JPS596899A - 非干渉的トランスアミナ−ゼ測定法 - Google Patents
非干渉的トランスアミナ−ゼ測定法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、トランスアミナーゼ例えばグルメぐン酸オキ
サル酢酸トランスアミナーゼ(GO’I’ )およびグ
ルタミン酸ピルビン酸トランスアミナーゼ(GPT )
に対する、ピリドキサルー5′−リン酸(PLP )で
活性化された測定の分野に関する。
サル酢酸トランスアミナーゼ(GO’I’ )およびグ
ルタミン酸ピルビン酸トランスアミナーゼ(GPT )
に対する、ピリドキサルー5′−リン酸(PLP )で
活性化された測定の分野に関する。
トランスアミン化とはアミノ基が一つの分子から別の分
子へ中間にアンモニアを生成せずに転移することである
。トランスアミン化の触媒となる酵素はアミノ基転移酵
素、またはさらに普通には、トランスアミナーゼと呼ば
れる。現在までに血清中に報告された2種の基質特異性
トランスアミナーゼはグルタ建ン酸オキサル酢酸トラン
スアミナ(5) 一ゼ(GOT )およびグルタミン酸ピルビン酸トラン
スアミナーゼ(GPT )である。前記のトランスアミ
ナーゼは次の反応の触媒作用を行なう;(a) GO
T アスパライン酸+ α−ケトグルタル酸2gしオキサル
酢酸+グルタミン酸 +11((9) GPT アラ二ノ+α−ケトグルタル酸 =♀トy亡ピルビン酸
+グルタミン酸(21 GOTおよびGP’l’の血清測定の最も重要な用途は
心筋梗塞症および肝胆汁性疾患の場合である。
子へ中間にアンモニアを生成せずに転移することである
。トランスアミン化の触媒となる酵素はアミノ基転移酵
素、またはさらに普通には、トランスアミナーゼと呼ば
れる。現在までに血清中に報告された2種の基質特異性
トランスアミナーゼはグルタ建ン酸オキサル酢酸トラン
スアミナ(5) 一ゼ(GOT )およびグルタミン酸ピルビン酸トラン
スアミナーゼ(GPT )である。前記のトランスアミ
ナーゼは次の反応の触媒作用を行なう;(a) GO
T アスパライン酸+ α−ケトグルタル酸2gしオキサル
酢酸+グルタミン酸 +11((9) GPT アラ二ノ+α−ケトグルタル酸 =♀トy亡ピルビン酸
+グルタミン酸(21 GOTおよびGP’l’の血清測定の最も重要な用途は
心筋梗塞症および肝胆汁性疾患の場合である。
GO’I’およびGPT測定のために臨床研究室で通常
使用される方法の中には、340ナノメー) yv (
nm)でモニターされる、動的な、 NADHと共役し
た( NADI(は還元されたニコチンアデニンジヌク
レオチドである)反応がある。これらの共役した反応に
はリンゴ酸脱水素酵素(MDH)および乳酸脱水素酵素
(LDH)がそれぞれ使用され、反応は次の通りである
: (al GOT (6) NADHNAD ()OTに対する方法はLa Dueらによって、5c
ience 、 120 * 497 (1954)
の1人の、□、、ユ□、−−■■H−−−謝り−1−か
□□急性経壁心筋梗塞症における血清オキサル酢酸トラ
ンスアミナーゼ活性Jに紹介された。()PTに対する
方法はHen1eyらによって、 J、 Lab、 C
11n。
使用される方法の中には、340ナノメー) yv (
nm)でモニターされる、動的な、 NADHと共役し
た( NADI(は還元されたニコチンアデニンジヌク
レオチドである)反応がある。これらの共役した反応に
はリンゴ酸脱水素酵素(MDH)および乳酸脱水素酵素
(LDH)がそれぞれ使用され、反応は次の通りである
: (al GOT (6) NADHNAD ()OTに対する方法はLa Dueらによって、5c
ience 、 120 * 497 (1954)
の1人の、□、、ユ□、−−■■H−−−謝り−1−か
□□急性経壁心筋梗塞症における血清オキサル酢酸トラ
ンスアミナーゼ活性Jに紹介された。()PTに対する
方法はHen1eyらによって、 J、 Lab、 C
11n。
Mea、* 4/、 785 (1955)の1°血
漿中のグルタミン酸オキサル酢酸およびグルタンン酸ピ
ルビン酸トランスアミナーゼの新定量法」に記述された
。別の方法として、反応(1)まにハ(2)によるグル
タミン酸をグルタミン酸脱水素酵素の存在においてNA
Dと反応させてNADHを生成させ、これを(7) 測定することができる。植種の改変および改良が加えら
れて、これらは依然として血清トランスアミナーゼ測定
のための好ましい方法となっている。
漿中のグルタミン酸オキサル酢酸およびグルタンン酸ピ
ルビン酸トランスアミナーゼの新定量法」に記述された
。別の方法として、反応(1)まにハ(2)によるグル
タミン酸をグルタミン酸脱水素酵素の存在においてNA
Dと反応させてNADHを生成させ、これを(7) 測定することができる。植種の改変および改良が加えら
れて、これらは依然として血清トランスアミナーゼ測定
のための好ましい方法となっている。
例えば米国特許4,241.179号を参照され度い、
これら画法における反応は植種の技法によって追跡する
ことができる。例えばHenryら編、C!1inic
al Chemlstry Pr1nciples a
nd Technics(臨床化学の原理と技術)、第
2版、Harper &Row Publishers
発行、873−892頁(1974)参照。NAD(H
)は直接に、またはレドックス指示系の転化後に、測定
することができる。
これら画法における反応は植種の技法によって追跡する
ことができる。例えばHenryら編、C!1inic
al Chemlstry Pr1nciples a
nd Technics(臨床化学の原理と技術)、第
2版、Harper &Row Publishers
発行、873−892頁(1974)参照。NAD(H
)は直接に、またはレドックス指示系の転化後に、測定
することができる。
別法として、Dθnakθらの米国特許第4,271.
265号には、前記反応11+または(21のようにし
て生成したα−ケトグルタル酸をγ−アミノ酪酸トラン
スア建ナーゼの存在においてγ−アミノ酪酸と反応させ
コハク酸中アルデヒドを生ずることが開示されている。
265号には、前記反応11+または(21のようにし
て生成したα−ケトグルタル酸をγ−アミノ酪酸トラン
スア建ナーゼの存在においてγ−アミノ酪酸と反応させ
コハク酸中アルデヒドを生ずることが開示されている。
ニコチンアデニンジヌクレオチドリン酸(NADP )
はコハク酸中アルデヒド脱水素酵素の存在においてコハ
ク酸中アルデヒドによって還元されてNADPH(NA
DPHは還元されたニコチンア(8) デニンゾ□ヌクレオチドリン酸である)を生じ、後者は
直接に、またはテトラゾリウム塩および電子キャリアー
例えばジアホラーゼ、フェナントロリンメトスルフアー
トまたはフェナジンメトスルフアートによってホルマザ
ン染料に転化した後測定される。
はコハク酸中アルデヒド脱水素酵素の存在においてコハ
ク酸中アルデヒドによって還元されてNADPH(NA
DPHは還元されたニコチンア(8) デニンゾ□ヌクレオチドリン酸である)を生じ、後者は
直接に、またはテトラゾリウム塩および電子キャリアー
例えばジアホラーゼ、フェナントロリンメトスルフアー
トまたはフェナジンメトスルフアートによってホルマザ
ン染料に転化した後測定される。
すべてのトランスアミナーゼは共通の反応機構を有しま
た同じ補酵素すなわち補欠分子族を有するよ5に思われ
る。この補酵素はピリドキサルー5′−リン酸(PLP
)である: トランスアミノ化においてPLPは転移すべきα−アミ
ノ基に対する伝達体として作用する。PLP−アポ酵素
錯体のアルデヒド基は供与体アミノ酸例えばアスパライ
ン酸またはアラニンからアミノ(9) 基を受取ってシッフ塩基を生ずる。アルデヒド票とアミ
ノ型との間で振動することにより、PLPはアミノ基を
アミノ酸からケト酸へ転移する。血清トランスアミナー
ゼは完全に触媒活性を発揮するためKはPLPを必要と
し、か\るトランスアミナーゼの一部は血清中にアポ酵
素の形で存在する°。
た同じ補酵素すなわち補欠分子族を有するよ5に思われ
る。この補酵素はピリドキサルー5′−リン酸(PLP
)である: トランスアミノ化においてPLPは転移すべきα−アミ
ノ基に対する伝達体として作用する。PLP−アポ酵素
錯体のアルデヒド基は供与体アミノ酸例えばアスパライ
ン酸またはアラニンからアミノ(9) 基を受取ってシッフ塩基を生ずる。アルデヒド票とアミ
ノ型との間で振動することにより、PLPはアミノ基を
アミノ酸からケト酸へ転移する。血清トランスアミナー
ゼは完全に触媒活性を発揮するためKはPLPを必要と
し、か\るトランスアミナーゼの一部は血清中にアポ酵
素の形で存在する°。
か\るトランスアミナーゼの測定用の組成物にPLPを
添加すると、活性化が一層完全となり、従ってより大き
な感度が得られる。このことはHamfeltの、「血
液中のアミノ転移酵素測定に対するぎりドキサルリン酸
の影1’J (5cand、 J。
添加すると、活性化が一層完全となり、従ってより大き
な感度が得られる。このことはHamfeltの、「血
液中のアミノ転移酵素測定に対するぎりドキサルリン酸
の影1’J (5cand、 J。
C11n、 Lab、 Invest、 18 (8u
pp1.99 ) 、 181(1966))に示唆
された。トランスアミナーゼ測定試薬に対するPLPの
添加は、340ナノメートル範囲において「正の偏差4
1すなわち不当に高い示度を生ずることが認められた。
pp1.99 ) 、 181(1966))に示唆
された。トランスアミナーゼ測定試薬に対するPLPの
添加は、340ナノメートル範囲において「正の偏差4
1すなわち不当に高い示度を生ずることが認められた。
高濃度の陰イオンの添加によりこの偏差が無くなること
が示唆されている( 5anaerson J、、
C!lin、 Chem、 27゜1035、 Aba
、054(1981))。
が示唆されている( 5anaerson J、、
C!lin、 Chem、 27゜1035、 Aba
、054(1981))。
流路内透析器を使用する連続流式分析器におい(10)
ては、時に非結合のPLPがタンパク含有試料、例えば
血清試料の定量的測定結果に影響をおよぼすことがある
。PLPは一部、血清タンパク例えばアルブミンによっ
て捕捉されるため、 PLP活性化試薬はか\る分析器
には使用されなかった。その結果、透析膜を通過する非
結合PLPの着は不定であった。
血清試料の定量的測定結果に影響をおよぼすことがある
。PLPは一部、血清タンパク例えばアルブミンによっ
て捕捉されるため、 PLP活性化試薬はか\る分析器
には使用されなかった。その結果、透析膜を通過する非
結合PLPの着は不定であった。
本発明によれば、ある種のアミノ官能化されたポリマー
の存在により、分析すべき液体の吸光度指示値に対する
ピリドキサルー5′−リン酸(PLP)の干渉効果が除
かれることが認められた。アミノ官能化されたポリマー
のアミノ基はタンパクに結合していないPLPに非可逆
的に結合し、それが透析膜を通過するのを防止する。さ
らに、アミン官能化されたポリマーはトランスアミナー
ゼの活性を阻害もせず、またトランスアミナーゼに結合
したPLPを除くこともない。
の存在により、分析すべき液体の吸光度指示値に対する
ピリドキサルー5′−リン酸(PLP)の干渉効果が除
かれることが認められた。アミノ官能化されたポリマー
のアミノ基はタンパクに結合していないPLPに非可逆
的に結合し、それが透析膜を通過するのを防止する。さ
らに、アミン官能化されたポリマーはトランスアミナー
ゼの活性を阻害もせず、またトランスアミナーゼに結合
したPLPを除くこともない。
本発明によれば、トランスアミナーゼに対する基質、そ
のトランスアミナーゼと基質との反応生成物に応答性で
検出可能な応答を与える試薬、ピリドキサルー5′−リ
ン酸、およびアミノ官能化されたポリマーを含有して成
る、液体中のトランスアミナーゼ測定用の組成物が提供
される。好ましい態様においては、反応生成物に応答性
の試薬は、反応生成物がその基質である酵素、およびそ
の酵素に対するレドックスコファクターである。
のトランスアミナーゼと基質との反応生成物に応答性で
検出可能な応答を与える試薬、ピリドキサルー5′−リ
ン酸、およびアミノ官能化されたポリマーを含有して成
る、液体中のトランスアミナーゼ測定用の組成物が提供
される。好ましい態様においては、反応生成物に応答性
の試薬は、反応生成物がその基質である酵素、およびそ
の酵素に対するレドックスコファクターである。
さらに本発明によれば、測定すべき液体を、トランスア
ミナーゼに対する基質、トランスアミナーゼと基質との
反応生成物に対して応答性の試薬、ピリドキサルー5′
−リン酸、およびアミノ官能化されたポリマーを含有し
て成る組成物と接触させ、該液体からアミン官能化され
たポリマーに結合したピリドキサルー5′−リン酸を分
離したのち、該液体中の検出可能は応答を測定すること
から成る、液体中のトランスアミナーゼの測定方法が提
供される。
ミナーゼに対する基質、トランスアミナーゼと基質との
反応生成物に対して応答性の試薬、ピリドキサルー5′
−リン酸、およびアミノ官能化されたポリマーを含有し
て成る組成物と接触させ、該液体からアミン官能化され
たポリマーに結合したピリドキサルー5′−リン酸を分
離したのち、該液体中の検出可能は応答を測定すること
から成る、液体中のトランスアミナーゼの測定方法が提
供される。
以下の説明においては明確化のため特定の用語を使用し
ているが、これは例示のために選んだ特定の態様のみに
ついてのものであり本発明の範囲を制限しようとするも
のではない。
ているが、これは例示のために選んだ特定の態様のみに
ついてのものであり本発明の範囲を制限しようとするも
のではない。
本発明の組成物はトランスアミナーゼの特に血清中での
測定への使用を目的とするものである。
測定への使用を目的とするものである。
前記した通り、臨床的に最も興味のあるトランスアミナ
ーゼはグルメンン酸オキサル酢酸トランスアミナーゼ(
GOT )およびグルタンン酸ピルビン酸トランスアミ
ナーゼ(GPT )である。ピリドキサルー5′−リン
酸で活性化された試薬の使用に伴なう干渉の影響は本発
明によって避けることができる。GOT測定用の組成物
の一例は、アスパライン酸とα−ケトグルタル酸とを含
有して成る基質、前記基質とGOTとの反応生成物に対
し特異性である酵素(この酵素にはりンイ酸脱水素酵素
およびNADが含まれる)、PLPおよびアミノ官能化
されたポリマーを含有して成る試薬である。GP’I’
測定用の同様の測定においては、基質はアラニンおよび
α−ケトグルタル酸を含有して成り、基質と()PTと
の反応生成物に対して特異性の酵素は乳酸脱水素酵素お
よびNADである。リンデ酸脱水票酵素または乳酸脱水
素酵素のそれぞれの代りにグルタミン酸脱水素酵素を使
用することができる。
ーゼはグルメンン酸オキサル酢酸トランスアミナーゼ(
GOT )およびグルタンン酸ピルビン酸トランスアミ
ナーゼ(GPT )である。ピリドキサルー5′−リン
酸で活性化された試薬の使用に伴なう干渉の影響は本発
明によって避けることができる。GOT測定用の組成物
の一例は、アスパライン酸とα−ケトグルタル酸とを含
有して成る基質、前記基質とGOTとの反応生成物に対
し特異性である酵素(この酵素にはりンイ酸脱水素酵素
およびNADが含まれる)、PLPおよびアミノ官能化
されたポリマーを含有して成る試薬である。GP’I’
測定用の同様の測定においては、基質はアラニンおよび
α−ケトグルタル酸を含有して成り、基質と()PTと
の反応生成物に対して特異性の酵素は乳酸脱水素酵素お
よびNADである。リンデ酸脱水票酵素または乳酸脱水
素酵素のそれぞれの代りにグルタミン酸脱水素酵素を使
用することができる。
(13)
その他の酵素経路にも血清トランスアミナーゼ測定に使
用し得るものが知られている。例えばGOT測定用の組
成物は、グルタミン酸およびオキサル酢酸とを含有して
成る基質、γ−アミノ酪酸、γ−アミノ酪酸トランスア
ミナーゼ、コハクe半アルデヒド脱水累酵素およびNA
DPを含有して成る試薬を、PLPおよびアミノ官能化
ポリマーと共に含有することができる。GPT測定用の
対応する組成物は、グルタミン酸およびピルビン酸を含
有して成る基質と、r−アミノ酪酸、r−アミノ酪酸ト
ランスアミナーゼ、コハク酸中アルデヒド脱水素酵素お
よびNADPを含有する試薬とを含有する。
用し得るものが知られている。例えばGOT測定用の組
成物は、グルタミン酸およびオキサル酢酸とを含有して
成る基質、γ−アミノ酪酸、γ−アミノ酪酸トランスア
ミナーゼ、コハクe半アルデヒド脱水累酵素およびNA
DPを含有して成る試薬を、PLPおよびアミノ官能化
ポリマーと共に含有することができる。GPT測定用の
対応する組成物は、グルタミン酸およびピルビン酸を含
有して成る基質と、r−アミノ酪酸、r−アミノ酪酸ト
ランスアミナーゼ、コハク酸中アルデヒド脱水素酵素お
よびNADPを含有する試薬とを含有する。
当該技術において周知の通り、前記の組成物は何れも適
当なレドックス指示薬の導入により視覚的に検出可能と
することができる。このような指示薬の例としては0−
シアニジシン、0−)ルイゾン、3.3’、5.5’−
テトラアルキルベンゾジン、例えFf3 、3’、 5
、5’−テトラメチルベンゾシンおよび共役指示系系
が挙げられる。この兵役(14) 指示薬系は通常ヒドラゾンおよびカゾラー例えばトリメ
チルアニリン、8−アンノー1−ナフトール−5,7−
ジスルホンlItたはクロモ)四−ゾ酸を含有して成る
。
当なレドックス指示薬の導入により視覚的に検出可能と
することができる。このような指示薬の例としては0−
シアニジシン、0−)ルイゾン、3.3’、5.5’−
テトラアルキルベンゾジン、例えFf3 、3’、 5
、5’−テトラメチルベンゾシンおよび共役指示系系
が挙げられる。この兵役(14) 指示薬系は通常ヒドラゾンおよびカゾラー例えばトリメ
チルアニリン、8−アンノー1−ナフトール−5,7−
ジスルホンlItたはクロモ)四−ゾ酸を含有して成る
。
本発明によれば、前記のPLP活性化組成物にはアミン
官能化されたポリマーが加えられている。
官能化されたポリマーが加えられている。
使用に適したアミノ官能化ポリマーの例としては次式で
表わされるものがある: (本式においてR1は水素原子、アルキル基壇たはアリ
ール基であり、RgおよびR3は互いIIc独立して水
素原子、ヒドロキシル基、アルキル基またはアリール基
であ郵、nはポリマーの繰返し単位の数である)。R1
,RQおよびR5かそれぞれ水素原子であるポリマーが
好ましい。別の例においては、R1はメチル基、エチル
基またはベンジル基であり、R2およびR3は水素原子
である。さらに他の例では、′R1およびR3は共にエ
チル基でありR1は水素原子である。別の有用なポリマ
ーはR2またはR3の一つがヒドロキシル基であり、R
□およびR2とR3とのうちの他の一つが水素原子であ
るものである。さらに別の例においてはR2およびR8
はそれぞれメチル基である。前記の式の範囲に属するそ
の他の例も本発明の範囲内にあるものとして考慮される
。同様にnが少くとも約100であるものが好ましい。
表わされるものがある: (本式においてR1は水素原子、アルキル基壇たはアリ
ール基であり、RgおよびR3は互いIIc独立して水
素原子、ヒドロキシル基、アルキル基またはアリール基
であ郵、nはポリマーの繰返し単位の数である)。R1
,RQおよびR5かそれぞれ水素原子であるポリマーが
好ましい。別の例においては、R1はメチル基、エチル
基またはベンジル基であり、R2およびR3は水素原子
である。さらに他の例では、′R1およびR3は共にエ
チル基でありR1は水素原子である。別の有用なポリマ
ーはR2またはR3の一つがヒドロキシル基であり、R
□およびR2とR3とのうちの他の一つが水素原子であ
るものである。さらに別の例においてはR2およびR8
はそれぞれメチル基である。前記の式の範囲に属するそ
の他の例も本発明の範囲内にあるものとして考慮される
。同様にnが少くとも約100であるものが好ましい。
nが約1,000,000以上もの高い値の高分子も考
えられる。特に好ましいのはポリビニルアミンである。
えられる。特に好ましいのはポリビニルアミンである。
本組成物が溶液状で使用されるときは、アミノ官能化ポ
リマーは約10ミクロモルないし約40ミクロモルの濃
度で存在することが好ましい。ピリドキサルー5′−リ
ン酸の濃度は約0.05ないし約0.2ミリモルである
。トランスアミナーゼ基質、トランスアミナーゼとその
基質との間の反応に応答性の試薬、およびその他の試薬
ならびに成分は従来の技術による分析において適当であ
るとされている濃度で存在する。
リマーは約10ミクロモルないし約40ミクロモルの濃
度で存在することが好ましい。ピリドキサルー5′−リ
ン酸の濃度は約0.05ないし約0.2ミリモルである
。トランスアミナーゼ基質、トランスアミナーゼとその
基質との間の反応に応答性の試薬、およびその他の試薬
ならびに成分は従来の技術による分析において適当であ
るとされている濃度で存在する。
Vリドキサルー51−リン酸はベーリンrル V/ハイ
ム ケミカルx (Boehringer Mannb
ei、mOhemicala 、工ndianapol
ia 、IN)から入手した。
ム ケミカルx (Boehringer Mannb
ei、mOhemicala 、工ndianapol
ia 、IN)から入手した。
リン♂酸脱水素m単/ NADHおよびGOT / r
yr希[11ハテクエブン インスツルメント社(Te
ohnioon Instruments 0orpo
ration。
yr希[11ハテクエブン インスツルメント社(Te
ohnioon Instruments 0orpo
ration。
Tarrytown、 NY )から入手した。ペヅス
ペルス(Pegoapersi@)tf一連の脂肪酸1
1eIJり9リコールエステルの商標で、グリ−ケミカ
ルス社(G’lyc。
ペルス(Pegoapersi@)tf一連の脂肪酸1
1eIJり9リコールエステルの商標で、グリ−ケミカ
ルス社(G’lyc。
○MmiOIL111 、■no、、 Greenwi
oh、 OT )から入手した。
oh、 OT )から入手した。
実施例において使用した酵素調製物の活性は乾燥重量ミ
リグラム尚りの活性単位数によって測定する。生化学国
際連4F#素委員会(The uomu+1asion
on Enzymes of The Interna
tional tlnion ofBiOOh6mt8
tr7 )は酵lAm性の国際単位(工U)を、−およ
び温度管理の特定の両件下にお%−1て1分間に利用さ
れた基質1ミクpモル(μmol )と定義している。
リグラム尚りの活性単位数によって測定する。生化学国
際連4F#素委員会(The uomu+1asion
on Enzymes of The Interna
tional tlnion ofBiOOh6mt8
tr7 )は酵lAm性の国際単位(工U)を、−およ
び温度管理の特定の両件下にお%−1て1分間に利用さ
れた基質1ミクpモル(μmol )と定義している。
例 1
(17)
本例に報告する実験においては、本発明によるポリビニ
ルアミンを含有するGOT測定測定用粗系組成物ポリビ
ニルアミンを含まぬこと以外はこれと同一の試薬組成物
および一般に認められた標準的方法と比較した。
ルアミンを含有するGOT測定測定用粗系組成物ポリビ
ニルアミンを含まぬこと以外はこれと同一の試薬組成物
および一般に認められた標準的方法と比較した。
本発明によるA法には次の処方の試薬組成物を使用した
: 試薬1(i留水1リットル幽り): 成分 量 必要に応じて水酸化ナトリウム(MaOH)により$7
.8とする。
: 試薬1(i留水1リットル幽り): 成分 量 必要に応じて水酸化ナトリウム(MaOH)により$7
.8とする。
トリス 2.99 gα−
ケトグルタル酸二ナトリウム塩 4.2g(18
) 必要に応じて塩酸(HOI)により−8,7とする。
ケトグルタル酸二ナトリウム塩 4.2g(18
) 必要に応じて塩酸(HOI)により−8,7とする。
豚(D IJ ン1lll脱水素酵X (MDH)
1.467 xyNADH、ニナトリウム塩
0.16611牛血清7にシンy (BAA)
0.499トリス i6.o
II必要に応じてHOlでpH8,0とする。 ・
比較のため、g楽Hにポリビニルア賓ンが含まれない以
外は同一の試#4tこ\でB法と呼ぶ分析法に使用した
。さらに、こ\で0法と呼ぶ、例えば01inioal
Oh8miat1”7+ 23+ 887−899(
1977)および24,720−721に推奨されてい
る標準的方法と37℃で比較した。
1.467 xyNADH、ニナトリウム塩
0.16611牛血清7にシンy (BAA)
0.499トリス i6.o
II必要に応じてHOlでpH8,0とする。 ・
比較のため、g楽Hにポリビニルア賓ンが含まれない以
外は同一の試#4tこ\でB法と呼ぶ分析法に使用した
。さらに、こ\で0法と呼ぶ、例えば01inioal
Oh8miat1”7+ 23+ 887−899(
1977)および24,720−721に推奨されてい
る標準的方法と37℃で比較した。
A法およびB法は第1図に示す型の連続流型分析器を使
用して行なった。図に示す通り、空気、逐次試料(試料
内の空気セグメントによって分離されている)および試
薬Iを制動ポンゾ12のポンプ管8a*8bおよび8c
をそれぞれ通じて分析器に導入する。ポンプ管8as8
bおよび8Cの出口は導管10に連結されており、試料
内空気泡によって区分された述次試料なこ−で試薬■と
反応させる。各逐次試料は全く同様に処理されるので、
単一の試料について処理の説明を行なう。
用して行なった。図に示す通り、空気、逐次試料(試料
内の空気セグメントによって分離されている)および試
薬Iを制動ポンゾ12のポンプ管8a*8bおよび8c
をそれぞれ通じて分析器に導入する。ポンプ管8as8
bおよび8Cの出口は導管10に連結されており、試料
内空気泡によって区分された述次試料なこ−で試薬■と
反応させる。各逐次試料は全く同様に処理されるので、
単一の試料について処理の説明を行なう。
反応した試料は導管10から定温器14′f?I:通過
し、こ\で37℃で約2.6分間定温処理する。定温器
14の出口は第二の定温器16の入口に連結されている
。またポンプ管8dの出口も定温器16の入口に連結さ
れ試薬■を導入する。試薬■と反応した試料は定温器1
6を通り37℃で6.0分間定温処理される。十分に反
応した試料は定温器16から透析器18の供与室18a
に入る。透析器18には受容室181)があり、これは
アミノ官能化ポリマーに結合したPLPが室18bに通
過してゆ(すな防止するため、低分子量化合物に対して
選択的に透過性の膜20によって室18aと分離されて
いる。試薬■をポンプ管8eを通じて導入し、ポンプ管
8fを通じて連続的に導入される空気流と合流させる。
し、こ\で37℃で約2.6分間定温処理する。定温器
14の出口は第二の定温器16の入口に連結されている
。またポンプ管8dの出口も定温器16の入口に連結さ
れ試薬■を導入する。試薬■と反応した試料は定温器1
6を通り37℃で6.0分間定温処理される。十分に反
応した試料は定温器16から透析器18の供与室18a
に入る。透析器18には受容室181)があり、これは
アミノ官能化ポリマーに結合したPLPが室18bに通
過してゆ(すな防止するため、低分子量化合物に対して
選択的に透過性の膜20によって室18aと分離されて
いる。試薬■をポンプ管8eを通じて導入し、ポンプ管
8fを通じて連続的に導入される空気流と合流させる。
ポンプ管8θと8fの出口は導管11に連結されている
。従って空気で区分された試薬■の流は、分析すべき透
析物を受入れるため、受容流として導管11から室18
bを通過する。室1B&から出た流は図示する通り排水
に流す。室18bから出た流は分光光度計22に通し、
こ\で340ナノメートルにおいて吸光度を測定する。
。従って空気で区分された試薬■の流は、分析すべき透
析物を受入れるため、受容流として導管11から室18
bを通過する。室1B&から出た流は図示する通り排水
に流す。室18bから出た流は分光光度計22に通し、
こ\で340ナノメートルにおいて吸光度を測定する。
反応後の試料流を分光光度計22に通す前に、試料間の
空気泡および室18bから出た。
空気泡および室18bから出た。
連続流中の試料内空気泡の一部は常法で脱泡器21によ
り脱泡する。
り脱泡する。
C法は0barlin 、 OHの()ilfordか
ら入手したヤルフオード(G11ford ) 260
分析器によって実施した。
ら入手したヤルフオード(G11ford ) 260
分析器によって実施した。
無作意的に選んだ20個の一連のヒト血清試料を前記3
種の方法で分析し、結果をGOで活性として国際単位/
リットル(IU/L)で表示して第1表に示した。
種の方法で分析し、結果をGOで活性として国際単位/
リットル(IU/L)で表示して第1表に示した。
(21)
第 1 表
1 57 48 3り
2 28 40 35
3 26 40 28
4 43 56 45
5 33 45 33
6 26 37 26
7 23 35 26
8 23 35 25
9 50 60 47
10 41 51 40
11 91 104 89
12 79 89 67
13 137 151 146
14 96 105 100
15 101 115 98
1t5 37 45 55
17 93 101 110
18 91 99 108
19 71 81 69
20 184 185 201
(22)
これらのデータから認められる通り、本発明によるA法
はC法との一致がB法よりも良好である。
はC法との一致がB法よりも良好である。
例 2
本実施例の実験においては、所定量のピリドキサルー5
′−リン酸による干渉を除(のに必要なポリビニルアミ
ン(PVA )の量を決定するために、植種の址のPV
Aについて試験した。
′−リン酸による干渉を除(のに必要なポリビニルアミ
ン(PVA )の量を決定するために、植種の址のPV
Aについて試験した。
この定量的試験においては以下の処方の本発明組成物を
比較しにニ トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(トリス)
9,59トリス
HC!1 5.511
f IJ トat’tk−5’ −17ンp (PLP
) 62 IQL−アスパラザン酸、ナト
リウム塩 54.5 g必要に応じNaOHま
たはHOIによりpi−18,0とする。
比較しにニ トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタン(トリス)
9,59トリス
HC!1 5.511
f IJ トat’tk−5’ −17ンp (PLP
) 62 IQL−アスパラザン酸、ナト
リウム塩 54.5 g必要に応じNaOHま
たはHOIによりpi−18,0とする。
(26)
成分 量
α−ケトグルタル酸、ニナトリウム塩 14.5
、!i+トリス 8
.0g必要に応じHCIによりpH8,7とする。
、!i+トリス 8
.0g必要に応じHCIによりpH8,7とする。
PVA(10俤
w/v R20) 0 .05m1 、lQQコ、2
50rIL1.圓ml 、7’fJml 1.Q()x
/ ’j、;”m1H202,5m12.45M2.4
0m12.25rn12.0m11.75rn11.釦
m11.25m1前記各溶液を、R4と名づけた試料調
製物からとった、混注ヒト血清10−とベデスペルス(
登録商標)1.5mJとを含有するヒト血清のアリコー
トの試験に使用した。
50rIL1.圓ml 、7’fJml 1.Q()x
/ ’j、;”m1H202,5m12.45M2.4
0m12.25rn12.0m11.75rn11.釦
m11.25m1前記各溶液を、R4と名づけた試料調
製物からとった、混注ヒト血清10−とベデスペルス(
登録商標)1.5mJとを含有するヒト血清のアリコー
トの試験に使用した。
測定は前記各溶液の下記容積な67℃で4分間定温処理
して行なった。
して行なった。
各溶液の吸光度をギルフォード260分光光度計により
410ナノメートルで測定し、ポリビニルアミンによる
ピリドキサルー5′−リン酸の非可逆的結合量を定量し
た。
410ナノメートルで測定し、ポリビニルアミンによる
ピリドキサルー5′−リン酸の非可逆的結合量を定量し
た。
得られた結果ya−第2図に図示した。図から少くとも
1俤(w/v )のPvAを含む溶液、例えばR,処方
F、()およびHY使用した溶液においては、PLPの
吸収による410ナノメートルの吸収はすべて無くなっ
ていることか認められる。、なお認められる少量の残存
吸収は被検液中の存在するα−ケトグルタル酸によるも
のである。
1俤(w/v )のPvAを含む溶液、例えばR,処方
F、()およびHY使用した溶液においては、PLPの
吸収による410ナノメートルの吸収はすべて無くなっ
ていることか認められる。、なお認められる少量の残存
吸収は被検液中の存在するα−ケトグルタル酸によるも
のである。
本発明は特定の例について説明したが、本発明の範囲を
逸脱することな(細部に無数の変更を加えることができ
る。
逸脱することな(細部に無数の変更を加えることができ
る。
第1図は実施例1に述べた実験に使用する連続流屋分析
器の工程を模式的に示す系統図である。 第2図は実施例2によって得たデータを線図的に示す説
明図である。 (25) 代理人 中島宣彦
器の工程を模式的に示す系統図である。 第2図は実施例2によって得たデータを線図的に示す説
明図である。 (25) 代理人 中島宣彦
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 fi+ 測定すべき液体ヲ、トランスアミナーゼに対
する基質、トランスアミナーぜと基質との反応生成物に
対して応答性の試薬、ピリドキサルー5′−リン酸およ
びアミノ官能化され定ポリマーを含有して成る組成物と
接触させ、該液体からアミノ官能化されたポリマーに結
合したビIJ I’キサルー5′+ IJン酸酸分分離
たのち、該液体中の検出可能な応答を測定することから
成る、液体中のトランスアミナーゼの測定方法。 (2)(a)トランスアミナーゼに対する基質、(b)
該トランスアミナーゼと該基質との反応生成物に応
答性で、検出可能な応答χ与える試薬、(C1ピリドキ
サルー57−リン酸、および(d) アミノ官能化さ
れにポリマー(1) を含有して成るトランスアミナーゼ測定用組成物。 13+ (b)の試薬が、反応生成物がその基質であ
る酵素およびその酵素に対するレドックスコファクター
を含有して成る、前項(2)に記載の組成物。 (4)トランスアミナーゼがグルタミン酸オキサル酢酸
トランスアミナーゼであり、基質がアスパライン酸およ
びα−ケトグルタル酸を含有して成り、反応生成物に対
して特異的である酵素がリンデ酸脱水素酵素を含有して
成り、レドックス補酵素がニコチンアデニンジヌクレオ
チドである、前項(出に記載の組成物。 (5) トランスアミナーゼがグルタミン酸ピルビン酸
トランスアミナーゼであり、基質がアラニンおよびα−
ケトグルタル酸を含有して成り、反応生成物に対して特
異的である酵素が乳酸脱水素酵素を含有して成り、レド
ックス補酵素がニコチンアデニンジヌクレオチPである
、前項(31に記載の組成物。 (6)反応生成物に対して特異的である酵素がグルタミ
ン酸脱水素酵素を含有して成る、前項(31に記(2) 載の組成物。 (7)トランスアミナーゼがグルタミン酸オキサル酢酸
トランスアイナーゼであり、基質がグルタミン酸および
オキサル酢酸を含有して成り、反応生成物に対して応答
性の試薬がγ−アミノ酪酸、r−アミノ酪酸トランスア
ミナーゼ、コハク酸中アルデヒド脱水素酵′Igおよび
ニコチンアデニンジヌクレオチドリン酸を含有して成る
。前項(21に記載の組成物。 islト:>yスアミナーゼがグルタミン酸ピルビン酸
トランスアミナーゼであり、基質がグルタミン酸および
ピルビン酸を含有して成り、反応生成物に対して応答性
の試薬がγ−アミノ酪酸、γ−アミノ酪酸トランスアミ
ナーゼ、コハク酸中アルデヒド脱水素酵素およびニコチ
ンアデニンジヌクレオチドリン酸を含有して成る、前項
(21に記載の組成物。 (9) さらにレドックス指示薬を含有して成る、前
項12+ −(81のいずれかに記載の組成物。 al アミノ官能化されたポリマーが式(6) (本式においてRoは水素原子、アルキル基またはアリ
ール基であり、R2およびR3は互いに独立して水素原
子、ヒドロキシル基、アルキル基またはアリール基であ
り、noはポリ′マーの繰返し単位の数である) で表わされる、前項12+ −181のいずれかに記載
の組成物。 (lit R工、R8およびR5がそれぞれ水素原子
である前項(IIに記載の組成物。 (J’ZJ Rよ、R2およびR3がそれぞれ水素原
子であり、nが少くとも約100である前項+11に記
載の組成物。 (131R1がメチル基、エチル基またはベンジル基で
あり、R2とR3とが水素原子である前項(IIに記載
の組成物。 (4) Q4) R1とR3とが共にエチル基であり、R14
が水素原子である前項四に記載の組成物。 01R2とR3とのうちの一つがヒドロキシル基であり
、R1およびR2とR5との残りの一つが水素原子であ
る前項G(Iに記載の組成物OQI R工が水素原子
であり、R11とR3とが共にメチル基である前項(I
IK記載の組成物。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US392038 | 1982-06-25 | ||
| US06/392,038 US4575488A (en) | 1982-06-25 | 1982-06-25 | Interference free transaminase assay |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS596899A true JPS596899A (ja) | 1984-01-13 |
Family
ID=23548999
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58112964A Pending JPS596899A (ja) | 1982-06-25 | 1983-06-24 | 非干渉的トランスアミナ−ゼ測定法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4575488A (ja) |
| EP (1) | EP0098049B1 (ja) |
| JP (1) | JPS596899A (ja) |
| CA (1) | CA1189430A (ja) |
| DE (1) | DE3364928D1 (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB8900924D0 (en) * | 1989-01-17 | 1989-03-08 | Amco Chemie Handel | Compositions for use in enzyme deficiencies |
| US5705045A (en) * | 1995-08-29 | 1998-01-06 | Lg Electronics Inc. | Multi-biosensor for GPT and got activity |
| US6565738B1 (en) | 1999-01-28 | 2003-05-20 | Abbott Laboratories | Diagnostic test for the measurement of analyte in abiological fluid |
| JP3674450B2 (ja) * | 2000-03-21 | 2005-07-20 | 日東紡績株式会社 | Gpt測定用試薬 |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5142351U (ja) * | 1974-09-25 | 1976-03-29 |
Family Cites Families (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB1143835A (ja) * | 1965-05-11 | 1900-01-01 | ||
| US4372874A (en) * | 1976-09-13 | 1983-02-08 | Modrovich Ivan Endre | Stabilization of hydrolysis prone labile organic reagents in liquid media |
| DE2834706A1 (de) * | 1978-08-08 | 1980-02-14 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagens zur bestimmung von glutamat-oxalacetat-transaminase und glutamat-pyruvat-transaminase |
| US4241179A (en) * | 1978-08-14 | 1980-12-23 | Coulter Electronics, Inc. | Method for determining a transaminase in a biological fluid and reagent combination for use in the method |
| US4235962A (en) * | 1978-08-21 | 1980-11-25 | The Dow Chemical Company | Combination kit for transaminase assay of a body fluid |
| CA1187388A (en) * | 1978-09-20 | 1985-05-21 | American Monitor Corporation | Stabilization of working reagent solutions containing nadh, nadph, and/or enzymes, and the use of such stabilized reagents in enzymes or substrate assays |
| JPS568691A (en) * | 1979-07-03 | 1981-01-29 | Denki Kagaku Kogyo Kk | Method and apparatus for continuous production of l-alanine |
| GB2057684B (en) * | 1980-07-17 | 1983-04-07 | Biodata Spa | Method and kit for determination of transaminases |
| US4450232A (en) * | 1982-02-04 | 1984-05-22 | Eastman Kodak Company | Incorporation of pyridoxal phosphate in dry analytical elements for the determination of enzymes |
-
1982
- 1982-06-25 US US06/392,038 patent/US4575488A/en not_active Expired - Fee Related
-
1983
- 1983-05-02 CA CA000427169A patent/CA1189430A/en not_active Expired
- 1983-05-31 EP EP83303108A patent/EP0098049B1/en not_active Expired
- 1983-05-31 DE DE8383303108T patent/DE3364928D1/de not_active Expired
- 1983-06-24 JP JP58112964A patent/JPS596899A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5142351U (ja) * | 1974-09-25 | 1976-03-29 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0098049A2 (en) | 1984-01-11 |
| EP0098049A3 (en) | 1984-03-21 |
| US4575488A (en) | 1986-03-11 |
| EP0098049B1 (en) | 1986-07-30 |
| DE3364928D1 (en) | 1986-09-04 |
| CA1189430A (en) | 1985-06-25 |
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