JPS59130200A - 鮮度判定方法及び装置 - Google Patents
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は魚介類及び鳥獣肉類の鮮度判定方法並びに斯る
方法に使用される測定用キット及び該方法を実施するた
めの鮮度判定装置に関するものである。
方法に使用される測定用キット及び該方法を実施するた
めの鮮度判定装置に関するものである。
近年、魚介類及び鳥獣肉類の長距離輸送並びに冷凍保蔵
を行なう際の品質管理の一手段として斯る肉類の鮮度値
の測定が有効であり、そのために種々の鮮度判定方法及
び装置が提案されている。
を行なう際の品質管理の一手段として斯る肉類の鮮度値
の測定が有効であり、そのために種々の鮮度判定方法及
び装置が提案されている。
その一つは魚介類及び鳥獣肉類のpHを求めて行なうp
H法、又は官能的な方法に基づくものであった。これら
の方法は初期腐敗以後の肉類の変化に起因するものであ
って、従ってこのような方法では鮮魚等の真の鮮度、所
謂「生きの良さ」を判定することはできなかった。
H法、又は官能的な方法に基づくものであった。これら
の方法は初期腐敗以後の肉類の変化に起因するものであ
って、従ってこのような方法では鮮魚等の真の鮮度、所
謂「生きの良さ」を判定することはできなかった。
本発明者等は上記従来の方法を改良し鮮魚等の鮮度、即
ち「生きの良さ」を判定するために、魚介類及び鳥獣肉
類の鮮度が動物の運動エネルギの供給源であるアデノシ
ン6りん酸(ATP)の減少と共に低下するという一般
的認識に着目しATPの変化を分析し鮮度を判定する装
置を提案した(特公昭53−47039号を参照せよ)
。この装置は次のような原理に基づくものである。
ち「生きの良さ」を判定するために、魚介類及び鳥獣肉
類の鮮度が動物の運動エネルギの供給源であるアデノシ
ン6りん酸(ATP)の減少と共に低下するという一般
的認識に着目しATPの変化を分析し鮮度を判定する装
置を提案した(特公昭53−47039号を参照せよ)
。この装置は次のような原理に基づくものである。
魚介類及び鳥獣肉類のATPの分解は一定の法則性があ
って、ATP(アデノシン3りん酸)→ADP (アデ
ノシン2りん酸)→AMP (アデノシン1りん酸)→
IMP(イノシン酸)→HXR(イノシン)−HX(ヒ
ボキサンチン)の++m序で分解することが知られてい
る。従って、魚介類及び鳥獣肉類の鮮度はATPの変化
を分析すれば測定することができる。即ち、HXR(イ
ノシン)やHx(ヒボキサンチン)が多いものほど生き
が悪く、少ないものほど生きが良いことになる。従って
前記装置においては、鮮度の指標としてATP関連化合
物(ATP、ADPXAMP、IMP、HXR及びH,
)の全量に対するHXR(イノシン)及びHx(ヒボキ
サンチン)の量を百分率で表示したに値を採用し、鮮度
の判定は次表に従って行なった、。
って、ATP(アデノシン3りん酸)→ADP (アデ
ノシン2りん酸)→AMP (アデノシン1りん酸)→
IMP(イノシン酸)→HXR(イノシン)−HX(ヒ
ボキサンチン)の++m序で分解することが知られてい
る。従って、魚介類及び鳥獣肉類の鮮度はATPの変化
を分析すれば測定することができる。即ち、HXR(イ
ノシン)やHx(ヒボキサンチン)が多いものほど生き
が悪く、少ないものほど生きが良いことになる。従って
前記装置においては、鮮度の指標としてATP関連化合
物(ATP、ADPXAMP、IMP、HXR及びH,
)の全量に対するHXR(イノシン)及びHx(ヒボキ
サンチン)の量を百分率で表示したに値を採用し、鮮度
の判定は次表に従って行なった、。
K 値 品質区分
0〜10% 活魚、洗い
10〜20 % 刺 身20〜35%
一般鮮魚 ■ぐ 値 品質区分 35〜60% 加工原料 60%以上 かまぼこ原料 しかしながら、前記装置はに値を測定するに当り、アニ
オン交換樹脂を入れたイオン交換器を使用することが必
須とされた。本発明者等は本装置を利用して種々の測定
を試みた結果、試料を測定する毎にイオン交換器内のア
ニオン交換樹脂を交換する必要があり、測ゝ定に要する
時間及び価格が大であるばかりでなく、取扱いには細心
の注意を払う必要があり、作業能率が悪く操作性の点で
問題があった。
一般鮮魚 ■ぐ 値 品質区分 35〜60% 加工原料 60%以上 かまぼこ原料 しかしながら、前記装置はに値を測定するに当り、アニ
オン交換樹脂を入れたイオン交換器を使用することが必
須とされた。本発明者等は本装置を利用して種々の測定
を試みた結果、試料を測定する毎にイオン交換器内のア
ニオン交換樹脂を交換する必要があり、測ゝ定に要する
時間及び価格が大であるばかりでなく、取扱いには細心
の注意を払う必要があり、作業能率が悪く操作性の点で
問題があった。
又、K値測定法の一つとしてHXR(イノシン)及びH
x(ヒボキサンチン)が特定の酵素、例えばヌクレオシ
ドホスホリラーゼ(Nucleosldephosph
orylase )とキサンチン酸化酵素(Xanth
ine oxidase )を用いると尿酸にまで分
解するという酵素反応に着目し、斯る酵素反応を利用し
て尿酸の生成量を測定し、K値を算出する方法が発表さ
れている。この方法は、イオン交換器等の使用を必要と
せず、単に試料中に11チ素を添加するだけでよいため
に、イオン交換器の使用を必須とした前記装置ハの不利
益を大ぎく改良するものであった。しかしながら、36
表されたこの方法では#紫反ルC;によって生成する尿
酸のilにを分光光度d1゛をノ14い293 nmの
吸光度から求めているために、K値を求めるには250
nm及び293 nmの2波長によるmす定を必要と
し、fllll定イ・ト菜が繁雑であり又作業能率を低
下せしめる要因となった。
x(ヒボキサンチン)が特定の酵素、例えばヌクレオシ
ドホスホリラーゼ(Nucleosldephosph
orylase )とキサンチン酸化酵素(Xanth
ine oxidase )を用いると尿酸にまで分
解するという酵素反応に着目し、斯る酵素反応を利用し
て尿酸の生成量を測定し、K値を算出する方法が発表さ
れている。この方法は、イオン交換器等の使用を必要と
せず、単に試料中に11チ素を添加するだけでよいため
に、イオン交換器の使用を必須とした前記装置ハの不利
益を大ぎく改良するものであった。しかしながら、36
表されたこの方法では#紫反ルC;によって生成する尿
酸のilにを分光光度d1゛をノ14い293 nmの
吸光度から求めているために、K値を求めるには250
nm及び293 nmの2波長によるmす定を必要と
し、fllll定イ・ト菜が繁雑であり又作業能率を低
下せしめる要因となった。
更に、本方法を’J< Iffする装置りは1M雑で且
つ+M5価なものとなった。
つ+M5価なものとなった。
本発明は前記方法と同じく酵素反I′It)を利用した
鮮度判定方法に関するものである。本発明者e′戸は種
々の研究及び実験を行なった結果、r’ii(F+浴溶
液希釈試液及び酵素試液で希釈すると単一波長にて吸光
度を測定しK 値を求めることかできることを見出した
。更に本発明者等は酵素試液で試料溶液□ を希釈し
た酵素浴液にカタラーゼ(catalase)及び発色
剤を添加するとATP関連化合物の縫に比例した色素の
発色がみられ、従ってこの色を分光光度計又は比色a(
−にてflip定することによりに値を求め得ることを
見出した。又、史にA T P 18%連化合物は酵素
試液により尿酸にまで分解するが、この尿酸を又は尿酸
と同時に生成するH2O,を酵素センサで直播測定し、
K (+)iを求め得ることが分った。本発明はり「る
眉[親な知見に基いて達成されたものである。
鮮度判定方法に関するものである。本発明者e′戸は種
々の研究及び実験を行なった結果、r’ii(F+浴溶
液希釈試液及び酵素試液で希釈すると単一波長にて吸光
度を測定しK 値を求めることかできることを見出した
。更に本発明者等は酵素試液で試料溶液□ を希釈し
た酵素浴液にカタラーゼ(catalase)及び発色
剤を添加するとATP関連化合物の縫に比例した色素の
発色がみられ、従ってこの色を分光光度計又は比色a(
−にてflip定することによりに値を求め得ることを
見出した。又、史にA T P 18%連化合物は酵素
試液により尿酸にまで分解するが、この尿酸を又は尿酸
と同時に生成するH2O,を酵素センサで直播測定し、
K (+)iを求め得ることが分った。本発明はり「る
眉[親な知見に基いて達成されたものである。
従って、木つコ明の目的は、従来の魚介類及び烏獣肉類
鮮度刊定装置2τ及び方法が有したd4欠点を改良した
鮮度判定方法を4;4供することである。
鮮度刊定装置2τ及び方法が有したd4欠点を改良した
鮮度判定方法を4;4供することである。
本発明の目的は、t:テ素反応を利用して■く値を容易
(ご、迅速に且つ正(ifi’、に求めることができ、
従って魚介類及び鳥獣肉類の取扱現場或は市場等にてこ
れらの鮮度を直ぢに判定することができる鮮度判定方法
を提供することである。
(ご、迅速に且つ正(ifi’、に求めることができ、
従って魚介類及び鳥獣肉類の取扱現場或は市場等にてこ
れらの鮮度を直ぢに判定することができる鮮度判定方法
を提供することである。
木’i6明の他の目的は、梅漬が簡明で、ゼ→作性がよ
く且つ小型の装置にて実IAiすることのできる魚介類
及び鳥獣肉類等の鮮度判定方法を提供することである。
く且つ小型の装置にて実IAiすることのできる魚介類
及び鳥獣肉類等の鮮度判定方法を提供することである。
本発明の更に他の目的は一ヒ記新規な且つ有効な鮮度判
定方法をより迅速に、簡便に且つ正確に行なうことので
きる測定用キット及び鮮度1“11定装置を提供するこ
とである。
定方法をより迅速に、簡便に且つ正確に行なうことので
きる測定用キット及び鮮度1“11定装置を提供するこ
とである。
次に、本発明に係る鮮度判定方法について詳しく説明す
る。
る。
本発明に係る鮮(9)判定方法は、
■ 魚介類及び鳥獣肉類からに値個定の試着となるAT
P関連化合物を抽出する抽出工程、■ 抽出液中のAT
P閂連化合物を分析してに値を測定するために抽出液を
中和剤で中和して分析に適した状態の試r(溶液を11
.9製する中和工程■ 試料溶液にii¥素を加え酵素
反fat、を起す1[にジシ反応工程、及び ■ K値を求めるtdlJ定工程 から成る。以下、各工程に分けて更に詳しく説明する。
P関連化合物を抽出する抽出工程、■ 抽出液中のAT
P閂連化合物を分析してに値を測定するために抽出液を
中和剤で中和して分析に適した状態の試r(溶液を11
.9製する中和工程■ 試料溶液にii¥素を加え酵素
反fat、を起す1[にジシ反応工程、及び ■ K値を求めるtdlJ定工程 から成る。以下、各工程に分けて更に詳しく説明する。
抽出工程及び中和工程
鮮度を判定すべき魚介類又は鳥獣肉類から採取した肉片
にタンパク質変性剤を加え試料容器内にて粉砕される。
にタンパク質変性剤を加え試料容器内にて粉砕される。
タンパク質変性剤としては過塩素H(P CA ) 、
) +) り四ル酢酸及び1エタノール等が用いられる
が、5%のp CA 溶液が好適であり、肉片0.5〜
1qに対し約sm!、使用される。
) +) り四ル酢酸及び1エタノール等が用いられる
が、5%のp CA 溶液が好適であり、肉片0.5〜
1qに対し約sm!、使用される。
前記試料容器から、ガラスウール及び脱脂線等の任;け
の1材を使用した濾過器を介してに値測定の試r1とな
る抽出液を採取する。次で、該抽出液は抽出液中のAT
P門連化合物を分析するに適した状態にするべく中和剤
が添加される。中和剤としては水酸化カリウム、りん酸
カリウム、酢酸カリウム、炭酸カリウム等が、ある。タ
ンパク質中性剤として過塩”AC’fi (P CA
)を使用した場合には、通常その中和剤としては水酸化
カリウム(KOH)が使用される。このように水酸化カ
リウムを用いて中和する場合にはpHメータ又はpH試
験紙等を用いて中和の終点を?、V Dすることが必要
である。
の1材を使用した濾過器を介してに値測定の試r1とな
る抽出液を採取する。次で、該抽出液は抽出液中のAT
P門連化合物を分析するに適した状態にするべく中和剤
が添加される。中和剤としては水酸化カリウム、りん酸
カリウム、酢酸カリウム、炭酸カリウム等が、ある。タ
ンパク質中性剤として過塩”AC’fi (P CA
)を使用した場合には、通常その中和剤としては水酸化
カリウム(KOH)が使用される。このように水酸化カ
リウムを用いて中和する場合にはpHメータ又はpH試
験紙等を用いて中和の終点を?、V Dすることが必要
である。
本発明者等は、中和剤として二つの試薬を組合せて緩衝
作用を持たせることにより過塩素酸(PCA)に対し一
定の割合の中和剤を添加するのみで正確に中和できるこ
とを見出した。斯る方法によって中和工程は著しく簡単
となった。
作用を持たせることにより過塩素酸(PCA)に対し一
定の割合の中和剤を添加するのみで正確に中和できるこ
とを見出した。斯る方法によって中和工程は著しく簡単
となった。
タンパク質変性剤として過塩素酸(PCA)を使用した
場合には中和剤としては例えば次のような試薬の組合せ
が考えられる。
場合には中和剤としては例えば次のような試薬の組合せ
が考えられる。
■ 酢酸カリウムと水酸1ヒカリウム
■ 炭酸カリウムと水酸化カリウム
■ りん酸2カリウムと水酸化カリウムこれら三つの試
薬の組合せの中いずれの中和剤を使用するかはATP関
連化合物の分析方法により適宜選択される。又、上記■
の試」トの組合せは、I Mp (イノシン酸)等のヌ
クレオチドのりん酸基を分解するjTl’i g、例え
ばヌクレオチダーゼ、ホスファターゼ等を利用する場合
には用いることができない。
薬の組合せの中いずれの中和剤を使用するかはATP関
連化合物の分析方法により適宜選択される。又、上記■
の試」トの組合せは、I Mp (イノシン酸)等のヌ
クレオチドのりん酸基を分解するjTl’i g、例え
ばヌクレオチダーゼ、ホスファターゼ等を利用する場合
には用いることができない。
酵素反応工程及び測定工程
ATP関連化合物の中のATP(アデノシン3りん酸)
、ADP (アデノシン2りん酸)、AMP(アデノシ
ン1りん酸)及びIMP(イノシン酸)の合計を(A)
とし、HXR(イノシン)及びHx(ヒボキサンチン)
の合計を(B) とするとに値は次のように表わされ
る。
、ADP (アデノシン2りん酸)、AMP(アデノシ
ン1りん酸)及びIMP(イノシン酸)の合計を(A)
とし、HXR(イノシン)及びHx(ヒボキサンチン)
の合計を(B) とするとに値は次のように表わされ
る。
本発明に係る方法においてはA及びBの量を酵素反応を
利用して測定するものであるが、次の2一つの酵素反応
系を用いることができる。
利用して測定するものであるが、次の2一つの酵素反応
系を用いることができる。
e、紫反応糸(1):イノシン(HX R) 及びヒ
ボキサンチン(Hx )が酵素によって尿酸にまで分解
される反応を利用してに値を測定する方法。
ボキサンチン(Hx )が酵素によって尿酸にまで分解
される反応を利用してに値を測定する方法。
前記式(1)において分母に相当するATP関連化合物
の全t(A+B)は、中和工程により中和して分析に適
した状態に調製された試料溶液を希釈試液、例えば0.
1 M IJン酸緩衝液pH7,5にて20倍に希釈し
た後、分光光度計を用い250 nmの吸光度を測定し
て求められる。この1till定値を(A+B)2so
として表わす。
の全t(A+B)は、中和工程により中和して分析に適
した状態に調製された試料溶液を希釈試液、例えば0.
1 M IJン酸緩衝液pH7,5にて20倍に希釈し
た後、分光光度計を用い250 nmの吸光度を測定し
て求められる。この1till定値を(A+B)2so
として表わす。
一方、前記式(1)の分子に相当するA T P IF
d連化合物の中の(B)の・辰、即ちイノシン(HXR
)とヒボキサンチン(Hx)の計は次のように求められ
る。
d連化合物の中の(B)の・辰、即ちイノシン(HXR
)とヒボキサンチン(Hx)の計は次のように求められ
る。
従来、イノシン(HX R)は酵素、例えばヌクレオシ
ドホスホリラーゼ(Nucleoside phosp
hory−1ase ) によってヒボキサンチン(
Hx )に、又ヒボキサンチン(HX)は酵素、例えば
キサンチン酸化酸−素(Xanthine oxida
se ) によつで尿酸に分解されることが分ってい
る。本方法においては、0、1 Mりん酸緩衝液、pH
7,5の1 mlにヌクレオシドホスホリラーゼ(0,
01ユニット以上)及びキサンチン1浚化酵素(o、
o o 5ユニット以上)を溶解して酵素試液をR1’
J製する。該酵゛素試液を用いて、nlJl補記及び中
和工程にて用意された試料溶液を20倍に希釈し、37
°C又は室幅1で一定時間、例えば5〜10分間反応さ
せる。次で、該反応液の吸光=を250nmの光を用い
て測定し、k fijl定値を(A)2!toとして表
わすと、(B)の量は250nmによる吸光度の減少量
、つまりCA+J3)zao−(A )250 = C
B )25oに比例した値として求めることができる。
ドホスホリラーゼ(Nucleoside phosp
hory−1ase ) によってヒボキサンチン(
Hx )に、又ヒボキサンチン(HX)は酵素、例えば
キサンチン酸化酸−素(Xanthine oxida
se ) によつで尿酸に分解されることが分ってい
る。本方法においては、0、1 Mりん酸緩衝液、pH
7,5の1 mlにヌクレオシドホスホリラーゼ(0,
01ユニット以上)及びキサンチン1浚化酵素(o、
o o 5ユニット以上)を溶解して酵素試液をR1’
J製する。該酵゛素試液を用いて、nlJl補記及び中
和工程にて用意された試料溶液を20倍に希釈し、37
°C又は室幅1で一定時間、例えば5〜10分間反応さ
せる。次で、該反応液の吸光=を250nmの光を用い
て測定し、k fijl定値を(A)2!toとして表
わすと、(B)の量は250nmによる吸光度の減少量
、つまりCA+J3)zao−(A )250 = C
B )25oに比例した値として求めることができる。
従って、K イ1ffは次式で与えられる。
ここで、250nmの光を使用した場合αは大略1.8
(254nmの光を使用した場合αは大略1,7)と
なるので、式(2)は次のように省き換えるごとができ
る。
(254nmの光を使用した場合αは大略1,7)と
なるので、式(2)は次のように省き換えるごとができ
る。
上記説明から、本方法に従うとに値は、試料溶液を希釈
試液及び酵素試液で希釈した後各々単一の波長にて吸光
度を測定することによって直ちに求め得ることが理解さ
れるであろう。
試液及び酵素試液で希釈した後各々単一の波長にて吸光
度を測定することによって直ちに求め得ることが理解さ
れるであろう。
って尿酸にまで分解される反応を利用してに値を測定す
る方法。
る方法。
前記式(1)の分母に4目当するATP閃連化合物、r
aJちATP、ADP、AMP、IΔ・IP・、HxR
及びr(xの全)+i: (A 十B )の測定値は次
のようにして求められる。本方法においてはIMFをH
xRに分解する酵素、例えはホスファターゼ(phos
phatase )、HXRをHxに分解する酵孝、例
えはヌクレオシダーゼ(Nucleosidase )
、及びHxを尿酸に分解する酵素、例えばキサンチン酸
化酵素を使用する。
aJちATP、ADP、AMP、IΔ・IP・、HxR
及びr(xの全)+i: (A 十B )の測定値は次
のようにして求められる。本方法においてはIMFをH
xRに分解する酵素、例えはホスファターゼ(phos
phatase )、HXRをHxに分解する酵孝、例
えはヌクレオシダーゼ(Nucleosidase )
、及びHxを尿酸に分解する酵素、例えばキサンチン酸
化酵素を使用する。
更に、ATど、ADP及びAMPをIMFに変換するた
めに他の酵素が必要であるが、これらATP、ADP及
びAMPの合計は少ないので前記三つの酵素を使用する
ことで十分である。
めに他の酵素が必要であるが、これらATP、ADP及
びAMPの合計は少ないので前記三つの酵素を使用する
ことで十分である。
前記酵素の中ホスファターゼはりん酸溶液中では作用せ
ず、一方ヌクレオシドホスホリラーゼはりんi・+々溶
液中でないと作用しないので、005M炭1’7.40
往1液pH9,0,1m7!にホスファターゼ(001
ユニ・ント以−ヒ)を溶fq了した林1.1の自チ素試
液と、0.2 Mりん肖、> p a s、、pH75
,1mlにヌクレオシドホスポリラーゼ(001ユニッ
ト以上)及びキサンチン酸化酵素(o、 o o 5ユ
ニット以上)を溶解した第2の酵素試゛液とをj?′!
l製する。
ず、一方ヌクレオシドホスホリラーゼはりんi・+々溶
液中でないと作用しないので、005M炭1’7.40
往1液pH9,0,1m7!にホスファターゼ(001
ユニ・ント以−ヒ)を溶fq了した林1.1の自チ素試
液と、0.2 Mりん肖、> p a s、、pH75
,1mlにヌクレオシドホスポリラーゼ(001ユニッ
ト以上)及びキサンチン酸化酵素(o、 o o 5ユ
ニット以上)を溶解した第2の酵素試゛液とをj?′!
l製する。
特に、魚肉の餌度判定にあっては魚肉中のATP(アデ
ノシン6りん酸)は、魚が捕獲されそして貯蔵されるま
でに殆んどIMP(イノシン酸)又はAMP(アデノシ
ン1りん酸)にまで分解される。この時、上4で13の
ようにムA1の酵素試液であるホスファターゼを作用さ
せると、IMFはHXR(イノシン)に、又AMP G
−]: Ad −R(アデノシン)に分W(される。従
って、該アデノシンをイノシンに分解する酸ツー、1(
11ちアゾ/シンデアミナーゼ(001ユニット以上)
を上記第1の酵素試液に更に添加するのが好適である。
ノシン6りん酸)は、魚が捕獲されそして貯蔵されるま
でに殆んどIMP(イノシン酸)又はAMP(アデノシ
ン1りん酸)にまで分解される。この時、上4で13の
ようにムA1の酵素試液であるホスファターゼを作用さ
せると、IMFはHXR(イノシン)に、又AMP G
−]: Ad −R(アデノシン)に分W(される。従
って、該アデノシンをイノシンに分解する酸ツー、1(
11ちアゾ/シンデアミナーゼ(001ユニット以上)
を上記第1の酵素試液に更に添加するのが好適である。
斯るアデノシンデアミナーゼを更に添加する方法は/I
’iにイカの魚1度判定の場合に有効である。
’iにイカの魚1度判定の場合に有効である。
先ず、試料溶液は第1の酵素試液で10倍に希釈し、3
7°C又は室温で一定tt4r間、例えば5〜10分間
反応させた後、更に第2の酵素試液で2イ8希釈し、再
度67℃又は室温で一定時間、例えば5〜10分間反応
させる。次で、該反応液の295nmの吸光度を411
1定し、測定値を(A+B)vとして表わす。
7°C又は室温で一定tt4r間、例えば5〜10分間
反応させた後、更に第2の酵素試液で2イ8希釈し、再
度67℃又は室温で一定時間、例えば5〜10分間反応
させる。次で、該反応液の295nmの吸光度を411
1定し、測定値を(A+B)vとして表わす。
上記方法においてはHxRをHX に’d1す’l’
する酵ヌくとじてヌクレオシドホスポリラーゼを使用し
たが、ヌクレオシドホスポリラーゼの代わりにヌクレオ
シダーゼ(Nucleosidase ) を使用す
ることも可能である。訪ヌクレオシダーゼはヌクレオシ
ドホスポリラーゼのようにりん酸溶液を必要とはしない
ので、酵素試液は一74曹膿すればよく上記方法に比較
するとより簡便である。該nf駆試)1には005M炭
酸緩衝液p■■80.1 mlにホスファターゼ(0,
01ユニット以上)、ヌクレオシグーゼ(001ユニッ
ト以上)及びキサンチン[1ン化酵素(001ユニット
以上)を溶解して1iJIi をJビれる。
する酵ヌくとじてヌクレオシドホスポリラーゼを使用し
たが、ヌクレオシドホスポリラーゼの代わりにヌクレオ
シダーゼ(Nucleosidase ) を使用す
ることも可能である。訪ヌクレオシダーゼはヌクレオシ
ドホスポリラーゼのようにりん酸溶液を必要とはしない
ので、酵素試液は一74曹膿すればよく上記方法に比較
するとより簡便である。該nf駆試)1には005M炭
酸緩衝液p■■80.1 mlにホスファターゼ(0,
01ユニット以上)、ヌクレオシグーゼ(001ユニッ
ト以上)及びキサンチン[1ン化酵素(001ユニット
以上)を溶解して1iJIi をJビれる。
試料溶液は該酵素試液で20倍で希釈し、37℃又は室
温で一定I1.!1′間、例えば5〜10分間反応させ
た後、293nmの吸光度を測定し、f11定価(A+
B)v を求めることができる。
温で一定I1.!1′間、例えば5〜10分間反応させ
た後、293nmの吸光度を測定し、f11定価(A+
B)v を求めることができる。
一方、式(1)の分子にあたる(B) の量Sは前記
(I)の方法と同様にして1ff4製されたヌクレオシ
ドホスポリラーゼ及びキザンチン阪化酵素を含む1)ア
素試液で20倍に希釈し、67℃又は室温で一時間反応
させることによって求められ、この測定値を〔B)vと
して表わす。 − 上記方法によって測定された分母部分及び分子部分(A
+B)v及びCB)Vからに値は次式によって求めるこ
とができる。18Jち、本方法ではATPV’j連化合
物すべてを尿酸にまで分解する糸を用いているので、前
記式(1)の(A十B)及び(B)のト!4は生成する
尿酸の預; (A + B ) y及び[B]7の閾に
各々比例する。従って、 である。
(I)の方法と同様にして1ff4製されたヌクレオシ
ドホスポリラーゼ及びキザンチン阪化酵素を含む1)ア
素試液で20倍に希釈し、67℃又は室温で一時間反応
させることによって求められ、この測定値を〔B)vと
して表わす。 − 上記方法によって測定された分母部分及び分子部分(A
+B)v及びCB)Vからに値は次式によって求めるこ
とができる。18Jち、本方法ではATPV’j連化合
物すべてを尿酸にまで分解する糸を用いているので、前
記式(1)の(A十B)及び(B)のト!4は生成する
尿酸の預; (A + B ) y及び[B]7の閾に
各々比例する。従って、 である。
上記方法はATPII連化合物が酵素により尿酸にまで
分解する反応を利用し、293nmの吸光度を測定する
ことにより、K値を求めたが、上記酵素反応系にては尿
酸と共に過酸化水素(■■toz)が生成され、このH
60,を発色法により測定することも可能である。この
拳法においては上記の各酵素試液にカタラーゼ(cat
alase ) 及び発色剤(例えば4−アミノアン
チピリンと、フェノール、ジメチルアニリン又はジエチ
ルメタトルイジンとを組合せたもの)を加え同時に反応
させるとATP関連化合物の量に比例した色素の発色が
みられる。
分解する反応を利用し、293nmの吸光度を測定する
ことにより、K値を求めたが、上記酵素反応系にては尿
酸と共に過酸化水素(■■toz)が生成され、このH
60,を発色法により測定することも可能である。この
拳法においては上記の各酵素試液にカタラーゼ(cat
alase ) 及び発色剤(例えば4−アミノアン
チピリンと、フェノール、ジメチルアニリン又はジエチ
ルメタトルイジンとを組合せたもの)を加え同時に反応
させるとATP関連化合物の量に比例した色素の発色が
みられる。
従って、この色を分光光度計又は比色計で測定し、K値
を求めることができる。
を求めることができる。
更に又、酵素反応系にて生成される尿酸又はイ02はそ
れぞれウリカーゼ又はカタラーゼを使用した酵素センサ
にて測定することも可能であろう。
れぞれウリカーゼ又はカタラーゼを使用した酵素センサ
にて測定することも可能であろう。
以上説明した酵素反応系(田)によるに値測定法は前冗
酵崇反応系(I)の方法に比較し使用する酵求が多く反
応系は幾分複雑となるが、発色法を利用することにより
紫外部の吸光度をンi!l!定する心安をなくし、より
安価な測定器を利用することができるという利点を有す
る。又、特にイカ等にあってはA T P B’:I連
化合物以外に紫外部吸収化合物(ホマリン)を有し、紫
外部吸光度測定を行なった場合には鮮度判定に誤差を生
じることとなる。発色法はこのような紫外部吸光度測定
がもつ欠点を解決することができる。
酵崇反応系(I)の方法に比較し使用する酵求が多く反
応系は幾分複雑となるが、発色法を利用することにより
紫外部の吸光度をンi!l!定する心安をなくし、より
安価な測定器を利用することができるという利点を有す
る。又、特にイカ等にあってはA T P B’:I連
化合物以外に紫外部吸収化合物(ホマリン)を有し、紫
外部吸光度測定を行なった場合には鮮度判定に誤差を生
じることとなる。発色法はこのような紫外部吸光度測定
がもつ欠点を解決することができる。
次に、本発明に係る鮮度判定方法の実施例を前記酵素反
応系(I)を使用した場合についてより詳しく説明する
。
応系(I)を使用した場合についてより詳しく説明する
。
本発明は測定に必要3な試液類を「測定用キット」とし
てイ是供することによって現場での測定を簡便に且つ正
確に行なうことができるという利点を有する。測定用キ
ットは、 (1)緩衝液 (2)酵素液 (3)標準品 から成る。
てイ是供することによって現場での測定を簡便に且つ正
確に行なうことができるという利点を有する。測定用キ
ットは、 (1)緩衝液 (2)酵素液 (3)標準品 から成る。
緩衝液は0.1Mりん酸緩衝液、pH75の150++
+7!容器を2本用意して構成され、酵素液はヌクレオ
シドホスホリラーゼ(6ユニツト以上)及びキサンチン
酸化酵素(1−5ユニット以上)を含んだ3.2 M硫
酸アンモニウム溶液0−4m1lから成る。又、該に値
測定用キットに用いるヌクレオシドホスホリラーゼ及び
キサンチン酸化酵素が正常に作用していることを確認す
るための標]vL品は0、5 tt moleのIMP
(イノシン酸)及びI(xR(イノシン)、即ちに値が
50を示す々9′IP溶液である。
+7!容器を2本用意して構成され、酵素液はヌクレオ
シドホスホリラーゼ(6ユニツト以上)及びキサンチン
酸化酵素(1−5ユニット以上)を含んだ3.2 M硫
酸アンモニウム溶液0−4m1lから成る。又、該に値
測定用キットに用いるヌクレオシドホスホリラーゼ及び
キサンチン酸化酵素が正常に作用していることを確認す
るための標]vL品は0、5 tt moleのIMP
(イノシン酸)及びI(xR(イノシン)、即ちに値が
50を示す々9′IP溶液である。
ρ1度判定作業に先立って、前記測定用キットを使用し
て酵素試液が調製される。つまり、緩倹液の中の1本に
酵f液を全(A溶かし酵素試液を作る。
て酵素試液が調製される。つまり、緩倹液の中の1本に
酵f液を全(A溶かし酵素試液を作る。
他の1本の緩衝液は希釈試液として使用される。
又、標準品入りの容器には蒸留水1mlを加えて標準液
を作る。
を作る。
辿常、鮮度判定すべき検体の試料溶液は検体の肉片05
〜1gに対し5%peAs液5厩を加えて粉砕し、中和
剤として4Mのりん酸2カリウムと4Mの水酸化カリウ
ムを1,2M添加して作製される。
〜1gに対し5%peAs液5厩を加えて粉砕し、中和
剤として4Mのりん酸2カリウムと4Mの水酸化カリウ
ムを1,2M添加して作製される。
上記の!tU <にi!i+l製された、試料溶液−1
標Y1(液、希釈試液及び酵素試液を使用し、前記本発
明の方法に径ってに値の測定を行なうことができる。表
1は本発明の方法に従ったに値測定時の一つの操作法を
まとめたものである。
標Y1(液、希釈試液及び酵素試液を使用し、前記本発
明の方法に径ってに値の測定を行なうことができる。表
1は本発明の方法に従ったに値測定時の一つの操作法を
まとめたものである。
上記測定にあたり、測定の正確さ及び信頼性を確保する
ために、標準液のに値、即ぢ が45〜55の範囲内にあることを確認する必要がある
。又、測定値[A十B’)two の大部分はATF
’閃連化合物の吸収によるものであるが、ATP門連化
舒物以外の化合物の吸収も数%含まれていることが分っ
た。更にこの値は(A+B)25゜の数値が低いほどそ
のす11合が高いことが分った。71b常(A + B
) 25 o はN片o、 s −i、 o yか
ら抽出t、 タ試料溶液にあっては0.5〜10を示す
ものであり、従ってもし[A+B]t*oが06以下で
ある場合には試料2再調製してA(11定し1白すこと
が撃ましい。
ために、標準液のに値、即ぢ が45〜55の範囲内にあることを確認する必要がある
。又、測定値[A十B’)two の大部分はATF
’閃連化合物の吸収によるものであるが、ATP門連化
舒物以外の化合物の吸収も数%含まれていることが分っ
た。更にこの値は(A+B)25゜の数値が低いほどそ
のす11合が高いことが分った。71b常(A + B
) 25 o はN片o、 s −i、 o yか
ら抽出t、 タ試料溶液にあっては0.5〜10を示す
ものであり、従ってもし[A+B]t*oが06以下で
ある場合には試料2再調製してA(11定し1白すこと
が撃ましい。
次に、上記鮮度判定方法を極めて好適に実施し得る鮮度
判定装置について説明する。
判定装置について説明する。
第1図には鮮度判定装置の一実施態様が概略図示されて
いる。鮮度判定装置は鮮度判定すべき魚介類及び鳥獣肉
類から試料溶液を調製するための試料容器5を具備する
。該試料容?7r5は攪拌様(図示せず)を有する。試
料′容器5には魚介類及び鳥獣肉類から採取した内水と
、タンパク質変性剤とが装入され、招拌機にて粉砕され
る。タンパク1F4.変性剤としては前述のように過塩
素酸が好適である。次で、試料容器5には次で中和剤、
例えばりん酸2カリウム及び水酸化カリウムが加えられ
る。適当な時111静置して変性蛋白質及び過塩素酸塩
を沈殿させ、上澄液が試料溶液として使用される。試料
溶液は試料容器5からポンプ(図示せず)などにより導
特10を介して取出される。
いる。鮮度判定装置は鮮度判定すべき魚介類及び鳥獣肉
類から試料溶液を調製するための試料容器5を具備する
。該試料容?7r5は攪拌様(図示せず)を有する。試
料′容器5には魚介類及び鳥獣肉類から採取した内水と
、タンパク質変性剤とが装入され、招拌機にて粉砕され
る。タンパク1F4.変性剤としては前述のように過塩
素酸が好適である。次で、試料容器5には次で中和剤、
例えばりん酸2カリウム及び水酸化カリウムが加えられ
る。適当な時111静置して変性蛋白質及び過塩素酸塩
を沈殿させ、上澄液が試料溶液として使用される。試料
溶液は試料容器5からポンプ(図示せず)などにより導
特10を介して取出される。
上記の如くに調製されそして取出された試料溶液は変性
蛋白質等の固形分を含有しているため、治1管10に1
−1過器6を設は斯る固形分を除去せしめる。カj過器
6は、例えはガラスウール、脱脂綿等を充′J、)fi
シた通常の濾過器とすることができる。
蛋白質等の固形分を含有しているため、治1管10に1
−1過器6を設は斯る固形分を除去せしめる。カj過器
6は、例えはガラスウール、脱脂綿等を充′J、)fi
シた通常の濾過器とすることができる。
本鮮度判定装U)゛は、更に上記試料溶液の一部に酵素
反応を起させるための酵素反応器7と、試料溶液の吸光
度を測定する*1Δ」り器8と、計測器8からの信号に
基づきに値を計算し、出力する計算機9とを具備する。
反応を起させるための酵素反応器7と、試料溶液の吸光
度を測定する*1Δ」り器8と、計測器8からの信号に
基づきに値を計算し、出力する計算機9とを具備する。
計測器8は一部の分光光度計8a 17.び81)から
成り、分光光度計8aけ酵素反応器7に導管11にて接
続され更に濾過器6へと連結されるが、使方の分光光度
計8bは1自接導管12にてηj過31÷6へと接続さ
れる。従って、試料溶液はp過器を妬過した後分岐され
、一方は導層11によって酵;:(反応器7を介して分
光光度計83に導入さ、才]、他力は専管12によって
i7′i−、Hl妾分光光度計8bに導入される。
成り、分光光度計8aけ酵素反応器7に導管11にて接
続され更に濾過器6へと連結されるが、使方の分光光度
計8bは1自接導管12にてηj過31÷6へと接続さ
れる。従って、試料溶液はp過器を妬過した後分岐され
、一方は導層11によって酵;:(反応器7を介して分
光光度計83に導入さ、才]、他力は専管12によって
i7′i−、Hl妾分光光度計8bに導入される。
酵”素反応器7はカラムに不溶化したヌクレメシドホス
ホリラーゼ及びキサンチン酸化(”i’f岩が充填され
て÷A′成される。貼る不溶化酵素は一般に(1)担体
結合法、(2)架ゼユ法、及び(′i)包括法等が用い
られるが、水溶性の相体に酵孝を共有結合させる方法が
安定しンと不溶化配り(舌を提供し得るという点で好ま
しい。このとき水溶性の担体としてはm−アミノベンジ
ルオキシメチル・セルロース(A B T、I C>、
ブロモアセデルセルロース(BAC)等が現在市販され
ており、入手可能である。
ホリラーゼ及びキサンチン酸化(”i’f岩が充填され
て÷A′成される。貼る不溶化酵素は一般に(1)担体
結合法、(2)架ゼユ法、及び(′i)包括法等が用い
られるが、水溶性の相体に酵孝を共有結合させる方法が
安定しンと不溶化配り(舌を提供し得るという点で好ま
しい。このとき水溶性の担体としてはm−アミノベンジ
ルオキシメチル・セルロース(A B T、I C>、
ブロモアセデルセルロース(BAC)等が現在市販され
ており、入手可能である。
分光光度計83(’ 8 b )は試料溶液が流イ1チ
する試料セル13(14)と、光’?I¥検出器15(
16)と、例えば254 nmの波長を有する共通光源
17とから成る。従って、分光光度計8bの光電検出器
16には試料溶液のATP関連化合物の全ff1t、
(A + B )に相当する吸光度が検出され、又分光
光度計8aの光電検出器15にはHxR及びHxが尿酸
に分解した彼のATP閃連化合物の(A)に相当する吸
光度が検出される。斯る光電検出器15及び16の電気
信号は計算機兼AD変換器9によりδ1°算されに値が
求められそしてプリントアウト又はブラウン管4JFに
表示される。
する試料セル13(14)と、光’?I¥検出器15(
16)と、例えば254 nmの波長を有する共通光源
17とから成る。従って、分光光度計8bの光電検出器
16には試料溶液のATP関連化合物の全ff1t、
(A + B )に相当する吸光度が検出され、又分光
光度計8aの光電検出器15にはHxR及びHxが尿酸
に分解した彼のATP閃連化合物の(A)に相当する吸
光度が検出される。斯る光電検出器15及び16の電気
信号は計算機兼AD変換器9によりδ1°算されに値が
求められそしてプリントアウト又はブラウン管4JFに
表示される。
第1図は本発明に係る鮮度判定装置の一実施態様の概略
図である。 5:試料容器 6:ろ過器 7:酵素反応器 8:計測部 8a、8b:分光光度計 9:計算機兼AD変換器
図である。 5:試料容器 6:ろ過器 7:酵素反応器 8:計測部 8a、8b:分光光度計 9:計算機兼AD変換器
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)魚介類又は鳥獣肉類の肉片にタンパク質変性剤を加
えて粉砕し、ATP関連化合物を含有した抽出液を採取
する抽出工程とt前記抽出液に中和剤を添加し試料溶液
を調製する中和工程と;前記試料溶液の所定量に一定量
の希釈試液を加えた後所定波長の光線にてATP関連化
合物全量の吸光度を測定し、測定値CA 十B )を求
める工程と;前記試料溶液の所定量に、ATP関連化合
物のイノシン及びヒボキサンチンを尿酸に分解する一定
量の酵素試液を加えた後前記波長と同じ波長の光線にて
吸光度を測定し、測定値(A)を求める工程と;前記測
定値(A+B)及び(A)を用い、次式 (ここで、αは吸光度測定に使用される光線によって定
まる定数である。) に基いてK値を求める工程とから成ることを特徴とする
魚介類及び鳥獣閑煩の鮮度判定方法。 2)タンパク質変″距剤は過塩紫酸、トリクロル酢11
夕又はエタノールである4’!rτ:1傭)I求の範囲
第1項記載の方法。 3)中イ■剤は木酢化カリウム、りん酸カリウム、酢酸
カリウム又は炭酸カリウムである時it’l’請求の範
囲第2項記載の方法。 4)タンパク質変性剤は5%の過塩業r毀浴液であり、
中和?itlはi’!’F rイやカリウムと水酬2化
カリウムの組合せ、炭酸カリウムと水l′台化カリウム
の、1:11自せ又はりん酸2カリウムと木酢化カリウ
ムの組合せであるq′ケ許請求の1j6j囲第2狛記屯
乏の方法。 5)希釈試液はpLI7.5の0.1 Mりん酸緩術液
であって試峯1溶液の20倍の容量を有しており、又酵
素試液i−1: p i4.7.5の0.1 Mりん[
υ緩イうvg i meにヌクレオシドホスホリラーゼ
(o、 o 1ユニット以上)及びキサンチン酸化酵素
(o、 o o sユニツト以上)を溶解したものであ
って試料溶液の20倍の容量を有している特許請求の範
囲第1項記載の方法。 6)光線の波長は250 nmであり0、αは1.8で
ある特許請求の範囲第5項記載の方法。 7)光線の波長は254 nmであり、α=1.7であ
る特許請求の範囲第5項記載の方法。 8)魚介類又は鳥獣肉類の肉片にタンパク質変性剤を加
えて粉砕し、ATPN連化合物を含有した抽出液を採取
する抽出工程と;前記抽出液に中和剤を添加し試料溶液
をW、1製する中和工程とI 1ull記試料溶液の所
定量に、ATP関連化合物を全て尿酸に分解する一定量
の第一の酵素試液を加えた後盾定波長の光線にて吸光度
を測定し、測定値(A+B)vを求める工程と1前6−
1試刺溶液の所定量に、ATP関連化合物中のイノシン
及びヒボキサンチンを尿酸に分解する一定量の第二の酵
素試液を加えた後前記波長と同じ波長の光線にて吸光度
を測定し、測定値(B )、vを求める工程と1前記測
定値(A 十B ) v及びil:B)vを用い、次(
A+B)v に基いてに値を求める工程とから成ることを特徴とする
魚介類及び鳥獣肉類の鮮度判定方法。 9)タンパク質変性剤は過塩素酸、トリクロル酢酸又は
エタノールである特許請求の範囲第8項記載の方法。 10)中和剤は水′酸化カリウム、りん酸カリウム、酢
酸カリウム又は炭酸カリウムである特許請求の範囲第9
項記載の方法。 11)タンパク質変性剤は5%の過塩素酸溶液であり、
中和剤は酢rツタカリウムと水酸化カリウムの組合せ、
炭酸カリウムと水酸化カリウムの組合せ又はりん酸2カ
リウムと水酸化カリウムの組合せである特許請求の範囲
第1項記戒の方法。 12)第一の酵素試液は、p 、H90の0.05 M
炭酸緩衝液1ml!にホスファターゼ(o、 o 1ユ
ニット以上)を溶解した第1の酵素試液と、p H7,
5の0、2 Mりん酸緩衝液1 mlにヌクレオシドホ
スホリラーゼ(0,01ユニット以上)及びキサンチン
酸化酵素(o、 o o sユニット以上)を溶解した
第2の酵素試液とから成り1試料溶液は第1の酵素試液
で10倍に希釈して酵素反応させ、次で第2の酵素試液
で更に2倍に希釈して再度酵素反応させた後吸光度を測
定し、測定値(A + B ) vが求められるように
した特許fly求の範囲第8項記載の方法。 13)第一の酵素試液は更にアデノシンデアミナーゼ(
0,01ユニット以上)を含有して成る特許請求の範囲
第12項記載の方法。 14)第一の酵素試液はpH8,0の005M炭酸緩衝
液1vtlにホスファターゼ(o、 o 1ユニット以
上)、ヌクレオシダーゼ(o、 o 1ユニット以上)
及びキサンチン酸化酵素(o、 o 1ユニット以上)
を溶解したものであって試料溶液の20倍の容量を有し
ている特許請求の範囲第8項記載の方法015)第二の
酵素試液はp I(7,5の0.1 Mりん酸緩衝液1
dにヌクレオシドホスホリラーゼ(a、 O1ユニット
以上)及びキサンチン酸化酵素(o、oosユニット以
上)を溶解したものであって試料溶液の20倍の容量を
有している特許請求の範囲第12項、第13項又は第1
4項記載の方法。 16)第−及び第二酵素試液には更にカタラーゼ及び発
色剤が添加されて成る特許請求の範囲第8項記載の方法
。 17)発色剤は4−アミノアンチピリンと、フェノール
、ジメチルアニリン又はジエチルメタトルイジンとを組
合せたものである特許請求の範囲第16項記載の方法。 18)魚介類又は鳥獣肉類の肉片から調製された試料溶
液に希釈試液及び酵素試液を加えた後吸光度を測定し、
K値を求めることによって魚介類及び鳥獣肉類の鮮度を
判定する方法に使用する前記希釈試液及び酵素試液を提
供するための測定用キットであって、11) p H7
5の0.1 Mりん酸緩衝液150m1入り緩衝液容器
2本、(2)ヌクレオシドホスホリラーゼ(3ユニット
以上)及びキサンチン酸化酵素(15ユニット以上)を
含んだ3.2 M硫酸アンモニウム浴液0.4 ml入
り酵素液容器1本、並びに(3) 0.5μMのイノシ
ン酸及びイノシン入り標準品1本から成り、前記1本の
緩衝液容器に前記酵素液容器内の酵素を溶解して酵素試
液を調製し、他の緩衝液容器内の緩衝液はそのまま希釈
試液として使用するようにした前記測定用キット。 19)魚介類及び鳥獣肉類の肉片から試料溶液を調製す
るための試料容器と、試料容器からの試料溶液を精製す
るためのコ呵過器と、濾過器を通った試料溶液を二分し
て導く専管と、前記導管の一方に挿入された、不溶化さ
れたヌクレオシドホスホリラーゼ及びキサンチン酸化酵
素を有した酵素反応器と、前記酵素反応器に接続された
第1の分光光度計と、前記導管の他方に直接接続された
第2の分光光度計と、前記第1及び第2の分光光度計か
らの測定値信号を計算しに値を求めそして出力する計算
機兼AD要換器とを具備することを特徴とする鮮度判定
装置。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP163883A JPS59130200A (ja) | 1983-01-11 | 1983-01-11 | 鮮度判定方法及び装置 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP163883A JPS59130200A (ja) | 1983-01-11 | 1983-01-11 | 鮮度判定方法及び装置 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS59130200A true JPS59130200A (ja) | 1984-07-26 |
| JPH0333319B2 JPH0333319B2 (ja) | 1991-05-16 |
Family
ID=11507064
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP163883A Granted JPS59130200A (ja) | 1983-01-11 | 1983-01-11 | 鮮度判定方法及び装置 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS59130200A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1989007655A1 (fr) * | 1988-02-18 | 1989-08-24 | Daiichi Pure Chemicals Co., Ltd. | Procede de mesure du degre de fraicheur de produits de la peche et de produits carnes et kit de mesure permettant d'appliquer ce procede |
| US5088822A (en) * | 1989-09-08 | 1992-02-18 | Sumitomo Electric Industries, Ltd. | Meat freshness measuring apparatus |
| CN105116117A (zh) * | 2015-05-29 | 2015-12-02 | 上海海洋大学 | 虾类冷藏期间鲜度评估方法 |
-
1983
- 1983-01-11 JP JP163883A patent/JPS59130200A/ja active Granted
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO1989007655A1 (fr) * | 1988-02-18 | 1989-08-24 | Daiichi Pure Chemicals Co., Ltd. | Procede de mesure du degre de fraicheur de produits de la peche et de produits carnes et kit de mesure permettant d'appliquer ce procede |
| US5088822A (en) * | 1989-09-08 | 1992-02-18 | Sumitomo Electric Industries, Ltd. | Meat freshness measuring apparatus |
| CN105116117A (zh) * | 2015-05-29 | 2015-12-02 | 上海海洋大学 | 虾类冷藏期间鲜度评估方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0333319B2 (ja) | 1991-05-16 |
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