JPH06233692A - γ−サイクロデキストリンの増収方法 - Google Patents
γ−サイクロデキストリンの増収方法Info
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- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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Abstract
(57)【要約】
【目的】本発明はγ−サイクロデキストリン・グルカノ
トランスフェラーゼを使用しγ−サイクロデキストリン
のより安価な工業的製造法を提供する。 【構成】澱粉にγ−サイクロデキストリン・グルカノト
ランスフェラーゼを作用させてγ−サイクロデキストリ
ンとβ−サイクロデキストリンを生成せしめる反応液中
にエチルアルコールを添加することにより、β−サイク
ロデキストリンの生成を抑制しつつγ−サイクロデキス
トリンの生成を促進することを特徴とするγ−サイクロ
デキストリンの増収方法。
トランスフェラーゼを使用しγ−サイクロデキストリン
のより安価な工業的製造法を提供する。 【構成】澱粉にγ−サイクロデキストリン・グルカノト
ランスフェラーゼを作用させてγ−サイクロデキストリ
ンとβ−サイクロデキストリンを生成せしめる反応液中
にエチルアルコールを添加することにより、β−サイク
ロデキストリンの生成を抑制しつつγ−サイクロデキス
トリンの生成を促進することを特徴とするγ−サイクロ
デキストリンの増収方法。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、澱粉にγ−サイクロデ
キストリン・グルカノトランスフェラーゼ(以下γ−CG
Taseという)を作用させ、γ−サイクロデキストリン
(以下γ-CDという)とβ−サイクロデキストリン
(以下β−CDという)を生成せしめる反応液中にエチ
ルアルコールを添加することによって、β−CDの生成
を抑制しつつγ−CDの生成を促進することを特徴とす
る総サイクロデキストリン(以下T−CDという)の増
収を伴なわず、且つγ−CDの収量を高めるところのγ
−CDの増収方法に関する。
キストリン・グルカノトランスフェラーゼ(以下γ−CG
Taseという)を作用させ、γ−サイクロデキストリン
(以下γ-CDという)とβ−サイクロデキストリン
(以下β−CDという)を生成せしめる反応液中にエチ
ルアルコールを添加することによって、β−CDの生成
を抑制しつつγ−CDの生成を促進することを特徴とす
る総サイクロデキストリン(以下T−CDという)の増
収を伴なわず、且つγ−CDの収量を高めるところのγ
−CDの増収方法に関する。
【0002】サイクロデキストリン(以下CDという)
は、6〜8個のグルコース分子がα−1,4−グルコシド
結合で環状に結合した非還元性のマルトオリゴ糖であ
り、その分子空洞内に種々の物質を取り込んで包接化合
物を形成し、取り込まれた物質の物理、化学的性質を変
化させることができ、そのため、酸化しやすい化合物や
光分解し易い化合物の安定化、揮発性化合物の不揮発
化、難溶性化合物の可溶化、臭気性物質の無臭化が可能
であり、医薬品、化粧品、農薬及び食品への広い分野で
利用されている。
は、6〜8個のグルコース分子がα−1,4−グルコシド
結合で環状に結合した非還元性のマルトオリゴ糖であ
り、その分子空洞内に種々の物質を取り込んで包接化合
物を形成し、取り込まれた物質の物理、化学的性質を変
化させることができ、そのため、酸化しやすい化合物や
光分解し易い化合物の安定化、揮発性化合物の不揮発
化、難溶性化合物の可溶化、臭気性物質の無臭化が可能
であり、医薬品、化粧品、農薬及び食品への広い分野で
利用されている。
【0003】CDには、グルコース分子数が6個からな
るα−CD、グルコース分子数が7個からなるβ−C
D、そしてグルコース分子数が8個からなるγ−CDが
よく知られているが、このうちγ−CDは、溶解度が大
きく、且つ包接能力にも優れているので、医薬品、化粧
品、農薬及び食品工業等への利用が、より有用視されて
いる。
るα−CD、グルコース分子数が7個からなるβ−C
D、そしてグルコース分子数が8個からなるγ−CDが
よく知られているが、このうちγ−CDは、溶解度が大
きく、且つ包接能力にも優れているので、医薬品、化粧
品、農薬及び食品工業等への利用が、より有用視されて
いる。
【0004】
【従来の技術】これまでに知られたγ−CGTaseとして
は、バチルス属の僅かな菌株に知られているに過ぎな
い。例えば、バチルス・エスピー(Bacillus sp.)AL6
のCGTase(特開昭61-274680号)、バチルス・エスピー
(Bacillus sp.)No.313のCGTase(特開昭62-25976号)
及びバチルス・フィルムス(Bacillus firmus)290-3の
CGTase〔New trend in cyclodextrins and derivatives
25頁(1991年),サンテ(Sante)社(フランス,パ
リ)〕が挙げられるのみであり、それ故、γ−CDの産
業上の利用に関してはほとんど行われていない。
は、バチルス属の僅かな菌株に知られているに過ぎな
い。例えば、バチルス・エスピー(Bacillus sp.)AL6
のCGTase(特開昭61-274680号)、バチルス・エスピー
(Bacillus sp.)No.313のCGTase(特開昭62-25976号)
及びバチルス・フィルムス(Bacillus firmus)290-3の
CGTase〔New trend in cyclodextrins and derivatives
25頁(1991年),サンテ(Sante)社(フランス,パ
リ)〕が挙げられるのみであり、それ故、γ−CDの産
業上の利用に関してはほとんど行われていない。
【0005】そこで、本発明者らは、先に、γ−CGTase
生産能を有する微生物を見いだし、該微生物を培養し、
培養物中にγ−CGTaseを産生せしめ、これを採取すると
共に、該酵素を使用してのγ−CDの工業的製造法を提
供した(特願平4-293801号及び特願平4-293802号)。
生産能を有する微生物を見いだし、該微生物を培養し、
培養物中にγ−CGTaseを産生せしめ、これを採取すると
共に、該酵素を使用してのγ−CDの工業的製造法を提
供した(特願平4-293801号及び特願平4-293802号)。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】しかし、本発明者らが
先に見いだしたγ−CGTaseを用いてγ−CDをより安価
に提供するため、基質の澱粉濃度を高めたり、酵素の作
用時間を長くするとγ−CD量が減少し、β−CD量が
増加するという新たな問題点を生じた。
先に見いだしたγ−CGTaseを用いてγ−CDをより安価
に提供するため、基質の澱粉濃度を高めたり、酵素の作
用時間を長くするとγ−CD量が減少し、β−CD量が
増加するという新たな問題点を生じた。
【0007】
【課題を解決するための手段】そこで、本発明者らは、
この問題を解決するために、高濃度の澱粉にγ−CGTase
を作用させてγ−CDとβ−CDを生成せしめる反応液
中にエチルアルコールを添加することによってγ−CD
の生成をより促進させることを試みたところ、エチルア
ルコールの添加は、単にγ−CDの生成を促進させるだ
けの効果ではなく、β−CDの生成を抑制しつつγ−C
Dの生成を促進させる効果、即ち、T−CDの増収を伴
うことなくγ−CDの生成を促進せしめる効果であるこ
とを新たに見いだした。
この問題を解決するために、高濃度の澱粉にγ−CGTase
を作用させてγ−CDとβ−CDを生成せしめる反応液
中にエチルアルコールを添加することによってγ−CD
の生成をより促進させることを試みたところ、エチルア
ルコールの添加は、単にγ−CDの生成を促進させるだ
けの効果ではなく、β−CDの生成を抑制しつつγ−C
Dの生成を促進させる効果、即ち、T−CDの増収を伴
うことなくγ−CDの生成を促進せしめる効果であるこ
とを新たに見いだした。
【0008】これまでに、α−CGTaseを用いて反応液中
にエチルアルコールを添加することによるα−CDの増
収法が報告されている(特公昭60-25118号)が、しか
し、この方法は、同時に生成するβ−CDやγ−CDを
抑制しないところの、換言すれば、T−CDの増収を伴
うところのα−CDの増収法であった。
にエチルアルコールを添加することによるα−CDの増
収法が報告されている(特公昭60-25118号)が、しか
し、この方法は、同時に生成するβ−CDやγ−CDを
抑制しないところの、換言すれば、T−CDの増収を伴
うところのα−CDの増収法であった。
【0009】又、γ−CGTaseを用いて反応液中にエチル
アルコールを添加することによるγ−CDの増収法も報
告されている(特開昭62-25976号)が、この方法におい
ても副生するβ−CDの生成抑制については何も記載さ
れていない。
アルコールを添加することによるγ−CDの増収法も報
告されている(特開昭62-25976号)が、この方法におい
ても副生するβ−CDの生成抑制については何も記載さ
れていない。
【0010】そもそも、β-CDは、水に対する溶解度
が他のCD(α−CD及びγ−CD)に比べて極端に低
く、結晶化し易いため、他のCD中に混在するとCD水
飴等の商品価値を減ずるので、その生成は、できるだけ
抑制されることが望ましい。
が他のCD(α−CD及びγ−CD)に比べて極端に低
く、結晶化し易いため、他のCD中に混在するとCD水
飴等の商品価値を減ずるので、その生成は、できるだけ
抑制されることが望ましい。
【0011】従って、β−CDの生成を抑制し、γ−C
Dの増収方法を提供する本願発明は、有益且つ新規なγ
−サイクロデキストリンの増収方法である。
Dの増収方法を提供する本願発明は、有益且つ新規なγ
−サイクロデキストリンの増収方法である。
【0012】そして、本発明者らは、上記の知見をもと
に、鋭意検討の結果、T−CDの増収を伴わない、即ち
β−CDの生成を抑制しつつγ−CDの生成を増加させ
るところのγ−CDの増収方法を確立することにより、
本発明を完成したものである。
に、鋭意検討の結果、T−CDの増収を伴わない、即ち
β−CDの生成を抑制しつつγ−CDの生成を増加させ
るところのγ−CDの増収方法を確立することにより、
本発明を完成したものである。
【0013】本発明において使用されるγ−CGTaseは、
澱粉に作用し、γ−CDとβ−CDを生成するものであ
ればいずれをも使用できるが、好ましくは、本発明者ら
が先に土壌から分離したブレビバクテリウム・エスピー
及びバチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用す
ることができる。
澱粉に作用し、γ−CDとβ−CDを生成するものであ
ればいずれをも使用できるが、好ましくは、本発明者ら
が先に土壌から分離したブレビバクテリウム・エスピー
及びバチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用す
ることができる。
【0014】新たに土壌から発見、分離されたブレビバ
クテリウム・エスピー菌株の菌学的性質は下記の通りで
ある。
クテリウム・エスピー菌株の菌学的性質は下記の通りで
ある。
【0015】(1)形態 細胞の形および大きさ:細い桿菌(菌端は膨張する) 0.5〜0.7×5.0〜20μ 細胞の多形成の有無:認められる 運動性の有無:あり(周鞭毛) 胞子の有無:形成しない グラム染色性:陰性 抗酸性:陰性
【0016】(2)各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:発育はやや弱い、全縁半透明の粘性
あるコロニーで表面平滑(φ2〜3mm) 肉汁寒天斜面培養:発育やや弱い、直状、生色、半透明 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、底部に粘性の
菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
あるコロニーで表面平滑(φ2〜3mm) 肉汁寒天斜面培養:発育やや弱い、直状、生色、半透明 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、底部に粘性の
菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
【0017】(3)生理学的性質 酸素に対する態度:偏性好気性 カタラーゼ:陽性 オキシダーゼ:陰性 OFテスト:発酵、酸化共になし ブドウ糖からのガスの産生:陰性 インドールの生成:陰性 硝酸塩の還元:陽性 チロシンの加水分解:陰性 澱粉の加水分解:陽性 カゼインの加水分解:陰性 ゼラチンの加水分解:陽性 ジヒドロキシアセトン:陰性 フェニルアラニンデアミナーゼ:陰性 エッグヨーク反応:陰性 0.001%リゾチーム生育:陰性 ウレアーゼ:陰性 TSI寒天培地(斜面の酸):赤/赤 硫化水素の生成:陰性 マッコンキー培地の生育:陰性 YMA培地の生育:陰性 ビスマスブイヨンでの生育:陰性 3−ケト−乳酸の生成:陰性 食塩に対する生育性:(0.5〜15%で陽性、20%で陰
性) 生育温度の範囲:16〜45℃(最適は36〜38℃) 生育pHの範囲:8.0〜11.6(最適は8.5〜9.0) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース − マンニット − サリシン − 澱粉 −
性) 生育温度の範囲:16〜45℃(最適は36〜38℃) 生育pHの範囲:8.0〜11.6(最適は8.5〜9.0) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース − マンニット − サリシン − 澱粉 −
【0018】そして、本菌をBergey's Manual of Syste
matic Bacteriology,第2巻(1986)を参照し、同定し
た結果、本菌はグラム陰性、チトクロムオキシダーゼ陰
性、周鞭毛、無胞子、糖より酸非産生等の諸性質を有す
ることから、アシネトバクター(Acinetobater)、リゾ
ビウム(Rhizobium)、アグロバクテリウム(Agrobacter
ium)、ナトロノバクテリウム(Natronobacterium)、
バチルス(Bacillus)等のいずれの属にも相当せず、コ
リネフォームタイプ(Coryneform Type)に属することか
ら、その内の一つの属であるブレビバクテリウム(Brev
ibacterium)属に属するものとした。
matic Bacteriology,第2巻(1986)を参照し、同定し
た結果、本菌はグラム陰性、チトクロムオキシダーゼ陰
性、周鞭毛、無胞子、糖より酸非産生等の諸性質を有す
ることから、アシネトバクター(Acinetobater)、リゾ
ビウム(Rhizobium)、アグロバクテリウム(Agrobacter
ium)、ナトロノバクテリウム(Natronobacterium)、
バチルス(Bacillus)等のいずれの属にも相当せず、コ
リネフォームタイプ(Coryneform Type)に属することか
ら、その内の一つの属であるブレビバクテリウム(Brev
ibacterium)属に属するものとした。
【0019】そして又、上記の菌学的性質を有する本菌
株は、既知のブレビバクテリウム(Brevibacterium)属
の何れの種にも属さず、新菌種であり、本菌株をブレビ
バクテリウム・エスピー(Brevibacterium sp.)No.960
5と命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研
菌寄第13141号(FERM P-13141)として寄託した。
株は、既知のブレビバクテリウム(Brevibacterium)属
の何れの種にも属さず、新菌種であり、本菌株をブレビ
バクテリウム・エスピー(Brevibacterium sp.)No.960
5と命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研
菌寄第13141号(FERM P-13141)として寄託した。
【0020】又、新たに土壌から発見、分離されたバチ
ルス・メガテリウム菌株の菌学的性質は下記の通りであ
る。
ルス・メガテリウム菌株の菌学的性質は下記の通りであ
る。
【0021】(1)形態 細胞の形および大きさ:太い桿菌(菌端は膨張する) 1.1〜1.4×4.0〜6.0μ 運動性の有無:あり(周鞭毛) 胞子の有無:あり(細胞は膨張しない) グラム染色性:陽性 抗酸性:陰性
【0022】(2)各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:発育は良好、全縁不透明の光沢ある
コロニーで表面平滑(φ1.0〜1.5 mm) 肉汁寒天斜面培養:発育良好、直状、台状、白色、バタ
ー 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、液面に微かに
菌蓋、底部に粘性の菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
コロニーで表面平滑(φ1.0〜1.5 mm) 肉汁寒天斜面培養:発育良好、直状、台状、白色、バタ
ー 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、液面に微かに
菌蓋、底部に粘性の菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
【0023】(3)生理学的性質 酸素に対する態度:偏性好気性 カタラーゼ:陽性 オキシダーゼ:陰性 OFテスト:発酵、酸化共になし ブドウ糖からのガスの産生:陰性 インドールの生成:陰性 硝酸塩の還元:陽性(亜硝酸塩も還元) チロシンの加水分解:陽性 澱粉の加水分解:陽性 カゼインの加水分解:陰性 ゼラチンの加水分解:陽性 ジヒドロキシアセトン:陰性 フェニルアラニンデアミナーゼ:陰性 クエン酸の利用:陽性 エッグヨーク反応:陰性 0.001%リゾチーム生育:陰性 ウレアーゼ:陰性 TSI寒天培地(斜面の酸):黄/赤 硫化水素の生成:陰性 マッコンキー培地の生育:陰性 食塩に対する生育性:(0.5〜7.0%で陽性、10%で陰
性) 生育温度の範囲:12〜39℃(最適は31〜33℃) 生育pHの範囲:7.7〜11.6(最適は8.5) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース +(ガス発生せず) マンニット +(ガス発生せず) サリシン + 澱粉 +
性) 生育温度の範囲:12〜39℃(最適は31〜33℃) 生育pHの範囲:7.7〜11.6(最適は8.5) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース +(ガス発生せず) マンニット +(ガス発生せず) サリシン + 澱粉 +
【0024】そして、本菌をBergey' Manual of Determ
inative Bacteriology,第8版(1974)、Bergey' Manu
al of Systematic Bacteriology,第2巻(1986)及び
『TheGenus Bacillus』U.S.Department of Agriculture
Handbook No.427 p-160 を参照し、同定したところ、
本菌はグラム陽性、周鞭毛、有胞子であることから、バ
チルス(Bacillus)属に属する菌であることがわかり、
さらに、本菌は、上記の菌学的諸性質からバチルス・メ
ガテリウム(Bacillus megaterium)、バチルス・セレ
ウス(Bacillus cereus)、バチルス・フィルムス(Bac
illus firmus)のいずれかに属することが分かるが、し
かし、バチルス・フィルムス(Bacillusfirmus)とは、
菌幅とクエン酸利用で異なり、バチルス・セレウス(Ba
cilluscereus)とは、エッグヨーク反応陰性、偏性好気
性、菌幅が大きいこと、及び食塩10%で生育しないこと
等で異なるので、本菌をバチルス・メガテリウム(Baci
llus megaterium)に属するものとし、本菌株をバチル
ス・メガテリウム(Bacillus megaterium)No.9604と命
名した。本菌株は工業技術院微生物工業技術研究所に微
工研菌寄第13142号(FERM P-13142)として寄託されて
いる。
inative Bacteriology,第8版(1974)、Bergey' Manu
al of Systematic Bacteriology,第2巻(1986)及び
『TheGenus Bacillus』U.S.Department of Agriculture
Handbook No.427 p-160 を参照し、同定したところ、
本菌はグラム陽性、周鞭毛、有胞子であることから、バ
チルス(Bacillus)属に属する菌であることがわかり、
さらに、本菌は、上記の菌学的諸性質からバチルス・メ
ガテリウム(Bacillus megaterium)、バチルス・セレ
ウス(Bacillus cereus)、バチルス・フィルムス(Bac
illus firmus)のいずれかに属することが分かるが、し
かし、バチルス・フィルムス(Bacillusfirmus)とは、
菌幅とクエン酸利用で異なり、バチルス・セレウス(Ba
cilluscereus)とは、エッグヨーク反応陰性、偏性好気
性、菌幅が大きいこと、及び食塩10%で生育しないこと
等で異なるので、本菌をバチルス・メガテリウム(Baci
llus megaterium)に属するものとし、本菌株をバチル
ス・メガテリウム(Bacillus megaterium)No.9604と命
名した。本菌株は工業技術院微生物工業技術研究所に微
工研菌寄第13142号(FERM P-13142)として寄託されて
いる。
【0025】これらの菌株を利用して、γ−CGTaseを製
造するためには、当該微生物が良好に生育し、酵素を順
調に生産するために必要な炭素源、窒素源、無機塩、必
要な栄養源等を含有する合成培地又は天然培地中でこれ
を培養する。炭素源としては、澱粉又はその組成画分、
焙焼デキストリン、加工澱粉、澱粉誘導体、物理処理澱
粉及びα−澱粉等の炭水化物が使用できる。具体例とし
ては、可溶性澱粉、トウモロコシ澱粉、馬鈴薯澱粉、甘
藷澱粉、デキストリン、アミロペクチン、アミロース等
があげられる。
造するためには、当該微生物が良好に生育し、酵素を順
調に生産するために必要な炭素源、窒素源、無機塩、必
要な栄養源等を含有する合成培地又は天然培地中でこれ
を培養する。炭素源としては、澱粉又はその組成画分、
焙焼デキストリン、加工澱粉、澱粉誘導体、物理処理澱
粉及びα−澱粉等の炭水化物が使用できる。具体例とし
ては、可溶性澱粉、トウモロコシ澱粉、馬鈴薯澱粉、甘
藷澱粉、デキストリン、アミロペクチン、アミロース等
があげられる。
【0026】窒素源としては、ポリペプトン、カゼイ
ン、肉エキス、酵母エキス、コーンスティープリカー或
いは大豆又は大豆粕などの抽出物等の有機窒素源物質、
硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機塩窒素
化合物、グルタミン酸等のアミノ酸類が挙げられる。
ン、肉エキス、酵母エキス、コーンスティープリカー或
いは大豆又は大豆粕などの抽出物等の有機窒素源物質、
硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機塩窒素
化合物、グルタミン酸等のアミノ酸類が挙げられる。
【0027】そして無機塩類としては、リン酸1カリウ
ム、リン酸2カリウム等のリン酸塩、硫酸マグネシウム
等のマグネシウム塩、塩化カルシウム等のカルシウム
塩、炭酸ナトリウム等のナトリウム塩等が用いられる。
ム、リン酸2カリウム等のリン酸塩、硫酸マグネシウム
等のマグネシウム塩、塩化カルシウム等のカルシウム
塩、炭酸ナトリウム等のナトリウム塩等が用いられる。
【0028】培養は、振盪培養若しくは、通気攪拌培養
等の好気的条件下に於いて、培地をpH7〜11の範囲、好
ましくはpH8〜10の範囲に調製し、温度10〜40℃の範
囲、好ましくは、25〜37℃で実施するのが望ましいが、
この条件以外であっても微生物が生育し、目的とする酵
素を生成する条件であれば特に制限されない。
等の好気的条件下に於いて、培地をpH7〜11の範囲、好
ましくはpH8〜10の範囲に調製し、温度10〜40℃の範
囲、好ましくは、25〜37℃で実施するのが望ましいが、
この条件以外であっても微生物が生育し、目的とする酵
素を生成する条件であれば特に制限されない。
【0029】このようにして培養を行うと、通常は培養
を開始して2〜7日間で培養液中にγ−CGTaseが生産さ
れる。次いで、培養液から菌体を除去し、培養ろ液を
得、限外ろ過膜で脱塩、濃縮した後、硫安塩析又は有機
溶媒沈降等により酵素を回収する。こうして得られた粗
製のγ−CGTaseは、そのままでもCD生成反応に使用で
きるが、必要に応じて、更にDEAE−セファデックス
(商品名、ファルマシア社製)による吸着溶出、セファ
デックス(商品名、ファルマシア社製)による分画等に
より精製して使用する。
を開始して2〜7日間で培養液中にγ−CGTaseが生産さ
れる。次いで、培養液から菌体を除去し、培養ろ液を
得、限外ろ過膜で脱塩、濃縮した後、硫安塩析又は有機
溶媒沈降等により酵素を回収する。こうして得られた粗
製のγ−CGTaseは、そのままでもCD生成反応に使用で
きるが、必要に応じて、更にDEAE−セファデックス
(商品名、ファルマシア社製)による吸着溶出、セファ
デックス(商品名、ファルマシア社製)による分画等に
より精製して使用する。
【0030】こうして得られたブレビバクテリウム・エ
スピー由来のγ−CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べ
る。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:8〜9 至適温度:45℃付近 安定pH:pH6〜8 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、本酵素は、カルシウム塩の添加により安定化さ
れ、20mMの塩化カルシウム添加により45℃の処理におい
ても、100%の残存活性を示した。
スピー由来のγ−CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べ
る。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:8〜9 至適温度:45℃付近 安定pH:pH6〜8 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、本酵素は、カルシウム塩の添加により安定化さ
れ、20mMの塩化カルシウム添加により45℃の処理におい
ても、100%の残存活性を示した。
【0031】更に、バチルス・メガテリウム由来のγ−
CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べる。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:10 至適温度:40〜45℃ 安定pH:8〜9 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、10mMカルシウム塩の添加により、45℃、30分処
理でも100%の残存活性を示す。
CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べる。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:10 至適温度:40〜45℃ 安定pH:8〜9 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、10mMカルシウム塩の添加により、45℃、30分処
理でも100%の残存活性を示す。
【0032】尚、これら酵素の活性測定法は、基質〔1.
5%可溶性澱粉、0.1M アトキンス・パンチン(Atkins
& Pantin)緩衝液(pH10.0)〕0.5mlに酵素液0.05mlを
添加し、40℃にて30分間反応した。その後、0.1N塩酸
5mlを加え反応を停止し、0.5mlを抜き取り、ヨウ素液
5mlを加え、660nmでの吸光度の減少を測定した。1単
位は、本条件下、1分間に660nmの吸光度を1%減少さ
せる酵素量とした。
5%可溶性澱粉、0.1M アトキンス・パンチン(Atkins
& Pantin)緩衝液(pH10.0)〕0.5mlに酵素液0.05mlを
添加し、40℃にて30分間反応した。その後、0.1N塩酸
5mlを加え反応を停止し、0.5mlを抜き取り、ヨウ素液
5mlを加え、660nmでの吸光度の減少を測定した。1単
位は、本条件下、1分間に660nmの吸光度を1%減少さ
せる酵素量とした。
【0033】これらのγ−CGTaseを澱粉に作用させ、γ
−CDを製造するには、例えば、先ず1〜30%の澱粉
(澱粉又はその組成画分、加工澱粉等を含む)を含有す
る水溶液にγ−CGTase(精製品又は粗製品)を0.5〜20
単位(乾燥澱粉1g当たり)加えてpH4〜10、温度20〜
70℃にて、1〜50時間酵素反応を行う。尚、この澱粉
は、必要に応じて予め加熱し、液化処理を施して用い
る。
−CDを製造するには、例えば、先ず1〜30%の澱粉
(澱粉又はその組成画分、加工澱粉等を含む)を含有す
る水溶液にγ−CGTase(精製品又は粗製品)を0.5〜20
単位(乾燥澱粉1g当たり)加えてpH4〜10、温度20〜
70℃にて、1〜50時間酵素反応を行う。尚、この澱粉
は、必要に応じて予め加熱し、液化処理を施して用い
る。
【0034】こうしてγ−CDを工業的に製造すること
が可能となったのであるが、より多量にγ−CDを製造
するためには、基質の澱粉濃度をできるだけ高くし、且
つ反応時間を長くする必要があるが、この場合、γ−C
Dの量が減少し、β−CDの量が増加するという問題点
を有していることが分かった。
が可能となったのであるが、より多量にγ−CDを製造
するためには、基質の澱粉濃度をできるだけ高くし、且
つ反応時間を長くする必要があるが、この場合、γ−C
Dの量が減少し、β−CDの量が増加するという問題点
を有していることが分かった。
【0035】そこで、本発明者らは、より安価にγ−C
Dを製造するために、鋭意検討の結果、高濃度澱粉下又
は長時間作用下にγ−CGTaseを反応させる反応液中に、
エチルアルコールを添加することによって、β−CDの
生成を抑制しつつ、γ−CDの生成を促進せしめること
で、この問題を解決したのである。
Dを製造するために、鋭意検討の結果、高濃度澱粉下又
は長時間作用下にγ−CGTaseを反応させる反応液中に、
エチルアルコールを添加することによって、β−CDの
生成を抑制しつつ、γ−CDの生成を促進せしめること
で、この問題を解決したのである。
【0036】この場合のエチルアルコールの添加量は、
何れの酵素を何れの基質濃度にて使用する場合にも、基
質溶液に対して終濃度で5〜30%を添加するのが好ま
しい。
何れの酵素を何れの基質濃度にて使用する場合にも、基
質溶液に対して終濃度で5〜30%を添加するのが好ま
しい。
【0037】そして又、反応の際に添加するエチルアル
コールの添加時期としては、反応中であれば特に制限は
ないが、反応の初期、例えば、反応と同時が好ましい。
コールの添加時期としては、反応中であれば特に制限は
ないが、反応の初期、例えば、反応と同時が好ましい。
【0038】以下に試験例及び実施例にて本発明を具体
的に説明するが、本発明はこれらによって何等限定され
るものではない。
的に説明するが、本発明はこれらによって何等限定され
るものではない。
【0039】試験例1 2〜15%の可溶性澱粉〔0.01Mマッキルバイン(McIl
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム・エス
ピー由来及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTa
se酵素液5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加
し、40℃にて3〜44時間反応せしめて各種CDの生成率
を調べた。そして、ブレビバクテリウム・エスピー由来
のγ−CGTaseを使用した場合の各種CDの生成率を表1
に、バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用し
た場合の各種CDの生成率を表2にそれぞれ示す。尚、
各種CDの生成率は基質に対する重量比で示される。
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム・エス
ピー由来及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTa
se酵素液5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加
し、40℃にて3〜44時間反応せしめて各種CDの生成率
を調べた。そして、ブレビバクテリウム・エスピー由来
のγ−CGTaseを使用した場合の各種CDの生成率を表1
に、バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用し
た場合の各種CDの生成率を表2にそれぞれ示す。尚、
各種CDの生成率は基質に対する重量比で示される。
【0040】
【表1】
【0041】
【表2】
【0042】表1及び表2より明かなように、何れの酵
素も、基質濃度が2%の低濃度ではγ−CDを収率よく
生成するが基質濃度を高くしたり、又基質濃度が2%で
あっても反応時間を長くするとγ−CD量が減少し、β
−CD量が増加することが分かる。
素も、基質濃度が2%の低濃度ではγ−CDを収率よく
生成するが基質濃度を高くしたり、又基質濃度が2%で
あっても反応時間を長くするとγ−CD量が減少し、β
−CD量が増加することが分かる。
【0043】試験例2 5〜10%の可溶性澱粉〔0.01Mマッキルバイン(McIl
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム属由来
及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTase酵素液
5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加し、40℃
にて22時間反応せしめてCDを生成せしめるにあたり、
基質溶液当たり5〜30%量のエチルアルコールを添加
することにより各種CDの生成促進効果を調べた。その
結果、ブレビバクテリウム・エスピー由来のγ−CGTase
を使用した場合の各種CDの生成率は表3に、バチルス
・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用した場合の各種
CDの生成率は表4にそれぞれ示される。尚各種CDの
生成率は基質に対する重量比で示される。
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム属由来
及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTase酵素液
5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加し、40℃
にて22時間反応せしめてCDを生成せしめるにあたり、
基質溶液当たり5〜30%量のエチルアルコールを添加
することにより各種CDの生成促進効果を調べた。その
結果、ブレビバクテリウム・エスピー由来のγ−CGTase
を使用した場合の各種CDの生成率は表3に、バチルス
・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用した場合の各種
CDの生成率は表4にそれぞれ示される。尚各種CDの
生成率は基質に対する重量比で示される。
【0044】
【表3】
【0045】
【表4】
【0046】表3及び表4中のEtOHは、エチルアル
コールを示す。
コールを示す。
【0047】表3及び表4より明かなように、何れの酵
素の場合も、終濃度として5〜30%のエチルアルコー
ルの添加によって、γ−CDの生成が促進され、一方β
−CDの生成が抑制されることが分かる。これより、エ
チルアルコールの添加によって高濃度基質においてもβ
−CDの生成を抑制しつつ、γ−CDを収率よく生成す
ることが可能となった。
素の場合も、終濃度として5〜30%のエチルアルコー
ルの添加によって、γ−CDの生成が促進され、一方β
−CDの生成が抑制されることが分かる。これより、エ
チルアルコールの添加によって高濃度基質においてもβ
−CDの生成を抑制しつつ、γ−CDを収率よく生成す
ることが可能となった。
【0048】
実施例1 可溶性澱粉 1.0%、ポリペプトン 0.5%、酵母エキス
0.25%、硫酸アンモニウム0.1%、K2HPO4 0.05%、MgSO
4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後ブレビバクテリウム・エ
スピー(Brevibacterium sp.)No.9605(FERM-P 1314
1)を接種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培
養菌体を遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この
除菌液を限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)
にかけ、濃縮液30ml(CGTase活性は6.7単位/mlであっ
た。)を得た。ついで、20%エタノールを含む10%可
溶性澱粉溶液〔0.01Mマッキルバイン(McIlvaine)緩
衝液(pH7.0)〕10mlにブレビバクテリウム由来のγ−C
GTaseを5.0単位(乾燥澱粉1g当たり)加え、40℃にて
20時間反応させた。反応により得られた、γ−CD及び
β−CDの生成率(基質に対する重量比で示す)は、そ
れぞれ16.5%及び3.5%であり、α−CDの生成は、認
められなかった。
0.25%、硫酸アンモニウム0.1%、K2HPO4 0.05%、MgSO
4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後ブレビバクテリウム・エ
スピー(Brevibacterium sp.)No.9605(FERM-P 1314
1)を接種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培
養菌体を遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この
除菌液を限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)
にかけ、濃縮液30ml(CGTase活性は6.7単位/mlであっ
た。)を得た。ついで、20%エタノールを含む10%可
溶性澱粉溶液〔0.01Mマッキルバイン(McIlvaine)緩
衝液(pH7.0)〕10mlにブレビバクテリウム由来のγ−C
GTaseを5.0単位(乾燥澱粉1g当たり)加え、40℃にて
20時間反応させた。反応により得られた、γ−CD及び
β−CDの生成率(基質に対する重量比で示す)は、そ
れぞれ16.5%及び3.5%であり、α−CDの生成は、認
められなかった。
【0049】実施例2 可溶性澱粉 1.0%、ポリペプトン 0.5%、酵母エキス
0.25%、硫酸アンモニウム 0.1%、K2HPO4 0.05%、MgS
O4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後バチルス・メガテリウム
(Bacillus megaterium)No.9604(FERM-P 13141)を接
種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培養菌体を
遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この除菌液を
限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)にかけ、
濃縮液30ml(CGTase活性は8.7単位/mlであった。)を
得た。ついで、25%エタノールを含む5%可溶性澱粉
溶液〔0.01M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)〕10mlに
バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを5.0単位
(乾燥澱粉1g当たり)加え、55℃にて20時間反応させ
た。反応により得られたγ−CD及びβ−CDの生成率
(基質に対する重量比で示す)は、それぞれ16.3%及び
3.2%であり、α−CDの生成は、認められなかった。
0.25%、硫酸アンモニウム 0.1%、K2HPO4 0.05%、MgS
O4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後バチルス・メガテリウム
(Bacillus megaterium)No.9604(FERM-P 13141)を接
種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培養菌体を
遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この除菌液を
限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)にかけ、
濃縮液30ml(CGTase活性は8.7単位/mlであった。)を
得た。ついで、25%エタノールを含む5%可溶性澱粉
溶液〔0.01M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)〕10mlに
バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを5.0単位
(乾燥澱粉1g当たり)加え、55℃にて20時間反応させ
た。反応により得られたγ−CD及びβ−CDの生成率
(基質に対する重量比で示す)は、それぞれ16.3%及び
3.2%であり、α−CDの生成は、認められなかった。
【0050】
【発明の効果】本発明は、高濃度澱粉にγ−CGTaseを作
用させてγ−CD及びβ−CDを生成せしめる反応液中
にエチルアルコールを添加して、β−CDの生成を抑制
しつつγ−CDの生成を促進せしめることによって、T
−CDの増収を伴わずに、γ−CDを安価に工業的に製
造する方法を可能にしたものである。
用させてγ−CD及びβ−CDを生成せしめる反応液中
にエチルアルコールを添加して、β−CDの生成を抑制
しつつγ−CDの生成を促進せしめることによって、T
−CDの増収を伴わずに、γ−CDを安価に工業的に製
造する方法を可能にしたものである。
─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成6年2月3日
【手続補正1】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】発明の詳細な説明
【補正方法】変更
【補正内容】
【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、澱粉にγ−サイクロデ
キストリン・グルカノトランスフェラーゼ(以下γ−CG
Taseという)を作用させ、γ−サイクロデキストリン
(以下γ-CDという)とβ−サイクロデキストリン
(以下β−CDという)を生成せしめる反応液中にエチ
ルアルコールを添加することによって、β−CDの生成
を抑制しつつγ−CDの生成を促進することを特徴とす
る総サイクロデキストリン(以下T−CDという)の増
収を伴なわず、且つγ−CDの収量を高めるところのγ
−CDの増収方法に関する。
キストリン・グルカノトランスフェラーゼ(以下γ−CG
Taseという)を作用させ、γ−サイクロデキストリン
(以下γ-CDという)とβ−サイクロデキストリン
(以下β−CDという)を生成せしめる反応液中にエチ
ルアルコールを添加することによって、β−CDの生成
を抑制しつつγ−CDの生成を促進することを特徴とす
る総サイクロデキストリン(以下T−CDという)の増
収を伴なわず、且つγ−CDの収量を高めるところのγ
−CDの増収方法に関する。
【0002】サイクロデキストリン(以下CDという)
は、6〜8個のグルコース分子がα−1,4−グルコシド
結合で環状に結合した非還元性のマルトオリゴ糖であ
り、その分子空洞内に種々の物質を取り込んで包接化合
物を形成し、取り込まれた物質の物理、化学的性質を変
化させることができ、そのため、酸化しやすい化合物や
光分解し易い化合物の安定化、揮発性化合物の不揮発
化、難溶性化合物の可溶化、臭気性物質の無臭化が可能
であり、医薬品、化粧品、農薬及び食品への広い分野で
利用されている。
は、6〜8個のグルコース分子がα−1,4−グルコシド
結合で環状に結合した非還元性のマルトオリゴ糖であ
り、その分子空洞内に種々の物質を取り込んで包接化合
物を形成し、取り込まれた物質の物理、化学的性質を変
化させることができ、そのため、酸化しやすい化合物や
光分解し易い化合物の安定化、揮発性化合物の不揮発
化、難溶性化合物の可溶化、臭気性物質の無臭化が可能
であり、医薬品、化粧品、農薬及び食品への広い分野で
利用されている。
【0003】CDには、グルコース分子数が6個からな
るα−CD、グルコース分子数が7個からなるβ−C
D、そしてグルコース分子数が8個からなるγ−CDが
よく知られているが、このうちγ−CDは、溶解度が大
きく、且つ包接能力にも優れているので、医薬品、化粧
品、農薬及び食品工業等への利用が、より有用視されて
いる。
るα−CD、グルコース分子数が7個からなるβ−C
D、そしてグルコース分子数が8個からなるγ−CDが
よく知られているが、このうちγ−CDは、溶解度が大
きく、且つ包接能力にも優れているので、医薬品、化粧
品、農薬及び食品工業等への利用が、より有用視されて
いる。
【0004】
【従来の技術】これまでに知られたγ−CGTaseとして
は、バチルス属の僅かな菌株に知られているに過ぎな
い。例えば、バチルス・エスピー(Bacillus sp.)AL6
のCGTase(特開昭61-274680号)、バチルス・エスピー
(Bacillus sp.)No.313のCGTase(特開昭62-25976号)
及びバチルス・フィルムス(Bacillus firmus)290-3の
CGTase〔New trend in cyclodextrins and derivatives
25頁(1991年),サンテ(Sante)社(フランス,パ
リ)〕が挙げられるのみであり、それ故、γ−CDの産
業上の利用に関してはほとんど行われていない。
は、バチルス属の僅かな菌株に知られているに過ぎな
い。例えば、バチルス・エスピー(Bacillus sp.)AL6
のCGTase(特開昭61-274680号)、バチルス・エスピー
(Bacillus sp.)No.313のCGTase(特開昭62-25976号)
及びバチルス・フィルムス(Bacillus firmus)290-3の
CGTase〔New trend in cyclodextrins and derivatives
25頁(1991年),サンテ(Sante)社(フランス,パ
リ)〕が挙げられるのみであり、それ故、γ−CDの産
業上の利用に関してはほとんど行われていない。
【0005】そこで、本発明者らは、先に、γ−CGTase
生産能を有する微生物を見いだし、該微生物を培養し、
培養物中にγ−CGTaseを産生せしめ、これを採取すると
共に、該酵素を使用してのγ−CDの工業的製造法を提
供した(特願平4-293801号及び特願平4-293802号)。
生産能を有する微生物を見いだし、該微生物を培養し、
培養物中にγ−CGTaseを産生せしめ、これを採取すると
共に、該酵素を使用してのγ−CDの工業的製造法を提
供した(特願平4-293801号及び特願平4-293802号)。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】しかし、本発明者らが
先に見いだしたγ−CGTaseを用いてγ−CDをより安価
に提供するため、基質の澱粉濃度を高めたり、酵素の作
用時間を長くするとγ−CD量が減少し、β−CD量が
増加するという新たな問題点を生じた。
先に見いだしたγ−CGTaseを用いてγ−CDをより安価
に提供するため、基質の澱粉濃度を高めたり、酵素の作
用時間を長くするとγ−CD量が減少し、β−CD量が
増加するという新たな問題点を生じた。
【0007】
【課題を解決するための手段】そこで、本発明者らは、
この問題を解決するために、高濃度の澱粉にγ−CGTase
を作用させてγ−CDとβ−CDを生成せしめる反応液
中にエチルアルコールを添加することによってγ−CD
の生成をより促進させることを試みたところ、エチルア
ルコールの添加は、単にγ−CDの生成を促進させるだ
けの効果ではなく、β−CDの生成を抑制しつつγ−C
Dの生成を促進させる効果、即ち、T−CDの増収を伴
うことなくγ−CDの生成を促進せしめる効果であるこ
とを新たに見いだした。
この問題を解決するために、高濃度の澱粉にγ−CGTase
を作用させてγ−CDとβ−CDを生成せしめる反応液
中にエチルアルコールを添加することによってγ−CD
の生成をより促進させることを試みたところ、エチルア
ルコールの添加は、単にγ−CDの生成を促進させるだ
けの効果ではなく、β−CDの生成を抑制しつつγ−C
Dの生成を促進させる効果、即ち、T−CDの増収を伴
うことなくγ−CDの生成を促進せしめる効果であるこ
とを新たに見いだした。
【0008】これまでに、α−CGTaseを用いて反応液中
にエチルアルコールを添加することによるα−CDの増
収法が報告されている(特公昭60-25118号)が、しか
し、この方法は、同時に生成するβ−CDやγ−CDを
抑制しないところの、換言すれば、T−CDの増収を伴
うところのα−CDの増収法であった。
にエチルアルコールを添加することによるα−CDの増
収法が報告されている(特公昭60-25118号)が、しか
し、この方法は、同時に生成するβ−CDやγ−CDを
抑制しないところの、換言すれば、T−CDの増収を伴
うところのα−CDの増収法であった。
【0009】又、γ−CGTaseを用いて反応液中にエチル
アルコールを添加することによるγ−CDの増収法も報
告されている(特開昭62-25976号)が、この方法におい
ても副生するβ−CDの生成抑制については何も記載さ
れていない。
アルコールを添加することによるγ−CDの増収法も報
告されている(特開昭62-25976号)が、この方法におい
ても副生するβ−CDの生成抑制については何も記載さ
れていない。
【0010】そもそも、β-CDは、水に対する溶解度
が他のCD(α−CD及びγ−CD)に比べて極端に低
く、結晶化し易いため、他のCD中に混在するとCD水
飴等の商品価値を減ずるので、その生成は、できるだけ
抑制されることが望ましい。
が他のCD(α−CD及びγ−CD)に比べて極端に低
く、結晶化し易いため、他のCD中に混在するとCD水
飴等の商品価値を減ずるので、その生成は、できるだけ
抑制されることが望ましい。
【0011】従って、β−CDの生成を抑制し、γ−C
Dの増収方法を提供する本願発明は、有益且つ新規なγ
−サイクロデキストリンの増収方法である。
Dの増収方法を提供する本願発明は、有益且つ新規なγ
−サイクロデキストリンの増収方法である。
【0012】そして、本発明者らは、上記の知見をもと
に、鋭意検討の結果、T−CDの増収を伴わない、即ち
β−CDの生成を抑制しつつγ−CDの生成を増加させ
るところのγ−CDの増収方法を確立することにより、
本発明を完成したものである。
に、鋭意検討の結果、T−CDの増収を伴わない、即ち
β−CDの生成を抑制しつつγ−CDの生成を増加させ
るところのγ−CDの増収方法を確立することにより、
本発明を完成したものである。
【0013】本発明において使用されるγ−CGTaseは、
澱粉に作用し、γ−CDとβ−CDを生成するものであ
ればいずれをも使用できるが、好ましくは、本発明者ら
が先に土壌から分離したブレビバクテリウム・エスピー
及びバチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用す
ることができる。
澱粉に作用し、γ−CDとβ−CDを生成するものであ
ればいずれをも使用できるが、好ましくは、本発明者ら
が先に土壌から分離したブレビバクテリウム・エスピー
及びバチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用す
ることができる。
【0014】新たに土壌から発見、分離されたブレビバ
クテリウム・エスピー菌株の菌学的性質は下記の通りで
ある。
クテリウム・エスピー菌株の菌学的性質は下記の通りで
ある。
【0015】(1)形態 細胞の形および大きさ:細い桿菌(菌端は膨張する) 0.5〜0.7×5.0〜20μ 細胞の多形成の有無:認められる 運動性の有無:あり(周鞭毛) 胞子の有無:形成しない グラム染色性:陰性 抗酸性:陰性
【0016】(2)各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:発育はやや弱い、全縁半透明の粘性
あるコロニーで表面平滑(φ2〜3mm) 肉汁寒天斜面培養:発育やや弱い、直状、生色、半透明 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、底部に粘性の
菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
あるコロニーで表面平滑(φ2〜3mm) 肉汁寒天斜面培養:発育やや弱い、直状、生色、半透明 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、底部に粘性の
菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
【0017】(3)生理学的性質 酸素に対する態度:偏性好気性 カタラーゼ:陽性 オキシダーゼ:陰性 OFテスト:発酵、酸化共になし ブドウ糖からのガスの産生:陰性 インドールの生成:陰性 硝酸塩の還元:陽性 チロシンの加水分解:陰性 澱粉の加水分解:陽性 カゼインの加水分解:陰性 ゼラチンの加水分解:陽性 ジヒドロキシアセトン:陰性 フェニルアラニンデアミナーゼ:陰性 エッグヨーク反応:陰性 0.001%リゾチーム生育:陰性 ウレアーゼ:陰性 TSI寒天培地(斜面の酸):赤/赤 硫化水素の生成:陰性 マッコンキー培地の生育:陰性 YMA培地の生育:陰性 ビスマスブイヨンでの生育:陰性 3−ケト−乳酸の生成:陰性 食塩に対する生育性:(0.5〜15%で陽性、20%で陰
性) 生育温度の範囲:16〜45℃(最適は36〜38℃) 生育pHの範囲:8.0〜11.6(最適は8.5〜9.0) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース − マンニット − サリシン − 澱粉 −
性) 生育温度の範囲:16〜45℃(最適は36〜38℃) 生育pHの範囲:8.0〜11.6(最適は8.5〜9.0) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース − マンニット − サリシン − 澱粉 −
【0018】そして、本菌をBergey's Manual of Syste
matic Bacteriology,第2巻(1986)を参照し、同定し
た結果、本菌はグラム陰性、チトクロムオキシダーゼ陰
性、周鞭毛、無胞子、糖より酸非産生等の諸性質を有す
ることから、アシネトバクター(Acinetobater)、リゾ
ビウム(Rhizobium)、アグロバクテリウム(Agrobacter
ium)、ナトロノバクテリウム(Natronobacterium)、
バチルス(Bacillus)等のいずれの属にも相当せず、コ
リネフォームタイプ(Coryneform Type)に属することか
ら、その内の一つの属であるブレビバクテリウム(Brev
ibacterium)属に属するものとした。
matic Bacteriology,第2巻(1986)を参照し、同定し
た結果、本菌はグラム陰性、チトクロムオキシダーゼ陰
性、周鞭毛、無胞子、糖より酸非産生等の諸性質を有す
ることから、アシネトバクター(Acinetobater)、リゾ
ビウム(Rhizobium)、アグロバクテリウム(Agrobacter
ium)、ナトロノバクテリウム(Natronobacterium)、
バチルス(Bacillus)等のいずれの属にも相当せず、コ
リネフォームタイプ(Coryneform Type)に属することか
ら、その内の一つの属であるブレビバクテリウム(Brev
ibacterium)属に属するものとした。
【0019】そして又、上記の菌学的性質を有する本菌
株は、既知のブレビバクテリウム(Brevibacterium)属
の何れの種にも属さず、新菌種であり、本菌株をブレビ
バクテリウム・エスピー(Brevibacterium sp.)No.960
5と命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研
菌寄第13141号(FERM P-13141)として寄託した。
株は、既知のブレビバクテリウム(Brevibacterium)属
の何れの種にも属さず、新菌種であり、本菌株をブレビ
バクテリウム・エスピー(Brevibacterium sp.)No.960
5と命名し、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研
菌寄第13141号(FERM P-13141)として寄託した。
【0020】又、新たに土壌から発見、分離されたバチ
ルス・メガテリウム菌株の菌学的性質は下記の通りであ
る。
ルス・メガテリウム菌株の菌学的性質は下記の通りであ
る。
【0021】(1)形態 細胞の形および大きさ:太い桿菌(菌端は膨張する) 1.1〜1.4×4.0〜6.0μ 運動性の有無:あり(周鞭毛) 胞子の有無:あり(細胞は膨張しない) グラム染色性:陽性 抗酸性:陰性
【0022】(2)各培地における生育状態 肉汁寒天平板培養:発育は良好、全縁不透明の光沢ある
コロニーで表面平滑(φ1.0〜1.5 mm) 肉汁寒天斜面培養:発育良好、直状、台状、白色、バタ
ー 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、液面に微かに
菌蓋、底部に粘性の菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
コロニーで表面平滑(φ1.0〜1.5 mm) 肉汁寒天斜面培養:発育良好、直状、台状、白色、バタ
ー 肉汁液体培養:培地は全体に薄く白濁し、液面に微かに
菌蓋、底部に粘性の菌泥沈殿がみられる。 リトマスミルク培養:変化しない
【0023】(3)生理学的性質 酸素に対する態度:偏性好気性 カタラーゼ:陽性 オキシダーゼ:陰性 OFテスト:発酵、酸化共になし ブドウ糖からのガスの産生:陰性 インドールの生成:陰性 硝酸塩の還元:陽性(亜硝酸塩も還元) チロシンの加水分解:陽性 澱粉の加水分解:陽性 カゼインの加水分解:陰性 ゼラチンの加水分解:陽性 ジヒドロキシアセトン:陰性 フェニルアラニンデアミナーゼ:陰性 クエン酸の利用:陽性 エッグヨーク反応:陰性 0.001%リゾチーム生育:陰性 ウレアーゼ:陰性 TSI寒天培地(斜面の酸):黄/赤 硫化水素の生成:陰性 マッコンキー培地の生育:陰性 食塩に対する生育性:(0.5〜7.0%で陽性、10%で陰
性) 生育温度の範囲:12〜39℃(最適は31〜33℃) 生育pHの範囲:7.7〜11.6(最適は8.5) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース +(ガス発生せず) マンニット +(ガス発生せず) サリシン + 澱粉 +
性) 生育温度の範囲:12〜39℃(最適は31〜33℃) 生育pHの範囲:7.7〜11.6(最適は8.5) 糖類からの酸生成の有無: L−アラビノース − キシロース − グルコース +(ガス発生せず) マンニット +(ガス発生せず) サリシン + 澱粉 +
【0024】そして、本菌をBergey' Manual of Determ
inative Bacteriology,第8版(1974)、Bergey' Manu
al of Systematic Bacteriology,第2巻(1986)及び
『TheGenus Bacillus』U.S.Department of Agriculture
Handbook No.427 p-160 を参照し、同定したところ、
本菌はグラム陽性、周鞭毛、有胞子であることから、バ
チルス(Bacillus)属に属する菌であることがわかり、
さらに、本菌は、上記の菌学的諸性質からバチルス・メ
ガテリウム(Bacillus megaterium)、バチルス・セレ
ウス(Bacillus cereus)、バチルス・フィルムス(Bac
illus firmus)のいずれかに属することが分かるが、し
かし、バチルス・フィルムス(Bacillusfirmus)とは、
菌幅とクエン酸利用で異なり、バチルス・セレウス(Ba
cilluscereus)とは、エッグヨーク反応陰性、偏性好気
性、菌幅が大きいこと、及び食塩10%で生育しないこと
等で異なるので、本菌をバチルス・メガテリウム(Baci
llus megaterium)に属するものとし、本菌株をバチル
ス・メガテリウム(Bacillus megaterium)No.9604と命
名した。本菌株は工業技術院微生物工業技術研究所に微
工研菌寄第13142号(FERM P-13142)として寄託されて
いる。
inative Bacteriology,第8版(1974)、Bergey' Manu
al of Systematic Bacteriology,第2巻(1986)及び
『TheGenus Bacillus』U.S.Department of Agriculture
Handbook No.427 p-160 を参照し、同定したところ、
本菌はグラム陽性、周鞭毛、有胞子であることから、バ
チルス(Bacillus)属に属する菌であることがわかり、
さらに、本菌は、上記の菌学的諸性質からバチルス・メ
ガテリウム(Bacillus megaterium)、バチルス・セレ
ウス(Bacillus cereus)、バチルス・フィルムス(Bac
illus firmus)のいずれかに属することが分かるが、し
かし、バチルス・フィルムス(Bacillusfirmus)とは、
菌幅とクエン酸利用で異なり、バチルス・セレウス(Ba
cilluscereus)とは、エッグヨーク反応陰性、偏性好気
性、菌幅が大きいこと、及び食塩10%で生育しないこと
等で異なるので、本菌をバチルス・メガテリウム(Baci
llus megaterium)に属するものとし、本菌株をバチル
ス・メガテリウム(Bacillus megaterium)No.9604と命
名した。本菌株は工業技術院微生物工業技術研究所に微
工研菌寄第13142号(FERM P-13142)として寄託されて
いる。
【0025】これらの菌株を利用して、γ−CGTaseを製
造するためには、当該微生物が良好に生育し、酵素を順
調に生産するために必要な炭素源、窒素源、無機塩、必
要な栄養源等を含有する合成培地又は天然培地中でこれ
を培養する。炭素源としては、澱粉又はその組成画分、
焙焼デキストリン、加工澱粉、澱粉誘導体、物理処理澱
粉及びα−澱粉等の炭水化物が使用できる。具体例とし
ては、可溶性澱粉、トウモロコシ澱粉、馬鈴薯澱粉、甘
藷澱粉、デキストリン、アミロペクチン、アミロース等
があげられる。
造するためには、当該微生物が良好に生育し、酵素を順
調に生産するために必要な炭素源、窒素源、無機塩、必
要な栄養源等を含有する合成培地又は天然培地中でこれ
を培養する。炭素源としては、澱粉又はその組成画分、
焙焼デキストリン、加工澱粉、澱粉誘導体、物理処理澱
粉及びα−澱粉等の炭水化物が使用できる。具体例とし
ては、可溶性澱粉、トウモロコシ澱粉、馬鈴薯澱粉、甘
藷澱粉、デキストリン、アミロペクチン、アミロース等
があげられる。
【0026】窒素源としては、ポリペプトン、カゼイ
ン、肉エキス、酵母エキス、コーンスティープリカー或
いは大豆又は大豆粕などの抽出物等の有機窒素源物質、
硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機塩窒素
化合物、グルタミン酸等のアミノ酸類が挙げられる。
ン、肉エキス、酵母エキス、コーンスティープリカー或
いは大豆又は大豆粕などの抽出物等の有機窒素源物質、
硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機塩窒素
化合物、グルタミン酸等のアミノ酸類が挙げられる。
【0027】そして無機塩類としては、リン酸1カリウ
ム、リン酸2カリウム等のリン酸塩、硫酸マグネシウム
等のマグネシウム塩、塩化カルシウム等のカルシウム
塩、炭酸ナトリウム等のナトリウム塩等が用いられる。
ム、リン酸2カリウム等のリン酸塩、硫酸マグネシウム
等のマグネシウム塩、塩化カルシウム等のカルシウム
塩、炭酸ナトリウム等のナトリウム塩等が用いられる。
【0028】培養は、振盪培養若しくは、通気攪拌培養
等の好気的条件下に於いて、培地をpH7〜11の範囲、好
ましくはpH8〜10の範囲に調製し、温度10〜40℃の範
囲、好ましくは、25〜37℃で実施するのが望ましいが、
この条件以外であっても微生物が生育し、目的とする酵
素を生成する条件であれば特に制限されない。
等の好気的条件下に於いて、培地をpH7〜11の範囲、好
ましくはpH8〜10の範囲に調製し、温度10〜40℃の範
囲、好ましくは、25〜37℃で実施するのが望ましいが、
この条件以外であっても微生物が生育し、目的とする酵
素を生成する条件であれば特に制限されない。
【0029】このようにして培養を行うと、通常は培養
を開始して2〜7日間で培養液中にCGTaseが生産され
る。次いで、培養液から菌体を除去し、培養ろ液を得、
限外ろ過膜で脱塩、濃縮した後、硫安塩析又は有機溶媒
沈降等により酵素を回収する。こうして得られた粗製の
CGTaseは、そのままでもCD生成反応に使用できるが、
必要に応じて、更にDEAE−セファデックス(ファル
マシア社製)、ブチル−トヨパール(東ソー社製)によ
る吸着溶出、セファデックス(ファルマシア社製)、ト
ヨパール(東ソー社製)による分画、γ−CD−セファ
ロースによるアフィニティクロマトグラフィー等により
精製して使用する。
を開始して2〜7日間で培養液中にCGTaseが生産され
る。次いで、培養液から菌体を除去し、培養ろ液を得、
限外ろ過膜で脱塩、濃縮した後、硫安塩析又は有機溶媒
沈降等により酵素を回収する。こうして得られた粗製の
CGTaseは、そのままでもCD生成反応に使用できるが、
必要に応じて、更にDEAE−セファデックス(ファル
マシア社製)、ブチル−トヨパール(東ソー社製)によ
る吸着溶出、セファデックス(ファルマシア社製)、ト
ヨパール(東ソー社製)による分画、γ−CD−セファ
ロースによるアフィニティクロマトグラフィー等により
精製して使用する。
【0030】こうして得られたブレビバクテリウム・エ
スピー由来のγ−CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べ
る。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:8〜9 至適温度:45℃付近 安定pH:pH6〜8 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、本酵素は、カルシウム塩の添加により安定化さ
れ、20mMの塩化カルシウム添加により45℃の処理におい
ても、100%の残存活性を示した。 各種金属塩の影響:本酵素を1mMの各種金属塩によ
り、0.1M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)中で、40℃、
10分処理し、残存活性を測定した結果は、表1に示され
る。表1より明らかなように、本酵素は、ニッケル、
銅、亜鉛、銀により阻害され、水銀及びカドミウムにて
ほぼ失活した。
スピー由来のγ−CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べ
る。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:8〜9 至適温度:45℃付近 安定pH:pH6〜8 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、本酵素は、カルシウム塩の添加により安定化さ
れ、20mMの塩化カルシウム添加により45℃の処理におい
ても、100%の残存活性を示した。 各種金属塩の影響:本酵素を1mMの各種金属塩によ
り、0.1M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)中で、40℃、
10分処理し、残存活性を測定した結果は、表1に示され
る。表1より明らかなように、本酵素は、ニッケル、
銅、亜鉛、銀により阻害され、水銀及びカドミウムにて
ほぼ失活した。
【0031】
【表1】
【0032】各種阻害剤の影響:本酵素を1mMの各種
阻害剤により、0.1M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)中
で、40℃、10分処理し、残存活性を測定した結果は、表
2に示される。表2より明らかなように、本酵素は、使
用したいずれの阻害剤によっても殆ど阻害されない。
尚、表2中のEDTAは(ethylenediaminetetraacetic aci
d)の、SDSは(sodium dodecyl sulfate)の、PCMBは
(p-chloromercuribenzoicacid)の、MIAは(monoiodoa
cetic acid)の、NEMは(N-ethylmaleimide)のそれぞ
れの略である。
阻害剤により、0.1M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)中
で、40℃、10分処理し、残存活性を測定した結果は、表
2に示される。表2より明らかなように、本酵素は、使
用したいずれの阻害剤によっても殆ど阻害されない。
尚、表2中のEDTAは(ethylenediaminetetraacetic aci
d)の、SDSは(sodium dodecyl sulfate)の、PCMBは
(p-chloromercuribenzoicacid)の、MIAは(monoiodoa
cetic acid)の、NEMは(N-ethylmaleimide)のそれぞ
れの略である。
【0033】
【表2】
【0034】分子量:本酵素の分子量は約75,000であ
る(SDS−電気泳動法による)。 等電点:本酵素の等電点(pI)は2.8である(焦点電
気泳動法による)。
る(SDS−電気泳動法による)。 等電点:本酵素の等電点(pI)は2.8である(焦点電
気泳動法による)。
【0035】更に、バチルス・メガテリウム由来のγ−
CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べる。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:10 至適温度:40〜45℃ 安定pH:8〜9 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、10mMカルシウム塩の添加により、45℃、30分処
理でも100%の残存活性を示す。
CGTaseの酵素化学的性質を以下に述べる。 作用及び基質特異性:澱粉、デキストリン、アミロペ
クチン、アミロース等に作用して、γ−CD及びβ−C
Dを生成するが、α−CDを生成しない。 至適pH:10 至適温度:40〜45℃ 安定pH:8〜9 温度安定性:40℃、30分処理で85%の残存活性を示
す。尚、10mMカルシウム塩の添加により、45℃、30分処
理でも100%の残存活性を示す。
【0036】尚、これら酵素の活性測定法は、基質〔1.
5%可溶性澱粉、0.1M アトキンス・パンチン(Atkins
& Pantin)緩衝液(pH10.0)〕0.5mlに酵素液0.05mlを
添加し、40℃にて30分間反応した。その後、0.1N塩酸
5mlを加え反応を停止し、0.5mlを抜き取り、ヨウ素液
5mlを加え、660nmでの吸光度の減少を測定した。1単
位は、本条件下、1分間に660nmの吸光度を1%減少さ
せる酵素量とした。
5%可溶性澱粉、0.1M アトキンス・パンチン(Atkins
& Pantin)緩衝液(pH10.0)〕0.5mlに酵素液0.05mlを
添加し、40℃にて30分間反応した。その後、0.1N塩酸
5mlを加え反応を停止し、0.5mlを抜き取り、ヨウ素液
5mlを加え、660nmでの吸光度の減少を測定した。1単
位は、本条件下、1分間に660nmの吸光度を1%減少さ
せる酵素量とした。
【0037】これらのγ−CGTaseを澱粉に作用させ、γ
−CDを製造するには、例えば、先ず1〜30%の澱粉
(澱粉又はその組成画分、加工澱粉等を含む)を含有す
る水溶液にγ−CGTase(精製品又は粗製品)を0.5〜20
単位(乾燥澱粉1g当たり)加えてpH4〜10、温度20〜
70℃にて、1〜50時間酵素反応を行う。尚、この澱粉
は、必要に応じて予め加熱し、液化処理を施して用い
る。
−CDを製造するには、例えば、先ず1〜30%の澱粉
(澱粉又はその組成画分、加工澱粉等を含む)を含有す
る水溶液にγ−CGTase(精製品又は粗製品)を0.5〜20
単位(乾燥澱粉1g当たり)加えてpH4〜10、温度20〜
70℃にて、1〜50時間酵素反応を行う。尚、この澱粉
は、必要に応じて予め加熱し、液化処理を施して用い
る。
【0038】こうしてγ−CDを工業的に製造すること
が可能となったのであるが、より多量にγ−CDを製造
するためには、基質の澱粉濃度をできるだけ高くし、且
つ反応時間を長くする必要があるが、この場合、γ−C
Dの量が減少し、β−CDの量が増加するという問題点
を有していることが分かった。
が可能となったのであるが、より多量にγ−CDを製造
するためには、基質の澱粉濃度をできるだけ高くし、且
つ反応時間を長くする必要があるが、この場合、γ−C
Dの量が減少し、β−CDの量が増加するという問題点
を有していることが分かった。
【0039】そこで、本発明者らは、より安価にγ−C
Dを製造するために、鋭意検討の結果、高濃度澱粉下又
は長時間作用下にγ−CGTaseを反応させる反応液中に、
エチルアルコールを添加することによって、β−CDの
生成を抑制しつつ、γ−CDの生成を促進せしめること
で、この問題を解決したのである。
Dを製造するために、鋭意検討の結果、高濃度澱粉下又
は長時間作用下にγ−CGTaseを反応させる反応液中に、
エチルアルコールを添加することによって、β−CDの
生成を抑制しつつ、γ−CDの生成を促進せしめること
で、この問題を解決したのである。
【0040】この場合のエチルアルコールの添加量は、
何れの酵素を何れの基質濃度にて使用する場合にも、基
質溶液に対して終濃度で5〜30%を添加するのが好ま
しい。
何れの酵素を何れの基質濃度にて使用する場合にも、基
質溶液に対して終濃度で5〜30%を添加するのが好ま
しい。
【0041】そして又、反応の際に添加するエチルアル
コールの添加時期としては、反応中であれば特に制限は
ないが、反応の初期、例えば、反応と同時が好ましい。
コールの添加時期としては、反応中であれば特に制限は
ないが、反応の初期、例えば、反応と同時が好ましい。
【0042】以下に試験例及び実施例にて本発明を具体
的に説明するが、本発明はこれらによって何等限定され
るものではない。
的に説明するが、本発明はこれらによって何等限定され
るものではない。
【0043】試験例1 2〜15%の可溶性澱粉〔0.01Mマッキルバイン(McIl
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム・エス
ピー由来及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTa
se酵素液5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加
し、40℃にて3〜44時間反応せしめて各種CDの生成率
を調べた。そして、ブレビバクテリウム・エスピー由来
のγ−CGTaseを使用した場合の各種CDの生成率を表3
に、バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用し
た場合の各種CDの生成率を表4にそれぞれ示す。尚、
各種CDの生成率は基質に対する重量比で示される。
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム・エス
ピー由来及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTa
se酵素液5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加
し、40℃にて3〜44時間反応せしめて各種CDの生成率
を調べた。そして、ブレビバクテリウム・エスピー由来
のγ−CGTaseを使用した場合の各種CDの生成率を表3
に、バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用し
た場合の各種CDの生成率を表4にそれぞれ示す。尚、
各種CDの生成率は基質に対する重量比で示される。
【0044】
【表3】
【0045】
【表4】
【0046】表3及び表4より明かなように、何れの酵
素も、基質濃度が2%の低濃度ではγ−CDを収率よく
生成するが基質濃度を高くしたり、又基質濃度が2%で
あっても反応時間を長くするとγ−CD量が減少し、β
−CD量が増加することが分かる。
素も、基質濃度が2%の低濃度ではγ−CDを収率よく
生成するが基質濃度を高くしたり、又基質濃度が2%で
あっても反応時間を長くするとγ−CD量が減少し、β
−CD量が増加することが分かる。
【0047】試験例2 5〜10%の可溶性澱粉〔0.01Mマッキルバイン(McIl
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム属由来
及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTase酵素液
5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加し、40℃
にて22時間反応せしめてCDを生成せしめるにあたり、
基質溶液当たり5〜30%量のエチルアルコールを添加
することにより各種CDの生成促進効果を調べた。その
結果、ブレビバクテリウム・エスピー由来のγ−CGTase
を使用した場合の各種CDの生成率は表5に、バチルス
・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用した場合の各種
CDの生成率は表6にそれぞれ示される。尚各種CDの
生成率は基質に対する重量比で示される。
vaine)緩衝液(pH7.0)〕にブレビバクテリウム属由来
及びバチルス・メガテリウム由来の各γ−CGTase酵素液
5単位(乾燥澱粉1g当たり)をそれぞれ添加し、40℃
にて22時間反応せしめてCDを生成せしめるにあたり、
基質溶液当たり5〜30%量のエチルアルコールを添加
することにより各種CDの生成促進効果を調べた。その
結果、ブレビバクテリウム・エスピー由来のγ−CGTase
を使用した場合の各種CDの生成率は表5に、バチルス
・メガテリウム由来のγ−CGTaseを使用した場合の各種
CDの生成率は表6にそれぞれ示される。尚各種CDの
生成率は基質に対する重量比で示される。
【0048】
【表5】
【0049】
【表6】
【0050】表5及び表6中のEtOHは、エチルアル
コールを示す。
コールを示す。
【0051】表5及び表6より明かなように、何れの酵
素の場合も、終濃度として5〜30%のエチルアルコー
ルの添加によって、γ−CDの生成が促進され、一方β
−CDの生成が抑制されることが分かる。これより、エ
チルアルコールの添加によって高濃度基質においてもβ
−CDの生成を抑制しつつ、γ−CDを収率よく生成す
ることが可能となった。
素の場合も、終濃度として5〜30%のエチルアルコー
ルの添加によって、γ−CDの生成が促進され、一方β
−CDの生成が抑制されることが分かる。これより、エ
チルアルコールの添加によって高濃度基質においてもβ
−CDの生成を抑制しつつ、γ−CDを収率よく生成す
ることが可能となった。
【0052】
【実施例】 実施例1 可溶性澱粉 1.0%、ポリペプトン 0.5%、酵母エキス
0.25%、硫酸アンモニウム0.1%、K2HPO4 0.05%、MgSO
4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後ブレビバクテリウム・エ
スピー(Brevibacterium sp.)No.9605(FERM-P 1314
1)を接種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培
養菌体を遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この
除菌液を限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)
にかけ、濃縮液30ml(CGTase活性は6.7単位/mlであっ
た。)を得た。ついで、20%エタノールを含む10%可
溶性澱粉溶液〔0.01Mマッキルバイン(McIlvaine)緩
衝液(pH7.0)〕10mlにブレビバクテリウム由来のγ−C
GTaseを5.0単位(乾燥澱粉1g当たり)加え、40℃にて
20時間反応させた。反応により得られた、γ−CD及び
β−CDの生成率(基質に対する重量比で示す)は、そ
れぞれ16.5%及び3.5%であり、α−CDの生成は、認
められなかった。
0.25%、硫酸アンモニウム0.1%、K2HPO4 0.05%、MgSO
4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後ブレビバクテリウム・エ
スピー(Brevibacterium sp.)No.9605(FERM-P 1314
1)を接種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培
養菌体を遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この
除菌液を限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)
にかけ、濃縮液30ml(CGTase活性は6.7単位/mlであっ
た。)を得た。ついで、20%エタノールを含む10%可
溶性澱粉溶液〔0.01Mマッキルバイン(McIlvaine)緩
衝液(pH7.0)〕10mlにブレビバクテリウム由来のγ−C
GTaseを5.0単位(乾燥澱粉1g当たり)加え、40℃にて
20時間反応させた。反応により得られた、γ−CD及び
β−CDの生成率(基質に対する重量比で示す)は、そ
れぞれ16.5%及び3.5%であり、α−CDの生成は、認
められなかった。
【0053】実施例2 可溶性澱粉 1.0%、ポリペプトン 0.5%、酵母エキス
0.25%、硫酸アンモニウム 0.1%、K2HPO4 0.05%、MgS
O4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後バチルス・メガテリウム
(Bacillus megaterium)No.9604(FERM-P 13141)を接
種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培養菌体を
遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この除菌液を
限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)にかけ、
濃縮液30ml(CGTase活性は8.7単位/mlであった。)を
得た。ついで、25%エタノールを含む5%可溶性澱粉
溶液〔0.01M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)〕10mlに
バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを5.0単位
(乾燥澱粉1g当たり)加え、55℃にて20時間反応させ
た。反応により得られたγ−CD及びβ−CDの生成率
(基質に対する重量比で示す)は、それぞれ16.3%及び
3.2%であり、α−CDの生成は、認められなかった。
0.25%、硫酸アンモニウム 0.1%、K2HPO4 0.05%、MgS
O4・7H2O 0.025%、CaCl2 0.01%、Na2CO3 1.0%(別殺
菌)からなる培地(pH10.0)100 mlを500 ml容坂口フラ
スコに入れ、常法により殺菌後バチルス・メガテリウム
(Bacillus megaterium)No.9604(FERM-P 13141)を接
種し、37℃で40時間振盪培養した。培養後、培養菌体を
遠心分離にて除去し、除菌液2Lを得た。この除菌液を
限外ろ過膜(モジュールSIP,旭化成社製)にかけ、
濃縮液30ml(CGTase活性は8.7単位/mlであった。)を
得た。ついで、25%エタノールを含む5%可溶性澱粉
溶液〔0.01M H3BO3,KCl-NaOH緩衝液(pH8.0)〕10mlに
バチルス・メガテリウム由来のγ−CGTaseを5.0単位
(乾燥澱粉1g当たり)加え、55℃にて20時間反応させ
た。反応により得られたγ−CD及びβ−CDの生成率
(基質に対する重量比で示す)は、それぞれ16.3%及び
3.2%であり、α−CDの生成は、認められなかった。
【0054】
【発明の効果】本発明は、高濃度澱粉にγ−CGTaseを作
用させてγ−CD及びβ−CDを生成せしめる反応液中
にエチルアルコールを添加して、β−CDの生成を抑制
しつつγ−CDの生成を促進せしめることによって、T
−CDの増収を伴わずに、γ−CDを安価に工業的に製
造する方法を可能にしたものである。
用させてγ−CD及びβ−CDを生成せしめる反応液中
にエチルアルコールを添加して、β−CDの生成を抑制
しつつγ−CDの生成を促進せしめることによって、T
−CDの増収を伴わずに、γ−CDを安価に工業的に製
造する方法を可能にしたものである。
Claims (3)
- 【請求項1】澱粉にγ−サイクロデキストリン・グルカ
ノトランスフェラーゼを作用させてγ−サイクロデキス
トリンとβ−サイクロデキストリンを生成せしめる反応
液中にエチルアルコールを添加することにより、β−サ
イクロデキストリンの生成を抑制しつつγ−サイクロデ
キストリンの生成を促進することを特徴とするγ−サイ
クロデキストリンの増収方法。 - 【請求項2】澱粉にブレビバクテリウム属又はバチルス
・メガテリウム由来のγ−サイクロデキストリン・グル
カノトランスフェラーゼを作用させてγ−サイクロデキ
ストリンとβ−サイクロデキストリンを生成せしめる反
応液中にエチルアルコールを添加することにより、β−
サイクロデキストリンの生成を抑制しつつγ−サイクロ
デキストリンの生成を促進することを特徴とするγ-サ
イクロデキストリンの増収方法。 - 【請求項3】澱粉にγ−サイクロデキストリン・グルカ
ノトランスフェラーゼを作用させてγ−サイクロデキス
トリンとβ−サイクロデキストリンを生成せしめる反応
液中に、基質溶液に対し終濃度5〜30%量のエチルア
ルコールを添加することにより、β−サイクロデキスト
リンの生成を抑制しつつγ−サイクロデキストリンの生
成を促進することを特徴とするγ−サイクロデキストリ
ンの増収方法。
Priority Applications (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP04574793A JP3360291B2 (ja) | 1993-02-09 | 1993-02-09 | γ−サイクロデキストリンの増収方法 |
| EP94101978A EP0614971B1 (en) | 1993-02-09 | 1994-02-09 | Novel cyclodextrin glucanotransferase, process for producing the same and process for producing cyclodextrin using the same |
| DE69431267T DE69431267T2 (de) | 1993-02-09 | 1994-02-09 | Neuartige Cyclodextrin-glukanotransferase, Verfahren zu ihrer Herstellung und Verfahren zur Herstellung von Cyclodexrin mittels dieser |
| US08/471,235 US5707833A (en) | 1993-02-09 | 1995-06-06 | Process of making cyclodextrin glucanotransferase with brevibacterium |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP04574793A JP3360291B2 (ja) | 1993-02-09 | 1993-02-09 | γ−サイクロデキストリンの増収方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06233692A true JPH06233692A (ja) | 1994-08-23 |
| JP3360291B2 JP3360291B2 (ja) | 2002-12-24 |
Family
ID=12727910
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP04574793A Expired - Fee Related JP3360291B2 (ja) | 1993-02-09 | 1993-02-09 | γ−サイクロデキストリンの増収方法 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5707833A (ja) |
| EP (1) | EP0614971B1 (ja) |
| JP (1) | JP3360291B2 (ja) |
| DE (1) | DE69431267T2 (ja) |
Families Citing this family (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5550222A (en) * | 1994-12-14 | 1996-08-27 | American Maize-Products Company | Process for producing gamma-cyclodextrin |
| JP4057055B2 (ja) * | 1995-04-21 | 2008-03-05 | ノボザイムス アクティーゼルスカブ | シクロマルトデキストリングルカノトランスフェラーゼ変異体 |
| DE19615336A1 (de) * | 1996-04-18 | 1997-10-23 | Consortium Elektrochem Ind | Cyclodextringlycosyltransferasen zur Produktion von gamma-Cyclodextrin |
| JP3934851B2 (ja) * | 2000-05-23 | 2007-06-20 | 日本食品化工株式会社 | 新規シクロテ゛キストリン・ク゛ルカノトランスフェラーセ゛、その製造方法及びこの酵素を用いるシクロテ゛キストリンの製造方法 |
| US6960461B2 (en) * | 2001-07-11 | 2005-11-01 | Nihon Shokuhin Kako Co., Ltd. | Gene coding for cyclodextrin glucanotransferase chiefly producing γ-cyclodextrin and use thereof |
| CN102827900B (zh) * | 2012-09-10 | 2015-09-23 | 江南大学 | 一种生物法生产γ-环糊精的生产工艺 |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6025118B2 (ja) * | 1979-05-25 | 1985-06-17 | 東洋醸造株式会社 | サイクロデキストリンの増収法 |
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