JPH11326328A - Xiapとの結合を阻害する物質のスクリーニング方法 - Google Patents
Xiapとの結合を阻害する物質のスクリーニング方法Info
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Abstract
セプターとTAB1とを結び付ける経路に関与する分子を探
索し、かかる分子を利用して、生理活性物質をスクリー
ニングする方法を提供する。 【解決手段】 XIAP、TAB1及び被験物質を接触させ、次
いでXIAPとTAB1との結合の形成の有無を調べることによ
り、XIAPとTAB1との結合を阻害する物質をスクリーニン
グする方法。前記のスクリーニング方法により得られた
物質。前記のスクリーニング方法により得られた物質を
有効成分として含有する医薬組成物。
Description
合に対する阻害物質のスクリーニング方法に関する。ま
た、本発明はTGF-βレセプターとXIAPとの結合に対する
阻害物質のスクリーニング方法に関する。さらに本発明
は、XIAPとTAB1との結合、又はTGF-βレセプターとXIAP
との結合に対する阻害物質のスクリーニング方法により
得られた物質及びその使用に関する。
orming Growth Factor-β)は、細胞機能の多くの面を
制御する多機能因子である。その一つとして、TGF-βは
様々な傷害に伴う組織の修復及び再生を司る(Border,
W. A. & Noble, N. A., The New England Journal of M
edicine (1994) 331, 1286-1292)。
より、組織の修復、再生のバランスが崩れ病的な線維化
が生ずることがある。TGF-β産生のバランスが崩れた病
態として肝線維症が知られている。肝臓においてTGF-β
は線維化の原因となる細胞外マトリックス蛋白質の産生
を亢進させ、細胞外マトリックス蛋白質分解酵素の合成
を阻害し、細胞外マトリックス蛋白質分解酵素の阻害物
質を誘導することにより、種々の臓器、例えば肝臓の線
維症の主要な原因因子として作用することが明らかにな
っている(Border, W. A. & Noble, N. A., The New En
gland Journalof Medicine (1994) 331, 1286-1292)。
阻害活性(Moses, H. L. et al., Cell (1990) 63, 245
-247)、単球遊走活性(Wahl, S. M. et al., Proc. Na
tl.Acad. Sci. USA (1987) 84, 5788-5792)、生理活性
物質誘導活性(Wahl, S. M.et al., Proc. Natl. Acad.
Sci. USA (1987) 84, 5788-5792)、βアミロイド蛋白
質沈着作用(Wyss-Coray, T. et al., Nature (1997) 3
89, 603-606)が知られている。
ニン-特異的キナーゼドメインを含有する膜貫通蛋白質
であるI型及びI I型TGF-β受容体のヘテロマー複合体を
介してそのシグナルを伝達する(Wrana, J. L. et al.,
Nature (1994) 370, 341、Kingsley,D. M. et al., Ge
nes Dev. (1994) 8, 133)。しかしながら、TGF-β受容
体から細胞内への下流のシグナル伝達機構は分子レベル
において多くは解明されていない。TGF-βスーパーファ
ミリーのシグナル伝達に関与する一連の系として、マイ
トジェン-活性化プロテインキナーゼ(Mitogen-Activat
ed Protein Kinase; MAPK)系が知られている。
転換する保存された真核細胞性シグナル伝達系である。
MAPK系は3種類のプロテインキナーゼ、すなわちMAPKKK
(Mitogen-Activated Protein Kinase Kinase Kinas
e)、MAPKK(Mitogen-ActivatedProtein Kinase Kinas
e)、MAPK(Mitogen-Activated Protein Kinase)を含
む。MAPKはMAPKKによるリン酸化で活性化される。MAPKK
はMAPKKKによるリン酸化で活性化される(Nishida, E.
et al., Trends Biochem. Sci. (1993) 18, 128、Blume
r, K. J. et al., Trends Biochem. Sci. (1993) 19, 2
36、David R. J. etal., Trends Biochem. Sci. (1993)
19, 470、Marchall, C. J. et al., Cell(1995) 80, 1
79)。
性物質のシグナル伝達系において機能するMAPKKKファミ
リーの一つであるTAK1(TGF-β-Activated Kinase 1 )
はYamaguchi, K.らにより同定された(Yamaguchi, K. e
t al., Science (1995)270,2008)。また、TAK1に結合
し、TAK1を活性化するTGF-βのシグナル伝達系に関与す
る蛋白質であるTAB1(TAK1 Binding Protein 1)がShib
uya, H.らにより同定された(Shibuya, H. et al., Sci
ence (1996) 272, 1179-1182)。TAB1はTAK1に結合して
TAK1のキナーゼ活性を活性化し、TGF-βのシグナルを伝
達することがわかっている。しかし、TAB1によるTAK1の
活性化とTGF-βレセプターとを結び付ける分子的作用機
構は知られていなかった。
F-βのシグナル伝達系において、TGF-βレセプターとTA
B1とを結び付ける経路に関与する分子を探索し、かかる
分子を利用して、生理活性物質をスクリーニングする方
法を提供することを目的とする。また、本発明は、上記
の方法により得られる生理活性物質及びその利用を提供
することも目的とする。
シグナル伝達系において、TGF-βとTAB1とを結び付ける
分子として、TAN2 (TAB1 N-terminal binding protein
2)として表示されるX染色体リンクドアポトーシス抑制
タンパク(X-linked Inhibitor of ApoptosisProtein;
XIAP)を同定し、このXIAPが哺乳動物細胞中でTAB1と会
合するだけでなく、TGF-βレセプターとも会合すること
を確認した。本発明は上記の知見に基づいてなされたも
のである。
試料を接触させ、次いでXIAPとTAB1との結合の形成の有
無を調べることにより、XIAPとTAB1との結合を阻害する
物質をスクリーニングする方法を提供する。TAB1は、配
列番号2に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位のMet
からアミノ酸位置504位のProからなるアミノ酸配
列、又はTAB1の生物学的活性を有し、且つ配列番号2に
示すアミノ酸配列において1又は複数個のアミノ酸が置
換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸配列を有するも
のであってよい。XIAPは、配列番号4に示すアミノ酸配
列のアミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置497位
のSerからなるアミノ酸配列、又はXIAPの生物学的活性
を有し、且つ配列番号4に示すアミノ酸配列において1
又は複数個のアミノ酸が置換、欠失及び/又は付加され
たアミノ酸配列を有するものでもよい。TAB1及び/又は
XIAPは、他のペプチド又はポリペプチドと融合していて
もよい。TAB1又はXIAPは支持体と結合していてもよい。
支持体としては、ビーズ、プレートなどを挙げることが
できる。
る物質のスクリーニング方法において、TAB1又はXIAPを
標識し、該標識を検出又は測定することによりXIAPとTA
B1との結合の形成の有無を調べてもよい。標識として
は、放射性同位元素、酵素、蛍光物質などを挙げること
ができる。
阻害する物質のスクリーニング方法において、TAB1に結
合したXIAPを、XIAPに対する一次抗体又はXIAPと融合し
た他のペプチド若しくはポリペプチドに対する一次抗体
により検出又は測定することにより、XIAPとTAB1との結
合の形成の有無を調べてもよい。この場合、TAB1に結合
したXIAPを、XIAPに対する一次抗体又はXIAPと融合した
他のペプチド若しくはポリペプチドに対する一次抗体及
び一次抗体に対する二次抗体により検出又は測定するこ
とにより、XIAPとTAB1との結合の形成の有無を調べても
よい。あるいは、XIAPに結合したTAB1を、TAB1に対する
一次抗体又はTAB1と融合した他のペプチド若しくはポリ
ペプチドに対する一次抗体により検出又は測定すること
により、XIAPとTAB1との結合の形成の有無を調べてもよ
い。この場合、XIAPに結合したTAB1を、TAB1に対する一
次抗体又はTAB1と融合した他のペプチド若しくはポリペ
プチドに対する一次抗体及び一次抗体に対する二次抗体
により検出又は測定することにより、XIAPとTAB1との結
合の形成の有無を調べてもよい。一次抗体又は二次抗体
は、放射性同位元素、酵素又は蛍光物質により標識され
ているとよい。
細胞に被験試料を導入及び/又は接触させ、次いでTAB1
又はXIAPを介して伝達される生物学的活性を検出及び/
又は測定することにより、XIAPとTAB1との結合を阻害す
る物質をスクリーニングする方法を提供する。TAB1また
はXIAPを介して伝達される生物学的活性はTGF-βの生物
学的活性であってもよい。TGF-βの生物学的活性として
は、細胞外マトリックス蛋白質産生亢進、細胞増殖阻
害、単球遊走、生理活性物質誘導、免疫抑制、βアミロ
イド蛋白質沈着などを挙げることができる。また、TAB1
又はXIAPを介して伝達される生物学的活性は、TAB1又は
XIAPの生物学的活性に応答して活性化するレポーター遺
伝子の発現量変化であってもよい。レポーター遺伝子と
しては、 PAI-1、ファイブロネクチン、タイプIコラー
ゲン、タイプIVコラーゲンなどを挙げることができる。
セプター及び被験試料を接触させ、次いでXIAPとTGF-β
タイプIレセプターとの結合の形成の有無を調べること
により、XIAPとTGF-βタイプIレセプターとの結合を阻
害する物質をスクリーニングする方法を提供する。XIAP
は、配列番号4に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位
のMetからアミノ酸位置497位のSerからなるアミノ酸
配列、又はXIAPの生物学的活性を有し、且つ配列番号4
に示すアミノ酸配列において1又は複数個のアミノ酸が
置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸配列を有する
ものでもよい。TGF-βタイプIレセプターは、配列番号
6に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位のMetからア
ミノ酸位置503位のMetからなるアミノ酸配列、又はT
GF-βタイプIレセプターの生物学的活性を有し、且つ配
列番号6に示すアミノ酸配列において1又は複数個のア
ミノ酸が置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸配列
を有するものでもよい。XIAP又はTGF-βタイプIレセプ
ターは、他のペプチド又はポリペプチドと融合していて
もよい。XIAP又はTGF-βタイプIレセプターは支持体と
結合していてもよい。支持体としては、ビーズ、プレー
トなどを挙げることができる。
IAPとの結合を阻害する物質のスクリーニング方法にお
いて、XIAP又はTGF-βタイプIレセプターを標識し、該
標識を検出又は測定することにより、XIAPとTGF-βタイ
プIレセプターとの結合の形成の有無を調べてもよい。
標識としては、放射性同位元素、酵素、蛍光物質などを
挙げることができる。
ターとXIAPとの結合を阻害する物質のスクリーニング方
法において、XIAPに結合したTGF-βタイプIレセプター
を、TGF-βタイプIレセプターに対する一次抗体又はTGF
-βタイプIレセプターと融合した他のペプチド若しくは
ポリペプチドに対する一次抗体により検出又は測定する
ことにより、XIAPとTGF-βタイプIレセプターとの結合
の形成の有無を調べてもよい。この場合、XIAPに結合し
たTGF-βタイプIレセプターを、TGF-βタイプIレセプタ
ーに対する一次抗体又はTGF-βタイプIレセプターと融
合した他のペプチド若しくはポリペプチドに対する一次
抗体及び一次抗体に対する二次抗体により検出又は測定
することにより、XIAPとTGF-βタイプIレセプターとの
結合の形成の有無を調べてもよい。あるいは、TGF-βタ
イプIレセプターに結合したXIAPを、XIAPに対
する一次抗体又はXIAPと融合した他のペプチド若しくは
ポリペプチドに対する一次抗体により検出又は測定する
ことにより、XIAPとTGF-βタイプIレセプターとの結合
の形成の有無を調べてもよい。この場合、TGF-βタイプ
Iレセプターに結合したXIAPを、XIAPに対する一次抗体
又はXIAPと融合した他のペプチド若しくはポリペプチド
に対する一次抗体及び一次抗体に対する二次抗体により
検出又は測定することにより、XIAPとTGF-βタイプIレ
セプターとの結合の形成の有無を調べてもよい。一次抗
体又は二次抗体は、放射性同位元素、酵素又は蛍光物質
により標識されているとよい。
レセプターを発現する細胞に被験試料を導入及び/又は
接触させ、次いでXIAP又はTGF-βタイプIレセプターを
介して伝達される生物学的活性を検出及び/又は測定す
ることにより、TGF-βタイプIレセプターとXIAPとの結
合を阻害する物質をスクリーニングする方法を提供す
る。XIAPまたはTGF-βタイプIレセプターを介して伝達
される生物学的活性はTGF-βの生物学的活性であっても
よい。TGF-βの生物学的活性としては、細胞外マトリッ
クス蛋白質産生亢進、細胞増殖阻害、単球遊走、生理活
性物質誘導、免疫抑制、βアミロイド蛋白質沈着などを
挙げることができる。XIAP又はTGF-βタイプIレセプタ
ーを介して伝達される生物学的活性は、XIAP又はTGF-β
タイプIレセプターの生物学的活性に応答して活性化す
るレポーター遺伝子の発現量変化であってもよい。レポ
ーター遺伝子としては、 PAI-1、ファイブロネクチン、
タイプIコラーゲン、タイプIVコラーゲンなどを挙げる
ことができる。
セプター及び被験試料を接触させ、次いでXIAPとTGF-β
タイプIIレセプターとの結合の形成の有無を調べること
により、XIAPとTGF-βタイプIIレセプターとの結合を阻
害する物質をスクリーニングする方法を提供する。XIAP
は、配列番号4に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位
のMetからアミノ酸位置497位のSerからなるアミノ酸
配列、又はXIAPの生物学的活性を有し、且つ配列番号4
に示すアミノ酸配列において1又は複数個のアミノ酸が
置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸配列を有する
ものでもよい。TGF-βタイプIIレセプターは、配列番号
8に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位のMetからア
ミノ酸位置567位のLysからなるアミノ酸配列、又はT
GF-βタイプIIレセプターの生物学的活性を有し、且つ
配列番号8に示すアミノ酸配列において1又は複数個の
アミノ酸が置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸配
列を有するものでもよい。XIAP又はTGF-βタイプIIレセ
プターは、他のペプチド又はポリペプチドと融合してい
てもよい。XIAP又はTGF-βタイプIIレセプターは支持体
と結合していてもよい。支持体としては、ビーズ、プレ
ートなどを挙げることができる。
XIAPとの結合を阻害する物質のスクリーニング方法にお
いて、XIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを標識し、該
標識を検出又は測定することにより、XIAPとTGF-βタイ
プIIレセプターとの結合の形成の有無を調べてもよい。
標識としては、放射性同位元素、酵素、蛍光物質などを
挙げることができる。
ターとXIAPとの結合を阻害する物質のスクリーニング方
法において、XIAPに結合したTGF-βタイプIIレセプター
を、TGF-βタイプIIレセプターに対する一次抗体又はTG
F-βタイプIIレセプターと融合した他のペプチド若しく
はポリペプチドに対する一次抗体により検出又は測定す
ることにより、XIAPとTGF-βタイプIIレセプターとの結
合の形成の有無を調べてもよい。この場合、XIAPに結合
したTGF-βタイプIIレセプターを、TGF-βタイプIIレセ
プターに対する一次抗体又はTGF-βタイプIIレセプター
と融合した他のペプチド若しくはポリペプチドに対する
一次抗体及び一次抗体に対する二次抗体により検出又は
測定することにより、XIAPとTGF-βタイプIIレセプター
との結合の形成の有無を調べてもよい。あるいは、TGF-
βタイプIIレセプターに結合したXIAPを、XIAPに対する
一次抗体又はXIAPと融合した他のペプチド若しくはポリ
ペプチドに対する一次抗体により検出又は測定すること
により、XIAPとTGF-βタイプIIレセプターとの結合の形
成の有無を調べてもよい。この場合、TGF-βタイプIIレ
セプターに結合したXIAPを、XIAPに対する一次抗体又は
XIAPと融合した他のペプチド若しくはポリペプチドに対
する一次抗体及び一次抗体に対する二次抗体により検出
又は測定することにより、XIAPとTGF-βタイプIIレセプ
ターとの結合の形成の有無を調べてもよい。一次抗体又
は二次抗体は、放射性同位元素、酵素又は蛍光物質によ
り標識されているとよい。
レセプターを発現する細胞に被験試料を導入及び/又は
接触させ、次いでXIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを
介して伝達される生物学的活性を検出及び/又は測定す
ることにより、TGF-βタイプIIレセプターとXIAPとの結
合を阻害する物質をスクリーニングする方法を提供す
る。XIAPまたはTGF-βタイプIIレセプターを介して伝達
される生物学的活性はTGF-βの生物学的活性であっても
よい。TGF-βの生物学的活性としては、細胞外マトリッ
クス蛋白質産生亢進、細胞増殖阻害、単球遊走、生理活
性物質誘導、免疫抑制、βアミロイド蛋白質沈着などを
挙げることができる。XIAP又はTGF-βタイプIIレセプタ
ーを介して伝達される生物学的活性は、XIAP又はTGF-β
タイプIIレセプターの生物学的活性に応答して活性化す
るレポーター遺伝子の発現量変化であってもよい。レポ
ーター遺伝子としては、 PAI-1、ファイブロネクチン、
タイプIコラーゲン、タイプIVコラーゲンなどを挙げる
ことができる。
法により得られた物質を提供する。この物質はTGF-βの
シグナル伝達を阻害又は活性化する既知物質の新規な代
替物であってもよく、また、XIAPのアゴニストまたはア
ンタゴニストのいずれであってもよい。本発明は、ま
た、上記のスクリーニング方法により得られた物質を有
効成分として含有する医薬組成物も提供する。この医薬
組成物は細胞外マトリックス蛋白質産生亢進作用、細胞
増殖阻害作用、単球遊走作用、生理活性物質誘導作用、
免疫抑制作用、βアミロイド蛋白質沈着作用などのシグ
ナル伝達が関与している種々の生理作用を抑制又は活性
化するために使用することができる。具体的には、肝線
維症、肺線維症、慢性糸球体腎炎、糖尿病性腎症、血管
再狭窄、皮膚のケロイド、強皮症、自己免疫疾患及びア
ルツハイマー病からなる群より選択される少なくとも一
つの疾患を予防及び/又は治療するために使用すること
ができる。
有する医薬組成物であって、細胞外マトリックス蛋白質
産生亢進、細胞増殖阻害、単球遊走、生理活性物質誘
導、免疫抑制及びβアミロイド蛋白質沈着からなる群よ
り選択される少なくとも一つの作用を抑制又は活性化す
るために使用される前記の医薬組成物を提供する。さら
に、本発明は、XIAPを有効成分として含有する医薬組成
物であって、肝線維症、肺線維症、糸球体腎炎、糖尿病
性腎症、腎硬化症、血管再狭窄、皮膚のケロイド、強皮
症、自己免疫疾患及びアルツハイマー病からなる群より
選択される少なくとも一つの疾患を予防及び/又は治療
するために使用される前記の医薬組成物を提供する。
は、配列番号2に示すアミノ酸配列においてアミノ酸位
置1位のMetからアミノ酸位置504位のProからなるア
ミノ酸配列を有し、且つTAB1の生物学的活性を有するTA
B1であれば、いかなるものであってよい。TAB1の生物学
的活性とは、XIAPに結合する活性であることが本明細書
で開示されている。さらに詳しくは、TAB1の生物学的活
性とは、XIAPの1位のアミノ酸Metから326位のアミ
ノ酸Glyからなるポリペプチドに結合する活性であるこ
とが本明細書で開示されている。しかしながら、本発明
においては、TAB1はXIAPに結合する活性を有してさえい
ればよい。したがって、ここで述べるTAB1の生物学的活
性とは、XIAPに対する結合活性であってよい。
生物学的活性を有し、且つ配列番号2に示すアミノ酸配
列において1又は複数個のアミノ酸の置換、欠失及び/
又は付加されたアミノ酸配列を有するTAB1であってよ
い。より具体的には、本発明に使用されるTAB1は、TAB1
の生物学的活性を有する限り、配列番号2に示すアミノ
酸配列において、1又は2個以上、好ましくは1又は2
0個以下、より好ましくは1又は10個以下のアミノ酸
が置換したアミノ酸配列を有していてよい。または、配
列番号2に示すアミノ酸配列において、1又は2個以
上、好ましくは1又は86個以下、より好ましくは1又
は10個以下のアミノ酸残基が欠失したアミノ酸を有し
ていてよい。または、配列番号1に示すアミノ酸配列に
おいて、1又は2個以上、好ましくは1又は30個以
下、より好ましくは1又は20個以下のアミノ酸が付加
したアミノ酸を有していてよい。本発明に使用されるTA
B1はまた、上記アミノ酸の置換、欠失及び/又は付加が
同時になされていてもよい。
酸Metから418位のアミノ酸Valまでのアミノ酸配列を
有していればその生物学的活性を示すことが明らかにな
っている。したがって、本発明に使用されるTAB1は、配
列番号2において1位のアミノ酸Metから418位のア
ミノ酸Valまでのアミノ酸配列を有し、かつ419位の
アミノ酸Asnから504位のアミノ酸Proまでのアミノ酸
配列において1又は複数個のアミノ酸残基の置換、欠失
及び/又は付加されたアミノ酸配列を有するTAB1であっ
てよい。TAB1は、その生物学的活性有する限り、配列番
号2において1位のアミノ酸Metから418位のアミノ
酸Valまでのアミノ酸配列において1又は複数個のアミ
ノ酸の置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸配列を
有するTAB1であってよい。
又は複数個のアミノ酸の置換、欠失及び/又は付加され
たされたアミノ酸配列を有するTAB1として、52位のア
ミノ酸SerがArgであるTAB1や1位のアミノ酸Metから4
18位のアミノ酸Valまでのアミノ酸配列を有するTAB1
が挙げられる。
itor of Apoptosis Protein)としては、配列番号4に
示すアミノ酸配列においてアミノ酸位置1位のMetから
アミノ酸位置497位のSerからなるアミノ酸配列を有
し、且つXIAPの生物学的活性を有するXIAPであれば、い
かなるものであってよい(Duckett, C. S., et al.,EMB
O J. (1996) 15, 2685-2694)。XIAPの生物学的活性
は、TAB1と結合し、TAB1を介した生物学的活性を伝達す
ることが本明細書で開示されている。また、種々の刺激
(紫外線照射、抗Fas抗体刺激、TNFa刺激など)による
カスパーゼ3および7の活性化を直接抑制し(Deverau
x, Q.L., et al., Nature (1997) 388, 300-304)、さ
らにそれらの刺激により誘導されるアポトーシスを抑制
する活性であることが明らかになっている(Duckett,
C. S., et al., Mol. Cell. Biol. (1998) 18, 608-61
5)。しかしながら、本発明においては、XIAPはTAB1に
結合する活性を有してさえいればよく、XIAPの抗アポト
ーシス活性を失っているXIAPであってもよい。したがっ
て、ここで述べるXIAPの生物学的活性とは、TAB1に対す
る結合活性であってよい。
酸Metから326位のアミノ酸Glyまでのアミノ酸配列を
有していればその生物学的活性を示すことが明らかにな
っている。したがって、本発明に使用されるXIAPは、配
列番号4において1位のアミノ酸Metから326位のア
ミノ酸Glyまでのアミノ酸配列を有し、かつ327位の
アミノ酸Cysから497位のSerまでのアミノ酸配列にお
いて1又は複数個のアミノ酸の置換、欠失及び/又は付
加されたアミノ酸配列を有するXIAPであってよい。XIAP
は、その生物学的活性有する限り、配列番号4において
1位のアミノ酸Metから326位のアミノ酸Glyまでのア
ミノ酸配列において1又は複数個のアミノ酸の置換、欠
失及び/又は付加されたアミノ酸配列を有するものでも
よい。
生物学的活性を有し、且つ配列番号4に示すアミノ酸配
列において1又は複数個のアミノ酸の置換、欠失及び/
又は付加されたアミノ酸配列を有するXIAPであってよ
い。より具体的には、本発明に使用されるXIAPは、XIAP
の生物学的活性を有する限り、配列番号4に示すアミノ
酸配列において、1又は2個以上、好ましくは1又は2
0個以下、より好ましくは1又は10個以下のアミノ酸
が置換したアミノ酸配列を有するものでもよい。
ミノ酸配列において、1又は2個以上、好ましくは1又
は171個以下、より好ましくは1又は10個以下のア
ミノ酸残基が欠失したアミノ酸を有していてよい。また
は、配列番号4に示すアミノ酸配列において、1又は2
個以上、好ましくは1又は30個以下、より好ましくは
1又は20個以下のアミノ酸残基が付加したアミノ酸を
有するものでもよい。
ターとしては、配列番号6に示すアミノ酸配列において
アミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置503のMetか
らなるアミノ酸配列を有し、且つTGF-βタイプIレセプ
ターの生物学的活性を有するTGF-βタイプIレセプター
であれば、いかなるものであってよい。TGF-βタイプI
レセプターの生物学的活性は、TGF-βと結合し、TAB1を
介してその生物学的活性を伝達することである。さらに
詳しくは、TGF-βとTGF-βタイプIIレセプターが結合し
た後、TGF-βを介してTGF-βタイプIIレセプターとヘテ
ロ4量体を形成し、TGF-βのシグナルを伝達する活性で
あることが明らかになっている。しかしながら、本発明
においては、TGF-βタイプIレセプターはXIAPに結合す
る活性を有してさえいればよく、TGF-βタイプIレセプ
ターのTGF-βと結合する活性、TGF-βタイプIIレセプタ
ーとヘテロ4量体を形成する活性、又はTGF-βのシグナ
ルを伝達する活性を失っているTGF-βタイプIレセプタ
ーであってもよい。したがって、ここで述べるTGF-βタ
イプIレセプターの生物学的活性とは、XIAPに対する結
合活性であってよい。
レセプターは、TGF-βタイプIレセプターの生物学的活
性を有し、且つ配列番号6に示すアミノ酸配列において
1又は複数個のアミノ酸の置換、欠失及び/又は付加さ
れたアミノ酸配列を有するTGF-βタイプIレセプターで
あってよい。より具体的には、本発明に使用されるTGF-
βタイプIレセプターは、TGF-βタイプIレセプターの生
物学的活性を有する限り、配列番号6に示すアミノ酸配
列において、1又は2個以上、好ましくは1又は20個
以下、より好ましくは1又は10個以下のアミノ酸が置
換したアミノ酸配列を有するものでもよい。
は配列番号6に示すアミノ酸配列において、1又は2個
以上、好ましくは1又は20個以下、より好ましくは1
又は10個以下のアミノ酸が欠失したアミノ酸配列を有
していてよい。または、配列番号6に示すアミノ酸配列
において、1又は2個以上、好ましくは1又は30個以
下、より好ましくは1又は20個以下のアミノ酸が付加
したアミノ酸配列を有するものでもよい。
ターとしては、配列番号8に示すアミノ酸配列において
アミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置567のLysか
らなるアミノ酸配列を有し、且つTGF-βタイプIIレセプ
ターの生物学的活性を有するTGF-βタイプIIレセプター
であれば、いかなるものであってよい。TGF-βタイプII
レセプターの生物学的活性は、TGF-βと結合し、TGF-β
タイプIレセプターを活性化し、TAB1を介してその生物
学的活性を伝達することである。さらに詳しくは、TGF-
βと結合し、TGF-βタイプIレセプターとヘテロ4量体
を形成し、TGF-βタイプIレセプターのキナーゼ活性を
活性化し、TGF-βのシグナルを伝達する活性であること
が明らかになっている。しかしながら、本発明において
は、TGF-βタイプIIレセプターはXIAPに結合する活性を
有してさえいればよく、TGF-βタイプIIレセプターのTG
F-βと結合する活性、TGF-βタイプIレセプターとヘテ
ロ4量体を形成する活性、TGF-βタイプIレセプターの
キナーゼを活性化する活性、又はTGF-βのシグナルを伝
達する活性を失っているTGF-βタイプIIレセプターであ
ってもよい。したがって、ここで述べるTGF-βタイプII
レセプターの生物学的活性とは、XIAPに対する結合活性
であってよい。
レセプターは、TGF-βタイプIIレセプターの生物学的活
性を有し、且つ配列番号8に示すアミノ酸配列において
1又は複数個のアミノ酸の置換、欠失及び/又は付加さ
れたアミノ酸配列を有するTGF-βタイプIIレセプターで
あってよい。より具体的には、本発明に使用されるTGF-
βタイプIIレセプターは、TGF-βタイプIIレセプターの
生物学的活性を有する限り、配列番号8に示すアミノ酸
配列において、1又は2個以上、好ましくは1又は20
個以下、より好ましくは1又は10個以下のアミノ酸が
置換したアミノ酸配列を有するものでもよい。
は配列番号8に示すアミノ酸配列において、1又は2個
以上、好ましくは1又は20個以下、より好ましくは1
又は10個以下のアミノ酸が欠失したアミノ酸配列を有
していてよい。または、配列番号8に示すアミノ酸配列
において、1又は2個以上、好ましくは1又は30個以
下、より好ましくは1又は20個以下のアミノ酸が付加
したアミノ酸配列を有するものでもよい。
アミノ酸残基の置換、欠失及び/又は付加されたアミノ
酸配列を有するポリペプチドがその生物学的活性を維持
することはすでに知られている(Mark, D. F. et al.,
Proc. Natl. Acad. Sci. USA(1984) 81, 5662-5666、Zo
ller, M. J. & Smith, M. Nucleic Acids Research(198
2) 10, 6487-6500、Wang, A. et al., Science 224, 14
31-1433、 Dalbadie-McFarland, G. et al., Proc. Nat
l. Acad. Sci. USA (1982) 79, 6409-6413)。
イプI又はタイプIIレセプターは、由来する種、それら
を産生する宿主及び/又は精製方法により、アミノ酸配
列、分子量、等電点、糖鎖付加の有無や糖鎖付加の位
置、糖鎖の構造、リン酸化状態及び/又はジスルフィド
結合の有無が異なる。しかしながら、本発明に好適に使
用し得る限り、いかなる構造を有するものであってよい
が、由来する種としてはヒトが好ましい。
イプI又はタイプIIレセプターはまた、他のペプチド又
はポリペプチドと融合した上記TAB1、XIAP、TGF-βタイ
プI又はタイプIIレセプターであってよい。これら融合
ポリペプチドを作製する方法は、すでに公知の手法を用
いることができる。TAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタ
イプIIレセプターとの融合に付される他のペプチド又は
ポリペプチドとしては、本発明に有効に使用される限り
いかなるペプチド又はポリペプチドであってよい。例え
ば、ペプチドとしては、FLAG(Hopp, T. P. et al., Bi
oTechnology (1988) 6, 1204-1210)、6個のHis(ヒス
チジン)残基からなる6×His、10×His、インフルエン
ザ凝集素(HA)、ヒトc-mycの断片、VSV-GPの断片、p18
HIVの断片、T7-tag、HSV-tag、E-tag、SV40T抗原の断
片、lck tag、α-tubulin の断片、B-tag 、Protein C
の断片等、すでに公知であるペプチドが使用される。ま
た例えば、ポリペプチドとしては、GST(グルタチオン
・S・トランスフェラーゼ)、HA(インフルエンザ凝集
素)、イムノグロブリン定常領域、β-ガラクトシダー
ゼ、MBP(マルトース結合蛋白質)等が挙げられる。こ
れらは市販されているものを用いることができる。
としては、配列番号1に示す塩基配列の塩基位置7位の
塩基Aから1518位の塩基Gからなる塩基配列が挙げら
れる。本発明に使用されるXIAPをコードするDNAとして
は、配列番号3に示す塩基配列の塩基位置82位の塩基
Aから1572位の塩基Tからなる塩基配列が挙げられ
る。本発明に使用されるTGF-βタイプIレセプターをコ
ードするDNAとしては、配列番号5に示す塩基配列の塩
基位置77位の塩基Aから1585位の塩基Gからなる塩
基配列が挙げられる。本発明に使用されるTGF-βタイプ
IIレセプターをコードするDNAとしては、配列番号7に
示す塩基配列の塩基位置336位の塩基Aから2036
位の塩基Aからなる塩基配列が挙げられる。
イプI又はタイプIIレセプターをコードするDNAとして
は、各々配列番号1、3、5又は7に示す塩基配列を有
するDNAであれば、いかなる由来のDNAであってよい。こ
のようなDNAとして、例えばゲノミックDNA、cDNA、合成
DNAが挙げられる。これらは、種々の細胞、組織又は臓
器あるいはヒト以外の種から得られたcDNAライブラリ
ー、ゲノミックライブラリーから得られたDNAであって
よいし、それらは市販のDNAライブラリーであってもよ
い。これらライブラリーに用いられるベクターとして
は、プラスミド、バクテリオファージ、YACベクター等
いかなるものであってよい。
イプI又はタイプIIレセプターは、TAB1、XIAP、TGF-β
タイプI又はタイプIIレセプターをコードするDNAを用い
て、後述のように遺伝子組換え技術を用いて産生させた
組換え蛋白質として得ることができる。例えば、組換え
蛋白質は、本明細書に記載されたTAB1、XIAP、TGF-βタ
イプI又はタイプIIレセプターの遺伝子の塩基配列をそ
れらを発現する細胞、組織、又は臓器からクローニング
し、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し
産生させる。本発明には、この組換え蛋白質を用いるこ
とができる。
発現する細胞、組織、又は臓器から、その遺伝子をコー
ドするmRNAを単離する。mRNAの単離は、公知の
方法、例えば、グアニジン超遠心法(Chirgwin, J. M. e
t al., Biochemistry (1979)18, 5294-5299) 、AGP
C法 (Chomczynski, P. and Sacchi, N., Anal. Bioche
m. (1987) 162, 156-159) 等により全RNAを調製し、
mRNA Purification Kit (Pharmacia) 等を使用して全R
NAからmRNAを精製する。また、QuickPrep mRNA P
urification Kit (Pharmacia) を用いることによりmR
NAを直接調製することもできる。
遺伝子のcDNAを合成する。cDNAの合成は、 AMV
Reverse Transcriptase First-strand cDNA Synthesis
Kit(生化学工業)等を用いて行うこともできる。ま
た、cDNAの合成および増幅を行うにはMarathon cDN
A Amplification kit(CLONTECH製)およびポリメラーゼ
連鎖反応 (polymerase chain reaction ; PCR)を用
いた5′−RACE法(Frohman, M. A. et al., Proc.
Natl. Acad. Sci. U.S.A. (1988) 85, 8998-9002; Bely
avsky, A. et al., Nucleic Acids Res. (1989) 17, 29
19-2932) を使用することができる。
断片を調製し、ベクターDNAと連結する。さらに、こ
れより組換えベクターを作製し、大腸菌等に導入してコ
ロニーを選択して所望の組換えベクターを調製する。目
的とするDNAの塩基配列を公知の方法、例えば、ジデ
オキシヌクレオチドチェインターミネーション法により
確認する。目的とするDNAが得られれば、これを発現
ベクターへ組み込む。
イプI又はタイプIIレセプターをコードするDNAとしては
また、各々配列番号1、3、5又は7に示す塩基配列に
対しハイブリダイズし、且つその生物学的活性を有する
TAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターコ
ードするDNAであってもよい。 TAB1、XIAP、TGF-βタイ
プI又はタイプIIレセプターをコードするDNAがハイブリ
ダイズする条件としては、適度なストリンジェンシー条
件であればよい。
例えば低ストリンジェンシーな条件が挙げられる。低ス
トリンジェンシーな条件としては、例えば42℃、5×
SSC、0.1%sodium dodecyl sulfate、50%ホルムアミドに
より与えられる洗浄条件である。より好ましくは、高ス
トリンジェンシーな条件であるとよい。高ストリンジェ
ンシーな条件としては、例えば60℃、0.1×SSC、0.1% s
odium dodecyl sulfateにより与えられる洗浄条件であ
る。ある蛋白質をコードする塩基配列に対し、適度な条
件でハイブリダイズするDNAがコードする蛋白質がその
蛋白質と同じ生物学的活性を有することはすでに知られ
ている。
ノ酸位置1位のアミノ酸Metからアミノ酸位置504位
のアミノ酸Proからなるアミノ酸配列を有するヒトTAB1
をコードするDNAを含有するプラスミドTABI-f-4を保持
する大腸菌はEscherichia coli DH5a(TABI-f-4)と命
名され、平成8(1996)年7月19日に工業技術院生命工学工
業技術研究所(茨城県つくば市東1丁目1番3号)に寄託
番号FERM BP-5599として、ブダペスト条約に基づき国際
寄託されている。
ミノ酸位置1位のアミノ酸Metからアミノ酸位置504
位のアミノ酸Proからなり、かつ52位のアミノ酸Serが
Argである上記ヒトTAB1をコードするDNAを含有
するプラスミドpBS-TAB1を保持する大腸菌はEscherichi
a coli HB101( pBS-TAB1)と命名され、平成8(1996)年
4月19日に工業技術院生命工学工業技術研究所(茨城県
つくば市東1丁目1番3号)に寄託番号FERM BP-5508とし
て、ブダペスト条約に基づき国際寄託されている。
イプI又はタイプIIレセプターをコードするDNAは、種々
の細胞、組織又は臓器あるいはヒト以外の種から得られ
たcDNAライブラリー、ゲノミックライブラリーから得ら
れたDNAであってよいし、それらは市販のDNAライブラリ
ーであってもよい。これらライブラリーに用いられるベ
クターとしては、プラスミド、バクテリオファージ、YA
Cベクター等いかなるものであってよい。本発明に使用
されるTAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプ
ターをコードするDNAは、以上に述べたDNAを市販のキッ
トや公知の方法によって構築することができる。例え
ば、制限酵素による消化、リンカーの付加、開始コドン
(ATG)及び/又は終始コドン(ATT、TGA又はTAG)の挿
入等が挙げられる。
イプI又はタイプIIレセプターの発現ベクターは、本発
明に好適に使用される発現ベクターであればいかなる発
現ベクターであってよい。発現ベクターとしては、哺乳
動物由来の発現ベクター、例えばpEF、pCDM8、昆虫細胞
由来の発現ベクター、例えばpBacPAK8、植物由来の発現
ベクター、例えばpMH1、pMH2、動物ウィルス由来の発現
ベクター、例えばpHSV、pMV、酵母由来の発現ベクタ
ー、例えばpNV11、枯草菌由来の発現ベクター、例えばp
PL608、pKTH50、大腸菌由来の発現ベクター、例えばpGE
X、pGEMEX、pMALp2が挙げられる。
イプI又はタイプIIレセプターの発現ベクターには、例
えばTAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプタ
ーをコードするDNAを、発現ベクターの中のプロモータ
ーの下流に連結することにより製造することができる。
プロモーター/エンハンサーとしては、哺乳動物由来の
プロモーター/エンハンサー、例えばEF1-αプロモータ
ー/エンハンサー、γ-アクチンプロモーター/エンハ
ンサー、昆虫ウィルス由来のプロモーター/エンハンサ
ー、例えば多核体(ポリヘドリン)ウィルスプロモータ
ー/エンハンサー、植物由来のプロモーター/エンハン
サー、例えばタバコモザイクウィルスプロモーター/エ
ンハンサー、動物ウィルス由来のプロモーター/エンハ
ンサー、例えばSV40プロモーター/エンハンサー、ヒト
CMVプロモーター/エンハンサー、酵母由来のプロモー
ター/エンハンサー、例えばアルコール脱水素酵素プロ
モーター/エンハンサー、大腸菌由来のプロモーター/
エンハンサー、例えばLacプロモーター/エンハンサ
ー、Trpプロモーター/エンハンサー、Tacプロモーター
/エンハンサーが挙げられる。
ーを使用する場合、Mulliganらの方法(Nature (1979)
277, 108)、また、HEF1αプロモーター/エンハンサー
を使用する場合、Mizushimaらの方法(Nucleic Acids R
es. (1990) 18, 5322)に従えば容易に実施することが
できる。大腸菌の場合、常用される有用なプロモータ
ー、分泌のためのシグナル配列、発現させる遺伝子を機
能的に結合させて発現させることができる。例えばプロ
モーターとしては、lacZプロモーター、araBプロモータ
ーを挙げることができる。lacZプロモーターを使用する
場合、Wardらの方法(Nature (1098) 341, 544-546;FA
SEB J. (1992) 6, 2422-2427)、araBプロモーターを使
用する場合、Betterらの方法(Science (1988) 240, 10
41-1043)に従えばよい。
イプI又はタイプIIレセプターの発現には、発現に用い
られる宿主に適したシグナル配列を付加して使用しても
よい。シグナル配列としては、例えば分泌蛋白質のシグ
ナル配列が挙げられる。分泌蛋白質のシグナル配列とし
ては、例えば哺乳動物由来分泌蛋白質のシグナル配列、
例えばイムノグロブリンのシグナル配列が挙げられる。
また分泌蛋白質のシグナル配列としては、大腸菌由来分
泌蛋白質のシグナル配列、例えばOmpA、 pelB(Lei, S.
P. et al J. Bacteriol. (1987) 169, 4379)等のペリ
プラズム分泌シグナル配列が挙げられる。
の方法により宿主に導入することができる。宿主への導
入の方法としては、例えばエレクトロポレーション(EM
BO J. (1982) 1, 841-845)、リン酸カルシウム法(Vir
ology (1973) 52, 456-467)、リポソーム法が挙げられ
る。複製開始点としては、SV 40、ポリオーマウィル
ス、アデノウィルス、ウシパピローマウィルス(BPV)
等の由来のものを用いることができる。さらに、宿主細
胞系で遺伝子コピー数増幅のため、発現ベクターは選択
マーカーとして、アミノグリコシドトランスフェラーゼ
(APH)遺伝子、チミジンキナーゼ(TK)遺伝子、大腸
菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラー
ゼ(HPRT)遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素(DHFR)遺伝
子等を含むことができる。さらに、発現に使用する宿主
のコドン使用頻度を考慮して、より発現効率の高い配列
を設計することができる(Grantham, R. et al., Nucle
ic Acids Research (1981) 9, r43-r74)。
めに、任意の産生系を使用することができる。組換え蛋
白質製造のための産生系は、in vitroおよびin vivoの
産生系がある。in vitroの産生系としては、真核細胞を
使用する産生系や原核細胞を使用する産生系が挙げられ
る。
細胞、真菌細胞を用いる産生系がある。動物細胞として
は、(1)哺乳類細胞、例えばCHO(J. Exp. Med. (1995)
108,945)、COS、ミエローマ、BHK(baby hamster kidn
ey)、HeLa、Vero、(2)両生類細胞、例えばアフリカツ
メガエル卵母細胞(Valle, et al., Nature (1981) 29
1, 358-340)、あるいは(3)昆虫細胞、例えばsf9、sf2
1、Tn5が知られている。CHO細胞としては、特にDHFR遺
伝子を欠損したCHO細胞であるdhfr-CHO(Proc. Natl. A
cad. Sci. USA (1980) 77, 4216-4220)やCHO K-1(Pro
c. Natl. Acad. Sci. USA (1968) 60, 1275)を好適に
使用することができる。
来の細胞が知られており、これをカルス培養すればよ
い。真菌細胞としては、酵母、例えばサッカロミセス
(Saccharomyces)属、例えばサッカロミセス・セレビ
シエ(Saccharomyces cerevisiae)、糸状菌、例えばア
スペルギウス属(Aspergillus)属、例えばアスペルギ
ウス・ニガー(Aspergillus niger)が知られている。
原核細胞を使用する場合、細菌細胞を用いる産生系があ
る。細菌細胞としては、大腸菌(E. coli)、枯草菌が
知られている。
質転換し、形質転換された細胞をinvitroで培養するこ
とにより組換え蛋白質が得られる。培養は、公知の方法
に従い行う。例えば、培養液として、DMEM、MEM、RPMI1
640、IMDMを使用することができる。その際、牛胎児血
清(FCS)等の血清補液を併用することもできるし、無
血清培養してもよい。培養時のpHは約6〜8であるのが
好ましい。培養は通常約30〜40℃で約15〜200
時間行い、必要に応じて培地の交換、通気、撹拌を加え
る。このように遺伝子を導入した細胞に組換え蛋白質を
産生させ、回収する。
使用する産生系や植物を使用する産生系が挙げられる。
これらの動物又は植物に目的とするDNAを導入し、動
物又は植物の体内で組換え蛋白質を産生させ、回収す
る。動物を使用する場合、哺乳類動物、昆虫を用いる産
生系がある。哺乳類動物としては、ヤギ、ブタ、ヒツ
ジ、マウス、ウシを用いることができる(Vicki Glase
r, SPECTRUM Biotechnology Applications, 1993)。ま
た、哺乳類動物を用いる場合、トランスジェニック動物
を用いることができる。
ンのような乳汁中に固有に産生される蛋白質をコードす
る遺伝子の途中に挿入して融合遺伝子として調製する。
このDNAが挿入された融合遺伝子を含むDNA断片をヤ
ギの胚へ注入し、この胚を雌のヤギへ導入する。胚を受
容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギ又はそ
の子孫が産生する乳汁から組換え蛋白質を得る。トラン
スジェニックヤギから産生される組換え蛋白質を含む乳
汁量を増加させるために、適宜ホルモンをトランスジェ
ニックヤギに使用してもよい(Ebert, K.M. et al., Bi
o/Technology (1994) 12, 699-702)。
ることができる。カイコを用いる場合、目的とするDN
Aを挿入したバキュロウィルスをカイコに感染させ、こ
のカイコの体液より所望の組換え蛋白質を得る(Maeda,
S. et al., Nature (1985)315, 592-594)。さらに植
物を使用する場合、例えばタバコを用いることができ
る。タバコを用いる場合、目的とするDNAを植物発現
用ベクター、例えばpMON 530に挿入し、このベクターを
Agrobacterium tumefaciens のようなバクテリアに導入
する。このバクテリアをタバコ、例えばNicotiana taba
cum に感染させ、本タバコの葉より所望の組換え蛋白質
を得る(Julian, K.-C. Ma et al., Eur. J. Immunol.
(1994) 24, 131-138)。
子を導入し、動物又は植物の体内で組換え蛋白質を産生
させ、回収する。前記のように発現、産生された組換え
蛋白質は、細胞内外、宿主から分離し均一にまで精製す
ることができる。本発明で使用される蛋白質の分離、精
製は通常使用されている分離、精製方法を使用すればよ
く、何ら限定されるものではない。
ー等のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾
過、塩析、透析、SDSポリアクリルアミドゲル電気泳
動、等電点電気泳動等を適宜選択、組み合わせれば、蛋
白質を分離、精製することができる(Antibodies : A La
boratory Manual. Ed Harlow and David Lane, Cold Sp
ring Harbor Laboratory, 1988) 。
ィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグ
ラフィー、疎水性クロマトグラフィー、ゲル濾過、逆相
クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー等が挙げ
られる(Strategies for Protein Purification and Cha
racterization : A Laboratory Course Manual. Ed Dan
iel R. Marshak et al., Cold Spring Harbor Laborato
ry Press, 1996) 。これらのクロマトグラフィーはHP
LC、FPLC等の液相クロマトグラフィーを用いて行
うことができる。
することができる。例えば、吸光度の測定又はBradford
法を用いればよい。XIAPとTAB1との結合を阻害する物質
のスクリーニング方法においては、XIAP、TAB1及び被験
試料を接触させ、次いでXIAPとTAB1との結合の形成の有
無を調べる。
の結合を阻害する物質のスクリーニング方法において
は、TGF-βタイプIレセプター、XIAP及び被験試料を接
触させ、次いでTGF-βタイプIレセプターとXIAPとの結
合の形成の有無を調べる。また、TGF-βタイプIIレセプ
ターとXIAPとの結合を阻害する物質のスクリーニング方
法においては、TGF-βタイプIIレセプター、XIAP及び被
験試料を接触させ、次いでTGF-βタイプIIレセプターと
XIAPとの結合の形成の有無を調べる。本発明において提
供されるスクリーニング系は、in vitroのアッセイ系と
して行われる。
は、非細胞系において行われる。具体的にはTAB1あるい
はXIAP又はTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターのい
ずれか一方を支持体に結合させ、ここにもう一方と被験
試料を加え、インキュベートをした後洗浄して支持体に
結合した蛋白質に対するもう一方の蛋白質の結合を検出
又は測定すればよい。
レセプターは、それらを固有に発現する細胞、本発明に
使用されるTAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレ
セプターをコードするDNAを導入した細胞、本発明に使
用されるTAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセ
プターをコードするDNAを導入した動物又は植物から産
生される蛋白質を、精製した状態であるいは粗精製の状
態で使用することができる。
1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプター)のい
ずれか一つを支持体に結合させる。該蛋白質を支持体に
結合させるには、標準的な方法で該蛋白質を支持体に固
相化すればよい。蛋白質を結合させる支持体としては、
例えば不溶性の多糖類、例えばアガロース、デキストラ
ン、セルロース、合成樹脂、例えばポリスチレン、ポリ
アクリルアミド、シリコン等が挙げられる。より具体的
にはそれらを原料として製造される市販のビーズ、プレ
ートが用いられる。ビーズの場合、これらが充填された
カラム等を用いてもよい。プレートの場合、マルチウェ
ルプレート(96穴マルチウェルプレート等)やバイオセ
ンサーチップが挙げられる。蛋白質と支持体を結合させ
るには、化学結合、物理的な吸着等を利用する、通常用
いられる方法を用いればよい。また、蛋白質を特異的に
認識する抗体を予め支持体に結合せしめ、この抗体と蛋
白質とを結合させることもできる。さらに、アビジン/
ビオチンを介して結合させることができる。
イプIIレセプターとの結合は、通常緩衝液中で行われ
る。緩衝液としては、例えばリン酸緩衝液、Tris緩衝液
等が使用される。また、インキュベートの条件として
は、すでによく用いられている条件、例えば4℃〜室温
にて1時間〜24時間のインキュベーションが挙げられ
る。インキュベート後の洗浄は、TAB1とXIAP、XIAPとTG
F-βタイプI又はタイプIIレセプターとの結合を妨げな
いものであれば何でもよく、例えば界面活性剤を含む緩
衝液が使用される。界面活性剤としては、例えば0.05%T
ween 20が使用される。
は、例えばペプチド、ポリペプチド、合成化合物、微生
物発酵物、海洋生物抽出物、植物抽出物、原核細胞紬出
物、真核単細胞抽出物又は動物細胞抽出物あるいはそれ
らのライブラリーが挙げられる。これらの被験試料に含
まれる物質はTAB1とXIAP、XIAPとTGF-βタイプI又はタ
イプIIレセプターとの結合に対し阻害的に作用すると予
想される物質である。これらの阻害物質はTAB1に対する
XIAPの結合又はXIAPに対するTGF-βタイプI又はタイプI
Iレセプターとの結合を阻害する。これらの阻害物質
は、TGF-βのシグナル伝達を抑制あるいは活性化する。
XIAPの結合又はXIAPに対するTGF-βタイプI又はタイプI
Iレセプターの結合を阻害する物質を選択するには、適
切な条件下でインキュベート及び洗浄することにより、
特異的な結合と非特異的な結合を分離することができ
る。そして、本発明に使用されるTAB1に対するXIAPの結
合又はXIAPに対するTGF-βタイプI又はタイプIIレセプ
ターの結合状態を評価すればよい。
験試料を蛋白質に接触させる群と共にコントロール群を
設置してもよい。コントロール群としては、被験試料を
含まない陰性コントロール群又はTAB1とXIAP又はXIAPと
TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの明らかな結
合阻害物質を含む陽性コントロール群あるいはその両群
をおくことができる。
測定する際、単に結合した蛋白質を検出するだけでもよ
いし、又は結合した蛋白質を定量的に測定してもよい。
これらの場合、被験試料を含まない陰性コントロール群
で得られた結果、被験試料を含む群で得られた結果及び
/又は明らかな結合阻害物質を含む陽性コントロール群
で得られた結果を比較することにより、目的のTAB1とXI
AP又はXIAPとTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターと
の結合阻害物質を検出することができる。
らの数値を比較することにより、TAB1とXIAP又はXIAPと
TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの結合を阻害
する物質の活性を定量的に測定することもできる。定量
的に測定する場合、被験試料を含まない陰性コントロー
ル群で得られた数値と被験試料を適用した群で得られた
数値を比較することにより、目的のTAB1とXIAP又はXIAP
とTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの結合を阻
害する物質を検出することができる。被験試料中に目的
のTAB1とXIAP又はXIAPとTGF-βタイプI又はタイプIIレ
セプターとの結合を阻害する物質が含まれていれば、得
られた数値が減少することにより結合阻害物質を含む試
料を決定することができる。
又はXIAPとTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの
結合を阻害することがわかっている物質を既知量含む陽
性コントロール群で得られた数値により作成された標準
曲線を元に定量することができる。結合した蛋白質が多
い場合、その被験試料に含まれるTAB1とXIAP又はXIAPと
TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの結合を阻害
する物質の活性が低く、一方結合した蛋白質が少ない場
合、その被験試料に含まれるTAB1とXIAP又はXIAPとTGF-
βタイプI又はタイプIIレセプターとの結合を阻害する
物質の結合阻害活性が強いことが推測される。
プI又はタイプIIレセプターとの結合に対する阻害物質
のスクリーニング方法において、結合した蛋白質を検出
又は測定する手段として表面プラズモン共鳴現象を利用
したバイオセンサーを使用することができる。表面プラ
ズモン共鳴現象を利用したバイオセンサーは蛋白質―蛋
白質間の相互作用を微量の蛋白質を用いてかつ標識する
ことなく、表面プラズモン共鳴シグナルとしてリアルタ
イムに観察することが可能である(例えばBIAcore;Pha
rmacia製)。したがって、BIAcore等のバイオセンサー
を用いることによりTAB1とXIAP又はXIAPとTGF-βタイプ
I又はタイプIIレセプターとの結合を評価することが可
能である。すなわち、TAB1、XIAP、TGF-βタイプI又は
タイプIIレセプターのいずれかを固定化したセンサーチ
ップに、もう一方の蛋白質を接触させ、固定化したTAB
1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターに結合
する蛋白質を共鳴シグナルの変化として検出しようとす
るものである。
にセンサーチップCM5(Biosensor社)を活性化してTAB
1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターをセン
サーチップ上に固定化する。すなわち、EDC / NHS水溶
液(200mM EDC(N-ethyl-N'-(3-dimethylaminopropyl)
carbonate hydrochloride), 50mM NHS(N-hydroxysucc
inimide))によりセンサーチップを活性化した後、HBS
バッファー(10mM HEPES pH7.4, 150mM NaCl, 3.4mM ED
TA, 0.05%Tween20)によりセンサーチップを洗浄する。
作用を有する蛋白質をセンサーチップに接触させ、固定
化する。 HBSバッファーによりセンサーチップを洗浄
後、エタノールアミン溶液(1M ethanolamine hydrochl
oride, pH8.5)によりセンサーチップ上の残存活性基を
ブロックする。再び HBSバッファーによりセンサーチッ
プを洗浄し結合評価に用いる。次にHBSバッファーに溶
解した適量の蛋白質を注入する。このときにセンサーチ
ップに固定化されたTAB1、XIAP、TGF-βタイプI又はタ
イプIIレセプターに結合する相互作用を有する蛋白質の
量は共鳴シグナル値の増加として観察される。
XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターに相互作
用を有する蛋白質に引き続いて被験試料を注入する。ま
た被験試料を注入する群と共に、コントロール群を設置
してもよい。コントロール群としては被験試料を含まな
い陰性コントロール群又は明らかな結合阻害物質を含む
陽性コントロール群あるいはその両群をおくことができ
る。結合した蛋白質は共鳴シグナル値の変化量として定
量的に測定することができる。この場合、被験試料を含
まない陰性コントロール群で得られた結果、被験試料を
含む群で得られた結果及び/又は明らかな結合阻害物質
を含む陽性コントロール群で得られた結果を比較するこ
とにより、目的の結合阻害物質を検出、決定することが
できる。
プI又はタイプIIレセプターとの結合に対する阻害物質
のスクリーニング方法において、結合した蛋白質を検出
又は測定する手段として、いずれかの蛋白質を標識し、
結合した蛋白質の標識を検出又は測定することができ
る。例えば、前述のスクリーニング方法において、被験
試料とともに一方の蛋白質に接触させるもう一方の蛋白
質をあらかじめ標識しておき、被験試料とともにインキ
ュベートした後、洗浄して結合している蛋白質をその標
識により検出又は測定する。すなわち、好ましくは支持
体に結合させた一方の蛋白質に被験試料と標識したもう
一方の蛋白質を接触させる。インキュベートした後、洗
浄して、結合している蛋白質の標識を検出又は測定すれ
ばよい。
レセプターは、通常知られる方法により標識されること
ができる。標識物質としては、例えば放射性同位元素、
酵素、蛍光物質、ビオチン/アビジン等が挙げられる。
これらの標識物質は市販の標識物質を使用することがで
きる。放射性同位元素しては、例えば32P、33P、
131I、125I、3H、14C、35Sが挙げられる。酵素として
は、例えばアルカリフォスファターゼ、ホースラディッ
シュパーオキシダーゼ、β-ガラクトシダーゼ、β-グル
コシダーゼ等が挙げられる。蛍光物質としては、例えば
フロオロセインイソチオシアネート(FITC)、ローダミ
ンが挙げられる。これらは市販のものを入手することが
でき、公知の方法によって標識される。
きる。すなわち、いずれかの蛋白質を含む溶液をプレー
トに加え、一夜放置する。プレートを洗浄の後、蛋白質
の非特異的な結合を防ぐため例えばBSAでブロッキング
する。再び洗浄し、被験試料ともう一方の標識された蛋
白質をプレートに加える。同時に被験試料を含まない群
(陰性コントロール)及び/又は既知濃度の結合阻害物
質を加えた群(陽性コントロール)を置き、これらをイ
ンキュベートする。インキュベートの後、洗浄し結合し
た蛋白質を検出又は測定する。検出又は測定には、放射
性同位元素の場合液体シンチレーションにより検出又は
測定する。酵素の場合その基質を加え、基質の酵素的変
化、例えば発色を吸光度計により検出又は測定する。蛍
光物質の場合蛍光光度計により検出又は測定する。これ
らの結果を、コントロール群で得られた数値と比較すれ
ば阻害物質を含む被験試料を決定することができる。
プI又はタイプIIレセプターとの結合に対する阻害物質
のスクリーニング方法において、結合した蛋白質を検出
又は測定する手段として、一方の蛋白質を特異的に認識
する一次抗体を用いることができる。
て、一方の蛋白質に被験試料とともにもう一方の蛋白質
を接触させ、被験試料とともにインキュベートした後、
洗浄して結合している蛋白質をその蛋白質を特異的に認
識する一次抗体により検出又は測定する。すなわち、好
ましくは支持体に結合させた一方の蛋白質に被験試料と
もう一方の蛋白質を接触させる。インキュベートした
後、洗浄して、結合している蛋白質をその蛋白質を特異
的に認識する一次抗体により検出又は測定すればよい。
一次抗体は、好ましくは標識物質により標識されてい
る。
きる。すなわち、いずれかの蛋白質を含む溶液をプレー
トに加え、一夜放置する。プレートを洗浄の後、蛋白質
の非特異的な結合を防ぐため例えばBSAでブロッキング
する。再び洗浄し、被験試料ともう一方の蛋白質をプレ
ートに加える。同時に被験試料を含まない群(陰性コン
トロール)及び/又は既知濃度の結合阻害物質を加えた
群(陽性コントロール)を置き、これらをインキュベー
トする。
に加えた蛋白質に対する抗体を加える。適度なインキュ
ベーションの後、プレートを洗浄しその蛋白質を特異的
に認識する一次抗体により蛋白質を検出又は測定する。
検出又は測定には、放射性同位元素の場合液体シンチレ
ーションにより検出又は測定する。酵素の場合その基質
を加え、基質の酵素的変化、例えば発色を吸光度計によ
り検出又は測定する。蛍光物質の場合蛍光光度計より検
出又は測定する。これらの結果を、コントロール群で得
られた数値と比較すれば阻害物質を含む被験試料を決定
することができる。
タイプI又はタイプIIレセプターとの結合に対する阻害
物質のスクリーニング方法において、結合した蛋白質を
検出又は測定する手段として、TAB1、XIAP、TGF-βタイ
プI又はタイプIIレセプターと融合した他のペプチド又
はポリペプチドを特異的に認識する一次抗体を用いるこ
とができる。
て、いずれかの蛋白質に被験試料とともにもう一方の蛋
白質を接触させ、被験試料とともにインキュベートした
後、洗浄して結合している蛋白質をその蛋白質と融合し
た他のペプチド又は蛋白質を特異的に認識する一次抗体
により検出又は測定する。すなわち、好ましくは支持体
に結合させた一方の蛋白質に被験試料ともう一方の蛋白
質を接触させる。インキュベートした後、洗浄して、結
合している蛋白質をその蛋白質と融合した他のペプチド
又はポリペプチドを特異的に認識する一次抗体により検
出又は測定すればよい。一次抗体は、好ましくは標識物
質により標識されている。
きる。すなわち、いずれかの蛋白質を含む溶液をプレー
トに加え、一夜放置する。プレートを洗浄の後、蛋白質
の非特異的な結合を防ぐため例えばBSAでブロッキング
する。再び洗浄し、被験試料と他のペプチド又はポリペ
プチドと融合したもう一方の蛋白質をプレートに加え
る。同時に被験試料を含まない群(陰性コントロール)
及び/又は既知濃度の結合阻害物質を加えた群(陽性コ
ントロール)を置き、これらをインキュベートする。
に加えた蛋白質と融合した他のペプチド又はポリペプチ
ドに対する抗体を加える。適度なインキュベーションの
後、プレートを洗浄しその蛋白質と融合した他のペプチ
ド又はポリペプチドを特異的に認識する一次抗体により
蛋白質を検出又は測定する。検出又は測定には、放射性
同位元素の場合液体シンチレーションにより検出又は測
定する。酵素の場合その基質を加え、基質の酵素的変
化、例えば発色を吸光度計により検出又は測定する。蛍
光物質の場合蛍光光度計により検出又は測定する。これ
らの結果を、コントロール群で得られた数値と比較すれ
ば阻害物質を含む被験試料を決定することができる。
イプI又はタイプIIレセプターとの結合に対する阻害物
質のスクリーニング方法において、結合した蛋白質を検
出又は測定する手段として、TAB1、XIAP、TGF-βタイプ
I又はタイプIIレセプターを特異的に認識する一次抗体
及び一次抗体を特異的に認識する二次抗体を用いること
ができる。
て、いずれかの蛋白質に被験試料とともにもう一方の蛋
白質を接触させ、被験試料とともにインキュベートした
後、洗浄して結合している蛋白質をその蛋白質を特異的
に認識する一次抗体及び一次抗体を特異的に認識する二
次抗体により検出又は測定する。すなわち、好ましくは
支持体に結合させたいずれかの蛋白質に被験試料ともう
一方の蛋白質を接触させる。インキュベートした後、洗
浄して、結合している蛋白質をその蛋白質を特異的に認
識する一次抗体及び一次抗体を特異的に認識する二次抗
体により検出又は測定すればよい。二次抗体は、好まし
くは標識物質により標識されている。
きる。すなわち、いずれかの蛋白質を含む溶液をプレー
トに加え、一夜放置する。プレートを洗浄の後、蛋白質
の非特異的な結合を防ぐため例えばBSAでブロッキング
する。再び洗浄し、被験試料ともう一方の蛋白質をプレ
ートに加える。同時に被験試料を含まない群(陰性コン
トロール)及び/又は既知濃度の結合阻害物質を加えた
群(陽性コントロール)を置き、これらをインキュベー
トする。
に加えた蛋白質と融合した他のペプチド又はポリペプチ
ドに対する一次抗体を加える。適度なインキュベーショ
ンの後、プレートを洗浄し、次いで一次抗体を特異的に
認識する二次抗体を加える。適度なインキュベーション
の後、洗浄して、その蛋白質を特異的に認識する一次抗
体を特異的に認識する二次抗体により蛋白質を検出又は
測定する。検出又は測定には、放射性同位元素の場合液
体シンチレーションにより検出又は測定する。酵素の場
合その基質を加え、基質の酵素的変化、例えば発色を吸
光度計により検出又は測定する。蛍光物質の場合蛍光光
度計により検出又は測定する。これらの結果を、コント
ロール群で得られた数値と比較すれば阻害物質を含む被
験試料を決定することができる。
プI又はタイプIIレセプターとの結合に対する阻害物質
のスクリーニング方法において、結合した蛋白質を検出
又は測定する手段として、TAB1、XIAP、TGF-βタイプI
又はタイプIIレセプターと融合した他のペプチド又はポ
リペプチドを特異的に認識する一次抗体及び一次抗体を
特異的に認識する二次抗体を用いることができる。
て、いずれかの蛋白質に被験試料とともにもう一方の蛋
白質を接触させ、被験試料とともにインキュベートした
後、洗浄して結合している蛋白質をその蛋白質と融合し
た他のペプチド又はポリペプチドを特異的に認識する一
次抗体及び一次抗体を特異的に認識する二次抗体により
検出又は測定する。すなわち、好ましくは支持体に結合
させた一方の蛋白質に被験試料ともう一方の蛋白質を接
触させる。インキュベートした後、洗浄して、結合して
いる蛋白質をその蛋白質と融合した他のペプチド又はポ
リペプチドを特異的に認識する一次抗体及び一次抗体を
特異的に認識する二次抗体により検出又は測定すればよ
い。二次抗体は、好ましくは標識物質により標識されて
いる。
きる。すなわち、いずれかの蛋白質を含む溶液をプレー
トに加え、一夜放置する。プレートを洗浄の後、蛋白質
の非特異的な結合を防ぐため例えばBSAでブロッキング
する。再び洗浄し、被験試料と他のペプチド又はポリペ
プチドと融合したもう一方の蛋白質をプレートに加え
る。同時に被験試料を含まない群(陰性コントロール)
及び/又は既知濃度の結合阻害物質を加えた群(陽性コ
ントロール)を置き、これらをインキュベートする。
に加えた蛋白質と融合した他のペプチド又はポリペプチ
ドに対する一次抗体を加える。適度なインキュベーショ
ンの後、プレートを洗浄し、次いで一次抗体を特異的に
認識する二次抗体を加える。適度なインキュベーション
の後、洗浄して、その蛋白質と融合した他のペプチド又
はポリペプチドを特異的に認識する一次抗体を特異的に
認識する二次抗体により蛋白質を検出又は測定する。検
出又は測定には、放射性同位元素の場合液体シンチレー
ションにより検出又は測定する。酵素の場合その基質を
加え、基質の酵素的変化、例えば発色を吸光度計により
検出又は測定する。蛍光物質の場合蛍光光度計により検
出又は測定する。これらの結果を、コントロール群で得
られた数値と比較すれば阻害物質を含む被験試料を決定
することができる。
ISA(Enzyme-linked ImmunosorbentAssay)により次の
ようにして行うことができる。すなわち、他のペプチド
又はポリペプチド、例えば6×Hisと融合したXIAPを固相
化バッファー(0.1 M NaHCO3、0.02% NaN3、pH9.6)に
より希釈する。96穴のイムノプレート(Nunc製)の各穴
に希釈したこの水溶液を適量加え4℃で一晩インキュベ
ートする。
なるよう調製したもの)で3回各穴を洗浄後、 PBSに溶
解した5% BSA(SIGMA 製)溶液200ml を加え、4℃で一
晩ブロッキングする。
希釈バッファー(1% BSA、0.5% Tween20、PBS)で希釈
した他のペプチド又はポリペプチド、例えばFLAGと融合
したTAB1と被験試料を適量加え、室温で1時間インキュ
ベートする。洗浄バッファーで各穴を3回洗浄し、希釈
バッファーで3 mg/mlに希釈したマウス抗FLAG M2抗体
(IBI製)を100 ml各穴に加え、室温で1時間インキュ
ベートする。
バッファーで 1000 倍に希釈したアルカリフォスファタ
ーゼ標識ヤギ抗マウスIgG抗体(ZYMED製)を 100 ml 各
穴に加え、室温で1時間インキュベートする。洗浄バッ
ファーで5回各穴を洗浄し、発色溶液(基質バッファ
ー;50 mM NaHCO3、10mM MgCl2、pH9.8に 1 mg/mlの濃
度に溶解したp-フェニルフォスフェート;SIGMA製)を
100 ml 各穴に加え、室温で反応させた後に 405 nmでの
吸光度をマイクロプレートリーダー(Model3550、BIO-R
AD 製)を用いて測定する。これらの結果を、陰性コン
トロール群及び/又は陽性コントロール群で得られた数
値と比較すれば阻害物質を含む被験試料を決定すること
ができる。
oughput Screening(HTS)にも使用することができる。
具体的には、ブロッキングまでを手作業で行い、その後
の反応はロボットによって行うことでオートメーション
化し、High Throughput screeningを実現することがで
きる。すなわち、他のペプチド又はポリペプチド、例え
ば6×Hisと融合したXIAPを固相化バッファー(0.1 M Na
HCO3、0.02% NaN3、pH9.6)により希釈する。96穴のイ
ムノプレート(Nunc製)の各穴に希釈したこの水溶液を
適量加え4℃で一晩インキュベートする。
なるよう調製したもの)で3回各穴を洗浄後、 PBSに溶
解した5% BSA(SIGMA 製)溶液200 mlを加え、4℃で一
晩ブロッキングする。次に、例えばBiomek2000 HTS sys
tem(Beckman製)にブロッキング済みのイムノプレートを
セットしてシステムのコントロールプログラムを実行す
る。この際、分注機としてはBiomek 2000分注機(Beckma
n製)あるいはMultipipette96穴同時分注器(Sagian製)を
用いることでイムノプレート各穴への溶液の分注や溶液
の除去を行うことができる。また、イムノプレートの各
穴の洗浄にはEL404マイクロプレートウオッシャー(Bio
Tek社)を用いることができる。また、吸光度の測定には
SPECTRAmax250プレートリーダー(Molecular Devices製)
を用いることができる。
定する。すなわち洗浄バッファーで3回各穴を洗浄し、
被験試料と希釈バッファー(1% BSA、0.5% Tween20、PB
S)で希釈した他のペプチド又はポリペプチド、例えばM
BP(マルトース結合蛋白質)と融合したTAB1を適量加え
る。同時に被験試料を含まない群(陰性コントロール)
及び既知濃度の結合阻害物質を加えた群(陽性コントロ
ール)を置き、これらを室温で1時間インキュベートす
る。
バッファーで5000倍に希釈したウサギ抗MBP抗血清(New
England Biolabs製)を100 ml各穴に加え、室温で1時
間インキュベートする。洗浄バッファーで各穴を3回洗
浄し、希釈バッファーで 5000倍に希釈したアルカリフ
ォスファターゼ標識ヤギ抗ウサギIgG抗体(TAGO製)を1
00 ml 各穴に加え、室温で1時間インキュベートする。
溶液(基質バッファー;50 mM NaHCO3、10mM MgCl2、pH
9.8に 1 mg/mlの濃度に溶解したp-ニトロフェニルフォ
スフェート;SIGMA製)を 100 ml 各穴に加え、室温で
反応させた後に 405 nmでの吸光度をマイクロプレート
リーダー、Biomekプレートリーダー(Beckman / Molecul
arDevices製)を用いて測定する。これらの結果を、コン
トロール群で得られた数値と比較すれば阻害物質を含む
被験試料を同定することができる。
体や市販のキットに含まれる抗体を用いることもできる
し、公知の手段を用いて得られるモノクローナル抗体ま
たはポリクローナル抗体を用いることもできる。モノク
ローナル抗体は、所望の感作抗原を使用して、これを通
常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を
通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通
常のスクリーニング法により、モノクローナル抗体産生
細胞をスクリーニングすることによって作製できる。
リクローナル抗体を作製するには次のようにすればよ
い。例えば、抗体取得の感作抗原は、その由来となる動
物種に制限されないが、実際に本発明で使用するペプチ
ド又はポリペプチドの由来となる哺乳動物、例えばヒ
ト、マウス又はラット由来のものが好ましい。これらの
うち、特にヒト由来の感作抗原が好ましい。例えば、ヒ
トTAB1、ヒトXIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプ
ターを感作抗原として使用する場合、それらの塩基配列
及びアミノ酸配列は本明細書に開示される遺伝子配列を
用いて得ることができる。また、ヒトTAB1、ヒトXIAP、
TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの融合に付さ
れる他のペプチドやポリペプチドを感作抗原として用い
る場合、それらのペプチドやポリペプチドを化学的に合
成するか、遺伝子工学的手法により得ることができる。
ペプチド又はポリペプチドは、その全長を使用してもよ
いし、またその断片も用いることができる。断片として
は、例えばC末端断片やN末端断片が挙げられる。感作抗
原で免疫される哺乳動物としては、特に限定されるもの
ではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考
慮して選択するのが好ましく、一般的にはげっ歯目、ウ
サギ目、霊長目の動物が使用される。
ス、ラット、ハムスター等が使用される。ウサギ目の動
物としては、例えば、ウサギが使用される。霊長目の動
物としては、例えばサルが使用される。サルとしては、
狭鼻下目のサル(旧世界ザル)、例えば、カニクイザ
ル、アカゲザル、マントヒヒ、チンパンジー等が使用さ
れる。感作抗原を動物に免疫するには、公知の方法にし
たがって行われる。例えば、一般的方法として、感作抗
原を哺乳動物の腹腔内または、皮下に注射することによ
り行われる。具体的には、感作抗原をPBS(Phosphate-
Buffered Saline) や生理食塩水等で適当量に希釈、懸
濁したものを所望により通常のアジュバント、例えば、
フロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺
乳動物に4〜21日毎に数回投与するのが好ましい。ま
た、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することができ
る。このように免疫し、血清中で所望の抗体レベルが上
昇するのを常法により確認する。
血清中の所望の抗体レベルが上昇したことを確認した
後、抗原を感作した哺乳動物の血液を取り出す。この血
液から公知の方法により血清を分離する。ポリクローナ
ル抗体としてポリクローナル抗体を含む血清を使用して
もよいし、必要に応じこの血清からポリクローナル抗体
を含む画分をさらに単離してもよい。
を感作した哺乳動物の血清中に所望の抗体レベルが上昇
するのを確認した後に、哺乳動物から免疫細胞を取り出
し、細胞融合に付せばよい。この際、細胞融合に使用さ
れる好ましい免疫細胞として、特に脾細胞が挙げられ
る。前記免疫細胞と融合される他方の親細胞としての哺
乳動物のミエローマ細胞としては、既に公知の種々の細
胞株が好適に使用される。
は基本的には公知の方法、例えば、ミルステインらの方
法(Galfre, G. and Milstein, C., Methods Enzymol.
(1981) 73, 3-46) 等に準じて行うことができる。より
具体的には、前記細胞融合は例えば、細胞融合促進剤の
存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤
としては例えば、ポリエチレングリコール(PEG)、
センダイウィルス(HVJ)等が使用され、更に所望に
より融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の
補助剤を添加使用することもできる。
は、例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を1〜1
0倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液
としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適
なRPMI1640培養液、MEM培養液、その他、こ
の種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能で
あり、さらに、牛胎児血清(FCS)等の血清補液を併
用することもできる。
胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め、37
℃程度に加温したPEG溶液、例えば、平均分子量10
00〜6000程度のPEG溶液を通常、30〜60%
(w/v)の濃度で添加し、混合することによって目的
とする融合細胞(ハイブリドーマ)が形成される。続い
て、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去す
る操作を繰り返すことによりハイブリドーマの生育に好
ましくない細胞融合剤等を除去できる。
液、例えばHAT培養液(ヒポキサンチン、アミノプテ
リンおよびチミジンを含む培養液)で培養することによ
り選択される。当該HAT培養液での培養は、目的とす
るハイブリドーマ以外の細胞(非融合細胞)が死滅する
のに十分な時間、通常数日〜数週間継続する。ついで、
通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生する
ハイブリドーマのスクリーニングおよびクローニングが
行われる。
記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球、例えばEB
ウィルスに感染したヒトリンパ球をin vitroで蛋白質あ
るいはペプチド又はポリペプチドやそれらの発現細胞又
はその溶解物で感作し、感作リンパ球をヒト由来の永久
分裂能を有するミエローマ細胞、例えばU266と融合
させ、ペプチド又はポリペプチドへの結合活性を有する
所望のヒト抗体を産生するハイブリドーマを得ることも
できる(特開昭63-17688)。
有するトランスジェニック動物に抗原となる蛋白質ある
いはペプチド又はポリペプチド、それらの発現細胞又は
その溶解物を免疫して抗体産生細胞を取得し、これをミ
エローマ細胞と融合させたハイブリドーマを用いて本発
明に使用される蛋白質あるいはペプチド又はポリペプチ
ドに対するヒト抗体を取得してもよい(国際特許出願公
開番号WO92−03918、WO93−2227、W
O94−02602、WO94−25585、WO96
−33735およびWO96−34096参照)。この
ようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハ
イブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが
可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可
能である。
体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法に
したがい培養し、その培養上清として得る方法、あるい
はハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に移植
して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用され
る。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適してお
り、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適してい
る。ハイブリドーマを用いて抗体を産生する以外に、抗
体を産生する感作リンパ球等の免疫細胞を癌遺伝子 (on
cogene) により不死化させた細胞を用いてもよい。
また、遺伝子組換え技術を用いて産生させた組換え型抗
体として得ることができる。例えば、組換え型抗体は、
抗体遺伝子をハイブリドーマ又は抗体を産生する感作リ
ンパ球等の免疫細胞からクローニングし、適当なベクタ
ーに組み込んで、これを宿主に導入し産生させる。本発
明には、この組換え型抗体を用いることができる(例え
ば、Borrebaeck, C. A. K. and Larrick, J. W., THERA
PEUTIC MONOCLONAL ANTIBODIES, Published inthe Unit
ed Kingdom by MACMILLAN PUBLISHERS LTD, 1990 参照)
。
性を有するかぎり、その抗体断片や抗体修飾物であって
よい。例えば、抗体断片としては、Fab、F(ab′)
2、Fv又はH鎖とL鎖のFvを適当なリンカーで連結
させたシングルチェインFv(scFv)が挙げられ
る。具体的には、抗体を酵素、例えば、パパイン、ペプ
シンで処理し抗体断片を生成させるか、又は、これら抗
体断片をコードする遺伝子を構築し、これを発現ベクタ
ーに導入した後、適当な宿主細胞で発現させる。
胞内外、宿主から分離し均一にまで精製することができ
る。本発明で使用される抗体の分離、精製は通常のタン
パク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよ
く、何ら限定されるものではない。例えば、アフィニテ
ィークロマトグラフィー等のクロマトグラフィーカラ
ム、フィルター、限外濾過、塩析、透析、SDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動、等電点電気泳動等を適宜選
択、組み合わせれば、抗体を分離、精製することができ
る(Antibodies : A Laboratory Manual. Ed Harlow and
David Lane, Cold Spring Harbor Laboratory, 1988)
。
るカラムとしては、プロテインAカラム、プロテインG
カラムが挙げられる。例えば、プロテインAカラムを用
いたカラムとして、Hyper D, POROS, Sepharose F. F.
(Pharmacia) 等が挙げられる。アフィニティークロマト
グラフィー以外のクロマトグラフィーとしては、例え
ば、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグ
ラフィー、ゲル濾過、逆相クロマトグラフィー、吸着ク
ロマトグラフィー等が挙げられる(Strategies for Prot
ein Purification and Characterization : A Laborato
ry Course Manual. Ed Daniel R. Marshak et al., Col
d Spring Harbor Laboratory Press, 1996) 。これらの
クロマトグラフィーはHPLC、FPLC等の液相クロ
マトグラフィーを用いて行うことができる。
認は、公知の方法、例えばELISA、EIA(酵素免
疫測定法)、RIA(放射免疫測定法)あるいは蛍光抗
体法を用いることができる。上記のように得られた一次
抗体又は二次抗体は、通常知られる方法により標識され
ることができる。標識物質としては、例えば放射性同位
元素、酵素、蛍光物質等が挙げられる。これらの標識物
質は市販の標識物質を使用することができる。放射性同
位元素しては、例えば32P、33P、 131I、125I、3H、
14C、35Sが挙げられる。酵素としては、例えばアルカリ
フォスファターゼ、ホースラディッシュパーオキシダー
ゼ、β-ガラクトシダーゼ、β-グルコシダーゼ等が挙げ
られる。蛍光物質としては、例えばフロオロセインイソ
チオシアネート(FITC)、ローダミンが挙げられる。こ
れらの標識物質として市販のものを入手して、公知の方
法によって標識化を行えばよい。
系のもう一つの具体例は、細胞を用いたin vitroのアッ
セイ系において行われる。TAB1とXIAPとの結合を阻害す
る物質のスクリーニング方法においては、TAB1及びXIAP
を発現する細胞に被験試料を導入及び/又は接触させ、
次いでTAB1又はXIAPを介して伝達される生物学的活性を
検出及び/又は測定してもよい。
の結合を阻害する物質のスクリーニング方法において
は、XIAP及びTGF-βタイプIレセプターを発現する細胞
に被験試料を導入及び/又は接触させ、次いでXIAP又は
TGF-βタイプIレセプターを介して伝達される生物学的
活性を検出及び/又は測定してもよい。また、XIAPとTG
F-βタイプIIレセプターとの結合を阻害する物質のスク
リーニング方法においては、XIAP及びTGF-βタイプIIレ
セプターを発現する細胞に被験試料を導入及び/又は接
触させ、次いでXIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを介
して伝達される生物学的活性を検出及び/又は測定して
もよい。
とTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターは使用する細
胞内において発現される。後述の実施例において、TAB1
とXIAPが結合することによりTAB1及びTAK1を介した生物
学的活性を増強することが明らかになった。また、XIAP
とTGF-βタイプI及びタイプIIレセプターが結合するこ
とが明らかになった。したがって、TAB1とXIAP又はXIAP
とTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターの結合に対す
る阻害物質によりXIAPの生物学的活性を介したシグナル
伝達が阻害される。TAB1及びTGF-βレセプターを介して
TGF-βの生物学的活性を伝達することがすでに知られて
いる。したがって、TAB1とXIAP又はTGF-βタイプI又は
タイプIIレセプターとXIAPとの結合を阻害し、XIAPを介
したTGF-βのシグナル伝達を阻害することにより、TGF-
βの生物学的活性が阻害される。
Iレセプターを発現する細胞は、好ましくは天然にこれ
ら全てを発現しない細胞にTAB1とXIAP及びTGF-βタイプ
I及びタイプIIレセプターをコードするDNAを導入するこ
とにより作製することができる。また、TGF-βタイプI
及びタイプIIレセプターを発現する細胞にTAB1をコード
する遺伝子とXIAPを発現する遺伝子を通常用いられる方
法により導入すればよい。
βタイプI及びタイプIIレセプターを発現する細胞は、
遺伝子工学的に作製することができる。例えば、TGF-β
タイプI及びタイプIIレセプターを発現する細胞にTAB1
をコードする遺伝子を通常用いられる方法により導入す
ればよい。あるいは、TGF-βタイプI及びタイプIIレセ
プターを発現しない細胞にTAB1又はTAB1とXIAPをコード
する遺伝子を通常用いられる方法により導入すればよ
い。後述の実施例において、XIAPを介してTGF-βの生物
学的活性が伝達されることから、TAB1とXIAP及びTGF-β
タイプI及びタイプIIレセプターとを介したTGF-βのシ
グナル伝達を検出又は測定することが可能となる。TAB
1、XIAP、TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターをコー
ドする遺伝子は本明細書に前記した方法で得ることがで
きる。
はTAB1及びTGF-βレセプターを発現する細胞は本発明に
使用し得る限りいかなる細胞を用いることができる。本
発明に使用し得る細胞としては、原核細胞と真核細胞が
挙げられる。原核細胞としては、細菌細胞等が挙げられ
る。真核細胞としては、哺乳動物細胞、昆虫細胞、酵母
細胞等が挙げられる。TGF-βの生物学的活性は、細胞外
マトリックス蛋白質産生亢進作用、細胞増殖阻害作用、
単球遊走作用、生理活性物質誘導作用、免疫抑制作用、
βアミロイド蛋白質沈着作用等である。したがって、TG
F-βの生物学的活性を検出するにはこれらの作用を検出
又は測定すればよい。
れらの作用を検出又は測定するためには、これまでにこ
れらの作用を発現することが知られている細胞株等を用
いることができる。例えば、細胞外マトリックス蛋白質
産生亢進作用を検出又は測定するには、ヒト線維肉腫細
胞株HT1080細胞等を用いることができる。細胞増殖阻害
作用を検出又は測定するには、ミンク肺上皮細胞株Mv1L
u細胞等を用いることができる。単球遊走作用を検出又
は測定するには、単核球等を用いることができる。生理
活性物質誘導作用を検出又は測定するには、単核球等を
用いることができる。免疫抑制作用を検出又は測定する
には、単核球等を用いることができる。そして、βアミ
ロイド蛋白質沈着作用を検出又は測定するには、TGF-β
とβアミロイドを過剰発現するトランスジェニックマウ
ス(由来の初代培養細胞)を用いることができる。
TAB1、TGF-βタイプI及び/又はタイプIIレセプターを
コードする遺伝子を導入し、被験試料を加え、TGF-βの
生物学的活性を反映した作用を検出又は測定すればよ
い。被験試料の導入及び接触は、被験試料を細胞培養液
中へ添加することで行えばよい。
学的活性に応答して活性化するレポーター遺伝子の発現
量増加によって検出及び/又は測定することができる。
TAB1の生物学的活性に応答して活性化するレポーター遺
伝子としては、PAI-1、ファイブロネクチン、タイプIコ
ラーゲン、タイプIVコラーゲンを使用することができ
る。レポーター遺伝子として、例えばファイブロネクチ
ンを使用する場合、その発現量を検出及び/又は測定す
るためには、ノーザン解析を行えばよい。
プI又はタイプIIレセプターは他のポリペプチドとの融
合蛋白質であってよい。 TAB1、XIAP、TGF-βタイプI又
はタイプIIレセプターと融合に付される他のポリペプチ
ドとは、本発明のスクリーニング方法で使用されうる限
りいかなるポリペプチドであってよいが、好ましくは転
写調節因子である。
伝子の転写を活性化することが知られているヘテロダイ
マーからなる転写調節因子の各々のサブユニットとTAB1
及びXIAPを融合させたDNAを構築し、それらを発現ベク
ターに含めて細胞に導入する。TAB1とXIAPとの結合を阻
害する物質が被験試料に含まれていない場合、TAB1とXI
APが融合したサブユニットがヘテロダイマーを形成し、
そしてそのヘテロダイマーからなる転写調節因子がDNA
に結合してレポーター遺伝子が活性化する。また、TAB1
とXIAPとの結合を阻害する物質が被験試料に含まれてい
る場合、TAB1とXIAPとの結合が阻害され、その結果転写
調節因子のサブユニットがヘテロダイマーを形成でき
ず、レポーター遺伝子が活性化しない。レポーター遺伝
子の発現量の変化を調べることにより、目的の阻害物質
を検出又は測定することができる。このような系におい
てレポーター遺伝子の発現量の変化を調べる場合、two
hybrid system(Fields, S., and Sternglanz, R., Tre
nds. Genet. (1994) 10, 286-292)を使用することがで
きる。
わち、TAB1をコードする遺伝子とLexAのDNA結合ドメイ
ンをコードする遺伝子とを連結し発現ベクターを作製す
る。全長又は1位から418位からなるTAB1をコードする
遺伝子を酵母ツーハイブリッド発現プラスミドpBTM116
(Vojtek, A.B., et al., Cell (1993) 74, 205-214)
にフレームが一致するように挿入し、発現プラスミドを
構築する。
位から326位のアミノ酸からなるXIAPをコードする遺伝
子とGAL4転写活性化ドメインをコードする遺伝子とを連
結せしめることにより発現ベクターを作製する。XIAPを
コードする遺伝子は酵母ツーハイブリッド発現プラスミ
ドpGAD10(CLONTECH製)にフレームが一致するように挿
入することで構築できる。
により転写が調節されるHIS3遺伝子を組み込んだ酵母L4
0株を各ツーハイブリッド発現プラスミドを用いて形質
転換した後、ヒスチジン不含合成培地上でインキュベー
トするとタンパクの相互作用が認められたときのみ酵母
の生育が観察される。このように、形質転換体の生育程
度によりレポーター遺伝子の発現量の増加を調べること
ができ、TAB1とXIAPとの結合に対する阻害物質をスクリ
ーニングすることができる。
によりPAI-1(Plasminogen activator inhibitor type
1)の発現が上昇する。XIAPとTAB1及び/又はTAK1をMv1
Lu細胞で強制発現させ、TGF-β1 刺激によるPAI-1の発
現への影響を検討すればよい。XIAP発現ベクター、TAB1
及び/又はTAK1発現ベクターはpCOS1のEcoRIならびにNo
tI制限酵素部位にXIAP、TAB1及び/又はTAK1をコードす
る遺伝子を挿入し、それぞれ発現プラスミドを構築すれ
ばよい。
細胞及び挿入遺伝子を含まないpCOS1を導入したコント
ロール細胞にPAI-1遺伝子由来のTGF-β応答性エレメン
トによって制御されるルシフェラーゼ遺伝子を含むレポ
ーター遺伝子構築物(p3TP-Lux;Carcamo, J. et al.,
Mol. Cell. Biol., (1994) 14, 3810-3821)を導入し、
それぞれ10ng/mlのTGF-β1またはTGF-β1を含まない培
地中で培養する。その細胞抽出物中のルシフェラーゼ活
性を測定する。
加によりルシフェラーゼ活性は増加するのに対し、被験
試料を加えた細胞においてはルシフェラーゼ活性が増加
しない。すなわち、被験試料に含まれるTAB1とXIAPとの
結合に対する阻害物質がTGF-β1刺激によるPAI-1の発現
量増加を阻害する。このようにして、レポーター遺伝子
の発現量の増加を調べることができ、TAB1とXIAPとの結
合に対する阻害物質をスクリーニングすることができ
る。
れるTAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-βタイプI又はタイプI
Iレセプターとの結合に対する結合阻害物質は、スクリ
ーニング方法を用いて被験化合物、例えばペプチド、タ
ンパク質、非ペプチド性化合物、合成化合物、微生物発
酵生産物、海洋生物抽出液、植物抽出液、細胞抽出液、
動物組織抽出液をスクリーニングすることにより得るこ
とができる。これらの被験化合物は新規な化合物であっ
てもよいし、公知の化合物であってもよい。
はXIAPとTGF-βタイプI及び/又はタイプIIレセプター
との結合を阻害する化合物である。本発明のスクリーニ
ング方法を用いて得られるTAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-
βタイプI及び/又はタイプIIレセプターとの結合に対
する結合阻害物質の構造式の一部を、付加、欠失あるい
は置換により変換される化合物も本発明のスクリーニン
グ方法を用いて得られるTAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-β
タイプI及び/又はタイプIIレセプターとの結合に対す
る結合阻害物質に含まれる。
たTAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-βタイプI又はタイプII
レセプターとの結合に対する結合阻害物質は、TGF-βの
シグナル伝達を活性化する物質でも有り得るし、又はTG
F-βのシグナル伝達を抑制する物質でも有り得る。TGF-
βは、細胞外マトリックス蛋白質産生亢進作用、細胞増
殖阻害作用、単球遊走作用、生理活性物質誘導作用、免
疫抑制作用を有することが知られている。TGF-βレセプ
ターとXIAP及びTAB1は各々が結合することにより、TGF-
βのシグナル伝達系を担う。したがって、本発明のスク
リーニング方法により得られたTAB1とXIAP、又はXIAPと
TGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの結合阻害物
質はTGF-βのシグナル伝達を活性化あるいは抑制する物
質として得ることができる。
れるTAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-βタイプI又はタイプI
Iレセプターとの結合に対する結合阻害物質をヒトや哺
乳動物、例えばマウス、ラット、モルモット、ウサギ、
ニワトリ、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、サル、マ
ントヒヒ、チンパンジーの医薬として使用する場合、通
常知られる方法に従って実施することができる。
カプセル剤として経口的に、あるいは水もしくはそれ以
外の薬学的に許容し得る液との無菌性溶液、又は懸濁液
剤の注射剤の形で非経口的に使用できる。例えばTAB1と
XIAP又はTGF-βタイプI又はタイプIIレセプターとの結
合に対する結合阻害物質を生理学的に認められる単体、
賦形剤、ベヒクル、防腐剤、安定剤、吸着防止剤ととも
に一般に認められた製剤に要求される単位用量形態で混
和することによって製造することができる。これら製剤
における有効成分量は指示された範囲の適当な容量が得
られるようにするものである。
添加剤としては、例えばゼラチン、HSA(ヒト血清アル
ブミン)、結晶性セルロース、アルギン酸、ステアリン
酸マグネシウム、ショ糖、乳糖が用いられる。注射用の
水溶液としては、例えば生理食塩水、ブドウ糖やその他
の補助薬を含む等張液、例えばD−ソルビトール、D−
マンノース、D−マンニトール、塩化ナトリウムが挙げ
られ、適当な溶解補助剤、例えばアルコール、具体的に
はエタノール、ポリアルコール、例えばプロピレングリ
コール、ポリエチレングリコール、非イオン性界面活性
剤、例えばポリソルベート80TM、HCO−50、安息
香酸ベンジル、ベンジルアルコール、リン酸塩緩衝液、
酢酸ナトリウム緩衝液、塩化ベンザルコニウム、塩酸プ
ロカイン、ベンジルアルコール、フェノール、と併用し
てもよい。
Iレセプターの結合に対する結合阻害物質の投与量は、
症状により差異はあるが、経口投与の場合、一般的に成
人(体重60kgとして)においては、1日あたり約0.
1から100mg、好ましくは約1.0から50mg、より
好ましくは約1.0から20mgである。非経口的に投与
する場合は、その1回投与量は投与対象、対象臓器、症
状、投与方法によっても異なるが、例えば注射剤の形で
は通常成人(体重60kgとして)においては、1日あた
り約0.01から30mg、好ましくは約0.1から20
mg、より好ましくは約0.1から10mg程度を静脈注射
により投与するのが好都合である。他の動物の場合も、
体重60kg当たりに換算した量を投与することができ
る。以下に実施例を示して本発明をより詳細に説明する
が、本発明の範囲を限定するものではない。
XIAPの同定ならびにその解析 実施例1 TAB1結合分子XIAPの単離 TGF-βスーパーファミリーに属する各因子は、細胞の増
殖、分化および形態形成において多様な活性を発揮す
る。TGF-βスーパーファミリーに属する各因子は、I型
およびII型Ser/Thrキナーゼレセプターからなるヘテロ
マーのレセプター複合体を介してシグナルを伝達する。
リガンドがII型レセプターに結合した後、II型レセプタ
ーがI型レセプターをリン酸化し、I型レセプターが活性
化されシグナルを伝える(Wrana, J.L., et al., Natur
e, 370, 341-347, 1994)。
ル伝達経路において機能する2つの蛋白質、TAK1(Yamag
uchi, K., et al., Science, 270, 2008-2011, 1995)
およびTAB1が同定された(Shibuya, H., et al., Scien
ce, 272, 1179-1182, 1996)。TAK1はMAPキナーゼキナ
ーゼキナーゼ(MAPKKK)ファミリーのメンバーであり、
TAB1はTAK1の活性化因子として機能する。
とを結び付ける作用機序はなお不明であり、さらに別の
シグナル伝達分子が関与していることが推察される。TA
B1のC末端の68アミノ酸部分[TAB1(437-504)]は、TAK1に
結合しこれを活性化するのに十分であることより(Shib
uya, H., et al., Science, 272, 1179 -1182, 199
6)、TAB1のN末端領域は他のシグナル伝達系の構成因子
と相互作用し、シグナル伝達を調節している可能性が考
えられる。さらにTAB1のC末端のTAK1結合ドメインを欠
くトランケート型TAB1[TAB1(1-418)]は、TGF-β応答の
ドミナントネガティブインヒビターとして機能し、TGF-
β誘導遺伝子発現およびTAK1活性化を阻害することが示
された(Shibuya H., et al., Science, 272, 1179-118
2, 1996; Shirakabe, K., et al., J. Biol. Chem. 27
2, 8141-8144, 1997)。従って、TAB1のN末端領域は蛋
白質-蛋白質相互作用を介してTGF-βのシグナル伝達に
関与していることが考えられる。
て、TAB1-TAK1の上流で機能する蛋白質を同定するた
め、酵母のツーハイブリッド法を用いてTAB1と相互作用
する分子を単離した。C末端を欠いたTAB1(1-418)をベイ
トとして用いて、ヒト脳cDNAライブラリー(CLONTECH
製)をスクリーニングした。すなわち、TAB1(1-418)発
現ベクターはLexAのDNA結合ドメイン(DBD)をコードす
る遺伝子を含有する発現ベクターpBTM116(Vojtek, A.
B., et al., Cell, 74, 205-214, 1993)にフレームが
一致するようにTAB1(1-418)をコードする遺伝子を挿入
することにより構築し、またヒト脳cDNAライブラリーは
GAL4転写活性化ドメイン(GAD)との融合タンパクとし
て発現するように構築されている。これらTAB1(1-418)
発現ベクターならびに1×106個クローンを含むcDNAライ
ブラリーを用いて酵母L40株を形質転換し、ヒスチヂン
欠損培地上で培養した。L40株はLexA結合部位を含むプ
ロモーターの下流にHIS3遺伝子を含有し、2種の分子の
相互作用が認められた場合のみヒスチヂンを含まない培
地上で生育でき、その結果15個の陽性クローンを得た。
これらの15個のクローンのうち、5個はIAPファミリーに
属するXIAP(MIHAまたはILPとしても知られている(Lis
ten, P., et al., Nature 379, 349-353, 1996; Uren,
A.G., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93, 4974-
4978, 1996; Duckett, C.S., et al., EMBO J. 15, 268
5 1996)と一致した。
性の確認 IAP蛋白質ははじめにバキュロウィルスにおいて同定さ
れ、進化過程において真核細胞の間で保存されており、
N末端に特徴的なバキュロウィルスIAPリピート(BIR)
およびC末端にRINGジンクフィンガードメインを含む。
動物細胞のIAP蛋白質としてはXIAPの他にc-IAP1、c-IAP
2が知られており、それら全てに3個のBIRモチーフおよ
び1個のRINGフィンガーモチーフが存在する(Clem, R.J
and Duckett, C.S. TIBTECH, 7, 337-339, 1997)(図
1)。c-IAP1およびc-IAP2は、73%のアミノ酸の同一性を
有するのに対し、XIAPはc-IAP1またはc-IAP2のいずれか
に対しても43%程度の同一性を示すに過ぎない。またc-I
AP1およびc-IAP2は、BIRモチーフを介して腫瘍壊死因子
(TNF)レセプター結合因子1(TRAF1)およびTRAF2と結
合することが示されたが、XIAPはいずれとも相互作用し
ない(Rothe, M., etal., Cell, 83, 1243-1252 1995;
Roy, N., et al., EMBO J., 16, 6914-6925,1997)。そ
こで、TAB1とIAPタンパクとの結合特異性をツーハイブ
リッド法を用いて明らかにした。
ドメイン(GAD)と融合タンパクとして発現するようなp
GAD-TAB1(Shibuya, H., et al., Science, 272, 1179-
1181, 1996)を用い、さらにc-IAP1(MIHB)、c-IAP2
(MIHC)、およびXIAP(MIHA)とDNA結合ドメイン(DB
D)との融合タンパクの発現ベクター(Uren, A., et a
l., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 93, 4974-4978, 199
6)を用いた。pGAD-TAB1といずれかのIAP発現ベクター
で酵母HF7c株を形質転換し、ヒスチヂン欠損培地上での
生育を調べることで、それぞれの相互作用の有無を確か
めた。
ターで形質転換した酵母のみヒスチヂン欠損培地上で生
育し、TAB1とXIAPとの相互作用が認められた。しかしな
がら、TAB1とc-IAP1またはc-IAP2とは相互作用が認めら
れなかった(図2)。したがって、TAB1はXIAPとのみ特
異的に相互作用することが示された。また、ツーハイブ
リッドスクリーニングにおいて単離されたクローンの中
にC末端RINGフィンガードメインを欠損していたXIAP(1-
326)が認められたことより、XIAPのN末端領域、恐らくB
IRモチーフを介してTAB1の相互作用することが示唆され
た。また同様にc-IAP1およびc-IAP2はそれらのN末端BIR
モチーフを介してTRAF1およびTRAF2と会合することが知
られており、IAP蛋白質のBIRドメインの間に機能的な差
異があることを示唆している。以上、BIRモチーフはIAP
を介したシグナル伝達を調節するうえで、恐らく重要な
役割を果たしていると考えられる。
相互作用 次に、動物細胞においてもXIAPがTAB1と相互作用し得る
か否かを調べた。N末端にFlagタグ(配列番号9)とTAB
1の融合タンパク(Flag-TAB1)発現ベクターは、全長の
TAB1をコードするcDNAをベクターpFLAG-CMV-2(Kodak
製)に挿入することにより、構築した。また、N末端にM
ycタグ(配列番号10)が融合したXIAP(Myc-XIAP)発
現ベクターは、全長のXIAPをコードするcDNAをベクター
pCS2MT(Rupp, R.A. et al., Genes Dev. (1994) 8, 13
11-1323)に挿入することにより、構築した。Myc-XIAPお
よびFlag-TAB1発現ベクターをそれぞれヒト胚腎臓由来
細胞株293細胞に導入し、それぞれの融合タンパクを一
過的に発現させた。次に、この細胞より細胞抽出物を調
製し、抗Flagモノクローナル抗体M2(Kodak製)を用い
て免疫沈降させた。免疫複合体の洗浄後、SDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動により分離し、PVDF膜に転写し
た。免疫沈降物に含まれるMyc-XIAPは抗Mycモノクロー
ナル抗体9E10(Boehringer Mannheim製)を用いて検出
した。Myc-XIAP及びFlag-TAB1の発現はそれぞれ、細胞
抽出物を直接9E10抗体でイムノブロット、ならびにM2抗
体による免疫沈降物をM2抗体でイムノブロットすること
で確認した。その結果、XIAPはTAB1と共沈し、酵母と同
様に動物細胞においてもXIAPはTAB1と相互作用すること
が明らかになった(図3)。
互作用の確認 TGF-βのシグナル伝達は、ヘテロマー複合体を形成する
ことができるTGF-βのI型(TβR-I)およびII型(TβR-
II)レセプターによって媒介されることが知られてお
り、XIAPがこれらTGF-βレセプターと会合し得るか否か
を調べた。インフルエンザ凝集素(HA)タグが融合した
TβR-I(HA-TβR-I )(Hoodless, P.A.,Cell, 85, 489
-500, 1996)、Mycタグと融合したTβR-II(Myc-TβR-I
I)(Chen, R.H., et al., Nature, 377, 548-552, 199
5)及び/又はXIAPをコードする発現ベクターを、293細
胞に導入し、それぞれのタンパクを一過的に発現させた
後、3ng/mlのヒトTGF-β1を含む、又は含まない培地で1
0分間処理した。これらの細胞より細胞抽出物を調製
し、XIAPに対する抗体(X)、又はコントロールマウスI
gG(C)を用いて免疫沈降を行った。なお、XIAPに対す
るモノクローナル抗体は、全長のXIAPとグルタチオン-S
-トランスフェラーゼとの融合蛋白質を免疫して作製し
た。免疫複合体は洗浄後、SDSポリアクリルアミドゲル
電気泳動をにより分離した。これをPVDF膜に転写し、次
いで、抗HAポリクローナル抗体Y11(Santa Cruz製)お
よび抗Myc抗体9E11を用いてイムノブロットし、それぞ
れ共沈したHA-TβRI及びTβRIIを検出した。また、細胞
抽出物を直接イムノブロッティングし、それぞれのタン
パクの発現の有無の確認を行った。XIAP発現ベクターの
非存在下では、XIAPとTGF-βレセプターの間の相互作用
は全く検出されなかった。それに対し、XIAP発現ベクタ
ーを導入した細胞においては、TβR-IおよびTβR-IIがX
IAPと共沈することが明らかに検出できたが、TGF-βで
処理した細胞と処理しなかった細胞の間では、相違は全
く認められなかった(図4)。したがって、過剰発現条
件下では、XIAPは上記TGF-βレセプター複合体と構成的
に相互作用することが考えられた。また、以上の結果よ
りXIAPはTGF-βレセプターとTAB1-TAK1と結び付け、TGF
-βシグナル伝達経路に関与している可能性が考えられ
た。
IAPの影響についての検討 プラスミノーゲンアクチベーターインヒビター1(PAI-
1)遺伝子プロモーター領域由来のTGF-β応答性エレメ
ントによって制御されるルシフェラーゼ遺伝子を含むレ
ポーター遺伝子構築物(p3TP-Lux)(Carcamo, J., et
al., Mol. Cell.Biol., 14, 3810-3821, 1994)を用い
て動物細胞におけるTGF-βシグナル伝達に及ぼすXIAPの
影響を検討した。
発現ベクターを種々の組合せでミンク肺上皮細胞株Mv1L
u細胞に導入した。なお、cDNAを含まない空の発現ベク
ターによりトランスフェクションに用いる総DNA量を5mg
と一定にした。次いで、これらの細胞を2ng/mlのヒトTG
F-β1存在下、又は非存在下20時間培養した。その後、
細胞抽出物を調製し、その中に含まれるルシフェラーゼ
活性を測定した。なお、各実験のトランスフェクション
効率はβ-アクチンプロモーターの下流にLacZの遺伝子
を連結した発現ベクター(Act-LacZ)のβガラクトシダ
ーゼの発現量により標準化した。
は基礎レベルの低いルシフェラーゼ活性が認められるの
みであり、TGF-βの添加によって強力にルシフェラーゼ
活性が誘導された。また、TAB1およびXIAP発現ベクター
を導入してもp3TP-Luxからの転写レベルはMv1Lu細胞と
何ら変化は認められなかった。それに対し、TAK1とTAB1
またはXIAP発現ベクターを同時に導入した細胞では、TG
F-β非存在下でのルシフェラーゼ活性の上昇が確認され
た。さらに、TAK1、TAB1およびXIAPと同時発現させる
と、TGF-β非依存的に強いルシフェラーゼを誘導した
(図5)。さらに、ヒト皮膚ケラチノサイト細胞株HaCat
細胞においても、同様なリガンド非依存的応答が明らか
に認められた。
L17細胞(Carcamo, J., et al., Mol. Cell. Biol., 1
4, 3810-3821, 1994)におけるXIAPのTGF-βシグナル伝
達に及ぼす効果を検討した。上述のようにp3TP-Luxと各
発現プラスミドをR-1B/L17細胞に導入し、それらのルシ
フェラーゼ活性を測定した。初めに、R-1B/L17細胞に活
性型又は非活性型TβR-Iを発現させ、それらの細胞にお
けるルシフェラーゼ活性を測定した。TβR-Iの204位のT
hrをAspに置換した変異体TβR-I (T204D)は構成的にキ
ナーゼ活性を示し、TGF-β非存在下でもそのシグナルを
伝達できることが知られており(Weiser, R., et al.,
EMBO J., 14, 2199-2208, 1995)、R-1B/L17細胞にTβR
-I (T204D)発現ベクターを導入し、一過的にTβR-I (T2
04D)を発現させると、p3TP-Luxレポーター遺伝子の転写
を誘導し、ルシフェラーゼ活性の増強が認められた(図
6A)。また、TβR-Iの232位のLysをArgに置換した変異
体TβR-I (K232R)はキナーゼ活性を示さず(Weiser,
R., et al., EMBO J., 14, 2199-2208, 1995)、TβR-I
(K232R)発現ベクターを導入しても(図6KR)、空の発
現ベクターを導入した場合(図6V)と同レベルのルシ
フェラーゼ活性を示すのみであった。このように、TβR
-Iを欠損したR-1B/L17細胞でも人為的にシグナルを導入
することで、TGF-βのシグナルを伝達することが可能で
ある。次に、TAK1およびTAB1とともにXIAP発現ベクター
を導入した結果、これらの蛋白質を同時に発現させると
3TPのプロモーター活性を誘導することが明らかとなっ
た。以上の結果は、XIAPがTGF-β応答の正の調節因子と
して機能することを示唆している。
分子としてXIAPを同定した。以上の結果は、XIAPはTGF-
βレセプターへのTAB1のリクルートを促進するアダプタ
ー蛋白質として働くことを示唆するものであり、XIAPは
TGF-βシグナル伝達経路において機能し、さらにTGF-β
レセプターとTAB1-TAK1とを結ぶメディエーターとして
働く分子であることが明らかとなった。
とXIAP、又はXIAPとTGF-βタイプI及び/又はタイプII
レセプターの結合阻害物質のスクリーニングが可能であ
ることが明らかとなった。本発明のスクリーニング方法
はTAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-βタイプI及び/又はタ
イプIIレセプターの結合阻害物質のスクリーニングに有
用である。本発明のスクリーニング方法により得られる
TAB1とXIAP、又はXIAPとTGF-βタイプI及び/又はタイ
プIIレセプターの結合阻害物質は医薬として有用であ
る。
CGCGGCC GGGCCGGGCC GGGCCACAGG 60 CGGTGGCGGC GGGACC ATG GAG GCG GCG GT
C GCT GCT CCG CGT CCC CGG 109 Met Glu Ala Ala Va
l Ala Ala Pro Arg Pro Arg 1
5 10 CTG CTC CTC CTC GTG CTG GCG GCG GCG
GCG GCG GCG GCG GCG GCG CTG 157 Leu Leu Leu Leu Val Leu Ala Ala Ala
Ala Ala Ala Ala Ala Ala Leu 15 20
25 CTC CCG GGG GCG ACG GCG TTA CAG TGT
TTC TGC CAC CTC TGT ACA AAA 205 Leu Pro Gly Ala Thr Ala Leu Gln Cys
Phe Cys His Leu Cys Thr Lys 30 35
40 GAC AAT TTT ACT TGT GTG ACA GAT GGG
CTC TGC TTT GTC TCT GTC ACA 253 Asp Asn Phe Thr Cys Val Thr Asp Gly
Leu Cys Phe Val Ser Val Thr 45 50
55 GAG ACC ACA GAC AAA GTT ATA CAC AAC
AGC ATG TGT ATA GCT GAA ATT 301 Glu Thr Thr Asp Lys Val Ile His Asn
Ser Met Cys Ile Ala Glu Ile 60 65
70 75 GAC TTA ATT CCT CGA GAT AGG CCG TTT
GTA TGT GCA CCC TCT TCA AAA 349 Asp Leu Ile Pro Arg Asp Arg Pro Phe
Val Cys Ala Pro Ser Ser Lys 80
85 90 ACT GGG TCT GTG ACT ACA ACA TAT TGC
TGC AAT CAG GAC CAT TGC AAT 397 Thr Gly Ser Val Thr Thr Thr Tyr Cys
Cys Asn Gln Asp His Cys Asn 95 100
105 AAA ATA GAA CTT CCA ACT ACT GTA AAG
TCA TCA CCT GGC CTT GGT CCT 445 Lys Ile Glu Leu Pro Thr Thr Val Lys
Ser Ser Pro Gly Leu Gly Pro 110 115
120 GTG GAA CTG GCA GCT GTC ATT GCT GGA
CCA GTG TGC TTC GTC TGC ATC 493 Val Glu Leu Ala Ala Val Ile Ala Gly
Pro Val Cys Phe Val Cys Ile 125 130
135 TCA CTC ATG TTG ATG GTC TAT ATC TGC
CAC AAC CGC ACT GTC ATT CAC 541 Ser Leu Met Leu Met Val Tyr Ile Cys
His Asn Arg Thr Val Ile His 140 145
150 155 CAT CGA GTG CCA AAT GAA GAG GAC CCT
TCA TTA GAT CGC CCT TTT ATT 589 His Arg Val Pro Asn Glu Glu Asp Pro
Ser Leu Asp Arg Pro Phe Ile 160
165 170 TCA GAG GGT ACT ACG TTG AAA GAC TTA
ATT TAT GAT ATG ACA ACG TCA 637 Ser Glu Gly Thr Thr Leu Lys Asp Leu
Ile Tyr Asp Met Thr Thr Ser 175 180
185 GGT TCT GGC TCA GGT TTA CCA TTG CTT
GTT CAG AGA ACA ATT GCG AGA 685 Gly Ser Gly Ser Gly Leu Pro Leu Leu
Val Gln Arg Thr Ile Ala Arg 190 195
200 ACT ATT GTG TTA CAA GAA AGC ATT GGC
AAA GGT CGA TTT GGA GAA GTT 733 Thr Ile Val Leu Gln Glu Ser Ile Gly
Lys Gly Arg Phe Gly Glu Val 205 210
215 TGG AGA GGA AAG TGG CGG GGA GAA GAA
GTT GCT GTT AAG ATA TTC TCC 781 Trp Arg Gly Lys Trp Arg Gly Glu Glu
Val Ala Val Lys Ile Phe Ser 220 225
230 235 TCT AGA GAA GAA CGT TCG TGG TTC CGT
GAG GCA GAG ATT TAT CAA ACT 829 Ser Arg Glu Glu Arg Ser Trp Phe Arg
Glu Ala Glu Ile Tyr Gln Thr 240
245 250 GTA ATG TTA CGT CAT GAA AAC ATC CTG
GGA TTT ATA GCA GCA GAC AAT 877 Val Met Leu Arg His Glu Asn Ile Leu
Gly Phe Ile Ala Ala Asp Asn 255 260
265 AAA GAC AAT GGT ACT TGG ACT CAG CTC
TGG TTG GTG TCA GAT TAT CAT 925 Lys Asp Asn Gly Thr Trp Thr Gln Leu
Trp Leu Val Ser Asp Tyr His 270 275
280 GAG CAT GGA TCC CTT TTT GAT TAC TTA
AAC AGA TAC ACA GTT ACT GTG 973 Glu His Gly Ser Leu Phe Asp Tyr Leu
Asn Arg Tyr Thr Val Thr Val 285 290
295 GAA GGA ATG ATA AAA CTT GCT CTG TCC
ACG GCG AGC GGT CTT GCC CAT 1021 Glu Gly Met Ile Lys Leu Ala Leu Ser
Thr Ala Ser Gly Leu Ala His 300 305
310 315 CTT CAC ATG GAG ATT GTT GGT ACC CAA
GGA AAG CCA GCC ATT GCT CAT 1069 Leu His Met Glu Ile Val Gly Thr Gln
Gly Lys Pro Ala Ile Ala His 320
325 330 AGA GAT TTG AAA TCA AAG AAT ATC TTG
GTA AAG AAG AAT GGA ACT TGC 1117 Arg Asp Leu Lys Ser Lys Asn Ile Leu
Val Lys Lys Asn Gly Thr Cys 335 340
345 TGT ATT GCA GAC TTA GGA CTG GCA GTA
AGA CAT GAT TCA GCC ACA GAT 1165 Cys Ile Ala Asp Leu Gly Leu Ala Val
Arg His Asp Ser Ala Thr Asp 350 355
360 ACC ATT GAT ATT GCT CCA AAC CAC AGA
GTG GGA ACA AAA AGG TAC ATG 1213 Thr Ile Asp Ile Ala Pro Asn His Arg
Val Gly Thr Lys Arg Tyr Met 365 370
375 GCC CCT GAA GTT CTC GAT GAT TCC ATA
AAT ATG AAA CAT TTT GAA TCC 1261 Ala Pro Glu Val Leu Asp Asp Ser Ile
Asn Met Lys His Phe Glu Ser 380 385
390 395 TTC AAA CGT GCT GAC ATC TAT GCA ATG
GGC TTA GTA TTC TGG GAA ATT 1309 Phe Lys Arg Ala Asp Ile Tyr Ala Met
Gly Leu Val Phe Trp Glu Ile 400
405 410 GCT CGA CGA TGT TCC ATT GGT GGA ATT
CAT GAA GAT TAC CAA CTG CCT 1357 Ala Arg Arg Cys Ser Ile Gly Gly Ile
His Glu Asp Tyr Gln Leu Pro 415 420
425 TAT TAT GAT CTT GTA CCT TCT GAC CCA
TCA GTT GAA GAA ATG AGA AAA 1405 Tyr Tyr Asp Leu Val Pro Ser Asp Pro
Ser Val Glu Glu Met Arg Lys 430 435
440 GTT GTT TGT GAA CAG AAG TTA AGG CCA
AAT ATC CCA AAC AGA TGG CAG 1453 Val Val Cys Glu Gln Lys Leu Arg Pro
Asn Ile Pro Asn Arg Trp Gln 445 450
455 AGC TGT GAA GCC TTG AGA GTA ATG GCT
AAA ATT ATG AGA GAA TGT TGG 1501 Ser Cys Glu Ala Leu Arg Val Met Ala
Lys Ile Met Arg Glu Cys Trp 460 465
470 475 TAT GCC AAT GGA GCA GCT AGG CTT ACA
GCA TTG CGG ATT AAG AAA ACA 1549 Tyr Ala Asn Gly Ala Ala Arg Leu Thr
Ala Leu Arg Ile Lys Lys Thr 480
485 490 TTA TCG CAA CTC AGT CAA CAG GAA GGC
ATC AAA ATG TAATTCTACA 1595 Leu Ser Gln Leu Ser Gln Gln Glu Gly
Ile Lys Met 495 500 GCTTTGCCTG AACTCTCCTT TTTTCTTCAG ATC
TGCTCCT GGGTTTTAAT TTGGGAGGTC 1655 AGTTGTTCTA CCTCACTGAG AGGGAACAGA AGG
ATATTGC TTCCTTTTGC AGCAGTGTAA 1715 TAAAGTCAAT TAAAAACTTC CCAGGATTTC TTT
GGACCCA GGAAACAGCC ATGTGGGTCC 1775 TTTCTGTGCA CTATGAACGC TTCTTTCCCA GGA
CAGAAAA TGTGTAGTCT ACCTTTATTT 1835 TTTATTAACA AAACTTGTTT TTTAAAAAGA TGA
TTGCTGG TCTTAACTTT AGGTAACTCT 1895 GCTGTGCTGG AGATCATCTT TAAGGGCAAA GGA
GTTGGAT TGCTGAATTA CAATGAAACA 1955 TGTCTTATTA CTAAAGAAAG TGATTTACTC CTG
GTTAGTA CATTCTCAGA GGATTCTGAA 2015 CCACTAGAGT TTCCTTGATT CAGACTTTGA ATG
TACTGTT CTATAGTTTT TCAGGATCTT 2075 AAAACTAACA CTTATAAAAC TCTTATCTTG AGT
CTAAAAA TGACCTCATA TAGTAGTGAG 2135 GAACATAATT CATGCAATTG TATTTTGTAT ACT
ATTATTG TTCTTTCACT TATTCAGAAC 2195 ATTACATGCC TTCAAAATGG GATTGTACTA TAC
CAGTAAG TGCCACTTCT GTGTCTTTCT 2255 AATGGAAATG AGTAGAATTG CTGAAAGTCT CTA
TGTTAAA ACCTATAGTG TTT 2308
模式図中にBIRモチーフ(灰色の四角)およびRINGジン
クフィンガードメイン(黒い四角)の位置を示す。
胞性メンバーとの相互作用、特にツーハイブリッドシス
テムにおける蛋白質相互作用を示す。
作用を示す。
ターとの相互作用を示す。
果、特に3TPプロモーター活性に及ぼすXIAPの効果を示
す。数値は空ベクターを導入した非刺激細胞で得られた
ルシフェラーゼ活性と比較した増加倍数で表現してい
る。数値は各トランスフェクションを2回実施した代表
的な1回の実験における平均値である。標準誤差は5%未
満である。
果、特にR-1B/17細胞における3TPプロモーター活性に及
ぼすXIAPの効果を示す。数値は空ベクターを導入した細
胞で得られたルシフェラーゼ活性と比較した増加倍数で
表現している。数値は、各トランスフェクションを2回
実施した際の代表的な1回の実験における平均値であ
る。標準誤差は5%未満である。
Claims (63)
- 【請求項1】 XIAP、TAB1及び被験物質を接触させ、次
いでXIAPとTAB1との結合の形成の有無を調べることによ
り、XIAPとTAB1との結合を阻害する物質をスクリーニン
グする方法。 - 【請求項2】 TAB1が、配列番号2に示すアミノ酸配列
のアミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置504位のP
roからなるアミノ酸配列又はTAB1の生物学的活性を有
し、且つ配列番号1に示すアミノ酸配列において1又は
複数個のアミノ酸残基の置換、欠失及び/又は付加され
たアミノ酸配列を有する請求項1記載のスクリーニング
方法。 - 【請求項3】 XIAPが、配列番号4に示すアミノ酸配列
のアミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置497位のS
erからなるアミノ酸配列又はXIAPの生物学的活性を有
し、且つ配列番号4に示すアミノ酸配列において1又は
複数個のアミノ酸残基の置換、欠失及び/又は付加され
たアミノ酸配列を有する請求項1記載のスクリーニング
方法。 - 【請求項4】 TAB1及び/又はXIAPが、他のペプチド又
はポリペプチドと融合している請求項1〜3のいずれか
1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項5】 TAB1又はXIAPが、支持体と結合している
請求項1〜4のいずれか1項に記載のスクリーニング方
法。 - 【請求項6】 支持体がビーズ又はプレートである請求
項5記載のスクリーニング方法。 - 【請求項7】 TAB1又はXIAPを標識し、該標識を検出又
は測定することによりXIAPとTAB1との結合の形成の有無
を調べる請求項1〜6のいずれか1項に記載のスクリー
ニング方法。 - 【請求項8】 標識が、放射性同位元素、酵素又は蛍光
物質である請求項7記載のスクリーニング方法。 - 【請求項9】 TAB1に結合したXIAPを、XIAPに対する一
次抗体又はXIAPと融合した他のペプチド若しくはポリペ
プチドに対する一次抗体により検出又は測定することに
より、XIAPとTAB1との結合の形成の有無を調べる請求項
1〜8のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項10】 TAB1に結合したXIAPを、XIAPに対する
一次抗体又はXIAPと融合した他のペプチド若しくはポリ
ペプチドに対する一次抗体及び一次抗体に対する二次抗
体により検出又は測定することにより、XIAPとTAB1との
結合の形成の有無を調べる請求項9記載のスクリーニン
グ方法。 - 【請求項11】 XIAPに結合したTAB1を、TAB1に対する
一次抗体又はTAB1と融合した他のペプチド若しくはポリ
ペプチドに対する一次抗体により検出又は測定すること
により、XIAPとTAB1との結合の形成の有無を調べる請求
項1〜8のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項12】 XIAPに結合したTAB1を、TAB1に対する
一次抗体又はTAB1と融合した他のペプチド若しくはポリ
ペプチドに対する一次抗体及び一次抗体に対する二次抗
体により検出又は測定することにより、XIAPとTAB1との
結合の形成の有無を調べる請求項11記載のスクリーニ
ング方法。 - 【請求項13】 一次抗体又は二次抗体が、放射性同位
元素、酵素又は蛍光物質により標識されている請求項9
〜12のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項14】 TAB1及びXIAPを発現する細胞に被験試
料を導入及び/又は接触させ、次いでTAB1又はXIAPを介
して伝達される生物学的活性を検出及び/又は測定する
ことにより、XIAPとTAB1との結合を阻害する物質をスク
リーニングする方法。 - 【請求項15】 TAB1又はXIAPを介して伝達される生物
学的活性がTGF-βの生物学的活性である請求項14記載
のスクリーニング方法。 - 【請求項16】 TGF-βの生物学的活性が細胞外マトリ
ックス蛋白質産生亢進、細胞増殖阻害、単球遊走、生理
活性物質誘導、免疫抑制及びβアミロイド蛋白質沈着か
らなる群より選択される少なくとも一つの作用である請
求項15に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項17】 TAB1又はXIAPを介して伝達される生物
学的活性が、TAB1又はXIAPの生物学的活性に応答して活
性化するレポーター遺伝子の発現量変化である請求項1
4記載のスクリーニング方法。 - 【請求項18】 レポーター遺伝子がPAI-1、ファイブ
ロネクチン、タイプIコラーゲン、タイプIVコラーゲン
である請求項17記載のスクリーニング方法。 - 【請求項19】 XIAP、TGF-βタイプIレセプター及び
被験試料を接触させ、次いでXIAPとTGF-βタイプIレセ
プターとの結合の形成の有無を調べることにより、TGF-
βタイプIレセプターとXIAPとの結合を阻害する物質を
スクリーニングする方法。 - 【請求項20】 XIAPが、配列番号4に示すアミノ酸配
列のアミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置497位
のSerからなるアミノ酸配列、又はXIAPの生物学的活性
を有し、且つ配列番号4に示すアミノ酸配列において1
又は複数個のアミノ酸が置換、欠失及び/又は付加され
たアミノ酸配列を有する請求項19記載のスクリーニン
グ方法。 - 【請求項21】 TGF-βタイプIレセプターが、配列番
号6に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位のMetから
アミノ酸位置503位のMetからなるアミノ酸配列、又
はTGF-βタイプIレセプターの生物学的活性を有し、且
つ配列番号6に示すアミノ酸配列において1又は複数個
のアミノ酸が置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸
配列を有する請求項19記載のスクリーニング方法。 - 【請求項22】 XIAP又はTGF-βタイプIレセプター
が、他のペプチド又はポリペプチドと融合している請求
項19〜21のいずれか1項に記載のスクリーニング方
法。 - 【請求項23】 XIAP又はTGF-βタイプIレセプター
が、支持体と結合している請求項19〜22のいずれか
1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項24】 支持体がビーズ又はプレートである請
求項23記載のスクリーニング方法。 - 【請求項25】 XIAP又はTGF-βタイプIレセプターを
標識し、該標識を検出又は測定することにより、XIAPと
TGF-βタイプIレセプターとの結合の形成の有無を調べ
る請求項19〜24のいずれか1項に記載のスクリーニ
ング方法。 - 【請求項26】 標識が、放射性同位元素、酵素又は蛍
光物質である請求項25記載のスクリーニング方法。 - 【請求項27】 XIAPに結合したTGF-βタイプIレセプ
ターを、TGF-βタイプIレセプターに対する一次抗体又
はTGF-βタイプIレセプターと融合した他のペプチド若
しくはポリペプチドに対する一次抗体により検出又は測
定することにより、XIAPとTGF-βタイプIレセプターと
の結合の形成の有無を調べる請求項19〜26のいずれ
か1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項28】 XIAPに結合したTGF-βタイプIレセプ
ターを、TGF-βタイプIレセプターに対する一次抗体又
はTGF-βタイプIレセプターと融合した他のペプチド若
しくはポリペプチドに対する一次抗体及び一次抗体に対
する二次抗体により検出又は測定することにより、XIAP
とTGF-βタイプIレセプターとの結合の形成の有無を調
べる請求項27記載のスクリーニング方法。 - 【請求項29】 TGF-βタイプIレセプターに結合したX
IAPを、XIAPに対する一次抗体又はXIAPと融合した他の
ペプチド若しくはポリペプチドに対する一次抗体により
検出又は測定することにより、XIAPとTGF-βタイプIレ
セプターとの結合の形成の有無を調べる請求項19〜2
6のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項30】 TGF-βタイプIレセプターに結合したX
IAPを、XIAPに対する一次抗体又はXIAPと融合した他の
ペプチド若しくはポリペプチドに対する一次抗体及び一
次抗体に対する二次抗体により検出又は測定することに
より、XIAPとTGF-βタイプIレセプターとの結合の形成
の有無を調べる請求項29記載のスクリーニング方法。 - 【請求項31】 一次抗体又は二次抗体が、放射性同位
元素、酵素又は蛍光物質により標識されている請求項2
7〜30のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項32】 XIAP及びTGF-βタイプIレセプターを
発現する細胞に被験試料を導入及び/又は接触させ、次
いでXIAP又はTGF-βタイプIレセプターを介して伝達さ
れる生物学的活性を検出及び/又は測定することによ
り、TGF-βタイプIレセプターとXIAPとの結合を阻害す
る物質をスクリーニングする方法。 - 【請求項33】 XIAP又はTGF-βタイプIレセプターを
介して伝達される生物学的活性がTGF-βの生物学的活性
である請求項32記載のスクリーニング方法。 - 【請求項34】 TGF-βの生物学的活性が細胞外マトリ
ックス蛋白質産生亢進、細胞増殖阻害、単球遊走、生理
活性物質誘導、免疫抑制及びβアミロイド蛋白質沈着か
らなる群より選択される少なくとも一つの作用である請
求項33に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項35】 XIAP又はTGF-βタイプIレセプターを
介して伝達される生物学的活性が、XIAP又はTGF-βタイ
プIレセプターの生物学的活性に応答して活性化するレ
ポーター遺伝子の発現量変化である請求項32記載のス
クリーニング方法。 - 【請求項36】 レポーター遺伝子がPAI-1、ファイブ
ロネクチン、タイプIコラーゲン、タイプIVコラーゲン
である請求項35記載のスクリーニング方法。 - 【請求項37】 XIAP、TGF-βタイプIIレセプター及び
被験試料を接触させ、次いでXIAPとTGF-βタイプIIレセ
プターとの結合の形成の有無を調べることにより、TGF-
βタイプIIレセプターとXIAPとの結合を阻害する物質を
スクリーニングする方法。 - 【請求項38】 XIAPが、配列番号4に示すアミノ酸配
列のアミノ酸位置1位のMetからアミノ酸位置497位
のSerからなるアミノ酸配列、又はXIAPの生物学的活性
を有し、且つ配列番号4に示すアミノ酸配列において1
又は複数個のアミノ酸が置換、欠失及び/又は付加され
たアミノ酸配列を有する請求項37記載のスクリーニン
グ方法。 - 【請求項39】 TGF-βタイプIIレセプターが、配列番
号8に示すアミノ酸配列のアミノ酸位置1位のMetから
アミノ酸位置567位のLysからなるアミノ酸配列、又
はTGF-βタイプIIレセプターの生物学的活性を有し、且
つ配列番号6に示すアミノ酸配列において1又は複数個
のアミノ酸が置換、欠失及び/又は付加されたアミノ酸
配列を有する請求項37記載のスクリーニング方法。 - 【請求項40】 XIAP又はTGF-βタイプIIレセプター
が、他のペプチド又はポリペプチドと融合している請求
項37〜39のいずれか1項に記載のスクリーニング方
法。 - 【請求項41】 XIAP又はTGF-βタイプIIレセプター
が、支持体と結合している請求項37〜40のいずれか
1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項42】 支持体がビーズ又はプレートである請
求項41記載のスクリーニング方法。 - 【請求項43】 XIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを
標識し、該標識を検出又は測定することにより、XIAPと
TGF-βタイプIIレセプターとの結合の形成の有無を調べ
る請求項37〜42のいずれか1項に記載のスクリーニ
ング方法。 - 【請求項44】 標識が、放射性同位元素、酵素又は蛍
光物質である請求項43記載のスクリーニング方法。 - 【請求項45】 XIAPに結合したTGF-βタイプIIレセプ
ターを、TGF-βタイプIIレセプターに対する一次抗体又
はTGF-βタイプIIレセプターと融合した他のペプチド若
しくはポリペプチドに対する一次抗体により検出又は測
定することにより、XIAPとTGF-βタイプIIレセプターと
の結合の形成の有無を調べる請求項37〜44のいずれ
か1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項46】 XIAPに結合したTGF-βタイプIIレセプ
ターを、TGF-βタイプIIレセプターに対する一次抗体又
はTGF-βタイプIIレセプターと融合した他のペプチド若
しくはポリペプチドに対する一次抗体及び一次抗体に対
する二次抗体により検出又は測定することにより、XIAP
とTGF-βタイプIIレセプターとの結合の形成の有無を調
べる請求項45記載のスクリーニング方法。 - 【請求項47】 TGF-βタイプIIレセプターに結合した
XIAPを、XIAPに対する一次抗体又はXIAPと融合した他の
ペプチド若しくはポリペプチドに対する一次抗体により
検出又は測定することにより、XIAPとTGF-βタイプIIレ
セプターとの結合の形成の有無を調べる請求項37〜4
4のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項48】 TGF-βタイプIIレセプターに結合した
XIAPを、XIAPに対する一次抗体又はXIAPと融合した他の
ペプチド若しくはポリペプチドに対する一次抗体及び一
次抗体に対する二次抗体により検出又は測定することに
より、XIAPとTGF-βタイプIIレセプターとの結合の形成
の有無を調べる請求項47記載のスクリーニング方法。 - 【請求項49】 一次抗体又は二次抗体が、放射性同位
元素、酵素又は蛍光物質により標識されている請求項4
5〜48のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項50】 XIAP及びTGF-βタイプIIレセプターを
発現する細胞に被験試料を導入及び/又は接触させ、次
いでXIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを介して伝達さ
れる生物学的活性を検出及び/又は測定することによ
り、TGF-βタイプIIレセプターとXIAPとの結合を阻害す
る物質をスクリーニングする方法。 - 【請求項51】 XIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを
介して伝達される生物学的活性がTGF-βの生物学的活性
である請求項50記載のスクリーニング方法。 - 【請求項52】 TGF-βの生物学的活性が細胞外マトリ
ックス蛋白質産生亢進、細胞増殖阻害、単球遊走、生理
活性物質誘導、免疫抑制及びβアミロイド蛋白質沈着か
らなる群より選択される少なくとも一つの作用である請
求項51に記載のスクリーニング方法。 - 【請求項53】 XIAP又はTGF-βタイプIIレセプターを
介して伝達される生物学的活性が、XIAP又はTGF-βタイ
プIIレセプターの生物学的活性に応答して活性化するレ
ポーター遺伝子の発現量変化である請求項50記載のス
クリーニング方法。 - 【請求項54】 レポーター遺伝子がPAI-1、ファイブ
ロネクチン、タイプIコラーゲン、タイプIVコラーゲン
である請求項53記載のスクリーニング方法。 - 【請求項55】 請求項1〜54のいずれか1項に記載
のスクリーニング方法により得られた物質。 - 【請求項56】 TGF-βのシグナル伝達を阻害又は活性
化する既知物質の新規な代替物である請求項55記載の
物質。 - 【請求項57】 XIAPのアゴニストである請求項55記
載の物質。 - 【請求項58】 XIAPのアンタゴニストである請求項5
5記載の物質。 - 【請求項59】 請求項1〜54のいずれか1項に記載
のスクリーニング方法により得られた物質を有効成分と
して含有する医薬組成物。 - 【請求項60】 細胞外マトリックス蛋白質産生亢進、
細胞増殖阻害、単球遊走、生理活性物質誘導、免疫抑制
及びβアミロイド蛋白質沈着からなる群より選択される
少なくとも一つの作用を抑制又は活性化するために使用
される請求項59記載の医薬組成物。 - 【請求項61】 肝線維症、肺線維症、糸球体腎炎、糖
尿病性腎症、腎硬化症、血管再狭窄、皮膚のケロイド、
強皮症、自己免疫疾患及びアルツハイマー病からなる群
より選択される少なくとも一つの疾患を予防及び/又は
治療するために使用される請求項59記載の医薬組成
物。 - 【請求項62】 XIAPを有効成分として含有する医薬組
成物であって、細胞外マトリックス蛋白質産生亢進、細
胞増殖阻害、単球遊走、生理活性物質誘導、免疫抑制及
びβアミロイド蛋白質沈着からなる群より選択される少
なくとも一つの作用を抑制又は活性化するために使用さ
れる前記の医薬組成物。 - 【請求項63】 XIAPを有効成分として含有する医薬組
成物であって、肝線維症、肺線維症、糸球体腎炎、糖尿
病性腎症、腎硬化症、血管再狭窄、皮膚のケロイド、強
皮症、自己免疫疾患及びアルツハイマー病からなる群よ
り選択される少なくとも一つの疾患を予防及び/又は治
療するために使用される前記の医薬組成物。
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-
1998
- 1998-05-13 JP JP13037898A patent/JP4203144B2/ja not_active Expired - Fee Related
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