CNBR）を用いてアルカリ性PH
（例えばPH11.0）で活性化する。次いで活性化し
たダウノマイシンを適当な抗体およびアルカリ性
PHを維持する緩衝溶液例えば炭酸水素ナトリウム
溶液の溶液に加える。生じた結合体は例えばカラ
ムクロマトグラフイーにより精製される。結合抗
体の免疫活性は例えばPAP法〔ガリークス
（Garriques）ほか、Inter.S.Cancer，29、p.511
（1982）〕を用いる免疫組織学のような操作によ
り、または放射性結合検定により試験される。こ
の方法で形成された免疫結合体は次いで腫瘍組織
のPH範囲、好ましくはPH5.6〜6.7の範囲内で試験
することができる。これらの反応は次のように総
括することができる。簡単に述べると、ブロモシ
アンの炭素を化学療法薬のヒドロキシル（−
OH）基と反応させて中間体の混合物(1)を形成さ
せる。中間体は抗体のリシンアミノ酸のアミノ基
と反応させるとカルボキシル連鎖を経て化学療法
薬のヒドロキシル基に結合した抗体のリシンアミ
ノ酸のアミノ基を有する免疫結合体の混合物(2)が
形成される。
【化】
【化】 免疫結合体(2)は低PHで安定でないので、結合体
はPH媒質中で次に示すように遊離薬物および抗体
に解離する。 酸性媒質 ――――→ IgG− 抗体 NH2＋薬物 化学療法薬は少くとも２個のヒドロキシル基を
含むべきであり、抗体はこれらの反応のために少
くとも１個のリシンアミノ酸を含むべきである。 酸開裂性結合を形成す第３の方法は、ここに参
照するクアトレカサス（Cuatrecasas）によりジ
ヤーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー
（J.Biol.Chem.）、245、p.3059（1970）に結合体の
形成について記載され、次の段階からなる方法に
従うジアゾ化を用いる。化学療法薬例えばダウノ
マイシンを試薬例えば塩化ｐ−ニトロベンジルを
用いて溶液中で活性化する。インキユベーシヨン
後塩化第一スズ溶液を用いてニトロ基を還元す
る。この還元の生成物を次いで氷上で冷却しなが
らHCの添加によりジアゾ化する。悪硝酸ナト
リウムを加えるとジアゾ化が誘導される。次いで
活性化したダウノマイシンを炭酸水素ナトリウム
を用いて適当な抗体の利用可能チロシンアミノ酸
と結合させて抗体と薬物との間にニトロベンゾイ
ル連鎖を形成させる。次いでPHを、好ましくは約
8.0のPHに調整する。次いで結合した抗体を、カ
ラムクロマトグラフイーを用いて精製し、結合し
た抗体の免疫反応性を試験する。これらの免疫結
合体は5.6〜6.7の範囲内のPHでダウノマイシンの
遊離について試験する。これらの反応は次のよう
に示される：
【化】
【化】
【化】
【化】 免疫結合体は低PHで不安定であるので、薬物は
解離（段階Ｖ）により腫瘍組織中へ遊離されよ
う。 低PH ―――→ 1gG＋薬物 上記反応（第３法）に用いる化学療法薬は少く
とも１個のヒドロキシル（−OH）基を含むべき
であり、好ましくは抗体はその構造中に少くとも
１個のチロシンアミノ酸を含むべきである。 以下の実施例は本発明を例示し、その製造およ
び使用において当業者を援助するために与えられ
る。これらの実施例は決して開示または特許証に
より付与される保護の範囲を別の方法で限定する
意図ではない。 実施例 ヒト中の腫瘍組織のPH ヒト中の腫瘍組織の若干の型の生体内PHを調べ
るために次の研究をワシントン州シアトルのバー
ジニア・メーソン病院（Virginia Mason
Hosptital）で1986年３月に行なつた。 種々の型の腫瘍を有する10患者（女性８人、男
性２人、平均年令67.3）を外科中急性研究で調査
した。デジタルPH計〔ベツクマン（Bechman）
モデル3500〕に接続した可撓性PHプローブ、直径
1.2mm〔マイクロエレクトロード
（Microelectrode）20142、マイクロエレクトロ
ード社（Microelectrodes，Inc.，New
Hampshire，USA）製〕を14ゲージ針を通して
正常組織および腫瘍組織に挿入し、患者の示指を
参照電極〔NMI−401、マイクロエレクトロード
社（Microelectrodes，Inc.）製〕に接続した。
プローブは市販緩衝液PH７〔ベツクマン
（Beckman）製〕およびPH２〔リツカ×ケミカル
ズ（Ricca Chemicals，Arlington，TX）製〕
の使用により各患者に対する操作の前後に校正し
た。プローブはタージコス（Turgicos）溶液
〔ジヨンソン・アンド・ジヨンソン（Johnson
＆ Johnson，Arlington，TX）製〕で滅菌し
た。PH値は安定化後、通常、正常組織中で５〜10
分以内に記録し、同様の操作を腫瘍組織に繰返し
た。患者の２人は50％グルコース溶液50mlを静脈
内（i.v.）に与えた。グルコースは外科の１時間
前に始めて30分間にわたつて与えた。この研究の
所見は表１に総括され、それには種々の腫瘍と正
常組織との間に一様に高い有意差（0.8PH単位）
が示される。
【表】 実施例 ダウノマイシン−抗体免疫結合体 酸無水物変性ダウノマイシン（ADM）の調整 ダウノマイシン（DM）〔シグマ・ケミカル社
（Sigma ChemicalCo.，St.Louis，MO）製〕12
mgを氷冷水に溶解し、シス−アコニツト酸無水物
12mgを含む３mlジオキサンの溶液を滴加した。PH
を0.5N−NaOHの添加により9.0に調整した。混
合物を15分間かきまぜ、その後PHを0.5N−HC
の添加により７に低下させた。溶液（ADM溶
液）をさらに１時間かきまぜた。この誘導体を
「ADM」と称した。 遊離（未変性）DMと変性DM（ADM）との割
合はアセトン：クロロホルム：酢酸（17：３：
１）の混合物上で薄層クロマトグラフイーを用い
て評価した。遊離薬物の「Rf」は約0.1であり、
スペーサーDM（以下ADM）のそれは約0.5であ
つた。分光法はDMおよびADMがともに475nm
および280nmに吸光度ピークを有したことを示し
た（第３図）。 抗体−ダウノマイシン免疫結合体の調製 L6抗体（ATCCNo.HB8677）をリン酸塩緩衝食
塩水（PBS）、PH７、に溶解し、上記のように調
製したADM溶液0.6mlをPBS0.8ml中のL6抗体10
mgに滴加した。次に１−エチル−３−（３−ジメ
チルアミノプロピル）カルボジイド塩酸塩
（EDC）10mgを加え、混合物を４℃で、7.0のPHで
３時間保持した。次いで混合物をセフアデツクス
Ｇ−50カラム（38×1.8cm）上に装填し、１ml分
画を捕集した。第１図に示すように、薬物の黄色
を示す抗体−薬物結合体は分画16およよび17中に
溶出し、遊離DMは分画35〜42中に溶出した。結
合反応の収率は７〜10％で、３：１のDM分子毎
抗体分子の比が得られた。 ここに参照されるガリークス（Garriques）ほ
か、前掲、のPAP操作に従う免疫組織学による
試験を行なつて結合体のL6抗原を発現する腫瘍
に結合する能力を調べた。試験は結合体の免疫反
応性が維持されたことを示したが、それは天然抗
体より弱かつた。これらの試験に次いでボーミイ
ア（Beaumier）ほか、ジヤーナル・オブ・ニユ
ークリア・メデイシン（J.Nuclear Med.）、27、
0.824（1986）に記載された方法を用いて細胞結合
検定した。原免疫反応性の約80％が保持された。
ゲル電気泳動（７％SDS）は結合したタンパク質
の１バンドのみを示した。このバンドは非修飾
IgG（MW、150K）のバンドに等しく、第２図、
結合体の大部分がモノマー状態を保持し、重合し
なかつたことを示す。 精製した生成物の吸収スペクトルは370nmに新
ピークを示した（第３図）。このピークは共有結
合がDMとL6抗体との間の結合に形成されたこと
を示す。 細胞を含まない媒質中の低PHにおける免疫結合体
からのダウノマイシンの遊離 精製した免疫結合体を４つの異なるPH：PH４、
５、６および７、のクエン酸塩−リン酸塩緩衝液
と混合し、その後混合物を37℃でインキユベート
し、種々の時間間隔で１mlを取り出した。結合体
から遊離したDMを分離するために、10000ドル
トンの分子量に濾過カツトオフを有するセントリ
コン（Contricon）−10フイルタ−〔アミコン
（Amicon，Danvers，MA）製〕を通して結合体
を濾過し、その後上澄みの吸光度を遊離DM
（475nmで吸収する）の存在について調べた。第
４図はL6抗体よりはむしろ、結合体のために容
易に利用できるモデルとして役立つヒトIgGに対
するDMの結合により調製した結合体で得られた
データを示す。第４図はPH４または５で24時間の
インキユベーシヨン後にDMの30〜40％が結合体
から遊離されたことを示す。PH６でDMの約15％
が遊離した。中性PHで有意な遊離が認められなか
つた。 培養細胞系に対するダウノマイシンの細胞毒性 L6抗体に結合できる外植ヒト肺癌2981〔オンコ
ゲン（Oncogen，Seattle，WA）製〕の細胞お
よび結合できない黒色腫Ｍ−2669〔オンコゲン
（Oncogen，Seattle，WA）製〕の細胞による3
〔Ｈ〕チオジン取り込みを抑制するDMの能力を
測定した。第５図に示すように、遊離DMは0.5μ
ｇ／ml以下の低用量においても非常に有効であつ
た。細胞毒性は第６図に示すように、薬物との単
に16時間のインキユベーシヨン後に認められた。 腫瘍細胞に対する抗体の結合 ここに免液結合体の形成に用いた抗体、L6、
並びに他の抗体96.5は５〜７のPHの範囲内で腫瘍
細胞（肺癌および黒色腫）に結合する能力を示す
（第７図）。従つて、抗体の結合は腫瘍組織中に認
められるPHによりおそらく抑制されないであろう
（表１）。 実施例 アミド結合したダウノマイシン抗体免疫結合体
スクシネート化ADMの調製 本発明の免疫結合体の抗体に結合する化学療法
薬の量を最大化するためにADM溶液を実施例
に記載したように調製した。ADM溶液４mlにＮ
−ヒドロキシスクシンイミド〔フルカ（Fluka，
Basel，Switzerland）製〕10mgおよびEDC5mgを
加えた。この混合物を室温で24時間（PH５）かき
まぜてスクシネート化生成物（ADM−SUC）を
作つた。 抗体に対する結合 ADM−SUC1.0mlをL6抗体（PBS緩衝液中５
mg／ml）mlに加えた。PHを1M−NaOHで8.5に調
製した。混合物を４℃で24時間インキユベート
し、次いでＧ−50セフアデツクスカラムを用いて
精製した。免疫結合体は実施例に記載したよう
に分離され、抗体とダウノマイシンとの間にアミ
ド結合を含む。反応は次のように示すことができ
る：
【化】
【化】 結合体収率はこの実施例における反応に対して
高く、DMと抗体との10：１の比が得られた。 実施例 アルブミンスペーサーを用いるダウノマイシン
−抗体免疫結合体 抗体の変性 抗体L6（５mg/ml）１mlにSPDPの溶液（６mg/
mlエタノール）63μを加え、混合物を室温で30
分間インキユベートして抗体のリシンアミノ酸を
変性した。次いでSPDP変性抗体を、O.M酢酸ナ
トリウム溶液（PH4.5）で予め洗浄したPD−10
〔フアルマシア（Pharmacia，Sweden）製〕ク
ロマトグラフイーカラムで精製した。溶出したピ
ークを次いでジチオトレイトール（DTT）
（0.5M）0.24mlで10分間還元した。 ダウノマイシンに対するアルブミンの結合 ヒト血清アルブミン（HSA）１mlを酸無水物
変性ダウノマイシン（ADM）溶液（実施例に
記載したように調製）0.65mlに加えた。 EDC20mgを混合物に加えてDM−HSA複合体を
形成させ４℃で20時間インキユベートした。複合
体形成ADM−HSAを次いでＧ−50セフアデツク
スカラムで精製した。ADM−HSAとのモル比は
７：１であつた。 ADM−HSAの変性 ADM−HSA溶液をSPDP溶液（５mg／５ml−
エタノール）とともに室温で30分間インキユベー
トしてSPDP変性（ADM−HSA）を形成し、次
いでそれをPD−10カラムで精製した。 結 合 次いで還元したSPDP変性L6抗体とSPDP変性
ADM−HSAとを混合してアルブミンスペーサー
によりアルブミンに結合したダウノマイシンの免
疫結合体を形成させた。Ｄとアルブミンとの比は
約７：１であつた。反応は次のとおりであつた： L6 抗体＋SPDP→L6−SPDP ―――→ DTTL6−SPDP−SH ADM＋HSA→ADMM−HSA＋SPDP→ADM−HSA−SPDP ADM−HSA−SPDP＋L6−SPDP−SH→ ADM−HSA−L6 免疫結合体 実施例 ポリＬ−リシンスペーサーを用いたダウノマイ
シン−抗体免疫結合体 酸無水物変性ダウノマイシン（ADM）の調製 ダウノマイシン（DM）〔シグマ・ケミカル社
（Sigma Chemical Co.，St.Louis，MO）製〕 16mgを氷冷水1.5mlに溶解した。シス−アコニツ
ト酸無水物16mgを溶解ダウノマイシンに徐々に加
えた。PHを0.5−NaOHの添加により9.0に調整し
た。混合物を15時間かきまぜ、次いでPHをHC
の添加により３に低下させた。溶液を低温（４
℃）で15分間かきまぜた。次いで４℃で15分間
3000rpmで遠心分離することによりペレツトを分
離させた。ペレツトをPBS1mg中に再懸濁し、PH
を約８に調整した。この誘導体は「ADM」と称
した。 ダウノマイシンに対するポリＬ−リシンの結合 ポリＬ−リシン（PLS）〔シグマ・ケミカル社
（Sigma Chemical Co.St.Louis，MO）製〕、
MW53000、10mgにADM溶液、PH７、0.67mlを加
えた。次いで反応混合物にEDC20mgを加えた。
混合物を４℃で20時間かきまぜ、次いで変性した
PLS（ADM−PLS）を実施例に記載したよう
にＧ−50セフアデツクスカラムで精製した。
ADMの70％以上が溶出したPLSと結合した。 ダウノマイシン−ポリＬ−リシン−抗体免疫結
合体の調製 L6抗体のチオール化（L6−SH） L6抗体10mgをPBS1mlに溶解した。次いでPHを
1N−HCで6.5に調製した。Ｓ−アセチルメル
カプトコハク酸無水物溶液（SACA）（ストツ
ク：乾燥ジメチルホルムアミド0.1ml中試薬12.6
mg）40μを抗体溶液に加えた。ジメチルホルム
アミドは分子ふるい〔アルドリツチ社（Aldrich
Company，Milwaukee，WI）製〕で新たに乾燥
した。チオール化は25℃で30分間行なつた。次い
で次の試薬：0.1Mトリス−HC、PH７、0.1ml、
0.1M EDTA、PH７、10μ、および1Mヒドロキ
シルアミン、PH７、0.1ml、を加えた。混合物を
30℃で５分間インキユベートし、次いでＧ−25セ
フアデツクスカカラム（25×1.8cm）上に装填し
た。カラムは5mM−EDTAを含むリン酸塩緩衝
液0.1M、PH６で予め洗浄した。変性された抗体
の分画を捕集し、プールし、0.3mlの容積に濃縮
した。 PLS−ADMのマレイミド反応 PLS−ADM複合体（PH7.2）１mlにスルホスク
シンイミジル−４−（Ｎ−マレイミドメチル）シ
クロヘキサン−１−カルボキシラート溶液（マレ
イミド試薬、「ME」）（乾燥ジメチルホルムアミ
ド50μ当りマレイミド試薬17mg）25μを滴加
した。混合物を30℃で30分間インキユベートし
た。次いでそれをセフアデツクスＧ−25カラム
（12×1.8cm）上に装填し、PBSで溶離した。変性
（PLS−ADM−ME）を含む分画をプールし、0.6
mlの容積に濃縮した。 L6抗体に対するADM−PLSの結合および結合
体の精製 変性したL6（L6−SH）0.3mlに変性したPLS−
ADM−ME0.6mlを滴加した。PHを6.2に調整し
た。次いで窒素を混合物中へ３分間パージした。
混合物を密封管中で30℃で１時間インキユベート
した。次いで２−エチルマレイミド２mgを加えて
抗体上の過剰の−SH基をブロツクした。反応は
30℃で20分間続けた。L6−PLS−ADM結合体を
飽和（55％）硫酸アンモニウム溶液による沈降に
より精製した（４℃で30分）。次いで試料を４℃
で10分間9000×ｇで回転し、形成されたペレツト
は結合体を含有した。ペレツトをPBS緩衝液0.5
ml中に再懸濁した。PHを7.5に調整した。この方
法の使用により達成されたモル比は各抗体分子に
対しダウノマイシン18〜25分子であつた。精製し
た結合体を次に腫瘍細胞に対する結合および細胞
毒性について試験した。 反応は次のとおりであつた： L6 抗体＋SACA→L6−SHPLS＋ADM→PLS−ADM ―――→ （ME）PLS −ADM−MEPLS−ADM−ME＋L6−SH→ L6−PLS−ADM 免疫結合体 癌腫細胞系に対するL6−PLS−ADM免疫結合
体の結合 上記のように調整した免疫結合体L6−PLS−
ADMの腫瘍細胞に対する結合を試験した。結合
は天然および結合L6抗体両方の種々の量を腫瘍
（転移性結腸癌）細胞系3347〔オンコゲン
（Oncogen，Seattle，WA）製〕とともにインキ
ユベートし、L6の蛍光誘導体〔フルオレセイン
イソチオシアネート（FITC）〕（FITC−L6）10
mgを用いて置換した。結合の抑制水準は導入され
た「寒冷」抗体の量の関数として比較した。免疫
結合体および天然L6抗体は同様の結合曲線を生
じた。非特異的抗体（Ig2a）、p1.17（ATCCNo.
TIB10）に対する結合体は結合を示さかつた。こ
れらのデータは第８図に示される。 L6−PLS−ADM免疫結合体の細胞毒性 L6−PLS−ADM免疫結合体をその腫瘍細胞の
増殖抑制に対する潜在力について試験した。２つ
の抑制検定：(1)3〔Ｈ〕チミジンおよび(2)コロニー
検定、を用いた。両検定はよく相関した。これら
のデータは第９図および第１０図に総括されてい
る。免疫結合体は５μg/ml（薬物濃度基準）の阻
害定数でPH７〜7.5でも毒性であつた。しかし、
結合体は遊離薬物より毒性が少なかつた：DM
（0.2μg/ml）およびADM（２μg/ml）。結合体を低
PH（PH６）にさらしたとき、毒性は中性PH中より
15〜25％高く、遊離ADM毒性に類似した。L6抗
体単独はこれらの条件のもとで抑制しなかつた。 実施例 生体内のL6−PLS−ADM免疫結合体の局在 実施例に記載したように調製したL6−PLS
−ADM結合体の非結合L6単クローン性抗体に比
較した腫瘍中に局在する能力をヒト腫瘍異種移植
片を保持するヌードマウス中で試験した。各19マ
ウスの２つの無作為群を用いた。各マウスは試験
の始めに約７×７mmの２つのL6抗原陽性両側皮
下ヒト転移肺癌腫瘍（H2981）〔オンコゲン
（Oncogen，Seattle，WA）製〕を保持した。腫
瘍の生存率を移植後２週間各腫瘍の拡大の観察に
より測定した。 ボーミイア（Beaumier）ほか、ジヤーナル・
オブ・ニユークリア・メデイシン（J.Nuc.
Med.）、27、p.824（1986）に記載されたクロラミ
ンＴ法により125Iを用い特異的L6抗体に標識し
た。各マウスに約5μCiのL6抗体（比活性約10μC
ｉ／μｇ）を50μgL6または50μg非標識L6−PLS−
ADM結合体とともに与えた。さらに、各マウス
はまたクラーク（Clark）ほか、PNAS、83、
p.4494（1986）に記載された同亜種（IgG2a）の
比較できる131I−標識非特異的単クローン性抗体
（IF5）〔オンコゲン（Oncogen，Seattle，WA）
を50μgの非標識1F5抗体とともにi.v.共投与して
与えた。 選んだ時点（６、24、48、72および120時間）
に各群から４動物を麻酔させ、オービタルプレク
サス（orbital plexus）を通して放血し、剖検し
た。選んだ組識、腫瘍、血液、肝臓、脾臓および
腎臓を取り出し、計量し、125Iと131Iとの間を判別
できるガンマ線計数器中で計数した。 血液クリアランスは第１１図にみられるよう
に、L6−PLS−ADM結合体はL6または1F5抗体
に比較して遅かつた。これはおそらくL6−PLS
−ADM結合体の増加大きさにより生じたのであ
ろう。 最も有意には、腫瘍取り込みは、第１２図にみ
られるように、L6−抗体およびL6−PLS−ADM
結合体の両方が類似し、それはともに非特異的
1F5抗体の取り込みより非常に高かつた。ピーク
取り込みは48〜72時間であつた。L6抗体および
L6−PLS−ADM結合体に対する局在指数（L.I.）
は72時間にピークになり、それぞれ3.3および2.2
の値であつた（第１３図）。正常組識、腎臓およ
び肝臓による取り込みは第１４図および第１５図
に示されるように、調製物すべてに対して同様で
あつた。 前記実施例は腫瘍関連抗原と反応性の抗体と化
学療法薬との結合についてPH感受性免疫結合体を
本発明により形成し、免疫結合体が腫瘍細胞膜を
交差することを要することなく、腫瘍細胞を標的
するのに使用できることを示す。これら実施例に
よつて示されるように、免疫結合体はヒト腫瘍組
識のPH範囲（PH４〜６）内で不安定である。実施
例は25分子までの化学療法薬が抗体毎分子に結合
されたことを示すけれども、薬物と抗体とのより
高い割合を上記操作に用いて、またはこれらの操
作の観点を化学療法薬と抗体との結合が最大にな
るように変えることにより達成することができ
る。 記載した免疫結合体は、低PHのために結合体が
活性化学療法薬を遊離し、次いでそが腫瘍細胞中
へ拡散できる腫瘍組織に達するまで比較的小さい
毒性を有する。 表１に示した前記研究で得られた腫瘍組織に対
するPH値から、本発明に記載した免疫結合体の効
力はPH6.0〜PH6.7の範囲内で遊離できる化学療法
薬の水準に依存しよう。さらに、免疫結合体の注
射用量の小割合のみが腫瘍近傍に達する（担体と
して作用する、すなわち抗体が到達する腫瘍関連
抗原に対する抗体の親和性の関数である腫瘍部位
を標的にする、能力に依存する）ので、抗体分子
に結合したできるだけ多くの分子の化学療法薬、
好ましくは抗体の分子当り10〜50分子の薬物を有
する結合体を得ることが必要である。 さらに腫瘍組織領域中の生体内非平衡PH状態の
間に薬物の部分が結合体から解離し、腫瘍細胞に
より取り込まれることができるので、多量の化学
療法薬が最終的に抗体から遊離され一定用量の免
疫結合体に対して腫瘍に薬物の高い有効治療濃度
を生ぜしめるであろう。化学療法において腫瘍組
織中に生ずる低PHを利用する本発明の免疫結合体
の能力はそのような組織のPHを、例えば大用量の
グルコースの静脈内注入により一層低下させるこ
とにより高めることができる。〔アシユバン
（Ashby）、ランセツト（Lancet）、August6、
p312〜313（1966）〕。 上記結果は本発明の免疫結合体を動物モデル中
の腫瘍中に局在でき、治療のために化学療法薬を
ヒト中の腫瘍に向けさせるのに有用であることが
できることを示す。 本発明の免疫結合体の化学療法有効性は実験的
に例えば免疫結合体の一連の用量を腫瘍保持動物
モデル中へ投与することにより決定することがで
きる。次いで腫瘍細胞の破壊程度を測定すること
により免疫結合体の有効性を評価することができ
る。さらにに、腫瘍が抗原陽性および抗原陰性腫
瘍細胞の混合集団からなる場合に、非抗原保持腫
瘍細胞（すなわち、「抗原陰性」細胞）の数に関
する観察は本発明の免疫結合体を用いる腫瘍組織
中の薬物の化学療法有効濃度の達成に必要な抗原
陽性細胞の数に関する情報を与えることができ
る。さらに、免疫結合体はヒトに対する投与の標
準操作を用いて放射性標識し、例えば治療効果の
達成に必要な免疫結合体の用量毎グラムを決定す
ることができる。 本発明は好ましい態様に関連して記載されたけ
れども、当業者は前記記載の閲読後ここに示した
組成物および方法に対し種々の変更、等価物の置
換および改変を行なうことができよう。従つて特
許証により付与される保護は特許請求の範囲およ
びその等価物によつてのみ限定されるものであ
る。
【図面の簡単な説明】
第１図は抗体−ダウノマイシン免疫結合体反応
混合物のゲルクロマトグラフを示すグラフであ
り、第２図は変性および非変性抗体の電気泳動
（SDS）ゲルを示すものであり、第３図はダウノ
マイシンの遊離形態および結合体形態の吸収スペ
クトルであり、第４図はヒトIgGに結合したダウ
ノマイシンの遊離の動力学におけるPHの変化の効
果を示すグラフであり、第５図は細胞により取り
込まれた3〔Ｈ〕チミジンにより測定した種々の用
量の遊離ダウノマイシンの黒色腫細胞に対する毒
性の時間に対するグラフであり、第６図は細胞に
より取り込まれた3〔Ｈ〕チミジンにより測定した
種々の用量のダウノマイシンの肺癌細胞に対する
毒性の時間に対するグラフであり、第７図は肺癌
細胞に対するL6抗体および黒色腫細胞に対する
96.5抗体の種々のPHにおける結合を示すグラフで
あり、第８図はL6−ポリＬ−リシン−ダウノマ
イシン（L6−PLS−ADM）結合体の固定化細胞
系3347に対する競合的結合検定のグラフであり
（M285は結合体を示す）、第９図はL6−PLS−
ADM結合体の3347細胞におけるチミジン抑制を
示するグラフであり、第１０図はPH６およびPH７
におけるL6−PLS−ADM結合体の毒性を示すコ
ロニー抑制のグラフフであり（M214は結合体を
示す）、第１１図はヌードマウス中のL6−PLS−
ADM結合体の血液クリアランスを示すグラフで
あり、このグラフは結合体の血液クリアランスを
天然L6抗体および非特異的抗体1F5と比較する、
第１２図はL6−PLS−ADM結合体、L6抗体単独
および非特異的1F5抗体の生体内腫瘍取り込みの
グラフであり、第１３図は時間の関数としてL6
−PLS−ADM結合体および天然L6抗体に対する
局在指数（L.I.）のグラフであり、第１４図はL6
−PLS−ADM結合体、L6抗体単独および1F5非
特異的抗体の生体内腎臓取り込みのグラフであ
り、第１５図はL6−PLS−ADM結合体、L6抗体
単独および1F5非特異的抗体の生体内肝臓取り込
みのグラフである。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 １ 抗腫瘍性化学療法薬を腫瘍組織に供給するPH
    感受性免疫結合体であつて、 抗体結合の後は内部に取り込まれない腫瘍関連
    抗原と反応性の抗体、及び 抗腫瘍性化学療法薬、 を含み、抗体と抗腫瘍性化学療法薬とがスペーサ
    ー基で結合されており、該スペーサー基が腫瘍組
    織中５〜７のPHにおいて解離する前記抗体と前記
    抗腫瘍性化学療法薬との間の不安定な結合を与え
    る、前記免疫結合体。 ２ 抗体が多クローン性血清から分離される、特
    許請求の範囲第１項記載の免疫結合体。 ３ 抗体が単クローン性抗体である、特許請求の
    範囲第１項記載の免疫結合体。 ４ 単クローン性抗体がL6であり、腫瘍関連抗
    原がL6抗原である、特許請求の範囲第３項記載
    の免疫結合体。 ５ スペーサー基が次の構造： 【式】 （式中、Ｘは化合療法薬のアミノ基であり、Ｙは
    抗体のリシンアミノ酸のアミノ基である） を含む、特許請求の範囲第１項記載の免疫結合
    体。 ６ スペーサー基が次の構造： 【式】 （式中、Ｘは化学療法薬のアミノ基であり、Ｚ
    は、少くとも２個のリシンアミノ酸を含む少くと
    も３個のアミノ酸の配列であり、Ｙは抗体のリシ
    ンアミノ酸のアミノ基である）を含む、特許請求
    の範囲第１項記載の免疫結合体。 ７ Ｚがポリアミノ酸、ポリＬ−リシンまたはヒ
    ト血清アルブミンである、特許請求の範囲第６項
    記載の免疫結合体。 ８ 次の構造： 【式】 （式中、Ｘは抗腫瘍性化学療法薬であり、Ｌはリ
    シンであり、Ｚは少くとも３個のアミノ酸を含む
    スペーサー基であり、Ｙは内部に取り込まれない
    腫瘍関連抗原に結合するリシンを含む抗体であ
    り、前記抗腫瘍性化学療法薬と前記抗体の間の結
    合は５〜７のPH範囲において不安定である）を含
    む、特許請求の範囲第１項記載の免疫結合体。 ９ スペーサー基がジアゾベンジル結合であり、
    次の構造： 【化】 （式中、Ｘは抗腫瘍性化療法薬であり、Ｙは抗体
    である） を含む、特許請求の範囲第１項記載の免疫結合
    体。 １０ 次の構造： 【式】 （式中、Ｘは抗腫瘍性化学療法薬であり、Ｙは抗
    体である） を含む、特許請求の範囲第１項記載の免疫結合
    体。 １１ 抗腫瘍性化学療法薬が、ダウノマイシン、
    マイトマイシンＣ、アドリアマイシンまたはメト
    トレキサートである、特許請求の範囲第１項〜第
    １０項のいずれかに記載の免疫結合体。 １２ 内部に取り込まれない腫瘍関連抗原と反応
    性の抗体と抗腫瘍性化学療法薬を含む、５〜７の
    PH範囲で不安定なPH感受性免疫結合体を生成する
    方法であつて、 (a) アコニツト酸無水物を抗腫瘍性化学療法薬の
    利用可能なカルボキシル基に結合させて遊離カ
    ルボキシル基を有する第１中間体を形成させ、 (b) 前記第１中間体の遊離カルボキシル基をＮ−
    ヒドロキシスクシンイミドおよびカルボジイミ
    ド試薬と反応させて第２中間体を形成させ、 (c) 腫瘍関連抗原に特異的な内部に取り込まれな
    い抗体を抗体の利用可能なリシンのアミノ基に
    より前記第２中間体の前記酸無水物のカルボキ
    シル基に結合させてアミド結合を形成させるこ
    とからなり、これにより免疫結合体がPHが５〜
    ７の範囲の腫瘍組織中で解離することができ、
    前記腫瘍組織中に前記抗腫瘍性化学療法薬を遊
    離させて腫瘍組織中の腫瘍及び非腫瘍細胞を死
    滅させることができる、 前記方法。 １３ 腫瘍関連抗原に特異的な内部に取り込まれ
    ない抗体と抗腫瘍性化学療法薬との間のPH感受性
    免疫結合体を生成させる方法であつて、 (a) アコニツト酸無水物を抗腫瘍性化学療法薬の
    利用可能なカルボキシル基に結合させて遊離カ
    ルボキシル基を有する第１中間体を形成させ、 (b) 前記第１中間体の遊離カルボキシル基を、第
    １活性化試薬を用いて少なくとも３つのアミノ
    酸からなるリシン含有アミノ酸スペーサー基の
    アミノ基と反応させて第２中間体を形成させ、 (c) 腫瘍関連抗原に特異的な内部に取り込まれな
    い抗体のリシンアミノ酸のアミノ基を第２活性
    化試薬と反応させて変性された抗体を形成さ
    せ、 (d) 前記変性された抗体を還元し、 (e) 前記第２中間体を前記還元された変性抗体と
    反応させて、少なくとも３つのアミノ酸を有す
    るスペーサー基を介して腫瘍関連抗原に特異的
    な内部に取り込まれない抗体に結合した抗腫瘍
    性化学療法薬を含む免疫結合体を形成させるこ
    とからなり、 これにより免疫結合体がPHが５〜７の範囲の腫瘍
    組織中で解離することができ、前記腫瘍組織中に
    前記抗腫瘍性化学療法薬を遊離させて腫瘍組織中
    の腫瘍及び非腫瘍細胞を死滅させることができ
    る、前記方法。 １４ 第１活性化試薬がカルボジイミド試薬であ
    る、特許請求の範囲第１３項記載の方法。 １５ カルボジイミド試薬が１−エチル−３−
    （３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド
    塩酸塩である、特許請求の範囲第１４項記載の方
    法。 １６ 第２活性化試薬がＮ−スクシンイミジル３
    −（２−ピリジルジチオ）プロピオナートである、
    特許請求の範囲第１３項記載の方法。 １７ 腫瘍関連抗原に特異的な内部に取り込まれ
    ない抗体と抗腫瘍性化学療法薬との間のPH感受性
    免疫結合体を生成させる方法であつて、 (a) アコニツト酸無水物を抗腫瘍性化学療法薬の
    利用可能なカルボキシル基に結合させて遊離カ
    ルボキシル基を有する第１中間体を形成させ、 (b) 前記第１中間体の遊離カルボキシル基を、第
    １活性化試薬を用いて少なくとも３つのアミノ
    酸からなるリシン含有アミノ酸スペーサー基の
    アミノ基と反応させて第２中間体を形成させ、 (c) 前記第２中間体を第２活性化試薬と反応させ
    て変性された第２中間体を形成させ、 (d) 腫瘍関連抗原に特異的な内部に取り込まれな
    い抗体のリシンアミノ酸をチオール化剤と反応
    させて変性された抗体を形成させ、 (e) 前記変性された第２中間体を変性された抗体
    と反応させて少なくとも３つのアミノ酸からな
    るスペーサー基を介して腫瘍関連抗原に特異的
    な内部に取り込まれない抗体に結合した抗腫瘍
    性化学療法薬を含む免疫結合体を形成させるこ
    とからなり、 これにより免疫結合体がPHが５〜７の範囲の腫瘍
    組織中で解離することができ、前記腫瘍組織中に
    前記抗腫瘍性化学療法薬を遊離させて腫瘍組織中
    の腫瘍及び非腫瘍細胞を死滅させることができ
    る、前記方法。 １８ スペーサー基がポリＬ−リシンである、特
    許請求の範囲第１７項記載の方法。 １９ 第１活性化試薬が１−エチル−３−（３−
    ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩
    である、特許請求の範囲第１８項記載の方法。 ２０ 第２活性化試薬がマレイミド試薬である、
    特許請求の範囲第１８項記載の方法。 ２１ マレイミド試薬がスルホスクシンイミジル
    −４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン
    −１−カルボキシラートである、特許請求の範囲
    第２０項記載の方法。 ２２ チオール化剤が５−アセチルメルカプトコ
    ハク酸無水物である、特許請求の範囲第１８項記
    載の方法。 ２３ 抗腫瘍性化学療法薬がダウノマイシン、マ
    イトマイシンＣ、アドリアマイシンおよびメトト
    レキサートからなる群から選ばれる、特許請求の
    範囲第１２項〜第２２項のいずれかに記載の方
    法。 ２４ 腫瘍関連抗原に特異的な内部に取り込まれ
    ない抗体がL6単クローン性抗体である、特許請
    求の範囲第１２項〜第２２項のいずれかに記載の
    方法。
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