JPH09501042A

JPH09501042A - ハウスダストダニからのアレルゲン蛋白質、ペプチド及びそのための使用

Info

Publication number: JPH09501042A
Application number: JP6519393A
Authority: JP
Inventors: ロバートトマス，ウェイン; チュア，コーヤン
Original assignee: インスティテュートフォーチャイルドヘルスリサーチ
Priority date: 1993-03-12
Filing date: 1994-03-11
Publication date: 1997-02-04
Anticipated expiration: 2021-02-01
Also published as: JP3742426B2; US6077517A; CA2158047C; DE69434885D1; US20050260218A1; ATE346149T1; DE69425490D1; EP0690914A1; JP2004113249A; DE69425490T2; ATE195343T1; PT690914E; IL149905A0; IL108921A0; AU690900B2; WO1994020614A1; ZA941713B; US6905845B2; AU6278394A; EP0690914A4

Abstract

(57)【要約】 Dermatophagoides pteronyssinus及びDermatophagoides farinae（それぞれＤｅｒｐ VII及びＤｅｒｆ VII）が開示される。Ｄｅｒｐ VII活性と約２２、１７７ダルトンの分子量を有するペプチドをコードするｃＤＮＡが記載される。Ｄｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードするｃＤＮＡも記載される。本発明の核酸は試料中のＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII核酸の存在を検出するためのプローブとして、又はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの組か生成に対するプローブとして使用できる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、薬学的投与に適した組成物の形で、あるいはハウスダストダニアレルゲンに対する過敏性を診断する方法に使用できる。

Description

【発明の詳細な説明】ハウスダストダニからのアレルゲン蛋白質、ペプチド及びそのための使用発明の背景約１０％の人々が様々な環境において発生する抗原にさらされると過敏性（アレルギー）を示す。こうした抗原は即時型及び／又は遅延型過敏症を起こすアレルゲンとして知られている(King,T.P.,(1976)、Adv.Immunol.,23:77-105)。アレルゲンには草、木、雑草、動物の燐屑、昆虫、食品、薬品及び化学製品から発生するものがある。枯れ草熱、喘息、発疹などに見れられるアトピー、アナフィラキー、といった即時型アレルギー反応には個人の遺伝的疾病体質が関わっているとされている(Yang,R.P.et al，(1990),Clin.Sci.,79:19)。アトピー性アレルギーに関与する抗体は、主にＩｇＥクラスの免疫グロブリンである。ＩｇＥは特異性の親和性の高いＦｃｅＲＩレセプターを通じて好塩基球、肥満細胞、及び樹脂状細胞と結合する(Kinet.J.P.,(1990)Curr.Opin.Immunol. ,2:499-505)。アレルゲンがリガンドとしてそれに対応するＩｇＥレセプターに結合すると、ＩｇＥに結合したＦｃｅＲＩは細胞表面に架橋され、ＩｇＥ−アレルゲン間の生理学的相互作用が起きる。こうした生理学的変化には、他の物質の放出もあるが特にヒスタミン、セロトニン、ヘパリン、好酸基性白血球走化性因子、及び／又はロイコトリエンＣ４、Ｄ４、Ｅ４の放出があり、気管支平滑筋細胞の収縮が延長される(Hood,L.E.at al，Immunology(2nd edition)，TheBenjamin/Cumming Publi shing Co.,Inc(1984))。従って、アレルゲンとＩｇＥの相互作用が最終的にもたらすのは、上記の媒介物放出によって起こる過敏症である。症状は全身性か又は局部性のものであり、それは抗原の侵入経路や肥満細胞又は好塩基球上のＩｇＥ付着パターンに左右される。一般に局部性のアレルギーは表皮表面上のアレルゲン侵入部位に起こる。全身性のアレルギーは血管内を循環している抗原にＩｇＥ −好塩基球が反応することによって起こり、アナフィラキシー（アナフィラキシーショック）に至ることもある。ダニ(Dermatophagoides pteronyssinus)に対してアレルギーを持つ患者のうち、８０％がＤｅｒｐＩ及びＤｅｒｐ IIに反応するＩｇＥを産生することが精製アレルゲンの研究により明らかになった（Chapman，M.O．et al,J.Immuno l．(1980)125:587-92;Lind P.,J.Allergy Clin．Immunol．(1985)75:753-61; Va n der Zee; J.S.etａl，J.Allergy Clin． Immunol．(1988)81:884-95）。約半数の患者においては、ＩｇＥ抗ダニ抗体の５０％がこの特異性を示した。近頃トリプシンと判明したアレルゲンＤｅｒｐ III（Stuart，G.A.,et al，Immunolo gy(1992)75:29-35）は同様の或いはそれ以上の頻度で反応する（Stuart，G.A.,et al，上掲；Ford S.A．et al, Clin.Exp.Allergy(198 9)20:27-31）。しかし、今日までの定量的研究においてのみＩｇＥ結合のレベルはＤｅｒｐＩよりかなり下回ると報告されている。電気泳動（Ford，S.A．e t al，上掲; Bengtsson，A．et al.,Int.Arch.Allergy Appl．Immunol．(1986) 80:383-90)；Lind，P．et al,Scand，J.Immunol．(1983)17:263-73;Tovey E.R． et al,J.Allergy Clin．Immunolo．(1987)79:93-102）によりほとんどの血清が他のアレルゲンを識別することが分かっている。例えばＦｏｒｄ他（上掲）の研究においては、ウエスタンブロット上で８つの血清が１〜２のバンドと、６つの血清が３〜６のバンドと、３つの血清の一つは最低１３のバンドと反応する１つのものを含めてより多くのバンドと反応した。他の研究ではＭΓ３０，７６，２５Ｋにおいて、５０％の血清と反応している成分があると報告されている(Baldo et al.，Adv.Bioscience(1989)4:13-31)。アレルギー反応において特定の特異性がどれだけ重要かを決定するには、定量的なＩｇＥ結合テストにおいて精製アレルゲンを使用し、その頻度とＴ細胞の反応性に対するリンホカインの関係を調べる必要がある。ハウスダストダニに過敏性を持つ患者に対して家庭のほこりの抽出物を増量して投与していくと、その治療中に潜在的アナフィラキシーが起きる可能性があり、また臨床的な症状の消失を生じるに充分な許容性を獲得するまで数年にわたる連続的な治療が必要となる可能性があるという問題がある。これらの問題を回避する治療組成物及び方法があれば有益である。発明の概要本発明はDermatophagoides pteronyssinusまたはDermatophagoides farinaeの蛋白質アレルゲンであるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの生物学的活性を少なくとも一つ有するペプチドをコードする単離（分離）核酸に関する。核酸として望まれるのは図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）及び図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されるヌクレオチド配列を持つＤＮＡである。本発明は更にこのようなｃＤＮＡ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１及びＳＥＱＩＤＮＯ：６）の全体又は一部にコードされ、且つＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの少なくとも１つの生物学的活性を有するペプチドに関するものである。更に対象とされるのは、緊縮条件下（例えば２０〜２７℃、１ＭのＮａＣｌ中）において図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）または図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されたヌクレオチド配列を有する核酸にハイブリダイズし、あるいは図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）または図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）に示されたヌクレオチド配列を有するアミノ酸配列の全部又は一部を含むペプチドをコードする単離核酸である。本発明はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド及び図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）または図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）に示される配列と少なくとも５０％の相同性を有するペプチドをコードする核酸も特徴とする。更に、本発明の核酸の組み替え発現により得られるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド、又は化学合成により得られるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドも本発明の特徴である。望ましいペプチドはＴ細胞反応を誘発することが可能である。これにはＴ細胞刺激（例えばＴ細胞増殖やサイトカイン分泌により判断される）又はＴ細胞無反応（すなわち、抗原提示細胞のペプチド又はペプチドとＭＨＣ分子の複合体と接触することによりＴ細胞が刺激信号に無反応になるか又は増殖不可能になること）が含まれる。他に望ましいペプチドとしてはＴ細胞反応の誘発能力いかんにかかわらず、ダストダニの産するアレルギー物質に対応する抗ダストダニＩｇＥと結合可能なものがある。このようなペプチドは患者のダストダニに対する過敏性を診断するのに有効である。他に望ましいペプチドにはＴ細胞反応の誘発能力いかんにかかわらず、抗ダストダニＩｇＥとの結合能力を大幅に欠くものがある。このようなペプチドは特に治療薬として有効である。他の望ましいペプチドは図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）または図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）に示されるアミノ酸配列からなるものである。１具体例としては、Ｄｅｒｐ VIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド及び図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）または図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のアミノ酸配列を一部に有するペプチドを特徴とする。このようなペプチドの長さは少なくとも８〜３０アミノ酸、好ましくは１〜２０アミノ酸、最も好ましくは１〜１６アミノ酸で構成される。本発明は他に、Ｄｅｒｐ VIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドと特異的に反応する抗体を特徴とする。Ｄｅｒｐ VIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは薬投与に適した組成物の形で使用することが可能である。このような組成物はダストダニアレルギーを持つ患者を治療する際に用いられるダストダニ抽出物と同様の方法で使用可能である。本発明におけるＤｅｒｐ VI またはＤｅｒｆ VII活性を有すペプチドはダストダニアレルギーに対する患者の過敏症を診断するのにも使用可能である。図面の簡単な説明図１はアレルギー血清中のＩｇＥのλｇｔ１１−ＨＤ６プラークとの結合頻度を示す。図２はＩｇＥ及びウサギ抗ハウスダストダニ抗体と、ｐＧＥＸ−１にＨＤ６を挿入して生成されたグルタチオン−Ｓ−転移酵素生成物の反応度を示したものである。図３Ａと図３ＢはＤｅｒｐ VIIクローンＨＤ６のヌクレオチド配列及び誘導したアミノ酸配列を示したものである。図４は８−１８％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ上で電気泳動されたダストダニ抽出物をニトロセルロース上に電気ブロットし、それにｐＧＥＸ−１ベクター対照を含む大腸菌からの溶解物を吸収したアレルギー血清と反応させたもの（第１列）又はｐＧＥＸ−１ＨＤ６を含む大腸菌からの溶解物を吸収したアレルギー血清と反応させたもの（第２列）を示す。図５は抗ＨＤ−６抗体親和精製物とD.pteronyssinus抽出物の反応度を示したものである。ウサギ抗体をニトロセルロース上で親和精製し、ダニ抽出物のウエスタンブロットにおけるプローブを使用した。ウエスタンブロットは８−１８％ SDS-PAGE上で、電気泳動を行い、¹²⁵ Ｉ−プロテインＡで検出した。図６Ａ及び６ＢはＤｅｒｆ VIIのヌクレオチド配列及びそれに由来するアミノ酸配列を示したものである。図７Ａ、７Ｂ、７Ｃ、７Ｄ及び７ＥはＤｅｒｆ VII及びＤｅｒｐ VIIのヌクレオチド配列及びそれに由来するアミノ酸配列を比較したものである。点はＤｅｒｆ VII及びＤｅｒｐ VII間のヌクレオチド配列が一致していることを示す。Ｄｅｒｆ VIIl及びＤｅｒｐ VII間で異なるヌクレオチド塩基を持つものは、それに対応したアミノ酸の違いと共に示されている。本発明の詳細本発明は、それぞれDermatophagoides pteronyssinus及びDermatophagoides f arinaet のアレルゲンであるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの生物学的活性を少くとも１つ有するペプチドをコードする核酸分離物に係るものである。核酸としては、図３Ａ、３ＢＡ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）（Ｄｅｒｐ VII ）または図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）（Ｄｅｒｆ VII）に示されるヌクレオチド配列からなるｃＤＮＡが望ましい。図３Ａ、３ＢＡ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）に示されるｃＤＮＡは、塩基６８から塩基１１８によりコードされる１７のアミノ酸リーダー配列を含むＤｅｒｐ VIIペプチドをコードする。このリーダー配列は、塩基１１９から塩基７１５によりコードされるＤｅｒｐ VII蛋白質完全体には見られない。このｃＤＮＡに由来するＤｅｒｐ VIIのアミノ酸配列も又、図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）に示されている。このｃＤＮＡは１９８残基ペプチドをコードするが、予測モル重量２２，１７７Ｄａであり、システインを含まず、Ｎ結合グリコシレーション部位を１箇所有する。Ｄｅｒｐ VIIをコードするヌクレオチド配列を含む表現ベクターにトランスフェクトされた宿主細胞は、１９９３年７月６日にブタペスト条約の下、ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎに寄託され、受託番号６９，３４８が割り当てられた。図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されるｃＤＮＡはＤｅｒｆ V IIペプチドをコードする。Ｄｅｒｆ VIIペプチドはこのｃＤＮＡの塩基４３から塩基６８１によりコードされる。このｃＤＮＡに由来するＤｅｒｆ VIIのアミノ酸配列は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）に示されている。Ｄｅｒｐ VIIと同様に、このＤｅｒｆ VIIペプチドは自然界にある蛋白質にみられないリーダー配列を含んでいる。Ｄｅｒｆ VIIコードするヌクレオチド配列を含む表現ベクターにトランスフェクトされた宿主細胞は、１９９４年３月１０日、ブタペスト条約の下、ＡｕｓｔｒａｌｉａｎＧｏｖｅｒｎｍｅｎｔＡｎａｌｙｔｉｃａｌＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓに寄託され、受託番号Ｎ９４／８７０５を割り当てられた。従って、本発明は、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードするヌクレオチド配列からなる核酸単離（分離）物、その断片であってＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの生物学的活性を少くとも１つ有するペプチドをコードするもの、及びこれらの核酸の同等物に関するものである。ここで核酸という語はそのような断片や同等物を含むものとする。同等物という語はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質と機能上同等なものあるいはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドと機能上同等なものをコードするヌクレオチド配列を含むものとする。ここで定義されたように、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIアレルゲンの生物学的活性の少くとも１つを有する。同等のヌクレオチド配列には対立遺伝子の変種のような１又はそれ以上のヌクレオチド置換、付加、欠失が含まれ、更に遺伝コードの変性によって、図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードするヌクレオチド配列と異なる配列も含まれる。同等物は、厳重な条件下（すなわち、融解温度（Ｔｍ）以下の２０°〜２７℃、１Ｍの塩中と同等の条件）における図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）に示されるＤｅｒｐ VII又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されるＤｅｒｆ VIIのヌクレオチド配列を混成するヌクレオチド配列を含む。ここで参照されるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性あるいはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの活性を有するペプチドはここで図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）に示されるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIアミノ酸配列の全体又は部分に実質上対応するアミノ酸配列を有するペプチドであって、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの生物学的活性を少くとも１つ有するものと定義される。例えばＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに特異的なＴ細胞刺激等の反応（例えばＴ細胞増殖又はサイトカイン分泌）を誘発あるいはＴ細胞無反応を誘発することができる。これに代わり又はこれに付加的にＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、ダストダニ・アレルギー物質に対する免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）抗体と結合する（に識別される）ことが可能である。ＩｇＥに結合するペプチドは患者のＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに対する過敏性を調べるのに有効である。ＩｇＥに結合しないペプチド、精製された天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質よりも少ない程度にしかＩｇＥに結合しないペプチドは特に治療薬として有用である。一つの具体例として、この核酸はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドもコードするｃＤＮＡである。好ましくは、この核酸は、図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）に示されるＤｅｒｐ VII又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されるＤｅｒｆ VIIをコードするヌクレオチド配列の少くとも一部を有するｃＤＮＡ分子である。図３Ａ、３Ｂ及び図６Ａ、６ＢのｃＤＮＡ分子の好ましい部分は、分子のコード部分を含む。他の具体例としては、本発明の核酸はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）に示されるアミノ酸配列を有するペプチドをコードする。好ましい核酸は、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する、図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示される配列と少くとも５０％の相同性、より好ましくは少くとも６０％の相同性、最も好ましくは少くとも７０％の相同性を有するペプチドをコードするものである。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）の配列と少くとも９０％、より好ましくは少くとも９５％、最も好ましくは９８〜９９％の相同性を有するペプチドをコードする核酸も本発明の対象とするところである。相同性とは、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ V II活性を有する２つのペプチド間あるいは２つの核酸分子間における配列の類似性のことを言う。相同性は、２配列を並べ、配列上の位置を比較することにより決定される。比較された配列中の位置が同一の塩基又はアミノ酸で占められる場合、分子はその位置において相同であると言える。配列間の相同の程度は２つの配列により共有される一致した又は相同の位置の数の関数で表わされる。本発明が他に提供するものとしては、様々な程度の緊縮条件下において図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）に示されるアミノ酸配列全体又は一部を有するペプチドをコードする核酸を混成（ハイブリダイズ）する核酸がある。ＤＮＡ混成を促進する緊縮条件の適当な例としては、約４５℃での６．０×塩化ナトリウム／クエン酸ナトリウム（ＳＳＣ）とそれに続く５０°での２．０×ＳＳＣでの洗浄がこの方法として知られ、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉＯｌｏｇｙ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，ＮＹ（１９８９）６．３．１−６．３．６）に記載されている。例えば、洗浄段階での塩濃度は低緊縮の５０℃での２．０×ＳＳＣから高緊縮の５０℃での０．２× ＳＳＣから選ばれる。それに加え、洗浄段階での温度は低緊縮の室温（約２２℃ ）から高緊縮の約６５℃から選ばれる。ここで述べられたようなＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する、あるいは遺伝コードの変性により、図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）、図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）に示されるヌクレオチド配列とは異なる配列を有するペプチドをコードする分離核酸もこの発明の対象とする。このような核酸は機能的同等のペプチド（すなわち、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII 活性を有するペプチド）をコードするが、遺伝コードの変性により図３Ａ、３Ｂ及び図６Ａ、６Ｂの配列と異なる。例えば、多くのアミノ酸は、１つ以上のトリプレットにより指定される。同一のアミノ酸を特定するコドン、又はシノニム（例えば、ＣＡＵとＣＡＣはヒスチジンに対するシノニムである）は、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質のアミノ酸配列には影響を与えない“隠れた”突然変異である。しかし、Ｄｅｒｐ V II又はＤｅｒｆ VIIのアミノ酸配列における変化を起こす多形性ＤＮＡ配列が、ダストダニ固体群の中に存在すると考えられる。当業者であればＤｅｒｐ V II又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードする核酸でヌクレオチドが１つかそれ以上（ヌクレオチドの約３〜４％まで）変化したものがダストダニ中に自然対立遺伝子変性により存在することが分かるであろう。そのようなヌクレオチド変異すべてとそれによるアミノ酸多形体は発明の対象である。更に、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの一種以上の同形体または関連した交差反応を起こす同族も存在し得る。そのような同形体または同族体は、機能とアミノ酸配列の点で、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに関連している蛋白質として定義されているが、遺伝子の異なる座にある遺伝子によりコードされている。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードする断片も本発明の対象である。ここで使用されている、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードする核酸断片とは、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質のアミノ酸配列全体をコードするヌクレオチド配列よりも少ないヌクレオチド配列であって、ここで定義されたＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド（すなわちＤｅｒｐ V II又はＤｅｒｆ VIIアレルゲン生物学的活性の少なくとも１つを有するペプチド）をコードするヌクレオチド配列をいう。好ましい核酸断片は少なくとも長さ約７アミノ酸、より好ましくは約１３〜４０、さらに好ましくは約１６〜３０アミノ酸のペプチドをコードする。少なくとも長さ約３０アミノ酸、少なくとも長さ約４０アミノ酸、少なくとも長さ約６０アミノ酸、少なくとも長さ約８０アミノ酸、少なくとも長さ約１００アミノ酸、少なくとも長さ約１４０アミノ酸、少なくとも長さ約１４０アミノ酸、或いは少なくとも長さ約１９０アミノ酸、またはそれ以上のアミノ酸残基を有する、Ｄｅｒｐ VIII 活性を有するペプチドをコードする核酸断片も本発明の対象である。少なくとも長さ約３０アミノ酸、少なくとも長さ約４０アミノ酸、少なくとも長さ約６０アミノ酸、少なくとも長さ約８０アミノ酸、少なくとも長さ約１００アミノ酸、少なくとも長さ約１４０アミノ酸、或いは少なくとも長さ約２００アミノ酸、またはそれ以上のアミノ酸残基を有する、Ｄｅｒｆ VIII 活性を有するペプチドをコードする核酸断片も本発明の対象である。一般に、形質転換（トランスフォーム）された宿主中でのペプチドの表現型はペプチドの長さ約２０アミノ酸以上が望まれる場合には最も都合が良い。より短いペプチドは通常容易に化学合成できる。本発明の対象とする核酸断片は高緊縮または低緊縮条件下でＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII、或いはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIと交差反応を起こす他の動物の核酸と混成されるものを含む。一般にＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードする核酸は完全な蛋白質をコードする塩基から選ばれるが、いくつかの例では、本発明の核酸のリーダ配列部分からペプチドすべてまたは一部を選ぶのが望ましい場合がある。本発明の対象とする核酸は更にリンカー配列、変性した制限エンドヌクレアーゼ作用部位、及びＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する組換えペプチドの分子クローニング、発現又は精製に有用な他の配列を含む。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードする該酸はダストダニDermatophagoides pteronyssinusまたはDermatophagoides farinaeのｍＲＮＡから得られる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードする核酸も Dermatophagoides pteronyssinusまたはDermatophagoides farinaeのゲノムＤＮＡから得られる筈である。例えばＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードする遺伝子はここで詳述されている（例１、２参照）プロトコルに従い、ｃＤＮＡ又はゲノムライブラリーからクローン化できる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードするｃＤＮＡはDermatophagoides pteronyssinusの総ｍＲＮＡを分離することにより得られる。次いで２重らせんｃＤＮＡは総ｍＲＮＡから準備できる。それに続き、ｃＤＮＡは多くの既知の方法を用いて適当なプラスミドやバクテリオファージベクターに挿入することができる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードする遺伝子は又、本発明の提供するヌクレオチド配列の情報に従い、公知のポリメラーゼ連鎖反応すなわちＰＣＲ法（例４、５参照）によりクローン化できる。本発明の核酸はＤＮＡ又はＲＮＡでありうる。望ましい核酸は図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）（Ｄｅｒｐ VII）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）（Ｄｅｒｆ VII）に示された配列を持つＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIをコードするｃＤＮＡである。本発明は更に、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードする核酸を含み、少くとも一つの調節配列に実施可能に連結する発現ベクターを提供する。実施可能に連結するとは、ヌクレオチド配列が調節配列に対して、ヌクレオチド配列が発現するように連結されるという意味である。調節配列は人工的に識別され、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを直接的発現するものが選択される。従って、調節配列という言葉はプロモーター、エンハンサー及び他のコントロール分子を含む。このような調節配列は Goeddel:Gene Expression Technology: Methods in Enzymology 185）に詳述されている。発現ベクターの目的は形質転換する宿主の選択及び／又は発現させようとする蛋白質の種類といった要因に左右されうる、ということを理解する必要がある。一具体例として、発現ベクターはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードするＤＮＡを含む。このような発現ベクターは細胞をトタンスフェクトし、それにより蛋白質又はペプチドを産生する。これらはここで述べられている核酸にコードされる融合蛋白質又はペプチドを含む。本発明は更に、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを発現する為にトランスフェクトされた宿主細胞を含む。宿主はいかなる原核生物又は真核生物でありうる。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは E.coli といったバクテリアや、昆虫の細胞（バキュロウイルス）、酵母菌、成体チャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ）といった哺乳類の細胞中に発現されうる。他の適した宿主細胞は上記の Goeddel(1990)に見られるか当業者の知るところである。哺乳類、酵母菌又は昆虫といった真核細胞内での発現は部分的又は完全糖蛋白化及び／又は組換え蛋白質の連鎖間又は連鎖内ジスルフィド結合形成を誘発し得る。発現ベクターの例として、ｐＹｅｐＳｅｃｌ（Ｂａｌｄａｒｉｅｔａｌ（１９８７）ＥｍｂｏＪ．６：２２９−２３４）、ｐＭＦａ（Ｋｕｒｊａｎｅｔａｌ（１９８２），Ｃｅｌｌ，３０：９３３−９４３），ｐＪＲＹ８８（Ｓｃｈｕｌｔｚｅｔａｌ（１９８７）Ｇｅｎｅ，５４：１１３−１２３）及びｐＹＥＳ２（ＩｎｖｉｔｒｏｎＣｏｒｐ．ＳａｎＤｉｅｇｏ，ＣＡ）がある。培養された昆虫細胞（ＳＦ９細胞）内で蛋白質発現に用いられるバキュロウイスルベクターには、ｐＡｃ系列（Ｓｍｉｔｈｅｔａｌ（１９８３）Ｍｏｌ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．３：２１５６−２１６５）及びｐＶＬ系列（Ｌｕｃｋｌｏｗ，Ｖ．Ａ．他（１９８９）Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，１７０：３１−３９）がある。一般にＣＯＳ細胞（ＧｌｕｚｍａｎＹ（１９８１）Ｃｅｌｌ，２３：１７５−１８２）は哺乳類細胞内での過渡増殖／発現を目的としてｐＣＤＭ８（Ａｒｕｆｆｏ，Ａ．ｏｙｏｂｉＳｅｅｄ．Ｂ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８４：８５７３−８５７７）と言ったベクターと関連して使用される。これに対してＣＨＯ（ｄｈｆｒ−チャイニーズバムスター卵巣）細胞は哺乳類細胞内での安定増殖／発現を目的としてｐＭＴ２ＰＣ（Ｋａｕｆｍａｎｅｔａｌ（１９８７）ＥＭＢＯＪ，６：１８７−１９５）と言ったベクターとともに使用される。ベクターＤＮＡはリン酸カルシウム又は塩化カルシウム共沈、ＤＥＡＥ−デキソトリン媒介トランスフェクション、或いは電気穿孔といった従来の方法により哺乳類細胞に導入される。宿主細胞の形質転換として適当な方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔａｌ（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，２ｎｄｅｄｉｔｉｏｎ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ（１９８９）その他の実験指導書に記載されている。原核動物内での発現には通常大腸菌Ｅ．ｃｏｌｉ内で融合又は非融合を誘発する発現ベクターを使用する。融合ベクターは発現した標的遺伝子に多量のＮＨ₂ 末端アミノ酸を付加する。これらＮＨ₂末端アミノ酸はしばしば指示グループと称される。このような指示グループは通常２つの目的に使用される。すなわち、１）標的となる組換え蛋白質の可溶性を増大させる。２）親和精製において、リガンドとして作用することにより標的とする組換え蛋白質の精製を補助する。融合発現ベクターにおいてはしばしば蛋白質の分解部位は指示グループと標的とする組換え蛋白質の融合点である。これにより標的とする組換え蛋白質は融合蛋白質の精製に続いて指示グループから分離できる。このような酵素及び同じ性質を有する識別配列にはＸａ因子、トロンビン及びエンテロキナーゼがある。典型的な融合発現ベクターにはｐＧＥＸ（ＡｍｒａｄＣｏｒｐ．Ｍｅｌｂｏｕｒｎ，Ａｕｓｔｒａｌｉａ），ｐＭＡＬ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ，Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）及びｐＲＩＴ５（Ｐｈａｒｍａｃｉａ，Ｐｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）があり、これらは、グルタチオンＳ−転移酵素、マルトースＥ結合蛋白質、又はＡ蛋白質を、標的とする組換え蛋白質にそれぞれ融合させる。非融合を誘発する発現ベクターにはｐＴｒｃ（Ａｍａｎｎｅｔａｌ（１９８８）Ｇｅｎｅ，６９：３０１−３１５）及びｐＥＴ１１ｄ（Ｓｔｕｄｉｅｒｅｔａｌ，ＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１８５，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇｏ，ＣＡ（１９９０）６０−８９）がある。ｐＴｒｃにおける標的遺伝子の発現はハイブリッドｔｒｐ−ｌａｃ融合プロモータからの転写を宿主ＲＮＡポリメラーゼに依存しているのに対して、ｐＥＴ１１ｄに挿入された標的遺伝子の発現は、共に発現するウイルスＲＮポリメラーゼ（Ｔ７ｇｎ１）を介するＴ７ｇｎ１０−ｌａｃ０融合プロモータからの転写に依存している。このウイルスポリメラーゼはｌａｃＵＶ５プロモータからの転写制御の下でＴ７ｇｎ１の宿る内在λプロファージから得られる宿主ＢＬ２１（ＤＥ３）又はＨＭＳ１７４（ＤＥ３）より供給される。Ｅ．ｃｏｌｉ内における組換えＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII発現を最大にする方法の１つとして、組換え蛋白質を分解する能力に欠陥のある宿主細菌中で蛋白質を発現することが挙げられる（Ｇｏｔｔｅｓｍａｎ．Ｓ，ＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＴｅｃｈｎｏｋｏｇｙ，ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１８５，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇｏ，ＣＡ（１９９０）１１９−１２８）。他の方法としてはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質をコードする核酸を変性して発現ベクターに挿入することによって、各アミノ酸に対応する各コドンが、高度に発現したＥ．ｃｏｌｉ蛋白質内で優先的に利用されるコドンとなるようにすることが挙げられる（Ｗａｄａｅｔａｌ（１９９２），Ｎｕｃ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．，２０：２１１１−２１１８）。本発明におけるこのような核酸の変性は標準的なＤＮＡ合成法により行われる。本発明の核酸は標準的な方法により化学合成することもできる。ポリデオキシヌクレオチドの化学合成法は様々なものが知られている。例えば、ペプチド合成のよううに市販のＤＮＡ合成機で完全に自動化された固相合成ができる（例えば、Ｉｔａｋｕｒａｅｔａｌ，米国特許第４５９８０４９号、Ｃａｒｕｔｈｅｒｓｅｔａｌ，米国特許第４４５８０６６号、及びＩｔａｋｕｒａ，米国特許第４４０１７９６号及び同第４３７３０７１号）。本発明は更に、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド製造方法に関する。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードするヌクレオチド配列の発現を支配する核酸にトランスフェクトされた宿主細胞は、適当な条件下で培養されるとペプチドを発現する。ペプチドが分泌され、細胞とＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを含む培地の混合物から分離できる。他の可能性としては、ペプチドが細胞質に保持される場合、細胞を採取し、溶菌して蛋白質を分離できる。細胞培養には宿主細胞、媒質及び他の副産物が含まれる。細胞培養に適当な培地は当業界でよく知られている。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは従来既知の方法で細胞培養基、宿主又はその両方から分離できる。この方法としては、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、限外ろ過、電気泳動、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに特異な抗体を用いた免疫親和精製が挙げられる。本発明の他の特徴は、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する単離されたペプチドに関する。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIを有するペプチドはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIアレルゲンの少なくとも１つの生物学的活性を有する。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドはＴ細胞刺激（Ｔ細胞増殖又はサイトカイン分泌）といったＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに特異なＴ細胞における反応を誘発するか、Ｔ細胞無反応を誘発することができる。具体例の１つとして、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII 活性を有するペプチドがＴ細胞を刺激したことは、例えばＴ細胞増殖又はサイトカイン分泌により証明される。他の具体例としては、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドによるＴ細胞無反応の誘発があり、Ｄｅｒｐ V II又はＤｅｒｆ VIIペプチドにさらされたＴ細胞は２次のさらしに対して無反応である。更に他の具体例として、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質を分離したものに比べ、ＩｇＥ結合活性が低い。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、アミノ酸配列において、図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）に示されるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII配列とは異なることもあるが、そのような違いは、天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質と同一又は類似に機能する変形蛋白質あるいは、天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII 蛋白質と同一又は類似の特質を有する変形蛋白質に帰着する。このような及び他にも機能的に同等なペプチドを産生するＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質の多様な変形物をここに詳述する。ここでいうペプチドとは、完全な長さの蛋白質及びポリペプチド、又はそれらのペプチド断片のことをいう。ペプチドは図３Ａ、３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）（Ｄｅｒｐ VII）又は図６Ａ、６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）（Ｄｅｒｆ VII）に示されるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質のアミノ酸配列を変形させることによって産生されるが、これには蛋白質の機能に直接関与していないアミノ酸残基の置換、付加、欠失などがある。本発明のペプチドは少くとも約１０アミノ酸残基、望ましくは約１０〜２０アミノ酸残基、より望ましくは約１０〜１６アミノ酸残基分の長さでありうる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド及び少くとも長さ３０アミノ酸残基、少くとも４０アミノ酸残基、少くとも６０アミノ酸残基、少くとも８０アミノ酸残基、及び少くとも１００アミノ酸残基も本発明の範囲に入る。本発明の他の具体例としては、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの実質的に純粋な調整物を供給することがあげられる。このような調整物では細胞内にせよ細胞外に分泌されるにせよ天然にあるペプチド（すなわち他のダストダニペプチド）を含む蛋白質やペプチドは実質的に存在しない。ここでいう単離（分離）とは、組換えＤＮＡ法により核酸又はペプチドが産生された場合、細胞物質又は培養基を実質的に含まない核酸又はペプチドのことを、あるいは化学的合成の場合、化学前駆体又は他の化学物質を実質的に含まないことをいう。このような蛋白質やペプチドは又、他の全てのダストダニ蛋白質を含んでいない。従って、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドで単離されたものは、組換え又は合成により産生され、実質的に細胞物質及び培養基を含まず、実質的に化学前駆体や他の化学物質を含まず、実質的に他の全てのダストダニ蛋白質を含まない。単離された核酸も又核酸の由来する生物において天然では核酸の側部に位置する配列（すなわち、核酸の５’及び３’末端に位置する配列）を含まない。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは例えばかかるペプチドをコードするＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの核酸の対応する断片から組換え産生したペプチドをふるい分けすることにより得ることができる。それに加え、断片は従来Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ固相ｆ−Ｍｏｃ又はｔ−Ｂｏｃ化学法などの当業界に周知の方法により化学的に合成することができる。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質断片では、断片をオーバーラップさせることなく望まれる長さの断片に任意に、又は望む長さにオーバーラップする断片に任意に切断することができる。組換え又は化学合成で産生された断片はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有する（すなわち、Ｔ細胞刺激（増殖、サイトカイン分泌）といったＴ細胞反応、Ｔ細胞無反応を誘発するか、弱いＩｇＥ結合活性を有する）ペプチドを識別するために分析される。具体例の一つとして、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドはＴ細胞を刺激する能力又はＴ細胞無反応を誘発する能力によって識別される。例えば、Ｔ細胞増殖又はサイトカイン分泌によりペプチドがＴ細胞を刺激すると判断されたとすると、そのペプチドはここで少なくとも１つのＴ細胞エピトープを含むとみなされる。Ｔ細胞エピトープは臨床上のアレルギーを起こす蛋白質アレルゲンに対する免疫反応を誘発し、永続させる過程に関与すると考えられる。このようなＴ細胞エピトープは抗原提示細胞表面にある適当なＨＬＡ分子に結合することによりヘルパーＴ細胞レベルでの初期の事象を引き起こすと考えられる。これによって、そのエピトープに対するＴ細胞受容体を有するＴ細胞の副次集団が刺激される。こうした事象がＴ細胞増殖リンホカイン分泌、局部炎症反応、抗原／Ｔ細胞相互反応部位への免疫細胞の追加補充、抗体産生につながるＢ細胞経路の活性化を誘発する。こうした抗体のアイソタイプの一つであるＩｇＥはアレルギー症状の成長に基本的に影響を持つものであり、ＩｇＥの産生はヘルパーＴ細胞レベルでの初期の段階で、分泌されるリンホカインの性質によって影響される。Ｔ細胞エピトープはＴ細胞受容体（レセプター）に識別される基本成分または最小単位であり、エピトープは受容体による識別に不可欠なアミノ酸で構成される。これらのＴ細胞エピトープ中のアミノ酸を模倣した、アミノ酸配列及び蛋白質アレルゲンに対するアレルギー反応を修正するアミノ酸配列も本発明の範囲に属する。ここに述べたＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを他のペプチドからふるい分けるにはいくつかの異なった検定法の１つ以上を使用する。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIによるＴ細胞刺激活性は、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIによるＴ細胞活性を有すると知られている又はその可能性のあるペプチドを、適当なＭＨＣ分子を有する抗原提示細胞とＴ細胞培養中で接触させることにより生体外で検定できる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを適当なＭＨＣ分子と一緒に、必要な共刺激と共にＴ細胞に対して提示すると、特にインターロイキン２及びインターロイキン４といったサイトカインの産生レベルを増加させる信号をＴ細胞に伝達する効果が生じる。培養上澄みはインターロイキン２その他のサイトカインの検定に用いることができる。インターロイキンを検定する従来のどの方法でも使用できるが、Proc .Natl.Acad.Sc.USA,86:1333(1989)に述べられた検定法の直接関係のある部分をここに引用しておく。インターフェロン産生を検定するキットもＧｅｎｚｙｍｅＣｏｒｐ．（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡ）から入手できる。別の方法として、Ｔ細胞増殖の一般的な検定法にトリチウム化チミジン組込みがある。Ｔ細胞増殖は培養中の細胞が複製したＤＮＡに組み込まれるＨ³標識付きチミジンの量によって生体外でで測定される。従って、ＤＮＡ合成の速度と、次いで細胞分裂の速度が定量化できる。具体例として、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIＴ細胞刺激活性を有するペプチド（すなわちＴ細胞エピトープを少なくとも１つ有するペプチド）は、Ｈｉｌｌ他，Ｊ．ｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１４７：１８９−１９７（１９９１）により述べられたアルゴリズムのような、蛋白質配列にＴ細胞エピトープが存在することを予測するアルゴリズムを用いることによって識別される。Ｈｉｌｌ他のアルゴリズムは、ＭＨＣに結合し易いそれ故Ｔ細胞エピトープを含んでいるであろう配列内の一定のパターンの存在により蛋白質内のＴ細胞エピトープの位置を調べるものである。Ｔ細胞エピトープを厳密に、例えば精密なマッピング法で決定するためには、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIＴ細胞刺激活性を有する、従ってＴ細胞生物学的手法によって決定されるようなＴ細胞エピトープを少なくとも１つ含むペプチドをペプチドのアミノ末端またはカルホキシル末端におけるアミノ酸残基の付加または欠失より変性し、変性ペプチドに対するＴ細胞の反応性を調ベる。この方法に続いて、ペプチドが選ばれ組換えまたは合成により産生される。ペプチドは様々な要因によって選ばれるが、これにはペプチドに対するＴ細胞の反応強度（例えば刺激指数）、ダストダニアレルゲンに過敏な個体群内でのペプチドに対するＴ細胞の反応頻度、他のダストダニアレルゲンを有するペプチドへの交差反応力などが挙げられる。これら選択されたペプチドの物理的または化学的特性（例えば溶解性、安定性）は治療薬合成にそのペプチドが適しているか、或いはペプチドにここで述べられている変性が必要かを決定するために調べられる。そして、ヒトＴ細胞を刺激（例えば増殖、リンフォカイン分泌）するるために、選択されたペプチドまたは変性ペプチドの能力はここで述べられたように判断される。他の具体例としては、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、Ｔ細胞無反応を誘発する能力によりふるい分けられる。Ｔ細胞を刺激する能力（上記の１つ以上の方法により決定される）、天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII精製物、またはその一部の活性を抑制または完全にブロックし、無反応状態を誘発する能力は以下のように決定される。すなわち、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに接触させ、次いで天然Ｄｅｒｐ VII 又はＤｅｒｆ VIIを有する抗原提示細胞、或いはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドによってＴ細胞の順次刺激を試みる。インターロイキン２合成及び／またはＴ細胞増殖で判断されるようにＴ細胞が順次の試みに無反応であった場合、無反応状態が誘発されている。本発明に従う検定法の基本として使用された検定装置としては、例えばＧｉｍｍｉ他（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：６５８６−６５９０、及びＳｃｈｗａｒｔｚ（１９９０）Ｓｃｉｎｅｃｅ，２４８：１３４９−１３５６を参照されたい。本発明の更に他の具体例としては、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドはＩｇＥ結合特性により識別される。治療目的として本発明のペプチドはむしろダストダニアレルゲンに特異なＩｇＥとは結合しないか、対応するダストダニアレルゲンを精製したものに比較して実質的に少量しかＩｇＥと結合しない（例えば少なくとも１００倍、より望ましくは１０００倍小さい）。ＩｇＥ結合活性が低下したということはＩｇＥ結合活性が天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質を精製したものの結合活性より劣るということである。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドが診断薬として用いられた場合、必ずしもペプチドのＩｇＥ結合活性が天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIアレルゲンに比べて劣っている必要はない。ペプチドのＩｇＥ結合活性は例えば以前天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIアレルゲンに曝されたことのある患者（アレルギー性患者）から得た血清を用いた酵素リンク免疫吸着試験法（ＥＬＩＺＡ）により決定し得る。簡単に述べると、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有すると思われるペプチドはプレート上のウエル内に付着する。ウエルを洗浄してブロックした後、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有すると思われるペプチドに曝された過敏性の患者から得た血漿からなる抗体溶液をウエル内で保温（インキュベート）する。通常、保温前にＩｇＥを血漿から除去する。標識した第２の抗体をウエルに加え、保温する。次いでＩｇＥ結合量が定量され、天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質の精製物に結合したＩｇＥと比較される。別法として、ペプチドのＩｇＥ結合活性はウエスタンブロット分析により決定できる。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有すると思われるペプチドをＳＤＳ−ＰＡＧＥを用いてポリアクリルアミドゲル上を泳動させる。次にペプチドはニトロセルロース上に移され、次いで過敏性の患者から得た血清と共に保温する。標識を付した第２の抗体と共に保温した後、ＩｇＥ結合量が測定され、定量化される。ペプチドのＩｇＥ結合活性を決定する他の方法として競合ＥＬＩＳＡ分析法がある。以下簡単に説明すると、天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIと反応するＩｇＥを有すると直接ＥＬＩＳＡ分析法により判明したダストダニに過敏な患者の血漿を集め、ＩｇＥ抗体プールを用意する。このプールはＥＬＩＳＡ分析法において天然ルはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIへのＩｇＥの結合度とＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有すると思われるペプチドへのＩｇＥの結合度を比較するのに用いられる。天然Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質へのＩｇＥ結合とＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有すると思われるペプチドへのＩｇＥの結合が測定され定量化される。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドがＩｇＥに結合し、それが治療薬に使用される場合には、結合の結果として肥満細胞または好塩基球から化学伝達物質（例えばヒスタミン）が分泌されないことが望ましい。ＩｇＥに結合するペプチドが化学伝達物質の分泌を誘発するかどうかを調べるには、ヒスタミン分泌検定法が標準試薬を使用して行われる。手順書は例えばＡｍａｃ．Ｉｎｃ（Ｗｅｓｔｂｒｏｏｋ，ＭＥ）から入手できる。簡潔に述べると、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有すると思われるペプチドの緩衝溶液を過敏性の患者から得たヘパリン処理した同体積の全血液と混合する。混合し、保温した後、細胞はペレット化され、上澄みが処理され、放射免疫分析法によりヒスタミン放出量が決定される。治療薬として用いられるＤｅｒｐ VIIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、Ｔａｍｕｒａ他（１９８６）がＭｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，３０：８８３−８９６又は米特許４９３９２３９で発表したネズミモデル、或いはＣｈｉｂａ他（１９９０）がＩｎｔ．Ａｒｃｈ．ＡｌｌｅｒｇｙＩｕｍｍｕｎｏｌ．，９３：８３− ８８で発表した霊長類モデルのように、ダストダニアトピーのほ乳類モデルをテストするのが望ましい。Ｄｅｒｐ VIIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに結合するＩｇＥの最初のふるい分けには、実験動物または志願者への乱切法、皮内テストが、或いはラスト法（ＬＡＳＴ）、抗ラスト法、エリザ検定法（ＥＬＩＳＡ）、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、またはヒスタミン分泌検定法などの生体外検定が行われることがある。溶解度を増加させ、治療効果、予防効果を高め、又は安定性（例えば生体外での貯蔵寿命や生体内での蛋白質への耐性）を高める目的でＤｅｒｐ VIIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの構造を変化させることは可能である。このような変性したペプチドは、ここで定義されるＤｅｒｐ VIIまたはＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドと機能的に同等とみなす。免疫原性の変形及び／又はアレルゲン性の低下を目的とする、アミノ酸置換、欠失又は付加、といった、アミノ酸配列の変形、或いは同じ目的での構成要素の付加により、変性ペプチドが産生される。例えばＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを変形することによって、Ｔ細胞無反応を誘発し、ＭＨＣ蛋白質と結合する能力をもたせつつ、且つ強度の増殖反応、おそらくは、免疫源の形で投与された時に、いかなる増殖反応も誘発させないようにし得る。この例では、Ｔ細胞受容体機能にとって不可欠な結合残基は既知の方法により決定され得る（例えば、各残基の置換、Ｔ細胞反応の存在／非存在の決定）。Ｔ細胞受容体との相互作用に不可欠だと示されたこうした残基は、必須アミノ酸を他のものに、望ましくは類似のアミノ酸残基に置き換えること（保存的置換）で改良できる。このようなアミノ酸残基はＴ細胞反応を増加させるか、減少させるか（除去ではない）又は影響を与えないようなものである。これに加えて、これらＴ細胞受容体相互作用に必須でないアミノ酸残基は、Ｔ細胞反応を増加させ、減少させる（除去ではない）、又は影響を与えないで且つ関連したＭＨＣへの結合を除去しないような他のアミノ酸と置換することによって改良出来る。加えて、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、ＭＨＣ蛋白質複合体と相互作用するのに不可欠なアミノ酸を、他の、望ましくはＴ細胞活性を増加させるか減少させるか（除去ではない）又は影響を与えないような類似のアミノ酸残基と置換する（保存的置換）ことによって改良できる。更に、ＭＨＣ蛋白質複合体との相互作用に必須ではないが、ＭＨＣ蛋白質複合体に結合するアミノ酸残基も、Ｔ細胞反応を増加させるか、影響を与えないか、減少させる（除去ではない）ような他のアミノ酸と置換することによって改良できる。非必須アミノ酸としてアミノ酸置換に望ましいものとしては、アラニン、グルタミン酸、メチルアミノ酸があるが、これらはアミノ酸置換に限られるものではない。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの他の改良例としては、ジスルフィド結合を介する二量体化を最小限に抑える為にシステイン残基をアラニン、セリン、トレオニン、ロイシン又はグルタミン酸残基と置換するものがある。これに加え、本発明の蛋白質断片のアミノ酸側鎖は化学的に改良できる。他の改良にはペプチドの結晶化がある。安定性及び／又は反応性を増加させる為には、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを、任意の天然の対立遺伝子の変種に由来する蛋白質アレルゲンのアミノ酸配列に一つ以上の多形性を組み込むように改良できる。加えて、Ｄアミノ酸、非天然アミノ酸、又はアミノ酸類似体も本発明の対象とする蛋白質を改良するのに置換又は付加出来る。更に、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）と結合した蛋白質を産生する為に、Ａ．Ｓｅｈｏｎ達（Ｗｉｅ他前出）の方法に従ってＰＥＧを用いて変性できる。加えて、ＰＥＧは蛋白質の化学合成中に付加できる。ＣａｎｆＩ又はＤｅｒｆＶＩＩ活性を有するペプチドの他の改良としては、還元／アルキル化（Ｔａｒｒ，ＭｅｔｈｏｄｓｏｆＰｒｏｔｅｉｎＭｉｃｒｏｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ，Ｊ．Ｅ．Ｓｉｌｖｅｒｅｄ．，ＨｕｍａｎａＰｒｅｓｓ，ＣｌｉｆｔｏｎＮＪ１５５−１９４（１９８６））；アシル化（Ｔａｒｒ，前出）；適当なキャリアーとの化学的結合（ＭｉｓｈｅｌｌａｎｄＳｈｉｉｇｉ，ｅｄｓ，ＳｅｌｅｃｔｅｄＭｅｔｈｏｄｓｉｎＣｅｌｌｕｌａｒＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，ＷＨＦｒｅｅｍａｎ，ＳａｎＦｒａｎｃｉｓｃｏ，ＣＡ（１９８０），米特許４９３９２３９；或いは温和なホルマリン処理（Ｍａｒｓｈ，（１９７１）ＩＮｔ．Ａｒｃｈ．ｏｆＡｌｌｅｒｇｙａｎｄＡｐｐｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，４１：１９９−２１５）がある。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの精製促進及び溶解性増加の為に、アミノ酸融合部分をペプチドの基幹に付加することが可能である。例えば、精製を目的として、固定化金属イオンアフィニテイ−クロマトグラフィー（Ｈｏｕｃｈｕｌｉ，Ｅ他、（１９８８）Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，６：１３２１−１３２５）によってヘキサヒスチジンが蛋白質に付加できる。加えて、無関係な配列の無いペプチド分離を促進する為に、融合部分の配列とペプチドの配列間に特異的なエンドプロテアーゼ分割部位を導入することができる。患者のＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質或いは関連したアレルゲンに対する過敏症を減ずる為に、蛋白質に官能基を付加するか、蛋白質の疎水性部分を除去することによって蛋白質の溶解性を増加させる必要がある。荷電したアミノ酸やアミノ酸ペアーといった官能基はペプチドのアミノ末端又はカルボキシ末端に付加された場合、溶解性を増す。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII内のＴ細胞エピトープの適正な抗原処理を補助する為に、標準プロテアーゼ感作部位を、組換え又は合成法によってＴ細胞エピトープを少なくとも一つ有する領域同士の間で処理出来る。例えば、ＫＫ又はＲＲといった荷電したアミノ酸ペアーは組換え中に蛋白質又は断片の領域に導入できる。その結果生じたペプチドは、Ｔ細胞エピトープを少なくとも一つ含む蛋白質部分を生じさせるようなカテプシン及び／又は他のトリプシン状酵素による分割に対して敏感である。加えて、そのような荷電アミノ酸残基はペプチドの溶解性を増加させうる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードする核酸の部位を特定した突然変異誘発は、当技術分野で知られる方法によりペプチドの構造を改良するのに用いられる。中でもこのような方法は、一つ以上の突然変異を生ずるオリゴヌクレオチドプライマーを使用する複製連鎖反応（ＰＣＲ）（Ｈｏ他（１９８９）Ｇｅｎｅ，７７：５１−５９）又は突然変異遺伝子の全合成（Ｈｏｓｔｏｍｓｋｙ，Ｚ他（１９８９）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍ，１６１：１０５６−１０６３）を含む。組換え蛋白質の発現を増加させる為に前述の方法が用いられて、本発明のｃＤＮＡ配列中のコドンを、組換え蛋白質が発現する宿主内で優先的に利用されるコドンに変換する（Ｗａｄａ他、上記）。本発明の他の特色は、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに特異的に反応する抗体に関するものである。本発明の抗体は、アレルゲン抽出物の標準化、又は天然に起きる又は天然型のＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ V IIを分離するのに用いられる。例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIのｃＤＮＡ配列に基づくＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを用いて、標準方法により抗蛋白質／抗ペプチド抗血清又はモノクローナル抗体を産生できる。ネズミ、ハムスター、ウサギといったほ乳類に、免疫源形のペプチド（例えば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質や、抗体反応を誘発する抗原性断片）を免疫処置する。蛋白質又はペプチドに抗原性を与える方法には、担体への結合や、他の当業界で知られる方法がある。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは助剤と共に投与できる。免疫処置の進展は血漿又は血清の抗原力価を調べることにより検討できる。抗原のレベルを検出する為には、免疫原を抗原とした標準エリザや他の免疫検定法が用いられる。免疫処理に続いて、抗Ｄｅｒｐ VII又は抗Ｄｅｒｆ VII抗血清が得られる。所望により血清からポリクローナル抗Ｄｅｒｐ VII又は抗Ｄｅｒｆ VII抗体を分離することもできる。モノクローナル抗体を得る為には、免疫処理した動物から得た抗原産生細胞（リンパ球）を標準体細胞融合法により、骨髄腫細胞のような不死化細胞と融合させ、ハイブリドーマ細胞を産生する必要がある。このような方法は当業界では良く知られている。例えばＫｏｈｌｅｒとＭｉｌｓｔｅｉｎ（（１９７５）Ｎａｔｕｒｅ，２５６：４８５−４９７）によって最初に開発されたハイブリドーマ法や、ヒトＢ細胞ハイブリドーマ法（Ｋｏｚｂａｒ他（１９８３）ＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙＴｏｄａｙ，４：７２）、ヒトモノクローナル抗体を産生するＥＢＶ（エプスタイン・バールウイルス）−ハイブリドーマ法（Ｃｏｌｅ他（１９８５）ＭｏｎｏｃｌｏｎａｌＡｎｒｉｂｏｄｉｅｓａｎｄＣａｎｃｅｒＴｈｅｒａｐｙ，ＡｌａｎＲ．Ｌｉｓｓ，Ｉｎｃ．ｐｐ７７ −９６）等がある。ハイブリドーマ細胞は免疫化学的にふるい分けられ、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドと特異的に反応する抗体及び単離されたモノクローナル抗体の産生に使用される。ここで用いられる抗体という語には、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに特異的に反応する抗体の断片を含むものとする。抗体は従来の方法で断片化され、完全な抗体について上に述べたものと同一の方法でふるい分けて使用できる。例えば、Ｆ（ａｂ’）₂断片は抗体をペプシンで処理して得られる。こうして得たＦ（ａｂ’）₂断片はＦａｂ’断片を産生するジュスルフィド架橋を減じる処理を施される。本発明の抗体は更に抗Ｄｅｒｐ VII又は抗Ｄｅｒｆ VII部位を有する２重特異的な（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ）分子及びキメラ分子を含むものとする。本発明の他の特徴としては、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドと特異的に反応するＴ細胞クローン及び溶解性Ｔ細胞受容体を提供することにある。モノクローナルＴ細胞個体群（すなわち、遺伝学上互いに同一であり同一のＴ細胞受容体を発現するＴ細胞）はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII に敏感な細胞から誘導し、続いて、ＭＨＣ適合抗体提示細胞の存在下でＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII蛋白質及びＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドにより生体外で繰り返し刺激する。単一Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIＭＨＣ反応細胞を、限界稀釈法によりクローンし、定期的な生体外での刺激により永久系統を拡張し保持できる。別法として、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに特異的なＴ−ＴハイブリドーマはＢ細胞ハイブリドーマ産生に類似の方法で産生できる。例えば、マウスのようなほ乳類をＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドで免疫処理し、次にＴ細胞を精製し、成長しつつあるＴ細胞腫瘍系統と自律的に融合させる。こうして得られたはハイブリドーマからＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに反応する細胞が選択されクローンされる。モノクローナルＴ細胞増殖後の手順はCellular and Molecular Immunology(Abul,K.Abbas他,W.B.Saund ers Company,Philadelphia,PA(1991)p139)に記載されている。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに特異的に反応する溶解性Ｔ細胞受容体はImmunology,A synthesis(2nd edition),Edward S.Golub et al，Sinauer Asso ciates，Inc.Sunderland,MA,p366-269）に述べられているように、Ｔ細胞受容体に対する抗体を使用して免疫沈降により得られる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに特異的に反応するＴ細胞クローンは対応するＴ細胞受容体をコードする遺伝子を分離し、分子レベルでクローンするのに使用される。加えて、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII 活性を有するペプチドに特異的に反応する溶解性Ｔ細胞受容体は例えばＤｅｒｐ又 VIIはＤｅｒｆ VIIに敏感な個体に投与することによって対応するＴ細胞副次集団が抗原により活性化されるのを阻害または抑制するのに用いられる。このようなＴ細胞受容体に特異的に反応する抗体は、ここに述べられる方法に従って産生される。このような抗体はＴ細胞とＭＨＣにより提示されるペプチドとの間の相互作用をブロックまたは阻害するのに用いられる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性とＴ細胞刺激活性を有するペプチドをアレルギー性患者に曝すと、適当なＴ細胞の副次集団はそれぞれに対応する蛋白質アレルゲンに対して無反応になる（例えば曝された場合でも免疫反応を刺激しない）。加えてこのような投与は天然蛋白質アレルゲンまたはアレルゲンの部分へ曝した場合に比べてリンフォカイン分泌特性を変化させる。更に、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有し且つＴ細胞刺激活性を有するペプチドは通常アレルゲンへの反応に関与するＴ細胞副次集団に影響を与える。これらＴ細胞はアレルゲンに曝される正常部位（例えば鼻粘膜、皮膚、肺）から引き離され、蛋白質またはそれから作られた断片を投与治療されている部位へ移動する。Ｔ細胞副次集団の再配分はアレルゲンへ曝される正常部位において通常の免疫反応を刺激することで個人の免疫系の能力を改善または減少させて、アレルギー症状を軽減する。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドはダストダニアレルゲンに過敏な患者に投与された場合、アレルゲンに対する患者のＢ細胞反応、Ｔ細胞反応、またはＢ細胞とＴ細胞の両方への反応を改善する。ここで用いられる、ダストダニアレルゲンに対する患者のアレルギー反応を改善するということは、標準医療手順書（例えば、Varnary 他(1990)British Medical Journal,302:265-269)に示されているように、アレルゲンに対して無反応化し或いは症状を軽減させるということである。これらには、ホコリダニに誘発されるぜんそく症状の軽減も含まれる。ここで使用する症状の軽減とは本発明のペプチドによる処理養生に続く、アレルゲンへの患者のアレルギー反応の減少を含む。この症状の軽減は主観的に決められる（例えば軽減とは、患者がアレルゲンに曝された時により楽に感じられること）。本発明のペプチドまたは抗体は又Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII過敏性を検知し、診断するのに用いられる。例えば、これは生体外でＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに過敏性であると査定された患者から得た血液または血液生成物を、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドに混合することで判断するが、この時条件は血中成分（例えば抗体、Ｔ細胞、Ｂ細胞）とペプチドの結合に適当なものであり、このような結合が起こる程度の決定に適当なものであるように定める。本発明のペプチドまたは抗体を使用するアレルギー診断法で他に挙げられるものは、放射免疫吸収法（ＲＡＳＴ）、ペーパー放射免疫吸収法（ＰＲＩＳＴ）、酵素結合免疫吸収法（ＥＬＩＳＡ）、放射免疫分析法（ＲＩＡ）、免疫−放射分析法（ＩＲＭＡ）、蛍光免疫分析法（ＬＩＡ）、ヒスタミン分泌分析法、及びＩｇＥ免疫ブロット法である。本発明は更にＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに対する患者の過敏性を検知及び治療する方法を提供する。患者内のＤｅｒｐ VII 又はＤｅｒｆ VIIに特異的なＩｇＥの存在及び患者のＴ細胞のＤｅｒｐ VII 又はＤｅｒｆ VII上のＴ細胞エピトープに反応する能力は、アレルゲンに対して特異的なＩｇＥに結合するようなＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド、或いはＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの改良型を使用した即時型過敏症テスト及び／又は遅延型過敏症テスト（例えばＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９８５）Ｒｉｔｔ，Ｉ．Ｍ．，Ｂｒｏｓｔｏｆｆ，Ｊ．，Ｍａｌｅ，Ｄ．Ｋ．（ｅｄｓ），Ｃ．Ｖ．ＭｏｓｂｙＣｏ．，ＧｏｗｅｒＭｅｄｉｃａｌＰｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｌｏｎｄｏｎ，ＮＹ，ｐｐ１９．２−１９．１８；ｐｐ２２．１−２２．１０参照）を患者に施すことにより決定できる。同一の患者が即時型過敏症テストに先立ち、又はそれと同時に、又はその後に、遅延型過敏症テストを受ける。勿論、遅延型過敏症テストに先立って即時型過敏症テストが施された場合、遅延型過敏症テストは即時型過敏症テスト反応を示した患者に施される。遅延型過敏症テストはＴ細胞刺激活性を有し且つアレルゲンに対し過敏な患者数の実質的な割合（例えば約７５％）でアレルゲンに特異なＩｇＥと結合しない、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを用いる。特異的な即時型過敏症テスト反応及び特異的な遅延型過敏症テスト反応の両方を有すると判明した患者は、薬剤投与に適した量の組成物を投与される。ここに組成物は遅延型過敏症テストで使用されたＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド及び製薬上許容できる担体または稀釈液からなる。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、ダストダニアレルゲンまたは交差反応のある蛋白質アレルゲンへの診断、治療、及び予防に使用される。従って、本発明はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの少なくとも一方からなる、生体外使用及び薬剤投与に適する組成物を提供する。薬剤組成物は通常製薬上許容される担体と共に処方される。本発明による組成物が患者または被験体から過敏症を除くために投与される場合、公知の手順に従って、ダストアレルゲンに対する患者の過敏症を減じる（すなわちアレルギー反応を減じる）のに適した投与量及び時間で投与できる。ここで患者または被験体とは、例えばほ乳類のような内部で免疫反応を誘起できる生命体のことを言う。患者等の例としては、ヒト、イヌ、ネコ、ハツカネズミ、ラット、及びそれらのトランスジェニック種が挙げられる。治療効果を上げるために必要なＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性の少なくとも一つを有するペプチドの量は、患者等のダストダニに対する過敏性、年齢、性別、体重、患者内での抗原反応を誘発するＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの能力等の因子により変化する。投与量計画（ｒｅｇｉｍａ）は治療反応が最適となる量に調製し得る。例えば、幾つかに分割した投与量を毎日投与し得るし、治療状況の緊急性によっては比例的に減じて行くこともあり得る。活性化合物（すなわちＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド）は注射投与（皮下、静脈等）、経口投与、吸引、経皮塗布、直腸投与、などの都合の良い方法で投与し得る。投与の経路によっては、活性化合物を不活性化させるような酵素、酸、及び他の自然環境から化合物を保護するために特定の素材により被覆しても良い。非経口投与以外のＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドの投与には、不活性化を防ぐ素材でペプチドを被覆するか、又はこうした素材と同時に投与することが必要な場合があり得る。たとえば、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドは、酵素阻害剤と共に適当な担体、稀釈液、または助剤に入れて、又はリポソームのような適当な担体に入れられて患者等に投与される。製薬上許容される稀釈液には生理食塩水又は水性緩衝液がある。助剤は広義で使用され、インターフェロンのような任意の免疫刺激化合物も含む。ここで企図される助剤はレゾルシノール、ポリオキシエチンオレイルエーテル、及びｎ−ヘキサデシルポリエチレンエーテル等の非イオン性界面活性剤を含む。酵素阻害剤はすい臓トリプシン阻害剤、ジイソプロピルフルオロリン酸塩（ＤＥＰ）及びトラシロールを含む。リポソームは水中−油中−水型ＣＧＦエマルジョン、並びに通常のリポソームを含む（Ｓｔｒｅｊａｎ他（１９８４）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｉｍｍｕｎｏｌ．７：２７）。Ｔ細胞無反応を誘発するためには、組成物は非免疫発生形、たとえば助剤を含まない形で投与するのが望ましい。活性化合物も非経口又は経腹膜により投与し得る。分散液はグリセロール、液体ポリエチレングリコール、及びそれらの混合物中、及び油中に用意できる。通常の保存及び使用状態ではこれらの調製物には微生物の繁殖を防ぐ保存剤が含まれうる。注射に適した薬剤成分には、殺菌した水溶液（水溶性の場合）、分散液、及び殺菌した注射溶液又は分散液をその場で調製するための殺菌性粉末が含まれる。すべての場合に、組成物は殺菌され、且つ注射が容易にできる程度に液体である必要がある。組成物は製造、保存条件下で安定で、且つバクテリアや菌類などの微生物による汚染を防ぐものである必要がある。担体はたとえば水、エタノール、ポリオール（たとえばグリセロール、プロピレングリコール、液体ポリエチレングリコール、その他同様なもの）、それらの混合物又は植物油などのような、溶媒又は分散媒であり得る。例えば、レシチンのような被覆材を用いるか、分散の場合には必要とされる粒子の大きさを保持するか、界面活性剤を用いるかして通当な液体性を保持することができる。微生物の作用は例えばパラベン、クロロブタノール、フェノール、アスコルビン酸、チメロサール、その他の様々な抗バクテリア及び抗菌剤を用いることにより抑制することができる。多くの場合、組成物が例えば砂糖、マンニトール、ソルビトール等のポリアルコール、塩化ナトリウム、等の等張力剤を含んでいることが望ましい。例えばモノエステル酸アルミニウム及びセラチン等の吸収遅延剤が組成物に含まれていれば、注射可能な組成物の吸収を延長できる。殺菌された注射可能な溶液は活性化合物（すなわちＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド）を必要量適当な溶媒中で上に列挙した成分のうちの１つ以上を混合し、無菌濾過することにより得られる。一般に、分散液は活性化合物を基本分散媒体及び上に列挙した成分で必要なものを含む殺菌された媒体に混合することで得られる。殺菌された注射溶液を得るために用いる殺菌粉末の場合、真空乾燥又は凍結乾燥が望ましい方法である。これによって、活性成分（すなわちＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド）の粉末及びあらかじめ無菌濾過したその溶液からの追加の所望成分を含む粉末を生成する。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを上記のようにして保護すると、例えば不活性稀釈液又は同化性食用担体等と一緒にペプチドを経口投与することができる。ペプチドと他の成分は固い又は柔らかい殻を形成するゼラチンカプセルに入れるか、錠剤に固められるか、患者の食事に直接混合され得る。経口治療投与としては、活性化合物は賦形剤に混合されるか、経口摂取可能な錠剤、含口（ｂｕｃｃａｌ）錠剤、トローチ、カプセル、エリキシル、懸濁液、シロップ、カシェ剤、その他同様の形態で使用され得る。勿論、組成物と調整剤の割合は多様であり得る。都合が良いのは、重量単位で組成物が５〜８０％の間であろう。このような治療に使用できる組成物中の活性化合物の量は適当な投薬量が得られるように定める。ここで使用される「製薬上許容される担体」とはすベての溶媒、分散媒体、被覆、抗バクテリア及び抗菌剤、等張力剤、展延剤、その他同種のものが含まれる。活性物質のためのこのような媒介物や化学剤の使用は当業界に周知である。従来の媒介物や化学剤が活性化合物と非親和性でない限りこれらは治療組成物中で使用できる。補助的な活性成分も使用できる。投与の容易性と投薬量の一様性を確保するには、非経口組成物処方を投薬量単位で表すのが特に便利である。ここで言う投薬量単位とは、対象となるほ乳類の被験体に対して統一的な投与に適した物理的に不連続な単位であり、各単位は必要な製薬担体と組み合わせて所定の治療効果を上げるように計算された所望量の活性成分を含むものいう。本発明の投与量単位の特定化は（ａ）活性化合物の特殊な性質及び達成される特定の治療効果，及び（ｂ）患者の過敏性に対する処置を目的とした活性化合物の合成に固有の限界に左右され、且つ直接依存する。本発明は又、各々がＴ細胞刺激活性を有するＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ V II活性を有する少なくとも２つのペプチドからなる混合物（例えば少なくとも２つのペプチドの物理的混合物）を提供する。例えば、各々Ｄｅｒｐ VII活性を有する少なくとも２つのペプチドが結合されるか、又はＤｅｒｆ VII活性を有する少なくとも２つのペプチドが結合されるか、又は、Ｄｅｒｐ VII活性を有する少なくとも１つのペプチドとＤｅｒｆ VII活性とを有する少なくとも１つのペプチドが結合され、投与される。或いは、各々がＴ細胞刺激活性を有する領域（すなわち各々の領域が少なくとも１つのＴ細胞エピトープを含む）を少なくとも２つ有するペプチドがアレルギー性患者に投与される。このようなペプチドは少なくとも２つの領域がＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIの内の同一のアレルゲンからなるか、或いはＤｅｒｐ VII及びＤｅｒｆ VIIの結合アレルゲンからなる。２つのペプチドの組成物又は少なくとも２つの領域を有するペプチドは、ここに述べたように製薬上許容し得る担体と共に配合物の形で患者に投与される。１つ以上のこのようなある量の組成物はダストダニアレルゲンに過敏な患者に対して過敏症の治療を目的として同時に、又は連続的に投与できる。このような組成物は患者のハウスダストダニに対する過敏症を治療する薬の製造に便利である。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードするｃＤＮＡ（又は逆転写中鋳型として用いられるｍＲＮＡ）は、任意の種類の動物における類似の核酸配列を識別するのに用いられ、従って、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドをコードするｃＤＮＡとハイブリッド形成するのに充分な相同性のある配列を持つ遺伝子をクローンするのに用いられる。従って、本発明はＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドを含むだけではなく、本発明のＤＮＡとハイブリッド形成するＤＮＡにコードされるアレルゲンとなり得る蛋白質を含む。これまでに識別されたもの以外の抗体交差反応又はＴ細胞交差反応等によりＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIに免疫的に関係したペプチドを単離したものも本発明の範囲に属する。このようなペプチドは本発明の蛋白質又はペプチドに特異的な抗体に結合するか、本発明の蛋白質又はペプチドに特異的なＴ細胞を刺激する。Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチド（すなわち、組換え又は化学合成により産生されたＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII）は、他のすべてのダストダニ蛋白質を含まず、従ってダストダニ過敏症の診断又は治療の鍵となる薬剤となるアレルゲン抽出物の標準化に便利である。加えて、このようなペプチドは調合に際して構成物と生物学的活性が一定か明確であり、治療を目的として投与することができる（ダニに敏感な患者のアレルギー反応を改善する）。このようなペプチドはＤｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓｐｔｅｒｏｎｙｓｓｉｎｕｓ及びＤｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓｆａｒｉｎａｅアレルギーに対する免疫療法のメカニズムの研究に用いられ、免疫療法において使用し易い改良型派生物や類似物を設計するのに用いられる。他の人々の研究により高レベルのアレルゲン抽出物の投与は免疫療法中最も良い結果を得る（すなわち最も症状を軽減する）ことが分かっている。しかし多くの患者はアレルゲンや調合剤中の他の成分に誘発される全身反応により、このような抽出物の大量投与に耐えることができない。本発明によるＤｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VII活性を有するペプチドには他のダストダニ蛋白質はまったく含まれておらず、従って治療に安全でより適している。過敏症の患者内で過敏反応を誘発するダストダニアレルゲンの能力をブロックまたは阻害することのできる薬剤が本発明により可能となった。例えば、関連した抗Ｄｅｒｐ VII又は抗Ｄｅｒｆ VIIＩｇＥ分子に結合し、従ってＩｇＥ− アレルゲン結合を阻害し、続く肥満細胞／好塩基球の顆粒消失を阻害するようにこのような薬剤を用いることができる。他には、このような薬剤は免疫系の細胞成分に結合することができ、その結果ダストダニアレルゲンへの過敏反応が抑制されるか又は軽減される。非限定的な例として、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIのｃＤＮＡ蛋白質構造に基づき、Ｄｅｒｐ VII又はＤｅｒｆ VIIｅのＢ細胞又はＴ細胞エピトープを含むペプチドまたはその改良型を使用してダストダニアレルゲンへの過敏反応を抑制する。これは、ダストダニに過敏な患者から得た血液成分について生体外研究におけるＢ細胞またはＴ細胞の機能に影響すＢ細胞またはＴ細胞エピトープをコードする断片の構造を決定することで実行し得る。本発明は更に以下の実施例により説明されるが、本発明を限定するものとか解してはならない。本明細書に記載された参照文献と特許公報の内容は引用して本明細書の内容に組み込まれる。実施例１ａλｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーからのＨＤ６クローンの分離ＣｏｍｍｏｎｗｅａｌｔｈＳｅｒｕｍＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｐａｒｋｖｉｌｌｅ，Ａｕｓｔｒａｌｉａ（Ｔｈｏｍａｓ，Ｗ．他，ＩｎｔＡｒｃｈＡｌｌｅｒｇｙＡｐｐｌＩｍｍｕｎｏｌ（１９８８）８５：１２７−９）から購入した生きた成体Ｄｅｒｍａｔｏｐｈａｇｏｉｄｅｓｐｔｅｒｏｎｙｓｓｉｎｕｓからλｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーを用意した。ライブラリーは、ＹｏｕｎｇとＤａｖｉｓ（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８３）８０：１１９４−１１９８）及びＧｕｂｌｅｒとＨｏｆｆｍａｎ（Ｇｅｎｅ（１９８３）２５：２６３−２９９）の方法に基づくＣｈｕａ他（Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ（１９８８）１６７：１７５−１８２）に従って用意した。ポリアデニル化ｍＲＮＡはＤ．ｐｔｅｒｏｎｙｓｓｉｎｕｓ培養物から分離され、ｃＤＮＡはキット（ＡｍｅｒｓｈａｍＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，Ｂｕｃｋｓ）を用いてリボヌクレアーゼＨ法により合成した（ＧｕｌｂｅｒとＨｏｆｆｍａｎ，前述）。ＥｃｏＲＩリンカーを付加した後、ｃＤＮＡをλｇｔ１１内に連結し、５Ｘ１０⁵個の組換え体のライブラリーを得る為にＥ．ｃｏｌｉＹ１０９０（ｒ −）（ＰｒｏｍｅｇａＢｉｏｔｅｃ，Ｍａｄｉｓｏｎ，Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ）内で培養した。アレルギー性の血清をλｇｔ１１ライブラリーのプローブとして用いた。１４．５ｃｍのペトリ皿上で２００００ｐｆｕを用いる標準手順（Ｃｈｕａ，Ｋ．Ｙ．他ＩｎｔＡｒｃｈＡｌｌｅｒｇｙＡｐｐｌＩｍｍｕｎｏｌ（１９９０）９１：１１８−２３）を用いてＩｇＥプラークイムノアッセイを行った。簡潔に述べると、一晩置いたＥ．ｃｏｌｉＹ１０９０（Ｈｕｙｎｈ，Ｔ．Ｖ．他ＣｏｎｓｔｒｕｃｔｉｎｇａｎｄＳｃｒｅｅｎｉｎｇｃＤＮＡＬｉｂｒａｒｉｅｓｉｎｇｔ１０ａｎｄｇｔ１１ｉｎ：ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＡｐｐｒｏａｃｈ，ＯｘｄｆｏｒｄＩＲＬＰｒｅｓｓ，１９８６，ｐｐ４８−７８）培養物をＬ肉汁により１／５０に薄め、ＯＤ₆₅₀０．６まで３７℃で培養した。バクテリアは小球状に集め肉汁５０ｍｌごとに４００μｌを再培養した。１４．５ｃｍペトリ皿上にＹ１０９０の３００μｌを、１０⁴ｐｆｕファージと室温で３０分間培養した。次にＬＢ寒天９ｍｌ上に０．７％寒天を敷いたものに移植し、４２Ｃで３時間培養した（通常プラークが見えるようになるまで）。この時、１０ｍＭのイソプロピルβ−Ｄ−チオガラクトシドで飽和させ乾燥させてあったニトロセルロースフィルターを培養地表面に置いた。培養は３７Ｃで一晩続けた。フィルターを除去し、０．０１Ｍのトリス塩酸塩、０．１５Ｍの塩化ナトリウム、トゥイーン２０ｖ／ｖ０．０５％、ｐＨ８，（ＴＮＴ）緩衝液で静かに揺らしながら、２０分間洗浄した。フィルターをダニアレルギーの子供から得た血清と２時間揺らしながら室温で保温し（インキュベート）、３０分毎にＴＮＴで３度洗浄した。使用された血清は当初はＥ．ｃｏｌｉ抽出物（Ｈｕｙｎｈ他、上記）５０：５０に稀釈され、一晩培養した後、遠心（３０００、１０分）により清澄化し、脱脂乳５％とアジ化ナトリウム０．０２％を加えた。ＩｇＥ反応性を発達させるためにフィルターを¹²⁵Ｉ−標識抗ＩｇＥ溶液中、室温で２時間揺らした。続いて、３０分毎にＴＮＴで３洗浄した。抗ＩｇＥはハツカネズミモノクローナル２．１．５（ＳｌｅｎｕｓＬａｂｏｌｔｏｒｉｅｓＰｔｙ．Ｌｔｄ，Ｈａｗｔｈｏｒｎ，Ｖｉｃｔｏｒｉａより入手した）であり、その３０ｎｇ／ｍｌを¹²⁵Ｉ１０⁵ｄｐｍ／ｎｇとＴＮＴ中で結合させて使用した（Ｓｔｅｗａｒｔ，Ｇ．Ａ．ｈ他、ＩｎｔＡｒｃｈＡｌｌｅｒｙＡｐｐｌＩｍｍｕｎｏｌ（１９８８）８６：９−１８）。それにクロラミンＴ法により標識を付けた。フィルターは補力されたスクリーンで通常−７０℃で４８時間オートラジオグラフ記録した。 D．pteronyssinus ｃＤＮＡライブラリーから得たλｇｔ１１派生クローンＨＤ６は、ダニアレルギー症血清（Taiwan University Hospital，Taipei，R.O.にアレルギー診療に参加した子供から得た）と上記のプラークラジオイムノアッセイによって高いＩｇＥ結合性を示した為、プラーク精製された(Maniat他、Molec ular Clｏning: A Laboratory Manual，（1982）Cold Spring Harbor)。このクローンに対しＩｇＥ結合を有する血清の量を決定する為に、λｇｔ１１−ＨＤ６が９０ｃｍのペトリ皿上で１０００ｐｆｕで培養され、上記の Young and Davis（1983）に概要が記載された（Chua,K.Y.他 Int．Arch ．Allergy April．Immunol，(1990)，91:118-123に改良型の詳細あり）ようにして、免疫検定用にニトロセルロース上に移した。フィルターは分断され、Royal Children's Hospital Melbourne（Dr．D．Hill）（図１）から入手した２０種の血清と共にＩｇＥイムノアッセイが行われた。強い反応が６つの血清に見られ、別のシリーズでも１８中８に見られた。１０００ＩＵ／ｍｌでテストされた超過ＩｇＥ血清は結合を示さず、ライ草のみに過敏性のある子供から得た血清も結合を示さなかった（図１の右手の列の下方にある２つの切片参照）。ファージによりコードされるＩｇＥ結合分子の大きさを定めるために、精製されたクローンから得たＤＮＡをポリエチレングリコール沈殿法（Chua，K.Y.他， J.Exp.Med.，(1988),167:175-182）により分離し、λｇｔ１１−ＨＤ６に見られる８１２ｂｐのＤＮＡ挿入をＥｃｏＲＩ消化（東洋紡、大阪）により釈放し、グルタチオン−Ｓ−転移酵素融合ベクターｐＧＥＸ−１（Smith，D.B．他，Gene， (1988)，67:31-40）内の同じ部位中にサブクローンし、Ｅ．ｃｏｌｉＴ６−１を形質転換するのに用いた。これにより発現した蛋白質は固定グルタチオン上で親和性クロマトグラフ法（Smith,D.B.他 Gene(1988)，62:31-40）により、変性を起こさない条件下で粗バクテリア溶解物から分離した。融合蛋白質はウエスタンブロット法により調べた。ウエスタンブロット法では蛋白質をBurnet te(Burnette，W.N.,Alal.Biochem(1981)，112：195-203)の手順によってニトロセルロース（Ｂｉｏ−Ｒａｄトランスブロット）上に移し、アレルギー症血清及び¹²⁵Ｉ−抗ＩｇＥ或いはウサギ抗体及び¹²⁵Ｉ−蛋白質Ａを用いて（Greene，W. K.他，Int Arch Allergy Appl Immunol(1990)92:30-8）プラークラジオイムノアッセイを行った。ｐＧＥＸ−１内での発現は５３−５５ＫのＭｒで対になって移動する蛋白質及びウサギ抗ハウスダストダニ血清とウエスタンブロットにより反応する蛋白質を産生した（図２、列１）。２つのアレルギー症血清がこの対と反応したが（図２列３、５）、１０００ＩＵ／ｍｌの超過ＩｇＥ血清（図２列４）或いは正常ウサギ血清（図２列２）とは反応しなかった。ＩｇＥ結合蛋白質は２７Ｋグルタチオン転移酵素の影響で約Ｍｒ２７となるであろう。これは以下に述べるように、リーダー配列の残基と５’末端非翻訳領域の残基からなる。実施例２クローンＨＤ６のＤＮＡ配列分析クローンＨＤ６の８１２塩基対挿入はＭ１３ベクターｍｐ１８及びｍｐ１９（Ｍｅｓｓｉｎｇ，ＭｅｔｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８３）１０１：２０参照）でクローンされ、−４０、一般プライマー及び内在プライマー（Ｍｅｓｓｉｎｇ前述）を用いて双方向の配列決定が行われた。ジデオキシヌクレオチド配列決定法（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．他ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ．ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ．２ｎｄＥｄｉｔｉｏｎ．ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ：ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，１９８９）が、³²Ｐ −ｄＡＴＰおよびＢｉｏｒａｄＳｅｑｕｉ−ｇｅｎ電気泳動器と共にシーケナーゼ２．０キット（ＩＢＩ，ＮｅｗＨｅａｖｅｎ，ＵＳＡ）を用いて行われた。一般及び内在プライマーを用いた配列分析に続いては、Ｄｅｒｐ VIIｃＤＮＡ配列に基づく三つのプライマーが産生され、配列決定が行われた。プライマーの配列は以下の通りである。（１）ＧＡＴＣＣＡＡＴＴＣＡＣＴＡＴＧＡＴ（図３ＳＥＱＩＤＮＯ：３における塩基１１９−１３６）；（２）ＧＧＴＧＡＡＴＴＡＧＡＣＡＴＧＣＧ（図３ＳＥＱＩＤＮＯ：３における塩基２７２−２８８）；（３）ＴＣＡＡＴＴＴＴＧＧＡＴＣＣＡＡＴＴＴＴＣＧＣＴ（ＳＥＱＩＤＮＯ：５における塩基５８４−６０７）。挿入されたＤＮＡは８１２塩基からなり、５’末端から始まるオープンリーディングフレームを有し、λｇｔ１１及びＰＧＥＸ−１からの融合として発現は一定し、ＴＡＧ（７１３−７１５）（図３）の停止コドンで終わる。翻訳された蛋白質の配列はヌクレオチド６８ −７０及び７１−７３での隣接した開始ＡＴＧより始まるようである。これに続くのが典型的な、ほとんどが疎水性のリーダー配列をコードするヌクレオチド（ＶｏｎＨｉｅｊｎｅ，Ｇ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ（１９８５）１８４：９９ −１０５）で、約１７残基の長さだと思われる。更に、１９８残基をコードする配列が続き、ヌクレオチド７１３−７１５にてＴＡＧコドンで終了する。このリーディングフレームを確かめるには、ＰＣＲ（（Ｓａｉｋｉ他Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２３９：４８７−４９１参照）を用いてヌクレオチド１１９−１２１によりコードされるＮ末端Ａｓｐから始まると思われるｐＧＥＸ中の正しいＭｒの抗原産生物をコードするＤＮＡをクローンする。この合成物から得た融合蛋白質は、リーダーペプチド（ｐＧＥＸ−１）を含む融合体よりも非常に高い収率で産生される。３’末端の翻訳されない領域は、７６５−７７０（図３下線部）でポリアデニル化信号ＡＡＴＡＡＡとポリエーテルを含む。Ｎ−グリコシレーション可能部位ＡｓｎＡｌａＴｈｒはヌクレオチド５１８−５２６（図３下線部参照）によりコードされる。Ｇｅｎｐｅｐｔ７１．０，ＥＮＢＬ３０．０及びＳｗｉｓｓ−Ｐｒｏｔ２１データベース中の配列には相同性のある配列は存在しない。翻訳されたポリペプチドの予想される分子量は２３８６５ダルトンでリーダー配列を除くと２２１７７ダルトンである。実施例３ダニ抽出物中のＤｅｒｐ VIIアレルゲンの特性Ｄｅｒｐ VII天然蛋白質アレルゲンを識別する第一の段階として、前述したように得られるアレルギー症血清のプールを同体積のｐＧＥＸ−１ＨＤ６溶解物またはコントロールベクター溶解物に吸収させる（ＧｒｅｅｎｅとＴｈｏｍａｓ，Ｍｏｌｅｃ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９２）２９：２５９−２６２）。ハウスダストダニ抽出物をＬａｅｍｍｌｉ（Ｌａｅｍｍｌｉ，Ｕ．Ｋ．，Ｎａｒｕｒｅ（１９７０）２２７：６８０−５）に従って８−１８％勾配で１０−１２ｃｍゲル装置及び１３％ミニプロテアンＩＩ装置（Ｂｉｏ−Ｒａｄ，Ｒｉｃｈｍｏｎｄ，ＶＩ，ＵＳＡ）中でＳＤＳ−ＰＡＧＥを行うことにより分離し、上記血清とＩｇＥウェスタンブロットにかける。ダストダニ抽出物の場合、１トラックにつき蛋白質０．１ｍｇの割合で装填する。バクテリアの場合、培養物を遠心分離し、団塊を培養体積の０．０１に培養し、電気泳動のために１０μｌをサンプル緩衡液に加えた。精製した蛋白質を１トラックにつき２−５μｌ電気泳動した。対照標準となるベクターに吸収された血清（図４列２）に比べ、ＨＤ６融合蛋白質を吸収した血清（図４列１）は２９、２７Ｍｒ及び１１．５Ｋバンドへの反応力低下を示している。これを更に調べるために、ＨＤ６蛋白質に対するウサギ抗体を用意した。ウサギ抗体は、λｇｔ１１−ＨＤ６プラークの広がったプレートから写したニトロセルロース膜を用いて高度免疫血清から親和性精製した。簡単に手順を述べると、 λｇｔ１１クローンにより発現したアレルゲンに対し特異性を有する抗体をウサギ抗D.pteronyssinus高度免疫血清（Greene,W.K．他Int Arch Allergy Appl Imm unol（１９９０）９２：３０−８）（ウサギにダニ抽出物をくり返し注射して産生される）から分離した。分離にはプラークをブロットしたニトロセルロース膜を用いて親和性精製を行う。（Ozaki,L.S.他J.Immunol Methods（１９８６）８９：２１３−９）。λｇｔ１１由来のファージ（クローンＨＤ６）を９０ｃｍペトリ皿に１００００ｐｆｕで培養し、ライブラリーをふるいわけたのと同じ条件下でイソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）で飽和したニトロセルロースをかぶせた。一晩培養したのち、フィルターを裏返してもう一方の面をプレート表面にさらし３７℃で２時間培養した。次にフィルターをＴＮＴ緩衝液（０．０１Ｍトリス塩酸塩、０．１５ＮａＣｌ、０．０５％トゥイーン２０ｖ／ｖｐＨ８．０）で洗浄した。λｇｔ１１溶原溶解物１ｍｌ中で一晩培養されたウサギ抗血清１ｍｌをＴＮＴ２０ｍｌで希釈し脱脂乳を５％まで加えた。フィルターを入れたペトリ皿に５ｍｌに等分し室温で１時間ゆらした。フィルターをＴＮＴで３度洗浄し、抗体を溶出する為に０．１Ｍグリシン、０．１５ＭＮａＣｌｐＨ２．６中で室温で１５分間培養した。溶出５ｍｌごとに１００ｍＭトリス６５０μｌ、１．５ｍＮａＣｌ、１％アジ化ナトリウム５０ｍｌ、脱脂乳０．２５ｇを加え中和した。溶液をＰＢＳで透析した。親和性精製した抗体を上述のハウスダストダニ抽出物のウェスタンブロットに用いる為にＥ．ｃｏｌｉ溶解物に吸収させたところバンドＭｒ２９、２７、２５（図５）と反応することがわかった。活性の特異性は蛋白質を発現するｐＧＥＸ −ＨＤ６溶解物（図５列３）又は対照標準ｐＧＥＸから構成されるｐＧＥＸ−Ｄ１５（図５列２）と親和性精製した抗体を吸収させることによって更に確認した。ＨＤ６に吸収された血清（列３）は全てのバンドに対する反応性を喪失した。従ってアレルゲンに対する抗体がＭｒ２９、２７及び２４Ｋで成分に対し特異性を有することを親和性精製が示している。上述のＣＳＬダニから得た抽出物との結合バンドパターンと同じものが、Hollister-Stier Laboratories,Spokane,WA, USA からの抽出物についても見られた。ＨＤ６溶解物に対する抗体か、ウェスタンブロット上の少くとも３つのバンドに特異的に反応するということは、ダニに過敏な患者により識別されるアレルゲンの数を決定できることを意味する。複数のバンドが２つの異なる抽出物について調べられ、アレルギー症血清に関する吸収の研究により２９及び２７ＫバンドがＩｇＥ反応を有し、この組換え分子が各バンドに対する全ての反応を吸収するということが判明した。しかしこの研究からは全ての患者が各バンドに反応するとは言えない。還元性条件の下でウェスタン分析が行われたことと、翻訳された配列から計算されるＭｒより大きなＭｒをバンドが持つことから、異なる形のアレルゲンは異なる糖蛋白質化産生物であると解釈しうる。このことは脱糖蛋白質の過程による変性を注意深く制抑することで確認できる。しかしパターンは電気泳動法により示された数よりアレルギー特異性の数が少ないことを示している。これは精製した組換え又はペプチドアレルゲンを用いた免疫治療に重要な観察結果である。あるいは抗ＨＤ６抗体に反応する異ったＭｒバンドの存在は、関連した又は交差反応するアレルゲンの存在を意味する。実施例４Ｄｅｒｆ VIIをコードするｃＤＮＡのλｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーからの分離 λｇｔ１１ｃＤＮＡライブラリーを、Commonwealth Serum Laboratories，P arkville Australia（Thomas,W.他 Int Arch Allergy Appl Immunol(1988)８５：１２７−９）より購入した生きた Dermatophagoides farinae成体を用いて準備した。ライブラリーは Trudinger他((1991)Chem.Exp.Allergy，２１：３３− ３７)に従って用意した。Ｄｅｒｆ VII ｃＤＮＡをλｇｔ１１ライブラリーから分離する為にＰＣＲ増殖法とＤＮＡ配列決定法を行った。予想されるＤｅｒｐ VIIＮ末端配列に基づくオリゴヌクレオチドプライマー（表１、Ｄｆ１）を用意した。このプライマーは配列ＧＣＧＡＡＴＴＣＧＡＴＣＣＡＡＴＴＣＡＣＴＡＴＧＡＴ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：８）を有した。始めのＧＣＧＡＡＴＴＣはＥｃｏＲＩ部位（ＧＡＡＴＴＣ）をコードし、配列ＧＡＴはＤｅｒｐ VIIの最初の６残基をコードする。他のプライマーとして、ＥｃｏＲＩクローニング部位に隣接するλｇｔ１１ＧＧＴＧＧＣＧＡＣＧＡＣＴＣＣＴＧＧＡＧＣＣＣＧ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：９）フォワードプライマー（表１、Ｄｆ２）を用いた（New England Bi olabs,Beverly,U.S.A.）。ＰＣＲ反応は最終反応体積５０μｌとなる、２０ｍＭトリスＨＣｌ、ｐＨ８．２、１０ｍＭＫＣｌ、６ｍＭ（ＮＨ₄）。ＳＯ₄、２ｍＭＭｇＣｌ₂、０．１％トリトンＸ−１００、１０ｎｇμヌクレアーゼ非含有ＢＳＡ、１０ｍＭｄＮＴＰｓ、２０ｐｍｏｌ各プライマー及び２．５単位ＰｆｕＤＮＡポリメラーゼ混合液中で行われた。これはキットとしてStratagene（La Jolla,California, U.S.A.）から入手した。標的ＤＮＡ（λｇｔ１１Ｄ．ｆａｒｉｎａｅｃＤＮＡ連結、０．００１μｇ）を加え、試験管内容物を混合しパラフィン油でふたをした。試験管内容物を９５℃で５分間変性させ、５５℃で２分間アニールし、７２℃で２分間合成させた。次の４８周では９４℃で１分間の変性、５５ ℃で１分間のアニール、７２℃で２分間の合成を行う。最後（５０回目）の周では、合成反応を１０分間に延長し、全ての増殖産生物を完全な長さにする。１０マイクロリットルの反応物を１％アガロースゲル上で増幅バンドに対して調べる。反応混合物の残りはエタノール沈澱させ、低融点を有するアガロースゲル（Bio-Rad.,Richmond,U.S.A.）上で増殖させた産生物を精製する。精製したＰＣＲ産生物をＥｃｏＲＩで切断し、ＥｃｏＲＩで切断したＭ１３ベクターｍｐ１８（Messing前述参照）に連結させ、Ｅ．ｃｏｌｉＴＧ１系細胞へ移植した。単独の白いプラークが抽出されファージストックで１本鎖ＤＮＡの配列決定に用いられた。実施例５Ｄｅｒｆ VII ｃＤＮＡのＤＮＡ配列分析シーケナーゼ２．０版（USB Corp.,Cleaveland,U.S.A．）を用いてその提供者の手順に従ってジデオキシヌクレオチドチェインターミネーター法によりＤＮＡ配列決定を行った。配列決定に用いられるプライマーはＭ１３配列決定プライマー（−４０）、１７−ｍｅｒＧＴＴＴＴＣＣＣＡＧＴＣＡＣＧＡＣ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：１０）（表１、Ｄｆ３）、例４に述べられたＰＣＲ法に用いられたプライマーＤｆ１（ＳＥＱＩＤＮＯ：８）、表１に示されたオリゴヌクレオチドプライマーＤｆ４、Ｄｆ５がある。プライマーＤｆ４ＧＧＴＧＡＡＴＴＡＧＣＣＡＴＧＣＧ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：１１）はＤｅｒｐ VII配列決定に用いられており、プライマーＤｆ５ＴＣＡＡＴＣＴＴＧＧＡＴＣＣＡＡＴＴＴＴＴＧＧＣ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：１２）はＤｅｒｆ VII配列のヌクレオチド５５９−５８２に基づいている。Ｄｅｒｆ VIIの翻訳されない５’末端領域を含むｃＤＮＡを分離する為に、Ｄｅｒｆ VIIのＣ末端配列に基づくオリゴヌクレオチドプライマーが用意された。このプライマー（表１、Ｄｆ６）は配列ＧＧＡＡＴＴＣＴＴＡＡＴＴＴＴＴＴＴＣＣＡＡＴＴＣＡＣＧ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：１３）を有する。始めのＧＧＡＡＴＴＣはＥｃｏＲＩ部位をコードする。この配列とそれに続く配列（ＴＴＡ．．．）はＤｅｒｆ VIIの停止コドンと最後の６残基を逆転した配列に相補性がある。他のプライマーとしてはＥｃｏＲＩクローニング部位に隣接する λｇｔ１１ＴＴＧＡＣＡＣＣＡＧＡＣＣＡＡＣＴＧＧＴＡＡＴＧ−３’逆転プライマー（ＳＥＱＩＤＮＯ：１４）（表１、Ｄｆ７）が用いられた。ＰＣＲ法は例４に述べられた条件に従って行われた。ＰＣＲ産生物は低融点アガロースゲル上で分離され、ＥｃｏＲＩで切断され、ＥｃｏＲＩで切断されたｐＵＣ１９に連結され、Ｅ．ｃｏｌｉＴＧＩ系細胞に移植された。形質転換Ｅ．ｃｏｌｉからプラスミドＤＮＡが分離され、配列決定に用いられた。ＤＮＡ配列決定は上記と同様、シーケナーゼ２．０版を用いたジデオキシヌクレオチドチェインターミネーター法を用いた。しかし、配列決定前に、２本鎖プラスミドＤＮＡ鋳型をＮａＯＨにより変形し、酢酸ナトリウムで中和し、エタノール沈澱させた（シーケナーゼ提供者の手順より）。Ｄｅｒｆ VII ｃＤＮＡの翻訳されない５’末端を得るために、プライマーＤｆ８（表１参照）を用いた。プライマーは配列ＡＴＧＡＣＧＴＴＣＧＡＡＴＴＴＡＴＣ−３’（ＳＥＱＩＤＮＯ：１５）を有するが、これはＤｅｒｆ VIIのヌクレオチド配列２０８ −２２５を逆転したものに相補性がある。同等物当業者は、日常的にすぎない実験法により、ここで述べられた特定の具体例と同等の方法及び物が使用できることを認識し又は確認できるであろう。そのような同等物はこの発明の対象とし、以下に続く請求の範囲に含まれるものとする。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩ // Ａ６１Ｋ 39/395 9284−4ＣＡ６１Ｋ 39/395 Ｄ 9284−4ＣＮ (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＬ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者チュア，コーヤン中華民国 10018タイペイ，ファーストセクション，ジェンアイロード，ナンバー１，ナショナルタイワンユニバーシテイ，カレッジオブメディシン，グラジュエイトインスティテュートオブイミュノロジー（番地なし)

Claims

【特許請求の範囲】１．ハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｐ VIIの活性を有するペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む単離核酸。２．ｃＤＮＡ配列である請求項１の単離核酸。３．ｃＤＮＡが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）のヌクレオチド配列を含む請求項２の単離核酸。４．ｃＤＮＡが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）のヌクレオチド配列のコード領域を含む請求項２の単離核酸。５．ペプチドが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のアミノ酸配列を含む請求項１の単離核酸。６．ペプチドが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のアミノ酸配列のアミノ酸残基１〜１９８を含む請求項５の単離核酸。７．ペプチドが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮ〇：２）のアミノ酸配列と少なくとも５０％相同である請求項１の単離核酸。８．ペプチドが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のアミノ酸配列を含むペプチドをコードする核酸に対して高度又は低度な緊縮条件下でハイブリダイズする核酸によりコードされるものである請求項１の単離核酸。９．ペプチドが少なくとも約１０〜２０アミノ酸の長さを有する請求項１の単離核酸。１０．ペプチドが少なくとも約１０〜１６アミノ酸の長さを有する請求項１の単離核酸。１１．ハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｆ VIIの活性を有するペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む単離核酸。１２．ｃＤＮＡ配列である請求項１１の単離核酸。１３．ｃＤＮＡが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）のヌクレオチド配列を含む請求項１２の単離核酸。１４．ｃＤＮＡが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：６）のヌクレオチド配列のコード領域を含む請求項１３の単離核酸。１５．ペプチドが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のアミノ酸配列を含む請求項１１の単離核酸。１６．ペプチドが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のアミノ酸配列と少なくとも５０％相同である請求項１１の単離核酸。１７．ペプチドが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のアミノ酸配列を含むペプチドをコードする核酸に対して高度又は低度な緊縮条件下でハイブリダイズする核酸によりコードされるものである請求項１１の単離核酸。１８．ペプチドが少なくとも約１０〜２０アミノ酸の長さを有する請求項１１の単離核酸。１９．ペプチドが少なくとも約１０〜１６アミノ酸の長さを有する請求項１１の単離核酸。２０．請求項１の核酸を含む組み替え発現ベクター。２１．核酸がｃＤＮＡである請求項２０の組み替え発現ベクター。２２．ｃＤＮＡが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：１）のヌクレオチド配列を含む請求項２１の組み替え発現ベクター。２３．請求項１１の核酸を含む組み替え発現ベクター。２４．核酸がｃＤＮＡである請求項２３の組み替え発現ベクター。２５．ｃＤＮＡが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のヌクレオチド配列を含む請求項２４の組み替え発現ベクター。２６．Ｄｅｒｐ VIIの活性を有するペプチドの発現を指示し得る請求項２０の組み替え発現ベクターによりトランスフェクトした宿主細胞。２７．真核細胞である請求項２６の宿主細胞。２８．Ｄｅｒｐ VIIの活性を有するペプチドの発現を指示し得る請求項２２の組み替え発現ベクターによりトランスフェクトした宿主細胞。２９．真核細胞である請求項２８の宿主細胞。３０．Ｄｅｒｆ VIIの活性を有するペプチドの発現を指示し得る請求項２３の組み替え発現ベクターによりトランスフェクトした宿主細胞。３１．真核細胞である請求項３０の宿主細胞。３２．Ｄｅｒｆ VIIの活性を有するペプチドの発現を指示し得る請求項２５の組み替え発現ベクターによりトランスフェクトした宿主細胞。３３．真核細胞である請求項３２の宿主細胞。３４．Ｄｅｒｐ VIIの活性を有するペプチドを発現する媒体中で請求項２６の宿主細胞を培養し、次いで培養物から前記ペプチドを単離することよりなる、前記ペプチドの製造方法。３５．Ｄｅｒｆ VIIの活性を有するペプチドを発現する媒体中で請求項３０の宿主細胞を培養し、次いで培養物から前記ペプチドを単離することよりなる、前記ペプチドの製造方法。３６．請求項１の核酸の組み替え発現により生成したハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｐ VIIの活性を有する単離ペプチド。３７．請求項３の核酸の組み替え発現により生成したハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｐ VIIの活性を有する単離ペプチド。３８．化学合成により生成したハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｐ VIIの活性を有する単離ペプチド。３９．少なくとも約１０〜２０アミノ酸の長さを有する請求項３８の単離ペプチド。４０．少なくとも約１０〜１６アミノ酸の長さを有する請求項３９の単離ペプチド。４１．請求項１１の核酸の組み替え発現により生成したハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｆ VIIの活性を有する単離ペプチド。４２．請求項１３の核酸の組み替え発現により生成したハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｆ VIIの活性を有する単離ペプチド。４３．化学合成により生成したハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｆ VIIの活性を有する単離ペプチド。４４．少なくとも約１０〜２０アミノ酸の長さを有する請求項４３の単離ペプチド。４５．少なくとも約１０〜１６アミノ酸の長さを有する請求項４３の単離ペプチド。４６．Ｄｅｒｐ VIIの活性を有する変性ペプチド。４７．図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のＤｅｒｐ VIIアミノ酸配列内に存在する少なくとも一つのシステイン残基が他のアミノ酸残基により置換されている請求項４６の変性ペプチド。４８．図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のＤｅｒｐ VIIアミノ酸配列内に存在する少なくとも一つのシステイン残基がセリン残基により置換されている請求項４６の変性ペプチド。４９．少なくとも１つのリジン残基がペプチドのアミノ末端、カルボキシ末端、又は両末端に付加されている請求項４６の変性ペプチド。５０．少なくとも１つの荷電アミノ酸がペプチドのアミノ末端、カルボキシ末端、又は両末端に付加されている請求項４６の変性ペプチド。５１．Ｄｅｒｆ VIIの活性を有する変性ペプチド。５２．図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のＤｅｒｆ VIIアミノ酸配列内に存在する少なくとも一つのシステイン残基が他のアミノ酸残基により置換されている請求項５１の変性ペプチド。５３．図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のＤｅｒｆ VIIアミノ酸配列内に存在する少なくとも一つのシステイン残基がセリン残基により置換されている請求項４６の変性ペプチド。５４．少なくとも１つのリジン残基がペプチドのアミノ末端、カルボキシ末端、又は両末端に付加されている請求項５１の変性ペプチド。５５．少なくとも１つの荷電アミノ酸がペプチドのアミノ末端、カルボキシ末端、又は両末端に付加されている請求項５１の変性ペプチド。５６．ハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｐ VIIの活性を有するペプチドの実質的に純粋な調整物。５７．ハウスダストダニアレルゲンＤｅｒｆ VIIの活性を有するペプチドの実質的に純粋な調整物。５８．Ｄｅｒｐ VIIを有する少なくとも１つのペプチドと、薬学的に許容できる担体とを含む薬学投与に適した組成物。５９．ペプチドが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のアミノ酸配列を含む請求項５８の組成物。６０．ペプチドが図３Ａ及び３Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：２）のアミノ酸配残基１〜１９８を請求項５９の組成物。６１．Ｄｅｒｆ VIIを有する少なくとも１つのペプチドと、薬学的に許容できる担体とを含む薬学投与に適した組成物。６２．ペプチドが図６Ａ及び６Ｂ（ＳＥＱＩＤＮＯ：７）のアミノ酸配列を含む請求項６１の組成物。６３．患者のハウスダストアレルゲンに対する過敏症をを処置する薬剤の製造に請求項５８、５９、６０、６１、又は６２の組成物の使用する方法。６４．請求項５８の組成物を患者に投与することよりなる、ハウスダストアレルゲンに過敏な患者を処置する方法。６５．請求項５９の組成物を患者に投与することよりなる、ハウスダストアレルゲンに過敏な患者を処置する方法。６６．患者から採取した血液試料を、血液成分が前記ペプチドに結合するに適した条件下に、請求項３６のペプチドと結合し、次いで生じた結合の程度を決定することよりなる、ハウスダストアレルゲンに対する患者の過敏症を検出する方法。６７．生じた結合の程度がＴ細胞作用、Ｔ細胞増殖、Ｂ細胞作用、血中に存在する蛋白質の抗体への結合、又はこれらの組み合わせを測定することにより決定される請求項６６の方法。６８．請求項６１の組成物を患者に投与することよりなる、ハウスダストアレルゲンに過敏な患者を処置する方法。６９．請求項６２の組成物を患者に投与することよりなる、ハウスダストアレルゲンに過敏な患者を処置する方法。７０．患者から採取した血液試料を、血液成分が前記ペプチドに結合するに適した条件下に、請求項４１のペプチドと結合し、次いで生じた結合の程度を決定することよりなる、ハウスダストアレルゲンに対する患者の過敏症を検出する方法。７１．生じた結合の程度がＴ細胞作用、Ｔ細胞増殖、Ｂ細胞作用、血中に存在する蛋白質の抗体への結合、又はこれらの組み合わせを測定することにより決定される請求項７０の方法。７２．請求項３６のペプチドに対して特異的に反応性の抗体。７３．モノクローナル抗体である請求項７２の抗体。７４．請求項４１のペプチドに対して特異的に反応性の抗体。７５．モノクローナル抗体である請求項７４の抗体。７６．請求項３６のペプチドに対して特異的に反応性のＴ細胞クローン。７７．請求項３６のペプチドに対して特異的に反応性の可溶性Ｔ細胞レセプター。７８．請求項４１のペプチドに対して特異的に反応性のＴ細胞クローン。７９．請求項４１のペプチドに対して特異的に反応性の可溶性Ｔ細胞レセプター。