JPH0787957A - 微生物ｓｋｂ−１１５２株及びそれを利用したパルプの漂白方法 - Google Patents
微生物ｓｋｂ−１１５２株及びそれを利用したパルプの漂白方法Info
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- JPH0787957A JPH0787957A JP6126919A JP12691994A JPH0787957A JP H0787957 A JPH0787957 A JP H0787957A JP 6126919 A JP6126919 A JP 6126919A JP 12691994 A JP12691994 A JP 12691994A JP H0787957 A JPH0787957 A JP H0787957A
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- C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
- C12N1/145—Fungi isolates
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- D—TEXTILES; PAPER
- D21—PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
- D21C—PRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
- D21C5/00—Other processes for obtaining cellulose, e.g. cooking cotton linters ; Processes characterised by the choice of cellulose-containing starting materials
- D21C5/005—Treatment of cellulose-containing material with microorganisms or enzymes
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
- C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 高いリグニン分解活性及びパルプ高温漂白活
性を有するパルプ漂白用のリグニン分解菌及びそれを利
用したパルプの漂白方法を提供すること。 【構成】 高いリグニン分解活性及びパルプ高温漂白活
性を有する微生物ＳＫＢ−１１５２株及びそれを利用し
たパルプの漂白方法。
性を有するパルプ漂白用のリグニン分解菌及びそれを利
用したパルプの漂白方法を提供すること。 【構成】 高いリグニン分解活性及びパルプ高温漂白活
性を有する微生物ＳＫＢ−１１５２株及びそれを利用し
たパルプの漂白方法。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は新規な微生物及びそれを
利用したパルプの漂白方法に関し、特に、高いリグニン
分解活性及びパルプ漂白活性を有する新規なリグニン分
解菌、及びそれを利用したパルプの漂白方法に関する。
利用したパルプの漂白方法に関し、特に、高いリグニン
分解活性及びパルプ漂白活性を有する新規なリグニン分
解菌、及びそれを利用したパルプの漂白方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】従来、木材パルプの漂白に対しては、塩
素や二酸化塩素等の塩素系薬品がパルプ中の残留リグニ
ンを除く目的として広く使用されている。しかしなが
ら、近年、これらの塩素系薬品が有毒物質であるダイオ
キシンを生成する原因となることが明らかとなり、その
使用量の低減が急務となっている。このため、塩素系薬
品に代わる種々の漂白方法が考えられているが、中で
も、微生物又はその酵素を使用するパルプの漂白方法で
ある『バイオブリーチング』が、有力な無塩素漂白方法
の一つとして注目されている。
素や二酸化塩素等の塩素系薬品がパルプ中の残留リグニ
ンを除く目的として広く使用されている。しかしなが
ら、近年、これらの塩素系薬品が有毒物質であるダイオ
キシンを生成する原因となることが明らかとなり、その
使用量の低減が急務となっている。このため、塩素系薬
品に代わる種々の漂白方法が考えられているが、中で
も、微生物又はその酵素を使用するパルプの漂白方法で
ある『バイオブリーチング』が、有力な無塩素漂白方法
の一つとして注目されている。
【０００３】一方、従来から、木材中のリグニンを微生
物により分解し、紙パルプ工業などに利用しようとする
試みが数多くなされており、その目的のために、リグニ
ンを選択的に分解する菌である、白色腐朽菌と呼ばれる
一連の担子菌類が用いられている。これらの白色腐朽菌
の中でも、特にカワラタケ（Coriolus versicolor）や
ファネロケーテ クリソスポリウム（Phanerocheate ch
rysporium ）等が、リグニン分解活性を有する代表的な
菌として注目され、研究開発に用いられてきた。
物により分解し、紙パルプ工業などに利用しようとする
試みが数多くなされており、その目的のために、リグニ
ンを選択的に分解する菌である、白色腐朽菌と呼ばれる
一連の担子菌類が用いられている。これらの白色腐朽菌
の中でも、特にカワラタケ（Coriolus versicolor）や
ファネロケーテ クリソスポリウム（Phanerocheate ch
rysporium ）等が、リグニン分解活性を有する代表的な
菌として注目され、研究開発に用いられてきた。
【０００４】しかしながら、これらの菌株は十分なリグ
ニン分解活性を有していないので、パルプの白色度向上
に用いるためには不十分である上、リグニンのみを分解
するという選択性が低いために、リグニンを分解すると
同時にセルロースやヘミセルロース等の多糖類をも分解
し、パルプの品質を低下させたり、パルプ収率を低下さ
せるので、未だ工業的に利用することはできなかった。
ニン分解活性を有していないので、パルプの白色度向上
に用いるためには不十分である上、リグニンのみを分解
するという選択性が低いために、リグニンを分解すると
同時にセルロースやヘミセルロース等の多糖類をも分解
し、パルプの品質を低下させたり、パルプ収率を低下さ
せるので、未だ工業的に利用することはできなかった。
【０００５】そこで、本発明者らは、パルプ漂白性に優
れ、工業的使用に耐え得る新規な微生物を分離スクリー
ニングする方法について検討を行い、リグニン分解菌の
みを高い精度で判定したり分離することのできる、新規
な菌株の分離方法及びスクリーニング方法を開発した
（特願平５−８５７３１号）。
れ、工業的使用に耐え得る新規な微生物を分離スクリー
ニングする方法について検討を行い、リグニン分解菌の
みを高い精度で判定したり分離することのできる、新規
な菌株の分離方法及びスクリーニング方法を開発した
（特願平５−８５７３１号）。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、上記し
たリグニン分解菌の選択方法に基づき、腐朽材や子実体
等を分離源として、パルプ漂白活性の高い新規な微生物
を分離すべく鋭意検討した結果、リグニン分解活性が高
く、しかもパルプの白色度を大幅に向上させ得る新規な
微生物の分離に成功し、本発明に到達した。
たリグニン分解菌の選択方法に基づき、腐朽材や子実体
等を分離源として、パルプ漂白活性の高い新規な微生物
を分離すべく鋭意検討した結果、リグニン分解活性が高
く、しかもパルプの白色度を大幅に向上させ得る新規な
微生物の分離に成功し、本発明に到達した。
【０００７】従って、本発明の第１の目的は、高いリグ
ニン分解活性及びパルプ高温漂白活性を有するパルプ漂
白用のリグニン分解菌を提供することにある。本発明の
第２の目的は、高いリグニン分解活性を有する新規な微
生物及び／又はその微生物による培養物を用いた、工業
的実施が可能なパルプの漂白方法を提供することにあ
る。
ニン分解活性及びパルプ高温漂白活性を有するパルプ漂
白用のリグニン分解菌を提供することにある。本発明の
第２の目的は、高いリグニン分解活性を有する新規な微
生物及び／又はその微生物による培養物を用いた、工業
的実施が可能なパルプの漂白方法を提供することにあ
る。
【０００８】
【課題を解決するための手段】本発明の上記の諸目的
は、高いリグニン分解活性及びパルプ高温漂白活性を有
する微生物ＳＫＢ−１１５２株及びそれを利用したパル
プの漂白方法により達成された。以下、本発明を更に詳
細に説明する。本発明における新規な微生物ＳＫＢ−１
１５２株は、以下のような菌学的性質を有する。
は、高いリグニン分解活性及びパルプ高温漂白活性を有
する微生物ＳＫＢ−１１５２株及びそれを利用したパル
プの漂白方法により達成された。以下、本発明を更に詳
細に説明する。本発明における新規な微生物ＳＫＢ−１
１５２株は、以下のような菌学的性質を有する。
【０００９】（１）培地における生育状況 培地の種類 生育状況 麦芽エキス寒天培地 ＋＋＋ ポテト煎汁・デキストロース培地 ＋＋＋ ツアベック寒天培地 ＋＋＋ サブロー寒天培地 ＋＋＋ 合成ムコール寒天培地 ＋＋＋ ＹｐＳｓ寒天培地 ＋＋＋ 培養条件：３０℃、３日間 生育状況： 微弱 ＋／中等＋＋／旺盛＋＋＋
【００１０】（２）生理学的・生態学的性質 生育のｐＨ（ポテト煎汁・デキストロース培地、３０
℃、３日間培養）は、３〜９の範囲であり、ｐＨ２以下
及び１０以上では生育しない。最適ｐＨの範囲は４〜８
である。生育の温度（ポテト煎汁・デキストロース寒天
培地、ｐＨ５．６、４日間培養）は２０〜４０℃の範囲
であり、５０℃以上では生育しない。最適温度は２８〜
３７℃の範囲である。
℃、３日間培養）は、３〜９の範囲であり、ｐＨ２以下
及び１０以上では生育しない。最適ｐＨの範囲は４〜８
である。生育の温度（ポテト煎汁・デキストロース寒天
培地、ｐＨ５．６、４日間培養）は２０〜４０℃の範囲
であり、５０℃以上では生育しない。最適温度は２８〜
３７℃の範囲である。
【００１１】フェノールオキシダーゼ反応（３０℃、３
日間培養）は、微弱又は陰性である。菌叢（ポテト煎汁
・デキストロース寒天培地、ｐＨ５．６、４日間培養）
は、白色で薄いフェルト状である。これらの生理学的、
生態学的性質、及び各培地における生育状態といった菌
学的性質を詳細に検討したが、既知の菌と同定するには
至らなかった。
日間培養）は、微弱又は陰性である。菌叢（ポテト煎汁
・デキストロース寒天培地、ｐＨ５．６、４日間培養）
は、白色で薄いフェルト状である。これらの生理学的、
生態学的性質、及び各培地における生育状態といった菌
学的性質を詳細に検討したが、既知の菌と同定するには
至らなかった。
【００１２】そして、後記する実施例から明らかなよう
に、この菌は、代表的リグニン分解菌として従来より知
られている、カワラタケ属菌やファネロケーテ属菌より
もリグニン分解活性及びパルプ漂白活性に優れている。
この様に両活性が優れた菌は、従来既知の微生物には存
在しない。そこで、本発明者らは、本菌株を新菌株と認
定し、ＳＫＢ−１１５２株と命名すると共に、工業技術
院生命工学研究所特許微生物寄託センターに寄託した
（寄託番号：ＦＥＲＭ Ｐ−１３７２１号）。
に、この菌は、代表的リグニン分解菌として従来より知
られている、カワラタケ属菌やファネロケーテ属菌より
もリグニン分解活性及びパルプ漂白活性に優れている。
この様に両活性が優れた菌は、従来既知の微生物には存
在しない。そこで、本発明者らは、本菌株を新菌株と認
定し、ＳＫＢ−１１５２株と命名すると共に、工業技術
院生命工学研究所特許微生物寄託センターに寄託した
（寄託番号：ＦＥＲＭ Ｐ−１３７２１号）。
【００１３】本菌株の分類学上の正確な位置については
なお不明な点が幾つかあるため、正確な同定は現時点に
おいて困難であり、今後の研究に待たなければならな
い。前記したＳＫＢ−１１５２株の分離・選択方法の概
要は、以下のようなものである。即ち、この方法は、リ
グニン又はリグニンが残存するパルプを含有する培地
に、腐朽材や子実体等の分離源サンプルを接種して培養
し、培地の脱色帯形成の有無により、リグニン分解活性
を有する菌を分離・選択する方法である。
なお不明な点が幾つかあるため、正確な同定は現時点に
おいて困難であり、今後の研究に待たなければならな
い。前記したＳＫＢ−１１５２株の分離・選択方法の概
要は、以下のようなものである。即ち、この方法は、リ
グニン又はリグニンが残存するパルプを含有する培地
に、腐朽材や子実体等の分離源サンプルを接種して培養
し、培地の脱色帯形成の有無により、リグニン分解活性
を有する菌を分離・選択する方法である。
【００１４】ここで使用するリグニンとしては、クラフ
トリグニンやサルファイトリグニン等が挙げられ、リグ
ニン残存パルプとしては、クラフトパルプのような化学
パルプ等が挙げられる。また、培養時における培地とし
ては、パルプに培養液を添加しただけの液体培地や、パ
ルプを寒天等で固めた固体培地等が挙げられる。なお、
上記した分離・選択方法における培地の調製、リグニン
分解菌の選択は、従来から公知の方法に基づいて行えば
良い。
トリグニンやサルファイトリグニン等が挙げられ、リグ
ニン残存パルプとしては、クラフトパルプのような化学
パルプ等が挙げられる。また、培養時における培地とし
ては、パルプに培養液を添加しただけの液体培地や、パ
ルプを寒天等で固めた固体培地等が挙げられる。なお、
上記した分離・選択方法における培地の調製、リグニン
分解菌の選択は、従来から公知の方法に基づいて行えば
良い。
【００１５】また、このリグニン分解菌の分離・選択方
法は、従来のフェノールオキシダーゼの検出による方法
に比較して、簡便かつ高精度であるのみならず、腐朽材
や子実体等の分離源からも、リグニン分解菌の分離・選
択が可能である点にも特徴がある。次に、本発明の新規
な微生物ＳＫＢ−１１５２株を利用したパルプの漂白方
法について説明する。
法は、従来のフェノールオキシダーゼの検出による方法
に比較して、簡便かつ高精度であるのみならず、腐朽材
や子実体等の分離源からも、リグニン分解菌の分離・選
択が可能である点にも特徴がある。次に、本発明の新規
な微生物ＳＫＢ−１１５２株を利用したパルプの漂白方
法について説明する。
【００１６】本発明のパルプの漂白方法は、基本的に
は、ＳＫＢ−１１５２株またはその微生物を用いて生成
させた培養物を用いてパルプを処理し、所定期間、前記
微生物を培養すれば良い。その培養条件等は、培養され
る前記菌の生理学的性質の範囲内であれば特に限定され
ない。
は、ＳＫＢ−１１５２株またはその微生物を用いて生成
させた培養物を用いてパルプを処理し、所定期間、前記
微生物を培養すれば良い。その培養条件等は、培養され
る前記菌の生理学的性質の範囲内であれば特に限定され
ない。
【００１７】ここで、ＳＫＢ−１１５２を用いて生成さ
せた培養物とは、本菌株を培養して得た菌体及び培養液
の混合物を意味するが、本発明においては、菌体培養物
から分離した菌体はもとより、該菌体を分離した残渣、
及び、培養物から固形物を全て除去した後の培養液をも
含む概念である。
せた培養物とは、本菌株を培養して得た菌体及び培養液
の混合物を意味するが、本発明においては、菌体培養物
から分離した菌体はもとより、該菌体を分離した残渣、
及び、培養物から固形物を全て除去した後の培養液をも
含む概念である。
【００１８】本発明に使用するパルプは、リグニンが残
存するパルプである限り、化学パルプ、機械パルプ等、
その種類は特に制限されない。また、培養時におけるパ
ルプの形状は、菌が生育し漂白され易い形状である限
り、いずれの形状であっても良い。
存するパルプである限り、化学パルプ、機械パルプ等、
その種類は特に制限されない。また、培養時におけるパ
ルプの形状は、菌が生育し漂白され易い形状である限
り、いずれの形状であっても良い。
【００１９】更に、培養時におけるパルプ濃度・温度・
ｐＨ等は、菌が生理学的に活性を有する範囲内で適宜選
択することができる。しかしながら、通気性・菌の成育
等の観点から、パルプ濃度は固体培養の場合１５〜６０
％にあることが望ましく、振盪培養の場合は１５％以下
であることが望ましく、特に１０％以下であることが好
ましい。
ｐＨ等は、菌が生理学的に活性を有する範囲内で適宜選
択することができる。しかしながら、通気性・菌の成育
等の観点から、パルプ濃度は固体培養の場合１５〜６０
％にあることが望ましく、振盪培養の場合は１５％以下
であることが望ましく、特に１０％以下であることが好
ましい。
【００２０】培養時におけるｐＨは、菌の成育に伴い、
培養中にｐＨが変化して菌の製造に都合の良いｐＨにな
るため、特に厳密に調整する必要はなく、ｐＨ３〜１０
の範囲内であれば、特にパルプの漂白活性に影響はな
い。培養温度は、２５〜４０℃の範囲内であることが好
ましく、特に、３７℃付近とした場合に良好な結果を得
ることができる。
培養中にｐＨが変化して菌の製造に都合の良いｐＨにな
るため、特に厳密に調整する必要はなく、ｐＨ３〜１０
の範囲内であれば、特にパルプの漂白活性に影響はな
い。培養温度は、２５〜４０℃の範囲内であることが好
ましく、特に、３７℃付近とした場合に良好な結果を得
ることができる。
【００２１】更に、パルプの漂白に要する時間を短縮す
るために、必要に応じて各種の栄養源を添加しても良
い。以上説明した如く、本発明のＳＫＢ−１１５２株を
パルプの漂白に利用する場合には、従来法と同様のバイ
オブリーチング法によれば良く、格別の培養条件等を必
要としない点も本発明の優れた特徴の一つである。
るために、必要に応じて各種の栄養源を添加しても良
い。以上説明した如く、本発明のＳＫＢ−１１５２株を
パルプの漂白に利用する場合には、従来法と同様のバイ
オブリーチング法によれば良く、格別の培養条件等を必
要としない点も本発明の優れた特徴の一つである。
【００２２】
【作用】本発明の微生物ＳＫＢ−１１５２株がパルプを
漂白する反応機構については現段階では不明である。し
かしながら、本菌株は同時に高いリグニン分解活性も有
することから、リグニン分解と類似の作用機構であるこ
とが推測される。すなわち、従来、リグニン分解反応は
酸化分解であるとされてきたことから、本発明の微生物
ＳＫＢ−１１５２株による漂白反応も、酸化的分解反応
ではないかと予想される。
漂白する反応機構については現段階では不明である。し
かしながら、本菌株は同時に高いリグニン分解活性も有
することから、リグニン分解と類似の作用機構であるこ
とが推測される。すなわち、従来、リグニン分解反応は
酸化分解であるとされてきたことから、本発明の微生物
ＳＫＢ−１１５２株による漂白反応も、酸化的分解反応
ではないかと予想される。
【００２３】また、本発明の菌株は、後記の実施例によ
って実証されるその漂白性能から明らかなごとく、高い
リグニン分解活性をも有しているので、本発明の菌株
を、パルプ漂白以外の、脱リグニン処理を必要とする各
種の木材利用工業、例えばパルプ排液の脱色化等、リグ
ニンの分解や低分子化等の各種の工業的用途にも利用す
ることができる。この場合の処理方法も、基本的には、
パルプ漂白の場合と同様に、目的とするリグニン原料を
含有する培地に本発明の菌株を接種し、所定期間培養す
れば良い。
って実証されるその漂白性能から明らかなごとく、高い
リグニン分解活性をも有しているので、本発明の菌株
を、パルプ漂白以外の、脱リグニン処理を必要とする各
種の木材利用工業、例えばパルプ排液の脱色化等、リグ
ニンの分解や低分子化等の各種の工業的用途にも利用す
ることができる。この場合の処理方法も、基本的には、
パルプ漂白の場合と同様に、目的とするリグニン原料を
含有する培地に本発明の菌株を接種し、所定期間培養す
れば良い。
【００２４】
【発明の効果】本発明のリグニン分解菌は、既存の菌よ
りも格段に優れたリグニン分解活性及びパルプ漂白性能
を有するため、紙パルプ製造工程における塩素系薬品を
使用しないパルプの漂白方法として有望である。
りも格段に優れたリグニン分解活性及びパルプ漂白性能
を有するため、紙パルプ製造工程における塩素系薬品を
使用しないパルプの漂白方法として有望である。
【００２５】
【実施例】以下、実施例により本発明を更に詳細に説明
するが、本発明はこれによって限定されるものではな
い。
するが、本発明はこれによって限定されるものではな
い。
【００２６】まず、日本全国の山林より採取した腐朽
材、子実体等の分離サンプルの表面を火炎滅菌した後、
市販の未晒し寒天培地に接種・培養し、生育してきた菌
の中で、培地に脱色帯を形成した株のみを選択・分離し
た。このようにして分離した株を用いて、市販の酵素漂
白パルプを、パルプ濃度２０％、３０℃、７日間の条件
で漂白し、漂白後の白色度を測定した。この中で、最も
白色度を上昇させた株として、ＳＫＢ−１１５２株を選
択した。
材、子実体等の分離サンプルの表面を火炎滅菌した後、
市販の未晒し寒天培地に接種・培養し、生育してきた菌
の中で、培地に脱色帯を形成した株のみを選択・分離し
た。このようにして分離した株を用いて、市販の酵素漂
白パルプを、パルプ濃度２０％、３０℃、７日間の条件
で漂白し、漂白後の白色度を測定した。この中で、最も
白色度を上昇させた株として、ＳＫＢ−１１５２株を選
択した。
【００２７】実施例１．ポテト煎汁０．４％及びグルコ
ース２％を含んだポテトデキストローブ培地（ＤＩＦＣ
Ｏ社製）にＳＫＢ−１１５２株を接種した後、１週間静
置して培養した。次いで、生成した菌体マットをワーリ
ングブレンダーで粉砕した後、１２０℃で１５分間加熱
殺菌した市販の酸素漂白パルプに、最終的なパルプ濃度
が２０％となるように菌体懸濁液を加えて、３０℃及び
３７℃でそれぞれ７日間静置して培養した。
ース２％を含んだポテトデキストローブ培地（ＤＩＦＣ
Ｏ社製）にＳＫＢ−１１５２株を接種した後、１週間静
置して培養した。次いで、生成した菌体マットをワーリ
ングブレンダーで粉砕した後、１２０℃で１５分間加熱
殺菌した市販の酸素漂白パルプに、最終的なパルプ濃度
が２０％となるように菌体懸濁液を加えて、３０℃及び
３７℃でそれぞれ７日間静置して培養した。
【００２８】次に、５００ｍｌの水を加え、ミキサーで
解繊して手抄シートを作製し、シートの白色度をハンタ
ー白色度計を用いて測定（ＪＩＳ Ｐ８１２３）すると
同時に、カッパー価を測定（ＪＩＳ Ｐ８２２１−１９
７６）した。また、比較として、代表的なリグニン分解
菌であるカワラタケ(Coriolus versicolor）及びファネ
ロケーテ クリソスポリウム（Phanerochaete chrysosp
orium ）についても同様の操作を行った。その結果を表
１に示す。
解繊して手抄シートを作製し、シートの白色度をハンタ
ー白色度計を用いて測定（ＪＩＳ Ｐ８１２３）すると
同時に、カッパー価を測定（ＪＩＳ Ｐ８２２１−１９
７６）した。また、比較として、代表的なリグニン分解
菌であるカワラタケ(Coriolus versicolor）及びファネ
ロケーテ クリソスポリウム（Phanerochaete chrysosp
orium ）についても同様の操作を行った。その結果を表
１に示す。
【００２９】
【表１】 表１から明らかなように、本発明の微生物ＳＫＢ−１１
５２株は、その漂白活性が従来の菌よりも格段に優れて
おり、特に、高温において白色度の大幅な向上とカッパ
ー価の大幅な減少を実現できることが確認された。
５２株は、その漂白活性が従来の菌よりも格段に優れて
おり、特に、高温において白色度の大幅な向上とカッパ
ー価の大幅な減少を実現できることが確認された。
【００３０】実施例２．実施例１において使用した３菌
株をポテト煎汁デキストロース寒天培地で培養し、それ
ぞれの菌体をコルクボーラーで打ち抜いたデイスク各１
個を、高圧滅菌したユーカリプトス グロブラス（Euca
lyptus globulus ）の木粉１ｇに水４ｍｌを加えて調製
した培地に植菌し、カワラタケは３０℃で、他の二菌株
は３７℃で２週間培養した後、培養木粉中のクラーソン
リグニン（ＪＩＳ Ｐ８００８−１９６１）、及び、酸
可溶性リグニン（中野準造編集：リグニンの化学（ユニ
出版）Ｐ５３）を定量した。その結果を表２に示す。
株をポテト煎汁デキストロース寒天培地で培養し、それ
ぞれの菌体をコルクボーラーで打ち抜いたデイスク各１
個を、高圧滅菌したユーカリプトス グロブラス（Euca
lyptus globulus ）の木粉１ｇに水４ｍｌを加えて調製
した培地に植菌し、カワラタケは３０℃で、他の二菌株
は３７℃で２週間培養した後、培養木粉中のクラーソン
リグニン（ＪＩＳ Ｐ８００８−１９６１）、及び、酸
可溶性リグニン（中野準造編集：リグニンの化学（ユニ
出版）Ｐ５３）を定量した。その結果を表２に示す。
【００３１】
【表２】 ─────────────────────────────────── 菌株 クラーソン 酸可溶性 全リグニン量 リグニン リグニン量(%) リグニン量(%) (%） 減少量(%） ─────────────────────────────────── 未処理＊） 23.79 3.60 27.39 − カワラタケ属菌 22.74 3.67 26.41 3.6 ファネロケーテ属菌 23.17 3.70 26.87 1.9 ＳＫＢ−１１５２株 17.32 3.52 20.84 23.9 ＊）木粉に水を加え、高圧滅菌した後２週間放置 ─────────────────────────────────── 表２の結果から明らかなように、本発明の微生物ＳＫＢ
−１１５２株は、そのリグニン分解活性が、従来公知の
カワラタケ属菌等に比較して格段に優れていることが確
認された。
−１１５２株は、そのリグニン分解活性が、従来公知の
カワラタケ属菌等に比較して格段に優れていることが確
認された。
【００３２】実施例３．酸素漂白パルプの代わりに未晒
しパルプを用いた他は、実施例１と同様の操作により３
菌株による漂白を行った後、３日間又は７日間静置培養
した。更に、実施例１と同様にして手抄シートを作製
し、白色度を測定した。その結果を表３に示した。
しパルプを用いた他は、実施例１と同様の操作により３
菌株による漂白を行った後、３日間又は７日間静置培養
した。更に、実施例１と同様にして手抄シートを作製
し、白色度を測定した。その結果を表３に示した。
【００３３】
【表３】 表３に示した様に本発明の微生物ＳＫＢ−１１５２株
は、未晒しパルプに対する漂白活性も従来菌よりも格段
に優れている。
は、未晒しパルプに対する漂白活性も従来菌よりも格段
に優れている。
【００３４】実施例４．実施例１と同様にして、ＳＫＢ
−１１５２株の菌体懸濁液を調製し、市販の酸素漂白パ
ルプに菌体添加量は一定で、最終的なパルプ濃度が２
５、３３．３、５０、６６．６％になる様に加えた。そ
して、３７℃で３日間又は７日間静置培養し、培養後実
施例１と同様の操作により手抄シートを作製し、シート
の白色度を測定した。その結果を表４に示した。
−１１５２株の菌体懸濁液を調製し、市販の酸素漂白パ
ルプに菌体添加量は一定で、最終的なパルプ濃度が２
５、３３．３、５０、６６．６％になる様に加えた。そ
して、３７℃で３日間又は７日間静置培養し、培養後実
施例１と同様の操作により手抄シートを作製し、シート
の白色度を測定した。その結果を表４に示した。
【００３５】
【表４】 ─────────────────────────────────── パルプ濃度 白色度 培養３日 培養７日 ─────────────────────────────────── 25％ 68.0 78.4 33.3％ 66.5 78.2 50.0％ 62.2 76.5 66.6％ 64.0 75.5 ─────────────────────────────────── 表４に示したように本発明の微生物ＳＫＢ−１１５２株
は、高いパルプ濃度においても、良好な漂白活性を示し
た。
は、高いパルプ濃度においても、良好な漂白活性を示し
た。
【００３６】実施例５．実施例１と同様にして、ＳＫＢ
−１１５２株の菌体懸濁液を調製し、市販の酸素漂白パ
ルプに、一定量の菌体を、最終的なパルプ濃度がそれぞ
れ２、１、０．５％となる様に加えた。各試料につい
て、３７℃、１４０ｒｐｍで回転振盪培養した後、１日
及び２日培養した後、実施例１と同様の操作により手抄
シートを作製し、シートの白色度を測定した。その結果
を表５に示した。
−１１５２株の菌体懸濁液を調製し、市販の酸素漂白パ
ルプに、一定量の菌体を、最終的なパルプ濃度がそれぞ
れ２、１、０．５％となる様に加えた。各試料につい
て、３７℃、１４０ｒｐｍで回転振盪培養した後、１日
及び２日培養した後、実施例１と同様の操作により手抄
シートを作製し、シートの白色度を測定した。その結果
を表５に示した。
【００３７】
【表５】 表５に示したように本発明の微生物ＳＫＢ−１１５２株
は、低いパルプ濃度においても良好な漂白活性を示し
た。
は、低いパルプ濃度においても良好な漂白活性を示し
た。
【００３８】実施例６．実施例１と同様の方法で、ＳＫ
Ｂ−１１５２株による酸素漂白パルプの漂白を行う際、
最初のｐＨを２〜１１まで１きざみで調製し、菌漂白を
行った後、３日間又は７日間、３７℃で静置培養し、実
施例１と同様にして手抄シートを作製し、白色度を測定
した。その結果を表６に示す。
Ｂ−１１５２株による酸素漂白パルプの漂白を行う際、
最初のｐＨを２〜１１まで１きざみで調製し、菌漂白を
行った後、３日間又は７日間、３７℃で静置培養し、実
施例１と同様にして手抄シートを作製し、白色度を測定
した。その結果を表６に示す。
【００３９】
【表６】 ─────────────────────────────────── 最初のｐＨ ２ ３ ４ ５ ６ ７ ８ ３日目白色度(%) 52.3 74.2 74.3 74.1 73.8 73.7 74.1 ７日目白色度(%) 52.4 79.3 79.6 79.9 79.7 79.5 79.3 ─────────────────────────────────── 最初のｐＨ ９ １０ １１ ３日目白色度(%) 74.0 73.4 68.7 ７日目白色度(%) 79.0 79.7 79.4 ─────────────────────────────────── 表６に示した様に、本発明のＳＫＢ−１１５２株による
パルプ漂白における最初のｐＨは、３〜１０の範囲内で
あれば、その漂白活性に特に影響がないことが確認され
た。
パルプ漂白における最初のｐＨは、３〜１０の範囲内で
あれば、その漂白活性に特に影響がないことが確認され
た。
【００４０】実施例７．実施例１と同様にして、ＳＫＢ
−１１５２株による市販酸素漂白パルプの漂白を行う際
の培養温度をそれぞれ、２５℃、３０℃、３３℃、３７
℃、４０℃及び４３℃とし、７日間培養した後、実施例
１と同様にして手抄シートを作製し、白色度を測定し
た。その結果を表７に示した。
−１１５２株による市販酸素漂白パルプの漂白を行う際
の培養温度をそれぞれ、２５℃、３０℃、３３℃、３７
℃、４０℃及び４３℃とし、７日間培養した後、実施例
１と同様にして手抄シートを作製し、白色度を測定し
た。その結果を表７に示した。
【００４１】
【表７】 ─────────────────────────────────── 培養温度（℃） ２５ ３０ ３３ ３７ ４０ ４３ 白色度 （％） 73.7 77.8 79.2 79.8 76.8 55.6 ─────────────────────────────────── 表７に示したように、本発明のＳＫＢ−１１５２株によ
るパルプ漂白の適性温度としては、２５〜４０℃が好ま
しく、特に３７℃付近にした場合に最も良好な結果を得
られることが確認された。
るパルプ漂白の適性温度としては、２５〜４０℃が好ま
しく、特に３７℃付近にした場合に最も良好な結果を得
られることが確認された。
【００４２】実施例８．実施例１と同様の操作により、
市販酸素漂白パルプのＳＫＢ−１１５２株よる漂白を行
い（３７℃、７日間）、白色度８０．１％の菌処理パル
プを得た。これを下記の条件で過酸化水素漂白を行い、
白色度８５．８％のパルプを得た。 （過酸化水素漂白条件）ＮａＯＨ対パルプ１．５％、パ
ルプ濃度１０％、Ｈ2 Ｏ2 対パルプ０．５％、６０℃、
１２０分 このパルプを１０５℃で１８時間処理し、処理後の白色
度を測定して、熱による色戻りについて検討した。ま
た、対照として同じ市販酸素漂白パルプを二酸化塩素処
理により白色度８５．６％まで漂白したものを用い、同
様の熱による色戻りについて検討した。その結果を表８
に示した。
市販酸素漂白パルプのＳＫＢ−１１５２株よる漂白を行
い（３７℃、７日間）、白色度８０．１％の菌処理パル
プを得た。これを下記の条件で過酸化水素漂白を行い、
白色度８５．８％のパルプを得た。 （過酸化水素漂白条件）ＮａＯＨ対パルプ１．５％、パ
ルプ濃度１０％、Ｈ2 Ｏ2 対パルプ０．５％、６０℃、
１２０分 このパルプを１０５℃で１８時間処理し、処理後の白色
度を測定して、熱による色戻りについて検討した。ま
た、対照として同じ市販酸素漂白パルプを二酸化塩素処
理により白色度８５．６％まで漂白したものを用い、同
様の熱による色戻りについて検討した。その結果を表８
に示した。
【００４３】
【表８】 ─────────────────────────────────── 熱処理前白色度（％） 熱処理後白色度（％） ＰＣ価 ─────────────────────────────────── 菌−Ｈ2 Ｏ2 処理 ８５．８ ８３．１ ０．５４ 二酸化塩素処理 ８５．６ ８２．１ ０．７４ ─────────────────────────────────── 表８の結果は、菌−過酸化水素処理により漂白したパル
プの方が二酸化塩素処理により漂白したパルプよりも熱
による色戻りが少ないことを示している。
プの方が二酸化塩素処理により漂白したパルプよりも熱
による色戻りが少ないことを示している。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 町田 誠 山口県岩国市飯田町２−８−１ 日本製紙 株式会社生物科学研究所内
Claims (4)
- 【請求項１】 高いリグニン分解活性及びパルプ高温漂
白活性を有する微生物ＳＫＢ−１１５２株。 - 【請求項２】 請求項１に記載された微生物ＳＫＢ−１
１５２株又は該微生物を用いて生成させた培養物を用い
てパルプを処理することを特徴とするパルプの漂白方
法。 - 【請求項３】 パルプ濃度を１０％以下として振盪処理
する請求項２に記載されたパルプの漂白方法。 - 【請求項４】 請求項１に記載された微生物ＳＫＢ−１
１５２株又は該微生物を用いて生成させた培養物を用い
てパルプを処理した後、アルカリ処理する、請求項２又
は３に記載されたパルプの漂白方法。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP6126919A JPH0787957A (ja) | 1993-07-28 | 1994-05-16 | 微生物ｓｋｂ−１１５２株及びそれを利用したパルプの漂白方法 |
| US08/406,883 US6379948B1 (en) | 1993-07-28 | 1994-07-28 | Microbe SKB-1152 strain, and method of bleaching pulp therewith |
| PCT/JP1994/001245 WO1995004131A1 (en) | 1993-07-28 | 1994-07-28 | Microbe skb-1152 strain, method of separating the same, and method of bleaching pulp therewith |
| FI951444A FI951444A7 (fi) | 1993-07-28 | 1994-07-28 | Mikrobikanta SKB-1152, menetelmä sen erottamiseksi sekä menetelmä mass an valkaisemiseksi sen avulla |
| CA002145507A CA2145507A1 (en) | 1993-07-28 | 1994-07-28 | Microbe skb-1152 strain, method of separating the same, and method of bleaching pulp therewith |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP20732293 | 1993-07-28 | ||
| JP5-207322 | 1993-07-28 | ||
| JP6126919A JPH0787957A (ja) | 1993-07-28 | 1994-05-16 | 微生物ｓｋｂ−１１５２株及びそれを利用したパルプの漂白方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0787957A true JPH0787957A (ja) | 1995-04-04 |
Family
ID=26462999
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP6126919A Pending JPH0787957A (ja) | 1993-07-28 | 1994-05-16 | 微生物ｓｋｂ−１１５２株及びそれを利用したパルプの漂白方法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6379948B1 (ja) |
| JP (1) | JPH0787957A (ja) |
| CA (1) | CA2145507A1 (ja) |
| FI (1) | FI951444A7 (ja) |
| WO (1) | WO1995004131A1 (ja) |
Family Cites Families (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SE328688B (ja) * | 1967-07-18 | 1970-09-21 | Mo Och Domsjoe Ab | |
| JPS63137672A (ja) * | 1986-11-28 | 1988-06-09 | Kobe Steel Ltd | 木材腐朽性担子菌の分離方法 |
| JPS63309181A (ja) * | 1987-06-09 | 1988-12-16 | Kobe Steel Ltd | 高活性、高選択性リグニン分解菌 |
| JPS63309182A (ja) * | 1987-06-09 | 1988-12-16 | Kobe Steel Ltd | 高活性、高選択性リグニン分解菌 |
| US4830708A (en) * | 1987-11-30 | 1989-05-16 | Pulp And Paper Research Institute Of Canada | Direct biological bleaching of hardwood kraft pulp with the fungus Coriolus versicolor |
| EP0373108A3 (en) * | 1988-11-23 | 1992-03-04 | Sandoz Ag | Process for bleaching pulp |
| US5427945A (en) * | 1988-11-23 | 1995-06-27 | Sandoz Ltd. | White-rot fungus and uses thereof |
| US5149648A (en) * | 1989-03-16 | 1992-09-22 | Kabushiki Kaisha Kobe Seiko Sho | Enzymes employed for producing pulps |
| SE465320B (sv) * | 1990-01-10 | 1991-08-26 | Korsnaes Ab | Preparat som uppvisar enzymatisk delignifieringsaktivitet, saett att framstaella detsamma och tillaempningar daerav |
| JPH03213591A (ja) * | 1990-01-19 | 1991-09-18 | Kobe Steel Ltd | 微生物によるパルプの製造法 |
| JPH03220388A (ja) * | 1990-01-19 | 1991-09-27 | Kobe Steel Ltd | パルプの製造法 |
| US5055159A (en) * | 1990-05-16 | 1991-10-08 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Biomechanical pulping with C. subvermispora |
| MY129967A (en) * | 1990-07-31 | 2007-05-31 | Clariant Finance Bvi Ltd | New fungi for pitch reduction their production, their preparation and use |
| FR2672066B1 (fr) * | 1991-01-25 | 1997-01-31 | Du Pin Cellulose | Traitement enzymatique d'une pate ligno-cellulosique chimique. |
| JPH0691290A (ja) * | 1991-10-11 | 1994-04-05 | Kobe Steel Ltd | パルプ漂白廃水の処理方法 |
| US5460697A (en) * | 1992-10-09 | 1995-10-24 | Wisconsin Alumni Research Foundation | Method of pulping wood chips with a fungi using sulfite salt-treated wood chips |
| US5437992A (en) * | 1994-04-28 | 1995-08-01 | Genencor International, Inc. | Five thermostable xylanases from microtetraspora flexuosa for use in delignification and/or bleaching of pulp |
-
1994
- 1994-05-16 JP JP6126919A patent/JPH0787957A/ja active Pending
- 1994-07-28 CA CA002145507A patent/CA2145507A1/en not_active Abandoned
- 1994-07-28 FI FI951444A patent/FI951444A7/fi unknown
- 1994-07-28 US US08/406,883 patent/US6379948B1/en not_active Expired - Fee Related
- 1994-07-28 WO PCT/JP1994/001245 patent/WO1995004131A1/ja not_active Ceased
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| FI951444A0 (fi) | 1995-03-27 |
| US6379948B1 (en) | 2002-04-30 |
| FI951444L (fi) | 1995-05-23 |
| FI951444A7 (fi) | 1995-05-23 |
| WO1995004131A1 (en) | 1995-02-09 |
| CA2145507A1 (en) | 1995-02-09 |
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