JPH09511644A - プロテインチロシンキナーゼアゴニスト抗体 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、受容体プロテインチロシンキナーゼｐＴＫｓの細胞外ドメインに結合し、それによってその細胞内チロシンキナーゼドメインのダイマー化および活性化を引き起こすアゴニスト抗体を開示する。該抗体は、それぞれの受容体を活性化するのに有用であり、それにより細胞増殖および／または分化におけるチロシンキナーゼ受容体の役割を研究することが可能である。受容体ｐＴＫｓの細胞外ドメインおよび免疫グロブリン定常ドメイン配列からなるキメラタンパク質も開示する。

Description

【発明の詳細な説明】 プロテインチロシンキナーゼアゴニスト抗体 発明の背景 発明の技術分野 本発明は、新規プロテインチロシンキナーゼ（ｐＴＫ）遺伝子、これらの遺伝 子によってコードされたタンパク質、該遺伝子にハイブリダイズするＲＮＡ核酸 配列、該コードされたタンパク質に特異的な抗体、該タンパク質のキメラおよび その使用法に関する。 とりわけ、本願は本明細書に開示する受容体ｐＴＫｓのチロシンキナーゼドメ インを活性化することができるアゴニスト抗体およびｐＴＫ−免疫グロブリンキ メラに関する。 関連技術の記載 細胞の増殖および分化を調節するシグナルの変換は、様々な細胞のタンパク質 のリン酸化によって一部は調節されている。プロテインチロシンキナーゼはこの プロセスを触媒する酵素である。さらに、多くのものは成長因子受容体として機 能する。受容体チロシンキナーゼのｃ−ｋｉｔサブグループは外在的基質ならび にそれ自身のポリペプチド鎖内のチロシン残基のリン酸化を触媒する（ウルリッ ヒ（Ｕllrich）ら、Ｃell ６１：２０３［１９９０］）。該ｃ−ｋｉｔサブグル ープの成員にはＦＬＴ／ＦＬＫ（胎児肝臓キナーゼ（Ｆetal Ｌiver Ｋinase） ）、ＦＧＦ（繊維芽細胞成長因子受容体（Ｆibroblast Ｇrowth Ｆactor Ｒecep tor））およびＮＧＦ（神経成長因子受容体（Ｎerve Ｇrowth Ｆactor Ｒecepto r））を含む。 ＥＰＨチロシンキナーゼサブファミリー、Ｅｐｈ、Ｅｌｋ、Ｅｃｋ、Ｅｅｋ、 Ｈｅk、Ｈｅｋ２、Ｓｅｋ、Ｅｈｋ−１、Ｅｈｋ−２、Ｃｅｋ−４〜Ｃｅｋ−１ ０、Ｔｙｒｏ１、４、５、６は膜貫通型チロシンキナーゼの最大のサブファミリ ーであるようである（ヒライ（Ｈirai）ら、Ｓcience ２３８：１７１７−１７ ２０［１９８７］；レトウィン（Ｌetwin）ら、Ｏncogene ３：６２１−６７８ ［１９８８］；ロータック（Ｌhotak）ら、Ｍol．Ｃell．Biol. １３：７０７ １−７０７９［１９９３］；リンドバーグ（Ｌindberg）ら、Ｍol．Ｃell．Ｂio l. １０：６３１６−６３２４［１９９０］；ボーム（Ｂohme）ら、Ｏncogene ８：２８５７−２８６２［１９９３］；およびウィックス（Ｗicks）ら、Ｐro c．Ｎatl．Ａcad．Ｓci．ＵＳＡ. ８９：１６１１−１６１５［１９９２］；パ スカル（Ｐasquale）ら、Ｃell Ｒegulation ２：５２３−５３４［１９９１］ ；サッジャーディ（Ｓajjadi）ら、Ｎew Ｂiol. ３：７６９−７７８［１９９ １］；ウイックスら、Ｐroc．Ｎatl．Ａcad．Ｓci．ＵＳＡ. ８９：１６１１− １６１５［１９９２］；ロータックら、Ｍol．Ｃell．Ｂiol. １１：２４９６ −２５０２［１９９１］；ギラルディ−ヘベンストライト（Ｇilardi−Ｈebenst reit）ら、Ｏncogene ７：２４９９−２５０６［１９９２］；ライ（Ｌai）ら 、Ｎeuron ６：６９１−７０４［１９９１］；サッジャーディら、Ｏncogene ８ ：１８０７−１８１３［１９９３］；およびメゾンピエール（Ｍaisonpierre ）ら、Ｏncogene ８：３２７７−３２８８［１９９３］）。 さらなるｐＴＫｓおよびアゴニスト抗体が、治療薬剤としての使用および診断 目的に関しての細胞の増殖および分化のさらなる研究のために必要である。従っ て、本発明の目的は新規のｐＴＫ遺伝子、それによってコードされるタンパク質 、コードされたタンパク質に特異的な抗体、該タンパク質のキメラおよびそれら の使用法を提供することである。 発明の概要 本明細書に記載の単離された遺伝子とは、集合的に「プロテインチロシンキナ ーゼ遺伝子」または「ｐＴＫ遺伝子」である。これらの遺伝子の幾つかの核酸配 列は、本明細書に記載されたようにして単離したが、成長因子受容体として機能 する（例えば、ｃ−ｋｉｔサブグループのｐＴＫｓ）、細胞外ドメインを有する 以前に同定されたプロテインチロシンキナーゼと有意にホモロジーを示す。ｐＴ Ｋ遺伝子の幾つかは、巨核球細胞およびリンパ球細胞の両方に存在していること が示された。 とりわけ、１４のｐＴＫ遺伝子が同定された。ＳＡＬ−Ｓ１およびＳＡＬ−Ｄ ４の２つのｐＴＫ遺伝子は、巨核球細胞において同定された。ＳＡＬ−Ｄ４は細 胞内ｐＴＫｓのＣＳＫファミリーに関連を有し、ＳＡＬ−Ｓ１はｐＴＫｓのＦＧ Ｆ受容体ファミリーに関連を有する。ＬｐＴＫｓと称する５つのｐＴＫ遺伝子は 、リンパ球細胞において同定され、巨核球細胞においても同様に存在しているこ とが示された。ＨｐＴＫ５という１つのｐＴＫ遺伝子は、ヒト肝ガン細胞におい て同定された。ｂｐＴＫ遺伝子と称する６つのｐＴＫ遺伝子は、ヒトの脳組織に おいて認められた。 本発明の主題であるｐＴＫ遺伝子は、一般的に変性オリゴヌクレオチドプライ マーの２つのセットを使用して同定された：すべてのｐＴＫ ＤＮＡセグメント を増幅する第１のセット（配列番号：１−２）、およびｐＴＫＳのｃ−ｋｉｔサ ブグループの触媒ドメインに存在する非常に良く保存された配列を増幅する第２ のセット（配列番号：３−４）。この方法で同定されたｐＴＫ遺伝子は下記に示 す。 ＳＡＬ−Ｓ１は幾つかの巨核球細胞株において発現されるが、赤血球系細胞株 には発現されない。ＳＡＬ−Ｓ１のヌクレオチド配列が得られ、１６０塩基対を 含む配列が明らかにされた（配列番号：５）。この単離したＤＮＡ断片はＦＬＴ ／ＦＬＫファミリーの既知のプロテインチロシンキナーゼと有意な配列ホモロジ ーを示すアミノ酸配列（配列番号：６）をコードした。ＳＡＬ−Ｓ１（配列番号 ：３２）の推定アミノ酸配列は１２９８残基を含む。 ＳＡＬ−Ｄ４もまた巨核球細胞に発現し、１４７塩基対のヌクレオチド配列を 有するＤＮＡ断片である（配列番号：７）。この単離されたＤＮＡ断片は、ＣＳ Ｋ細胞内ｐＴＫファミリーの既知のプロテインチロシンキナーゼと有意な配列ホ モロジーを示すアミノ酸配列（配列番号：８）をコードした。 ＬｐＴＫ ２、ＬｐＴＫ ３、ＬｐＴＫ ４、ＬｐＴＫ １３およびＬｐＴＫ２５ を含むＬｐＴＫｓはリンパ球細胞並びに巨核球細胞において発現する。ＬｐＴＫ ３遺伝子のヌクレオチド配列（１５１塩基対）を得た（配列番号：１１）。Ｌｐ ＴＫ ２、ＬｐＴＫ ４、およびＬｐＴＫ １３遺伝子のヌクレオチド配列は、そ れぞれ１４９塩基対（配列番号：９）、１３７塩基対（配列番号：１３）、およ び２１１塩基対（配列番号：１５）を有した。ＬｐＴＫ ２５は、３１２０塩基 対のヌクレオチド配列を有する（配列番号：２２）。完全長遺伝子配列を７６０ ７塩基対を有するＬｐＴＫ ２に関して得た（配列番号：１９）。さらに、Ｌｐ ＴＫ ４のシークエンシングは４０４塩基対の配列を明らかにした（配列番号： ２１）。 ＨｐＴＫ５遺伝子はヒト肝ガン細胞に発現するが、３９６９塩基対のヌクレオ チド配列を有する（配列番号：２３）。 ｂｐＴＫ １、ｂｐＴＫ ２、ｂｐＴＫ ３、ｂｐＴＫ ４、ｂｐＴＫ ５および ｂｐＴＫ７を含むｂｐＴＫｓのヌクレオチド配列は、ヒト脳組織に発現し、それ ぞれ配列番号：２５−２９および３４のアミノ酸配列を有するタンパク質をコー ドする。 従って、本発明はヒト巨核球細胞株から単離された、ｃ−ｋｉｔサブグループ のプロテインチロシンキナーゼの触媒ドメインにおいて非常に良く保存されてい るアミノ酸配列をコードするＤＮＡにハイブリダイズするＤＮＡを含む。 本発明はまた、本明細書で記載されたように同定されたｐＴＫ遺伝子によって コードされたタンパク質を含み、該タンパク質はｐＴＫｓのｃ−ｋｉｔサブグル ープの成員ならびにＨｐＴＫ５およびｂｐＴＫｓによってコードされたタンパク 質と有意な配列ホモロジーを示す。本発明はまた、ＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４ 、ＬｐＴＫ、ＨｐＴＫ５およびｂｐＴＫのホモログまたは均等物（すなわち、チ ロシンキナーゼ活性を示す、ＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫｓ、ＨｐＴ Ｋ５およびｂｐＴＫｓの配列と実質的に類似しているが同一ではないアミノ酸配 列を有するタンパク質）を含む。本発明はさらに、チロシンキナーゼ活性を保有 するがＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、ＨｐＴＫ５およびｂｐＴＫ配列 の全長より短いペプチド（ＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、ＨｐＴＫ５ およびｂｐＴＫ断片）；およびＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、ＨｐＴ ＫおよびｂｐＴＫ核酸配列、およびＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、Ｈ ｐＴＫおよびｂｐＴＫ均等物の使用を含む。 本発明はさらに、ｃ−ｋｉｔサブグループ内に含まれるプロテインチロシンキ ナーゼのＦＬＴ／ＦＬＫ、ＦＧＦ受容体またはＮＧＦ受容体ファミリーと有意な 配列ホモロジーを示す、本明細書に記載のタンパク質をコードするＤＮＡまたは ＲＮＡとハイブリダイズする核酸配列を含む。このような核酸配列は他の脊椎動 物、特に哺乳動物、および他の細胞タイプにおけるｐＴＫ遺伝子を同定するため のプローブとして有用である。それらはまた、イン・ビトロおよびイン・ビボの 両方においてプロテインチロシンキナーゼ活性を抑制するためのアンチセンスオ リゴヌクレオチドとして使用することができる。 本発明のＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、ＨｐＴＫおよびｂｐＴＫチ ロシンキナーゼは細胞の増殖、分化および他の代謝機能を調節する薬剤および治 療剤の開発に関連し標的タンパク質として使用することができる。ＳＡＬ−Ｓ１ 、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、ＨｐＴＫまたはｂｐＴＫタンパク質は他のチロシン キナーゼのアゴニストまたはアンタゴニストとして使用することができる。これ らｐＴＫｓはまた巨核球細胞および／または血小板接着相互作用の調節手段にで きる。 加えて、ＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫ、ＨｐＴＫおよびｂｐＴＫチ ロシンキナーゼは細胞の増殖および／または分化の因子を検出するスクリーニン グアッセイにて使用することができる。標準的な実験技術を使用して本発明のｐ ＴＫｓのリガンドを同定できる。とりわけ、本発明は、本明細書に開示されてい るｐＴＫｓのリガンドを単離するのに有用であるキメラｐＴＫ−免疫グロブリン 融合タンパク質を提供する。該キメラタンパク質はまた、細胞内に内在的になら びに細胞外液に外在的に存在するこれらのリガンドを検出するために設計された 診断アッセイにも有用である。該キメラタンパク質を使用するアッセイはまた、 血液および尿などの体液におけるこれらのリガンドを検出するための診断手段と して設計することができる。 他の態様において、本発明は個々のｐＴＫ（ｐＴＫが受容体である場合）の任 意のアゴニストである、ＳＡＬ−Ｓ１、ＳＡＬ−Ｄ４、ＬｐＴＫｓ、ＨｐＴＫ５ およびｂｐＴＫｓに特異的な抗体を提供する。本発明はまた、ハイブリドーマ細 胞株および本明細書で定義したモノクローナル抗体をコードする単離された核酸 にも関する。 また、本発明は本明細書に開示するｐＴＫをそれに対するアゴニスト抗体と反 応させることからなる、該ｐＴＫを活性化する方法にも関する。異なる態様にお いて、本発明は、本明細書に開示するｐＴＫを活性化するアゴニスト抗体の生理 学的に有効な量をこのような処置が必要なヒト患者に投与することからなる、細 胞の増殖および／または分化を増強する方法に関する。 またさらに別の態様においては、本発明は、ｐＴＫを含有すると考えられる源 を該ｐＴＫと免疫学的に反応する検出可能に標識したモノクローナル抗体と接触 させ、ついで該抗体が該源に結合するかどうかを決定することによってｐＴＫを 検出する方法に関する。 図面の簡単な説明 図１Ａおよび１ＢはＳＡＬ−Ｓ１のヌクレオチド配列（配列番号：５）および その推定アミノ酸配列（配列番号：６）を示す。 図２Ａおよび２ＢはＳＡＬ−Ｄ４のヌクレオチド配列（配列番号：７）および その推定アミノ酸配列（配列番号：８）を示す。 図３ＡはＬｐＴＫ ２のヌクレオチド配列（配列番号：９）およびその推定ア ミノ酸配列（配列番号：１０）を示す。 図３ＢはＬｐＴＫ ３のヌクレオチド配列（配列番号：１１）およびその推定 アミノ酸配列（配列番号：１２）を示す。 図３ＣはＬｐＴＫ ４のヌクレオチド配列（配列番号：１３）およびその推定 アミノ酸配列（配列番号：１４）を示す。 図３ＤはＬｐＴＫ １３のヌクレオチド配列（配列番号：１５）およびその推 定アミノ酸配列（配列番号：１６）を示す。 図４Ａ−４ＩはＳＡＬ−Ｓ１のヌクレオチド配列（配列番号：１７）およびそ の推定アミノ酸配列（配列番号：１８）を示す。 図５Ａ−５ＫはＬｐＴＫ ２の全長のヌクレオチド配列（配列番号：１９）お よびその推定アミノ酸配列（配列番号：２０）を示す。 図６はＬｐＴＫ ４の部分的ヌクレオチド配列（配列番号：２１）を示す。 図７Ａ−７ＣはＬｐＴＫ ２５の全長のヌクレオチド配列（配列番号：２２） を示す。 図８Ａ−８ＩはＨｐＴＫ ５の全長のヌクレオチド配列（配列番号：２３）お よびその推定アミノ酸配列（配列番号：２４）を示す。 図９はｂｐＴＫ １のアミノ酸配列（配列番号：２５）を示す。 図１０はｂｐＴＫ ２のアミノ酸配列（配列番号：２６）を示す。 図１１はｂｐＴＫ ３のアミノ酸配列（配列番号：２７）を示す。 図１２はｂｐＴＫ ４のアミノ酸配列（配列番号：２８）を示す。 図１３はｂｐＴＫ ５のアミノ酸配列（配列番号：２９）を示す。 図１４はｂｐＴＫ ７のアミノ酸配列（配列番号：３０）を示す。 図１５Ａ−１５ＦはＳＡＬ−Ｓ１の全長のヌクレオチド配列（配列番号：３１ ）およびその推定アミノ酸配列（配列番号：３２）を示す。 図１６Ａ−１６ＨはｂｐＴＫ７の全長のヌクレオチド配列（配列番号：３３） およびその推定アミノ酸配列（配列番号：３４）を示す。 好ましい態様の詳細な説明 新規のプロテインチロシンキナーゼ遺伝子を同定し、その核酸配列を決定し、 ついでコードされるタンパク質のアミノ酸配列を推定した。本明細書に記載の単 離した遺伝子は、集合的に、「プロテインチロシンキナーゼ遺伝子」または「ｐ ＴＫ遺伝子」という。 これらの新規のｐＴＫｓの単離および同定を容易にするため、実施例１に記載 するように２セットのＤＮＡプローブを使用した。第１のセットは一般に２つの 変性オリゴヌクレオチド配列、ｐＴＫ １（配列番号：１）およびｐＴＫ ２（配 列番号：２）よりなる（マシューズ（Ｍatthews）、Ｃell ６５：１１４３［１ ９９１］；およびウィルクス（Ｗilks）、Ｐroc．Ｎatl．Ａcad．Ｓci．ＵＳＡ ８６：１６０３［１９８９］）。これらの配列は、チロシンキナーゼＤＮＡセ グメントを増幅するためのポリメラーゼチェーンリアクションにおいてプライマ ーとして使用した（ミュリス（Ｍullis）ら、Ｃold Ｓpring Ｈarbor Ｓymp．Ａ dvan．Ｂiol. ５１：２６３［１９８６］）。 第２のセットは一般に２つのオリゴヌクレオチド配列、ｐＴＫ ３（配列番号 ： ３）およびｐＴＫＫＷ（配列番号：４）よりなり、これらはプロテインチロシン キナーゼのｃ−ｋｉｔファミリーの触媒ドメインの非常に良く保存された領域を コードする核酸配列を増幅するよう設計されているものである。これらの配列は 、ＤＮＡ増幅の第２ラウンドにおいてポリメラーゼチェーンリアクション（ＰＣ Ｒ）においてプライマーとして使用した。この２段階増幅手法を使用して、これ らのｐＴＫプライマーにハイブリダイズするＤＮＡ断片を同定し、単離し、つい でシークエンシングした。 特に、１４のｐＴＫ遺伝子を同定した。２つのｐＴＫ遺伝子、ＳＡＬ−Ｓ１お よびＳＡＬ−Ｄ４は幾つかの巨核球細胞株であるＣＭＫ １１−５、ＤＡＭＩ、 ＵＴ−７およびエリスロポエチン内で増殖したＵＴ−７において同定されたが、 赤血球系細胞株ＨＥＬ、ＰＭＡで刺激したＨＥＬ細胞、またはＫ５６２において は同定されなかった。５つのｐＴＫ遺伝子（ＬｐＴＫｓという）はリンパ球細胞 ならびに巨核球細胞にて同定された。ＨｐＴＫ ５というｐＴＫ遺伝子は、ヒト 肝ガン細胞において同定され、ｂｐＴＫｓという６つの遺伝子はヒト脳細胞にお いて同定された。 配列番号：５、１７および３１の核酸配列によってコードされるＳＡＬ−Ｓ１ （配列番号：６、１８および３２）はｐＴＫｓのＦＬＴ／ＦＬＫファミリーと有 意なホモロジーを示す。ＳＡＬ−Ｓ１はシグナルペプチド（すなわち、図１５の アミノ酸残基１〜２４）；細胞外ドメイン（すなわち、図１５のアミノ酸残基２ ５〜７７５）；膜貫通ドメイン（すなわち、図１５のアミノ酸残基７７６〜８０ ０）および細胞質チロシンキナーゼドメイン（すなわち、図１５のアミノ酸残基 ８０１〜１２９８）を有する。配列番号：７によりコードされるＳＡＬ−Ｄ４（ 配列番号：８）は細胞内ｐＴＫｓのＣＳＫファミリーに関係する。配列番号：９ および１９によってコードされるＬｐＴＫ ２（配列番号：１０および２０）； 配列番号：１１によってコードされるＬｐＴＫ ３（配列番号：１２）；配列番 号１３および２１によってコードされるＬｐＴＫ ４（配列番号：１４）；配列 番号：１５によってコードされるＬｐＴＫ １３（配列番号：１６）；および配 列番号：２２によってコードされるＬｐＴＫ ２５のＬｐＴＫｓもまた、既知の プ ロテインチロシンキナーゼと配列ホモロジーを示す。 配列番号：２３によりコードされるＨｐＴＫ ５（配列番号：２４）およびｂ ｐＴＫｓ１、２、３、４、５および７（それぞれ配列番号：２５〜２９および３ ４）も同様に既知のプロテインチロシンキナーゼと配列ホモロジーを示す。Ｂｐ ＴＫ ７はシグナルペプチド（すなわち、図１６のアミノ酸残基１〜１９）；細 胞外ドメイン（すなわち、図１６のアミノ酸残基２０〜５４７）；膜貫通部位（ すなわち、図１６のアミノ酸残基５４８〜５７０）を有する受容体型ｐＴＫをコ ードする。残りの配列には、細胞内チロシンキナーゼドメインを含む。 従って、上記のようにプロテインチロシンキナーゼのｃ−ｋｉｔサブグループ の触媒ドメインに存在するアミノ酸配列をコードするＤＮＡとハイブリダイズす るＤＮＡ分子を単離し、シークエンシングした。集合的に「ｐＴＫ遺伝子」とい う、これらの単離したＤＮＡ配列（およびその推定アミノ酸配列）は、ｐＴＫフ ァミリーの既知成員と有意な配列ホモロジーを示した。 一旦単離すると、これらのＤＮＡ断片をＰＣＲなどの既知の標準的な技術を用 いて増幅することができる。これらの増幅された断片を、ついで適切なクローニ ングベクターにクローニングし、そのＤＮＡ配列を決定した。 これらのＤＮＡ配列は、クローニングベクターから切り出すことができ、³²Ｐ などの放射性標識したヌクレオチドで標識し、全長のｃＤＮＡクローンを得るた め適当なｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングするのに使用した。 上記のｐＴＫ遺伝子は、例えば、巨核球細胞およびリンパ球細胞のような天然 に存在する源から単離された。本発明は組換え技術などの遺伝子工学技術によっ て産生したｐＴＫ遺伝子ならびに化学的に合成したｐＴＫ遺伝子を包含するもの である。 これらｐＴＫ遺伝子の推定アミノ酸配列はチロシンキナーゼのｃ−ｋｉｔサブ グループのプロテインチロシンキナーゼの触媒ドメインと有意なホモロジーを示 すペプチドをコードするアミノ酸配列を含む。該ｐＴＫ遺伝子によりコードされ るこれらのタンパク質には、該配列内の残基が機能的に同等なアミノ酸残基で置 換され、その結果、表現型において変化が認められないサイレント変化（silent change）となる配列を含むことができる。例えば、該配列内の１つまたは２以上 のアミノ酸残基がサイレント置換となる機能的に同等の同様な極性の他のアミノ 酸によって置換されていることができる。 加えて、該タンパク質構造は、該ペプチドの所望の機能的なプロテインチロシ ンキナーゼ特性を実質的に損なうことのない、配列においての１つまたは２位上 のアミノ酸残基の欠失、付加、逆位、挿入または置換によって修飾されることが できる。 本発明のチロシンキナーゼ活性を有する修飾したｐＴＫｓは、そのようなタン パク質をコードするｃＤＮＡを含むベクターから切り出すような組換えＤＮＡ技 術を使用するかまたは既知の技術を用いて機械的および／または化学的に所望の タンパク質をコードするＤＮＡを合成することによって作成することができる。 本発明のｐＴＫｓを生成する別のアプローチは、所望のｐＴＫの長さに依存し てこのようなタンパク質のアミノ酸配列を有するペプチドまたはポリペプチドを 作るためのペプチド合成を使用することである。該ペプチドまたはその修飾した 同等物はペプチド合成の標準的な固相または液相化学によって直接合成すること ができる。 本発明のｐＴＫｓは、発現するであろう適切なベクター／宿主系に該タンパク 質をコードするＤＮＡを挿入することにより生成するのが好ましい。該ＤＮＡ配 列は、天然に存在する源から得ることができ、化学的に合成することができ、ま たは標準的な組換え技術を使用することで生成することができる。 本発明はまた、本発明のｐＴＫ遺伝子（受容体型チロシンキナーゼ活性を示す タンパク質をコードする）を含む発現ベクターにも関する。 本発明のｐＴＫ遺伝子は多数の診断および治療の目的のために使用することが できる。例えば、該ｐＴＫ遺伝子の核酸配列は真核および原核細胞タイプを含む 他の細胞タイプにおいて存在する他のプロテインチロシンキナーゼを同定するプ ローブとして使用することができる。 該核酸配列はまた、プロテインチロシンキナーゼのキナーゼ活性を直接抑制す る薬剤を設計し、またはチロシンキナーゼの触媒ドメインに結合し、よってその 活性を抑制するペプチドを設計するのに使用することができる。これらの配列は また、チロシンキナーゼ活性を抑制または破壊することができるアンチセンスヌ クレオチドを設計するのに使用することができる。チロシンキナーゼ活性のこの ような抑制は、白血病または他の悪性腫瘍などの細胞増殖の減少が有益であるよ うな病理学的な状態において望ましい。 該核酸配列はまた、上記の薬剤、ペプチドまたはアンチセンスヌクレオチドを 設計するのに使用することができるが、抑制効果をチロシンキナーゼに与えるよ りは増強する。このように増強したチロシンキナーゼ活性は、基質（外在性なら びに内在性のチロシン残基）のリン酸化を増加させる結果となる。増強された効 果は、貧血、出血性疾患および外科手順の間のような細胞増殖の増加が有益であ るような状態において望ましい。 本発明のｐＴＫ遺伝子はまた、それぞれのリガンドに結合することができる受 容体型チロシンキナーゼの可溶性断片を得るのに使用することができる。可溶性 チロシンキナーゼ断片をコードするｐＴＫ遺伝子は、組換えＤＮＡ技術または合 成技術を使用して生成することができる。いずれの場合においても、得られたＤ ＮＡは、該断片の可溶化を可能にする疎水性膜貫通領域の実質的な部位を欠如し ている可溶性ｐＴＫ断片をコードする。 これらの可溶性ｐＴＫタンパク質断片は、それぞれのリガンドに対する内在性 の膜結合ｐＴＫとの競合体として外在的に導入し、それによりチロシンキナーゼ 活性を抑制することができる。別法として、リガンドには結合するがキナーゼ活 性を活性化しない修飾した可溶性ｐＴＫタンパク質断片を導入することができる 。 これらの可溶性ｐＴＫタンパク質はまた、成長および分化因子などのリガンド を検出する結合アッセイにおいて使用することができる。一度これらのリガンド が同定されると、それらはキナーゼ活性を抑制または増強するために改変または 修飾されてよい。例えば、該リガンドは修飾されるかまたはリシンなどの細胞に 対して毒性で、その結果標的細胞を破壊する物質に接着させられてよい。該物質 は、ｐＴＫに結合した後、キナーゼ活性を実質的に増加するかまたは他の成長因 子を活性化する超活性化物質（super-activating substance）であってよい。 本発明のｐＴＫ遺伝子はまた、キナーゼ活性を抑制または増強させる成長因子 または分化因子などのリガンドのイン・ビトロスクリーニングアッセイの診断手 段を開発するのに有用である。該ｐＴＫ遺伝子によってコードされるタンパク質 はまた、このようなアッセイにおいて使用することができ、またはこのようなア ッセイにおいて使用するモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体を産生す るための免疫原として使用することができる。 本発明の態様の１つにおいて、ｐＴＫの細胞外ドメイン（ｐＴＫが受容体であ る場合）と免疫グロブリン定常ドメインの融合を含むキメラが構築できるが、こ れは、該受容体のリガンドのアッセイに使用することができ、および該受容体の 細胞外ドメインに対する抗体の産生に使用することができる。 本明細書において「細胞外ドメイン」または「ＥＣＤ」という表現は、ここに 開示する天然に存在する受容体型ｐＴＫｓの細胞外ドメインのリガンド結合機能 を共有するあらゆるポリペプチド配列をいう。細胞外ドメインのリガンド結合機 能とは、少なくとも１つのｐＴＫリガンドを結合することができるポリペプチド の能力をいう。従って、より小さなセグメントは通常リガンド結合に充分である と認められるので、細胞外ドメイン全部を含む必要はない。切断された細胞外ド メインは一般に可溶性である。ＥＣＤという語には、成熟ｐＴＫの疎水性膜貫通 配列（および、任意に膜貫通ドメインのＣ末端および／またはＮ末端の１〜２０ アミノ酸）が欠失しているポリペプチド配列を含む。従って、該可溶性細胞外ド メイン含有ポリペプチドはｐＴＫの細胞外ドメインおよび細胞質ドメインを含む ことができる。好ましい態様の別法として、該ポリペプチドはｐＴＫの細胞外ド メインのみを含む。該ｐＴＫの細胞外および膜貫通ドメインは、これらのドメイ ンが記述された既知のｐＴＫアミノ酸配列と該対象ｐＴＫをアラインメントする ことによって当業者により容易に決定されることができる。別に、疎水性膜貫通 ドメインは該配列の疎水性プロットに基づき容易に記述できる。該細胞外ドメイ ンは膜貫通ドメインのＮ末端側にある。 「免疫グロブリン」という語は一般には本来の「Ｙ」型における通常両者がジ スルフィド結合された軽鎖または重鎖を含むポリペプチドをいうが、テトラマー またはその集合体をも含むそれらの間の他の結合は、本発明の範囲に含まれる。 免疫グロブリン（Ｉｇ）およびその変異体は既知であり、多くが組換え細胞培 養において調製されている。例えば、米国特許第４,７４５,０５５号；ＥＰ第２ ５６,６５４号；フォルクナー（Ｆaulkner）ら、Ｎature ２９８：２８６［１ ９８２］；ＥＰ第１２０,６９４号；ＥＰ第１２５,０２３号；モリソン ら、Ｐroc．Ｎat'l．Ａcad．Ｓci．ＵＳＡ ７７：２１９７［１９８０］；ラソ （Ｒaso）ら、Ｃancer Ｒes．４１：２０７３［１９８１］；モリソンら、Ａnn ．Ｒev．Ｉmmunol.２ ：２３９［１９８４］；モリソン、Ｓcience ２２９：１ ２０２［１９８５］；モリソンら、Ｐroc．Ｎat'l．Ａcad．Ｓci．ＵＳＡ ８１ ：６８５１［１９８４］；ＥＰ第２５５,６９４号；ＥＰ第２６６,６６３号；お よびＷＯ８８／０３５５９号を参照。再度連結した免疫グロブリン鎖もまた知ら れている。例えば、米国特許第４,４４4,８７８号；ＷＯ８８／０３５６５号； およびＥＰ第６８,７６３号およびこれらに引用されている参考文献を参照。本 発明のキメラにおける免疫グロブリン部分はＩｇＧ₁、ＩｇＧ₂、ＩｇＧ₃、また はＩｇＧ₄サブタイプ、ＩｇＡ、ＩｇＥ、ＩｇＤまたはＩｇＭから得られてよい が、ＩｇＧ₁またはＩｇＧ₃から得るのが好ましい。最も好ましくは、免疫グロブ リン部分はＩｇＧ−γのＦｃ部位である。 「ｐＴＫの細胞外ドメインと免疫グロブリン定常ドメイン配列の融合からなる キメラ」または「ｐＴＫ−免疫グロブリンキメラ」とは、免疫グロブリン定常ド メイン配列にコンジュゲートしたｐＴＫの細胞外ドメインをコードするアミノ酸 配列を含むポリペプチドをいう。この定義には、モノマー、ホモ−またはヘテロ マルチマーおよび特にホモ−またはヘテロダイマー、または−テトラマー形態に おけるキメラを含む。 好ましい態様は、ｐＴＫの細胞外ドメインのＣ末端の、抗体のＣ末端部分（特 に、Ｆｃドメイン）（免疫グロブリンＧ₁のエフェクター機能を含む）のＮ末端 への融合である。好ましい態様において、該重鎖定常領域の全体が細胞外ドメイ ンに融合される。他の好ましい態様においては、パパイン開裂部位（ＩgＧ Ｆ ｃ を化学的に定める；重鎖定常領域の最初の残基を１１４として（カバット（Ｋab at）ら、Ｓequences of Ｉmmunological Ｉnterest、国立衛生研究所（Ｎationa l Ｉnstitute of Ｈealth）、ベセスダ（Ｂethesda）、メリーランド、［１９ ８７］）残基２１６、または他の免疫グロブリンの類似部位）のすぐ上流のヒン ジ領域において開始している配列を、ｐＴＫのＥＣＤに融合する。 特に好ましい態様においては、ｐＴＫ細胞外ドメインを、ＩｇＧ₁、ＩｇＧ₂ま たはＩｇＧ₃重鎖のヒンジ領域およびＣ_H２およびＣ_H３またはＣ_H１、ヒンジ、Ｃ_H ２およびＣ_H３に融合する。融合がなされる正確な部位は、重要ではなく、最適 な部位は日常の実験によって決定することができる。キメラの主要な利点は、組 換え宿主の培地に分泌されることであるが、分泌の程度は様々な発現系によって 異なる。 一般に、本発明のキメラは、ある種の抗体からの可変ドメインが他の種の可変 ドメインで置換されたキメラ抗体と同様に構築される。例えば、ＥＰ第０１２５ ０２３号；ＥＰ第１７３,４９４号；ムンロ（Ｍunro）、Ｎature ３１２；［１ ９８４年１２月１３日］；ノイベルガー（Ｎeuberger）ら、Ｎature３１２：［ １９８４年１２月１３日］；シャロンら、Ｎature ３０９；［１９８４年５月２ ４日］；モリソンら、Ｐroc．Ｎat'l．Ａcad．Ｓci．ＵＳＡ ８１：６８５１− ６８５５［１９８４］；モリソンら、Ｓcience ２２９；１２０２−１２０７［ １９８５］；ブリアンヌ（Ｂoulianne）ら、Ｎature ３１２；６４３−６４６［ １９８４年１２月１３日］；カポン（Ｃapon）ら、Ｎature ３３７、５２５−５ ３１［１９８９］；トラウネッカー（Ｔraunecker）ら、Ｎature ３３９、６８ −７０［１９８９］参照。 ｐＴＫ−Ｉｇキメラポリペプチドを調製するために、所望のｐＴＫ配列をコー ドする領域を含む該ＤＮＡを、免疫グロブリン様ドメインをコードするＤＮＡの ３'末端でまたはその近辺にておよび該成熟ｐＴＫのＮ末端をコードするＤＮＡ またはその付近にて（異なるリーダーの使用を考える場合）またはｐＴＫのＮ末 端コーディング領域またはその付近において（本来のシグナルを使用する場合） 制限酵素で開裂する。このＤＮＡ断片は、免疫グロブリン軽鎖または重鎖定常領 域をコードするＤＮＡ付近に隣接して容易に挿入され、もし必要であるならば、 得られた構築物を欠失突然変異誘発によって調整できる（tailored）。該Ｉｇは 、変異体がヒトのイン・ビボ治療を意図されている場合はヒト免疫グロブリンで あるのが好ましい。免疫グロブリン軽鎖または重鎖定常領域をコードするＤＮＡ は既知でありまたはｃＤＮＡライブラリーから容易に利用でき、または合成され る。例えば、アダムス（Ａdams）ら、Ｂiochemistry １９：２７１１−２７１ ９［１９８０］；ゴー（Ｇough）ら、Ｂiochemistry １９：２７０２−２７１ ０［１９８０］；ドルビー（Ｄolby）ら、Ｐ．Ｎ．Ａ．Ｓ．ＵＳＡ、７７：６０ ２７−６０３１［１９８０］；ライス（Ｒice）ら、Ｐ．Ｎ．Ａ．Ｓ．ＵＳＡ、７９ ：７８６２−７８６５［１９８２］；フォルクナーら、Ｎature ２９８： ２８６−２８８［１９８２］；およびモリソンら、Ａnn．Ｒev．Ｉmmunol．２： ２３９−２５６［１９８４］参照。 本明細書に開示されているキメラタンパク質は、例えば、ライマン（Ｌyman） ら、Ｃell ７５：１１５７−１１６７［１９９３］の技術を使用して当該ｐＴ Ｋのリガンドを単離またはスクリーニングするための診断法として有用である。 また、キメラタンパク質は、様々なｐＴＫｓの細胞外ドメインと様々なリガンド の相互作用を研究するための診断学的な目的のために有用である（例えば、ベネ ット（Ｂennett）ら、Ｊ．Ｂiol.Ｃhem. ２６６（３４）：２３０６０−２３０ ６７［１９９１］参照）。該キメラタンパク質はさらに、該ｐＴＫの細胞外ドメ インに対する抗体の産生に有用である（本明細書の実施例３および５参照）。該 キメラタンパク質はまた、増強された血漿半減期を一般に有する（細胞外ドメイ ンのみの場合と比較して）該ｐＴＫの細胞外ドメインの可溶性形態を提供し、そ れゆえ製薬学的に許容し得る担体に調合でき、患者に投与することができる限り 、付加的な治療上の有用性をも有する。該キメラタンパク質は、患者に投与され た全身的または組織局在的な過剰なｐＴＫリガンドを除去する治療剤として使用 できると思われる。過剰なリガンドの除去は、該リガンドが患者にとって毒性が ある場合には特に望ましい。該キメラタンパク質は該患者において内在性のｐＴ Ｋと競合してリガンドを結合するよう機能する。同様に、該キメラタンパク質は 、 患者に持続性放出組成物の形態でリガンドを投与するのと同時にまたは続いて投 与することができる。該キメラタンパク質は該リガンドの可溶性結合タンパク質 として機能し、それによって該リガンドの半減期を延ばすのである。 「抗体」という語は本明細書において最も広い意味で使用し、特に、ｐＴＫと 免疫学的応答するポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、免疫グロブリン鎖 またはその断片を包含する。 本発明の好ましい態様において、該抗体は当該技術分野においてよく知られた 技術を用いて産生されたモノクローナル抗体である。例えば、ケーラー（Ｋohle r）およびミルステイン（Ｍilstein）により最初に記載されたハイブリドーマ技 術（Ｅur．Ｊ．Ｉmmunol.、６：５１１［１９７６］、またハンマーリング（Ｈa mmerling）ら、：Ｍonoclonal Ａntibodies and Ｔ−Ｃell Ｈybridomas、エル セビエ、ニューヨーク、５６３−６８１頁［１９８１］にも記載）を使用するこ とができる。コート（Ｃote）らおよびボーナー（Ｂoerner）らの技術はまた、 ヒトモノクローナル抗体の調製にも利用できる［コートら、Ｍonoclonal Ａntib odies and Ｃancer Ｔherapy 、Ａlan Ｒ．Ｌiss、７７頁［１９８５］およびボ ーナーら、Ｊ．Ｉmmunol.、１４７（１）：８６−９５［１９９１］］。 「モノクローナル抗体」という語は本明細書において、実質的に一様な抗体の 集団から得た抗体（本明細書にて定義したように）をいう、すなわち、該集団を 構成する個々の抗体は少量に存在するかもしれない天然に起こり得るであろう突 然変異を除いて同一である。モノクローナル抗体は非常に特異的で、単一の抗原 部位に向けられる。さらにそのうえ、異なる抗原決定基（エピトープ）に対して 向けられた異なる抗体を典型的に含む従来の（ポリクローナル）抗体調製物とは 対照的に、各モノクローナル抗体は該抗原上の単一の抗原決定基に対して向けら れる。それらの特異性に加えて、該モノクローナル抗体は他の免疫グロブリンが 混入することなくハイブリドーマ培養によって合成することができるという点が 有利である。 非ヒト（例えばマウス）抗体の「ヒト化された」形態は、非ヒト免疫グロブリ ン由来の最少アミノ酸残基を含む免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖またはその 断片（Ｆｖ、Ｆab、Ｆab'、Ｆ(ab')₂または抗体の他の抗原結合サブ配列など） である。大部分に関しては、ヒト化抗体はヒト免疫グロブリン（受容体抗体）で あり、その受容体の相補性決定領域（ＣＤＲ）からの残基が所望の特異性、アフ ィニティーおよび能力を有するマウス、ラットまたはウサギなどの非ヒト種（供 与体抗体）のＣＤＲからの残基で置換されている。幾つかの例においては、ヒト 免疫グロブリンのＦｖフレームワーク領域（ＦＲ）残基は、対応する非ヒトＦＲ 残基によって置換されている。さらに、ヒト化抗体は、受容体抗体にもインポー トされたＣＤＲまたはフレームワーク配列においても認められない残基を含む。 これらの修飾はさらに抗体の性能を洗練し最適化するのに使用される。 本明細書におけるモノクローナル抗体には、対象のｐＴＫに結合することがで きる限り、由来の種または免疫グロブリンのクラスまたはサブクラス指定とは関 係なく、定常ドメインとともに抗ｐＴＫ抗体の可変（超可変部位を含む）ドメイ ンを（例えば、「ヒト化」抗体）（一方のみがｐＴＫに向けられる）、または重 鎖とともに軽鎖を、または他の種からの鎖とともに１つの種からの鎖を、または 異種タンパク質との融合を、スプライシングすることにより産生されたハイブリ ッド（キメラ）および組換え抗体を含む［カビリー（Ｃabilly）ら、米国特許第 ４,８１６,５６７号；およびメイジ（Ｍage）およびラモイ（Ｌamoyi）、Ｍonoc lonal Ａntibody Ｐroduction Ｔechniques and Ａpplications 、７９−９７頁 （マーセルデッカー（Ｍarcel Ｄekker，Ｉnc．）、ニューヨーク［１９８７］ 参照］。 「キメラ」および「ヒト化」抗体に関しては、例えば、米国特許第４,８１６, ５６７号；ＷＯ９１／０９９６８号；ＥＰ第４５２,５０８号；およびＷＯ９１ ／１６９２７号参照。 従って、該修飾語句「モノクローナル」は抗体の実質的に一様な集団から得ら れるという抗体の特徴を示し、いずれかの特別な方法によって抗体が産生される 必要があるように解釈すべきではない。 本発明の最も好ましい態様においては、該抗体はアゴニスト抗体である。「ア ゴニスト抗体」によって、特定のｐＴＫに結合でき、活性化することができる抗 体が意味される。例えば、該アゴニストは該ｐＴＫの細胞外ドメインに結合し、 それによってｐＴＫのダイマー化を引き起こし、細胞内の触媒キナーゼドメイン のリン酸基転移および活性化となってよい。従って、これはイン・ビトロおよび ／またはイン・ビボでの該受容体を発現する細胞の増殖および／または分化の刺 激という結果となってよい。本明細書におけるアゴニスト抗体は、好ましくは該 ｐＴＫの細胞外ドメイン内のエピトープに対するものであり、アメリカン・タイ プ・カルチャー・コレクション(Ａmerican Ｔype Ｃulture Ｃollection)受託番 号ＡＴＣＣ ＨＢ １１,５８３として寄託されたハイブリドーマ細胞株によっ て産生されたモノクローナル抗体と同じ生物学的な特徴を好ましくは有する。「 生物学的な特徴」はモノクローナル抗体のイン・ビトロおよび／またはイン・ビ ボ活性を意味し、例えば、特定のｐＴＫのキナーゼドメィンを活性化させる能力 、該ｐＴＫを発現する細胞の細胞増殖および／または分化を刺激する能力、およ び該抗体の結合特徴などを意味する。従って、該抗体は、好ましくは本明細書に 特に開示されている抗ＨｐＴＫ５モノクローナル抗体と実質的に同じエピトープ に結合する。最も好ましくは、該抗体はまた、本明細書に開示されている抗Ｈｐ ＴＫ５モノクローナル抗体と実質的に同じかまたはそれ以上の抗原結合アフィニ ティーを有するであろう。モノクローナル抗体が特に開示されている抗ＨｐＴＫ ５抗体（すなわち、ＡＴＣＣ受託番号第ＨＢ１１,５８３号を有する抗体）と同 じ特異性を有するかどうかを決定するため、例えば、競合的なＥＬＩＳＡ結合ア ッセイを使用することが可能である。 本発明の方法において有用なモノクローナル抗体をコードするＤＮＡは従来技 術の使用により容易に単離し、シークエンシングすることができる（例えば、マ ウスの抗体の重鎖および軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合することができ るオリゴヌクレオチドプローブを使用することにより）。本発明のハイブリドー マ細胞はこのようなＤＮＡの好ましい源として機能する。一度単離されると、該 ＤＮＡは発現ベクターに入れられ、該発現ベクターはついで、大腸菌細胞、サル のＣＯＳ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞または、さもなくば 免疫グロブリンタンパク質を産生しないミエローマ細胞などの宿主細胞にトラン スフェクションされ、該組換え宿主細胞においてモノクローナル抗体を合成する 。 本明細書に開示されているアゴニスト抗体は対象ｐＴＫ受容体を活性化するた めのイン・ビトロ診断アッセイに有用である。これは、細胞の増殖および／また は分化における該受容体の役割を研究するために有用である。 該ｐＴＫアゴニスト抗体はさらに、外在性ｐＴＫアゴニスト抗体の生理学的に 有効な量をこのような処置が必要なヒト患者に投与することからなる、細胞の増 殖および／または分化を増強するための方法において治療的な有用性を有する。 該ＳＡＬ−Ｓ１ ｐＴＫに対するアゴニスト抗体は出血性疾患および貧血におい て有用性が見いだされる。というのは、このｐＴＫは巨核球細胞において発現す ると認められたからである。該ｂｐＴＫアゴニスト抗体は同様に脳組織における これらの受容体の発現に基づき神経変性疾患（アルツハイマー病など）において 脳細胞の分化および／または増殖を増強するために使用されてもよい。最後に、 ＨｐＴＫ５アゴニスト抗体は、化学−または放射線療法または骨髄移植を受けて いる患者の原造血細胞の増殖を増強するために使用されてよい。 本明細書において定義する「外在性」の治療化合物とは、哺乳動物患者にとっ て外来性であるかまたは哺乳動物患者において認められる化合物に類似の物であ るが、哺乳動物患者外で生成される治療化合物を意味する。 本発明の抗体はまた、検出可能に標識したモノクローナル抗体とｐＴＫを含む と考えられる源を接触させ、ついで該源に抗体が結合するかどうかを決定するこ とによってｐＴＫを検出するのに適している。当該技術分野において、多くの異 なる標識および標識の方法が知られている。例えば、適切な標識には酵素、放射 性同位体、蛍光化合物、化学−および生物発光化合物、常磁性同位体が含まれる 。該ｐＴＫは生物学的液体または組織などの生物学的サンプルに存在していてよ い。分析的または診断的目的のために、本発明の抗体は、該モノクローナル抗体 が特異的であるｐＴＫの部位の検出を可能にするのに十分な量にて投与される。 検出可能に標識されたモノクローナル抗体の濃度は、ｐＴＫエピトープに結合し たとき、バックグランドより高い検出可能なシグナルを与えるのに十分であるべ きである。 本明細書に開示されているｐＴＫアゴニスト抗体は、哺乳動物、好ましくはヒ トに、巨丸剤として静脈内でまたは一定期間にわたる連続注入により、または筋 肉内、皮下、関節内、滑液包内、くも膜下、経口、局所的または吸入経路によっ て投与されていてよいものを含む製薬学的に許容し得る剤型にて投与される。 このような剤型は、本質的に無毒性で非治療的である製薬学的に許容し得る担 体を含む。このような担体の例としては、イオン交換体、アルミナ、ステアリン 酸アルミニウム、レシチン、ヒト血清アルブミンなどの血清タンパク質、緩衝液 物質、例えばリン酸、グリシン、ソルビン酸、ソルビン酸カリウム、飽和植物性 脂肪酸の部分的グリセライド混合物、水、塩、または電解質、例えば硫酸プロタ ミン、リン酸水素二ナトリウム、リン酸水素カリウム、塩化ナトリウム、亜鉛塩 、コロイド状シリカ、三ケイ酸マグネシウム、ポリビニルピロリドン、セルロー スベースの物質、およびポリエチレングリコールなどが挙げられる。抗体の局所 的なまたはゲルベースの形態の担体は、カルボキシメチルセルロースナトリウム またはメチルセルロースなどのポリサッカライド、ポリビニルピロリドン、ポリ アクリル酸、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロックポリマー、ポリ エチレングリコール、およびヒトツバエニシダ（wood wax）アルコールを含む。 すべての投与において、通常のデポ剤型が適切に使用される。このような剤型に は、例えば、マイクロカプセル、ナノカプセル、リポソーム、プラスター、吸入 剤型、鼻腔スプレーおよび舌下錠が含まれる。該抗体は典型的に、約０.１ｍｇ/ ｍｌ〜１００ｍｇ／ｍｌの濃度でこのようなビヒクルにて調合されるであろう。 医薬組成物は当該分野において既知の方法によって、調製され剤型に調合され てよい；例えば、レミングトンズ・ファーマシューティカル・サイエンスィズ（ Ｒemington's Ｐharmaceutical Ｓciences）、マック（Ｍack）出版社、イース トン（Ｅaston）、ペンシルバニア、１５版、１９７５参照。 治療上使用される該ｐＴＫアゴニスト抗体の有効量は、例えば、治療対象、投 与経路および患者の状態に依存するであろう。従って、療法士は、投薬の力価を はかり、最適の治療効果を得るために、必要に応じて投与経路を修飾する必要が ある。典型的な１日当たりの投与量は、上記の因子に依存して、約１μｇ／ｋｇ から１０００ｍｇ／ｋｇまでかそれ以上の範囲であってよい。典型的に、臨床医 は所望の効果に達する投薬量まで該分子を投与するであろう。この療法の進行は 、通常のアッセイにより容易にモニターできる。 疾患のタイプと重篤度によって、約０.００１ｍｇ／ｋｇから約１０００ｍｇ ／ｋｇ、より好ましくは０.０１ｍｇ〜１００ｍｇ／ｋｇ、より好ましくは約０. ０１０〜２０ｍｇ／ｋｇのアゴニスト抗体が、例えば、１度またはそれより多く の分割投与によるかまたは連続的な注入によるかによって、患者に投与する最初 の候補投与量とされてよい。数日またはそれより長い期間の反復投与では、状況 により、該治療は、疾患の兆候の所望の抑制が起こるまで、または該患者の状態 が改善されるまで繰り返される。しかしながら、他の投与計画もまた有用である 。 本発明を以下の実施例によって説明するが、これらはいかなる意味においても 制限することを意図しているのではない。明細書に引用されている全ての参照文 献の開示は、参照のため本明細書に包含される。 実施例 １ ｐＴＫ遺伝子の同定および単離 これらの新規のｐＴＫ遺伝子の単離および同定を容易にするために、２セット のＤＮＡプローブを一般に使用した（表１を参照）。 第１のセットは２つの変性オリゴヌクレオチド配列、ｐＴＫ１（配列番号：１ ）およびｐＴＫ２（配列番号：２）からなっていた。これらの配列はポリメラー ゼチェーンリアクション（ＰＣＲ）のプライマーとして、標準的なＰＣＲ技術を 使用してチロシンキナーゼＤＮＡセグメントを増幅するために使用した。 第２のセットは、プロテインチロシンキナーゼのｃ−ｋｉｔサブグループの触 媒ドメインの非常に良く保存された領域から選択された２つのオリゴヌクレオチ ド配列、ｐＴＫ３（配列番号：３）およびｐＴＫＫＷ（配列番号：４）からなっ ていた。これらの配列はまた、ＤＮＡ増幅の第２ラウンドにおけるポリメラーゼ チェーンリアクションプライマーとして使用した。この２段階増幅手法を使用す ることにより、これらのｐＴＫプライマーにハイブリダイズするＤＮＡ断片を同 定し、単離し、ついで既知の実験技術を使用してシークエンシングした。 実施例 ２ ＨｐＴＫ５の単離および特徴付け Ａ．ＨｐＴＫ５のＤＮＡ増幅およびクローニング 低密度ヒト骨髄単核細胞（ディアコネス・ホスピタル・インスティチューショ ナル・リビュー・ボード（Ｄeaconess Ｈospital Ｉnstitutional Ｒeview Ｂoa rd）に認可されているプロトコールを使用し、自発的な書面のインフォームド・ コンセントにて健常な有志から得た）を抗ＣＤ−３４抗体（ＡＭＡＣ、ウエスト ブルック（Ｗestbrook）、メイン）および免疫磁気ビーズ（ダイナル（Ｄynal） 、オスロ（Ｏslo）、ノルウェー）により分離した。ＦＩＴＣ−コンジュゲート した抗ＣＤ３４抗体（ＡＭＡＣ）を使用したフローサイトメトリー分析は単離し た細胞の９５％までＣＤ３４陽性を確認した。肝ガン細胞株であるＨｅｐ３Ｂを アルファ培地（ギブコ（Ｇibco）、グランドアイランド（Ｇrand Ｉsland）、ニ ューヨーク）に、ペニシリン（１００Ｕ／ｍＬ）、ストレプトマイシン（１００ μｇ／ｍＬ）および１０％ウシ胎仔血清（ギブコ）を添加したものにて、５％Ｃ Ｏ₂インキュベーターで３７℃で培養した。ＣＤ３４＋骨髄単核細胞またはＨｅ ｐ３Ｂ細胞から抽出した総ＲＮＡをランダムプライマーおよびモロニー・マウス 白血病ウイルス逆転写酵素（ＲＴ）を用いて２０μlの反応液にて製造業者（ギ ブコ−ＢＲＬ）の条件に従って逆転写した。ＰＣＲは、５０ｍＭのＫＣｌ、１０ ｍＭのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８.４）、１.５ｍＭのＭｇＣｌ、２０μｇ／ｍｌの ゼラチン、０.２ ｍＭのｄＮＴＰｓ、２.５ユニットのＴaqポリメラーゼ（パーキン−エルマー／ シータス（Ｐerkin−Ｅlmer／Ｃetus）およびｐＴＫ特異的変性プライマー各５ ０ｐｍｏｌ ［これらは、他者により以前に報告されて既知であるｐＴＫｓの中の一致領域由 来のものである（ハンクス（Ｈanks）ら、Ｓcience、２４１：４２−５２［１９ ８８］；ウィルクス、Ｐroc．Ｎat．Ａcad．Ｓci.、ＵＳＡ ８６：１６０３− １６０７［１９８９］；およびマシューズら、Ｃell ６５：１１４３−１１５ ２［１９９１］）］を含む１００μl反応液中にてＲＴ反応生成物に対して行っ た。該ＰＣＲサイクルは、９５℃で１.５分、３７℃で２分および６３℃で３分 を３５回繰り返すものであった。該反応生成物を２％低溶アガロースゲル上で電 気泳動的に分離し、Ｅlutip−Ｄカラム（シュライヒャー（Ｓchleicher）および シュエル（Ｓchuell））上で精製し、ＥcoＲＩおよびＢamＨＩで消化し、ｐＵＣ １９にサブクローニングした。 組換え体をサンガーのジデオキシ法によりシークエンシングし、ＦＡＳＴＡ核 酸配列分析プログラムによって評価した。ＨｐＴＫ５（２１４ｂｐ）と命名され た１つのクローンをランダムプライミングにより放射性標識し、オリゴｄＴ−プ ライム・ラムダ ｇｔ１０ Ｈｅｐ３Ｂ ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニング するのに使用した。ＤＮＡを１７の陽性ファージプラークから単離し、挿入物を pＢluescriptのＥcoＲＩサイトにサブクローニングした（ストラタジ−ン（Ｓtr atagene）、ラ・ジョラ（Ｌa Ｊolla）、カリフォルニア）。３９６９ｂｐのｃ ＤＮＡである最大の挿入物を８００〜２０００ｂｐの平均的なサイズに超音波で 処理し、Ｍ１３のＳmaＩサイトにクローニングした。重複したクローンをカタリ スト(Ｃatalyst)８００モレキュラー・バイオロジー・ラブ・ステーション（Ｍo lecular Ｂiology Ｌab Ｓtation）（ＡＢＩ）上でＴaq ダイプライマー サイクル法（Ｄye Ｐrimer Ｃycle Ｍethod）（ＣＡＢＩ）を使用してシークエ ンシングした。シークエンシング反応物をついでＡＢＩ ３７３Ａ自動ＤＮＡシ ークエネーター上で分析した。 単一の全長３９６９ｂｐ ｃＤＮＡを単離し、シークエンシングした（図８Ａ −８Ｆ）。肝ガン膜貫通キナーゼ（hepatoma transmembrane kinase）（ＨＴＫ ）またはＨｐＴＫ５と命名された全長のクローンは、１０８,２７０ダルトンの ９８７アミノ酸タンパク質をコードすると推定されるヌクレオチド９０〜３０５ ０にわたるオープンリーディングフレームを含んだ。該推定開始コドンは７８塩 基で開始するインフレームの停止コドンにより先行される。オープンリーディン グフレームに先行して、多くの成長因子または成長因子受容体に特徴的であるよ うなＧＣの豊富な５'の非翻訳領域である（コザック（Ｋozak）、Ｊ．Ｃell．Ｂ iol. １１５：８８７−９０３［１９９１］）。 該推定されたタンパク質配列はＨｐＴＫ５を細胞外（ＥＣＤ）ドメインと細胞 内（ＩＣＤ）ドメインに分割する膜貫通領域（アミノ酸５３８−５６３）を含む 。５３８アミノ酸のＥＣＤは、１５アミノ酸のシグナルペプチドおよび２０シス テイン残基を含むシステインに富むボックスを含む。さらに、アミノ酸３２１〜 ４２５および４３５〜５２６にわたる２つのフィブロネクチンタイプIII繰り返 しが存在する。２０８、３４０および４３１位置のアスパラギンはＮ−グリコシ ル化の可能性のあるサイトである。 推定細胞内ドメイン（ＩＣＤ）は、６１３〜８８１までのキナーゼコンセンサ ス領域を含む。このキナーゼ領域は６２２〜６２７の位置でサブドメインＩにお いて推定ＡＴＰ−結合コンセンサス（Ｇｌｙ−Ｘ−Ｇｌｙ−Ｘ−Ｘ−Ｇｌｙ）を 含む。６４７位置のＬys（サブドメインII）はリン酸基転移反応に重要であると 考えられるチロシンキナーゼの中で不変のＬysに対応している。基質特異性を示 すサイン領域（signature regions）は、ＨｐＴＫ５がセリン／トレオニンキナ ーゼよりはむしろチロシンキナーゼであることを示唆する。これらはサブドメイ ンVIにおける７４０〜７４５位置での配列およびサブドメインVIIIにおける７８ ３〜７９０位置での配列を含む。６０１、６１９および７４１の位置のチロシン 残基はチロシンキナーゼ活性の基質である可能性がある。 ＨｐＴＫ５の推定アミノ酸配列はＥＰＨによって元々定義されたサブファミリ ーの配列と極めてよく類似している。ＥＰＨサブファミリーの発現パターンは分 化と発達における役割を示唆するものである。特に、神経要素の出現はあるＥＰ Ｈ関連遺伝子の発現と一致する。ＥＰＨファミリー受容体であるＨｅｋ２および Ｅ１ｋは、ＨｐＴＫ５への最も密接に関係したｐＴＫｓである。それらはそれぞ れＩＣＤ内で７９.３％および７６.５％の同一性を、それぞれＥＣＤ内で４５％ および４２％の同一性を有している。Ｂ．ＨｐＴＫ５の染色体マッピング ２５のヒト−ハムスター細胞株のパネルからの体細胞ハイブリッドＤＮＡ（ビ オス（Ｂios）、ニューヘブン、コネチカット）をＰＣＲによる染色体局在に使 用した。２セットのプライマーをＨｐＴＫ５の３'非翻訳領域から選択した。Ｐ ＣＲは、２５０ｎｇのＤＮＡと各５０ｐｍｏｌの５'および３'プライマー、５０ ｍＭのＫＣｌ、１.５ｍＭのＭｇＣｌ₂、２０μｇ／ｍｌのゼラチン、０.２ｍＭ のｄＮＴＰｓおよび２.５ユニットのＴaq ポリメラーゼを最終容量１００μlに て行った。９４℃で３０秒、６０℃で３０秒および７２℃で３０秒のサイクルを ３０回繰り返した。各サンプルの一部（１５μl）を１.５％アガロースゲルで電 気泳動し、ナイロンメンブレーンにトランスファーし、オートラジオグラフィー の５時間前に³²Ｐで標識した全長のＨｐＴＫ５のｃＤＮＡプローブにハイブリダ イズした。陽性のものを記録し、各体細胞のハイブリッドＤＮＡに存在するヒト 染色体物質のマトリックス概要と比較した。 ３'−非翻訳領域は特徴的に、介在配列は殆ど含まず（含むとしても）、遺伝 子ファミリーの成員の間で高い程度の多様性を有し、このタイプの分析において 好ましいものとなっていた。プライマーの両方のセットは、ヒト第７染色体にだ け一致する結果を与えた。ヒト第７染色体はまた、ＥＧＦ受容体、肝細胞成長因 子（ＨＧＦ）受容体、ＨＧＦ、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）およびインター ロイキン−６の遺伝子をも含む。この染色体に関連する核型異常は、ヒト白血病 、特に、放射線、アルキル化剤化学療法または前もって存在した脊髄形成異常条 件 の後に起こる攻撃性（aggressive）骨髄性白血病において一般的である（バエル （Ｂaer）ら、Ｃurr．Ｏpin．Ｏncol. ４：２４−３２［１９９２］）。 Ｃ．ＨｐＴＫ５のノザンブロッティング ポリＡ選択したＲＮＡを１.２％アガロース、２.２Ｍホルムアルデヒドゲルで 電気泳動し、ナイロンフィルターにトランスファーした。調製したまたは市販の フィルターを４２℃で５０％のホルムアミドで³²−Ｐで標識したＨｐＴＫ５、グ リセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ（ＧＡＰＤＨ）またはアクチン ｃＤＮＡ挿入物にハイブリダイズさせ、ストリンジェント条件下で洗浄した（最 終洗浄：６５℃にて０.１×ＳＳＣ、０.２％ＳＤＳ）。ＳＳＣは０.１５ＭのＮ ａＣｌ／０.０１５Ｍのクエン酸三ナトリウム、ｐＨ７.６である。ヒト胎児また は成人組織ＲＮＡのノザンブロットはクローンテク（Ｃlontech）（パロ・アル ト（Ｐalo Ａlto）、カリフォルニア）から得られ、ポリＡ選択ＲＮＡを２μｇ ／各レーンで含んでいた。 ヒト胎児組織のノザンブロット分析は、４ｋｂまでの単一の転写産物が心臓、 肺、肝臓および腎臓に存在し、脳には若干弱いシグナルが検出されることを明ら かにした。ヒト成人組織においては、脳では検出できるシグナルは全くなかった 一方で、胎盤は特に強いシグナルを有し、腎臓、肝臓、肺およびすい臓がそれに 続いて強いシグナルを有した。骨格筋および心臓は弱いシグナル強度であった。 ヒト腫瘍細胞株におけるＨｐＴＫ５の発現もまた、上記と同様に行ったノザン ブロット分析により分析した。肝臓、乳房（ＭＣＦ ７）、結腸（Ｃolo ２０５ ）、肺（ＮＣＩ ６９）、メラニン細胞（ＨＭ−１）または頸（cervix）（ＨeＬ a）由来の細胞株は適切なサイズの検出可能なシグナルを有した。メッセージは 造血細胞が源である選択した細胞株において存在した。Ｋ５６２（多能の原始骨 髄細胞）、ＴＨＰ−１（単球様細胞）、Ｕ９３７（脊髄単球性細胞株）、Ｈｅｐ ３Ｂ（ヒト肝ガン細胞株）およびＣＭＫ（巨核球細胞由来）はすべてＨｐＴＫ５ のメッセージに陽性であったが、リンパ球（Ｈ９、ジュルカット（Ｊurkat）、 ＪＨ−１、ラジ（Ｒaji）、ラモス（Ｒamos））または選択した他の骨髄細胞（ ＫＧ−１またはＫＭＴ２）には、ノザン分析では全く転写産物を検出できなかっ た。 胎児と成人のＨｐＴＫ５転写産物の異なる発現は、ＨｐＴＫ５は、他のＥＰＨ サブファミリー成員と、神経の発達において関連する事象においての役割を共有 していることを示唆している。しかしながら、もっぱらニューロンにおいて発現 しているＥＰＨサブファミリーのいくつかの成員（メゾンピエールら、上記）と は異なり、ＨｐＴＫ５は他の組織にも広範に発現している。特に、ＨｐＴＫ５は ＣＤ３４＋造血原始細胞を含む造血性細胞に発現する。初期の造血細胞および骨 髄細胞系の細胞株においてＨｐＴＫ５メッセージが存在し、リンパ球由来細胞株 には存在しないことは、ＨｐＴＫ５は細胞株に限定した発現をするかもしれない ことを示唆する。 実施例 ３ ＨｐＴＫ５に対するポリクローナル抗体の産生 ＨｐＴＫ５細胞外ドメイン（ＥＣＤ）−ヒトＩｇＧ₁Ｆｃ融合遺伝子を構築し 、以前に記載されたようにして融合タンパク質を生成した（ベネットら、Ｊ．Ｂ iol．Ｃhem. ２６６：２３０６０−２３０６７［１９９１］）。ポリクローナ ル抗体はニュージーランド白ウサギにて該融合タンパク質に対して製造された； １００μｌのＰＢＳ中の４μｇをフロイントアジュバント（第１次注射には完全 アジュバントであり、全ブーストには不完全アジュバントである）と共に懸濁し た。第１次免疫および第１次ブーストでは、該タンパク質を直接膝窩リンパ節に 注射した（シゲル（Ｓigel）ら、Ｍethods Ｅnzymol. ９３：３−１２［１９８ ３］）。続くブーストでは該タンパク質を皮下および筋肉内部位で注射した。１ .３μｇタンパク質／ｋｇ体重を３週間ごとに注射し、各ブーストの後１および ２週間で採血した。免疫されたウサギ血清のＨｐＴＫ５特異性を、免疫前血清ま たは抗ＨｐＴＫ５−ＩｇＧ Ｆｃ血清の１：２００希釈を使用した、ＨｐＴＫ５ 全長またはベクター単独でトランスフェクションしたＮＩＨ３Ｔ３細胞のフロー サイトメトリー分析によって評価した。有意なピークのシフトが、免疫前血清ま たはベクター単独でトランスフェクションしたコントロールに比較していくつか のＨｐＴＫ５発現クローンにおいて観察された。 実施例 ４ ＨｐＴＫ５に対するポリクローナル抗体の有用性およびアゴニスト活性 Ａ．ＦＬＡＧ−ＨｐＴＫ５融合構築物 ４アミノ酸抗体認識部位「ＦＬＡＧ」（ＩＢＩ、ニューヘブン、コネチカット ）、５'−ＥcoＲＶ制限部位および３'−ＮcoＩ制限部位を含む配列ＭＤＹＫＤＤ ＤＤＫＫＬＡＭ（配列番号：３９）を有する１２アミノ酸ペプチドをコードする 重複オリゴヌクレオチド： ；配列番号：４０）をＥcoＲＶで消化したＢluescript（ストラタジーン、ラ・ ジョラ、カリフォルニア）ベクター中のＨｐＴＫ５のＮcoＩサイト（塩基８８） にライゲーションした。 Ｂ．イン・ビトロ転写および翻訳 転写は、線形化したＨｐＴＫ５またはＦＬＡＧ−ＨｐＴＫ５を含んだプラスミ ドの２ｐｍｏｌを３７℃で１時間、１０ｍＭのジチオスレイトール、２.５μｇ ウシ血清アルブミン、各０.２５ｍＭのｄＮＴＰ、０.５Ｍのｍ７ＧＲＮＡ cap（ ニュー・イングランド・バイオラブズ（Ｎew Ｅngland Ｂiolabs）、ビバリー（ Ｂeverly）、マサチューセッツ）、２.５ユニットのＲＮアーゼインヒビター（ ＲＮasin）（プロメガ（Ｐromega）、マジソン、ウィスコンシン）、３ユニット のＴ３ＲＮＡポリメラーゼ（ファルマシア（Ｐharmacia）、ピスカタウェイ（Ｐ iscataway）、ニュージャージー）を含む５０μlの容量中で行った。フェノール ／クロロホルム抽出およびエタノール沈澱を行う前に、３７℃で１５分間、１μ gのＤＮＡアーゼ（ニュー・イングランド・バイオラブズ、ビバリー、マサチュ ーセッツ）を添加した。翻訳は、メーカーの仕様書に従い、³⁵Ｓ−メチオニン（ ３５０μＣｉ）標識を使用するかまたは使用しないで、プロメガ・ウサギ網状赤 血球溶解産物キットを使用して行った。沸騰および１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行 う前に、ＳＤＳおよびβ−メルカプトエタノール（２−ＭＥ）を含むサンプルバ ッファーを加えた。 Ｃ．ＮＩＨ３Ｔ３細胞におけるＨｐＴＫ５発現 ３２ｂｐのリンカー配列、ｐＢluescript（ストラタジーン、ラ・ジョラ・カ リフォルニア）ポリリンカーの３７ｂｐおよび全３９６９ｂｐのＨｐＴＫ５ ｃ ＤＮＡを含む４０３８ｂｐのＣｌａＩ−ＸｂａＩ ｃＤＮＡ断片をラウス肉腫ウ イルスＬＴＲプロモータの制御下にて発現ベクターｐＲＩＳ（ジェネンテク（Ｇ enentech）社）にサブクローニングした。１０％ＦＣＳを補った高濃度グルコー スダルベッコ（Ｄulbecco's）改変イーグル(Ｅagle's）培地（ＤＭＥＭ）にて維 持したＮＩＨ３Ｔ３細胞をｐＲＩＳ−ＨｐＴＫ５およびｐＮｅｏ（ＳＶ４０に基 づいたネオマイシン耐性マーカー含有ベクター）に、リン酸カルシウム法によっ てトランスフェクションした（ゴーマン（Ｇorman）ら、ＤＮＡ Ｐrot．Ｅngin eer．Ｔech. ２：３−１０［１９９０］に記載）。ネオマイシン耐性コロニー をジェネティシン（Ｇeneticin）（ギブコ／ＢＲＬ）４００μg／ｍｌにてトラ ンスフェクションした４８時間後に選択した。１４日後、個々の耐性コロニーを 単離し、拡張させ、ウサギポリクローナル抗血清を使用してＨｐＴＫ５の発現を フローサイトメトリーにより分析した。 Ｄ．免疫沈降 細胞（Ｈｅｐ３Ｂ、コントロールＮＩＨ３Ｔ３またはＨｐＴＫ５をトランスフ ェクションしたＮＩＨ３Ｔ３）またはイン・ビトロ翻訳タンパク質（ＨｐＴＫ５ またはＦＬＡＧ−ＨｐＴＫ５）を血清（免疫前または抗ＨｐＴＫ５−ＩｇＧ Ｆ ｃ）かまたはモノクローナル抗体（ＦＬＡＧ特異的、Ｍ２またはアイソタイプコ ントロール）（ＩＢＩ、ロチェスター（Ｒochester）、ニューヨーク）のいずれ かで免疫沈降に使用した。サブコンフルエント細胞を２００μＣｉ／ｍｌの³⁵Ｓ −メチオニンで１８時間標識し、３０分間氷上で溶菌バッファー（１５０ｍＭの ＮａＣｌ、５０ｍＭのトリス−ＨＣｌ、ｐＨ８.０、１ｍＭのＥＤＴＡ、０.０２ ５アジ化ナトリウム、１％のＮＰ−４０、０.１％のＳＤＳ、１０％のグリセロ ール、０.５％のデオキシコール酸ナトリウム、１ｍＭのフッ化フェニルメチル スルホニル（ＰＭＳＦ）、１０μg／ｍｌのアプロチニン（aprotinin）、１０μ g／ｍｌのロイペプチンおよび５０μＭバナジン酸ナトリウム）内で溶菌した。 該細胞溶 解産物を４℃で１０分間遠心した（１２,０００×ｇ）。細胞溶解産物の上清ま たはイン・ビトロ翻訳混合物を０.０５容量の正常ウサギ血清で前もって清澄化 し、ついで０.０５容量のスタフィロコッカス・アウレウスのプロテイン−Ａセ ファロースＣＬ４Ｂに吸着させた。遠心後、免疫前または免疫血清（１：１００ 希釈）、またはモノクローナル抗体を添加し、４℃で一晩中振盪し、ついで１０ ０μlのプロテイン−ＡセファロースＣＬ４Ｂを添加し、該溶液をさらに２時間 ４℃にて振盪した。免疫沈澱物を洗浄し、ＳＤＳ／ＰＡＧＥローディングバッフ ァー（１０％のグリセロール、５％の２−ＭＥ、２.３％のＳＤＳおよび６２.５ ｍＭのトリス−ＨＣｌ、ｐＨ６.８）に懸濁し、９５℃で５分間加熱し、７.５％ ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分析した。 Ｅ．細胞分画 Ｈｅｐ３Ｂ細胞細胞分画を、ＨｐＴＫ５のアミノ酸配列によって予測される膜 局在を確認するために行った。Ｈｅｐ３Ｂ細胞（１×１０⁷）を１０％の透析さ れたＦＣＳを含むαＭＥＭ培地中、２００μＣｉ／ｍｌの³⁵Ｓ−メチオニンで一 晩標識した。該細胞を冷ＰＢＳで２回洗浄し、１ｍｌの冷バッファー（２０ｍＭ のトリス−ＨＣｌ、ｐＨ７.５、２ｍＭのＥＤＴＡ、５ｍＭのＥＧＴＡ、０.２５ Ｍのショ糖、０.０１％のロイペプチン、４ｍＭのＰＭＳＦ、１０ｍＭの２−Ｍ Ｅ）にこすり入れ、４０秒間の超音波処理によって破壊した。全ホモジネートを １２,０００×ｇで１５分間遠心し、核ペレットを単離し、デカントした上清を ４℃で４０分間１４０,０００×ｇで遠心し、膜をペレット化した。得られた上 清は細胞質ゾル（Ｃ）分画として機能した。核（Ｎ）および膜（Ｍ）分画を洗浄 し、０.５％のＮＰ−４０を含むバッファーに溶かし、ついで免疫沈降を行った 。該Ｃ、ＮまたはＭ分画を抗ＨｐＴＫ５または免疫前（コントロール）血清で免 疫沈降し、１２％のＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、オートラジオグラフィーにかけた 。免疫沈降物質は細胞質ゾルにおいてわずかな程度に明らかであったが、ＨｐＴ Ｋ５は、膜分画で優先的に分離した。 Ｆ．プロテインキナーゼアッセイ 免疫沈澱物をキナーゼバッファー（２５ｍＭのＨｅｐｅｓ、ｐＨ７.４、１ｍ ＭのＤＴＴ、１０ｍＭのＭｇＣｌ、１０ｍＭのＭｎＣｌ）で１回洗浄し、標識し ていないＡＴＰかまたは１０μＣｉの³²Ｐ−ＡＴＰ（３０００Ｃｉ／ｍＭ）のい ずれかを含む４０μlのキナーゼバッファーに再懸濁した。３０℃で１０分間イ ンキュベートした後、４０μlの２×サンプルバッファーを加えてサンプルを３ 分間沸騰させることにより反応を停止し、８.０％のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で 電気泳動した。乾燥したゲルを³⁵Ｓ標識したタンパク質オートラジオグラフィー を遮るために４枚のアルミニウムホイルで覆い、該ゲルを５時間〜一晩フィルム の下に置いた。 Ｇ．ウエスタンブロッティングおよびホスホチロシンアッセイ タンパク質を、２５ｍＭのトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７.５）、１９２ｍＭのグリ シンおよび２０％のメタノールを含むバッファーにて１００ｍＡで２時間かけて 、０．２μｍのニトロセルロース（バイオラド（Ｂio−Ｒad））または０.４５ μｍのポリビニリデンジフルオライド（ミリポア（Ｍillipore））に電気泳動的 にトランスファーした。フィルターをＴＢＳ（１０ｍＭトリス−ＨＣｌ、ｐＨ８ .０、１５０ｍＭのＮａＣｌ）で洗浄し、ＴＢＳＴ（ＴＢＳと０.０５％のＴween −２０）と５％のＢＳＡにて一晩インキュベートすることによって遮断した。フ ィルターをＴＢＳＴで５分間ずつ４回洗浄し、ＵＢＩからの４Ｇ１０抗ホスホチ ロシン抗体（ＴＢＳＴにて１：１０００希釈）で２時間インキュベートした。フ ィルターをＴＢＳＴにて各５分間４回洗浄し、ＴＢＳＴにて１：７５００希釈し たアルカリホスファターゼ標識抗マウス第２抗体（プロメガ）で１時間インキュ ベートした。４回洗浄した後、該ブロットをＡＰバッファー（１００ｍＭのトリ ス−ＨＣｌ、１００ｍＭのＮａＣｌ、５ｍＭのＭｇＣｌ₂）とＢＣＩＰ、ＮＢＴ 基質内で３０〜６０分間発色した。 Ｈ．抗体誘導リン酸化アッセイ ＨｐＴＫ５−ＩｇＧ Ｆｃに対するウサギ抗血清の、ＨｐＴＫ５をトランスフ ェクションしたＮＩＨ３Ｔ３細胞においてＨｐＴＫ５のリン酸化を誘導する能力 を 試験した。細胞を６−ウエルプレートに５×１０⁵細胞／ウエルの密度でプレー ティングし、２４時間後に、１時間血清を与えない状態にし（serum starved） 、ついで、免疫前または免疫血清を３０分間１：５０希釈して添加した。ついで 細胞をＰＢＳにて洗浄し、２×サンプルバッファーかまたは上記のＮＰ−４０溶 菌バッファーのいずれかで溶菌した。ついで、粗製溶解産物または免疫沈降した 細胞の溶解産物を４〜１２％の濃度勾配のＳＤＳ−ＰＡＧＥを介して分離し、上 記の抗ホスホチロシン免疫ブロットによって分析した。ＨｐＴＫ５発現細胞を抗 血清にさらし、免疫沈降を伴うまたは伴わないＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離した 。該電気泳動ゲルを抗ホスホチロシン抗体で免疫ブロットした。ＨｐＴＫ５のチ ロシンリン酸化の増強が観察されたのは、抗体結合のアゴニスト様効果を示すポ リクローナル抗血清にさらした後であった。ＨｐＴＫ５とそのＥＣＤに直接向け られた抗体との相互作用はリン酸化を誘導する。これは、ＨｐＴＫ５がキナーゼ 活性を誘発するリガンドの受容体として機能するかもしれないということをさら に支持する。ＨｐＴＫ５のシグナル伝達経路の詳細は、代理リガンドとして抗血 清を使用することにより、さらに研究されるかもしれない。 Ｉ．結論 ＨｐＴＫ５ ＥＣＤ−ＩｇＧ Ｆｃ融合タンパク質を発現させ、精製し、Ｈｅｐ ３Ｂ細胞から１２０ｋＤのタンパク質を免疫沈降したウサギ抗血清を生成するた めに使用した。該抗血清の特異性は、イン・ビトロ翻訳したＨｐＴＫ５ ＲＮＡ およびＨｐＴＫ５をトランスフェクションしたＮＩＨ３Ｔ３細胞の免疫沈降によ り確認した。ＨｐＴＫ５の機能的な能力を決定するため、イン・ビトロ翻訳した ＨｐＴＫ５を免疫沈降し、キナーゼ状態にさらし、ホスホチロシン特異的モノク ローナル抗体を使用して免疫ブロットした。得られたデータはＨｐＴＫ５がチロ シン上でリン酸化されるということを示した。しかしながら、³²Ｐ標識した免疫 沈降で首尾一貫して現れる他のバンドの存在はＨｐＴＫ５タンパク質が部分的に しか精製されておらず、ゆえにＨｐＴＫ５が酵素的に活性であると結論付けるこ とができないことを示唆した。この問題を解決するため、８アミノ酸エピトープ （ＦＬＡＧ）をＨｐＴＫ５のＮ−末端に付加した融合構築物を製造した。該ＦＬ ＡＧ−ＨｐＴＫ５融合をイン・ビトロ翻訳し、ＦＬＡＧ特異的モノクローナル抗 体で免疫沈降し、その結果、適当なサイズの単一タンパク質（〜１２０ｋＤ）と なった。³²Ｐ−ＡＴＰの存在条件下においてキナーゼ条件を課したところ、該Ｈ ｐＴＫ５−ＦＬＡＧ融合タンパク質はチロシンで標識され、チロシン自己リン酸 化、およびそれによりＨｐＴＫ５のキナーゼ機能が確認された。 実施例 ５ ＨｐＴＫ５に対するモノクローナル抗体の産生 抗ＨｐＴＫ５モノクローナル抗体を、ＢＡＬＢ／ｃマウスにＲＩＢＩアジュバ ント（ＲＩＢＩイムノケムリサーチ（ＩmmunoＣhem Ｒesearch）、ハミルトン（ Ｈamilton）、モンタナ）中でＨｐＴＫ５細胞外ドメイン（ＥＣＤ）−ヒトＩｇ Ｇ₁Ｆｃ融合タンパク質（上記に開示した技術を使用して産生）を腹腔内注射に より高度免疫し、マウスミエローマ細胞株Ｘ６３−Ａｇ８.６５３と脾臓細胞を 融合することにより産生した（カーニー(Ｋearney）ら、Ｊ．Ｉmmunol. １２３ ：１５４８−１５５０［１９７９］）。該抗体をプロテインＡ−セファロース（ レプリゲン（Ｒepligen）社、ケンブリッジ、マサチューセッツ）および確立さ れたアフィニティークロマトグラフィー法（ゴディング（Ｇoding，Ｊ．Ｗ.）、Ｊ．Ｉmmunol．Ｍethods ２０：２４１−２５３［１９７８］）を使用して腹水 液体から精製した。 モノクローナル抗体を、ＨｐＴＫ５抗原に結合する能力に関してスクリーニン グした。融合から１５日後に開始し、融合プレートから培養上清を回収し、Ｈｐ ＴＫ５−ＩｇＧを特異的に「捕捉する」能力をアッセイした。このＥＬＩＳＡア ッセイにおいて、ヤギ抗マウスＩｇＧを９６ウエルマイクロタイタープレート上 にコーティングした。該培養上清（１００μl）をウエルに添加し、存在するマ ウスＩｇＧには該ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体が結合した。プレートを洗浄し、Ｈｐ ＴＫ５−ＩｇＧかまたはＣＤ４−ＩｇＧ（６ｎＭで１００μl）のいずれかを添 加した。該「捕捉した」イムノアドヒーシン（immunoadhesin）を、ヤギ抗−ｈ ｕ（Ｆｃ特異的）西洋ワサビペルオキシダーゼコンジュゲートおよびオルトフェ ニレンジアミン基質を使用して検出した。基質触媒作用の定量化は４９０ｎｍの 光 学密度で決定した。 アゴニスト抗体をついで以下の実施例６に開示した技術を使用してスクリーニ ングした。２つのアゴニストモノクローナル抗体を同定し、そのうちの１つはＡ ＴＣＣに寄託した。 実施例 ６ ＨｐＴＫ５に対するモノクローナル抗体のアゴニスト活性 実施例５に開示した技術を使用して産生したモノクローナル抗体を、ＨｐＴＫ ５をトランスフェクションしたＮＩＨ３Ｔ３細胞においてＨｐＴＫ５のリン酸化 を誘導する能力を試験した。細胞を６ウエルのプレートにて５×１０⁵細胞／ウ エルの密度でプレーティングし、２４時間後、血清を与えない状態にし、ついで １時間後に免疫前血清または抗ＨｐＴＫ５モノクローナル抗体（非希釈のならし ハイブリドーマ培地を使用）を３０分間添加した。ついで細胞をＰＢＳにて洗浄 し、上記の２×サンプルバッファーかまたはＮＰ−４０溶菌バッファーのいずれ かにて溶菌した。ついで粗製の溶解産物かまたは免疫沈降した細胞溶解産物のい ずれかを上記の４〜１２％の濃度勾配のＳＤＳ−ＰＡＧＥを介して分離し、抗ホ スホチロシン免疫ブロットにより分析した。ＨｐＴＫ５発現細胞をモノクローナ ル抗体にさらし、免疫沈降を伴うまたは伴わないＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分離し た。電気泳動的にトランスファーしたゲルを抗ホスホチロシン抗体で免疫ブロッ トした。増強したＨｐＴＫ５のチロシンリン酸化が抗体結合のアゴニスト様効果 を示すモノクローナル抗体にさらした後に観察された。従って、ＨｐＴＫ５とそ のＥＣＤに直接向けられたモノクローナル抗体との相互作用はそのキナーゼドメ インのリン酸化を誘導することができる。 実施例 ７ ＳＡＬ−Ｓ１に対するポリクローナル抗体の産生 ＳＡＬ−Ｓ１細胞外ドメイン（ＥＣＤ）−ヒトＩｇＧ₁ Ｆｃ融合遺伝子を構 築し、融合タンパク質を以前に記載されたように産生した（ベネットら、Ｊ．Ｂ iol．Ｃhem. ２６６：２３０６０−２３０６７［１９９１］）。端的には、Ｐ ＣＲプライマーｏｔｋ １.４１.１（配列番号：４３）およびｏｔｋ １.４１.２ （配列番号：４４）を、ＳａｌＩ／ＢｓｔＥII で消化すると１５５ｂｐのＳａ ｌＩ／ＢｓｔＥII 断片を生成するＤＮＡ断片を作り出すための鋳型としてＳＡ Ｌ−Ｓ１核酸を含むプラスミドｐＲＫ５.ｔｋ１−１.１（配列番号：４５）を使 用するＰＣＲ技術において使用した。この１５５ｂｐの断片をｐＲＫ５.ｔｋ− １.１から単離した６８３９ｂｐのＳａｌＩ／ＨｉｎｄIII 断片およびｐＢＳＳ Ｋ−ＣＨ２−ＣＨ３から単離した７１９ｂＰのＢｓｔＥII／ＨｉｎｄIII 断片と 混合した（ベネットら、上記）。これらの断片を一緒にライゲーションしてｐＲ Ｋ５.ｔｋ１.ｉｇ１.１（大きさは７７１３ｂｐ）プラスミドを生成し、このも のは２９３細胞にトランスフェクションした場合にＳＡＬ−Ｓ１細胞外ドメイン （ＥＣＤ）−ヒトＩｇＧ Ｆｃ融合タンパク質を産生するのに使用した。上記ベ ネットらに記載されたようにして融合タンパク質を調製し、精製した。該融合タ ンパク質に対するポリクローナル抗体を雌ニュージーランド白ウサギにおいて製 造した。端的には、０.６２５ｍｌのＰＢＳ中の１２.５μgの該融合タンパク質 を０.６２５ｍｌのフロイントアジュバント（１次注射に関しては完全アジュバ ントであり、すべてのブーストにおいては不完全アジュバントである）で懸濁し た。該１次注射および全てのブーストは、２カ所で筋肉内注射し、複数の場所で 皮下注射であった。ブーストは３週間の間隔で行い、各ブーストの１および２週 間後に採血した。免疫されたウサギ血清のＳＡＬ−Ｓ１特異性を、１：２００に 希釈した免疫前血清または抗ＳＡＬ−Ｓ１−ＩｇＧ Ｆｃ血清を使用した全長Ｓ ＡＬ−Ｓ１またはベクターのみ（下記参照）でトランスフェクションした２９３ （ＡＴＣＣ ＣＲＬ １５９３）およびＣＯＳ７（ＡＴＣＣ ＣＲＬ １６５１）細 胞のフローサイトメトリーによる分析で評価した。有意なピークのシフトが、免 疫前血清またはベクターのみでトランスフェクションしたコントロールに比較し て、いくつかのＳＡＬ−Ｓ１発現クローンにおいて観察された。 実施例 ８ ＳＡＬ−Ｓ１ポリクローナル抗体の有用性およびアゴニスト活性 Ａ．免疫沈降 コントロール２９３およびＣＯＳ７細胞ならびにＳＡＬ−Ｓ１トランスフェク ションした２９３およびＣＯＳ７細胞を免疫前血清かまたは抗−ＳＡＬ−Ｓ１− ＩｇＧ Ｆｃポリクローナル抗体のいずれかとの免疫沈降に使用した。ＣＯＳ７ および２９３細胞をゴーマン（Ｇorman，Ｃ.）により、以前に記載されたリン酸 カルシウム法を使用してトランスフェクションした（ＤＮＡ Ｃloning、グロー バー（Ｇlover）編、ＩＲＬプレス、オックスフォード、２巻：１４３−１９０ （１９８５））。一過性の発現に関しては、２９３細胞をギアリング（Ｇearing ）らにより記載されたようにして、トランスフェクションした（ＥＭＢＯ ８： ３６６７−３６７６（１９８９））。サブコンフルエント細胞を２００μＣｉ／ ｍｌの³⁵Ｓ−メチオニンで１８時間標識し、氷上で１０分間、溶菌バッファー（ １５０ｍＭのＮａＣｌ、５０ｍＭのＨＥＰＥＳ、ｐＨ７.５、１ｍＭのＥＧＴＡ 、０.０２５のアジ化ナトリウム、１％のＴriton−Ｘ １００、１.５ｍＭのＭｇ Ｃｌ₂、１０％のグリセロール、１ｍＭのフッ化フェニルメチルスルホニル［Ｐ ＭＳＦ］、１０μg／ｍｌのアプロチニン、１０μg／ｍｌのロイペプチンおよび ５０μＭのバナジン酸ナトリウム）において溶菌した。細胞溶解産物を４℃で１ ０分間遠心した（１２,０００×ｇ）。遠心後、免疫前またはポリクローナル抗 体を該上清に添加し、４℃で４時間振盪し、ついで１００μlのプロテインＡ− セファロースＣＬ４Ｂを添加し、該溶液をさらに２時間４℃にて振盪した。免疫 沈降物を洗浄し、ＳＤＳ／ＰＡＧＥローディングバッファー（１０％のグリセロ ール、５％の２−ＭＥ、２.３％のＳＤＳおよび６２.５ｍＭのトリス−ＨＣｌ、 ｐＨ６.８）に懸濁し、９５℃に５分間加熱し、７.５％のＳＤＳ−ＰＡＧＥによ って分析した。 Ｂ．ウエスタンブロットおよびホスホチロシンアッセイ タンパク質を０.２μｍニトロセルロース（バイオラド）または０.４５μｍポ リビニリデンジフルオライド（ミリポア）膜に、２５ｍＭのトリス−ＨＣｌ（ｐ Ｈ７.５）、１９２ｍＭのグリシンおよび２０％のメタノールにて１００ｍＡで ２時間電気泳動的にトランスファーした。フィルターをＴＢＳ（１０ｍＭのトリ ス−ＨＣｌ、ｐＨ８.０、１５０ｍＭのＮａＣｌ）にて洗浄し、ＴＢＳＴ（ＴＢ Ｓに０.０５％のＴween−２０を加えたもの）に５％のＢＳＡを加えたもので一 晩インキュベートすることにより遮断した。フィルターをＴＢＳＴにて各５分間 ４回洗浄し、ついでＵＢＩからの４Ｇ１０抗ホスホチロシン抗体（ＴＢＳＴにて １：１０００に希釈したもの）で２時間インキュベートした。フィルターをＴＢ ＳＴにおいて各５分間４回洗浄し、ついでＴＢＳＴで１：５０００に希釈したア ルカリホスファターゼ標識した抗マウス第２抗体（プロメガ）とともに１時間イ ンキュベートした。４回の洗浄後、ブロットをＡＰバッファー（１００ｍＭのト リス−ＨＣｌ、１００ｍＭのＮａＣｌ、５ｍＭのＭｇＣｌ₂）にＢＣＩＰ、ＮＢ Ｔ基質を加えたもので３０〜６０分間発色した。 Ｃ．抗体誘導リン酸化アッセイ ＳＡＬ−Ｓ１−ＩｇＧ Ｆｃに対するウサギ抗血清の、ＳＡＬ−Ｓ１トランス フェクションした２９３細胞においてＳＡＬ−Ｓ１リン酸化を誘導する能力を試 験した。細胞を６ウエルプレートに５×１０⁵細胞／ウエルの密度でプレーティ ングし、２４時間後、血清を与えない状態にし、ついで１２時間後に免疫前また は免疫血清を１：５希釈で３０分間添加した。ついで細胞をＰＢＳにて洗浄し、 上記のようにサンプルバッファーまたはＴriton−Ｘ溶菌バッファーで溶菌した 。粗製溶解産物かまたは免疫沈降した細胞溶解産物のいずれかをついで８％また は４〜１２％濃度勾配のＳＤＳ−ＰＡＧＥを介して分離し、上記のように抗ホス ホチロシン免疫ブロットによって分析した。ＳＡＬ−Ｓ１発現細胞を抗血清にさ らし、免疫沈降を伴うまたは伴わないＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離した。電気 泳動的にトランスファーしたゲルを抗ホスホチロシン抗体で免疫ブロットした。 ＳＡＬ−Ｓ１の増強されたチロシンリン酸化がポリクローナル抗血清にさらした 後に観察され、抗体結合のアゴニスト様効果を示した。ＳＡＬ−Ｓ１とそのＥＣ Ｄに直接向けられた抗体との相互作用はリン酸化を誘導する。 実施例 ９ ＳＡＬ−Ｓ１に対するモノクローナル抗体の産生 抗ＳＡＬ−Ｓ１モノクローナル抗体を、ＢＡＬＢ／ｃマウスを足跳でＲＩＢＩ アジュバント（ＲＩＢＩイムノケムリサーチ、ハミルトン、モンタナ）中のＳＡ Ｌ−Ｓ１細胞外ドメイン−ヒトＩｇＧ₁ Ｆｃ融合タンパク質で高度免疫し、リ ンパ節からのリンパ球とマウスミエローマ細胞株Ｘ６３−Ａｇ８Ｕ１とを融合す ることにより産生した。 融合して１０日後に開始し、培養した上清を融合プレートから回収し、ＳＡＬ −Ｓ１に結合する能力をアッセイした。このＥＬＩＳＡアッセイにおいて、ＳＡ Ｌ−Ｓ１ ＩｇＧ₁を９６マイクロタイタープレートにコーティングした。該培 養上清（１００μl）をウエルに添加し、存在する該マウス抗体はＳＡＬ−Ｓ１ ＩｇＧ₁に結合した。該プレートを洗浄し、マウスＩｇＧをヤギ抗マウスＩｇ Ｇ（Ｆｃ特異的で、ヒトＩｇＧ Ｆｃに対して交差応答はない）西洋ワサビペル オキシダーゼコンジュゲートおよびオルトフェニレンジアミン基質を使用して検 出した。基質触媒作用の定量化は４９０ｎｍの光学密度により決定した。 ＥＬＩＳＡから陽性である培養上清をついで、ＳＡＬ−Ｓ１受容体でトランス フェクションした２９３に特異的に結合する能力を試験し、フローサイトメトリ ーで分析した。ついで、アゴニスト抗体を以下の実施例１０に開示する技術を使 用してスクリーニングした。６つのアゴニストモノクローナル抗体を同定した。 実施例 １０ ＳＡＬ−Ｓ１に対するモノクローナル抗体のアゴニスト活性 該モノクローナル抗体のＳＡＬ−Ｓ１トランスフェクションした２９３細胞に おけるＳＡＬ−Ｓ１リン酸化を誘導する能力を試験した。細胞をアッセイバッフ ァーによって組織培養皿から回収し、同バッファーで２回洗浄した。１×１０⁵ 細胞を９６Ｕ底プレートに添加し、これを遠心し、アッセイバッファーを除去し た。培養上清１５０μlを各ウエルに添加し、ついで３７℃で３０分間インキュ ベートし、該プレートを遠心し、培養上清を除去した。固定液１００μlを添加 し、細胞を−２０℃にて３０分間固定し、細胞を２回バッファーで洗浄し、ＦＩ ＴＣを有する抗ホスホチロシンコンジュゲートで４℃で６０分間染色した。細胞 をフローサイトメトリーで分析した（ファクスキャン・ベクトン・ディッキンソ ン（ＦＡＣＳcan Ｂecton Ｄickinson）、ミルプリタス（milplitas）、カリフ ォルニア）。該６つの抗−ＳＡＬ−Ｓ１モノクローナル抗体はＳＡＬ−Ｓ１トラ ンスフェクションした２９３細胞においてＳＡＬ−Ｓ１リン酸化を誘導すること ができた。 材料の寄託 以下の培養物はアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション、１２３０１ パークローン（Ｐarklawn）ドライブ、ロックビル、メリーランド、ＵＳＡ（Ａ ＴＣＣ）に寄託された： この寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約 （ブダペスト条約）の条項およびその規則下になされた。このことは、寄託の日 から３０年間生存能力のある培養物の維持を保証する。該生物は、ブダペスト条 約の約定下に、ならびにジェネンテクとＡＴＣＣとの間の契約（当該米国特許の 発行または米国または外国特許出願の公開のいずれか早いときから該培養の継代 物の永久的かつ非制限的な入手可能性を保証し、３５ＵＳＣ§１２２およびそれ に従う特許商標長官規約（８８６ ＯＧ ６３８を特に参照し、３７ ＣＦＲ§１. １４を含む）に従って特許商標庁長官によって決定された権利を有する者に該継 代物の入手可能性を保証する）に基づいてＡＴＣＣより入手可能である。 本願の譲り受け人は、寄託されている培養物が適当な条件下で培養されている 際に死亡または紛失または破壊した場合には、通知によって同じ培養の生存標本 で速やかに取り替えることに同意した。寄託した株の入手可能性は、その特許法 に従って政府の権限下に付与された権利を侵害するような該特許の実施を許諾す るものとして解釈されるべきではない。 上記明細書は本発明を当業者が実施することができるのに十分であると考えら れる。本発明は、寄託された培養物によってその範囲を制限されるものではない 。というのは、寄託された態様は、本発明の１つの態様の１つの例として意図さ れているのであり、機能的に均等な培養物はいずれも本発明の範囲内であるから である。本明細書の材料の寄託は、本明細書に含まれる記載が本発明の最良の態 様を含む本発明のいかなる態様の実施を可能にするのに不適切であることを承認 す るものでもないし、該寄託が提示する特定の例示に請求の範囲を限定するものと して解釈されるものでもない。実際、本明細書に示され記載されたものに加えて 本発明の様々な変更が上記記載から当業者には明らかであろうし、添付の請求項 の範囲の範囲に包含されるであろう。 均等物 当業者は日常的な実験を使用するだけで、本明細書に記載された具体的な態様 に均等な多くのものを認識し、または確認することができるであろう。このよう な均等物も以下の請求項に包含される。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ Ｃ１２Ｎ 5/10 9637−4Ｂ Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 15/02 9358−4Ｂ 21/08 Ｃ１２Ｐ 21/02 0276−2Ｊ Ｇ０１Ｎ 33/566 21/08 0276−2Ｊ 33/573 Ａ Ｇ０１Ｎ 33/566 9284−4Ｃ Ａ６１Ｋ 39/395 Ｄ 33/573 9282−4Ｂ Ｃ１２Ｎ 15/00 Ｃ // Ａ６１Ｋ 39/395 9282−4Ｂ 5/00 Ｂ (Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｒ 1:91） (Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｒ 1:91） (72)発明者 リー，ジェイムズ・エム アメリカ合衆国94066カリフォルニア州 サン・ブルノ、シェルター・クリーク705 番 (72)発明者 マシューズ・ウィリアム アメリカ合衆国94062カリフォルニア州 ウッドサイド、サミット・スプリングス・ ロード 560番 (72)発明者 ツァイ，シャオ・ピン アメリカ合衆国94080カリフォルニア州 サウス・サン・フランシスコ、オレンジ・ アベニュー 519番 (72)発明者 ウッド，ウィリアム・アイ アメリカ合衆国94402カリフォルニア州 サン・マテオ、タリータウン・ストリート 1400番

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．ａ）ＳＡＬ−Ｓ１； ｂ）ＨｐＴＫ５；および ｃ）ｂｐＴＫ７ よりなる群から選択した受容体プロテインチロシンキナーゼ（ｐＴＫ）のキナー ゼドメインを活性化するアゴニスト抗体。 ２．モノクローナル抗体を含む請求項１の抗体。 ３．ｐＴＫがＨｐＴＫ５である請求項１の抗体。 ４．アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションの受託番号 ＡＴＣＣ ＨＢ １１,５８３の下に寄託したハイブリドーマ細胞株により産生された抗体の生物 学的特徴を有する請求項３の抗体。 ５．ｐＴＫがＳＡＬ−Ｓ１である請求項１の抗体。 ６．受容体プロテインチロシンキナーゼ（ｐＴＫ）のキナーゼドメインを活性化 するのに有効な量の請求項１の抗体および製薬学的に許容し得る担体を含む医薬 組成物。 ７．ａ）ＳＡＬ−Ｓ１； ｂ）ＨｐＴＫ５；および ｃ）ｂｐＴＫ７ よりなる群から選択した受容体プロテインチロシンキナーゼ（ｐＴＫ）のキナー ゼドメインを活性化する方法であって、該ｐＴＫを該ｐＴＫに対するアゴニスト 抗体の有効量と接触させることを特徴とする方法。 ８．ａ）ＳＡＬ−Ｓ１； ｂ）ＨｐＴＫ５；および ｃ）ｂｐＴＫ７ よりなる群から選択した受容体チロシンプロテンキナーゼ（ｐＴＫ）の細胞外ド メインと免疫グロブリン定常ドメイン配列との融合物を含むキメラタンパク質。 ９．ｐＴＫがＨｐＴＫ５である請求項８のキメラタンパク質。 １０．ｐＴＫがＳａｌ−Ｓ１である請求項８のキメラタンパク質。 １１．免疫グロブリン定常ドメイン配列がＩｇＧ免疫グロブリンの配列である請 求項８のキメラタンパク質。 １２．請求項８のキメラタンパク質をコードする核酸。 １３．請求項１２の核酸を含む複製可能なベクター。 １４．請求項１２の核酸を含む組換え宿主細胞。 １５．ａ）ＳＡＬ−Ｓ１； ｂ）ＨｐＴＫ５；および ｃ）ｂｐＴＫ７ よりなる群から選択した受容体プロテインキナーゼ（ｐＴＫ）の細胞外ドメイン と免疫グロブリン定常ドメイン配列との融合物を含むキメラタンパク質を産生さ せるための該キメラタンパク質をコードする核酸分子の使用方法であって、請求 項１４の宿主細胞を培養することを特徴とする方法。