JPH09506870A - 金属キレート化剤 - Google Patents

金属キレート化剤

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JPH09506870A JP7517075A JP51707595A JPH09506870A JP H09506870 A JPH09506870 A JP H09506870A JP 7517075 A JP7517075 A JP 7517075A JP 51707595 A JP51707595 A JP 51707595A JP H09506870 A JPH09506870 A JP H09506870A
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Abstract

(57)【要約】 タンパク質、ペプチド又は抗体のような標的分子に結合させるための、放射性核種キレート化化合物が提供される。得られた標識標的分子は、診断及び治療に使用することができる。

Description

【発明の詳細な説明】 金属キレート化剤 発明の分野 本発明は、診断用造影の分野に属し、診断上及び治療上の興味ある組織を標的 とする薬剤の放射性標識に有用な化学的キレート化剤に関する。 発明の背景 診断用造影の技術は、体内に部位選択的に結合又は局在して、診断上興味ある 画像を解像する助けとなる造影剤を利用するものである。例えば、67ガリウム− クエン酸塩は、腫瘍及び炎症組織への親和性を有し、走査型断層撮影法により、 患部領域を医師に示すことができる。その他の造影剤としては、99mテクネチウ ム及び186/188レニウムのような金属性放射性核種があり、これらは、人体の目 的の領域に局在するタンパク質、ペプチド及び抗体のような標的分子を標識する のに使用されてきた。 タンパク質やその他の巨大分子は、標的物質として、正確な診断に必要な組織 特異性を提供するが、その物理的構造のため、金属性放射性核種によってこれら の物質を標識することは困難である。特に、タンパク質及びペプチド性標的物質 は、放射性核種が結合し得る多くの部位を提供するため、不均一に標識された生 成物が生じる。また、タンパク質は、サイズが大きいにも拘らず、放射性核種と の高親和力結合のための最適な構造的立体配置、即ち、5員環を形成する4つ以 上のドナー原子を組み込む領域をほとんど提供しない。その結果、放射性核種は 、典型的には、より多量に存在する低親和性部位に結合して、不安定な複合体を 形成する。 バックグラウンドの結合の問題に対処するため、Paik et al.(Nucl Med Biol 1985,12:3)は、抗体の標識を過剰のDPTA(ジアミントリメチレン五酢酸) の存在下で行い、低親和性結合部位をマスクする方法を提 案した。この方法により低親和性結合の問題は軽減されるが、結果的に放射性核 種(この場合テクネチウム)の実際の結合もまた非常に低かった。システイン残 基の割合が高いタンパク質の直接標識も証明されている(Dean et al.;WO 92/13 ,572)。この方法は、放射性核種結合のための高親和性部位としてシステイン残 基のチオール基を利用するものであり、このため必然的に、必要とされるチオー ル構造を有する標的物質への適用に限定される。 標的物質の直接標識に代わる有望な方法は、キレート化剤を使用して標的物質 と放射性核種とを結合させる間接法である。キレート化剤として使用できる候補 化合物は、選択された金属性放射性核種と強く結合し、かつ標的分子との結合の ための反応性官能基も有する化合物である。ペプチド及びタンパク質に基づく標 的物質の標識に使用するためには、キレート化剤は、理想的にはこれ自体ペプチ ドに基づく化合物であって、ペプチド合成法を使用して任意の目的構造の組み合 わせでキレート化剤/標的物質を合成することができるものである。診断用造影 に利用するためには、キレート化剤は、血液及び腎クリアランス、ならびに血管 外拡散性(extravascular diffusibility)のような、in vivo使用のための適切な 特徴を有することが望ましい。 発明の要約 本発明は、診断上有用な金属に結合し、かつ診断上及び治療上興味ある身体部 位に局在することができる標的物質に結合することができるキレート化剤を提供 する。本発明のキレート化剤は、99mテクネチウム及び186/188レニウムのような 放射性核種のオキソ、ジオキソ及びニトリドイオンに結合することができるN3 S立体配置を提供するよう構造的に設計されたペプチドアナログである。 更に詳しくは、かつ本発明の1つの面により、下記式: [式中、 R1及びR2は、一緒になって、場合により5員又は6員環と縮合していてもよ い、5員又は6員複素環(ここで、いずれかの環は、場合により結合形成基、又 は標的分子が結合した結合形成基により置換されていてもよい)を形成し; R3は、H;アルキル;ならびにアミノ、アミノアシル、カルボキシル、グア ニジニル、ヒドロキシル、チオール、フェニル、フェノリル、インドリル及びイ ミダゾリルから選択される基により置換されたアルキル、から選択され; R4は、ヒドロキシル;アルコキシ;アミノ酸残基;及び標的分子から選択さ れ;そして Tは、H又は硫黄保護基である]で示される金属キレート化剤が提供される。 本発明のある面で、上記式のキレート化剤は、診断上又は治療上有用な、これ と錯体形成した金属を含む形で提供される。 本発明の別の面により、キレート化剤は、診断上又は治療上有用な標的分子に 結合した形で提供される。本発明の更に別の面は、標的分子に結合し、これと錯 体形成した金属を含む形のキレート化剤を提供する。 本発明の別の面で、下記一般配列: ホルミル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Tyr−Lys−Lys−A sp−X−OH (式中、Xは、結合又はアミノ酸残基である)を有し、本発明のキレート化剤と 結合することができる標的分子が提供される。 図面の簡単な説明 図1は、本発明の実施態様による標的分子の結合親和性を表すグラフである。 図2は、本発明の実施態様による標的分子の好中球減少作用を表すグラフであ る。 発明の詳細な説明 本発明は、金属と錯体を形成し、標的分子と結合した形の場合、この検出可能 な金属を、診断上興味ある身体部位に送達するのに有用な、診断上有用な金属の キレート化剤を提供する。上記式に示されるように、本キレート化剤は、金属が 錯体化されるN3S立体配置を提供するペプチド性誘導体である。 本明細書で使用される変数R1〜R4及びTを定義する用語は、下記の意味を有 する: 「アルキル」は、直鎖又は分岐鎖状のC1〜C8鎖のことをいい、低級C1〜C4 アルキルを含む; 「アルコキシ」は、直鎖又は分岐鎖状のC1〜C8アルコキシのことをいい、低 級C1〜C4アルコキシを含む; 「チオール」は、アルキル基で置換されてチオエーテルを形成してもよい、ス ルフヒドリル基のことをいう; 「硫黄保護基」は、硫黄の酸化を阻害する化学基のことをいい、金属の キレート化により切断される基を含む。適切な硫黄保護基は、公知のアルキル、 アリール、アシル、アルカノイル、アリーロイル(aryloyl)、メルカプトアシル 及び有機チオ基を含む。 本発明の好適な実施態様では、キレート化剤は、上記式(式中、R1及びR2は 、一緒になって、ピロール及びピリジンのような5員又は6員複素環、又はイン ドール、キノリン及びイソキノリンのような、6員環と縮合した5員又は6員環 を形成し;R3は、H、及びヒドロキシで置換されたメチルとエチルから選択さ れるアルキル基(最も好適にはヒドロキシメチル)から選択され;R4は、ヒド ロキシル、アルコキシ、アミノ酸残基、及び標的分子から選択され;そしてTは 、水素原子又は硫黄保護基のアセトアミドメチル(Acm)である)に準じる。 本発明の具体的な実施態様では、キレート化剤は、上記一般式(式中、Tは、 硫黄保護基のアセトアミドメチル(Acm)であり;R3は、H又はヒドロキシ メチルであり;R1及びR2は、ピリジン、ピロール、インドール、キノリン及び イソキノリンから選択される環を一緒になって形成し;そしてR4は、グリシン アミノ酸残基、又は標的ペプチドに結合したグリシン残基である)に準じる。 R1及びR2で表される置換基は、隣接する窒素原子と一緒になって、別の5員 又は6員環と縮合してもよい5員又は6員複素環を形成する。5員又は6員複素 環は、ピロール、ピラゾール、イミダゾール、ピリジン、ピラジン、ピリダジン 、ピリミジン及びトリアジンを含むが、これらに限定されない。縮合環は、キノ リン、イソキノリン、インドール及びプリンのようなN含有二環系を含むが、こ れらに限定されない。硫黄原子を含有する環(例えばチアゾール)及び酸素原子 を含有する環(オキサゾール)も、本発明に包含される。 R1及びR2により形成される複素環は、化学的に反応性で標的分子をキレート 化剤に結合させることができる結合形成基で置換されていてもよい。標的分子が ペプチド性である好適な場合に、この結合形成基は、このペプチドを変性しない か、又はこのペプチドに悪影響を及ぼさない条件下で反応性である。本発明の1 つの実施態様で、結合形成基は、カルボキシ末端又はアミノ末端のようなペプチ ド性標的分子の官能基と反応性である。あるいは、この結合形成基は、リシン残 基のε−アミノ基と反応性であってもよい。標的分子のアミノ基と反応性である 結合形成基としては、カルボキシル及び活性エステルが挙げられる。標的分子の カルボキシル基と反応性である結合形成基としては、アミン及びヒドラジンが挙 げられる。 診断及び治療目的には、キレート化剤それ自体を、錯体を形成することができ る検出可能な金属と組み合わせて使用してもよい。適切な金属としては、99mT cO3+99mTcO2 +、ReO3+及びReO2 +のような種々の形のテクネチウム 及びレニウムのような放射性核種が挙げられる。 更に望ましくは、キレート化剤は、診断用造影又は治療(即ち、腫瘍の放射線 療法)のための目的の位置にキレート化金属を局在化させるのに役立つ標的分子 に結合している。標的分子の例は、ステロイド、タンパク質、ペプチド、抗体、 ヌクレオチド及びサッカライドを含むが、これらに限定されない。好適な標的分 子としては、タンパク質及びペプチド、特に、特定の疾患に特徴的な細胞表面受 容体に特異的に結合することができるそれらが挙げられる。例えば、特定のタン パク質受容体の過剰発現に関連した疾患の症状は、本発明によりそのタンパク質 又はそのタンパク質の受容体結合断片を標識することにより確認することができ る。ペプチドに基づく標的分子は、種々の公知方法により製造することができる か、又は ある場合には購入可能である。t−Boc保護と脱保護を交互に利用する固相合 成は、短いペプチドを製造するための自動化可能な好適な方法である。組換えD NA法は、タンパク質やその長い断片を産生するために好適である。 本発明のキレート化剤は、ペプチド誘導体であり、最も効率的には固相ペプチ ド合成法により調製される。一般に固相合成は、ポリスチレンのような不溶性支 持体又はマトリックスに結合させて成長させるペプチド鎖に、アミノ酸残基を段 階的に付加することよりなる。最初に、アミノ基をt−ブチルオキシカルボニル 基(tBoc)又はフルオレニルメトキシカルボニル(FMOC)基のようなN 保護剤で保護して、キレート化剤のC末端残基を市販の支持体に固定する。この アミノ保護基を、tBocの場合ではTFA、又はFMOCの場合ではピペラジ ンのような適切な脱保護剤で除去し、次のアミノ酸残基(N保護型)を、ジシク ロカルボジイミド(DCC)のようなカップリング剤で付加する。ペプチド結合 の形成後、この試薬を支持体から洗浄する。最終残基の付加後、キレート化剤を 、トリフルオロ酢酸(TFA)又はフッ化水素(HF)のような適切な試薬で支 持体から切断して単離する。 本発明は、カルボキシル炭素、アルファ炭素及びアルファ窒素(ここで、アル ファ炭素とアルファ窒素は共通の環に組み込まれている)を含み、アミノ酸に構 造が類似しているという条件で、窒素原子を含有する種々の複素環基を導入した キレート化剤を包含する。例えば、ピコリン酸(pic)、ジピコリン酸(di pic)、ケリダム酸(chel)、2−カルボキシピラジン、2−カルボキシ ピリミジン、2−カルボキシピロール、2−キノリン酸、1−イソキノリン酸、 3−イソキノリン酸などは、カルボキシル基と前もって付加した残基の脱保護ア ミノ基との反応で ペプチド結合を形成することにより、固相合成において天然アミノ酸残基のよう に挙動する。単に鎖伸長の適切な段階で目的のアミノ酸残基を組み込むことによ って、本発明のキレート化剤に種々のR3を導入することができる。例えば、R3 は、セリン残基を使用することによりヒドロキシメチル基になり、又はグリシン を使用することにより水素原子になることができる。任意のD又はL、天然又は 誘導体化したアミノ酸を使用することができる。 本発明の実施態様により、R4は、タンパク質性の標的分子である。複数のサ ブユニットからなるタンパク質であるヒト免疫グロブリンG(HIG)は、テク ネチウム−99mで直接標識して、炎症部位の造影に広く使用されてきたが、受 容体結合特性によるその部位特異性のため、及びその調製のしやすさのため、よ り小さなペプチドが、標的分子として選択されつつある。ペプチド性標的分子の 例は、Thr−Lys−Pro−Pro−Arg及びLys−Pro−Pro− Argのようなタフトシン拮抗物質である。炎症を造影するのに有用な別のペプ チド性標的分子は、fMLP(ホルミル−Met−Lys−Phe)及びFischm an et al.により係属中のカナダ特許出願CA 2,016,235号に記載さ れたホルミル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Tyr−Lysのような その誘導体である。fMLPとその種々の誘導体は、好中球に結合するため、炎 症部位の造形に有用であると考えられている。 本発明の別の面により、本発明は、ホルミル−Nleu−Leu−Phe−N leu−Tyr−Lys−Lys−Asp−X−OH(式中、Xは、結合又はア ミノ酸残基である)の配列を有する、標的分子として有用なペプチドを提供する 。このペプチドの便利な合成のために、Xは好適にはグリシン(Gly)残基で ある。In vivoでの試験により、本発明の キレート化剤に結合したこのペプチドが、天然のfMLPやその誘導体のホルミ ル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Tyr−Lysよりも好ましい好中 球減少性を有する一方、好中球に強く結合することが証明された。 キレート化剤/標的分子結合体(以後「結合体」という)の合成は、種々の方 法で行うことができる。R4がペプチド性標的分子である場合、標的分子のC末 端残基から固相合成を開始して、キレート化剤の複素環残基(R1、R2)で終了さ せることにより、まとめて結合体を合成するのが便利である。あるいは、リシン 残基を組み込んでいる標的分子は、そのリシン残基のε−アミノ基によりR4で キレート化剤に結合することができる。この場合、標的ペプチドは、キレート化 剤とは別の鎖として合成し、ε−アミノ基とN末端アミノ基と別々に保護する。 例えば、このε−アミノ基は、1−(4,4−ジメチル−2,6−ジオキソシク ロヘキシリジン)−エチル(Dde)で保護し、一方N末端アミノはFMOCで 保護することができる。標的分子合成の終了後、N末端アミノ基は保護したまま 、ε−アミノ基はヒドラジンで脱保護してキレート化剤のC末端カルボキシル基 との反応に使用することができる。 また標的分子を、キレート化剤の複素環上の結合形成置換基により本発明のキ レート化剤に結合させることができる。例えば、脱保護して複素環上にアミノ置 換基を有するキレート化剤は、ペプチド標的分子のC末端カルボキシル基と反応 する。このような結合体は、キレート化剤のC末端残基で開始し、標的分子のN 末端で終わる単一鎖として合成することができる。あるいは、複素環基が、カル ボキシル基又は活性エステルのような適切な結合形成置換基を有する場合、ペプ チド標的分子は、N末端により複素環残基に結合することができる。この場合、 キレート化剤と標的分子 は、別の鎖として合成し、次に結合して目的の結合体を形成する。 本発明の1つの面により、キレート化剤は、診断上又は治療上有用な金属を組 み込む。キレート化剤への金属の組み込みは、配位化学の分野で一般的な種々の 方法により達成することができる。金属が放射性核種テクネチウム−99mであ る場合、テクネチウム錯体を形成するため下記の一般的方法を使用することがで きる。最初にキレート化剤を水性アルコール、例えば、エタノール:水(1:1 )に溶解することによりキレート化剤溶液を生成する。この溶液を酸素を除去す るため窒素で脱気して、次にチオール保護基を、例えば水酸化ナトリウムと熱で 除去する。次にこの溶液を酢酸のような有機酸(pH6.0〜6.5)で中和する 。標識工程において、モリブデマン(Molybdemun)発生器から得られた過テクネ チウム酸ナトリウムを、このテクネチウムを還元するのに充分な量の塩化第一ス ズと共に、このキレート化剤溶液に添加する。この溶液を混合し、室温で反応さ せ、次いで水浴上で加熱する。別の方法では、pH8に調整したキレート化剤溶液 で標識を行うことができる。過テクネチウム酸塩を、目的のキレート化剤とのリ ガンド交換反応に適した不安定なリガンドと錯体形成したテクネチウムの溶液で 置換してもよい。適切なリガンドとしては、酒石酸塩、クエン酸塩、グルコン酸 塩及びグルコヘプトン酸塩が挙げられる。標識工程でキレート化剤溶液が代わり にpH12〜13に調整されるならば、還元剤として塩化第一スズを亜ジチオン酸 ナトリウムで置換することができる。クロマトグラフィー(例えば、エタノール と続いて希HClで活性化したC−18セプ・パック(Sep Pak)カートリッジを 用いて)により、標識したキレート化剤を、混入している99mTcO4 -とコロイ ド99mTcO2から分離することができる。希HClによる溶出で99mTcO4 -が 分離し、EtOH−食塩水(1:1)による溶出で、コロ イド99mTcO2をカラムに残してキレート化剤を溶出する。本発明のキレート化 剤は、「二官能性キレート」法と呼ばれる方法で、放射性核種による標識の前に 標的分子と結合させることができる。「前標識リガンド(prelabelled ligand) 」法として知られる代替法では、最初にキレート化剤を目的の金属で標識して、 次に標的分子に結合させる。標的分子自体が、不用意に低親和性結合部位で標識 されて、標的分子が不活化されたり、in vivoで金属が放出されることがないた め、この方法は有利である。 本発明のキレート化剤を標識するための別の方法は、本明細書に参考のため記 載した1993年11月16日出願のPollak et al.の同時係属中の米国特許出 願08/152,680号に記載されている方法である。簡単に述べると、キレ ート化剤が標識金属原子と錯体を形成した場合のみ支持体から放出されるような 方法で、キレート化剤を固相支持体に固定化する。これは、錯体形成原子の1つ によりキレート化剤が支持体の官能基に結合している場合に行う。好適には、錯 体形成硫黄原子が、マレイミドのような硫黄保護基の官能基を持つ支持体に結合 する。 標的分子に結合し、診断上有用な金属で標識されると、本発明のキレート化剤 は、当業界で一般的な方法により病気を検出するのに使用することができる。テ クネチウムのような放射性核種金属で標識した結合体は、食塩水又はDMSOの ような薬学的に許容しうる溶液で静脈内注射により哺乳動物に投与することがで きる。投与する標識結合体の量は、金属だけでなく選択した標的分子の毒性に応 じる。In vivoでの金属の局在は、投与後適切な時間間隔で標準的なシンチグラ フィー法により探知される。 以下の実施例は、本発明の幾つかの実施態様を説明するために提供するもので ある。 実施例1:キレート化剤と結合体の調製 アプライド・バイオシステムズ(Applied Biosystems)433Aペプチド合成 機(フォスターシティー、カリフォルニアナ州)を使用して、前もって保護C末 端残基を加えた2−メトキシ−4−アルコキシベンジルアルコール樹脂(サスリ ン樹脂(Sasrin resin)、バッケム・バイオサイエンシーズ社(Bachem Bioscien ces Inc.)、フィラデルフィア、ペンシルバニア州)を用い、9−フルオレニル メチルオキシカルボニル(FMOC)化学を用いて、キレート化剤を合成した。 キレート化剤の調製 a.Chel-Gly-Cys(Acm)-Gly-OH b.DiPic-Gly-Cys(Acm)-Gly-OH c.Pic-Gly-Cys(Acm)-Gly-OH 前もって樹脂に加えたGly残基から合成を開始して、ピコリン酸、ジピコリ ン酸又はケリダム酸の内の1つの付加による最後のPic、DiPic又はCh el残基まで合成を続けた。このキレート化剤−樹脂を真空下で12時間乾燥し た。樹脂からのキレート化剤の切断は、95%トリフルオロ酢酸(TFA)と5 %水の冷却溶液(ペプチド樹脂100mg当り1ml)をペプチド−樹脂と共に室温 で1.5〜2時間混合することによって行った。濾過により樹脂を除去し、50 ml円錐形ポリプロピレン遠心分離管中でt−ブチルメチルエーテル30mlで3回 洗浄して、白色沈殿物を生成した。この沈殿物を、アセトニトリルを添加した水 に溶解した。沈殿物をアセトン−ドライアイス中で凍結し、12時間かけて凍結 乾燥した。生じた白色粉末を水に溶解し、0.45μmシリンジフィルター(ゲ ルマン・アクロディスク・LC−PVDF(Gelman Acrodisc LC PVDF))で濾過 し、逆相HPLC(ベックマン・システム・ゴールド(Beckman System Gold))により、緩衝液Aとして水中の0.1%TFAと、緩衝液Bとし てアセトニトリル中の0.1%TFAを使用してC18カラム(ウォーターズ( Waters)RCM25×10)で精製した。カラムを100:0の緩衝液A:緩衝 液Bで平衡化し、1ml/分で25分で50%緩衝液Bまでの線形勾配で溶出した 。分画をHPLCで再解析し、特性の一致したものをプールした。必要であれば 、プールした分画を同じ条件を用いて再精製した。この純粋な分画をアセトン− ドライアイスで凍結し、10時間かけて凍結乾燥して、白色粉末を得た。 結合体の調製 d.(Pic-Ser-Cys(Acm)-Gly)-Thr-Lys-Pro-Pro-Arg-OH; e.(Pic-Ser-Cys(Acm)-Gly)-Lys-Pro-Pro-Arg-OH; f.2−キノリン酸−Ser-Cys(Acm)-Gly-Thr-Lys-Pro-Pro-Arg-OH; g.1−イソキノリン酸−Ser-Cys(Acm)-Gly-Thr-Lys-Pro-Pro-Arg-OH; h.3−イソキノリン酸−Ser-Cys(Acm)-Gly-Thr-Lys-Pro-Pro-Arg-OH; i.インドール−2−カルボン酸−Ser-Cys(Acm)-Gly-Thr-Lys-Pro-Pro-Arg -OH;及び j.ピロール−2−カルボン酸−Ser-Cys(Acm)-Gly-Thr-Lys-Pro-Pro-Arg-O H 。 前もって樹脂に加えたArg残基から合成を開始し、キレート化剤のSer残 基まで合成を続け、ピコリン酸、2−キノリン酸、1−イソキノリン酸、3−イ ソキノリン酸、ピロール−2−カルボン酸及びインドール−2−カルボン酸の内 の1つの付加により合成を終了した。このキレート化剤−ペプチド−樹脂を真空 下で12時間乾燥した。樹脂からの切断は、 トリフルオロ酢酸(TFA)10ml、水0.5ml、チオアニソール0.5ml、1 ,2−エタンジチオール(EDT)0.25ml及びフェノール0.75gの溶液 と室温で1.5〜2時間混合することによって行った。濾過により樹脂を除去し 、ペプチドを、50ml円錐形ポリプロピレン遠心分離管中でt−ブチルメチルエ ーテル30mlで3回洗浄して、白色沈殿物を生成した。この沈殿物を、溶解性の 問題が生じた時はアセトニトリルを添加して水に溶解した。沈殿物をアセトン− ドライアイス中で凍結し、12時間かけて凍結乾燥した。生じた白色粉末を水に 溶解し、0.45μmシリンジフィルター(ゲルマン・アクロディスク・LC− PVDF(Gelman Acrodisc LC PVDF))で濾過し、逆相HPLC(ベックマン・ システム・ゴールド(Beckman System Gold))により、緩衝液Aとして水中の0 .1%TFAと、緩衝液Bとしてアセトニトリル中の0.1%TFAを使用して C18カラム(ウォーターズ(Waters)RCM25×10)で精製した。カラム を100:0の緩衝液A:緩衝液Bで平衡化して、1ml/分で25分で50%緩 衝液Bまでの線形勾配で溶出した。分画をHPLCで再解析して、特性の一致し たものをプールした。必要であれば、プールした分画を同じ条件を用いて再精製 した。この純粋な画分をアセトン−ドライアイスで凍結し、10時間かけて凍結 乾燥して、白色粉末を得た。 fMLP結合体の調製 k.(Pic-Gly-Cys-Gly)-εNH-Lys(-Gly-OH)-Tyr-Nleu-Phe-Leu-Nleu-for l.(Pic-Gly-Cys(Acm)-Gly)-εNH-Lys(-Gly-OH)-Tyr-Nleu-Phe-Leu-Nleu-f or m.(Pic-Gly-Cys(Acm)-Gly)-ε-NH-Lys(-Asp-Gly-OH)-Lys-Tyr -Nleu-Phe-Leu-Nleu-for リシン残基を含む標的ペプチドは、下記の方法によりLysのε−アミノ基を 介してキレート化剤に結合させることができる。化合物例1(k)、1(l)、 及び1(m)に関して、最初に、前もってFMOC−グリシンを加えた2−メト キシル−4−アルコキシル−ベンジルアルコール樹脂と、1−(4,4−ジメチ ル−2,6−ジオキソシクロヘキシリジン)−エチル(Dde)直交(orthogon al)保護リシンを使用して、アプライド・バイオシステムズ(Applied Biosyste ms)433Aペプチド合成機により、9−フルオレニルメチルオキシカルボニル (FMOC)化学を用いて、グリシンからノルロイシンまで標的ペプチドを合成 した。fMLPペプチド−樹脂を合成機から除去し、真空下で12時間乾燥して 、ホルミル化の用意をした。 無水酢酸(2当量)をギ酸(1当量)と一緒に50℃まで15分間加熱し、続 いて0℃に冷却することにより、ギ酸無水物を調製した。fMLPペプチドのホ ルミル化は、ジクロロメタン(DCM)(5ml)中でペプチド−樹脂を膨潤させ て、次に15分間ギ酸無水物(5ml)と共に撹拌することによって行った。この ホルミル化fMLPペプチド−樹脂を濾過し、DCMで洗浄し、真空下で12時 間乾燥した。 ホルミル化ペプチド−樹脂(50mg/2ml)を、N−メチルピロリドン(NM P)中の2%ヒドラジン水和物溶液と共に3分間2回撹拌し、次に濾過し、DC Mで洗浄し、真空下で12時間乾燥して、N末端アミノ基をホルミル化したまま 、ε−アミノリシン保護基(Dde)を除去した。 433Aペプチド合成機でfMLPペプチドのε−アミノリシンにキレート化 剤を付加した。このキレート化剤−ペプチド−樹脂を真空下で12時間乾燥した 。樹脂からの切断は、95%トリフルオロ酢酸 (TFA)と5%水の冷却溶液(キレート化剤−ペプチド−樹脂100mg当り1 ml)をキレート化剤−ペプチド樹脂と共に室温で1.5〜2時間混合することに よって行った。濾過により樹脂を除去し、TFA1〜3mlで洗浄して、清澄な黄 色液体6〜8mlを得た。この液体を、50ml円錐形ポリプロピレン遠心分離管中 のtert−ブチルメチルエーテル30〜35ml中にゆっくり滴下して、白色沈殿物 を生成した。この沈殿物を7,000rpm、0℃で5分間遠心分離(ソーヴァル( Sorvall)RT6000、デュポン)し、デカントし、更にt−ブチルメチルエー テルで2回洗浄した。真空下で乾燥後、溶解性の問題が生じた場合にはアセトニ トリルを添加して、この沈殿物を水に溶解した。沈殿物をアセトン−ドライアイ ス中で凍結し、10時間かけて凍結乾燥した。生じた白色粉末をジメチルスルホ キシド(20μl)と50:50のアセトニトリル:水溶液(980μ1)に溶解し、 0.45μmシリンジフィルター(ゲルマン・アクロディスク・LC・PVDF( Gelman Acrodisc LC PVDF))で濾過し、逆相HPLC(ベックマン・システム・ ゴールド(Beckman System Gold))により、緩衝液Aとして水中の0.1%TF Aと、緩衝液Bとしてアセトニトリル中の0.1%TFAを使用してC18カラ ム(ウォーターズ(Waters)RCM25×10)で精製した。カラムを50:50 の緩衝液A:緩衝液Bで平衡化して、1ml/分で25分で100%緩衝液Bまで の線形勾配で溶出した。分画をHPLCで再解析して、特性の一致したものをプ ールした。必要であれば、プールした分画を同じ条件を用いて再精製した。この 純粋な分画をアセトン−ドライアイスで凍結し、12時間かけて凍結乾燥して、 白色粉末を得た。 実施例2:99mTcによるキレート化剤の標識 実施例1のキレート化剤と結合体(1mg)を、試験管中でEtOH− 水(1:1)200μlに溶解した。過テクネチウム酸ナトリウム(200〜60 0MBa、5〜15mCi)100〜200μl、リン酸緩衝液(0.25M、pH7.4 )100μl、及び塩化第一スズ二水和物50μgと酒石酸ナトリウム40mgを含 有する溶液200μlを試験管に添加して、堅く栓をして沸騰水浴中に10分間 入れた。キレート化剤を適切に分離させるために、順次メタノール5ml、水10 ml及び希HCl(1mM)5mlで洗浄することによって活性化したC−18セプ− パック(Sep-Pak)カラムに、この溶液を加えて、TcO4 -を除去した。次にEt OH−食塩水(1:1)2mlで溶出して、TcO2をカラムに残してキレート化 剤を除去した。キレート化剤との99mTcの錯体形成の程度は、溶出した分画の 放射活性により測定した。 結合体1(f)〜1(j)を復元(200μl、1mg/ml食塩水)し、次に過テ クネチウム酸塩(10mCi)100μlとグルコン酸第一スズ(塩化第一スズ50 μgとグルコン酸ナトリウム1mg)100μlと共に、3 mlバキュテーナー(vacutainer)中に注入した。この試験管を沸騰水浴に12分 間入れ、次にワットマン(Whatman)PVDFシリンジフィルターで濾過して、 標識した結合体溶液を回収し、更に食塩水で希釈して注射用溶液(2Mbq/ml)を 調製した。この結合体をHPLC(ベックマン)により試料(希釈前)(20μ l)から単離し、放射活性を測定することにより標識収率を測定した。 実施例3:キレート化剤と結合体のin vivoでの造影と体内分布 実施例1のキレート化剤と結合体に関して、以下のとおりラットの炎症試験を 行った。スプラーク−ドーリー(Spraque-Dawley)系雄性ラット2匹(チャール ズ・リバー(Charles River)、250〜300g)に、酵母細胞壁調製物である ザイモサン5mg(結合体1(f)〜1(i)については20mg)又は病原性E.c oli(ATCC25922、1.0×109/mlを0.1ml)懸濁液を、造影の2 4時間前にラットの右後脚に筋肉内注射した。1日後、脚の局部炎症が肉眼で検 出できた。キレート化剤1mg(約0.7μMol)をジメチルスルホキシド50μlに 溶解し、エタノール−水混合物(1:1、200μl)に添加した。酒石酸Tc −99m分注量(約400MBq)を添加して、100℃で20分間キレート交換(tr anschelation)を進行させた。このTc−99mキレートを、セプ− パック(Sep-Pak)カートリッジで溶出することにより精製した。この精製したト レーサー溶液を更に食塩水で希釈して、活性約100μCi(3.7MBq)を含有す る注射液(200μl)を調製した。 ラットにペントバルビタールナトリウム(40〜50mg/kg)で麻酔をかけ、尾 静脈から標識キレート化剤/結合体溶液(200μl)を静脈内注射した。最初の 5分間、連続全身シンチグラムを得た。続いて、30、60、及び120分後に 更に画像を得た。次に麻酔によりラットを屠殺し、器官、尿、血液、炎症筋(右 脚)及び非炎症筋(左脚)を秤量し、ウェル型ガンマカウンター又はガンマ線量 測定器で計数した。血液容量が体重の6.5%を占めるものと仮定して線量計算 を行った。結果は2匹のラットの平均値で表し、尾における残留線量で補正した 。 実施例4:実施例1(l)及び1(m)のfMLPとfMLP誘導体結合体の好 中球結合測定 結合測定のため、以下のとおりラットの末梢血好中球を調製した:心臓穿刺に より血液を得、酸−クエン酸塩デキストロース(ACD)(10%)により血液 凝固を阻止した。室温で30分間、ヒドロキシエチルセルロース(1.1%)で 沈降分離して赤血球を除去し、白血球の豊富な上澄液を65%パーコール(perc ol)上に重層した。400gで30分間遠心分離することによって、単核細胞( リンパ球と単球)の明瞭なバンドが生じ、これを捨てて、好中球の豊富なペレッ トを再懸濁し、冷水を用いて低浸透圧ショックにより残った赤血球を溶解した。 残った好中球を、目的の濃度までハンクスの緩衝塩溶液(HBSS)に再懸濁し た。最終好中球調製物は、10匹までのラットからプールした細胞よりなり、> 90%が好中球であり、かつトリパンブルー排除試験により>95%が生存して いた。 好中球受容体への既知の親和性を有するトリチウム化fMLPの一定濃度を競 合させることにより、fMLPペプチドならびに結合体1(l)及び1(m)の 結合親和性を測定した。15nMトリチウム化fMLP、及びHBSS最終容量1 50μl中の種々の濃度の非標識試験ペプチドと結合体を含有するポリプロピレ ンプレートに、106個の好中球を添加した。このプレートを室温で1時間イン キュベートし、次に12ウェルのヘッドを有するスカトロン(Skatron)セルハー ベスターを使用して、ガラス繊維フィルターマット(スカトロン(Skatron)受容 体結合フィルターマット)で濾過することにより細胞を回収した。回収した細胞 を氷冷食塩水で洗浄し、空気乾燥した。次にフィルターを6mlのシンチレーショ ンバイアルに入れ、シンチレーション液5mlを添加(エコラム(Ecolume))し、 液体 シンチレーションカウンターを使用してバイアルを計測した。fMLPペプチド ならびに結合体1(l)及び1(m)の結合親和性を図1に示し、ペプチド/結 合体濃度に対する最大トリチウム化fMLP結合%として表した。最大トリチウ ム化fMLP結合%=(特異的結合÷最大結合)×100%である。特異的結合 は、全結合から非特異的結合を引いたものであって、これは非標識fMLP10 μMの存在下で結合している残りの放射活性の量であった。1(l)及び1(m )の両方とも、好中球受容体に対して本来のfMLPよりも高い結合親和性を示 した。 実施例5:fMLP、fMLP誘導体のホルミル−Nleu−Leu−Phe− Nleu−Tyr−Lys及び結合体1(m)の好中球減少測定 ラットの一過性好中球減少症モデルを用いて、循環血中好中球数に及ぽすfM LP、fMLP誘導体のホルミル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Ty r−Lys及び実施例1(m)の結合体の作用を評価した。ラットにソムニトー ル(somnitol)(16mg/ラット)で麻酔をかけ、試験ペプチドをT=0で尾静 脈から注射した。注射後ある範囲の時点(0、2、5、10、30分)で、血液 試料2mlを心臓穿刺により採取した(10%ACDで血液凝固を阻止した)。各 時点毎に3匹のラットを使用した。各試料について全白血球/mlと好中球%を測 定し、各試料中の好中球数/mlを算出した。各実験内で、全ての時点で食塩水注 射後の好中球数/mlを平均して、ペプチドと比較することができる食塩水対照と した。ペプチド注射後の好中球数/mlを、各実験内の食塩水対照の%として表し た。 図2については、fMLP 5及び10nmolの注射により、用量依存性の一過 性好中球減少が惹起された。最大作用はペプチド注射の2分後に認められ(各々 対照の15及び9%)、注射後30分までに対照の93及 び75%に戻った。ホルミル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Tyr− Lys 5nmolの投与によって惹起された循環血中好中球数の最大低下は、より 軽度であった(対照の45%)が、1(m)の投与では、5nmolでごくわずかの 一過性の低下(対照の80%)が惹起されたのみであった。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI // A61K 38/00 9051−4C A61K 37/02 C07K 103:00 (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AP(KE,MW,SD,SZ),AM, AT,AU,BB,BG,BR,BY,CA,CH,C N,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,GB,GE ,HU,JP,KE,KG,KP,KR,KZ,LK, LR,LT,LU,LV,MD,MG,MN,MW,N L,NO,NZ,PL,PT,RO,RU,SD,SE ,SI,SK,TJ,TT,UA,US,UZ,VN (72)発明者 グッドボディ,アン カナダ国、エム4エル 2エックス7 オ ンタリオ、トロント、ハイアウォサ・ロー ド 31

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.一般式: [式中、 R1及びR2は、一緒になって、場合により5員又は6員環と縮合していてもよ い、5員又は6員複素環(ここで、いずれかの環は、場合により結合形成基、又 は標的分子が結合した結合形成基により置換されていてもよい)を形成し; R3は、H;アルキル;ならびにアミノ、アミノアシル、カルボキシル、グア ニジニル、ヒドロキシル、チオール、フェニル、フェノリル、インドリル及びイ ミダゾリルから選択される基により置換されたアルキル、から選択され; R4は、ヒドロキシル;アルコキシ;アミノ酸残基;及び標的分子から選択さ れ;そして Tは、H又は硫黄保護基である]で示される化合物。 2.R1及びR2により形成される環が、場合によりベンゼン環と縮合していても よい5員又は6員複素環である、請求項1記載の化合物。 3.R1及びR2が、一緒になって、ピリジン、キノリン、イソキノリン、ピロー ル及びインドールから選択される環を形成する、請求項1記載の化合物。 4.R1及びR2が、一緒になって、6−カルボキシピリジン及び4−ヒ ドロキシ−6−カルボキシピリジンから選択される環を形成する、請求項1記載 の化合物。 5.R3が、H及びヒドロキシメチルから選択される、請求項1記載の化合物。 6.R4が、−Gly−OH及び−Gly−標的分子から選択される、請求項1 記載の化合物。 7.標的分子が、ペプチドである、請求項6記載の化合物。 8.ペプチドが、−NH−Lys−Pro−Pro−Arg−OH;及び−NH −Thr−Lys−Pro−Pro−Arg−OHから選択される配列を有する 、請求項7記載の化合物。 9.Glyが、−ε−アミノLys(−Gly−OH)−Tyr−Nleu−P he−Leu−Nleu−ホルミル;及び−ε−アミノLys(−Asp−Gl y−OH)−Lys−Tyr−Nleu−Phe−Leu−Nleu−ホルミル から選択されるペプチドのε−アミノLys残基とアミド結合を形成する、請求 項7記載の化合物。 10.R1及びR2が、一緒になって、ピリジン環を形成し;R3が、Hであり; Tが、Acmであり;そしてR4が、−Gly−OH;及び−Gly−ε−アミ ノLys(−Gly−OH)−Tyr−Nleu−Phe−Leu−Nleu− ホルミルから選択される、請求項1記載の化合物。 11.R1及びR2が、一緒になって、ピリジン環を形成し;R3が、ヒドロキシ メチルであり;Tが、Acmであり;そしてR4が、−Gly−OH;−Gly −Lys−Pro−Pro−Arg−OH;−Gly−Thr−Lys−Pro −Pro−Arg−OH;−Gly−ε−アミノLys(−Gly−OH)−T yr−Nleu−Phe−Leu− Nleu−ホルミル;及び−Gly−ε−アミノLys(−Asp−Gly−O H)−Lys−Tyr−Nleu−Phe−Leu−Nleu−ホルミルから選 択される、請求項1記載の化合物。 12.2−キノリン酸−Ser−Cys(Acm)−Gly−Thr−Lys− Pro−Pro−Arg−OH;1−イソキノリン酸−Ser−Cys(Acm )−Gly−Thr−Lys−Pro−Pro−Arg−OH;3−イソキノリ ン酸−Ser−Cys(Acm)−Gly−Thr−Lys−Pro−Pro− Arg−OH;ピロール−2−カルボン酸−Ser−Cys(Acm)−Gly −Thr−Lys−Pro−Pro−Arg−OH;及びインドール−2−カル ボン酸−Ser−Cys(Acm)−Gly−Thr−Lys−Pro−Pro −Arg−OHから選択される、請求項1記載の化合物。 13.R1及びR2が、一緒になって、6−カルボキシピリジン環及び6−カルボ キシ−4−ヒドロキシピリジン環から選択される環を形成し;R3が、ヒドロキ シメチルであり;Tが、Acmであり;そしてR4が、−Gly−OHである、 請求項1記載の化合物。 14.金属又はその酸化物もしくは窒化物と錯体形成した形の、請求項1記載の 化合物。 15.金属が、99mTcである、請求項10記載の化合物。 16.99mTcと錯体形成した形の、請求項11記載の化合物。 17.99mTcと錯体形成した形の、請求項12記載の化合物。 18.標的分子のin vivoにおける局在部位を造影するための方法であって、 1)該標的分子を含む、診断上有効量の請求項15記載の化合物を投与し;そし て 2)本化合物の局在を検出する工程からなる方法。 19.一般式: [式中、 R1及びR2は、一緒になって、場合により5員と6員環に縮合していてもよい 、5員又は6員複素環(ここで、いずれかの環は、場合により結合形成基、又は 標的分子が結合した結合形成基により置換されていてもよい)を形成し; R3は、H;アルキル;ならびにアミノ、アミノアシル、カルボキシル、グア ニジニル、ヒドロキシル、チオール、フェニル、フェノリル、インドリル及びイ ミダゾリルから選択される基により置換されたアルキル、から選択され; R4は、ヒドロキシル;アルコキシ;アミノ酸残基;及び標的分子から選択さ れ;そして Tは、H又は硫黄保護基である(ここで、標的分子は、下記配列: ホルミル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Tyr−Lys−Lys−A sp−X−OH を有するペプチドであり;そしてXは、結合又はアミノ酸残基である)]で示さ れる化合物。 20.Xが、−Gly−である、請求項19記載の化合物。 21.下記式: (式中、Xは、結合又はアミノ酸残基である)を有する請求項19記載の化合物 。 22.Xが、−Gly−である、請求項21記載の化合物。 23.一般配列: ホルミル−Nleu−Leu−Phe−Nleu−Tyr−Lys−Lys−A sp−X−OH (式中、Xは、結合又はアミノ酸残基である)を有するペプチド。 24.Xが、−Gly−である、請求項23記載のペプチド。
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