JPH07110332A - 結核菌の検査試薬及び検出方法 - Google Patents
結核菌の検査試薬及び検出方法Info
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- JPH07110332A JPH07110332A JP25399193A JP25399193A JPH07110332A JP H07110332 A JPH07110332 A JP H07110332A JP 25399193 A JP25399193 A JP 25399193A JP 25399193 A JP25399193 A JP 25399193A JP H07110332 A JPH07110332 A JP H07110332A
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 抗MPB64抗体からなる、結核菌を免疫学
的に検出するための結核菌検査試薬及び検出方法。 【効果】 従来の結核菌を培養して検出する方法に比
べ、短時間に確実に結核菌を検出することができるの
で、結核患者の早期確定診断および早期治療が可能とな
る。
的に検出するための結核菌検査試薬及び検出方法。 【効果】 従来の結核菌を培養して検出する方法に比
べ、短時間に確実に結核菌を検出することができるの
で、結核患者の早期確定診断および早期治療が可能とな
る。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、MPT64を免疫学的
に検出することによって結核菌を特異的に検出する試薬
に関する。更に詳しくは、液体培地で検体中の結核菌を
培養し、この培養液中に産生されたMPT64を免疫学
的に同一のMPB64に対する抗MPB64抗体によっ
て免疫学的に検出する結核菌検査試薬及び検出方法に関
する。
に検出することによって結核菌を特異的に検出する試薬
に関する。更に詳しくは、液体培地で検体中の結核菌を
培養し、この培養液中に産生されたMPT64を免疫学
的に同一のMPB64に対する抗MPB64抗体によっ
て免疫学的に検出する結核菌検査試薬及び検出方法に関
する。
【0002】
【従来の技術】ヒトの結核は、結核菌(Mycobacterium t
uberculosis)の感染によって惹起される呼吸器などの感
染症であることは周知の通りである。結核の大多数を占
める肺結核は、肺癌、肺真菌症、肺吸虫症などと臨床的
に鑑別するのは困難なことが多く、確定診断はもっぱら
検体の培養により結核菌を検出する方法にたよってい
る。しかし、結核菌の培養は、通常小川培地を用いて4
〜8週間を必要とし、更に検出菌の同定が必須である。
uberculosis)の感染によって惹起される呼吸器などの感
染症であることは周知の通りである。結核の大多数を占
める肺結核は、肺癌、肺真菌症、肺吸虫症などと臨床的
に鑑別するのは困難なことが多く、確定診断はもっぱら
検体の培養により結核菌を検出する方法にたよってい
る。しかし、結核菌の培養は、通常小川培地を用いて4
〜8週間を必要とし、更に検出菌の同定が必須である。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】上記のように、従来の
方法で結核菌を検出するには長期間を必要とするため、
結核の確定診断および早期の治療に大きな障害となって
いるばかりではなく、排菌による周囲の人への感染など
公衆衛生上も問題が大きい。また、結核菌を免疫学的に
検出する方法は従来全く知られていない。本発明は、結
核菌を免疫学的に特異的にかつ迅速に検出することがで
きる検査試薬及び検出方法を提供するものである。
方法で結核菌を検出するには長期間を必要とするため、
結核の確定診断および早期の治療に大きな障害となって
いるばかりではなく、排菌による周囲の人への感染など
公衆衛生上も問題が大きい。また、結核菌を免疫学的に
検出する方法は従来全く知られていない。本発明は、結
核菌を免疫学的に特異的にかつ迅速に検出することがで
きる検査試薬及び検出方法を提供するものである。
【0004】
【課題を解決するための手段】前記の問題を解決するた
め、本発明者等は、結核菌のみが産生する蛋白、MPB
64に着目し、喀痰などの検体を液体培地で培養し、培
養液中に分泌されたMPB64を免疫学的に検出するこ
とによって、迅速、確実に結核菌を検出する試薬の開発
に成功し、本発明を完成するに至った。更に、この特異
的検出法は、培養された未知分離菌の同定、迅速な薬剤
感受性試験にも応用することができる。
め、本発明者等は、結核菌のみが産生する蛋白、MPB
64に着目し、喀痰などの検体を液体培地で培養し、培
養液中に分泌されたMPB64を免疫学的に検出するこ
とによって、迅速、確実に結核菌を検出する試薬の開発
に成功し、本発明を完成するに至った。更に、この特異
的検出法は、培養された未知分離菌の同定、迅速な薬剤
感受性試験にも応用することができる。
【0005】本発明は、抗MPB64抗体からなる、結
核菌を免疫学的に検出するための結核菌検査試薬及びそ
れを用いて免疫検定法により結核菌を検出する方法であ
る。MPB64は、1986年M. Harboe 等によりBCG菌
が産生する蛋白の中から分離精製され、そのN末端付近
のアミノ酸配列が報告されている(Infection and Immun
ity vol.52, 293-302, 1986)。結核菌は数百種類の蛋白
を培養液中に分泌するが、MPT64は結核菌におい
て、MPB64はBCG菌においてのみ産生される種特
異蛋白であり、両者は、免疫学的に同一である。
核菌を免疫学的に検出するための結核菌検査試薬及びそ
れを用いて免疫検定法により結核菌を検出する方法であ
る。MPB64は、1986年M. Harboe 等によりBCG菌
が産生する蛋白の中から分離精製され、そのN末端付近
のアミノ酸配列が報告されている(Infection and Immun
ity vol.52, 293-302, 1986)。結核菌は数百種類の蛋白
を培養液中に分泌するが、MPT64は結核菌におい
て、MPB64はBCG菌においてのみ産生される種特
異蛋白であり、両者は、免疫学的に同一である。
【0006】このMPB64を結核菌培養液中の数百種
類の蛋白から純粋に分離するためには多大の労力と時間
を要し、しかもその収量は非常に少なく、検査試薬の原
料に供するのは極めて困難であったが、本発明者等は、
特開平1−247094号においてMPB64遺伝子を
クローニングし、全塩基配列を決定し、大腸菌でMPB
64を純粋に直接発現することに成功した。更に改良を
加えて、より大量に発現できる技術を開発した。すなわ
ち、融合蛋白発現ベクターpMAL64cを含む大腸菌
株(FERMP−13762)を培養し、この培養菌体
を超音波で破砕し、遠心によって破砕液上清を分取し、
この上清画分よりMPB64を純粋に調製することがで
きる。また、スメグマ菌のような結核菌の類縁菌を宿主
として用い、上記MPB64遺伝子を導入して、菌体外
に直接分泌発現させ、培養上清から大量のMPB64を
純粋に調製することも可能である。
類の蛋白から純粋に分離するためには多大の労力と時間
を要し、しかもその収量は非常に少なく、検査試薬の原
料に供するのは極めて困難であったが、本発明者等は、
特開平1−247094号においてMPB64遺伝子を
クローニングし、全塩基配列を決定し、大腸菌でMPB
64を純粋に直接発現することに成功した。更に改良を
加えて、より大量に発現できる技術を開発した。すなわ
ち、融合蛋白発現ベクターpMAL64cを含む大腸菌
株(FERMP−13762)を培養し、この培養菌体
を超音波で破砕し、遠心によって破砕液上清を分取し、
この上清画分よりMPB64を純粋に調製することがで
きる。また、スメグマ菌のような結核菌の類縁菌を宿主
として用い、上記MPB64遺伝子を導入して、菌体外
に直接分泌発現させ、培養上清から大量のMPB64を
純粋に調製することも可能である。
【0007】このMPB64を免疫学的に検出するため
の抗血清は、MPB64を抗体産生能のある動物、例え
ばモルモット、ウサギ、ヒツジ、ヤギに通常の方法で免
疫することによって容易に得られる。この抗MPB64
抗血清を用いて、結核菌を検出するには、検体中の結核
菌を液体培地で培養し、例えば1週間後に、培養液中に
分泌されたMPB64を免疫学的に検出すればよい。免
疫学的検出法として、逆受身血球凝集反応(RPH
A)、逆受身ラテックス凝集反応(RPLA)、酵素免
疫抗体法(EIA)等をはじめとして、多くの免疫学的
検定法が適用できる。これらの方法により高感度でMP
B64を検出することができるが、結核菌のバイオハザ
ード対策として、安全キャビネットの中で検査できるこ
とが望ましいので、RPHAおよびRPLAが特に望ま
しい。RPHA法を行うためには、タンニン酸処理固定
ヒトO型赤血球またはヒツジ赤血球に抗MPB64抗体
を感作し、これを試験管またはマイクロプレート中で検
体の結核菌培養液またはその希釈液に加えてから静置
し、1〜3時間後に管底凝集像として判定できる。赤血
球の代りにポリスチレンなどのラテックスを担体とした
RPLAも同様に有用な方法である。いづれの方法にお
いても、管底凝集がおこればMPB64の存在が確認で
き、結核菌が培養されたことが証明される。また、この
反応は、極めて容易に、しかも安全キャビネットの中で
も実施できるので、臨床検査に特に適している。
の抗血清は、MPB64を抗体産生能のある動物、例え
ばモルモット、ウサギ、ヒツジ、ヤギに通常の方法で免
疫することによって容易に得られる。この抗MPB64
抗血清を用いて、結核菌を検出するには、検体中の結核
菌を液体培地で培養し、例えば1週間後に、培養液中に
分泌されたMPB64を免疫学的に検出すればよい。免
疫学的検出法として、逆受身血球凝集反応(RPH
A)、逆受身ラテックス凝集反応(RPLA)、酵素免
疫抗体法(EIA)等をはじめとして、多くの免疫学的
検定法が適用できる。これらの方法により高感度でMP
B64を検出することができるが、結核菌のバイオハザ
ード対策として、安全キャビネットの中で検査できるこ
とが望ましいので、RPHAおよびRPLAが特に望ま
しい。RPHA法を行うためには、タンニン酸処理固定
ヒトO型赤血球またはヒツジ赤血球に抗MPB64抗体
を感作し、これを試験管またはマイクロプレート中で検
体の結核菌培養液またはその希釈液に加えてから静置
し、1〜3時間後に管底凝集像として判定できる。赤血
球の代りにポリスチレンなどのラテックスを担体とした
RPLAも同様に有用な方法である。いづれの方法にお
いても、管底凝集がおこればMPB64の存在が確認で
き、結核菌が培養されたことが証明される。また、この
反応は、極めて容易に、しかも安全キャビネットの中で
も実施できるので、臨床検査に特に適している。
【0008】
【発明の効果】以上のように、従来結核菌の培養に、4
〜8週間を要していたのが、抗MPB64抗体を用いて
免疫学的に検出すれば1週間の培養で足り、しかも同時
に、結核菌であることの確認が確実にできるので、結核
患者の早期確定診断および早期治療が可能となる。
〜8週間を要していたのが、抗MPB64抗体を用いて
免疫学的に検出すれば1週間の培養で足り、しかも同時
に、結核菌であることの確認が確実にできるので、結核
患者の早期確定診断および早期治療が可能となる。
【0009】
【実施例】 実施例1. MPB64の生産 融合蛋白発現ベクターpMAL64cを含むE. coli JM
109 株(FERMP−13762)を、一晩培養した培
養液40mlをL−ブロス培地4リットル(アンピシリン
100mg/l含有)に加えた。37℃で4時間培養した
後、イソプロピル−1−チオ−β−D−ガラクトシド
(IPTG)を最終濃度0.3mMになるように加え、さ
らに3時間培養した。この培養液を氷冷し、遠心(8,
000rpm で10分間)して集菌した後、200mlのカ
ラムバッファー(10mM Tris-Cl(pH7.4)、200mM NaCl、1mM
EDTA、1mMアジ化ナトリウム、1mM ジチオトレイトール)
に懸濁し、−20℃で一晩凍結した。融解後、超音波細
胞破砕装置(東湘電気製UCD−200T型)により菌
体を破砕した。再度遠心して破砕液の上清を集めた。上
清をアミロース樹脂カラム(マルトースバインディング
プロテインを吸着できる、米国、NEB社製)20mlに
通し、8倍量のカラムバッファーで洗浄した。次に、1
0mMマルトースを含むカラムバッファーにより吸着した
融合蛋白を溶出させ、280nmの吸光度を指標に蛋白含
有画分(150mg相当量)を集めた。
109 株(FERMP−13762)を、一晩培養した培
養液40mlをL−ブロス培地4リットル(アンピシリン
100mg/l含有)に加えた。37℃で4時間培養した
後、イソプロピル−1−チオ−β−D−ガラクトシド
(IPTG)を最終濃度0.3mMになるように加え、さ
らに3時間培養した。この培養液を氷冷し、遠心(8,
000rpm で10分間)して集菌した後、200mlのカ
ラムバッファー(10mM Tris-Cl(pH7.4)、200mM NaCl、1mM
EDTA、1mMアジ化ナトリウム、1mM ジチオトレイトール)
に懸濁し、−20℃で一晩凍結した。融解後、超音波細
胞破砕装置(東湘電気製UCD−200T型)により菌
体を破砕した。再度遠心して破砕液の上清を集めた。上
清をアミロース樹脂カラム(マルトースバインディング
プロテインを吸着できる、米国、NEB社製)20mlに
通し、8倍量のカラムバッファーで洗浄した。次に、1
0mMマルトースを含むカラムバッファーにより吸着した
融合蛋白を溶出させ、280nmの吸光度を指標に蛋白含
有画分(150mg相当量)を集めた。
【0010】実施例2. MPB64の精製 実施例1で得た蛋白含有画分にプロテアーゼFactor Xa
(米国、NEB社製)250μg を加え、25℃で72
時間おいた。切断溶液をそのままヒドロキシアパタイト
カラム(米国、バイオラッド社製)1gにかけた。80
mlのカラムバッファーを流すことによりマルトースを除
去し、次に0.5M リン酸ナトリウム溶液(pH7.0)
を流して蛋白を溶出させた。蛋白含有画分をそのままア
ミロースカラムにかけて切断されたマルトースバインデ
ィング蛋白を吸着させ、目的のリコンビナントMPB6
4蛋白を素通りさせた。MPB64蛋白を含む画分を集
め、濃縮後、20mM Tris-Cl(pH8.0) 含有25mMNaC
l溶液に対して透析した。これをFPLC(スウェーデ
ン、ファルマシア社製)(条件:Mono Qイオン交換カ
ラムを用い、移動相として20mM Tris-Clバッファー(p
H8.0) 中、NaClからなる濃度勾配液を用いる)で精
製し、3.0mgの精製標品を得た。
(米国、NEB社製)250μg を加え、25℃で72
時間おいた。切断溶液をそのままヒドロキシアパタイト
カラム(米国、バイオラッド社製)1gにかけた。80
mlのカラムバッファーを流すことによりマルトースを除
去し、次に0.5M リン酸ナトリウム溶液(pH7.0)
を流して蛋白を溶出させた。蛋白含有画分をそのままア
ミロースカラムにかけて切断されたマルトースバインデ
ィング蛋白を吸着させ、目的のリコンビナントMPB6
4蛋白を素通りさせた。MPB64蛋白を含む画分を集
め、濃縮後、20mM Tris-Cl(pH8.0) 含有25mMNaC
l溶液に対して透析した。これをFPLC(スウェーデ
ン、ファルマシア社製)(条件:Mono Qイオン交換カ
ラムを用い、移動相として20mM Tris-Clバッファー(p
H8.0) 中、NaClからなる濃度勾配液を用いる)で精
製し、3.0mgの精製標品を得た。
【0011】実施例3. 抗MPB64ヤギ血清の作製 実施例2で調製したMPB64を生理食塩水で1mg/ml
溶液とし、この溶液2mlにフロイント完全アジュバント
2mlを混合してからエマルジョンとし、ヤギの背面皮下
および大腿部筋肉内にそれぞれ注射して免疫した。4週
間後、6週間後および8週間後にMPB64、1mg/ml
水溶液を0.5mlづつ静脈注射し、最後の追加免疫の7
日後に全採血し、血清を分離して抗MPB64ヤギ血清
800mlを得た。
溶液とし、この溶液2mlにフロイント完全アジュバント
2mlを混合してからエマルジョンとし、ヤギの背面皮下
および大腿部筋肉内にそれぞれ注射して免疫した。4週
間後、6週間後および8週間後にMPB64、1mg/ml
水溶液を0.5mlづつ静脈注射し、最後の追加免疫の7
日後に全採血し、血清を分離して抗MPB64ヤギ血清
800mlを得た。
【0012】実施例4. 精製抗MPB64抗体の調製 実施例3で調製した抗MPB64ヤギ血清(以下抗血清
と称する)2容に飽和硫酸アンモニウム水溶液1容を加
え、室温で1時間処理した後、3,000rpmで30分
遠心して硫酸アンモニウム沈殿画分をとり、生理食塩水
に対して透析して抗体の1/3飽和画分を得た。次にB
rCN−セファロース4B(スエーデン、ファルマシア
社製)充填カラムにMPB64を通して吸着させ、洗浄
後、上記抗体の1/3飽和画分を通して吸着させた後、
酢酸バッファー(pH2.5) を流して抗体を解離させて分取
し、pHを7.2に補正して精製抗MPB64抗体を得
た。
と称する)2容に飽和硫酸アンモニウム水溶液1容を加
え、室温で1時間処理した後、3,000rpmで30分
遠心して硫酸アンモニウム沈殿画分をとり、生理食塩水
に対して透析して抗体の1/3飽和画分を得た。次にB
rCN−セファロース4B(スエーデン、ファルマシア
社製)充填カラムにMPB64を通して吸着させ、洗浄
後、上記抗体の1/3飽和画分を通して吸着させた後、
酢酸バッファー(pH2.5) を流して抗体を解離させて分取
し、pHを7.2に補正して精製抗MPB64抗体を得
た。
【0013】実施例5. 抗体感作血球の作製 グルタールアルデヒド固定ヒツジ赤血球の0.5%PB
S懸濁液1容に、1:100,000タンニン(米国、
NBC社製)を1容加え、室温で15分間処理した後、
PBSで3回洗浄し、1容のPBSに懸濁して0.5%
タンニン血球を得た。このタンニン血球1容に実施例4
で得た精製抗MPB64抗体(4μg/ml)1容を加え、
37℃で30分間処理し、PBSで3回洗浄後、希釈液
(0.1%ウシ血清アルブミン+PBS)1容に懸濁し
て抗体感作血球を得た。この抗体感作血球を用いて、逆
受身血球凝集反応を行ったところ、MPB64の4ng/m
l 以上で管底凝集を示した。
S懸濁液1容に、1:100,000タンニン(米国、
NBC社製)を1容加え、室温で15分間処理した後、
PBSで3回洗浄し、1容のPBSに懸濁して0.5%
タンニン血球を得た。このタンニン血球1容に実施例4
で得た精製抗MPB64抗体(4μg/ml)1容を加え、
37℃で30分間処理し、PBSで3回洗浄後、希釈液
(0.1%ウシ血清アルブミン+PBS)1容に懸濁し
て抗体感作血球を得た。この抗体感作血球を用いて、逆
受身血球凝集反応を行ったところ、MPB64の4ng/m
l 以上で管底凝集を示した。
【0014】結核菌検出例 結核菌検査検体として喀痰を用い、常法によりデュボス
液体培地を用いて培養し、1週間後にMPB64の有無
を次のようにして検査した。マイクロプレートに希釈液
25μl を滴下しておき、この中に液体培養液5μl を
加え、その上に、実施例5で調製した抗体感作血球25
μl を滴下し、3時間後に管底凝集の有無を肉眼で判定
した。対照として、小川培地を用いて常法により8週間
培養した。この結果を表に示す。
液体培地を用いて培養し、1週間後にMPB64の有無
を次のようにして検査した。マイクロプレートに希釈液
25μl を滴下しておき、この中に液体培養液5μl を
加え、その上に、実施例5で調製した抗体感作血球25
μl を滴下し、3時間後に管底凝集の有無を肉眼で判定
した。対照として、小川培地を用いて常法により8週間
培養した。この結果を表に示す。
【0015】
【表1】
【0016】表にみられるように、1週間培養した液中
のMPB64の検出結果と、小川培地で8週間培養によ
る結核菌の検出結果はよく一致し、本発明のMPB64
検出法が小川培地培養法に完全におきかえられることを
示した。このように、MPB64検出法は、結核菌検出
法として迅速、確実な結果を得ることができ、臨床検査
法として適切な方法であることを示した。
のMPB64の検出結果と、小川培地で8週間培養によ
る結核菌の検出結果はよく一致し、本発明のMPB64
検出法が小川培地培養法に完全におきかえられることを
示した。このように、MPB64検出法は、結核菌検出
法として迅速、確実な結果を得ることができ、臨床検査
法として適切な方法であることを示した。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 松尾 和浩 神奈川県川崎市川崎区鈴木町1−1 味の 素株式会社中央研究所内 (72)発明者 山崎 晤弘 神奈川県川崎市川崎区鈴木町1−1 味の 素株式会社中央研究所内
Claims (2)
- 【請求項1】 抗MPB64抗体からなる、結核菌を免
疫学的に検出するための結核菌検査試薬。 - 【請求項2】 抗MPB64抗体を用いて免疫学的検定
法により結核菌を検出する方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25399193A JPH07110332A (ja) | 1993-10-12 | 1993-10-12 | 結核菌の検査試薬及び検出方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25399193A JPH07110332A (ja) | 1993-10-12 | 1993-10-12 | 結核菌の検査試薬及び検出方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07110332A true JPH07110332A (ja) | 1995-04-25 |
Family
ID=17258752
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP25399193A Pending JPH07110332A (ja) | 1993-10-12 | 1993-10-12 | 結核菌の検査試薬及び検出方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07110332A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009084481A1 (ja) | 2007-12-28 | 2009-07-09 | Bl Co., Ltd. | 結核菌群の免疫検出法 |
| JP2010112844A (ja) * | 2008-11-06 | 2010-05-20 | Kankyo Shizuoka:Kk | 結核菌群の薬剤感受性検査法及びキット |
| WO2013151122A1 (ja) * | 2012-04-05 | 2013-10-10 | 株式会社ビーエル | 結核菌群の免疫学的検出方法及び検出用キット |
-
1993
- 1993-10-12 JP JP25399193A patent/JPH07110332A/ja active Pending
Cited By (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009084481A1 (ja) | 2007-12-28 | 2009-07-09 | Bl Co., Ltd. | 結核菌群の免疫検出法 |
| US8541179B2 (en) | 2007-12-28 | 2013-09-24 | Bl Co., Ltd. | Immunodetection assay for Mycobacterium tuberculosis complex |
| JP2010112844A (ja) * | 2008-11-06 | 2010-05-20 | Kankyo Shizuoka:Kk | 結核菌群の薬剤感受性検査法及びキット |
| WO2013151122A1 (ja) * | 2012-04-05 | 2013-10-10 | 株式会社ビーエル | 結核菌群の免疫学的検出方法及び検出用キット |
| CN104246505A (zh) * | 2012-04-05 | 2014-12-24 | 株式会社比尔生命 | 结核菌群的免疫学检测方法和试剂盒 |
| JPWO2013151122A1 (ja) * | 2012-04-05 | 2015-12-17 | 株式会社ビーエル | 結核菌群の免疫学的検出方法及び検出用キット |
| CN105403700A (zh) * | 2012-04-05 | 2016-03-16 | 株式会社比尔生命 | 结核菌群的免疫学检测方法和试剂盒 |
| EP3499237A1 (en) * | 2012-04-05 | 2019-06-19 | Tauns Co., Ltd. | Method for immunological detection of mycobacterium tuberculosis complex |
| US10823730B2 (en) | 2012-04-05 | 2020-11-03 | Tauns Co., Ltd. | Method and kit for immunological detection of Mycobacterium tuberculosis |
| US10830769B2 (en) | 2012-04-05 | 2020-11-10 | Tauns Co., Ltd | Method and kit for immunological detection of Mycobacterium tuberculosis |
| US10883988B2 (en) | 2012-04-05 | 2021-01-05 | Tauns Co., Ltd. | Method and kit for immunological detection of Mycobacterium tuberculosis complex |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A02 | Decision of refusal |
Effective date: 20040406 Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 |