JPH11139979A - 免疫系抑制用組成物 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 【解決手段】 田七人参の抽出エキスを有効成分とする
免疫系抑制用組成物。 【効果】 当該抽出エキスは免疫抑制作用を有し、これ
を摂取することによって過剰に働く免疫系が抑制され生
体の恒常性が維持される。本発明の免疫系抑制用組成
物、特に免疫抑制剤および機能性食品は、免疫系に関す
る各種の疾患、例えば接触性過敏症、慢性関節リウマ
チ、気管支端息等のアトピー性疾患等の予防および治療
に有用である。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【発明の属する技術分野】本発明は、田七人参または田
七人参の組織培養物から得られるエキスの新規用途、特
に免疫抑制剤および機能性食品に関する。

【０００２】

【従来の技術】田七人参（Panax notoginseng ）は、中
国の雲南省東南部から広西省西南部の限られた山林に、
まれに生える植物であり、雲南省では現在栽培されてい
る。中国では、臨床的に止血作用、抗真菌作用、強心作
用が認められていて、肝炎にも用いられてきた。

【０００３】近年の研究からも、田七人参から得られた
サポニンに抗高血圧効果があること（CLINICAL AND EXP
ERIMENTAL PHARMACOLOGY AND PHYSIOLOGY. SUPPLEMENT,
S297-299, 1995 ）、抗炎症効果があること（CHUNG-KU
O CHUNG HIS I CHIEH HO TSACHIH, 14, 35-36, 199
4）、また田七人参から得られた多糖類に免疫賦活作用
があること（PHARMACEUTICAL RESEARCH, 13, 1196-120
0, 1996）等が報告されている。しかし現在まで、田七
人参の抽出エキスの免疫抑制効果に関する報告はされて
いない。

【０００４】一方、田七人参のカルスの誘導方法、また
は培養方法について、Zheng らにより報告（Chinese Jo
urnal of Biotechnology, 5, 47-53, 1989）されている
が、培養して得られた培養物、または培養物から抽出さ
れたエキスに免疫抑制効果があることは示されていな
い。

【０００５】従って、現在までに、田七人参の組織培養
物の抽出エキスに、免疫抑制効果を認める、または免疫
抑制効果を有することを類推しうる報告はされていな
い。

【０００６】

【課題を解決するための手段】本発明者らは、鋭意研究
を重ねた結果、田七人参またはその組織培養物から得ら
れるエキスが優れた免疫抑制効果を有することを見出
し、本発明を完成するに至った。

【０００７】すなわち、本発明は、田七人参またはその
組織培養物から抽出されるエキスを有効成分とする免疫
系抑制用組成物であり、特に免疫抑制剤および機能性食
品である。

【０００８】

【発明の実施の形態】本発明の免疫系抑制用組成物の有
効成分であるエキスは、田七人参または田七人参の組織
培養物を溶媒抽出することにより得られ、例えば以下に
述べる第１法または第２法により製造することができ
る。

【０００９】〔第１法〕田七人参自体から、溶媒を用い
て直接抽出する方法。抽出に用いる溶媒としては、水や
アルコールを用いることができ、アルコールとしてメタ
ノール、エタノール、プロパノール、ブタノール等を用
いることができる。また、これらの溶媒を任意の比率で
混合した混合溶媒を用いることもできるが、水、エタノ
ール、または水とエタノールとの混合溶媒を用いること
が好ましく、その混合比率は通常、アルコール濃度で５
％〜９５％、好ましくは２０％〜９０％である。溶媒
は、田七人参１ｇに対して、３〜２００ｍｌ、好ましく
は５〜３０ｍｌを用いて抽出する。

【００１０】抽出に際しては、田七人参を１８号ふるい
（８５０μｍ）を通る粗末に粉砕し、あるいは８．６号
ふるい（２０００μｍ）を通る細切に切断することが好
ましい。抽出方法は、熱を加え還流法で抽出することが
好ましいが、静置により抽出してもよい。また抽出時間
はいずれの抽出溶媒を用いた場合でも、より長いほうが
好ましい。例えば水溶媒による還流法では３０分で充分
であるが、特に限定はされない。

【００１１】〔第２法〕 ａ．田七人参の任意の組織を摘出する工程、および ｂ．摘出した田七人参の任意の組織、または摘出した田
七人参の任意の組織を組織培養して得られた培養物を溶
媒で抽出してエキスを得る工程を含む方法。

【００１２】上記工程ａにおいて摘出され得る田七人参
の組織としては、主根、側根、葉、茎、花等が挙げられ
る。

【００１３】上記工程ａで摘出した任意の組織を組織培
養する場合、組織培養で用いる培地としては、ムラシゲ
スクーグ（ＭＳ）培地、リンスマイヤースクーグ（Ｌ
Ｓ）培地、ガンボルグＢ５（Ｂ５）培地等の一般に使用
される植物組織培養用培地のいずれかの培地を使用する
ことができ、固体培地および液体培地を使用できる。こ
れら培地には、無機成分、炭素源、ビタミン類、アミノ
酸類が通常添加される量にて添加され得る。

【００１４】無機成分としては、窒素、リン、カリウ
ム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マンガ
ン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、コバル
ト等の元素を含む無機塩を挙げることができる。炭素源
としては、ショ糖等の炭水化物とその誘導体、脂肪酸等
の有機酸およびエタノール等の第一級アルコール等を例
示できる。ビタミン類としては、ビオチン、チアミン
（ビタミンＢ₁ ）、ピリドキシン（ビタミンＢ₆ ）、ピ
リドキサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウ
ム、アスコルビン酸（ビタミンＣ）、イノシトール、ニ
コチン酸、ニコチン酸アミド、リボフラビン（ビタミン
Ｂ₂ ）等を挙げることができる。アミノ酸類としては、
グリシン、アラニン、グルタミン酸、システイン、チロ
シン、アスパラギン酸、アミドアルギニン、リジン等を
挙げることができる。

【００１５】上記工程ｂにおいては、上記の培地にオー
キシンやサイトカイニン等のホルモンを添加して組織培
養を行う。

【００１６】オーキシンとしては、インドール−３−酢
酸（ＩＡＡ）、１−ナフタレン酢酸（ＮＡＡ）、インド
ール酪酸（ＩＢＡ）および２，４−ジクロロフェノキシ
酢酸（２，４−Ｄ）が使用され得る。サイトカイニンと
しては、カイネチン（Ｋｉ）、ゼアチンおよび６−ベン
ジルアデニン（ＢＡ）が使用され得る。

【００１７】これらホルモンの培地への添加濃度は、オ
ーキシンでは０．０１〜１０ｐｐｍ、好ましくは０．１
〜３ｐｐｍであり、サイトカイニンでは０．０１〜１０
ｐｐｍ、好ましくは０．１〜３ｐｐｍである。これらホ
ルモンに加えて、さらにアブシジン酸（ＡＢＡ）、ジベ
レリン酸（ＧＡ）等の他のホルモンを併用して添加して
もよい。

【００１８】上記工程ｂにおいて、組織培養における培
養温度は、好ましくは１５℃から３０℃、さらに好まし
くは２０℃から２５℃、最も好ましくは２５℃である。
培養期間は、好ましくは７日から３ヶ月程度で、さらに
好ましくは３週間から６週間である。

【００１９】組織培養は、静置培養法、振とう培養法、
回転培養法、攪拌培養法等により行うことができる。上
記工程ｂでは、工程ａで得られた田七人参の任意の組織
またはその組織を上記の方法で組織培養して得られた培
養物を、水または有機溶媒で抽出する。本工程中の培養
物は、培養後、培地と分離した生培養物を用いてもよ
く、また低温（例えば４℃）で保存した生培養物でもよ
く、さらに生培養物を乾燥させたものを用いてもよい。

【００２０】抽出に用いる溶媒としては、水やアルコー
ルを用いることができ、アルコールとしてメタノール、
エタノール、プロパノール、ブタノール等を用いること
ができる。また、これらの溶媒を任意の比率で混合した
混合溶媒を用いることもできるが、水、エタノール、ま
たは水とエタノールとの混合溶媒を用いることが好まし
く、その混合比率は通常アルコール濃度で５％〜９５
％、好ましくは２０％〜９０％である。溶媒は、培養物
１ｇに対して、３〜２００ｍｌ、好ましくは５〜３０ｍ
ｌを用いて抽出する。

【００２１】抽出方法は、熱を加え還流法で抽出するこ
とが好ましいが、静置により抽出してもよい。また抽出
時間は、いずれの抽出溶媒を用いた場合でも、より長い
ほうが好ましいが、例えば水溶媒による還流法では３０
分で充分であり、特に限定はされない。

【００２２】以上のようにして得られた、田七人参また
は田七人参組織培養物の抽出エキスは任意の濃度に濃縮
して使用することができ、また、凍結乾燥法等の公知の
方法を用いて乾燥し固形物質として使用することができ
る。

【００２３】以上のようにして得られた、田七人参また
は田七人参組織培養物の抽出エキスは、免疫系を抑制す
る作用を有しており、この抽出エキスを有効成分とする
免疫系抑制用組成物は、特に免疫抑制剤として、あるい
は免疫抑制効果を有する機能性食品として用いることが
できる。

【００２４】本発明の免疫抑制用組成物を免疫抑制剤と
して用いる場合、製薬上許容される担体または添加物と
混合し、公知の方法を用いて、散剤、顆粒剤、錠剤、丸
剤、カプセル剤、液剤、乳剤、懸濁剤、シロップ剤、ト
ローチ剤、座剤、点眼剤、注射剤、エアゾール剤、エリ
キシル剤等の投与に適した形態に製剤化することができ
る。

【００２５】製薬上許容される担体または添加物として
は、賦形剤（例えば、デンプン、ブドウ糖、果糖、ソル
ビトール、マンニトール、カルボキシメチルセルロー
ス、カルボキシメチルセルロースカルシウム、乳糖、シ
ョ糖、ヒドロキシプロピルセルロース、炭酸マグネシウ
ム、酸化マグネシウム、リン酸カルシウム）、結合剤
（例えば、アラビアゴム、カルボキシメチルセルロー
ス、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ゼラチ
ン、デキストリン、ヒドロキシプロピルセルロース、ポ
リビニルピロリドン、ポリエチレングリコール、デンプ
ン、ショ糖）、崩壊剤（例えば、カルボキシメチルセル
ロース、カルボキシメチルセルロースカルシウム、デン
プン、ヒドロキシプロピルセルロース）、滑沢剤（例え
ば、ケイ酸マグネシウム、ステアリン酸カルシウム、ス
テアリン酸マグネシウム、タルク）、希釈剤（例えば、
水、食塩水、大豆油、ゴマ油、オリーブ油のような植物
油）、軟膏基剤（例えば、パラフィン、ラノリン、白色
ワセリン）、矯味剤（例えば、ショ糖、単シロップ、ハ
ッカ油、オレンジ油）、保存剤（例えば、パラオキシ安
息香酸メチル、パラオキシ安息香酸エチル、パラオキシ
安息香酸プロピルのようなパラオキシ安息香酸エステル
類、安息香酸ナトリウム）、安定化剤（例えば、アスコ
ルビン酸、亜硫酸水素ナトリウム）、等張化剤（例え
ば、塩化ナトリウム、グリセリン、ブドウ糖、マンニト
ール）等が挙げられる。

【００２６】本発明の免疫抑制剤を投与する対象は、ヒ
ト、ウシ、ウマ、イヌ、ネコ等の哺乳類であり、特にヒ
トを対象とすることが好ましい。

【００２７】本発明の免疫抑制剤は、経口または非経口
的に投与することができ、通常、経口投与する。経口投
与の場合の一般的な投与量は、患者の症状、体重、年
齢、性別等によって異なるが、例えば成人に投与する場
合には、抽出エキスの固形分として１０ｍｇから３００
０ｍｇ相当を１日３回投与する。エキス固形分とは、エ
キスの溶媒を蒸発させた後の残渣をいう。

【００２８】また、本発明の免疫抑制用組成物は、単独
で、あるいは食品衛生上許容される配合物と混合して、
免疫系を抑制する作用を有する機能性食品として使用す
ることができる。

【００２９】上記の食品衛生上許容される配合物として
は、例えば安定化剤、保存剤、着色料、香料、ビタミン
類等が挙げられる。これらの配合物を、上記の田七人参
または田七人参組織培養物の抽出エキスに適宜添加して
混合し、常法により錠剤（タブレット）状、粒状、顆粒
状、粉末状、カプセル状、液状、クリーム状、その他飲
料等の食品に通した形態にして使用することができる。

【００３０】上記の機能性食品中には、上記の田七人参
または田七人参組織培養物の抽出エキスが０．０１から
５０重量％程度、好ましくは０．１から１０重量％程度
の濃度で含有される。

【００３１】上記で得られた、田七人参または田七人参
組織培養物の抽出エキスは優れた免疫抑制作用を有す
る。したがって本発明の免疫系抑制用組成物を、例えば
該抽出エキスを含有する免疫抑制剤または機能性食品等
として摂取することにより、過剰に働く免疫系が抑制さ
れ生体の恒常性が維持される。本発明の免疫系抑制用組
成物、特に免疫抑制剤および機能性食品は、免疫系に関
する各種の疾患、例えば接触性過敏症、慢性関節リウマ
チ、気管支端息等のアトピー性疾患等の予防および治療
に有用である。

【００３２】

【実施例・試験例】以下に、実施例を挙げて本発明を具
体的にかつ詳細に説明するが、本発明はこれら実施例に
よって何ら限定されるものではない。

【００３３】実施例１ 田七人参の主根を滅菌（７０％アルコール水溶液に３０
秒間浸漬し、２％次亜塩素酸ナトリウム水溶液に２０分
間浸漬し、滅菌水にて洗浄）後、切断して厚さ２ｍｍ、
縦・横６ｍｍの切片を得た。この切片を、２，４−Ｄ
（２，４−ジクロロフェノキシ酢酸）１ｐｐｍおよびカ
イネチン０．１ｐｐｍを添加したＭＳ固形培地に植え付
け、２５℃で４週間培養したところカルス化し、脱分化
細胞を得た。

【００３４】次に、この細胞を、ＩＢＡ（インドール酪
酸）２ｐｐｍおよびカイネチン０．５ｐｐｍを添加した
ＭＳ液体培地（培地量５００ｍｌ、フラスコ１Ｌ）で２
５℃、６週間振とう培養し、大量にカルスを得た。培地
とカルスとを分離して、カルスに１０倍量の水を加え、
３０分間還流して抽出した後、固形分比率が５０％（ｗ
／ｗ）になるよう減圧濃縮し、これを組織培養物エキス
として以下の試験例に用いた。

【００３５】実施例２ 天然物の田七人参（福田龍（株）より購入）をブレンダ
ーで破砕し、１０倍量の水を加え、３０分間還流した
後、固形分比率が５０％（ｗ／ｗ）になるよう減圧濃縮
し、これを天然物エキスとして以下の試験例に用いた。

【００３６】試験例１ マウス（ＢＡＬＢ／ｃ、メス、１０週齢）から、脾臓を
摘出して単核細胞浮遊液を得て５％ウシ胎児血清を含む
ＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０⁷ 細胞／ｍｌに調整し
た。

【００３７】テスト区として、この細胞浮遊液５０μｌ
に、培地で溶解した組織培養物エキスを、全体容量で１
５０μｌ、最終濃度で１０００ｐｐｍになるように添加
し、引き続き培地で溶解したコンカナバリンＡ溶液（１
００ｐｐｍ）を１μｇ／ｍｌの濃度になるように加え
た。４４時間培養した後、１μＣｉの ³Ｈ−チミジンを
加えた。さらに４時間培養して、細胞ハーべスターを用
い細胞を吸引濾過して濾紙上にＤＮＡをトラップさせ、
液体シンチレーションカウンターでＤＮＡ中に取り込ま
れた ³Ｈ−チミジンの量を測定した。

【００３８】コントロール区として、組織培養物エキス
を含まない培地のみを同様に添加した実験を行った。ｎ
数は７で試験を行い、結果は平均値と標準偏差で表し
た。その結果、取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量は、コ
ントロール区では８０±１２（ｃｐｍ×１０^-3）、テス
ト区では６１±１０（ｃｐｍ×１０^-3）であった。

【００３９】試験例２ マウス（ＢＡＬＢ／ｃ、メス、１０週齢）から、脾臓を
摘出して単核細胞浮遊液を得て５％ウシ胎児血清を含む
ＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０⁷ 細胞／ｍｌに調整し
た。

【００４０】テスト区として、この細胞浮遊液５０μｌ
に、培地で溶解した天然物エキスを、全体容量で１５０
μｌ、最終濃度で１０００ｐｐｍになるように添加し、
引き続き培地で溶解したコンカナバリンＡ溶液（１００
ｐｐｍ）を１μｇ／ｍｌの濃度になるように加えた。４
４時間培養した後、１μＣｉの ³Ｈ−チミジンを加え
た。さらに４時間培養して、細胞ハーべスターを用い細
胞を吸引濾過して濾紙上にＤＮＡをトラップさせ、液体
シンチレーションカウンターでＤＮＡ中に取り込まれた
³Ｈ−チミジンの量を測定した。

【００４１】コントロール区として天然物エキスを含ま
ない培地のみを同様に添加した実験を行った。ｎ数は７
で試験を行い、結果は平均値と標準偏差で表した。その
結果、取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量は、コントロー
ル区では８２±１０（ｃｐｍ×１０^-3）、テスト区では
７２±８（ｃｐｍ×１０^-3）であった。

【００４２】試験例３ マウス（ＢＡＬＢ／ｃ、メス、１０週齢）から、脾臓を
摘出して単核細胞浮遊液を得て５％ウシ胎児血清を含む
ＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０⁷ 細胞／ｍｌに調整し
た。

【００４３】テスト区として、この細胞浮遊液５０μｌ
に、培地で溶解した組織培養物エキスを、全体容量で１
５０μｌ、最終濃度で１０００ｐｐｍになるように添加
し、引き続き培地で溶解したリポポリサッカライド（E.
coli 0127:B8 ）溶液（１００ｐｐｍ）を５μｇ／ｍｌ
の濃度になるように加えた。４４時間培養した後、１μ
Ｃｉの ³Ｈ−チミジンを加えた。さらに４時間培養し
て、細胞ハーべスターを用い細胞を吸引濾過して濾紙上
にＤＮＡをトラップさせ、液体シンチレーションカウン
ターでＤＮＡ中に取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量を測
定した。

【００４４】コントロール区として組織培養物エキスを
含まない培地のみを同様に添加した実験を行った。ｎ数
は７で試験を行い、結果は平均値と標準偏差で表した。
その結果、取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量は、コント
ロール区では２４±２．２（ｃｐｍ×１０^-3）、テスト
区では１１±１．５（ｃｐｍ×１０^-3）であった。

【００４５】試験例４ マウス（ＢＡＬＢ／ｃ、メス、１０週齢）から、脾臓を
摘出して単核細胞浮遊液を得て５％ウシ胎児血清を含む
ＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０⁷ 細胞／ｍｌに調整し
た。

【００４６】テスト区として、この細胞浮遊液５０μｌ
に、培地で溶解した天然物エキスを、全体容量で１５０
μｌ、最終濃度で１０００ｐｐｍになるように添加し、
引き続き培地で溶解したリポポリサッカライド（E. col
i 0127:B8 ）溶液（１００ｐｐｍ）を５μｇ／ｍｌの濃
度になるように加えた。４４時間培養した後、１μＣｉ
の ³Ｈ−チミジンを加えた。さらに４時間培養して、細
胞ハーべスターを用い細胞を吸引濾過して濾紙上にＤＮ
Ａをトラップさせ、液体シンチレーションカウンターで
ＤＮＡ中に取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量を測定し
た。

【００４７】コントロール区として天然物エキスを含ま
ない培地のみを同様に添加した実験を行った。ｎ数は７
で試験を行い、結果は平均値と標準偏差で表した。その
結果、取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量は、コントロー
ル区では２３±２．０（ｃｐｍ×１０^-3）、テスト区で
は１８±２．１（ｃｐｍ×１０^-3）であった。

【００４８】試験例５ マウス（ＢＡＬＢ／ｃ、メス、１０週齢）から、脾臓を
摘出して単核細胞浮遊液を得て５％ウシ胎児血清を含む
ＲＰＭＩ１６４０培地で１×１０⁷ 細胞／ｍｌに調整し
た。

【００４９】テスト区として、この細胞浮遊液５０μｌ
に、培地で溶解した天然物エキスを、全体容量で１５０
μｌ、最終濃度で１０００ｐｐｍになるように添加し
た。４４時間培養した後、１μＣｉの ³Ｈ−チミジンを
加えた。さらに４時間培養して、細胞ハーべスターを用
い細胞を吸引濾過して濾紙上にＤＮＡをトラップさせ、
液体シンチレーションカウンターでＤＮＡ中に取り込ま
れた ³Ｈ−チミジンの量を測定した。

【００５０】コントロール区として天然物エキスを含ま
ない培地のみを同様に添加した実験を行った。ｎ数は７
で試験を行い、結果は平均値と標準偏差で表した。その
結果、取り込まれた ³Ｈ−チミジンの量は、コントロー
ル区では５±０．８（ｃｐｍ×１０^-3）、テスト区では
５±０．７（ｃｐｍ×１０^-3）であった。

【００５１】試験例６ ５％ウシ胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で培養継
代後３日目のマクロファージセルラインＪ７７４．１細
胞を１×１０⁶ 細胞／ｍｌに調整し、２４ウエルマイク
ロプレートに５００μｌづつ分注した。

【００５２】コントロール区として、培地で溶解した２
００ｐｐｍのリポポリサッカライド（E. coli 0127:B8
）溶液を２５μｌ／ウエルで添加し、５％ＣＯ₂ イン
キュベーターで３時間培養後、培地で洗浄し、リポポリ
サッカライドを取り除き、培地を５００μｌ／ウエルで
加え、引き続き２時間培養した。

【００５３】一方、テスト区はリポポリサッカライド溶
液を同様に添加し３時間培養後、培地で洗浄し、リポポ
リサッカライドを取り除き、培地で溶解した組織培養物
エキスを最終濃度１０００ｐｐｍになるよう５００μ１
／ウエルで加え、引き続き２時間培養した。

【００５４】その後、コントロール区もテスト区も蛍光
ラテックス（ポリサイエンス社製、１．８μｍ）を１細
胞当り２０個になるよう添加し１時間インキュベーショ
ンし、ＰＢＳで洗浄後、細胞を界面活性剤により破砕し
て、蛍光分光光度計で蛍光ラテックス量を測定すること
により１細胞当りの接着または貪食したラテックス量を
求めた。ｎ数は７で試験を行い、結果は平均値と標準偏
差で表した。その結果、コントロール区は１０．２±
０．９３個で、テスト区は７．６±０．６８個であっ
た。

【００５５】試験例７ ５％ウシ胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で培養継
代後３日目のマクロファージセルラインＪ７７４．１細
胞を１×１０⁶ 細胞／ｍｌに調整し、２４ウエルマイク
ロプレートに５００μｌづつ分注した。

【００５６】コントロール区として、培地で溶解した２
００ｐｐｍのリポポリサッカライド（E. coli 0127:B8
）溶液を２５μｌ／ウエルで添加し、５％ＣＯ₂ イン
キュベーターで３時間培養後、培地で洗浄し、リポポリ
サッカライドを取り除き、培地を５００μｌ／ウエルで
加え、引き続き２時間培養した。

【００５７】一方、テスト区はリポポリサッカライド溶
液を同様に添加し３時間培養後、培地で洗浄し、リポポ
リサッカライドを取り除き、培地で溶解した天然物エキ
スを最終濃度１０００ｐｐｍになるよう５００μ１／ウ
エルで加え、引き続き２時間培養した。

【００５８】その後、コントロール区もテスト区も蛍光
ラテックス（ポリサイエンス社製、１．８μｍ）を１細
胞当り２０個になるよう添加し１時間インキュベーショ
ンし、ＰＢＳで洗浄後、細胞を界面活性剤により破砕し
て、蛍光分光光度計で蛍光ラテックス量を測定すること
により１細胞当りの接着または貪食したラテックス量を
求めた。ｎ数は７で試験を行い、結果は平均値と標準偏
差で表した。その結果、コントロール区は１０．１±
０．８５個で、テスト区は８．８±０．７４個であっ
た。

【００５９】臨床例１ 気管支端息の男性２５才に対して、組織培養物エキス３
ｇを清涼飲料水（商品名ポカリスエット、大塚製薬社
製）１００ｍｌに懸濁したものを１日に３回、食間で３
０日間服用したところ、自覚症状の軽減を認めた。この
間、対象者により体感される副作用は認められなかっ
た。

【００６０】臨床例２ 気管支端息の男性１７才に対して、天然物エキス３ｇを
清涼飲料水（商品名ポカリスエット、大塚製薬社製）１
００ｍｌに懸濁したものを１日に３回、食間で３０日間
服用したところ、自覚症状の軽減を認めた。この間、対
象者により体感される副作用は認められなかった。

【００６１】臨床例３ 慢性関節リウマチの女性５８才に対して、組織培養物エ
キス３ｇを清涼飲料水（商品名ポカリスエット、大塚製
薬社製）１００ｍｌに懸濁したものを１日に３回、食間
で３０日間服用したところ、自覚症状の軽減を認めた。
この間、対象者により体感される副作用は認められなか
った。

【００６２】臨床例４ 慢性関節リウマチの女性４３才に対して、天然物エキス
３ｇを清涼飲料水（商品名ポカリスエット、大塚製薬社
製）１００ｍｌに懸濁したものを１日に３回、食間で３
０日間服用したところ、自覚症状の軽減を認めた。この
間、対象者により体感される副作用は認められなかっ
た。

【００６３】実施例３ 天然物エキス２０ｇ、乳糖１００ｇ、トウモロコシデン
プン３６ｇ、結晶セルロース３０ｇ、カルボキシメチル
セルロースカルシウム１０ｇ、ステアリン酸マグネシウ
ム４ｇを均一に混合した。これを単発打錠機にて直径７
ｍｍの杵で１錠３００ｍｇの錠剤とした。

【００６４】実施例４ 組織培養物エキス３ｇ、小麦粉８４ｇ、大豆蛋白３９
ｇ、マーガリン３０ｇ、鶏卵３０ｇ、卵白末１０ｇ、チ
ーズフレーバー４ｇ、セルロース３ｇ、塩化カリウム３
ｇ、重炭酸アンモニウム２．５ｇ、炭酸水素ナトリウム
１．５ｇ、塩化ナトリウム０．５ｇ、Ｌ−アスコルビン
酸８０mg、ピロリン酸第二鉄３５mg、ニコチン酸アミド
１８mg、リボフラビン２mgを水２４mlと混合し、よく練
合した後、分塊、成型して常法によって１７０℃で２０
分間の条件下で、クッキー状（固形）に焼き上げた。

【００６５】

【発明の効果】本発明の免疫系抑制用組成物を、例えば
免疫抑制剤または機能性食品等として摂取することによ
り、過剰に働く免疫系が抑制され生体の恒常性が維持さ
れる。本発明の免疫系抑制用組成物、特に免疫抑制剤お
よび機能性食品は、免疫系に関する各種の疾患、例えば
接触性過敏症、慢性関節リウマチ、気管支端息等のアト
ピー性疾患等の予防および治療に有用である。

Claims (4)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 田七人参またはその組織培養物から抽出
   されるエキスを有効成分とする免疫系抑制用組成物。
2. 【請求項２】 水および／またはアルコールにより抽出
   される請求項１記載の免疫系抑制用組成物。
3. 【請求項３】 免疫抑制剤である請求項１または２記載
   の免疫系抑制用組成物。
4. 【請求項４】 機能性食品である請求項１または２記載
   の免疫系抑制用組成物。