JPS5886099A - ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフオスフエイトを補酵素とする各種脱水素酵素の基質量の測定方法 - Google Patents
ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフオスフエイトを補酵素とする各種脱水素酵素の基質量の測定方法Info
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- JPS5886099A JPS5886099A JP18508081A JP18508081A JPS5886099A JP S5886099 A JPS5886099 A JP S5886099A JP 18508081 A JP18508081 A JP 18508081A JP 18508081 A JP18508081 A JP 18508081A JP S5886099 A JPS5886099 A JP S5886099A
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Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明はニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(以下
MADと略記する)蓋たはニコチンアミドアデニンジヌ
クレオチドフォスフエイト(以下NADPと略記する)
を補酵素とする各種脱水素酵素と、還元型ニコチンアミ
ドアデニンジヌクレオチドc以下NADH,と略記する
)または還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
フォスフエイト(以下夏ムDPH,と略記する)を酸化
する酸化酵素(以下MAD(P)Hm酸化酵素と略記す
る)を用いて、nAnjたは1fADPの共存下で各種
脱水素酵素の基質量を測定する方法に関する。更に詳細
に述べれば、基質と各種脱水素酵素による反応の結果生
じた夏ADH,またはHAD(P)Hmを微生物由来の
wAn(7)Hi酸化階素で酸化させ、その際の酸素消
費量を酵素電極で測定することにより、脱水素酵素の基
質量を測定する方法に関する。
MADと略記する)蓋たはニコチンアミドアデニンジヌ
クレオチドフォスフエイト(以下NADPと略記する)
を補酵素とする各種脱水素酵素と、還元型ニコチンアミ
ドアデニンジヌクレオチドc以下NADH,と略記する
)または還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
フォスフエイト(以下夏ムDPH,と略記する)を酸化
する酸化酵素(以下MAD(P)Hm酸化酵素と略記す
る)を用いて、nAnjたは1fADPの共存下で各種
脱水素酵素の基質量を測定する方法に関する。更に詳細
に述べれば、基質と各種脱水素酵素による反応の結果生
じた夏ADH,またはHAD(P)Hmを微生物由来の
wAn(7)Hi酸化階素で酸化させ、その際の酸素消
費量を酵素電極で測定することにより、脱水素酵素の基
質量を測定する方法に関する。
食品、または血液中の乳酸、アルコール、リンゴ酸、コ
ハク醗、グルコースおよびグルタミン酬等の定量方法と
しては、試料液に脱水素酵素を作用させ、補酵素である
MADまたはNADPの還元型への変換量を、還元型補
酵素の340mmにおける特異吸′収を利用して分光学
的に測定する方法が通常実施されている。し〜かしなか
も、このような分光学的方法では必然的に試料の着色お
よびFL4!淘度が分析に影響をおよぼすところから、
脱色、遠心分離等の前処理が必要である。
ハク醗、グルコースおよびグルタミン酬等の定量方法と
しては、試料液に脱水素酵素を作用させ、補酵素である
MADまたはNADPの還元型への変換量を、還元型補
酵素の340mmにおける特異吸′収を利用して分光学
的に測定する方法が通常実施されている。し〜かしなか
も、このような分光学的方法では必然的に試料の着色お
よびFL4!淘度が分析に影響をおよぼすところから、
脱色、遠心分離等の前処理が必要である。
前処理を必要としない電気化学的測定方法についても種
々検討がなされており、その一つどじてはNAD 系に
フラビンモノヌクレオチド(7MN)系を共役させて、
その際に生じる増化還元電位を利用した電池システムを
作製することで、lテンジオメトリツクに測定する方法
が知られているがこの方法は煩残で特異性がない(化学
工学第40巻第3号1976年参照)。
々検討がなされており、その一つどじてはNAD 系に
フラビンモノヌクレオチド(7MN)系を共役させて、
その際に生じる増化還元電位を利用した電池システムを
作製することで、lテンジオメトリツクに測定する方法
が知られているがこの方法は煩残で特異性がない(化学
工学第40巻第3号1976年参照)。
本発明者らはかかる問題点を克服するために最近の分析
手法と、して使用されている酸素電極を組合せながら新
規分析法を検討してきた。その結果以下の発明を完成す
るに至った。
手法と、して使用されている酸素電極を組合せながら新
規分析法を検討してきた。その結果以下の発明を完成す
るに至った。
本発明の要点は次の如くである。
基質の脱水素酵素による脱水素反応は一般にアルカリ性
pHで反応が進行し、pH7付近の中性領域では殆ど反
応が進行しない。他方、MAD(P)Ha酸化酵素は重
性pHで活性が高<、pH7以上ではpH素活性はすみ
やかに失活する。・それ故これまでに、脱水素反応とn
1p(p)aJ化酵素を同一反応液中で進行させた報告
は見られない。
pHで反応が進行し、pH7付近の中性領域では殆ど反
応が進行しない。他方、MAD(P)Ha酸化酵素は重
性pHで活性が高<、pH7以上ではpH素活性はすみ
やかに失活する。・それ故これまでに、脱水素反応とn
1p(p)aJ化酵素を同一反応液中で進行させた報告
は見られない。
しかしながら、本発明者らは以下の新事実を見出して本
発明を完成したものである。
発明を完成したものである。
本発明はN*:o(p)HJI化酵素の安定pH領域の
限界に近いpH7付近で、脱水素酵素とNADcp)H
je化酵倉を共存させた場合、基質と脱)素酵素の反応
で生成するMAD(P)H,がHAD(P)H,酸化酵
素ですみやかにNADに変換されるため、基質の脱水素
反応の速度が加速される。脱水素酵素壜独では殆ど反応
が進まない中性’pHにおいても反応液中にNAD(P
)Hm酸化酵素が共存している場合には、すみやかに基
質の脱水素反応が進行するという現象を見出−したこと
によるものである。この結果HAD(P)HsM化酵素
の反応で消費された溶存酸素の減少を酸素電極等で測定
することにより脱水素酵素の基質醸の測定が可能となり
本発明を完成するに至った。
限界に近いpH7付近で、脱水素酵素とNADcp)H
je化酵倉を共存させた場合、基質と脱)素酵素の反応
で生成するMAD(P)H,がHAD(P)H,酸化酵
素ですみやかにNADに変換されるため、基質の脱水素
反応の速度が加速される。脱水素酵素壜独では殆ど反応
が進まない中性’pHにおいても反応液中にNAD(P
)Hm酸化酵素が共存している場合には、すみやかに基
質の脱水素反応が進行するという現象を見出−したこと
によるものである。この結果HAD(P)HsM化酵素
の反応で消費された溶存酸素の減少を酸素電極等で測定
することにより脱水素酵素の基質醸の測定が可能となり
本発明を完成するに至った。
本発明に使用するMAD(P)Hsll化酵素とはNA
DHmまたはNADPH意に酸素を供与してNADまた
はNADPを生成する酵素であり、二種類の酵素が自然
界より見出されている。
DHmまたはNADPH意に酸素を供与してNADまた
はNADPを生成する酵素であり、二種類の酵素が自然
界より見出されている。
その一つは、NADH,またはNADPH,に1分子の
酸素を与えそ、その結果MADまたはMADνと過酸化
水素を生成する酵素である。この−素はエム・アイ・ド
ーリン〔アーカイ拳バイオケミカル・パイオフイージツ
クス第46巻@483頁(1953年)〕によりストレ
プトコッカス・ファエカリス(8tr@ptococo
us fa@oalig)菌体中にその存在が知られて
いる。
酸素を与えそ、その結果MADまたはMADνと過酸化
水素を生成する酵素である。この−素はエム・アイ・ド
ーリン〔アーカイ拳バイオケミカル・パイオフイージツ
クス第46巻@483頁(1953年)〕によりストレ
プトコッカス・ファエカリス(8tr@ptococo
us fa@oalig)菌体中にその存在が知られて
いる。
他の一つは、NADH,またはNADPHdこ半分子の
酸素を与・え、その結果NADまたはNADPと水を生
成する酵素である。この酵素は福井によりラクトバチル
ス・プランタルム(Laotobaoilluspla
ntarum ) A 11菌体中に見出されている〔
福井、酵素化学シンポジウム、第17集第145頁(1
962))。
酸素を与・え、その結果NADまたはNADPと水を生
成する酵素である。この酵素は福井によりラクトバチル
ス・プランタルム(Laotobaoilluspla
ntarum ) A 11菌体中に見出されている〔
福井、酵素化学シンポジウム、第17集第145頁(1
962))。
本発明方法においては、反応液中のNADHmまたはN
ADPH重量に比例した酸素吸収が見られれば良いので
あるから、上記二種の酵素のいずれをも使用することが
できる。
ADPH重量に比例した酸素吸収が見られれば良いので
あるから、上記二種の酵素のいずれをも使用することが
できる。
詳細は実施例で述べるが、例えばエタノールを含む試料
にアルコール脱水素酵素(mol、1,1,1. )を
NAD共存下で作用させると次式の反応が進行する。
にアルコール脱水素酵素(mol、1,1,1. )を
NAD共存下で作用させると次式の反応が進行する。
OHHs OH+ MAD”−→OHs OHO+ M
AD)! + 11’V 本酵素反応系に、’ IIA
D(P)Hz酸化酵素を添加し、さらに酸素電極を組合
せるならば、次のようなエタノールの定置系が成立する
。すなわち生成するNA DHsはNjLD(P)Ha
酸化酵素によって酸化され、同時に酸素が定量的に消費
される。さらに、その消費酸は酸素電極によって定量的
に測定される。
AD)! + 11’V 本酵素反応系に、’ IIA
D(P)Hz酸化酵素を添加し、さらに酸素電極を組合
せるならば、次のようなエタノールの定置系が成立する
。すなわち生成するNA DHsはNjLD(P)Ha
酸化酵素によって酸化され、同時に酸素が定量的に消費
される。さらに、その消費酸は酸素電極によって定量的
に測定される。
俗存酸素の定量は、lテンジオメトリツクに測定するガ
ルバノ型電極およびアンペロメトリックに1(和定する
クラーク型電極のいずれをも用いてもよいが、応答の早
い点でクラーク型電極が優っている〇 本発明の骨子は以上の例示によって大略明らかであるが
、さらに詳細な実施例を掲げるに先だって分析に必要な
諸事項に関して本発明者等が採用したものの内の一例に
ついて記述する。
ルバノ型電極およびアンペロメトリックに1(和定する
クラーク型電極のいずれをも用いてもよいが、応答の早
い点でクラーク型電極が優っている〇 本発明の骨子は以上の例示によって大略明らかであるが
、さらに詳細な実施例を掲げるに先だって分析に必要な
諸事項に関して本発明者等が採用したものの内の一例に
ついて記述する。
クラーク型電極は常法(アール・ダブリュー命ニスタブ
リック著「メソッド・インーエンザイモロジー」ニス・
ビー・コロヴイツク;エヌ拳オー・カブラン編集、アカ
デミツクプレス出版第10巻、第41頁1967年)に
従った0すなわち、ポリエチレン管中に白金電極と銀電
極を内蔵し、管中に空気が入らないように注意しながら
先端をポリエチレン膜で覆った。さらに両電極間をIM
のKOI溶液でイオン架橋した。
リック著「メソッド・インーエンザイモロジー」ニス・
ビー・コロヴイツク;エヌ拳オー・カブラン編集、アカ
デミツクプレス出版第10巻、第41頁1967年)に
従った0すなわち、ポリエチレン管中に白金電極と銀電
極を内蔵し、管中に空気が入らないように注意しながら
先端をポリエチレン膜で覆った。さらに両電極間をIM
のKOI溶液でイオン架橋した。
本酸素電極を10−容の反応槽中に挿入し、電極印加電
属を0.6ボルトとして、反応槽中の溶存酸素濃度を電
流値として測定した。なお、反応槽は外部からの空気の
侵入を防ぐため密閉型のものを用いた。
属を0.6ボルトとして、反応槽中の溶存酸素濃度を電
流値として測定した。なお、反応槽は外部からの空気の
侵入を防ぐため密閉型のものを用いた。
本発明に用いたNAD(P)HIM化酵素はラクトバチ
ルス・ブランタルムA11を培養し、福井の方法により
精製した。すなわち、ラクトバチルス拳グランタルムム
11を乳酸菌用培地2tで30’C,24時間培養し、
集菌、洗浄したのち0.02Mリン酸バッファー50d
に懸濁し10ro、20分間の紹音波処理を行なう。得
られる菌体破砕液を15000XP、60分間遠心分離
して上d液をDIAI−セファデックスカラムクロマト
グラフィーを行なって得られるものを酵素液とした。
ルス・ブランタルムA11を培養し、福井の方法により
精製した。すなわち、ラクトバチルス拳グランタルムム
11を乳酸菌用培地2tで30’C,24時間培養し、
集菌、洗浄したのち0.02Mリン酸バッファー50d
に懸濁し10ro、20分間の紹音波処理を行なう。得
られる菌体破砕液を15000XP、60分間遠心分離
して上d液をDIAI−セファデックスカラムクロマト
グラフィーを行なって得られるものを酵素液とした。
NAD(P)Hx酸化酵素の活性測定は0.1MのKH
sPO。
sPO。
0、2 d % NADI(、溶液0.1 wst
(0,15prno1m含有)、蒸留水3.0 mに酵
素液0゜1−を添加して25℃で反応を行なった。33
0mmの吸光度の減少を分光光度計で測定し、30秒間
で0.01減少する場合を1#素単位(ロ)とした。
(0,15prno1m含有)、蒸留水3.0 mに酵
素液0゜1−を添加して25℃で反応を行なった。33
0mmの吸光度の減少を分光光度計で測定し、30秒間
で0.01減少する場合を1#素単位(ロ)とした。
アルコール脱水素酵素および乳酸脱水素酵素活性は、基
質に作用して、1分間に1μmol・を酸化する酵素量
を1単位、(U)とした。
質に作用して、1分間に1μmol・を酸化する酵素量
を1単位、(U)とした。
次に実施例−こより本発明を更番こ詳細に説明するO
実験例 1
本発明方法を利用してエタノールの検量線を作成した。
オリエンタル酵母社製アルコール脱水素酵素をQ、1M
トリスバッファ(pH7,0)に溶かし、濃度を50U
/+dとしたものを0.1 swZ。
トリスバッファ(pH7,0)に溶かし、濃度を50U
/+dとしたものを0.1 swZ。
NADの100−v/−溶液を0.1m、福井の方法(
酵素化学シンポジウム第17集、第145頁、1962
年)により、ラクトバチルス・プランタルム屋11より
調製したa*p(p)Htill化酵素0.5−(15
単位)、0. OI Mリン酸バッファー9.2−をク
ラーク型酸素電極を組込んだ密閉型反応槽(容tlos
tZ)に入れる。次いでそれぞれ0、06 mmole
、 0.28 !Ql!101@または0.57 m
Wlloisを含むエタノール溶液0.1−を添加して
、反応液中の酸素消費量を酸素電極で測定した。上記反
応は30℃で行なった。得られた最終到達電流1(nA
)をプロットしたのか第1図である。
酵素化学シンポジウム第17集、第145頁、1962
年)により、ラクトバチルス・プランタルム屋11より
調製したa*p(p)Htill化酵素0.5−(15
単位)、0. OI Mリン酸バッファー9.2−をク
ラーク型酸素電極を組込んだ密閉型反応槽(容tlos
tZ)に入れる。次いでそれぞれ0、06 mmole
、 0.28 !Ql!101@または0.57 m
Wlloisを含むエタノール溶液0.1−を添加して
、反応液中の酸素消費量を酸素電極で測定した。上記反
応は30℃で行なった。得られた最終到達電流1(nA
)をプロットしたのか第1図である。
第1図より明らかな如く、エタノール量と最終到達電流
量との間には直線関係が成立した。
量との間には直線関係が成立した。
この結果、本発明方法を利用してエタノールの定量が可
能である。
能である。
実験例 2
本発明方法を利用して乳酸の検量線を作成した。オリエ
ンタル酵母社製乳酸脱水素酵素を0.1Mトリスバッフ
ァー(pH7,0)に溶かし、濃度を40U/−とした
ものを0.1 wl 1HADの100キ/−溶液を0
.1−1NムD(P)H茸醗化酵素0.5 d (15
単位)、0.01Mリン酸バッファー9.2−をクラー
ク型酸素電極を組込んだ密閉型反応槽(容量10d)に
入れる。次いで、それぞれ0、015 mmol・、0
.0219 mmole、 0.118mmole、
0.235111111016および0.470 mm
oleを含む乳P溶液0.1−を添加して、反応液中の
酸素消費量を酸素電極で測定した。反応は30℃で行な
った。得られた最終到達電流量(nA“)をプロットし
たのが第2図である。
ンタル酵母社製乳酸脱水素酵素を0.1Mトリスバッフ
ァー(pH7,0)に溶かし、濃度を40U/−とした
ものを0.1 wl 1HADの100キ/−溶液を0
.1−1NムD(P)H茸醗化酵素0.5 d (15
単位)、0.01Mリン酸バッファー9.2−をクラー
ク型酸素電極を組込んだ密閉型反応槽(容量10d)に
入れる。次いで、それぞれ0、015 mmol・、0
.0219 mmole、 0.118mmole、
0.235111111016および0.470 mm
oleを含む乳P溶液0.1−を添加して、反応液中の
酸素消費量を酸素電極で測定した。反応は30℃で行な
った。得られた最終到達電流量(nA“)をプロットし
たのが第2図である。
第2図より明らかな如く、乳@量と最終到達電流量との
間には直線関係が成立した。この結果、本発明方法を利
用して、乳酸の定置が可能である。
間には直線関係が成立した。この結果、本発明方法を利
用して、乳酸の定置が可能である。
実施例 1
をクラーク型酸素電極を組込んだ密閉型反応槽(容量1
0d)に入れる。次いで、コーンスチーブリ力−100
μを添加して、反応液の溶存酸素減少量を測定した。反
応は30℃で行なった。
0d)に入れる。次いで、コーンスチーブリ力−100
μを添加して、反応液の溶存酸素減少量を測定した。反
応は30℃で行なった。
最終到達電流域は787!lムであった。第2図の検量
線を用いて算出した乳l!8度は11.5v/v%であ
った。
線を用いて算出した乳l!8度は11.5v/v%であ
った。
フリートマン、コトニ、シャーファーの方法の改良法(
*芸化学実験書、第3巻、第1325頁、産業図書に記
載;乳酸をMn0mで酸化して生ずるアセトアルデハイ
ドを醸性亜硫酸ソーダで捕捉し、過剰の酸性亜硫酸ソー
ダをヨードで消去してから、重曹でアルカリ性となし、
アセトアルデハイドと酸性唾硫酸ソーダの結合を解き、
生ずる酸性亜硫酸ソーダをヨード液で滴定し、乳#社を
求める)によって得た測定値は11.3%であり、本発
明方法による測定値と良く一致した。
*芸化学実験書、第3巻、第1325頁、産業図書に記
載;乳酸をMn0mで酸化して生ずるアセトアルデハイ
ドを醸性亜硫酸ソーダで捕捉し、過剰の酸性亜硫酸ソー
ダをヨードで消去してから、重曹でアルカリ性となし、
アセトアルデハイドと酸性唾硫酸ソーダの結合を解き、
生ずる酸性亜硫酸ソーダをヨード液で滴定し、乳#社を
求める)によって得た測定値は11.3%であり、本発
明方法による測定値と良く一致した。
第1′#Aは本発明方法を利用したエタノール基質酸の
検量線を示すグラフであり、第2図は乳酸基質量の検量
線を示すグラフである。 特許出願人 冑?fIIIM株式金社 −1 Ql 02 0.3 0.4
0.5 0.61タノール〕然加量 (
mmole) (自発)手続補正書 昭和57匹−月25日 特許庁長官島 1)春樹殿 事件との関係 特許出願人 ′P%kkj覧 に〜名称 責酒造株式会社 4、代理人 6補正の内容 (1)明細書第3頁第10行「焼残」を「煩雑」と訂正
する。 (2)同第4頁第1O行「NAD」を「MAD(P)
Jと訂正する。 (3)同第5頁第1行「NADPH,Jをr NADC
P)Is Jと訂正する。 (4)同第8良第18行「次に」の次に「実験例および
」を挿入する。 (5)同第9頁第6行「第145頁」をr145NJと
訂正する。 以上
検量線を示すグラフであり、第2図は乳酸基質量の検量
線を示すグラフである。 特許出願人 冑?fIIIM株式金社 −1 Ql 02 0.3 0.4
0.5 0.61タノール〕然加量 (
mmole) (自発)手続補正書 昭和57匹−月25日 特許庁長官島 1)春樹殿 事件との関係 特許出願人 ′P%kkj覧 に〜名称 責酒造株式会社 4、代理人 6補正の内容 (1)明細書第3頁第10行「焼残」を「煩雑」と訂正
する。 (2)同第4頁第1O行「NAD」を「MAD(P)
Jと訂正する。 (3)同第5頁第1行「NADPH,Jをr NADC
P)Is Jと訂正する。 (4)同第8良第18行「次に」の次に「実験例および
」を挿入する。 (5)同第9頁第6行「第145頁」をr145NJと
訂正する。 以上
Claims (1)
- 1、 ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(MAD
)またはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフォ
スフエイト(NADP )を補酵素とする各種脱水素酵
素と、還元型ニコチンアミドアゾニジジヌクレオチドま
たは還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフォ
スフエイトを酸化する酸化酵素を用いて、1iADまた
は1ムDPの共存下で反応をさせることにより各種脱水
素酵素の基質量を測定する方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP18508081A JPS5886099A (ja) | 1981-11-18 | 1981-11-18 | ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフオスフエイトを補酵素とする各種脱水素酵素の基質量の測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP18508081A JPS5886099A (ja) | 1981-11-18 | 1981-11-18 | ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフオスフエイトを補酵素とする各種脱水素酵素の基質量の測定方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5886099A true JPS5886099A (ja) | 1983-05-23 |
Family
ID=16164464
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP18508081A Pending JPS5886099A (ja) | 1981-11-18 | 1981-11-18 | ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドまたはニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフオスフエイトを補酵素とする各種脱水素酵素の基質量の測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5886099A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS58209978A (ja) * | 1982-05-31 | 1983-12-07 | Omron Tateisi Electronics Co | 酵素活性の測定装置 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5678599A (en) * | 1979-10-29 | 1981-06-27 | List Hans | Analysis of substance concentration in solution |
-
1981
- 1981-11-18 JP JP18508081A patent/JPS5886099A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5678599A (en) * | 1979-10-29 | 1981-06-27 | List Hans | Analysis of substance concentration in solution |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS58209978A (ja) * | 1982-05-31 | 1983-12-07 | Omron Tateisi Electronics Co | 酵素活性の測定装置 |
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