JPH1052488A - バイオ分子でコートされた表面グラフトマトリックスを有する医学装置 - Google Patents
バイオ分子でコートされた表面グラフトマトリックスを有する医学装置Info
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Abstract
リックスを有する医学装置を提供する。 【解決手段】 装置上に位置するカルボキシル基からな
る、外部部分を含む表面グラフトマトリックス;およ
び、表面グラフトマトリックスに共有カップリングした
一つ以上のバイオ分子からなるが、但しバイオ分子の大
多数は表面グラフトマトリックスの外部部分内に位置す
ることを特徴とする、医学装置が提供される。表面グラ
フトマトリックス内には薬剤を装填することもできる。
Description
関する。より特定すれば、本発明は、バイオ分子をコー
トされた表面グラフトマトリックスを含む医学装置およ
びその製造方法に関する。
連した最も重大な合併症となりつつある。これらの感染
の治療は難しく、たびたび移植された装置の除去を必要
とする。材料およびデザインについての技術的な進歩お
よび増加する外科手術の経験は、感染性合併症の範囲を
低下させたが、しかしながら、感染は疾病率および死亡
率の存続原因として残る。
は、最初、手術室領域の修飾および外科手術時における
予防抗体の使用を含む外科手術技術の改良に向けられ
た。これらの細心の免毒性測定の導入に拘わらず、装置
関連感染の発生は完全に廃絶できなかった。
れ、そして結果的には装置表面に囲まれた組織の適切な
組み込み(integration)を促進する表面を装置に提供
することによる、感染抵抗性を高めるための装置の修飾
に向けられた。基礎になる概念は、装置表面の組織細胞
による迅速なコロニー形成および組み込みを奨励する場
合に、移植表面を細菌のコロニー形成から保護すること
である。
法は、装置表面上へ固定化されたコラーゲンの使用を通
してであるが、なぜならば、コラーゲン物質は良好な組
織応答を促進するからである。コラーゲン物質は、3次
元組織様構造への異なる細胞種の組織化を促進すること
が示されている、より生理学的な等方性環境を提供す
る。例えば、アキタ(Akita)ら、Cell Tissue Res.,2
74,91-95(1993);およびバーソッド(Berthod)ら、
Biomaterials,14,749-754(1993)を参照されたい。
移植の研究は、コラーゲンの固定化が移植材料を伴う組
織の良好な組み込みを促進することを示した。例えば、
シミズ(Shimizu)ら、Biomat.,Med.Dev.,Artif.Or
g.,6,375-391(1978);キノシタ(Kinoshita)ら、B
iomaterials,14,209-215(1993);および、オカダ
(Okada)ら、J.Biomed.Mater.Res.,27,1509-1518
(1993)を参照されたい。
するための一つの方法は、シミズ(Shimizu)ら、Bioma
t.,Med.Dev.,Artif.Org.,5,49-66(1977)に開示
されるとおりに積層材料がもたらすような、コラーゲン
の物理的蒸着を含む。この方法の一つの欠点は、移植医
学装置が典型的に経験するような湿気の豊富な環境にお
いて、コラーゲン物質が脱積層しがちなことである。
めの別の方法は、合成ポリマー基材にコラーゲンを共有
カップリングさせることを含み、オカダ(Okada)ら、B
iomaterials and Clinical Applications,pp.465-47
0,1987に開示されているとおりである。この方法は、
アクリル酸のグラフト共重合の後、コラーゲンをグラフ
ト化ポリ(アクリル)酸鎖に共有カップリングすること
を含み、その結果コラーゲンとポリ(アクリル)酸鎖の
ブレンド様マトリックスがもたらされる。この構成を図
1に示すが、図中、ポリ(アクリル)酸鎖12は装置の表
面10にグラフトされる。コラーゲン14は、鎖12により形
成されたマトリックス内部に含まれる。即ち、コラーゲ
ンは本質的に表面上に位置しない。即ち、正確な発現お
よび接近容易性が邪魔されるので、生物活性は低下す
る。
は、a)装置上に位置するカルボキシ官能基からなる、
外部部分を有する表面グラフトマトリックス;および
b)表面グラフトマトリックスに共有カップリングした
一つ以上のバイオ分子であって、大多数のバイオ分子は
表面グラフトマトリックスの外部部分内に位置するバイ
オ分子を有する。
能基からなる、外部部分を有する表面グラフトマトリッ
クス;b)表面グラフトマトリックスに共有カップリン
グした一つ以上のリンカー分子であって、大多数のリン
カー分子は表面グラフトマトリックスの外部部分内に位
置するリンカー分子;およびc)リンカー分子に共有カ
ップリングした一つ以上のバイオ分子を有する医学装置
も提供される。
の方法も提供する。該方法は、(a)医学装置の表面上
にカルボキシ官能基を有する表面グラフトマトリックス
を形成し;(b)表面グラフトマトリックスのpKaよ
り低いpHを有する水性溶液で表面グラフトマトリック
スを処理し;そして(c)表面グラフトマトリックスの
pKaより低いpHを有する水性溶液中の表面グラフト
マトリックスに一つ以上のバイオ分子を共有カップリン
グする工程からなり、大多数のバイオ分子は表面グラフ
トマトリックスの外部部分内に位置するバイオ分子を有
する。
シ官能基を有する表面グラフトマトリックスを形成し;
(b)表面グラフトマトリックスのpKaより低いpH
を有する水性溶液で表面グラフトマトリックスを処理
し;(c)表面グラフトマトリックスのpKaより低い
pHを有する水性溶液中の表面グラフトマトリックスに
一つ以上のリンカー分子を共有カップリングする工程か
らなるが、大多数のリンカー分子は表面グラフトマトリ
ックスの外部部分内に位置しており;そして(d)一つ
以上のバイオ分子をリンカー分子に共有カップリングさ
せる工程からなる、医学装置の表面修飾方法も提供す
る。
法は、装置表面上に位置したカルボキシ官能基を有する
表面グラフトマトリックスからなる医学装置を体に接触
させるが、但し、表面グラフトマトリックスは一つ以上
のバイオ分子の大多数がカップリングした外部部分を含
み、装置が最初に体に接触する場合に、薬剤は表面グラ
フトマトリックス内に位置する。
部部分内の一つ以上のバイオ分子の大多数を医学装置の
上に共有カップリングする方法を提供する。表面グラフ
トマトリックスは、好ましくは、任意にカルボキシ官能
基(COOH)を含まないビニルモノマーと組み合わせ
てカルボキシ官能モノマーを表面グラフト化することに
より形成する。例えば、表面グラフトマトリックスは、
1995年11月7日に出願された、「感染抵抗性を高めた筋
肉内刺激リード」と題する米国特許出願番号08/553,206
に開示されるとおりに、アクリル酸とアクリルアミドモ
ノマーの表面グラフト化によりもたらされる。カルボキ
シ官能姓の結果として、表面グラフトマトリックスは典
型的にはアニオン特性を有する。
に対して中間サイズ化された低下した透過性を示す表面
グラフトマトリックスを医学装置の表面上に形成し、そ
れにより、続いて表面グラフトマトリックスの外部部分
に共有カップリングされたバイオ分子を単離する能力を
提供する。低下させたpHレベルで表面グラフトマトリ
ックスを処理して表面グラフトマトリックスの透過性を
低下させるが、好ましくは溶液のpHを表面グラフトマ
トリックスのpKaより低くする。pHが表面グラフト
マトリックスのpKaより低い溶液中でバイオ分子カッ
プリング反応を実施することにより、低いグラフトマト
リックスの相対不透過性が維持されて、表面グラフトマ
トリックスの外部部分への大多数のバイオ分子を制限す
る。その制限により、表面グラフトマトリックス上にバ
イオ分子の「さや(sheath)」がもたらされる。
子が表面グラフトマトリックスの外部部分におかれた後
に、表面グラフトマトリックスは薬剤と共に配置され
る。好ましくは、この配置は、表面グラフトマトリック
スと薬剤とのイオン性相互作用の結果として生じる。
対して中間サイズ化された低下した透過性を示す表面グ
ラフトマトリックスを医学装置の表面上に形成する。表
面グラフトマトリックスの透過性は、低下させたpHレ
ベルで表面グラフトマトリックスを処理して低下させ、
好ましくは溶液のpHを表面グラフトマトリックスのp
Kaより低くする。表面グラフトマトリックスのpKa
より低いpHの溶液中で一つ以上のリンカー分子(バイ
オ分子であってよく、本明細書においては中間バイオ分
子と呼ぶ)の続くカップリング反応を実施することによ
り、低いグラフトマトリックスの相対不透過性が維持さ
れて、表面グラフトマトリックスの外部部分への大多数
のバイオ分子を制限する。その制限により、表面グラフ
トマトリックス上にリンカー分子(例えば、中間バイオ
分子)の「さや」がもたらされる。次に、リンカー分子
(例えば、中間バイオ分子)を用いて、表面グラフトマ
トリックスの外部部分に第2バイオ分子(本明細書にお
いて主要バイオ分子と呼ぶ)の大多数を共有カップリン
グすることができる。この第2カップリング工程は、下
層の表面グラフトマトリックスのpKaより低いpH値
を有する溶液中で実施され、それにより、表面グラフト
マトリックスの外部部分に位置するバイオ分子への相対
不透過性を維持する。
「医学装置」は、組織、血液、またはのちに患者に用い
られる操作の途中における他の体液と接触する表面を有
する装置として定義される。これは、例えば、外科手術
に用いられる体外装置、例えば、血液酸素供給器、血液
ポンプ、血液センサー、血液輸送用チューブおよび血液
と接触して体に戻すもの等を含む。この用語は、ヒトま
たは動物の体の中に血液と接触するように移植された内
部人工器官、例えば、血管グラフト、ステント、ペース
メーカーの導線、および心臓弁および血管または心臓に
移植されるもの等を含みうる。この用語は、さらに、一
次的に血管に使用される装置、例えば、カテーテル、ガ
イドワイヤー、および監視または修復の目的で血管また
は心臓に置かれるもの等を含みうる。この用語は、神経
電極、筋肉電極、移植可能なパルス発生器、移植可能な
薬剤ポンプ、および細動除去器も含みうる。
「バイオ分子」は、あらゆる生物適合性および/または
生物活性分子(即ち、「主要バイオ分子」)または一つ
以上のバイオ分子がカップリングしうる中間バイオ分子
(リンカー分子)を含む。他に指示しない限り、本明細
書で用いられる用語「バイオ分子」は、主要バイオ分子
および中間バイオ分子の両者を含むことは理解されよ
う。
の種に存在する生物適合性分子である。本発明に従い表
面グラフトマトリックスにカップリングしうるバイオ分
子の種類は、限定されないが、抗トロンビン剤、抗菌
剤、抗炎症剤、成長因子、サイトカイン、天然または合
成により調製される蛋白質、ペプチド、アミノ酸、およ
びそれらの混合物を含む。表面グラフトマトリックスに
カップリングしうるバイオ分子の特定例は、限定されな
いが、アルブミン、フィブリノーゲン、ラミニン、ビト
ロネクチン、フィブロネクチン、RGD含有ペプチド、
ヘパリン、硫化ヘパリン、フィブロブラスト成長因子
(EGF)、インスリン様成長因子、神経成長因子、イ
ンターフェロン(IFN)、腫瘍ネクローシス因子(T
NF)、インターロイキン、ゼラチン、エラスチン、フ
ィブリン、フォンイルブランド因子、硫化デルマタン、
ヒアルウロン酸、硫化デキストラン、およびそれらの混
合物を含む。これらのバイオ分子は、共有カップリング
の間に用いられる条件にて中性または荷電していてよ
い。それらは、直接(即ちカルボキシル基を通して)、
またはよく知られたカップリング化学、例えばエステル
化、アミド化、およびアシル化を通して表面グラフトマ
トリックスにカップリングされてよい。これらの分子は
典型的に主要バイオ分子であるが、それらの特定のもの
は中間バイオ分子として用いることができる。バイオ分
子の外部のさやは多くのバイオ分子を典型的に含むが、
技術的にマクロ分子を形成する重合バイオ分子を含むこ
とができる。
てもよいが、その使用は、本発明に関連して、典型的に
表面グラフトマトリックス内に大多数のリンカー分子を
共有カップリングして含む。表面グラフトマトリックス
への共有カップリング後、リンカー分子は、一つ以上の
主要バイオ分子を共有カップリングするために使用可能
な官能性活性基を多く有する表面グラフトマトリックス
を提供することができる。リンカー分子は、直接(即
ち、カルボキシル基を通して)、またはよく知られたカ
ップリング化学例えばエステル化、アミド化、およびア
シル化を通して表面グラフトマトリックスにカップリン
グされてよい。好ましくは、リンカー分子は、アミド結
合の直接の形成を通して表面グラフトマトリックスにカ
ップリングした少なくともジ−またはトリ−アミンの官
能性化合物であり、そして主要バイオ分子との反応に利
用可能なアミン官能基を提供する。より好ましくは、リ
ンカー分子は、ポリアミン官能性ポリマー例えばポリエ
チレンイミン(PEI)またはポリアリルアミン(PA
LLA)である。これらのポリマーの混合物を用いるこ
ともできる。これらの分子は、一つ以上の主要バイオ分
子を表面固定化するために使用可能なペンダントアミン
官能基を多数含む。
あり、大多数のバイオ分子24が医学装置20上に位置する
表面グラフトマトリックス22の外部部分内に配置または
固定化される様式で表面グラフトマトリックス22に共有
カップリングすることを示す。図2に示されたバイオ分
子24の固定化は図1に示す従来技術とは異なり、図1に
おいては大多数のバイオ分子24が表面グラフトマトリッ
クス22の外部部分の上または隣接して配置されて、図1
に示されたマトリックス構造を通して一般的には分散さ
れない。大多数のバイオ分子のこの表面隔離は有利であ
るが、なぜならばバイオ分子のわずかに妨げられた発現
を許容するからであり、その結果、生物活性は顕著に高
いレベルに維持される。
ラフトマトリックスの外部部分の深さは、根本的には、
固定化されるバイオ分子の種類および採用される反応条
件に依存する。典型的には、大多数のバイオ分子は約10
nmまたはそれ以下の深度の範囲で表面グラフトマトリッ
クスに固定化される。例えば、コラーゲンが表面グラフ
トマトリックスの外部部分に固定化されるバイオ分子な
らば、大多数のコラーゲン分子が固定化される深度は約
7nmまたはそれ以下である。
ングされたバイオ分子のグラフトマトリックスへの移動
を妨害するかもしれない。これは、特に、アニオン性バ
イオ分子、例えば下層のアニオン性表面グラフトマトリ
ックスにより拒絶される抗凝血ヘパリンの固定化の場合
であろう。
クスの外部部分での大多数のバイオ分子の共有カップリ
ングの後で、患者において所望な応答を得るために続い
て放出される薬剤を、マトリックスに装填することがで
きる。表面グラフトマトリックスの外部部分での大多数
のバイオ分子の固定化により、バイオ分子の完全な浸透
を許容する表面グラフトマトリックス材料に比して、マ
トリックスの薬剤許容範囲は増加し得る。これは、本発
明の別の利点を提供する。
定されないが、抗微生物剤、抗菌剤、抗凝血剤、抗トロ
ンビン剤、血小板製剤、および抗炎症剤を含む。他の有
用な薬剤は、限定されないが、生物リガンドとして作用
する染料、ステロイド、酵素、触媒、ホルモン、成長因
子、薬剤、ビタミン、抗体、抗原、核酸、ペプチド、D
NAおよびRNAセグメント、およびこれらの混合物を
含む。表面グラフトマトリックスへの最も効果的な取り
込みのためには、これら薬剤は親水性の陽性荷電した化
合物である。
填した表面グラフトマトリックス122上にバイオ分子を
取り込んだ医学装置120内において、医学装置のインビ
トロ性能を改良するために2つのバイオ分子活性が提供
されうる。バイオ分子124は、例えば、所望の組織の組
み込みを提供するためには、周囲の組織に相互作用する
コラーゲンでありうる。薬剤126の放出により、特定の
所望な体の機構が活性化されるか、または、抗微生物剤
の場合に、医学装置/組織干渉が安定化される前の初期
の傷つきやすい期間および細菌によるランダムなコロニ
ー形成が起こるかもしれない場合には、保護様式の作用
が示される。結果として、表面は、「2つの生物機能」
特性、即ち、a)装置表面への迅速な組織の取り込みを
促進、およびb)移植された装置の周囲の感染の危険を
減じるための薬剤、例えば抗微生物剤の放出を含む2つ
の生物機能活性を示す。
置の表面上の表面グラフトマトリックスの形成から始ま
る。表面のグラフト化の方法は、ポリマー、好ましくは
水溶性ポリマーで、カルボキシル官能モノマーに基づい
ており、限定されないが、アクリル酸、メタクリル酸、
イタコン酸、トランス−桂皮酸、クロトン酸、リノール
酸、リノレン酸、マレイン酸、ソルビン酸、およびそれ
らの混合物を基材物質上に共有表面グラフトすることを
含む。カルボキシル官能表面グラフトマトリックスは、
非カルボキシル官能モノマーの化学修飾を通して得ても
よい。例えば、ポリ(アクリルアミド)表面の基礎加水
分解は、アクリル酸がアクリルアミドと共重合される場
合に生じるのと同様にして、カルボキシル官能モイエテ
ィを導入する。しかしながら、本明細書にて記載される
とおりにバイオ分子を付加するために使用可能なカルボ
キシル官能基(COOH)を有する限りは、表面グラフ
トマトリックスが調製される。
号および/または第5,344,455号に論じられるとおり
に、セリウムイオン法により開始することが好ましい。
セリウムイオンの開始は基材表面にモノマーをグラフト
化する好ましい方法であるが、他のグラフト技術を用い
てもよい。他の開始法の公知例は、コロナ放電、UV照
射、オゾン化およびイオン化照射(例えば、60Co,X
線、高エネルギー電子、プラズマガス放電等)を含む。
チタン/チタン合金、TiNi(形状記憶/超弾性)、酸化
アルミニウム、プラチナ/プラチナ合金、ステンレス
鋼、MP35N、エルギロイ(elgiloy)、ハイネス(Hayne
s)25、ステライト(stellite)、熱分解炭素、銀、ま
たはガラス炭素;ポリマー例えばポリアミド、ポリカー
ボネート、ポリエーテル、ポリエステル、ポリオレフィ
ン例えばポリエチレンまたはポリプロピレン、ポリスチ
レン、ポリウレタン、ポリ塩化ビニル、ポリビニルピロ
リドン、シリコーンエラストマー、蛍光ポリマー、ポリ
アクリレート、ポリイソプレン、ポリテトラフルオロエ
チレン、およびゴム;無機物またはセラミックス例えば
ヒドロキシアパタイト;ヒトまたは動物の蛋白質または
組織例えば骨、皮膚、歯、コラーゲン、ラミニン、エラ
スチンまたはフィブリン;有機物質、例えば木、セルロ
ース、または圧縮炭素;および他の物質例えばガラス等
を含む。これらの物質を用いて作られる基材はコートさ
れているかまたは非コートでありえ、そして誘導されて
いるか(例えば、反応性官能基を含むように修飾され
る)または誘導されていない。好ましくは、基材は、基
材表面のあらゆる予めの活性化なしにカルボキシル官能
表面グラフトマトリックスが直接カップリングされうる
ポリウレタンである。
および適切な形態の製品を含むあらゆる形状または形態
の基材を修飾することができる。好ましくは、基材は多
くの医学装置に使用されるバイオ分子であり、例えば血
管グラフト、大動脈グラフト、動脈、静脈、または血
管、血管ステント、透析膜、チューブ、または接続器、
血液酸素供給チューブまたは膜、超濾過膜、大動脈内バ
ルーン、血液バッグ、カテーテル、縫合糸、柔軟かまた
は堅い組織人工器官、合成人工器官、人工心臓弁、組織
接着剤、心臓ペースメーカー導線、人工器官、気管内チ
ューブ、目のレンズ、例えばコンタクトまたは眼内レン
ズ、血液運搬器具、失語症(apheresis)装置、診断用
および監視用カテーテルおよびセンサー、バイオセンサ
ー、歯科装置、薬剤送達システム、またはあらゆる種類
の体内移植物である。
次に一つ以上のバイオ分子を共有カップリングして表面
グラフトマトリックスを封じるために使用される一つの
好ましい態様である。表面グラフトマトリックスは、グ
ラフトマトリックスの後の操作に許容される比でモノマ
ーアクリル酸とアクリルアミドを表面グラフト化するこ
とにより形成するのが好ましい。典型的には、十分なア
クリル酸(または他のカルボキシル官能モノマー)を存
在させて表面グラフトマトリックスの透過性を低下させ
る機構を干渉することにより、表面グラフトマトリック
スの外部部分内の大多数のバイオ分子の固定化に備える
べきである。好ましくは、アクリル酸を用いて、表面グ
ラフトマトリックスを調製するために用いられるモノマ
ーの全重量の約20-100%の量で表面グラフトマトリック
スを調製する。より好ましくは、アクリル酸は約50-90
%、そしてもっとも好ましくは約65-75%の量で使用す
る。これらの重量百分率は、他のカルボキシル官能モノ
マーにも適用可能である。
のビニル官能モノマーの表面グラフトマトリックスへの
取り込みは可能であるが、表面グラフトマトリックスの
外部部分内への大多数のバイオ分子の隔離に備えて、表
面グラフトマトリックスの透過性を低下させる機構を干
渉する範囲に限定される。さまざまなビニル官能モノマ
ーを取り込んで、共重合表面グラフト、例えばアクリル
アミド(Aam)、N−(3−アミノプロピル)メタク
リルアミド(APMA)、2−ヒドロキシエチルメタク
リレート(HEMA)、および2−アクリルアミド−2
−メチルプロパンスルホン酸(AMPS)を形成するこ
とができる。アクリルアミドは、その構造および分子量
がアクリル酸のそれらに近いため、アクリル酸モノマー
に加えて取り込まれる最も好ましいモノマー化合物であ
る。
面への表面グラフトマトリックスの共有カップリングの
後(酸性媒体中で実施されてもされなくてもよい)、低
pH浸潤法を用いて、所望の不透過性を有する表面グラ
フトマトリックスを生成して、表面グラフトマトリック
スの外部部分内での大多数のバイオ分子の固定化に備え
る。低pH溶液中に表面グラフトマトリックスを浸潤す
ることにより、表面グラフトマトリックス内でのカルボ
キシル酸ダイマーの形成およびポリマー内架橋が提供さ
れる。酢酸ダイマーの結合強度は、ポター(Potter,J
r)ら、J.Phys.Chem.,59,250-254(1955)に開示さ
れるとおり、55-60kJ/モルにほぼ等しい。これは、ポリ
(カルボキシル酸)グラフトマトリックスとのポリマー
内架橋が顕著な強度になることを示す。ポリマー内架橋
の形成は、表面グラフト物質の明白な粘着感により特徴
付けられる。この粘着感は、一般的に表面グラフトマト
リックスの粘着力を示唆する。このポリマー内架橋は、
大きな(ポリカチオン性でさえ)化合物に対する中間サ
イズの表面グラフトマトリックスへの透過性/接近性を
低下させる。
多数のバイオ分子の共有カップリングの次の工程は、表
面グラフトマトリックスのpKaより低いpHにおいて
も実施される。これにより、主要バイオ分子の表面層、
即ち、さやが形成されて実質的に表面グラフトマトリッ
クスを包むようなバイオ分子の固定化をもたらす。これ
はさらに、次にインビボ放出するための薬剤による表面
グラフトマトリックスのより完全な装填を許容する。浸
潤法およびバイオ分子カップリング法は連続して実施さ
れるのが好ましいが、それらは、同時にも実施できる。
アジーズら(Azzez)ら、J.Appl.Polym.Sci.,58,1
741-1749(1995)の方法によりFTIR分析を通して測定さ
れうる。この方法を用いると、100%アクリル酸グラフ
トマトリックスのpKaは6.3であり、これはアクリル
酸/アクリルアミドコポリマーヒドロゲル上でパーク
(Park)ら、Pharm.Res.,4,457-464(1987)により
開示された4.9-6.7の発見に基づく。pKa値は一般的
には、環境のイオン強度およびコポリマー中のアクリル
酸画分に依存する。典型的には、イオン強度の増加はp
Kaの低下をもたらすが、アクリル酸画分の増加はpK
aの増加をもたらす。
透過性を低下させ、そしてバイオ分子が付加される溶液
のpHは約5.5を越えない。好ましくは、pHは約5を
越えず、そしてより好ましくは、約4.5を越えない。好
ましくは、pHは少なくとも約2であり、そしてより好
ましくは、少なくとも約3である。いくつかの特定の溶
液のpH値は以下に示す実施例に関連して記載される。
ましくは、少なくとも5.5を越えないpHにおいて基材
への共有相互作用を通してカルボキシル官能モノマーを
表面グラフトし;表面グラフトマトリックスのpKaよ
り大きいpH(典型的には、中性pH)を有する水性溶
液中でその上の表面グラフトマトリックスで基材を洗浄
することにより遊離のモノマー、オリゴマーまたはポリ
マーを除去し;表面グラフトマトリックスのpKaより
大きいpHを有する溶液中でその上の表面グラフトマト
リックスで基材を浸潤し;そして、表面グラフトマトリ
ックスのpKaより大きいpHを有する溶液中で表面グ
ラフトマトリックスの外部部分中の大多数のバイオ分子
を共有カップリングすることを含むのが好ましい。
限定実施例に関して記載される。
nによる2363-55D PELLETHANE樹脂(Dow Chemical,Midl
and,MI,米国)から作成した。
(65%)、リン酸一ナトリウム一水和物、リン酸二ナト
リウム、塩化ナトリウム、およびアジ化ナトリウムは、
Merck-Schunchardt(Darmstadt,ドイツ)から得た。ア
クリル酸、MES一水和物、酒石酸二ナトリウム、N-ヒド
ロキシサクシミド(NHS)、3-エチル-1-(ジアミノプロ
ピル)−カルボジイミド(EDC)、および炭化水素ナト
リウムは、Aldrich Chemie(Bornem,ベルギー)から得
た。アクリルアミド(99+%;電気泳動グレード)は、
Acros Chimica(Geel,ベルギー)から得た。コラーゲ
ン(タイプI;ウシ皮膚由来)、および2,4,6-トリニト
ロベンゼンスルホン酸(TNBS;1M水溶液)は、Fluka
(Buchs,スイス)から得た。クマジーブルーは、Pierc
e Europe BV(Oud Beijerland,オランダ)から得た。
コラゲナーゼ(EC 3.4.24.3;クロストリジウムヒスト
リツカム由来;タイプIA,550ユニット/mg固体)、およ
びTris-HClは、Sigma Chemie(Bornem,ベルギー)から
得て;四硼酸二ナトリウム10水和物は、Sigma Chemie
(Bornem,ベルギー)から;トルイジンブルーO染料は
Sigma Chemieから;ポンソーS染料はSigma Chemieか
ら;SDSはSigma Chemieから;そして硫酸ゲンタマイ
シンはSigma Chemieから。
た。他のすべての試薬は試薬グレードまたはそれ以上で
あるさらに精製せずに用いた。
a2HPO4,0.0015M NaH2PO4・H2Oおよび0.15M NaCl;pH=
7.4から調製した。
(FT-IR)分析は、水平ATR装置に付随したBioRad Di
gilab FTS-60分光光度計上で実施し;45°の末端面角度
でゲルマニウム水晶を内部反射要素として用いた。
Edwards S150B Sputter Coaterを用いて金(2−4nm)
で最初にスパッターコートした。材料の評価は、JEOL J
SM 6400スキャニング電子顕微鏡(SEM)上で15kVで操作
して実施した。
isons(VG)表面科学装置M-probesXPS装置を用いて、表
面および材料分析センター(CSMA社、Manchester,英
国)において実施し、400μm×1000μmの楕円スポット
サイズに焦点を合わせた200W単色化されたALKαX線を
用いてテイクオフ角度(TOA)を変更した。C 1s,O 1s
およびN 1s領域のサーベイスキャン分析および高解像分
析を記録した。すべてのスペクトルは、285.0 eV結合エ
ネルギーにおけるC 1sピークを基準とする。組成表は、
ピーク領域測定そして続くスコフィールド感度因子の使
用ににより各々の表面に関して誘導された。高解像デー
タは、装置ソフトウエアを用いるピーク合成の前に、直
線バックグラウンド減法に供された。
間(ToF-SIMS)のスペクトルは、ポシェンライダー(Po
schenreider)デザインに基づき且つパルスされた液体
金属イオン源を付随するVG IX23S装置を用いて獲得され
た。30keV Ga+の初期イオンビームは、表面法面(surfa
ce normal)に対して入射角38°で用いた。二次イオン
は、サンプルバイアスを適用することにより分析のため
に5 keVに加速した。各サンプルに関して、ToF-SIMS研
究の結果として分析された表面が事実上損傷されないよ
うに、静止SIMSに関する2×1011イオンcm-2を越えない
全初期イオン線量を用いてポジティブおよびネガティブ
両方の二次イオンスペクトルを回収した。Edwards 5150
Bスパッターコーターを用いてサンプルを金でスパッタ
ーコートした後(2−4nm)、2 kVで操作されたJEOL
JSM 6301-F Field-Emission-GunSEMを用いてフィールド
放射ガンスキャニング電子顕微鏡(FEG-SEM)試験を実
施した。
プロピルアルコール(IPA)中で15分間、押出されたPEL
LETHANE 55Dポリウレタンフィルムを超音波洗浄した。
直後に、IPA洗浄されたサンプルを強制循環オーブン中
で50-60℃において約5分間乾燥した。FT-IR調査から、
15分間のIPA処理は、工程の最初から存在する、例えば
ビス−ステアラミドワックス等のグラフト工程を妨害す
るかもしれないあらゆる表面汚染物を除去するのに十分
であることが示された。
のアクリル酸モノマー濃度(100重量%アクリル酸)、
6mMの硝酸セリウムアンモニウム(CAN)および0.06M
硝酸(HNO3)からなるように調製された。グラフトの前
に、グラフト溶液を約2分間減圧下(18 mm Hg±5 mm
Hg)に暴露することにより処理して、過剰な空気を除去
した。
リップ)は、適当な体積(25-30ml)のグラフト溶液中
に、洗浄されて乾燥されたサンプルを入れることにより
調製された。グラフトは、15-20分間30℃において溶液
を撹拌しながら続けられた。
で洗浄してグラフト工程を停止すると同時に、形成され
た表面グラフトマトリックスを洗浄した。リン酸バッフ
ァー塩(PBS)溶液(pH=7.4)中で、16-18時間、50-60
℃にて、徹底したグラフトサンプルの洗浄を実施した。
ダイマーの形成を減じるために、アクリル酸モノマーの
みで表面グラフトされた55D PELLETHANEサンプルを0.1
M酒石酸溶液(酒石酸二ナトリウム)中に、pH=3.0に
緩衝して(グラフトマトリックスのpKaよりも顕著に
低い)、4時間室温にて浸潤した。
分光計により確認された。2つのピークが重要である:
約1560nmに位置するイオン化状態[COO-]のカルボ
キシル酸を表すピーク;および、約1700nmに位置するダ
イマー形状のカルボキシル酸を表すピーク。拡大された
ピーク強度およびpH=3.0(<<pKa)において処理
された約1700nmにおけるピーク領域は明らかであり、ダ
イマー形成を示唆する。
n Spectroscopy:XPS)手段による表面分析により、
表面の1.5から6nmの最上層の定量性要素分析が可能に
なる。XPSからは、pHに依存したカルボキシル酸の
化学状態の相違が確認された。以下の表において、AA-
グラフト55D(100重量%アクリル酸)のXPS分析の結
果を示す。
ほぼイオン化される。このことは、ナトリウムの存在
(表1)およびCOOX化学状態の存在により(表2)
確認される。イオン化状態において、カルボキシル基は
ダイマーを形成することができず、即ち、該基はグラフ
トマトリックスをぶつるてきに架橋するために必須であ
る。対照的に、pH<pKaにおいて、カルボキシル基
は水素化されて、即ちダイマー基を形成することができ
る。この水素化状態はナトリウムの不在(表1)および
COOH化学状態の優勢により(表2)確認される。
クスは、物理的な架橋を誘導するために、カルボキシル
酸ダイマーの形成による大きな(ポリカチオン性でさ
え)分子に対する中間サイズに不透過なように作成でき
る。これは、(イオンにより)固定化されうる抗微生物
薬剤ゲンタマイシンの量に対するpHの効果を研究した
実験において確認された。
オン性化合物、例えばゲンタマイシンが表面グラフトの
ポリマーマトリックスへの侵入を妨害されうるように操
作できることが観察された。pHが表面グラフトマトリ
ックスのpKaより低くなる場合、固定化されうるゲン
タマイシンの量はpH範囲3から4において劇的にゼロ
に低下した。
において緩衝されるように調製された。典型的には、該
溶液は0.01Mの所望のバッファー剤を含み;溶液のpH
は、1N NaOHまたは1N HClのいずれかの滴下による
添加により所望のpHに調節された。pH範囲はpH=3
からpH=9に及んだ。溶液は以下のとおりに調製され
た。
溶液にグラフト表面サンプルを浸潤した後、表面グラフ
トサンプルはゲンタマイシンを装填して装填されたゲン
タマイシンの量を測定した。サンプルの浸潤前と後のゲ
ンタマイシン含有量の違いを測定して、サンプル中に装
填されるゲンタマイシン量の測定値として用いた。
M 四硼酸二ナトリウム10水和物、pH=9.2)の添加に
よりpH=9に調節し、そのあと、25μlの0.03M 水性TNB
Sをサンプル溶液mlあたり加えた。TNBS誘導化反応は25-
30分間室温において進行させ、そのあと、415nmにおけ
る吸光を測定したが、595nmを基準波長として用いた(B
ioRadモデル3550、96ウエルマイクロプレート読取り
機、Veenendaal,オランダ)。
マトリックスのpKaより低い場合は、固定化されうる
ゲンタマイシンの量をpH3から4において劇的に低下
させた。
用いて55D PELLENTHANEポリウレタンサンプルを表面グ
ラフトした。次に、表面グラフトサンプルは4時間室温
においてpH=3.0に緩衝された0.1M酒石酸溶液(酒石酸
二ナトリウム)に浸潤した。DI水による3回の洗浄後、
サンプルを0.01M EDCおよび0.01M NHS含有バッファー溶
液に浸潤した。カルボジイミド活性化反応を5分間室温
にて実施した。
基のカルボジイミド活性化直後に、サンプルを0.5mg/ml
コラーゲン(タイプI)含有バッファー溶液に浸潤し
た。該溶液は、0.02M MESによりpH範囲4.0から4.5の間
に緩衝化された。コラーゲン固定化反応は少なくとも20
時間続けられた。次に、コラーゲン固定化されたをDI
水、DI水中の0.15M NaCl溶液、そして再びDI水で洗浄し
た。サンプルは空気の暴露による包囲条件下で乾燥し
た。
術により確認した。TNBS染色はアミン官能基の存在を確
認した。TNBS染色は、1mlの4重量%の水性NaHCO3中に
4mmのディスクを浸潤することにより実施した。この溶
液に1mlの0.5重量%の水性TNBSを加えて、そのあと、
反応を2時間40℃において続けた。最後に、サンプルを
DI水中で大規模に洗浄して乾燥した。同様に表面グラフ
トされたマトリックスであってコラーゲンの固定化に使
用されなかったものを対照として用いた。染料取り込み
の違いは視覚上で明確であった。表面修飾化学を考察す
るに、これらの基は固定化コラーゲンのみに由来しえ
た。
いて、表面グラフトマトリックスの外部部分中の固定化
コラーゲンの存在を確認した。クマジーブルー染色は、
1mlのクマジーブルー中の4mmディスクを30分間浸潤す
ることにより実施した。そのあと、サンプルはDI水で大
規模に洗浄して乾燥した。同様に表面グラフトされたデ
ィスクであってコラーゲンの固定化に使用されなかった
ものを対照として用いた。染料取り込みの違いは視覚上
で明確であった。
コート(2−4nm)する前に、加工された表面はEFG-SE
M(フィールド放射ガンスキャニング電子顕微鏡)を用
いることにより2kVで操作して試験した。押出55D PELL
ETHANEポリウレタン材料は平面の材料である。アクリル
酸でグラフトされた材料は透過性マトリックス様構造を
呈する。次にコラーゲン固定化は、重層された表面層で
この表面マトリックスを覆うらしい。この表面層のベル
ベット様の外観は図4に示される。
された他の分析技術はFT-IR分光であった。この技術
は、加工されたサンプルの最上の0.2-1nm表面層の分析
を可能にする。コラーゲン原材料、アクリル酸グラフト
55Dおよびコラーゲン固定化サンプルのFT-IRスペクトル
を比較した。コラーゲン固定化サンプルのスペクトル
は、明らかにアクリル酸グラフトおよびコラーゲン原材
料の両方の特徴を含んだ。ほとんどの特徴は、約1635nm
および1660nmにおけるコラーゲン相関ピークの上昇であ
った。これにより、表面最上層中のコラーゲンの存在が
確認された。
角度(TOA)に依存して表面1.5-10nmの最上層定量要素
分析を可能にする。XPS分析は35°のターンオフ角度
(TOA)で実施し、約3.0nm分析深度を考慮した。これら
分析の結果を以下の表4−7に示す。
XPSは、コラーゲンが首尾よく表面グラフトマトリッ
クスにカップリングされたことを示した。固定化された
コラーゲンおよびコラーゲン基準のスペクトルが極めて
類似しているのは、上記表のとおりである。このこと
は、表面部分(3nm)が主としてコラーゲンからなるこ
とを示し、図2に示された表面モデルが正確であること
を確証する。
析深度は変更可能であり、そして即ち、コラーゲン上層
の厚さに関するより多くの情報を得ることができる。以
下の表において、表面の組成並びに誘導化された化学官
能基が分析深度の函数としてのコラーゲン固定化サンプ
ルを示す。
た。酸素および窒素が共に外部表面に対し、特に3nm深
度外部から減少し、窒素濃度の低下はより険しい。
能基を示す。もっとも外側の表面の炭素は、C−C,C
−HおよびC−O(H)結合中に豊富である。窒素はC
−NH−C結合中に豊富であり、そして酸素はC−OH
結合中に豊富である。このことは、コラーゲンのアミノ
酸プロリンおよびヒドロキシプロリンが最も外部の表面
において増加した濃度で存在するらしいことを示唆す
る。後者の観察は、コラーゲンの固定化がコラーゲン分
子の再配向を伴うことを示唆する。
水の絶対濃度は深度により不変のままらしいことから、
コラーゲン構造の欠くことのできない部分であることが
示される。カルボキシル官能基は60Å以下で顕著にな
り、コラーゲン基準物質は最も深い分析深度即ち70Åに
おけるコラーゲンコーティング上に見いだされるのと類
似のカルボキシル官能基濃度を示した。さらに分析深度
を増加させると、コラーゲンとポリ(アクリル酸)鎖の
ブレンドからなる中間層は主要なアクリル酸ベースの表
面グラフトマトリックスより優ることが期待される。
た表面モデルと完全に一致する。この研究は、少なくと
も70Åの明白なコラーゲン上層の存在を証明した。60Å
の深度においてはカルボキシル官能基の濃度は進歩的に
増加し始めたことから、深度の増加に伴い、コラーゲン
層はその完全性を損失し始め、そして表面グラフトマト
リックスを形成するコラーゲンとポリ(アクリル酸)ブ
レンドへとシフトすることが期待される。表面グラフト
マトリックスにおける幾つかの深度において、表面グラ
フトマトリックス内において実質的にはコラーゲンが見
いだされないことが期待される。
タイムオブフライトの二次イオン質量分光測定(Time-o
f-Flight Secondary Ion Mass Spectrometry:ToF-SIM
S)を用いて、加工されたコラーゲンを固定化したサン
プルの表面の調査もした。ToF-SIMSにおいては、サンプ
ルの表面はエネルギー粒子の初期ビーム、通常はイオン
を浴びせられる。これにより、ポジティブおよびネガテ
ィブ電荷の原子種および分子種を含む二次粒子の範囲の
放射がもたらされる。これらの二次イオンは次に質量分
析されて要素に関する情報および詳細な化学構造の情報
を提供する。
豊富な配列を示したことから、ToF-SIMS試験の結果はコ
ラーゲン上層の存在も確証した。非特異的ペプチド/蛋
白質の特性に加えて、スペクトルは特定のアミノ酸残基
のより特徴的なn含有シグナルの豊富な配列を示す。コ
ラーゲン上層はコラーゲン基準のものとは異なる最外部
表面の化学を示した。N含有種は明らかに存在するが、
これらはコラーゲン基準に比してコラーゲンコーティン
グに関する相対的に高い比率のC/HおよびC/H/O
含有種であるらしい。このことは、不完全なコラーゲン
上層または極めて薄いコラーゲン上層の何れか、または
固定化によるコラーゲン分子の幾つかの再配向を示す。
は、アミノ酸残基プロリンおよびヒドロキシプロリンが
表面において増加した濃度で存在するという同様の観察
により強調される。
おける記載に従い調製された(100重量%アクリル酸モ
ノマーを用いて表面グラフトマトリックスを調製)。以
下に論じられるとおり、インビボ性能を調査し、そして
アクリル酸グラフト55D(55-AA)およびプレイン55Dサ
ンプル(55D)と比較された。
フォードラット(グロニンゲン大学(Groningen,オラ
ンダ)において育種)をエーテル麻酔した。背部を剃髪
して、70%エタノールで消毒した。6つの皮下ポケット
を、右および左の3つの正中線切り口に対して作成し
た。55D、55D-AAおよび55D-CCのディスク(3mm直径)
を皮下のポケットに移植した。その後、切り口を一つの
縫合糸で閉じた。
日、5日、10日そして3週間および6週間後に屠殺し
た。特定の時間点において、ディスクを回りの組織と共
に注意深く切り出した。全ての切り出された検体は、PB
S(pH7.4)中の2%(v/v)グルタルアルデヒド中に浸
潤固定した。後固定は、PBS中の1%OsO4および1.5% K
4Fe(CN)6で実施し、次に検体をグレードのアルコールで
脱水してEPON 812(runschwig chemie,Amsterdam、オ
ランダ)に浸した。光分光測定(LM)の前にやや薄いセ
クション(1μm)の評価を準備して1分間トルイジン
ブルーで典型的に染色して、その後、染料を洗い流し
た。
-CCが移植後により強い組織応答を誘発したことが示さ
れた。これにより、2日後および5日後にも観察されう
るマクロファージおよび顆粒球の薄層がもたらされた。
この強いマクロファージおよび顆粒球の反応が免疫反応
ではないことは明白であるが、なぜなら、より遅い時間
点においては材料と組織の間への白血球の顕著な侵入が
観察されなかったからである。
に連続せず、即ち、55D-CCは55Dおよび55D-AAに比して
類似のまたはより薄い組織カプセルを有した。これらの
結果は、体の応答との生物学的相互作用の結果として、
55D-CCがより速い創傷治癒応答を促進することが示され
るかもしれない。55D-CC表面上のフィブリン形成が主要
な役割を演じるらしいことから、55D-CCは凝血を促進す
るらしい。
表面グラフトマトリックスとバイオ分子の両者と共有カ
ップリングしたリンカー分子を通して主要表面グラフト
マトリックスの外部部分内にカップリングされる、本発
明に関して有用なリンカー分子の例は、例えばアミン官
能ポリマーポリエチレンイミン(PEI)またはポリア
リールアミン(PALLA)を含む。これらの化合物
は、表面グラフトマトリックス内に大多数のバイオ分子
を固定化するのに有用でありうるペンダントアミン官能
基を含む。
して表面グラフトま実質的に包囲した。次に、PEIを
用いて抗−凝血薬剤ヘパリンを表面固定化した。
じられたとおりに100重量%アクリル酸モノマーおよび7
0重量%アクリル酸モノマーおよび30重量%アクリルア
ミドモノマーを用いてアクリル酸モノマーにより表面グ
ラフトした。次に、表面グラフトサンプルをpH=3.0に
緩衝された0.05M酒石酸溶液(酒石酸二ナトリウム)に
30分間室温にて浸した。DI水による3回の洗浄後、サン
プルを0.1重量%のPEIおよび0.01MのEDC(pH=4)溶
液に15分間浸した。
グが連続的に実施されるか否かを確認した。アニオン性
染料のポンソーS(PS)の取り込みはPEIの存在を
示唆する。グラフト表面自身を対照として用いた。染料
取り込みの違いは視覚上明らかであった。PEIが共有
カップリングされたことを確認するために、サンプルは
1重量%水性SDSに3日間60℃において浸したとこ
ろ、PEIとSDSの強い相互作用のために、ルーズに
結合したPEIは表面から脱離された。対照の表面はカ
ップリング試薬EDCおよびNHSの不在下においてP
EIに暴露されたところ、この場合において、PEIの
存在は単純な吸着により考慮されうるのみであった。S
DS処理前は2つの材料におけるPSの取り込みの違い
は顕著でなかったが、SDS処理後は、吸着PEIを有
するサンプルはそれ以上のPSの取り込みを示さなかっ
た。対照的に、共有固定化したPEIを有するサンプル
は初期の染料取り込みから顕著な変化を示さなかった。
DSおよびDI水で洗浄して吸着PEIを除去した後、硝
酸により分解された(NAD-)ヘパリン(CARMEDA,Stock
holm,スエーデンから得た)のカップリングを実施し
た。「PEIでキャップした」サンプルは、1mg/mlのN
AD-ヘパリンおよび1mMのNaCNBH3の0.2M酢酸バッファ
ー溶液(pH=4.6)に浸した。反応は、2時間50℃にお
いて実施した。最後に、加工されたサンプルを1M NaC
lおよびDI水による3回の洗浄により清浄化し、サンプ
ルを空気中で室温にて乾燥した。
プルをカチオン性染料ツルイシンブルーO(TB)で染
色した。ヘパリンの存在は青色から紫色への異染性シフ
トにより示された。初期グラフトのみは青色を示した
が、TB暴露後に暗い紫色になり、ヘパリン化表面は明
白な明るい紫色へのシフトを示した。この発色のシフト
はヘパリンの表面カップリングの成功を示唆する。PS
の取り込みは、明らかにヘパリンカップリングの結果と
して低下し、このことからヘパリンの存在が確認される
と共に、ヘパリンのカップリングが表面のカチオン性を
低下させる。
ラフトマトリックスの外部部分内への配置を確証した。
加工されたサンプルは15kVにおいて操作されたSE
Mにより試験され、SEM分析の前にサンプルは金でス
パッターコートされた。不十分な乾燥法のために引き起
こされたかもしれない検体の損傷のため、幾つかの表面
の欠点が誘発されて初期表面グラフトマトリックスを包
囲するさやを暴露した。表面の欠点において、初期表面
グラフトマトリックスの構造がうまく認識されうる。
調査された。PEI中間層によるヘパリン化は1000-106
0cm-1領域における付加的なピークの出現をもたらし
た。これらのピークはイオウ酸基のS−O範囲の特徴で
あり、この場合、固定化ヘパリン分子を起源とする。15
30-1730cm-1領域において観察された変化は表面固定化
PEIに帰しうるものであり、例えば1560cm-1のピーク
はアミドのN−Hの(平面上)ベンドに関する特徴であ
る。
れた。ヘパリン固定化サンプルはグラフト表面において
顕著なヘパリン濃度を示した。
やにカップリングしうることが示され、これはインビト
ロバイオアッセイにより確認された。表面グラフトマト
リックスの外部部分内のそれらの位置により、固定化ヘ
パリン分子はより容易に接近可能であり、そして即ち高
められたバイオ活性を示すことが期待される。このこと
は、下層のアニオン性表面グラフトマトリックスの撥水
性に入り示唆され、表面グラフトマトリックス内へのヘ
パリン分子の侵入を阻害する。
グラフト材料の(ポリカチオン性)抗微生物剤ゲンタマ
イシン装填能力に顕著に影響しないことが示された(表
12)。ゲンタマイシンの装填は、pH6.0に調節された
0.5mg/mlのゲンタマイシン塩基(硫酸ゲンタマイシンと
してSigma Chemie,Bornem,ベルギーから提供された)
の0.01M MESバッファー溶液へのサンプルの浸潤、続く
1N NaOHの滴下、30分により実施した。DI水で洗浄
後、サンプルは包囲温度における空気への暴露により乾
燥した。
用されるゲンタマイシン溶液は装填前と後にそのゲンタ
マイシン含有量を測定するために分析された。これはTN
BSアッセイを用いて実施されたが、その際ゲンタマイシ
ン含有溶液は0.1M硼酸の添加によりpH9に調節され
て、その後、25μlの0.03M水性TNBSをサンプル溶液ml
あたり加えた。サンプルの浸潤前と後のゲンタマイシン
含有量の違いを測定して、装填されるゲンタマイシンの
量に関する標準として用いられた。装填されるゲンタマ
イシンの量はμg/cm2として表示されて、以下の表12
に記録される。
PEIの大多数は表面グラフトマトリックスの外部部分
に見いだされ、即ち、PEIはマトリックス上において
相対的に薄い外部さやを形成したことが示唆された。P
EIが表面グラフトマトリックスを通して分散したなら
ば、グラフトマトリックスへのPEI分子の侵入により
表面グラフトマトリックスのネガティブ荷電の多くが中
和されるように、表面グラフトマトリックスがゲンタマ
イシンを装填する能力を減じることが期待される。
ン酸バッファー塩(PBS,pH7.4)中にゲンタマイシン装
填サンプルを浸すことにより実施したが、実験を通じて
体積対表面比率1:1(ml:cm2)を典型的に使用し
た。所望の時間点において、サンプルを溶液から引き出
し、新鮮なPBSに浸した。上記で論じられたTNBSアッセ
イ手段により溶液サンプルのゲンタマイシン含有量を分
析した。
の放出プロフィールに顕著に影響しなかった。最初の破
裂後、約2週間後までゲンタマイシンの放出は進行し
た。
ビトロ抗菌活性を評価した。スタフィロコッカスアウリ
ウスの1株(コードPW230693)を実際の電極関連感染か
ら得て抗菌活性試験に使用した。この株はゲンタマイシ
ン感受性と決定された。
haneサンプルを酸化エチレンに暴露して滅菌した、抗菌
活性は阻害ゾーン試験により測定した。自己感作試験
(isosensitest)寒天プレート(Oxoid Ltd,Hampshir
e,英国)にバクテリアを植菌したが、その際典型的に
は±104のスタフィロコッカスアウリウス/ml塩の懸濁液
を使用した。次に、試験材料を適用して(8mmディス
ク)、ゲンタマイシン装填タブレットであるGenta-neo-
sensitab(Rosco Diagnostica,Taastrup,デンマー
ク)をポジティブコントロールとして用いた。ゲンタマ
イシンを有さない表面グラフトされたヘパリン化サンプ
ルをネガティブコントロールとして用いた。次に寒天プ
レートを一晩37℃においてインキュベートした。次の日
に、プレートをインキュベーターから取り出して各サン
プルの回りのバクテリア不在ゾーンを測定した。バクテ
リアの成長および阻害領域は視覚上で明白であった。
キュベート終了後、阻害ゾーンを測定したところグラフ
トされたゲンタマイシン装填された(PUGS)に関しては
360mm2であり、そしてグラフト/ヘパリン化およびゲン
タマイシン装填サンプル(PUhep/GS)に関しては350mm2
であった。非装填材料は抗菌活性を示さなかった。
記特定の態様および実施例に関連して記載されたが、本
発明はそれらに限定される必要がないこと、および、そ
れら態様、実施例および使用法とは別の莫大な態様、実
施例、使用法、修飾および変更は特許請求の範囲により
包含されることを意図する。各特許および文献の全開示
は引用により本明細書の一部をなす。
面グラフトマトリックスの断面図である。
フトマトリックスの断面図である。
フトマトリックスの断面図であり、表面グラフトマトリ
ックスは薬剤を装填している。
トした表面グラフトマトリックスの表面外観の模写図で
ある。
Claims (35)
- 【請求項1】 a)装置上に位置するカルボキシル基か
らなる、外部部分を含む表面グラフトマトリックス;お
よび b)表面グラフトマトリックスに共有カップリングした
一つ以上のバイオ分子からなるが、但しバイオ分子の大
多数は表面グラフトマトリックスの外部部分内に位置す
ることを特徴とする、医学装置。 - 【請求項2】 大多数のバイオ分子が表面グラフトマト
リックスの外部部分の約10nmの範囲内に位置する、請求
項1記載の装置。 - 【請求項3】 バイオ分子が、抗トロンビン剤、抗菌
剤、抗炎症剤、成長因子、サイトカイン、天然または合
成蛋白質、ペプチド、アミノ酸およびそれらの混合物か
らなる群から選択される、請求項1記載の装置。 - 【請求項4】 バイオ分子が、コラーゲン、アルブミ
ン、フィブリノーゲン、ラミニン、ビトロネクチン、フ
ィブロネクチン、RGD含有ペプチド、ヘパリン、硫酸
ヘパリン、フィブロブラスト成長因子(FGF),イン
スリン様成長因子、神経成長因子、インターフェロン
(IFN)、腫瘍ネクローシス因子(TNF)、インタ
ーロイキン、ゼラチン、エラスチン、フィブリン、フォ
ンワイルブランド因子、硫酸デルマタン、ヒアルウロン
酸、硫酸デキストランおよびそれらの混合物からなる群
から選択される、請求項3記載の装置。 - 【請求項5】 アクリル酸、メタクリル酸、イタコン
酸、トランス−桂皮酸、クロトン酸、リノール酸、リノ
レン酸、マレイン酸、ソルビン酸およびそれらの混合物
からなる群から選択されるカルボキシル官能モノマーか
ら表面グラフトマトリックスを調製する、請求項1記載
の装置。 - 【請求項6】 カルボキシル官能モノマーおよびカルボ
キシル官能基を含まないビニルモノマーから表面グラフ
トマトリックスを調製する、請求項1記載の装置。 - 【請求項7】 アクリル酸モノマーおよびアクリルアミ
ドモノマーから表面グラフトマトリックスを調製する、
請求項6記載の装置。 - 【請求項8】 さらに、表面グラフトマトリックス中に
薬剤を含む、請求項1記載の装置。 - 【請求項9】 薬剤が、抗微生物剤、抗菌剤、抗凝血
剤、抗トロンビン剤、血小板製剤、抗炎症剤、生物リガ
ンドとして機能する染料、ステロイド、酵素、触媒、ホ
ルモン、成長因子、薬剤、ビタミン、抗体、抗原、核
酸、ペプチド、DNAおよびRNAセグメント、および
それらの混合物からなる群から選択される、請求項8記
載の装置。 - 【請求項10】 a)装置上に位置するカルボキシル基
からなる、外部部分を含む表面グラフトマトリックス; b)表面グラフトマトリックスに共有カップリングした
一つ以上のリンカー分子であって、但しバイオ分子の大
多数は表面グラフトマトリックスの外部部分内に位置し
ているリンカー分子;および c)リンカー分子に共有カップリングした一つ以上のバ
イオ分子からなる、医学装置。 - 【請求項11】 大多数のリンカー分子が表面グラフト
マトリックスん外部部分の約10nm内に位置する、請
求項10記載の装置。 - 【請求項12】 カップリング前のリンカー分子がアミ
ン官能化合物である、請求項10記載の装置。 - 【請求項13】 アミン官能化合物がポリエチレンイミ
ン、ポリアルキルアミン、およびそれらの混合物からな
る群から選択される、請求項12記載の装置。 - 【請求項14】 バイオ分子が、抗トロンビン剤、抗菌
剤、抗炎症剤、成長因子、サイトカイン、天然または合
成蛋白質、ペプチド、アミノ酸およびそれらの混合物か
らなる群から選択される、請求項10記載の装置。 - 【請求項15】 バイオ分子が、コラーゲン、アルブミ
ン、フィブリノーゲン、ラミニン、ビトロネクチン、フ
ィブロネクチン、RGD含有ペプチド、ヘパリン、硫酸
ヘパリン、フィブロブラスト成長因子(FGF),イン
スリン様成長因子、神経成長因子、インターフェロン
(IFN)、腫瘍ネクローシス因子(TNF)、インタ
ーロイキン、ゼラチン、エラスチン、フィブリン、フォ
ンワイルブランド因子、硫酸デルマタン、ヒアルウロン
酸、硫酸デキストランおよびそれらの混合物からなる群
から選択される、請求項14記載の装置。 - 【請求項16】 アクリル酸、メタクリル酸、イタコン
酸、トランス−桂皮酸、クロトン酸、リノール酸、リノ
レン酸、マレイン酸、ソルビン酸およびそれらの混合物
からなる群から選択されるカルボキシル官能モノマーか
ら表面グラフトマトリックスを調製する、請求項10記
載の装置。 - 【請求項17】 カルボキシル官能モノマーおよびカル
ボキシル官能基を含まないビニルモノマーから表面グラ
フトマトリックスを調製する、請求項10記載の装置。 - 【請求項18】 アクリル酸モノマーおよびアクリルア
ミドモノマーから表面グラフトマトリックスを調製す
る、請求項17記載の装置。 - 【請求項19】 さらに、表面グラフトマトリックス中
に薬剤を含む、請求項10記載の装置。 - 【請求項20】 薬剤が、抗微生物剤、抗菌剤、抗凝血
剤、抗トロンビン剤、血小板製剤、抗炎症剤、生物リガ
ンドとして機能する染料、ステロイド、酵素、触媒、ホ
ルモン、成長因子、薬剤、ビタミン、抗体、抗原、核
酸、ペプチド、DNAおよびRNAセグメント、および
それらの混合物からなる群から選択される、請求項19
記載の装置。 - 【請求項21】 (a)医学装置の表面上にカルボキシ
ル官能基からなる表面グラフトマトリックスを形成し; (b)表面グラフトマトリックスのpKaより低いpH
を有する水溶液で表面グラフトマトリックスを処理し;
そして (c)表面グラフトマトリックスのpKaより低いpH
を有する水溶液中の表面グラフトマトリックスに一つ以
上のバイオ分子を共有カップリングするが、但し、大多
数のバイオ分子は表面グラフトマトリックス内に位置す
ることからなる、医学装置の表面修飾法。 - 【請求項22】 工程bおよびcの溶液のpHが約5.
5より大きくない、請求項21記載の方法。 - 【請求項23】 表面グラフトマトリックスの形成工程
が、さらに、表面グラフトマトリックスのpKaより低
いpHを有する溶液中で表面グラフトマトリックスを形
成することからなる、請求項21記載の方法。 - 【請求項24】 さらに、表面グラフトマトリックスの
pKaより大きいpHを有する水溶液中で形成された表
面グラフトマトリックスを洗浄することを含む、請求項
23記載の方法。 - 【請求項25】 バイオ分子が、抗トロンビン剤、抗菌
剤、抗炎症剤、成長因子、サイトカイン、天然または合
成蛋白質、ペプチド、アミノ酸およびそれらの混合物か
らなる群から選択される、請求項21記載の方法。 - 【請求項26】 アクリル酸、メタクリル酸、イタコン
酸、トランス−桂皮酸、クロトン酸、リノール酸、リノ
レン酸、マレイン酸、ソルビン酸およびそれらの混合物
からなる群から選択されるカルボキシル官能モノマーか
ら表面グラフトマトリックスを調製する、請求項26記
載の方法。 - 【請求項27】 カルボキシル官能モノマーおよびカル
ボキシル官能基を含まないビニルモノマーから表面グラ
フトマトリックスを調製する、請求項21記載の方法。 - 【請求項28】 (a)医学装置の表面上にカルボキシ
ル官能基からなる表面グラフトマトリックスを形成し; (b)表面グラフトマトリックスのpKaより低いpH
を有する水溶液で表面グラフトマトリックスを処理し; (c)表面グラフトマトリックスのpKaより低いpH
を有する水溶液中の表面グラフトマトリックスに一つ以
上のリンカー分子を共有カップリングするが、但し、大
多数のリンカー分子は表面グラフトマトリックス内に位
置し;そして (d)リンカー分子に一つ以上のバイオ分子を共有カッ
プリングすることからなる、医学装置の表面修飾法。 - 【請求項29】 工程bおよびcの溶液のpHが約5.
5より大きくない、請求項28記載の方法。 - 【請求項30】 表面グラフトマトリックスの形成工程
が、さらに、表面グラフトマトリックスのpKaより低
いpHを有する溶液中で表面グラフトマトリックスを形
成することからなる、請求項28記載の方法。 - 【請求項31】 さらに、表面グラフトマトリックスの
pKaより大きいpHを有する水溶液中で形成された表
面グラフトマトリックスを洗浄することを含む、請求項
30記載の方法。 - 【請求項32】 バイオ分子が、抗トロンビン剤、抗菌
剤、抗炎症剤、成長因子、サイトカイン、天然または合
成蛋白質、ペプチド、アミノ酸およびそれらの混合物か
らなる群から選択される、請求項28記載の方法。 - 【請求項33】 アクリル酸、メタクリル酸、イタコン
酸、トランス−桂皮酸、クロトン酸、リノール酸、リノ
レン酸、マレイン酸、ソルビン酸およびそれらの混合物
からなる群から選択されるカルボキシル官能モノマーか
ら表面グラフトマトリックスを調製する、請求項28記
載の方法。 - 【請求項34】 カルボキシル官能モノマーおよびカル
ボキシル官能基を含まないビニルモノマーから表面グラ
フトマトリックスを調製する、請求項28記載の方法。 - 【請求項35】 装置上にカルボキシル官能基を有す
る、表面グラフトマトリックスを含む医学装置に体を接
触させるが、但し、表面グラフトマトリックスは一つ以
上のバイオ分子の大多数がカップリングされている外部
部分を含み、そして装置を最初に体に接触させる際に薬
剤が表面グラフトマトリックス内に位置する、薬剤送達
法。
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