JPH078272A - Va菌根菌胞子の分離方法 - Google Patents

Va菌根菌胞子の分離方法

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JPH078272A
JPH078272A JP17463493A JP17463493A JPH078272A JP H078272 A JPH078272 A JP H078272A JP 17463493 A JP17463493 A JP 17463493A JP 17463493 A JP17463493 A JP 17463493A JP H078272 A JPH078272 A JP H078272A
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spores
mycorrhizal
gigaspora
genus
mycorrhizal fungi
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JP17463493A
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Hideo Miyamoto
秀夫 宮本
Jin Miyamoto
人 宮本
Masakazu Sakai
昌和 坂井
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Idemitsu Kosan Co Ltd
Original Assignee
Idemitsu Kosan Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】 【構成】 ギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA菌
根菌の胞子を分離するにあたり、乾式篩を用いて分離す
ることを特徴とするVA菌根菌胞子の分離方法。 【効果】 本発明の方法によれば、農業や園芸業などの
分野で有用なギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA
菌根菌の胞子を効率的に分離回収することができる。し
かも本発明の方法では、水などを用いていないため、分
離した後の保存安定性に優れており、高活性な状態のま
まのギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の
胞子を得ることができる。したがって、高活性で、保存
安定性が高く、実用性の高いVA菌根菌接種物を作製す
ることができる。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、農業や園芸等の分野で
有用なギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌
の胞子を効率的に分離回収する方法に関する。このよう
にして得られたギガスポラ( Gigaspora )属に属するV
A菌根菌の胞子は、高活性であり、しかも保存安定性が
高いため、実用性の高いVA菌根菌接種物を作製するこ
とが可能となる。
【0002】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】VA菌
根菌( Vesicular Arbuscular Mycorrhizae ) は、植物
の根に共生することにより、植物の生長を促進したり、
植物の耐病性等を向上させる働きがあり、その有用性は
古くから知られている(小川 眞著:VA菌根とその働
き,森林立地,第30(2)巻,第57〜65頁,19
88年.小林紀彦著:VA菌根菌と土壌病害への利用,
植物防疫,第42巻,第259〜266頁,1988年
など)。
【0003】しかしながら、VA菌根菌を人工的に増殖
させ、VA菌根菌接種物として商業的に使えるようなも
のは、これまで殆ど製造されておらず、本出願人がグロ
ムス属VA菌根菌で実用化したのが最初であると思われ
る(特願平3−337892号)。そして、これ以外の
他の属に属するVA菌根菌、〔例えば、ギガスポラ( G
igaspora )属,アカウロスポラ( Acaulospora )属, エ
ントロフォスポラ( Entrophospora )属, スクレロシス
ティス( Sclerocystis ) 属, スカテロスポラ( Scute
llospora )属〕に関しては、未だ実用化に至っていない
のが現状である。
【0004】これは、VA菌根菌、特にギガスポラ( G
igaspora) 属に属するVA菌根菌の大量培養が非常に難
しく、また培養操作が煩雑であり、コストがかかること
が主な原因とされている。
【0005】ギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA
菌根菌を接種物として利用する場合、増殖された胞子
を、湿式篩(ウエットシーブ法)により分離回収して、
接種物とするのが一般的であるが、大量に胞子を分離す
る場合、分離作業が煩雑で実用的でなく、しかも、得ら
れるVA菌根菌が保存安定性に欠けると共に、活性の高
い胞子を得ることができないという問題があった。
【0006】そこで本発明者らは、これらの問題を解決
すべく鋭意研究を進めた結果、驚くべきことに、乾式篩
を用いて胞子を分離することにより、分離作業が簡単で
あるばかりでなく、保存安定性に優れ、しかも活性の高
いVA菌根菌の胞子を得ることができることを見出し、
この知見に基づいて本発明を完成するに到った。
【0007】
【課題を解決するための手段】すなわち本発明は、ギガ
スポラ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞子を分
離するにあたり、乾式篩を用いて分離することを特徴と
するVA菌根菌胞子の分離方法を提供するものである。
【0008】VA菌根菌は、土壌中に存在する接合菌の
一種であり、その菌糸が様々な植物の根について菌根を
形成し、両者が共生することが知られている。本発明の
方法においては、種々のVA菌根菌の中でも特に、従
来、高密度で増殖させることが困難であったギガスポラ
( Gigaspora )属に属するVA菌根菌を選択的に用い
る。
【0009】ここでギガスポラ ( Gigaspora )属に属す
るVA菌根菌としては、例えばギガスポラ・マルガリタ
( Gigaspora margarita ),ギガスポラ・アルビダ
( Gigaspora albida ),ギガスポラ・ギガンタ( Gig
aspora gigantea ),ギガスポラ・カロスポラ( Gigas
pora calospora ),ギガスポラ・ヘテロガマ( Gigas
pora heterogama )等を挙げることができる。
【0010】本発明は、上記の如きギガスポラ( Gigas
pora )属に属するVA菌根菌の胞子を分離するにあた
り、乾式篩を用いて分離することを特徴とするものであ
る。すなわち、ギガスポラ( Gigaspora )属に属するV
A菌根菌の胞子は、自然界から得るにせよ、或いは適当
な手段により増殖させて得るにせよ、用土(基材)等か
ら分離する操作が必要である。本発明では、この分離を
乾式篩を用いて行なうことを特徴とする。ここで乾式篩
とは、湿式篩に相対するものであり、水や水溶液などを
一切用いない。この際に用いる篩としては特に限定はな
く、市販の汎用篩なら何でもよく、ステンレスや真鍮な
どで作られたものが好ましい。ここで例えば、ウエット
シービング法のように、湿式篩を用いた場合には、分離
作業が煩雑であるばかりでなく、VA菌根菌の保存安定
性に問題があり、胞子の活性が低下し、良好なVA菌根
菌接種物を得ることができない。
【0011】本発明において、分離の対象とするギガス
ポラ ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞子は、天
然界から集めたり(鈴木達彦著,VA菌根に関する諸問
題5,農業および園芸,第62巻,第3号,p28〜3
3,1987年)、遠心分離により集めた(特開昭63
−309178号公報)ものを用いることができる。ま
た、栄養薄膜培養法(特開昭55−118390号公
報)や器官培養した根を使用する方法(特公昭62−4
9037号公報)等により増殖させたものを用いること
ができる。さらに、特開平3−83522号公報、特開
平4−320676号公報、特開昭63−87973号
公報、特開平3−76572号公報、特開平3−247
270号公報等に記載された方法により増殖されたギガ
スポラ ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞子を用
いるなど、植物とギガスポラ ( Gigaspora )属に属する
VA菌根菌を共生させ、VA菌根菌を増殖させる方法で
あれば、いずれの方法により得られたものであってもよ
い。さらにまた、焼成赤玉土を基材として用いて増殖さ
せたVA菌根菌の胞子を用いることもできる。
【0012】これらの中でも、分離の対象とするギガス
ポラ ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞子として
は、焼成赤玉土を基材として用いて増殖させたギガスポ
ラ(Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞子が最も好
ましい。
【0013】すなわち、ギガスポラ( Gigaspora )属に
属するVA菌根菌を感染させた植物を、焼成赤玉土を基
材として栽培し、VA菌根菌を増殖させ、得られるVA
菌根菌の胞子を本発明の方法により分離することによ
り、より高活性で、保存安定性に優れた胞子を得ること
ができる。
【0014】以下、上記した如き、本発明における分離
の対象となるギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA
菌根菌の胞子の好適な入手方法について説明する。すな
わち、上記したように、ギガスポラ( Gigaspora )属に
属するVA菌根菌を感染させた植物を、焼成赤玉土を基
材として栽培し、VA菌根菌を増殖させるわけである。
【0015】ここでギガスポラ ( Gigaspora )属に属す
るVA菌根菌を感染させる植物、すなわちVA菌根菌培
養のための宿主植物としては、ギガスポラ ( Gigaspora
)属に属するVA菌根菌が感染する植物であれば特に制
限はないが、生長が速く、根がよく張る植物であって、
かつ、ギガスポラ ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌
が感染しやすい植物が好適である。具体的には例えば、
デントコーン,トウモロコシ,メヒシバ,ソルゴー(別
名ソルガム又はモロコシ),ムギ,芝草,スダングラ
ス,バヒアグラス,ギニアグラス等のイネ科植物、赤ク
ローバー,白クローバー,ダイズ,カラスノエンドウ,
マングビーン,ピーナッツ,アルファルファ等のマメ科
植物、ナス,トマト,ピーマン,シシトウ等のナス科植
物、ネギ,玉ネギ等のユリ科植物などが挙げられる。こ
れらの植物は、種や実生苗を用いる他、播種して育苗
後、移植して栽培したり、栄養繁殖したり、挿し芽,挿
し木,接木,球根等により増殖,栽培したりして用いら
れる。
【0016】上記の如き宿主植物に、ギガスポラ ( Gig
aspora )属に属するVA菌根菌を感染させる場合に用い
る基材(培地)としては、土着の雑菌の混入防止という
観点から、滅菌処理(焼成処理も含む)した基材が好ま
しく、例えば焼成アタパルジャイト,焼成モンモリロナ
イト,焼成赤玉土等が挙げられるが、これらの中でも特
に焼成赤玉土が好ましい。
【0017】ここで用いられる焼成赤玉土は、200〜
1000℃で焼成したものが好ましく、250〜850
℃で焼成したものがより好ましい。また、粒径は、0.3
〜5mmのものが好ましく、0.5 〜3mmのものがより
好ましい。この他、焼成アタパルジャイト,焼成モンモ
リロナイトとしては、焼成温度が200〜1300℃で
得られるものが好ましく、300〜1000℃のものが
より好ましい。また、粒径は、0.3 〜5mmの範囲のも
のが好ましく、0.5 〜3mmのものがより好ましい。
【0018】ギガスポラ ( Gigaspora )属に属するVA
菌根菌の宿主植物への接種・感染方法について述べる
と、施用時期としては宿主植物の発根前後のいずれであ
ってもよいが、特に播種時や挿し芽の前処理時、播種や
挿し芽と同時、或いは苗の移植時などが好ましい。ま
た、施用方法としては、VA菌根菌を前記の基材と混合
したり、根元に入れたり、種子や芽の下層に層状に施用
したり、或いは定植時の植え穴の中に施用したりするこ
とが好ましい。
【0019】VA菌根菌を植物へ感染させる場合、通
常、1植物体に対し、1〜100,000 個、好ましくは5〜
10,000個のギガスポラ ( Gigaspora )属に属するVA菌
根菌胞子を植物へ接種すればよい。VA菌根菌を接種し
た植物を、常法にて栽培することにより、例えば温度5
〜60℃、好ましくは10〜45℃にて、基材のpH3
〜9.5、好ましくは4〜7.5の条件で栽培すること
により、VA菌根菌が植物の根に感染する。
【0020】このようにしてVA菌根菌を感染させた植
物を、焼成赤玉土を基材として用いて栽培し、VA菌根
菌を増殖させる。すなわち、宿主植物であるVA菌根菌
感染植物を、必要により焼成赤玉土を基材とする培地に
植え替え、VA菌根菌を増殖させると共に、VA菌根菌
感染植物を充分に生育させる。なお、場合によっては、
当初から、焼成赤玉土からなる基材中で感染・栽培して
もよい。
【0021】ここで用いる焼成赤玉土としては、前記し
たものが挙げられる。このような焼成赤玉土を基材とし
て用いることにより、ギガスポラ ( Gigaspora )属に属
するVA菌根菌が盛んに増殖し、VA菌根菌の菌糸が、
基材を満たした容器全体に効率よく伸長する。VA菌根
菌感染植物は肥料等を与えられて、栄養生長を続けなが
らVA菌根菌の菌糸も増殖する。宿主植物の栽培は通常
の条件で行なえばよく、温度は通常、5〜60℃であ
る。
【0022】なお、植物を旺盛に生育させるために肥料
を与えるが、肥料は調製したものであってもよいし、或
いは市販のものであってもよい。また、固形肥料であっ
てもよいし、施肥を調節しやすいように、液体肥料(液
肥)を与えてもよい。また、肥料中に含まれるリンの濃
度は高すぎないようにすることが望ましく、好ましくは
300ppm以下とする。
【0023】このようにしてVA菌根菌感染植物は栄養
生長を維持するが、適当な時期に、ギガスポラ ( Gigas
pora )属に属するVA菌根菌の胞子形成を誘導する。通
常、栽培し始めてから、2〜7ケ月程度経過して、植物
が充分に生育し、VA菌根菌も増殖したところで、水,
栄養等の供給を絶ち、暫く放置すると、VA菌根菌は胞
子を形成する。すなわち、胞子密度が充分に上がったと
ころで、焼成赤玉土を回収し、必要に応じて乾燥する。
乾燥は、胞子がダメージを受けない程度の温度、例えば
70℃以下、好ましくは20〜50℃の温度で行なえば
良い。
【0024】このようにギガスポラ( Gigaspora )属に
属するVA菌根菌を感染させた植物を、焼成赤玉土を基
材として栽培して、VA菌根菌を増殖させ、多数の胞子
を含む用土(焼成赤玉土)から、乾式篩を用いてギガス
ポラ ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞子を分離
する方法が本発明の最も好ましい形態である。
【0025】さらに、このようにして分離された胞子
に、必要に応じて焼成アタパルジャイト,焼成赤玉土,
焼成モンモリロナイト等の滅菌した増量剤を加えて、V
A菌根菌接種物を製造することができる。このようにし
て得られたVA菌根菌接種物は、保存安定性に優れ、ま
た、胞子の活性が低下することがほとんどなく、野菜・
果樹苗の育苗時や鑑賞用植物の栽培時に接種することに
より、これら植物に、所望しない土着のVA菌根菌や病
原菌の混入を防止しつつ、VA菌根菌を効率良く感染さ
せ、植物をさらに良好に生育させることができる。
【0026】
【実施例】次に本発明を実施例により、さらに詳しく説
明する。 実施例1及び比較例1(分離回収胞子数の測定) 150ミリリットル容のビニールポットに、800℃で
焼成した赤玉土(粒径0.5〜3mm)を基材として、ポッ
トの深さの約3分の2まで敷き詰め、その上に種菌とし
て、休耕地より採取したVA菌根菌〔ギガスポラ・マル
ガリタ( Gigaspora margarita )〕〔なお、本菌は工業
技術院生命工学工業技術研究所(旧名称:工業技術院微
生物工業技術研究所において受託を拒否された。)の胞
子を50個接種し、さらにその上に、上記と同じ焼成赤
玉土を、ポットの残り3分の1の深さに充填した。その
上に、赤クローバーの種子3粒を土の中へ軽くピンセッ
トで押し込むように播種した。
【0027】このようにセットしたポットを計4個用意
し、各ポットをゆっくりと灌水した後、25〜30℃の
範囲の温度にコントロールされているガラス温室内で1
ケ月間栽培して、VA菌根菌を感染させた後、それぞれ
を4鉢の5号プラスチック鉢(1.5リットル容)へ同じ
焼成赤玉土を添加しながら移植した。そして、下記に示
す液肥を、週1回、各鉢200ミリリットルずつ散布し
ながら、さらに2ケ月間栽培した。その後、灌水や液肥
の供給を止めて1ケ月間放置し、胞子を形成せしめた。
【0028】なお、液肥としては、次の(1)に示す微
量金属栄養素液と、(2)に示す栄養液肥を用い、
(1)の微量金属栄養素液を100倍に希釈し、この希
釈液1リットル当り、(2)の栄養液肥を10g混合
し、さらに硫酸マグネシウム・7水塩を0.25g加え
て調製した。
【0029】(1)微量金属栄養素液の組成 Fe・EDTA 0.12 g H2BO3 2.86 g MnCl2 ・4H2O 0.18 g ZnSO4 ・7H2O 0.22 g CuSO4 ・5H2O 0.08 g Na2MoO4 ・2H2O 0.027 g CoSO4 ・6H2O 0.053 g CaCl2 1.0 g Al2(SO4)3 0.10 g KI 0.10 g KBr 0.10 g H2O 10リットル (2)栄養液肥の組成 普通液肥(N:P:K=15:6:6)
【0030】このうちの2鉢をビニール袋の上にあけ、
焼成赤玉土をよく手で揉みほぐすようにして赤クローバ
ーの根を回収した。次に、目開き1.4mmのステンレ
ス製篩(直径200mm)で数回に分けて篩分けを行っ
た。目開き1.4mmの篩に残った画分を画分Aとし、
通過した画分を、さらに目開き850μmの篩に通し
て、篩に残った画分を画分Bとした。以後、上記と同様
にして、目開き500μm,300μm,180μmの
篩分けを順次行ない、篩上に残った画分をそれぞれ画分
C,画分D,画分Eとした(画分A〜E=実施例1)。
このようにして得られた各画分毎の胞子数と総胞子数を
第1表に示す。
【0031】また、残りの2鉢はウエットシービング法
により胞子を回収した。すなわち、赤クローバーの葉部
を刈り取った後、20リットル容のポリバケツに入れ、
水道水10リットルを加えて、よく手で揉みほぐし根部
を除去した。次に、この懸濁液をよくかき回した後、上
記と同じ目開き1.4mmのステンレス製篩(直径20
0mm)に通した。このとき、篩の下には、別のポリバ
ケツを用意しておき、篩上に残っている胞子(画分a)
を水道水で軽く洗浄した。
【0032】全ての懸濁液を数回に分けて、全て目開き
1.4mmのステンレス製篩を通した後、この篩を通過
してポリバケツに回収された懸濁画分をよくかきまぜ、
目開き800μmの篩を通過させ、篩に残った画分(画
分b)を少量の水道水で洗った。このようにして、以後
同様に、さらに目開き500μm,300μm,180
μmの篩分けを順次行ない、篩上に残った焼成赤玉土画
分をそれぞれ画分c,画分d,画分eとした(画分a〜
e=比較例1)。このようにして得られた各画分の胞子
数と総胞子数を第1表に示す。なお、このウエットシー
ビング法によれば、300μmの篩を通過して得られる
懸濁液は、20リットル容のポリバケツ3杯分ともな
り、その操作が大変煩雑であった。
【0033】
【表1】
【0034】 実施例2及び比較例2(接種物の感染率の測定) 実施例1及び比較例1において、それぞれ300μmの
篩上に回収された胞子画分D及び画分dを、ビニール製
の300ミリリットル容ビーカーにそれぞれ移し変え
た。なお、画分dを回収する際には、脱塩水で胞子を流
すように回収し、ビーカーに移し終えた後は、デカンテ
ーションにより不要な水を流し去った。
【0035】このようにして得られた胞子画分D及び画
分d各々50gを、500ミリリットル容ビーカーに採
取し、これに粒径300〜800μmの焼成アタパルジ
ャイト(焼成温度600℃)150gを加えてよく混合
し、得られた画分を、それぞれ画分D’,画分d’とし
た。この画分D’及び画分d’をそれぞれアルミラミネ
ートの袋に入れ、4℃で1ケ月間放置した後、20℃の
恒温室に保管した。
【0036】次に、臭化メチルで殺菌した完熟腐葉土と
焼成赤玉土とを1:1の割合で混合し、水で湿らせた
後、150ミリリットル容のビニールポットに上から1
cmの深さまで詰めた。その後、外径15mmの試験管
を用いて、深さ3mmの穴を開けた。このようにして作
製したポットを20個用意した。その内の10個には、
上記画分D’より分離した胞子50個ずつを、それぞれ
前記穴の底部から側面に均等に注意深く施用した。残り
のポット10個については、上記画分d’より分離した
胞子50個ずつを、同様に施用した。
【0037】一方、予め、殺菌した腐葉土を用いてガラ
ス温室(20〜30℃)で育て、播種後4週間を経て本
葉が2枚でているナス(品種:黒陽)の苗を、水で軽く
根部の腐葉土を除去した後、上記の接種物を施用した各
区10ポットに移植した。根部へ接種物が触れるように
土寄せした後、さらにガラス温室(20〜30℃)で1
ケ月間栽培した。
【0038】その後、各区10ポットの内の各区5ポッ
トから、ナスの苗を回収し、根部に付着した腐葉土,焼
成赤玉土を、丁寧に水を流しながら除去した。得られた
苗の根部を切断した後、下記に示す方法により染色を行
ない、感染率を求めた。画分D’由来の胞子を施用した
苗(実施例2)及び画分d’由来の胞子を施用した苗
(比較例2)の各区5ポットの平均感染率を第2表に示
す。
【0039】〔感染率の測定方法〕 まず、次の手順により、トリパンブルーを用いて染
色した。 (ア)感染させた植物根を水できれいに洗った。 (イ)水を切った根をビーカーに入れ、10%KOH溶
液で、1時間弱く沸騰させながら煮沸した。 (ウ)根が着色している場合は、10%KOH溶液を水
ですすいで除去した後、10倍に薄めた過酸化水素(約
3%)液で5分間脱色し、さらに水洗した。 (エ) 下記に示す組成を有するラクトフェノール−トリ
パンブルー染色液に根を浸し、5〜30分間弱く沸騰さ
せて染色した。 *ラクトフェノール−トリパンブルー染色液の組成 石炭酸( フェノール) 200ml 蒸留水 200ml 乳酸 200ml グリセリン 400ml トリパンブルー 1g 合計 1000ml (オ)染色した根を水洗いし、染色液を洗い流す。 (カ)水を張ったシャーレに根を入れ、実体顕微鏡で観
察する。 次に、以下の如くして感染率を算出した。1cm間
隔のグリッドの上に、上記のようにして染色したサンプ
ルを載せ、実体顕微鏡により、グリッド上100箇所の
中、染色した箇所を計数して感染率とした。
【0040】
【表2】
【0041】 実施例3及び比較例3(接種物を用いての生育試験) 実施例2及び比較例2において、画分D’及び画分d’
の残りの各区5ポットは、さらに3週間同ガラス温室に
て栽培を続けた。その際、移植後1ケ月の時点でピータ
ー液肥(20−20−20)1000倍液を、各ポット
50ミリリットルずつ施用した。このように画分D’と
画分d’とを用いて栽培し、それぞれ得られた植物の地
上部,地下部の生育調査を行なった。1植物体当りの重
量,長さの平均値を第3表に示す。
【0042】
【表3】
【0043】実施例4及び比較例4(接種物中のVA菌
根菌胞子の発芽試験) さらに、画分D’及び画分d’より、それぞれその一部
を採取し、水に懸濁させ、パスツールピペットを用いて
胞子を分離した。各画分の胞子を別々にガラス製の蒸発
皿(直径60mm)に約200個加え、その中に殺菌水
を10ミリリットル加え、超音波洗浄機で5秒間処理
し、胞子表面に付着している土壌などを除去した。その
後、殺菌水で2回洗浄後、2%クロラミンT, 0.02%ス
トレプトマイシン溶液を10ミリリットル添加し、15
分間室温で放置した。その後、上記溶液を除去し、殺菌
水で5回洗浄した。
【0044】このようにして得られた2種類の滅菌済胞
子(画分D’=実施例4、画分d’=比較例4)を発芽
試験に供した。すなわち、殺菌水を殺菌シャーレに加
え、その上に直径25mmのメンブレンフィルター(商
品名:ヌクレオポア,ヌクレオポア社製)を浮かべ、各
ヌクレオポア当り10胞子となるように、合計100胞
子を発芽試験に供した。その後、30℃インキュベータ
ーに保存し、4週間目に100胞子全てについて、発芽
している胞子数を調べた。得られた結果を総胞子数で割
り、発芽率として第4表に示す。
【0045】
【表4】
【0046】以上の結果について考察してみると、従来
の湿式法を経て得た胞子は、乾式法で得た胞子よりも何
らかのダメージを多く受けているために感染率が低下し
たと思われる。
【0047】
【発明の効果】本発明の方法によれば、ギガスポラ( G
igaspora )属に属するVA菌根菌の胞子を効率的に分離
回収することができる。しかも本発明の方法では、水な
どを用いていないため、分離した後の保存安定性に優れ
ており、高活性な状態のままのギガスポラ( Gigaspora
)属に属するVA菌根菌の胞子を得ることができる。し
たがって、高活性で、保存安定性が高く、実用性の高い
VA菌根菌接種物を作製することができる。すなわち、
本発明の方法により分離されたギガスポラ( Gigaspora
)属に属するVA菌根菌の胞子を用いたVA菌根菌接種
物は、保存安定性に優れ、また、胞子の活性が低下する
ことがほとんどなく、野菜・果樹苗の育苗時や鑑賞用植
物の栽培時に接種することにより、これら植物に、所望
しない土着のVA菌根菌や病原菌の混入を防止しつつ、
VA菌根菌を効率良く感染させ、植物をさらに良好に生
育させることができる。

Claims (2)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 ギガスポラ( Gigaspora )属に属するV
    A菌根菌の胞子を分離するにあたり、乾式篩を用いて分
    離することを特徴とするVA菌根菌胞子の分離方法。
  2. 【請求項2】 焼成赤玉土を基材として用いて増殖させ
    たギガスポラ( Gigaspora )属に属するVA菌根菌の胞
    子を用いる請求項1記載の分離方法。
JP17463493A 1993-06-23 1993-06-23 Va菌根菌胞子の分離方法 Withdrawn JPH078272A (ja)

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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2008105944A (ja) * 2007-12-14 2008-05-08 Sekisui Chem Co Ltd 含水マグネシウム珪酸塩鉱物、硬化体組成物、無機質硬化体及び炭酸化硬化体
KR100852770B1 (ko) * 2007-05-17 2008-08-18 충북대학교 산학협력단 고추재배에 유용한 상토 및 그 제조 방법
CN103109647A (zh) * 2013-03-08 2013-05-22 北京农学院 一种采集牛肝菌孢子的方法

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
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