JPS5925400A - プラスミドpuh1及びその含有菌株 - Google Patents
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
ドPUH1に関するものである。
更に詳細には、本発明は、新規なベクターとしてのプラ
スミドpUH1及びプラスミドpUH 1を含有する新
規分離菌株Bacillus subtilis(na
tto) Asahikawaに関するものである。
スミドpUH1及びプラスミドpUH 1を含有する新
規分離菌株Bacillus subtilis(na
tto) Asahikawaに関するものである。
本発明の目的の一つは、遺伝子操作技術に新規プラスミ
ドpUI(1を提供することにある。
ドpUI(1を提供することにある。
現在、遺伝子操作技術に関連して数多くのプラスミドが
提供され、なかにはベクターとして有効に利用されるも
のもみられるようになって米た。
提供され、なかにはベクターとして有効に利用されるも
のもみられるようになって米た。
しかしながら、従来の数多くのプラスミドは、ベクター
として宿主に移入し、発現させたときに、そのプラスミ
ドが移入されたかどうかを検知することがきわめて困難
であった。勿論、すべての発生菌株についてプラスミド
を分離して検知すれば可能なのであるが、きわめて長い
時間がかかつてしまうものであった。
として宿主に移入し、発現させたときに、そのプラスミ
ドが移入されたかどうかを検知することがきわめて困難
であった。勿論、すべての発生菌株についてプラスミド
を分離して検知すれば可能なのであるが、きわめて長い
時間がかかつてしまうものであった。
そこで、あらかじめ各種薬剤耐性をもたせた菌株から、
特定薬剤耐性のプラスミドを分離し、これをベクターと
して用いて菌に移入し、該菌を特定薬剤含有培地で培養
し、生育する菌を、プラスミドが移入された菌として分
離することが行なわれていたのである。
特定薬剤耐性のプラスミドを分離し、これをベクターと
して用いて菌に移入し、該菌を特定薬剤含有培地で培養
し、生育する菌を、プラスミドが移入された菌として分
離することが行なわれていたのである。
不発明煮らは、ベクターとしてより検知の容易なプラス
ミドを求めるために研究を行ったところ、納豆から分離
されたー菌株がすぐれたプラスミドを有していることが
わかったのである。
ミドを求めるために研究を行ったところ、納豆から分離
されたー菌株がすぐれたプラスミドを有していることが
わかったのである。
本発明は、プラスミドpUH1及びプラスミドpUH1
を含有するBacillus aubtilia (n
atto)Aaahikawaに関するものである。
を含有するBacillus aubtilia (n
atto)Aaahikawaに関するものである。
本発明のBacillus 5ubtitle (na
tto)Asahikawa は市販の納豆A++ah
ikawaから新たに分離されたものであって、コロニ
ーはきわめて粘性が強く、納豆の粘質物を多量生産する
ものである。この分1lllL株は11acilluB
subtilis (nattolAsahikawa
と名うけられ、微工研にEFRMP−6620として寄
itされている。
tto)Asahikawa は市販の納豆A++ah
ikawaから新たに分離されたものであって、コロニ
ーはきわめて粘性が強く、納豆の粘質物を多量生産する
ものである。この分1lllL株は11acilluB
subtilis (nattolAsahikawa
と名うけられ、微工研にEFRMP−6620として寄
itされている。
新分離株、Bacillua [IubtNiB(na
tto)Asahikawaは、既知の微生物であるバ
チルスズブチルスIF’01.!+719の類似株であ
ると決定された。新分離株は表1及び2において、標準
株(type culture)であるバチルス ズブ
チルス■FO13719と比較されている。バイオタイ
ツは引用された培地上で生育し、合成培地中では標準株
と同8度に炭素化合物を利用する。表面又は気中生育は
主に栄養的であり、クリームホワイト色−に見える。
tto)Asahikawaは、既知の微生物であるバ
チルスズブチルスIF’01.!+719の類似株であ
ると決定された。新分離株は表1及び2において、標準
株(type culture)であるバチルス ズブ
チルス■FO13719と比較されている。バイオタイ
ツは引用された培地上で生育し、合成培地中では標準株
と同8度に炭素化合物を利用する。表面又は気中生育は
主に栄養的であり、クリームホワイト色−に見える。
新分1iif6株はプラスミドpUHjを含有する。新
分離株の特性はバチルス ズプチルスに近似している。
分離株の特性はバチルス ズプチルスに近似している。
顕微鏡特性:桿状、鞭毛側生、そして内生胞子二〇、7
〜0.9 X 1.2〜1.5 μm。
〜0.9 X 1.2〜1.5 μm。
培養基及び生化学的特性:寒天上のコロニーは不規則、
表面はダル(dull) 、厚くなり不透明になった。
表面はダル(dull) 、厚くなり不透明になった。
そしてコロニーの特色は培地の組成によって変化した。
1%グルコース栄養寒天穿刺培養での表面生育は厚くな
った。
った。
表 2
新分離株の分類学的調査
形態時性
桿状、 0.8−0.9X2.0〜3.2μm、運動
性あり、ダラム陽性。
性あり、ダラム陽性。
内生胞子形成、07〜[J、 9 X 1.2〜1.5
μmメチレンブルー陽生0 培養特性 栄養寒天(培地)でのコロニー:ラフ、不透明。
μmメチレンブルー陽生0 培養特性 栄養寒天(培地)でのコロニー:ラフ、不透明。
ダル、拡散、クリーム色。
栄養寒天スラント(培地):中程度の生育、ラフ、ダル
ー拭敗□−一 栄養ブロス:濁るが、こわれ易い菌膜はない。
ー拭敗□−一 栄養ブロス:濁るが、こわれ易い菌膜はない。
リドマスミルク:徐々に一乏プトン化。
ゼラチン(培地)穿刺(培養);液化する。
ポテト:著しい増殖、拡散。
生理学的th性
硝酸塩還元能:阻生。
生産
インドール:陰性
アセトイン:阻生。
カタラーゼ:阻生。
酸 :糖からは阻生。
色素 :陰性。
レバン :陽性。
資化
クエン酸塩:資化
糖:陽性、しかしグルコースからはガスを発生せず
アンモニウム塩:陽性。
でん粉の加水分解:陽性。
馬尿酸塩の加水分)盾:陰性。
酸素W−1係:好気性。
温度関係:至適温度は67〜40”0.45°Cで充分
生育、5”Cでは生育不良。
生育、5”Cでは生育不良。
ビオチンは抽助的生育因子として必須;新分離株、Ba
cillus 5ubtilia (natto+As
ahiknwaは液面下の好気的栄件下に生育させつる
。この微生物は、炭素源例えば同化できる炭水化物と、
窒素源、例えば、同化できる窒素化合物又は蛋白質材料
を含有する栄養培地中で生育させることができる。好ま
しい炭素源は、グルコース、黒砂糖、蔗糖、グリセロー
ル、IF粉、)・ウモロコシ殿粉、乳糖、デキストリン
、糖蜜等を包含する。
cillus 5ubtilia (natto+As
ahiknwaは液面下の好気的栄件下に生育させつる
。この微生物は、炭素源例えば同化できる炭水化物と、
窒素源、例えば、同化できる窒素化合物又は蛋白質材料
を含有する栄養培地中で生育させることができる。好ま
しい炭素源は、グルコース、黒砂糖、蔗糖、グリセロー
ル、IF粉、)・ウモロコシ殿粉、乳糖、デキストリン
、糖蜜等を包含する。
好まゞしい窒素源は、コーンスチープリカー、酵母、固
型乳を伴った自己消化醸造酵母、大豆粉、綿実粉、コー
ンミール、固型乳、カセインのすい液消化物、魚粉、デ
イスナラーズソリッド、動物はゾトン液、肉と骨の砕片
等を包含する。これらの炭素源と窒素源の組合わせを利
用するのが有利である。痕跡量の金属に1、例えば、亜
鉛、マグネシウム、マンガン、コバルト、鉄等は、培地
の滅菌に先立って培地成分として水道水及び未精製の成
分を使用するため、添加する必要はない。
型乳を伴った自己消化醸造酵母、大豆粉、綿実粉、コー
ンミール、固型乳、カセインのすい液消化物、魚粉、デ
イスナラーズソリッド、動物はゾトン液、肉と骨の砕片
等を包含する。これらの炭素源と窒素源の組合わせを利
用するのが有利である。痕跡量の金属に1、例えば、亜
鉛、マグネシウム、マンガン、コバルト、鉄等は、培地
の滅菌に先立って培地成分として水道水及び未精製の成
分を使用するため、添加する必要はない。
培養は微生物の満足な生育に導く任意の温度、例えば、
約20〜50’Q、そして好ましくは約30ないし37
°Cで振盪培地を培養させることができる。普通にはJ
、A生°育は約3〜4,5時間で得られる。この場合、
用いる微生物は、をンらがしめ12時間程度前培養した
培養、物が好ましい。
約20〜50’Q、そして好ましくは約30ないし37
°Cで振盪培地を培養させることができる。普通にはJ
、A生°育は約3〜4,5時間で得られる。この場合、
用いる微生物は、をンらがしめ12時間程度前培養した
培養、物が好ましい。
得られた培養物は遠心分離によって集菌される。
得られた菌体は、実施例に示す如く、洗滌、溶菌、精製
を行って、プラスミドpUH1を得ることができる。
を行って、プラスミドpUH1を得ることができる。
本発明でfqられたプラスミドplJH1は全く新規な
プラスミドであり、従来報告された例はない。
プラスミドであり、従来報告された例はない。
本発明のプラスミドpUI11は、納豆の粘質物の生託
する1v[報がコードされた遺伝子が組み込まれている
点できわめて特異的である。そして、このプラスミドp
UII 1を制限酵素で9J断し、この切断部位に他の
有効物質を生taする情報がコードされた遺伝子フラグ
メントをリガーゼにより結合させて新たなプラスミドと
して、これを粘性のない宿主に移入し/ことき、納豆菌
の粘質物の生産がはじまり、宿主のコロニーが著しるし
い粘性を持つようになり、コロニーを針先で引くだけで
粘性を知り、その結果、新たなプラスミドが移入された
ことが確認されるのである。このようなプラスミドpU
H1、の特性は遺伝子II′!!作に新たな一つのユニ
ークな技術を提供するもので、きわめてすぐれたもので
ある。
する1v[報がコードされた遺伝子が組み込まれている
点できわめて特異的である。そして、このプラスミドp
UII 1を制限酵素で9J断し、この切断部位に他の
有効物質を生taする情報がコードされた遺伝子フラグ
メントをリガーゼにより結合させて新たなプラスミドと
して、これを粘性のない宿主に移入し/ことき、納豆菌
の粘質物の生産がはじまり、宿主のコロニーが著しるし
い粘性を持つようになり、コロニーを針先で引くだけで
粘性を知り、その結果、新たなプラスミドが移入された
ことが確認されるのである。このようなプラスミドpU
H1、の特性は遺伝子II′!!作に新たな一つのユニ
ークな技術を提供するもので、きわめてすぐれたもので
ある。
プラスミドpUH1は、13acillus gubt
ilts(natto) Asahikawaの一細胞
当り約3コピー得られ、約57キロベースの分子量を有
し、その制限酵素開裂地図は第1図に示される。
ilts(natto) Asahikawaの一細胞
当り約3コピー得られ、約57キロベースの分子量を有
し、その制限酵素開裂地図は第1図に示される。
第1図はptn、t 1の制限酵素開裂地図を示したも
のである。この地図は約57キロベースの分子量を持つ
プラスミドpUII 1 f基にして作成されている。
のである。この地図は約57キロベースの分子量を持つ
プラスミドpUII 1 f基にして作成されている。
地図上の種々の制限位置は[1,0/ 5.7キロベー
スのTriユan制限位置に比例しだキロペースKr5
標として記載されている。制限酵素の略字は次のとおり
である。(111finc[はへモフイラスインフルエ
ンザRc(I(aemophilug 1nfluen
zae Rclからの酵素である。(2)Pvullは
ゾロテラスバルガリス(Proteus vulgar
isJからの酵素である。(ろ)nam)I 1 i7
i バチルス アミロリクエファシーンズH(Baci
llus amyloNquefaciens H+か
らの酵素である。(4)EcoRl はニジエリシャ
コリRY 15 (Escherjchia colt
RYt−31からの酵素である。(5)H1nd■は
ヘモフィラス インフルエンザ Rd (Hacmop
hilus 1nfluenzae Rd)からの酵素
である。
スのTriユan制限位置に比例しだキロペースKr5
標として記載されている。制限酵素の略字は次のとおり
である。(111finc[はへモフイラスインフルエ
ンザRc(I(aemophilug 1nfluen
zae Rclからの酵素である。(2)Pvullは
ゾロテラスバルガリス(Proteus vulgar
isJからの酵素である。(ろ)nam)I 1 i7
i バチルス アミロリクエファシーンズH(Baci
llus amyloNquefaciens H+か
らの酵素である。(4)EcoRl はニジエリシャ
コリRY 15 (Escherjchia colt
RYt−31からの酵素である。(5)H1nd■は
ヘモフィラス インフルエンザ Rd (Hacmop
hilus 1nfluenzae Rd)からの酵素
である。
仄に、プラスミドpUH1の理化学的性質を示す。
(1)納豆の粘質物を生産する情報がコードされた遺伝
子が組み込まれている。
子が組み込まれている。
(2)第1図に示す制限酵素開裂地図を示す。これらの
結果は、過剰量の1ltlJ限酵素の存在下におけるT
IUHl DNAの消化によって得られた。制限位置数
ハ0.7%又は1.4%アガロースゲル中における分割
可能な断片の数から決定された。
結果は、過剰量の1ltlJ限酵素の存在下におけるT
IUHl DNAの消化によって得られた。制限位置数
ハ0.7%又は1.4%アガロースゲル中における分割
可能な断片の数から決定された。
(3)分子量:約5.7キロベース。
(4)細胞当りのコピー数:6゜
(5)浮上密度ρ: 1.575 y−/1rl(6)
異種DNAの組み込みニ プラスミドpUH1は、形質転換によ゛り宿主細菌へ導
入できる組換型プラスミドをつくるのに使用できる。組
換型プラスミドをつくる方法はこの技術分野で周知であ
る。プラスミドpUH1の特定的な位置を、制限酵素、
例えばHine nt Pvu I[等によって開裂さ
せることができる。
異種DNAの組み込みニ プラスミドpUH1は、形質転換によ゛り宿主細菌へ導
入できる組換型プラスミドをつくるのに使用できる。組
換型プラスミドをつくる方法はこの技術分野で周知であ
る。プラスミドpUH1の特定的な位置を、制限酵素、
例えばHine nt Pvu I[等によって開裂さ
せることができる。
環状DNA分子であるプラスミドは、二本のDNA鎖を
特定の位置で切断する酵素により切断されるが、その個
所に異種DNAを組み込むことが可能である。異1.′
iit D N Aの組み込みは、開裂されたプラスミ
ドpUH1と異iQ D N A及び7Fリヌクレオチ
ドリガーゼの存在下でインキュベートすることによって
新たなシラスミドを形成させることができる。
特定の位置で切断する酵素により切断されるが、その個
所に異種DNAを組み込むことが可能である。異1.′
iit D N Aの組み込みは、開裂されたプラスミ
ドpUH1と異iQ D N A及び7Fリヌクレオチ
ドリガーゼの存在下でインキュベートすることによって
新たなシラスミドを形成させることができる。
(力 形質転換の検知:粘質物を生産しない宿主に異f
ffl D N Aが組み込1れたシラスミドpUH1
を移入した場合、発現した菌はコロニーが著じるしい粘
性を示すようになるので検知が容易である。
ffl D N Aが組み込1れたシラスミドpUH1
を移入した場合、発現した菌はコロニーが著じるしい粘
性を示すようになるので検知が容易である。
次に本発明の実施例を示す。
実施例1・・・バチルス・ズプチルス(ナツト−)アサ
ヒカワの微生物学的に純粋な培養基 からのプラスミドpUH1の単離: バチルス・ズプチルス(ナツト−)アサヒカワFERM
P−/)620の微生物学的に純粋な培養基からの胞子
を次のブイヨン培地(肉エキス1%、ポリズブトン1%
、及び0,5%NaCA)の200aへ接種する。
ヒカワの微生物学的に純粋な培養基 からのプラスミドpUH1の単離: バチルス・ズプチルス(ナツト−)アサヒカワFERM
P−/)620の微生物学的に純粋な培養基からの胞子
を次のブイヨン培地(肉エキス1%、ポリズブトン1%
、及び0,5%NaCA)の200aへ接種する。
培地u 511 Q ml振トウフラスコ中で予め滅菌
しておく。接種後、フラスコを67′Cで、往復振トウ
機上で12時間培養する。栄養プロスで12時間生育し
た培養物は新しい培地200H+tに接種され、67°
0で6〜45時間、往復振トウ機上で培養された。細胞
は遠心分離により収穫され、0.02MTris (ハ
イドロキメチル)アミノメタy −IC,# (1)1
18.0 )、0.1 M NaCA及び5mMEDT
Aを含有する冷緩衝/’i (TES buffer
)で洗滌された。
しておく。接種後、フラスコを67′Cで、往復振トウ
機上で12時間培養する。栄養プロスで12時間生育し
た培養物は新しい培地200H+tに接種され、67°
0で6〜45時間、往復振トウ機上で培養された。細胞
は遠心分離により収穫され、0.02MTris (ハ
イドロキメチル)アミノメタy −IC,# (1)1
18.0 )、0.1 M NaCA及び5mMEDT
Aを含有する冷緩衝/’i (TES buffer
)で洗滌された。
細胞は蔗糖25%含有のT[>S緩衝液3閏lに懸濁す
れた。エチレンディアミノテトラアセティクアシド(E
I)TA)(025門、P[1B、O>を[1,5ml
とりゾチーム(25%の蔗糖を含有するTES緩衝液に
5 m97 me )の1.0 mlを添加した。そし
て、混合物を67°Cで30分間インキュベートした。
れた。エチレンディアミノテトラアセティクアシド(E
I)TA)(025門、P[1B、O>を[1,5ml
とりゾチーム(25%の蔗糖を含有するTES緩衝液に
5 m97 me )の1.0 mlを添加した。そし
て、混合物を67°Cで30分間インキュベートした。
プロナーゼE(37°Cで1,5時間前身って消化した
TES緩衝液に5 ’m9 / ml )をQ、 5
ml添加し、そして、更に67°Cで60分間、インキ
ュベートを続けた。溶閃け、ソデイウム ドデシルサル
フエイ)(SDSIを10チバ有するTES緩衝故05
m1の添加によって室温で行われた。NaC,e (0
,5me、5M)が添加され、そして全りJモ合物は4
’Cで一皮置力4−だ。その混合物は48.000
X?で30分間遠心分離され、そして、上澄液が1「明
な溶)膵液として得らノtだ。
TES緩衝液に5 ’m9 / ml )をQ、 5
ml添加し、そして、更に67°Cで60分間、インキ
ュベートを続けた。溶閃け、ソデイウム ドデシルサル
フエイ)(SDSIを10チバ有するTES緩衝故05
m1の添加によって室温で行われた。NaC,e (0
,5me、5M)が添加され、そして全りJモ合物は4
’Cで一皮置力4−だ。その混合物は48.000
X?で30分間遠心分離され、そして、上澄液が1「明
な溶)膵液として得らノtだ。
固型の塩化セシウムを69ノと臭化エチディウム(T
E S fJj伽液に1 rn9/vrl ) 3 m
lが澄明な溶解液の0.5 mlに添加された、そして
、溶液の密度は1、575ノ/ mlに調節さt’tた
。その後、混合物はBeckmnn 50 Ti o−
ターを使って、15°0で40時間、66.000 r
pmで遠心分離された。かくして、共有的に閉場された
環状プラスミドDNAの存在は、遠沈管内において、長
波の紫外線(320nm)照明下に、線状の染色体DN
A及び線状プラスミドDNAの強い螢光帯より下に淡い
螢光帯として目で認めることができる。
E S fJj伽液に1 rn9/vrl ) 3 m
lが澄明な溶解液の0.5 mlに添加された、そして
、溶液の密度は1、575ノ/ mlに調節さt’tた
。その後、混合物はBeckmnn 50 Ti o−
ターを使って、15°0で40時間、66.000 r
pmで遠心分離された。かくして、共有的に閉場された
環状プラスミドDNAの存在は、遠沈管内において、長
波の紫外線(320nm)照明下に、線状の染色体DN
A及び線状プラスミドDNAの強い螢光帯より下に淡い
螢光帯として目で認めることができる。
共有的に閉場された環状プラスミドDNAは、特性化用
にはこれを勾配平衡物からとり出し、1 / 31’i
tのイソプロピルアルコールで2回処理して臭化エチジ
ウムを抽出し、水相を適当な緩衝液、例えば0. I
X S S Cilj液(MaCA 0.015 M、
−ニジ3Q6Hs07・2Hλo O,OO15M、
pH7,41に対して透析することによって本質的に純
粋なpUHlがイ1tられる。
にはこれを勾配平衡物からとり出し、1 / 31’i
tのイソプロピルアルコールで2回処理して臭化エチジ
ウムを抽出し、水相を適当な緩衝液、例えば0. I
X S S Cilj液(MaCA 0.015 M、
−ニジ3Q6Hs07・2Hλo O,OO15M、
pH7,41に対して透析することによって本質的に純
粋なpUHlがイ1tられる。
pUH1の特性化と早離手順;
分子量の+91q、(、として、ファージDNAのII
i n d111フラグメントを使って、0.7%ア
ガローズ ゲル電気泳動によってpUI(1のサイズは
決定された。
i n d111フラグメントを使って、0.7%ア
ガローズ ゲル電気泳動によってpUI(1のサイズは
決定された。
pUr(1の分子lは、ウエルアウアー等(ウエルアウ
アー・ヒ0−・ケイ、リーダー−アール・エイチ、キャ
ロル・シー・ブラウン、ディー・ディー・ダツチ、エイ
Φヒガイナカガワ、エイチ & ダウイツト・アイ・ビ
ー、1974年、キセノプスラエビス〃)らの増幅され
た染色体DNAは不均質な開鎖長さを持つ、Proc、
Natl、 Acad、 Set、 U、 S。
アー・ヒ0−・ケイ、リーダー−アール・エイチ、キャ
ロル・シー・ブラウン、ディー・ディー・ダツチ、エイ
Φヒガイナカガワ、エイチ & ダウイツト・アイ・ビ
ー、1974年、キセノプスラエビス〃)らの増幅され
た染色体DNAは不均質な開鎖長さを持つ、Proc、
Natl、 Acad、 Set、 U、 S。
A、71.2823−’?827)。に従い5.7キロ
ベースであると割算された。
ベースであると割算された。
第1図はプラスミドpUH1の制限酵素開裂地図を示す
図である。 代理人 弁理士 戸 1)親 男
図である。 代理人 弁理士 戸 1)親 男
Claims (2)
- (1)第1図に示される制限酵素開裂地図を有するプラ
スミドpUH1゜ - (2)プラスミドpUH1を含有するバチルス・ズブチ
リス(ナツトr)アザヒカワ(Bacillusgub
tilis(natto) Asahikawa)。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57135129A JPS5925400A (ja) | 1982-08-04 | 1982-08-04 | プラスミドpuh1及びその含有菌株 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP57135129A JPS5925400A (ja) | 1982-08-04 | 1982-08-04 | プラスミドpuh1及びその含有菌株 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5925400A true JPS5925400A (ja) | 1984-02-09 |
Family
ID=15144486
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57135129A Pending JPS5925400A (ja) | 1982-08-04 | 1982-08-04 | プラスミドpuh1及びその含有菌株 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5925400A (ja) |
-
1982
- 1982-08-04 JP JP57135129A patent/JPS5925400A/ja active Pending
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