JPH0775562A - キサントモナス属に属する新拮抗細菌ｓｂ−ｋ８８とそれを利用したテンサイ健苗育成方法 - Google Patents
キサントモナス属に属する新拮抗細菌ｓｂ−ｋ８８とそれを利用したテンサイ健苗育成方法Info
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- JPH0775562A JPH0775562A JP24608293A JP24608293A JPH0775562A JP H0775562 A JPH0775562 A JP H0775562A JP 24608293 A JP24608293 A JP 24608293A JP 24608293 A JP24608293 A JP 24608293A JP H0775562 A JPH0775562 A JP H0775562A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 テンサイの健全な苗の育成に有用な新規微生
物とその利用を提供する。 【構成】 テンサイの健全な苗の育成に有用な新規微生
物がテンサイに病原性を有さないキサントモナス（Xant
homonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８、その培養
物もしくはその処理物であり、この新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ
８８、その培養物もしくはその処理物をテンサイの種子
に処理することによりテンサイ苗立枯病の防除と初期発
芽を改善し、健全な苗を育成することができる。
物とその利用を提供する。 【構成】 テンサイの健全な苗の育成に有用な新規微生
物がテンサイに病原性を有さないキサントモナス（Xant
homonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８、その培養
物もしくはその処理物であり、この新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ
８８、その培養物もしくはその処理物をテンサイの種子
に処理することによりテンサイ苗立枯病の防除と初期発
芽を改善し、健全な苗を育成することができる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】この発明はテンサイの栽培に有効
なキサントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌
ＳＢ−Ｋ８８と当該新拮抗細菌を利用するテンサイ健苗
育成方法に係り、特にテンサイの苗立枯病の防除と発芽
促進への利用に関する。
なキサントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌
ＳＢ−Ｋ８８と当該新拮抗細菌を利用するテンサイ健苗
育成方法に係り、特にテンサイの苗立枯病の防除と発芽
促進への利用に関する。
【０００２】
【従来の技術】テンサイの重要病害の一つに苗立枯病が
あり、土壌中に生息する土壌菌であるリゾクトニア ソ
ラニ（Rhizoctonia solani)、ピシュウム ウルチマム(P
ythiumultimum)、アファノマイセス コクリオイデス（A
phanomyces cochlioides)が主たる病原菌であることが
知られている。
あり、土壌中に生息する土壌菌であるリゾクトニア ソ
ラニ（Rhizoctonia solani)、ピシュウム ウルチマム(P
ythiumultimum)、アファノマイセス コクリオイデス（A
phanomyces cochlioides)が主たる病原菌であることが
知られている。
【０００３】上記テンサイの苗立枯病の発生は、ペ−パ
−ポット（登録商標、以下同じ）による育苗にあって
は、タチガレン、リゾレックス、バリダシン（何れも登
録商標、以下同じ）等の薬剤を培土に混合するか、ある
いは培土に灌注することにより、またテンサイ種子を直
接畑に播種する場合にあっては、種子に前記薬剤を粉衣
することにより防除されている。一方、薬剤に代わる生
物的な防除方法も種々提案されていて例えば、生越等
（１９８８）、遺伝、第４２巻、第６号、第２５頁〜第
２９頁にはテンサイ種子の拮抗細菌によるバクテライゼ
−ション（種子あるいは苗に拮抗性の微生物をまぶす方
法）についての研究結果で、苗立枯病の病原菌に対して
有効な拮抗細菌としてシウドモナス フルオレッセンス
(Pseudomonas fluorescens)、シウドモナスプチダ（Pseu
domonas putida)、シウドモナス セパシア（Pseudomona
s cepacia)、バチルス エスピ−（Bacillus sp.) を挙
げ、 またこれら拮抗細菌のなかには発芽促進効果のある
ものがあることが記載され、築尾（１９９３）、植物防
疫、第４７巻、第３号、第３０頁〜第３３頁にはテンサ
イのペレット種子（不規則な形状をしたテンサイ種子を
粘土鉱物などで球形に被覆したもの）へのテンサイ苗立
枯病の拮抗細菌の添加について、供試したシウドモナス
セパシア（Pseudomonas cepacia)およびシウドモナス
フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)、にテン
サイ苗立枯病の抑制効果のあることが記載され、 MONIKA
RATH 等（１９９２）、Bulletin OILB/SROP、 第１５
巻、第１号、第１１３頁〜第１１４頁にはテンサイの拮
抗微生物による種子腐敗と苗立枯病の生物的防除につい
て、有効な拮抗微生物としてシウドモナス フルオレッ
センス(Pseudomonas fluorescens)等が記載され、特開
平5-51305 公報明細書にはバチルス ズブチリス（Baci
llussubtilis)ＳＣ−３およびその変異菌を植物の種子
にコ−ト処理することにより植物病害を防除する方法が
記載されている。
−ポット（登録商標、以下同じ）による育苗にあって
は、タチガレン、リゾレックス、バリダシン（何れも登
録商標、以下同じ）等の薬剤を培土に混合するか、ある
いは培土に灌注することにより、またテンサイ種子を直
接畑に播種する場合にあっては、種子に前記薬剤を粉衣
することにより防除されている。一方、薬剤に代わる生
物的な防除方法も種々提案されていて例えば、生越等
（１９８８）、遺伝、第４２巻、第６号、第２５頁〜第
２９頁にはテンサイ種子の拮抗細菌によるバクテライゼ
−ション（種子あるいは苗に拮抗性の微生物をまぶす方
法）についての研究結果で、苗立枯病の病原菌に対して
有効な拮抗細菌としてシウドモナス フルオレッセンス
(Pseudomonas fluorescens)、シウドモナスプチダ（Pseu
domonas putida)、シウドモナス セパシア（Pseudomona
s cepacia)、バチルス エスピ−（Bacillus sp.) を挙
げ、 またこれら拮抗細菌のなかには発芽促進効果のある
ものがあることが記載され、築尾（１９９３）、植物防
疫、第４７巻、第３号、第３０頁〜第３３頁にはテンサ
イのペレット種子（不規則な形状をしたテンサイ種子を
粘土鉱物などで球形に被覆したもの）へのテンサイ苗立
枯病の拮抗細菌の添加について、供試したシウドモナス
セパシア（Pseudomonas cepacia)およびシウドモナス
フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)、にテン
サイ苗立枯病の抑制効果のあることが記載され、 MONIKA
RATH 等（１９９２）、Bulletin OILB/SROP、 第１５
巻、第１号、第１１３頁〜第１１４頁にはテンサイの拮
抗微生物による種子腐敗と苗立枯病の生物的防除につい
て、有効な拮抗微生物としてシウドモナス フルオレッ
センス(Pseudomonas fluorescens)等が記載され、特開
平5-51305 公報明細書にはバチルス ズブチリス（Baci
llussubtilis)ＳＣ−３およびその変異菌を植物の種子
にコ−ト処理することにより植物病害を防除する方法が
記載されている。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】上記で挙げた、テンサ
イ苗立枯病の防除手段において薬剤による方法は、適用
処方等が確立していて実用化されており、効果的な防除
方法を与えるが、化学物質であることから薬剤耐性や人
畜に対する安全性あるいは残留性の点において万全と言
えず、またテンサイ苗立枯病が恒常的に発生する傾向に
あることから営農コスト的にも大きなウエイトを占める
ため低廉な手段が望まれている。
イ苗立枯病の防除手段において薬剤による方法は、適用
処方等が確立していて実用化されており、効果的な防除
方法を与えるが、化学物質であることから薬剤耐性や人
畜に対する安全性あるいは残留性の点において万全と言
えず、またテンサイ苗立枯病が恒常的に発生する傾向に
あることから営農コスト的にも大きなウエイトを占める
ため低廉な手段が望まれている。
【０００５】一方、拮抗微生物による防除手段として上
記の様に種々生物的手段が提案されているが、何れも研
究段階に留り、実用化に向けてなお解決されなければな
らない課題を残している。例えば、上記各種の研究でテ
ンサイ苗立枯病の拮抗細菌として挙げられているシウド
モナス フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)
、シウドモナス プチダ（Pseudomonas putida) 、 シ
ウドモナス セパシア（Pseudomonas cepacia)、バチル
ス ズブチリス（Bacillus subtilis)ＳＣ−３を、テン
サイ苗立枯病の防除に利用しようとする場合には、これ
ら菌の活性が安定していることが重要な要件となるが、
上記シウドモナス（Pseudomonas)属の細菌が生産する物
質の１つであるピロ−ルニトリンをメルクマ−ルとして
活性の持続性についてみてもなお活性の安定性に問題が
あり、またテンサイ栽培は、営農人口の老齢化に伴う省
力化、並びにコストの低減のために、将来的には直播、
無間引き栽培の割合が益々高くなることが予測され、こ
れがため、発芽性を向上させ得苗率を増加させるより有
効な拮抗微生物による生物的防除手段の提供が望まれて
いる。
記の様に種々生物的手段が提案されているが、何れも研
究段階に留り、実用化に向けてなお解決されなければな
らない課題を残している。例えば、上記各種の研究でテ
ンサイ苗立枯病の拮抗細菌として挙げられているシウド
モナス フルオレッセンス(Pseudomonas fluorescens)
、シウドモナス プチダ（Pseudomonas putida) 、 シ
ウドモナス セパシア（Pseudomonas cepacia)、バチル
ス ズブチリス（Bacillus subtilis)ＳＣ−３を、テン
サイ苗立枯病の防除に利用しようとする場合には、これ
ら菌の活性が安定していることが重要な要件となるが、
上記シウドモナス（Pseudomonas)属の細菌が生産する物
質の１つであるピロ−ルニトリンをメルクマ−ルとして
活性の持続性についてみてもなお活性の安定性に問題が
あり、またテンサイ栽培は、営農人口の老齢化に伴う省
力化、並びにコストの低減のために、将来的には直播、
無間引き栽培の割合が益々高くなることが予測され、こ
れがため、発芽性を向上させ得苗率を増加させるより有
効な拮抗微生物による生物的防除手段の提供が望まれて
いる。
【０００６】
【課題を解決するための手段】この発明者等は、上記事
情に鑑み、テンサイ苗立枯病の防除により有効な拮抗微
生物について鋭意研究した結果、テンサイの細根から分
離した微生物の中に前記要件を満足し、特に低温時にお
ける発芽促進作用をも抱き合わせて有する拮抗微生物を
見出し、同定により従来知られていない新拮抗細菌と断
定し、この知見に基づきこの発明に想到したものであ
り、第１の発明は、テンサイに対して病原性を示さない
キサントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌Ｓ
Ｂ−Ｋ８８自体であり、第２の発明は、第１の発明の新
拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８の利用に係り、テンサイに対して
病原性を示さないキサントモナス（Xanthomonas)属に属
する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイ種子にコ−ト処
理することにより苗立枯病を防除することを特徴とする
ものであり、第３発明は、同様にテンサイに対して病原
性を示さないキサントモナス（Xanthomonas)属に属する
新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイ種子にコ−ト処理す
ることにより低温時の発芽を促進することを特徴とする
ものであり、第４の発明は、第３発明のテンサイに対し
て病原性を示さないキサントモナス（Xanthomonas)属に
属する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイ種子にコ−ト
処理しさらにペレット加工することにより低温時の発芽
を促進することを特徴とするものであり、これにより、
拮抗微生物によるテンサイ苗立枯病の防除を安定的に実
施可能とし、合せて低温時における発芽を改善して生育
の揃った苗の確保を可能とできたものである。以下作用
を含めてこの発明を詳細に説明する。
情に鑑み、テンサイ苗立枯病の防除により有効な拮抗微
生物について鋭意研究した結果、テンサイの細根から分
離した微生物の中に前記要件を満足し、特に低温時にお
ける発芽促進作用をも抱き合わせて有する拮抗微生物を
見出し、同定により従来知られていない新拮抗細菌と断
定し、この知見に基づきこの発明に想到したものであ
り、第１の発明は、テンサイに対して病原性を示さない
キサントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌Ｓ
Ｂ−Ｋ８８自体であり、第２の発明は、第１の発明の新
拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８の利用に係り、テンサイに対して
病原性を示さないキサントモナス（Xanthomonas)属に属
する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイ種子にコ−ト処
理することにより苗立枯病を防除することを特徴とする
ものであり、第３発明は、同様にテンサイに対して病原
性を示さないキサントモナス（Xanthomonas)属に属する
新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイ種子にコ−ト処理す
ることにより低温時の発芽を促進することを特徴とする
ものであり、第４の発明は、第３発明のテンサイに対し
て病原性を示さないキサントモナス（Xanthomonas)属に
属する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイ種子にコ−ト
処理しさらにペレット加工することにより低温時の発芽
を促進することを特徴とするものであり、これにより、
拮抗微生物によるテンサイ苗立枯病の防除を安定的に実
施可能とし、合せて低温時における発芽を改善して生育
の揃った苗の確保を可能とできたものである。以下作用
を含めてこの発明を詳細に説明する。
【０００７】この発明のテンサイ苗立枯病の病原菌に有
効な新拮抗細菌は、北海道帯広市上清川町のテンサイ連
作圃場に栽培したテンサイ細根より分離された微生物
で、以下の手順により分離されたものである。採取した
細根を蒸留水で洗浄後摩砕し、摩砕液は滅菌水で１０6
程度に希釈し、希釈液１mlを、培地組成がシュクロ−ス
１０g/l、カゼイン加水分解物８g/l、イ−ストエキス４g/
l、寒天１５g/l および蒸留水１０００mlの寒天培地（培
地１という）で固化寸前の培地に懸濁し、固化後２５℃
に７日間培養して生じたコロニ−から、培地組成がばれ
いしょ煎汁２００g/l、ペプトン５g/l、グルコ−ス３g/l、
シュクロ−ス２g/l、寒天１５g/l、蒸留水１０００mlの試
験管斜面培地（培地２という）に分離した。
効な新拮抗細菌は、北海道帯広市上清川町のテンサイ連
作圃場に栽培したテンサイ細根より分離された微生物
で、以下の手順により分離されたものである。採取した
細根を蒸留水で洗浄後摩砕し、摩砕液は滅菌水で１０6
程度に希釈し、希釈液１mlを、培地組成がシュクロ−ス
１０g/l、カゼイン加水分解物８g/l、イ−ストエキス４g/
l、寒天１５g/l および蒸留水１０００mlの寒天培地（培
地１という）で固化寸前の培地に懸濁し、固化後２５℃
に７日間培養して生じたコロニ−から、培地組成がばれ
いしょ煎汁２００g/l、ペプトン５g/l、グルコ−ス３g/l、
シュクロ−ス２g/l、寒天１５g/l、蒸留水１０００mlの試
験管斜面培地（培地２という）に分離した。
【０００８】分離株の保存はグルタミン酸ナトリウム１
g/l、スキムミルク１０g/l、蒸留水１０００mlの分散媒に
けん濁後−８０℃に凍結保存し、使用に当たっては前記
保存菌株を前記培地１および培地２に植え、２５℃で静
置培養する。
g/l、スキムミルク１０g/l、蒸留水１０００mlの分散媒に
けん濁後−８０℃に凍結保存し、使用に当たっては前記
保存菌株を前記培地１および培地２に植え、２５℃で静
置培養する。
【０００９】菌学的性質は以下の如くである。なお、菌
学的性質の検討はバ−ジェ−ズ・マニュアル・オブ・シ
ステマチック・バクテリオロジ−（Bergey's Manual of
Systematic Bacteriology（１９８４)、Ｖol. １、 およ
び長谷川武治著、微生物の分類と同定（１９８５)、学会
出版センタ−による。 （ａ）形態 （１）細胞の形および大きさ：単独もしくは２〜３連の
直桿菌で０．５×２．０μｍ （２）べん毛：極べん毛なし （３）胞子形成：なし （４）グラム染色：陰性 （ｂ）生育状態 前記培地１の組成の１．５％寒天培地で２５℃、７日間
培養したときの生育状態は以下のとおり。 （１）形状：円形 （２）周縁：円滑 （３）隆起：盛り上がる。ただし乳頭様( umbonate )で
はない。 （４）表面：円滑 （５）色調：黄色 （ｃ）生理学的性質 （１）Ｏ−Ｆテスト（Hugh Leifson法による）：陰性 （２）生育の範囲：最適ｐＨ：６．５ 生育ｐＨ：４．
０〜７．０ 最適温度：２８℃ 生育温度：２５〜４０℃ （３）塩化ナトリウム５％：陰性 （４）トリフェニ−ルテトラゾリウムクロライド０．１
％：陰性 （５）メチルグリ−ン０．０２％：ｄ （６）ユビキノン：Ｑ８ （７）シュクロ−スからのレバノン産生性：陰性 （８）アルギニン加水分解性：陰性 （９）オキシダ−ゼ反応：陰性 （10）脱窒反応：陰性 （11）主要な菌体脂肪酸：13−メチ−ル テトラデカン
酸（ｉ−ｃ１５：０） （12) ＧＣ（グアニン、シトシン）含量：６６．８％ （ｄ）炭素源の資化性 培地組成が硫酸アンモニウム８g/l、リン酸一水素カリウ
ム０．３g/l、リン酸ニ水素カリウム０．２g/l、硫酸マグ
ネシウム・７水塩０．５g/l、塩化カリウム１０．２g/l、
メチオニン５０mg/l、 寒天１５g/l、コハク酸塩１g/l、Ｄ
−ガラクト−ス２g/l、グルコ−ス２g/l、プロピオン酸塩
１g/l の培地（培地３という）に接種し、３０℃で培養
後生育を示したものを陽性とした。 （１）資化されたもの：グルコ−ス、 トレハロ−ス、 コ
ハク酸塩 （２）資化されないもの：Ｄ−ガラクト−ス、 プロピオ
ン酸塩、 ２−ケトグルコン酸塩、 メソイノシト−ル、 Ｌ
−バリン、 β−アラニン、 ＤＬ−アルギニン、馬尿酸塩
学的性質の検討はバ−ジェ−ズ・マニュアル・オブ・シ
ステマチック・バクテリオロジ−（Bergey's Manual of
Systematic Bacteriology（１９８４)、Ｖol. １、 およ
び長谷川武治著、微生物の分類と同定（１９８５)、学会
出版センタ−による。 （ａ）形態 （１）細胞の形および大きさ：単独もしくは２〜３連の
直桿菌で０．５×２．０μｍ （２）べん毛：極べん毛なし （３）胞子形成：なし （４）グラム染色：陰性 （ｂ）生育状態 前記培地１の組成の１．５％寒天培地で２５℃、７日間
培養したときの生育状態は以下のとおり。 （１）形状：円形 （２）周縁：円滑 （３）隆起：盛り上がる。ただし乳頭様( umbonate )で
はない。 （４）表面：円滑 （５）色調：黄色 （ｃ）生理学的性質 （１）Ｏ−Ｆテスト（Hugh Leifson法による）：陰性 （２）生育の範囲：最適ｐＨ：６．５ 生育ｐＨ：４．
０〜７．０ 最適温度：２８℃ 生育温度：２５〜４０℃ （３）塩化ナトリウム５％：陰性 （４）トリフェニ−ルテトラゾリウムクロライド０．１
％：陰性 （５）メチルグリ−ン０．０２％：ｄ （６）ユビキノン：Ｑ８ （７）シュクロ−スからのレバノン産生性：陰性 （８）アルギニン加水分解性：陰性 （９）オキシダ−ゼ反応：陰性 （10）脱窒反応：陰性 （11）主要な菌体脂肪酸：13−メチ−ル テトラデカン
酸（ｉ−ｃ１５：０） （12) ＧＣ（グアニン、シトシン）含量：６６．８％ （ｄ）炭素源の資化性 培地組成が硫酸アンモニウム８g/l、リン酸一水素カリウ
ム０．３g/l、リン酸ニ水素カリウム０．２g/l、硫酸マグ
ネシウム・７水塩０．５g/l、塩化カリウム１０．２g/l、
メチオニン５０mg/l、 寒天１５g/l、コハク酸塩１g/l、Ｄ
−ガラクト−ス２g/l、グルコ−ス２g/l、プロピオン酸塩
１g/l の培地（培地３という）に接種し、３０℃で培養
後生育を示したものを陽性とした。 （１）資化されたもの：グルコ−ス、 トレハロ−ス、 コ
ハク酸塩 （２）資化されないもの：Ｄ−ガラクト−ス、 プロピオ
ン酸塩、 ２−ケトグルコン酸塩、 メソイノシト−ル、 Ｌ
−バリン、 β−アラニン、 ＤＬ−アルギニン、馬尿酸塩
【００１０】（ｅ）在来の類似種との比較 上記菌学的性質および下記の植物に対する病原性からこ
の発明のテンサイ苗立枯病の病原菌に効果的に拮抗作用
を有する微生物は、好気性のグラム陰性桿菌であり、ユ
ビキノンＱ８を持ち、主要な菌体脂肪酸は分岐酸である
13−メチル テトラデカン酸を持つこと、ＧＣ（グアニ
ン、シトシン）含量が６６．８％であることから判断し
てキサントモナス（Xanthomonas)属に属する細菌である
ことが明らかであり、植物に対する病原性およびＤ−ガ
ラクト−ス、プロピオン酸塩の資化性が何れも陰性であ
ることから、キサントモナス キャンペストリス（Xant
homonas campestris）とは異なり、また、コロニ−の形
状が乳頭様（umbonate) でないこと、塩化ナトリウム４
％およびトリフェニ−ルテトラゾリウムクロライド０．
１％で生育できないことの点からキサントモナス マル
トフィリア（Xanthomonas maltophilia)ではないことか
ら、キサントモナス（Xanthomonas)属に属する新菌種で
あると判断し、キサントモナス エスピ−（Xanthomona
s sp.)ＳＢ−Ｋ８８と命名した。この新拮抗細菌は工業
技術院生命工学工業技術研究所に平成５年８月２３日付
でFERM P-13821として寄託されている。
の発明のテンサイ苗立枯病の病原菌に効果的に拮抗作用
を有する微生物は、好気性のグラム陰性桿菌であり、ユ
ビキノンＱ８を持ち、主要な菌体脂肪酸は分岐酸である
13−メチル テトラデカン酸を持つこと、ＧＣ（グアニ
ン、シトシン）含量が６６．８％であることから判断し
てキサントモナス（Xanthomonas)属に属する細菌である
ことが明らかであり、植物に対する病原性およびＤ−ガ
ラクト−ス、プロピオン酸塩の資化性が何れも陰性であ
ることから、キサントモナス キャンペストリス（Xant
homonas campestris）とは異なり、また、コロニ−の形
状が乳頭様（umbonate) でないこと、塩化ナトリウム４
％およびトリフェニ−ルテトラゾリウムクロライド０．
１％で生育できないことの点からキサントモナス マル
トフィリア（Xanthomonas maltophilia)ではないことか
ら、キサントモナス（Xanthomonas)属に属する新菌種で
あると判断し、キサントモナス エスピ−（Xanthomona
s sp.)ＳＢ−Ｋ８８と命名した。この新拮抗細菌は工業
技術院生命工学工業技術研究所に平成５年８月２３日付
でFERM P-13821として寄託されている。
【００１１】（ｆ）培養方法 上記で命名したキサントモナス エスピ−（Xanthomona
s sp.)ＳＢ−Ｋ８８の培養は原則的には一般的な細菌の
場合と同様であるが、上記培地１、培地２および培地３
の何れにおいても良く生育する。
s sp.)ＳＢ−Ｋ８８の培養は原則的には一般的な細菌の
場合と同様であるが、上記培地１、培地２および培地３
の何れにおいても良く生育する。
【００１２】（ｇ）植物に対する病原性 プロテオ−ス ペプトン＃３（Difco)２０．０g/l、リン
酸一水素カリウム１．５g/l、硫酸マグネシウム・７水塩
１．５g/l、グリセロ−ル１５ml、 寒天１５．０g/l、蒸留
水１０００ml組成の培地に２５℃、３日間培養したコロ
ニ−に爪揚枝先端を刺し入れて菌を付着させ、その先端
をダイコンおよびテンサイの幼苗と、ダイコン、ハクサ
イ、キャベツ、シロナ、タイナ、タアサイ、チンゲンサ
イおよびテンサイの切葉のそれぞれの葉部の表裏の葉脈
部に突き刺して接種し、湿室に入れ２３℃の陽光定温器
内に静置し、発病の有無を病原性既知のキサントモナス
キャンペストリス パソバ− キャンペストリス（Xant
homonas campestris pv.campestris)との対比により確
認した結果、上記で命名したキサントモナス エスピ−
（Xanthomonas sp.)ＳＢ−Ｋ８８には病原性は認めなか
った。
酸一水素カリウム１．５g/l、硫酸マグネシウム・７水塩
１．５g/l、グリセロ−ル１５ml、 寒天１５．０g/l、蒸留
水１０００ml組成の培地に２５℃、３日間培養したコロ
ニ−に爪揚枝先端を刺し入れて菌を付着させ、その先端
をダイコンおよびテンサイの幼苗と、ダイコン、ハクサ
イ、キャベツ、シロナ、タイナ、タアサイ、チンゲンサ
イおよびテンサイの切葉のそれぞれの葉部の表裏の葉脈
部に突き刺して接種し、湿室に入れ２３℃の陽光定温器
内に静置し、発病の有無を病原性既知のキサントモナス
キャンペストリス パソバ− キャンペストリス（Xant
homonas campestris pv.campestris)との対比により確
認した結果、上記で命名したキサントモナス エスピ−
（Xanthomonas sp.)ＳＢ−Ｋ８８には病原性は認めなか
った。
【００１３】次に上記で説明した新拮抗細菌キサントモ
ナス エスピ−（Xanthomonas sp.)ＳＢ−Ｋ８８（以下
単に「ＳＢ−Ｋ８８」という）のスクリ−ニングとテン
サイ苗立枯病の抑制および発芽促進の状況について試験
例をもって説明する。
ナス エスピ−（Xanthomonas sp.)ＳＢ−Ｋ８８（以下
単に「ＳＢ−Ｋ８８」という）のスクリ−ニングとテン
サイ苗立枯病の抑制および発芽促進の状況について試験
例をもって説明する。
【００１４】 試験例−１（ＳＢ−Ｋ８８のスクリ−ニング） 北海道帯広市上清川町のテンサイ連作圃場に栽培したテ
ンサイ細根から分離した３７４の菌株を前記培地３で３
日間培養した菌体のそれぞれを同一条件下でコ−ティン
グしたテンサイ単胚種子モノエ−ス・Ｓ（品種、以下同
じ）を、自然汚染土壌を充填した素焼鉢（径１２cm、 高
さ１２cm）１鉢当たり１３粒宛播種し温室内で２週間育
苗する育苗試験を行なった結果、苗立枯病の抑制を示し
た４１株が選別された。これら４１株について、更に上
記同様の育苗テストを反復して苗立枯病の発病抑制に高
い再現性を示した１１株が選別された。
ンサイ細根から分離した３７４の菌株を前記培地３で３
日間培養した菌体のそれぞれを同一条件下でコ−ティン
グしたテンサイ単胚種子モノエ−ス・Ｓ（品種、以下同
じ）を、自然汚染土壌を充填した素焼鉢（径１２cm、 高
さ１２cm）１鉢当たり１３粒宛播種し温室内で２週間育
苗する育苗試験を行なった結果、苗立枯病の抑制を示し
た４１株が選別された。これら４１株について、更に上
記同様の育苗テストを反復して苗立枯病の発病抑制に高
い再現性を示した１１株が選別された。
【００１５】上記で選別できた１１株のそれぞれを、上
記と同様にコ−ティングしたテンサイ単胚種子を、自然
汚染土壌単独、およびテンサイ苗立枯病の主要な病原菌
であるリゾクトニア ソラニ（Rhizoctonia solani) Ａ
Ｇ−４、 ピシュウム ウルチマム(Pythium ultimum)、
アファノマイセス コクリオイデス（Aphanomyces coch
lioides)をそれぞれ接種した砂壌土（淡色黒ボク土壌）
を充填したペ−パ−ポット（対角径０．９cm、 高さ１３
cmの六角柱状）に１粒／ポット宛で播種しビニ−ルハウ
ス内で３５日間育苗テストを行なった。テストの結果を
菌体のコ−ト処理なしの上記種子を上記各土壌に播種し
た場合（無処理）、および同種子を上記各土壌にタチガ
レン（粉剤）とPCNB（粉剤）をそれぞれ有効成分が５０
ppm となるように混合した土壌に播種した場合（薬剤処
理）を対照として表１に示す。
記と同様にコ−ティングしたテンサイ単胚種子を、自然
汚染土壌単独、およびテンサイ苗立枯病の主要な病原菌
であるリゾクトニア ソラニ（Rhizoctonia solani) Ａ
Ｇ−４、 ピシュウム ウルチマム(Pythium ultimum)、
アファノマイセス コクリオイデス（Aphanomyces coch
lioides)をそれぞれ接種した砂壌土（淡色黒ボク土壌）
を充填したペ−パ−ポット（対角径０．９cm、 高さ１３
cmの六角柱状）に１粒／ポット宛で播種しビニ−ルハウ
ス内で３５日間育苗テストを行なった。テストの結果を
菌体のコ−ト処理なしの上記種子を上記各土壌に播種し
た場合（無処理）、および同種子を上記各土壌にタチガ
レン（粉剤）とPCNB（粉剤）をそれぞれ有効成分が５０
ppm となるように混合した土壌に播種した場合（薬剤処
理）を対照として表１に示す。
【００１６】
【表１】
【００１７】表１において、各数値は苗立枯病の罹病度
を示し、発病の程度を各個体ごとに０〜２の４段階の発
病指数で調査し、下記の式により罹病度を求めた。結果
の判定はDuncanの多重検定により行なった。
を示し、発病の程度を各個体ごとに０〜２の４段階の発
病指数で調査し、下記の式により罹病度を求めた。結果
の判定はDuncanの多重検定により行なった。
【００１８】 発病指数 判定基準 ２ 出芽前立枯を起こしているもの １ 出芽後立枯を起こしているもの ０．５ 軽症（立枯は起こしていないが罹病しているもの） ０ 健全のもの 罹病度＝｛［（個々体×指数）の合計］／（発病指数２
×全個体数）｝×１００
×全個体数）｝×１００
【００１９】その結果によると、ＳＢ−Ｋ８８に自然汚
染土壌、および病原菌接種土壌の全てにおいて薬剤施用
の抑制に同程度の良好な抑制を認めた。残りの菌株につ
いても、生息あるいは接種した病原菌別に一部の菌株に
ある程度の抑制を認めたが、ＳＢ−Ｋ８８のそれには到
底及ばず、テンサイ苗立枯病の防除に有効な菌株として
ＳＢ−Ｋ８８、即ちこの発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８
が最も有効な菌株として選別された。
染土壌、および病原菌接種土壌の全てにおいて薬剤施用
の抑制に同程度の良好な抑制を認めた。残りの菌株につ
いても、生息あるいは接種した病原菌別に一部の菌株に
ある程度の抑制を認めたが、ＳＢ−Ｋ８８のそれには到
底及ばず、テンサイ苗立枯病の防除に有効な菌株として
ＳＢ−Ｋ８８、即ちこの発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８
が最も有効な菌株として選別された。
【００２０】 試験例−２（ＳＢ−Ｋ８８の濃度と抑制） 上記試験例−１で選別されたＳＢ−Ｋ８８の有効濃度に
ついて上記ペ−パ−ポットによる育苗試験の要領で自然
汚染土を用いて行なった。種子にコ−ティングする菌体
濃度を１０6、１０7、１０8cfu/1粒種子(cfuはcolony for
ming unit の略) と設定し、１試験区３０個体（１粒／
ポット）の４反復とした。その結果を上記試験例−１と
同様に無処理、薬剤処理を対照として表２に示す。
ついて上記ペ−パ−ポットによる育苗試験の要領で自然
汚染土を用いて行なった。種子にコ−ティングする菌体
濃度を１０6、１０7、１０8cfu/1粒種子(cfuはcolony for
ming unit の略) と設定し、１試験区３０個体（１粒／
ポット）の４反復とした。その結果を上記試験例−１と
同様に無処理、薬剤処理を対照として表２に示す。
【００２１】
【表２】
【００２２】表２から菌体濃度を高くするにつれて抑制
が強化する傾向が認められ、濃度が１０6cfu/ １粒種子
では殆ど抑制は期待できず、薬剤処理に同等の抑制を期
待するには１０7cfu/1粒種子以上、好ましくは１０8cfu
/1粒種子以上が実用濃度であることが知れた。
が強化する傾向が認められ、濃度が１０6cfu/ １粒種子
では殆ど抑制は期待できず、薬剤処理に同等の抑制を期
待するには１０7cfu/1粒種子以上、好ましくは１０8cfu
/1粒種子以上が実用濃度であることが知れた。
【００２３】上記で、この発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８
８がテンサイ苗立枯病の防除に有効な微生物であること
を明らかにしたが、このような抑制作用はテンサイの種
子にＳＢ−Ｋ８８をコ−ティング処理することによって
達せられ、その処理は上記試験例のように単に種子に付
着させるだけでもよく、また付着させた後に更に適当な
被覆剤により被覆したペレット状に加工してもよく、処
理の態様によって抑制が影響されるものではなく、栽培
条件に対応して適宜選択すればよい。
８がテンサイ苗立枯病の防除に有効な微生物であること
を明らかにしたが、このような抑制作用はテンサイの種
子にＳＢ−Ｋ８８をコ−ティング処理することによって
達せられ、その処理は上記試験例のように単に種子に付
着させるだけでもよく、また付着させた後に更に適当な
被覆剤により被覆したペレット状に加工してもよく、処
理の態様によって抑制が影響されるものではなく、栽培
条件に対応して適宜選択すればよい。
【００２４】この発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８による
苗立枯病発病の良好な抑制が如何なる作用機序によるの
かは定かではないが、種子にコ−ティングした菌体がテ
ンサイ苗の根圏で十分に増殖して病原菌に量的に勝り病
原菌の感染、活動を防御するのか、あるいは何か強烈な
抗菌物質を産生して、これによって病原菌そのものを死
滅あるいは不活化せしめるのかは今後の研究に待たれる
ところであるが、この発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８の
提供がテンサイの栽培を大きく改善することは意義が深
い。なお、この発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８には、上
記テンサイの苗立枯病防除に有効なばかりではなく、特
に低温時（１５℃前後）における発芽を促進する作用も
持ち合わせていることが知れた。そして、この場合には
種子にコ−ティング処理し、更に被覆剤によりペレット
状に加工したときにより良好となる傾向が認められた。
これにつき試験例３で説明する。
苗立枯病発病の良好な抑制が如何なる作用機序によるの
かは定かではないが、種子にコ−ティングした菌体がテ
ンサイ苗の根圏で十分に増殖して病原菌に量的に勝り病
原菌の感染、活動を防御するのか、あるいは何か強烈な
抗菌物質を産生して、これによって病原菌そのものを死
滅あるいは不活化せしめるのかは今後の研究に待たれる
ところであるが、この発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８の
提供がテンサイの栽培を大きく改善することは意義が深
い。なお、この発明の新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８には、上
記テンサイの苗立枯病防除に有効なばかりではなく、特
に低温時（１５℃前後）における発芽を促進する作用も
持ち合わせていることが知れた。そして、この場合には
種子にコ−ティング処理し、更に被覆剤によりペレット
状に加工したときにより良好となる傾向が認められた。
これにつき試験例３で説明する。
【００２５】 試験例−３（テンサイ種子の処理別発芽） テンサイの育苗において、育苗開始後３〜５日目の初期
発芽が其の後の苗完成強いてはテンサイの収穫に重要な
要件となるため、可能な限り初期発芽が高い条件を設定
する。そこで、ＳＢ−Ｋ８８が初期発芽にどのように関
与するかについて試験した。
発芽が其の後の苗完成強いてはテンサイの収穫に重要な
要件となるため、可能な限り初期発芽が高い条件を設定
する。そこで、ＳＢ−Ｋ８８が初期発芽にどのように関
与するかについて試験した。
【００２６】凍結保存菌株から分取したＳＢ−Ｋ８８を
前記培地３で３日間培養後、遠心法により洗浄した菌体
に菌体濃度が１０7 cfu/１粒種子となるように蒸留水を
加えて菌体けん濁液を調製し、これにテンサイ単胚種子
モノエ−ス・Ｓ（元種子）４０ｇ（約４０００粒）を加
えてＳＢ−Ｋ８８を付着させた後取り出し風乾してＳＢ
−Ｋ８８コ−ト処理種子を調製した。このＳＢ−Ｋ８８
コ−ト処理種子を２分し、その一方をＳＢ−Ｋ８８コ−
ト処理種子として供試し、他方を釜型造粒機（仕様：径
４４cm、 深さ１４cm、 平底、上部に１４cmの開口がある
球形回転釜、 ３０rpm、回転角度３０〜４０度) の中に２
０ｇ量で供給し、回転させながら、水と、珪酸塩類を主
剤とする被覆剤とＰＶＡ（水溶性糊）を主とする結合剤
の混合粉剤を散布し、粒径がおよそ４．５mmとなるまで
造粒し、これを取り出し、風乾してＳＢ−Ｋ８８コ−ト
＋ペレット処理種子を調製した。
前記培地３で３日間培養後、遠心法により洗浄した菌体
に菌体濃度が１０7 cfu/１粒種子となるように蒸留水を
加えて菌体けん濁液を調製し、これにテンサイ単胚種子
モノエ−ス・Ｓ（元種子）４０ｇ（約４０００粒）を加
えてＳＢ−Ｋ８８を付着させた後取り出し風乾してＳＢ
−Ｋ８８コ−ト処理種子を調製した。このＳＢ−Ｋ８８
コ−ト処理種子を２分し、その一方をＳＢ−Ｋ８８コ−
ト処理種子として供試し、他方を釜型造粒機（仕様：径
４４cm、 深さ１４cm、 平底、上部に１４cmの開口がある
球形回転釜、 ３０rpm、回転角度３０〜４０度) の中に２
０ｇ量で供給し、回転させながら、水と、珪酸塩類を主
剤とする被覆剤とＰＶＡ（水溶性糊）を主とする結合剤
の混合粉剤を散布し、粒径がおよそ４．５mmとなるまで
造粒し、これを取り出し、風乾してＳＢ−Ｋ８８コ−ト
＋ペレット処理種子を調製した。
【００２７】別に、上記元種子を上記手法でペレット加
工したペレット処理種子を調製し、ここで調製した３形
態の種子と元種子について、瀘紙法（公定法）により、
設定温度１５℃、２５℃、１区１００粒、４反復の条件
設定により発芽試験開始後３日目発芽率を測定した。こ
の結果を表３に示す。
工したペレット処理種子を調製し、ここで調製した３形
態の種子と元種子について、瀘紙法（公定法）により、
設定温度１５℃、２５℃、１区１００粒、４反復の条件
設定により発芽試験開始後３日目発芽率を測定した。こ
の結果を表３に示す。
【００２８】
【表３】
【００２９】表３から、処理別の発芽率を考察すると、
発芽設定温度が１５℃においては、元種子の発芽率を基
準にして、ペレット処理種子では発芽率実数で２４．３
％の発芽性上昇の改善が、同様にＳＢ−Ｋ８８コ−ト処
理種子では８．０％の発芽性上昇の改善が、また、ＳＢ
−Ｋ８８コ−ト＋ペレット処理種子では４６．３％の発
芽性上昇の改善が認められた。ＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペ
レット処理種子がもたらす４６．３％の発芽性上昇の改
善には前二者の発芽性上昇の改善を含むが、前二者の発
芽性上昇の改善を相加した値は３２．３％でありこれを
大きく越えるものである。このことから、ＳＢ−Ｋ８８
コ−ト＋ペレット処理種子がもたらす発芽性上昇の改善
はＳＢ−Ｋ８８コ−トとペレット化の二つの処理が相乗
的に効果した結果と認めることができる。
発芽設定温度が１５℃においては、元種子の発芽率を基
準にして、ペレット処理種子では発芽率実数で２４．３
％の発芽性上昇の改善が、同様にＳＢ−Ｋ８８コ−ト処
理種子では８．０％の発芽性上昇の改善が、また、ＳＢ
−Ｋ８８コ−ト＋ペレット処理種子では４６．３％の発
芽性上昇の改善が認められた。ＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペ
レット処理種子がもたらす４６．３％の発芽性上昇の改
善には前二者の発芽性上昇の改善を含むが、前二者の発
芽性上昇の改善を相加した値は３２．３％でありこれを
大きく越えるものである。このことから、ＳＢ−Ｋ８８
コ−ト＋ペレット処理種子がもたらす発芽性上昇の改善
はＳＢ−Ｋ８８コ−トとペレット化の二つの処理が相乗
的に効果した結果と認めることができる。
【００３０】一方、発芽設定温度が２５℃の場合には、
温度の要因が大きく作用し、処理別には殆ど無関係に８
０％台の発芽率を示し、ＳＢ−Ｋ８８コ−ト処理、ペレ
ット化による発芽性改善は殆ど認められない。このこと
から、テンサイ種子のＳＢ−Ｋ８８コ−ト、ペレット化
の処理は、１５℃のような低温の環境、例えば冬期乃至
は春先に育苗を行なう場合に有効な手段を提供する。
温度の要因が大きく作用し、処理別には殆ど無関係に８
０％台の発芽率を示し、ＳＢ−Ｋ８８コ−ト処理、ペレ
ット化による発芽性改善は殆ど認められない。このこと
から、テンサイ種子のＳＢ−Ｋ８８コ−ト、ペレット化
の処理は、１５℃のような低温の環境、例えば冬期乃至
は春先に育苗を行なう場合に有効な手段を提供する。
【００３１】以上詳細に説明したように、この発明のキ
サントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ
−Ｋ８８はテンサイの栽培に利用して、重要病害である
苗立枯病を防除し、また低温環境にある育苗において初
期の発芽勢を促進して発芽揃いをもたらすので、従来知
られていない産業上極めて有用な微生物である。
サントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ
−Ｋ８８はテンサイの栽培に利用して、重要病害である
苗立枯病を防除し、また低温環境にある育苗において初
期の発芽勢を促進して発芽揃いをもたらすので、従来知
られていない産業上極めて有用な微生物である。
【００３２】
実施例１ 上記試験例３の要領で、濃度１０7cfu/l粒種子のＳＢ−
Ｋ８８をテンサイ単胚種子モノエ−ス・Ｓにコ−ト処理
し、風乾後ペレット加工して、粒径４．３〜４．６mm範
囲のＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペレット種子２０ｇ（約２０
００粒）を調製し、対照として、テンサイ単胚種子モノ
エ−ス・Ｓを単にペレット加工した粒径４．３〜４．６
mm範囲のペレット種子約２０００粒を調製した。
Ｋ８８をテンサイ単胚種子モノエ−ス・Ｓにコ−ト処理
し、風乾後ペレット加工して、粒径４．３〜４．６mm範
囲のＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペレット種子２０ｇ（約２０
００粒）を調製し、対照として、テンサイ単胚種子モノ
エ−ス・Ｓを単にペレット加工した粒径４．３〜４．６
mm範囲のペレット種子約２０００粒を調製した。
【００３３】対角径が１９mm、 高さ１３０mmの六角柱状
のペ−パ−ポット５０本を１区として、これをＡ、Ｂ、
Ｃの３区の３反復を用意し、これら３区のペ−パ−ポッ
トのそれぞれに、テンサイ苗立枯病の病原菌の生息が認
められたテンサイ栽培圃場の土壌を常法により詰め、填
圧により上部におよそ１５mmの覆土空間部を形成し、Ａ
区には上記で調製したＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペレット種
子を、Ｂ、Ｃ区には単にペレット加工したペレット種子
をそれぞれ、１粒／ポットで填圧土壌上部に播種し、Ａ
区、Ｃ区の覆土空間部には上記テンサイ栽培圃場の土壌
を、Ｂ区の覆土空間部には上記テンサイ栽培圃場の土壌
１Kgに薬剤リゾレックスＨ（粉剤）を１８ｇ混合した薬
剤処理土壌をそれぞれ覆土して播種を完了し、ビニ−ル
ハウス内の同一条件において常法による灌水管理下で育
苗した。
のペ−パ−ポット５０本を１区として、これをＡ、Ｂ、
Ｃの３区の３反復を用意し、これら３区のペ−パ−ポッ
トのそれぞれに、テンサイ苗立枯病の病原菌の生息が認
められたテンサイ栽培圃場の土壌を常法により詰め、填
圧により上部におよそ１５mmの覆土空間部を形成し、Ａ
区には上記で調製したＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペレット種
子を、Ｂ、Ｃ区には単にペレット加工したペレット種子
をそれぞれ、１粒／ポットで填圧土壌上部に播種し、Ａ
区、Ｃ区の覆土空間部には上記テンサイ栽培圃場の土壌
を、Ｂ区の覆土空間部には上記テンサイ栽培圃場の土壌
１Kgに薬剤リゾレックスＨ（粉剤）を１８ｇ混合した薬
剤処理土壌をそれぞれ覆土して播種を完了し、ビニ−ル
ハウス内の同一条件において常法による灌水管理下で育
苗した。
【００３４】発芽は育苗開始後５日目から認められ、８
日目に至って略々出揃った。その後４０日目まで育苗を
継続して成苗を計った。８日目〜育苗完了の間において
苗立枯病の発生が認められた。８日目の初期出芽率、１
４日目の総出芽率および４０日目の得苗率（播種数に対
する健全苗の％）の調査結果を表４に示す。
日目に至って略々出揃った。その後４０日目まで育苗を
継続して成苗を計った。８日目〜育苗完了の間において
苗立枯病の発生が認められた。８日目の初期出芽率、１
４日目の総出芽率および４０日目の得苗率（播種数に対
する健全苗の％）の調査結果を表４に示す。
【００３５】
【表４】
【００３６】ＳＢ−Ｋ８８コ−ト＋ペレット種子を播種
したＡ区は、他の２区に比して初期出芽が良好で総出芽
も良好に推移し、得苗率も９０％に及ぶ成績を認めた。
覆土を薬剤処理したＢ区は、覆土を何も処理しないＣ区
に僅少勝るが、得苗率でＡ区をおよそ実数で３０％下回
る成績であった。
したＡ区は、他の２区に比して初期出芽が良好で総出芽
も良好に推移し、得苗率も９０％に及ぶ成績を認めた。
覆土を薬剤処理したＢ区は、覆土を何も処理しないＣ区
に僅少勝るが、得苗率でＡ区をおよそ実数で３０％下回
る成績であった。
【００３７】
【発明の効果】この発明によるときは、キサントモナス
（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８は凍
結保存でき、使用に当たりその一部を取り出して容易に
増殖できるので、取り扱いが簡単であり、また使用は増
殖した上記新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイの種子に
コ−ト処理するだけ、あるいはコ−ト処理後ペレット加
工する簡単な処理でよく、取り扱いが容易であり、この
様に新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をコ−トした種子を播種す
ることにより、常時発芽の揃った健苗をもたらし、これ
により品質の良好なテンサイの収穫を結果するので、テ
ンサイの健苗育成および栽培に極めて有益である。
（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８は凍
結保存でき、使用に当たりその一部を取り出して容易に
増殖できるので、取り扱いが簡単であり、また使用は増
殖した上記新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をテンサイの種子に
コ−ト処理するだけ、あるいはコ−ト処理後ペレット加
工する簡単な処理でよく、取り扱いが容易であり、この
様に新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８をコ−トした種子を播種す
ることにより、常時発芽の揃った健苗をもたらし、これ
により品質の良好なテンサイの収穫を結果するので、テ
ンサイの健苗育成および栽培に極めて有益である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 神沢 克一 北海道帯広市稲田町南９線西19番地 (72)発明者 佐山 充 北海道札幌市豊平区羊ケ丘１番地 農試寮
Claims (4)
- 【請求項１】 テンサイに対して病原性を示さないキサ
ントモナス（Xanthomonas)属に属する新拮抗細菌ＳＢ−
Ｋ８８、その培養物もしくはその処理物。 - 【請求項２】 キサントモナス（Xanthomonas)属に属す
る新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８、その培養物もしくはその処
理物をテンサイ種子にコ−ト処理することにより苗立枯
病を防除することを特徴とするテンサイ健苗育成方法。 - 【請求項３】 キサントモナス（Xanthomonas)属に属す
る新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８、その培養物もしくはその処
理物をテンサイ種子にコ−ト処理することにより発芽を
促進することを特徴とするテンサイ健苗育成方法。 - 【請求項４】 キサントモナス（Xanthomonas)属に属す
る新拮抗細菌ＳＢ−Ｋ８８、その培養物もしくはその処
理物をテンサイ種子にコ−ト処理したテンサイ種子をペ
レット加工することにより低温時の初期発芽を促進する
ことを特徴とするテンサイ健苗育成方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24608293A JP2955642B2 (ja) | 1993-09-08 | 1993-09-08 | キサントモナス属に属する新拮抗細菌ｓｂ−ｋ８８とそれを利用したテンサイ健苗育成方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP24608293A JP2955642B2 (ja) | 1993-09-08 | 1993-09-08 | キサントモナス属に属する新拮抗細菌ｓｂ−ｋ８８とそれを利用したテンサイ健苗育成方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0775562A true JPH0775562A (ja) | 1995-03-20 |
| JP2955642B2 JP2955642B2 (ja) | 1999-10-04 |
Family
ID=17143221
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP24608293A Expired - Fee Related JP2955642B2 (ja) | 1993-09-08 | 1993-09-08 | キサントモナス属に属する新拮抗細菌ｓｂ−ｋ８８とそれを利用したテンサイ健苗育成方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2955642B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6823623B2 (en) | 2000-06-22 | 2004-11-30 | Takii & Company, Limited | Method of controlling seed disease |
| JP2013215189A (ja) * | 2012-03-16 | 2013-10-24 | National Agriculture & Food Research Organization | 非病原性キサントモナス属細菌菌株及び該菌株を用いた微生物農薬 |
-
1993
- 1993-09-08 JP JP24608293A patent/JP2955642B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6823623B2 (en) | 2000-06-22 | 2004-11-30 | Takii & Company, Limited | Method of controlling seed disease |
| JP2013215189A (ja) * | 2012-03-16 | 2013-10-24 | National Agriculture & Food Research Organization | 非病原性キサントモナス属細菌菌株及び該菌株を用いた微生物農薬 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2955642B2 (ja) | 1999-10-04 |
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