JPS5982097A - 固定化酵素法による6−アミノペニシラン酸の改良製造法 - Google Patents
固定化酵素法による6−アミノペニシラン酸の改良製造法Info
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
定化酵素法による6−アミノベニクラン酸(6−APA
)の製造法に関する。
)の製造法に関する。
従来、PcGから6 − APA 全製造する方法とし
ては、化学的脱アシル化法ならびに酪素的脱アシル化法
が種々報告さ几ている。化学的脱アシル化法としては、
脱水乾燥し’iPeGルペニシリン全エステル基により
保護し、絖いてイミノクロライド化、さらにイミノエー
テル化した後、加水分解する方法が用いら几ているが、
その工程の煩雑さのみならず、6−APAが医薬品製造
のための中間体であることから、不純物の混入の点で問
題があった。
ては、化学的脱アシル化法ならびに酪素的脱アシル化法
が種々報告さ几ている。化学的脱アシル化法としては、
脱水乾燥し’iPeGルペニシリン全エステル基により
保護し、絖いてイミノクロライド化、さらにイミノエー
テル化した後、加水分解する方法が用いら几ているが、
その工程の煩雑さのみならず、6−APAが医薬品製造
のための中間体であることから、不純物の混入の点で問
題があった。
一方、酵素的脱アシル化法においては、最近ペニシリン
アシラーゼを固定化した固定化ペニシリンアシラーゼを
用いる方法が、ペニシリンアシラーゼの連続使用ならび
に酵素反応の連続化が可能となり、製造コストの面で工
業化が可能となったが、固定化ペニシリンアシラーゼの
酵素活性の失活の防止、それに併なう連続使用回数の向
上による製造コストの低減が計ら几でいる。
アシラーゼを固定化した固定化ペニシリンアシラーゼを
用いる方法が、ペニシリンアシラーゼの連続使用ならび
に酵素反応の連続化が可能となり、製造コストの面で工
業化が可能となったが、固定化ペニシリンアシラーゼの
酵素活性の失活の防止、それに併なう連続使用回数の向
上による製造コストの低減が計ら几でいる。
ところで、6−APA製造コストの低減の成否のもう一
つの大きな要素であるPcGは、通常PcG醗酵プロス
からナトリウム塩またはカリウム塩とL7て単離、精製
さfした市販の工業用原料バルクの形で使用さnて来た
oしかしながら、該醗酵プロスからPaGを抽出および
転溶金繰り返し、塩形成しで単離、精製、乾燥する工程
はPcGの製造コストの面で相当大きい要素となってお
り、酵素的脱アシル化法においては、上記の工業用原料
バルクに再度水溶液に溶液化して使用j rLることか
ら、F。
つの大きな要素であるPcGは、通常PcG醗酵プロス
からナトリウム塩またはカリウム塩とL7て単離、精製
さfした市販の工業用原料バルクの形で使用さnて来た
oしかしながら、該醗酵プロスからPaGを抽出および
転溶金繰り返し、塩形成しで単離、精製、乾燥する工程
はPcGの製造コストの面で相当大きい要素となってお
り、酵素的脱アシル化法においては、上記の工業用原料
バルクに再度水溶液に溶液化して使用j rLることか
ら、F。
Giaeobbeらは該醗酵プロスを有機溶媒で抽出し
た抽出液を水性媒体に転溶した粗PcG水溶’1ffl
k用い、膠醗酵ブロスからPaGを裸地するのに塩形成
、単離、精製、乾燥する工程を省略することにより製造
コストの低減を計ること全目的として、固定化酵素法に
よる6 −APAの製造が試みら几た( Br+z声e
Enginnarlng、Vol、 4 、245〜2
52 、 Planllum Press。
た抽出液を水性媒体に転溶した粗PcG水溶’1ffl
k用い、膠醗酵ブロスからPaGを裸地するのに塩形成
、単離、精製、乾燥する工程を省略することにより製造
コストの低減を計ること全目的として、固定化酵素法に
よる6 −APAの製造が試みら几た( Br+z声e
Enginnarlng、Vol、 4 、245〜2
52 、 Planllum Press。
1978 ) 。
このGiaeobbe法では、6− APAの製造コス
トが従来の市販の工業用バルク音用いる方法より低減ζ
′n−たが、醗酵プロスから得たPcGの水性抽出液と
実質的に純粋なPeG f交互に使用しており、醗酵プ
ロスから得た水性抽出液のみヲ使用した方法ではない。
トが従来の市販の工業用バルク音用いる方法より低減ζ
′n−たが、醗酵プロスから得たPcGの水性抽出液と
実質的に純粋なPeG f交互に使用しており、醗酵プ
ロスから得た水性抽出液のみヲ使用した方法ではない。
しかも使用[7た固定化ペニシリンアシラーゼの酵素活
性が、従来の固定化酵素法による6 −APAの製造法
より烙らに低下するために、固定化酵素の連続使用回数
が低減するという欠点があり、現在のところ醗酵プロス
から得たPeGの水性抽出液のみを用いて工業的に固定
化酵素法により、6 APAを製造することは不可能
である。
性が、従来の固定化酵素法による6 −APAの製造法
より烙らに低下するために、固定化酵素の連続使用回数
が低減するという欠点があり、現在のところ醗酵プロス
から得たPeGの水性抽出液のみを用いて工業的に固定
化酵素法により、6 APAを製造することは不可能
である。
そこで、本発明者らは、上記の欠点全解決すべく種々研
究を続けた結果、PcG旅酵ブロスを有機 3− 溶媒で抽出した抽出液を酸性水溶液に転溶した粗PeG
水溶液を分子量5000以上の限外濾過処理し、得ら;
n、7(処理液に固定化ペニシリンアンラーゼを作用さ
せて6−APA’ifi造すると、ペニシリンアクラー
ゼ活性が低下することなく、長期間連続使用が可能とな
り、6−APAの製造コストの低減に大きく寄与するこ
と金知った。
究を続けた結果、PcG旅酵ブロスを有機 3− 溶媒で抽出した抽出液を酸性水溶液に転溶した粗PeG
水溶液を分子量5000以上の限外濾過処理し、得ら;
n、7(処理液に固定化ペニシリンアンラーゼを作用さ
せて6−APA’ifi造すると、ペニシリンアクラー
ゼ活性が低下することなく、長期間連続使用が可能とな
り、6−APAの製造コストの低減に大きく寄与するこ
と金知った。
さらに、本発明者らは、PCGのナトリウム塩またはカ
リウム塩の市販工業用原料バルクがメーカーによりその
品質に著しい差異があり、純度の低いバルクの中にはベ
ニクリンアクラーゼ活性ヲ失活させる因子が存在するこ
とを知り、該バルクを使用して固定化酵素法に↓る6
−APAの製造を行うと、固定化ペニシリンアンラーゼ
の活性が低下することにより、著しく連続使用回数が低
下し、6− APAの製造コストが増悪することを知っ
た。
リウム塩の市販工業用原料バルクがメーカーによりその
品質に著しい差異があり、純度の低いバルクの中にはベ
ニクリンアクラーゼ活性ヲ失活させる因子が存在するこ
とを知り、該バルクを使用して固定化酵素法に↓る6
−APAの製造を行うと、固定化ペニシリンアンラーゼ
の活性が低下することにより、著しく連続使用回数が低
下し、6− APAの製造コストが増悪することを知っ
た。
ところが、該バルクを水溶液としfc後テ、前記と同様
に限外濾過処理した後、酵素反応を行わせると、ペニシ
リンアシラーゼ活性を低下させることなく、長期間連続
使用が可能となり、6−APAの 4− 製造コストの低減に大きく寄与することを知った。
に限外濾過処理した後、酵素反応を行わせると、ペニシ
リンアシラーゼ活性を低下させることなく、長期間連続
使用が可能となり、6−APAの 4− 製造コストの低減に大きく寄与することを知った。
本発明は、これら上記の知見に基いて完成されたもので
あり、PcGに水性媒体中固定化ペニシリンアシラーゼ
を作用させて酵素的に6− APAを製造する方法にお
いて、粗製PcGまたにその水溶性塩の水性溶液を分子
量5000以上の限外濾過処理を行い、得られた処理液
に固定化ベニ7リンアシラーゼを作用させることを特徴
とする6 −APAの製造法であって、この発明の第一
の目的とするところは1.PcG ’17 PcG醗酵
プロスから単離することなく水性抽出液の状態で固定化
酵素法による6−APAの製造に使用し、しかもペニシ
リンアシラーゼ活性を低下させず、長期間連続使用可能
とし、そ1.によって6− APAの製造コス)k低減
できる製造法全提供することにあり、第二の目的とする
ところは、市販の工業用PeGバルク全用いて固定化酵
素法による6 −APAの製造において、該バルク中の
ペニシリンアクラーゼ活性を失活させる因子を除くこと
により、ペニシリンアクラーゼ活性を低下させず、長期
間連続使用可能とし、そnによって6− APAの製造
コストを低減できる製造法を提供することにある。
あり、PcGに水性媒体中固定化ペニシリンアシラーゼ
を作用させて酵素的に6− APAを製造する方法にお
いて、粗製PcGまたにその水溶性塩の水性溶液を分子
量5000以上の限外濾過処理を行い、得られた処理液
に固定化ベニ7リンアシラーゼを作用させることを特徴
とする6 −APAの製造法であって、この発明の第一
の目的とするところは1.PcG ’17 PcG醗酵
プロスから単離することなく水性抽出液の状態で固定化
酵素法による6−APAの製造に使用し、しかもペニシ
リンアシラーゼ活性を低下させず、長期間連続使用可能
とし、そ1.によって6− APAの製造コス)k低減
できる製造法全提供することにあり、第二の目的とする
ところは、市販の工業用PeGバルク全用いて固定化酵
素法による6 −APAの製造において、該バルク中の
ペニシリンアクラーゼ活性を失活させる因子を除くこと
により、ペニシリンアクラーゼ活性を低下させず、長期
間連続使用可能とし、そnによって6− APAの製造
コストを低減できる製造法を提供することにある。
水性有機溶媒、例えば酢酸エチル、酢酸ブチル、メチル
インブチルケトン、ブタノールなどで抽出し、得らn2
抽出液からPcGを水性媒体に転溶した水溶液の状態で
用いらfる。該水溶液は、後に固定化ペニシリンアシラ
ーゼを作用させるのであるから、予め該ペニシリンアク
ラーゼの至適姐に調節さn、るべきである。
インブチルケトン、ブタノールなどで抽出し、得らn2
抽出液からPcGを水性媒体に転溶した水溶液の状態で
用いらfる。該水溶液は、後に固定化ペニシリンアシラ
ーゼを作用させるのであるから、予め該ペニシリンアク
ラーゼの至適姐に調節さn、るべきである。
また、本発明において使用するPcGは、市販の工業原
料用PcGカリウム塩またはナトリウム塩バルクを水性
媒体に溶解した水溶液の状態で用いらn、る。該水溶液
は前記と同様にペニシリンアシラーゼの至適姐に調節さ
几るべきである。上記バルクは、通常、上記で述べた有
機溶媒抽出と水性媒体への転溶を数回繰り返し、有機溶
媒の溶液中でカリウム塩またはナトリウム塩に塩形成さ
せ、そ几全単離、乾燥し、場合によりさらに精製さnた
製品であるが、製造コストの面から実質的に純粋なPc
G水溶性塩である必要はなく、ペニシリンアシラーゼ活
性全失活化させる因子、例えば本酵素と結合し易いよう
なポリペプチドまたは蛋白質の如き高分子物質を含有し
ているような純度の悪い粗製バルクでよい。
料用PcGカリウム塩またはナトリウム塩バルクを水性
媒体に溶解した水溶液の状態で用いらn、る。該水溶液
は前記と同様にペニシリンアシラーゼの至適姐に調節さ
几るべきである。上記バルクは、通常、上記で述べた有
機溶媒抽出と水性媒体への転溶を数回繰り返し、有機溶
媒の溶液中でカリウム塩またはナトリウム塩に塩形成さ
せ、そ几全単離、乾燥し、場合によりさらに精製さnた
製品であるが、製造コストの面から実質的に純粋なPc
G水溶性塩である必要はなく、ペニシリンアシラーゼ活
性全失活化させる因子、例えば本酵素と結合し易いよう
なポリペプチドまたは蛋白質の如き高分子物質を含有し
ているような純度の悪い粗製バルクでよい。
このようにペニシリンアシラーゼの至適声に調節さf′
したPcG水溶性塩の水溶液は、分子ffi: 500
0以上の高分子を濾過可能な限外濾過機に通さ几、限外
濾過処理さ几る。上記の限外濾過は公知の限外濾過膜を
用いる方法で行わnるが、少なくとも分子量5000以
上、30000以下の高分子物質を除去すべきである。
したPcG水溶性塩の水溶液は、分子ffi: 500
0以上の高分子を濾過可能な限外濾過機に通さ几、限外
濾過処理さ几る。上記の限外濾過は公知の限外濾過膜を
用いる方法で行わnるが、少なくとも分子量5000以
上、30000以下の高分子物質を除去すべきである。
上記の限外濾過処理により得ら扛た処理液に固定化ペニ
シリンアシラーゼと作用させることにより所望の6−
APAが製造さ1.る。
シリンアシラーゼと作用させることにより所望の6−
APAが製造さ1.る。
上記ペニシリンアシラーゼは微生物、特に細菌の生産す
るペニシリンアクラーゼが使用さfる。
るペニシリンアクラーゼが使用さfる。
このようなペニシリンアクラーゼ生産菌は、例えばアク
チップラセス属、アースロバフタ−属、バ 7− チルス属、エルビニア属、エツクエリヒア属、フラボバ
クテリウム属、ミクロコツカス属、ミクロモノスポラ属
、ノカルディア属、プロテウス属、クユードモナス属、
セラチア属、ストレプトマイセス属などに属する微生物
である。その例としては、 Actinoplanes utahensls
ATCC14539Arthrobacter tiv
ne++cens ATCC6947Arthro
hacter viscosug ATCC15
294Bacillus megaterlurn
ATCCI 4945ATCC14946 B−4001RM−P748 Erwinla stewsrtil ATC
C13531Esdherichla call
ATCIC9637ATCC11105 ATCC13529 MCIB8743 MCIB8743A Flavobaeteriumsuaveoleng
ATCC13533Micrococcus ’ca
ndldug ATCC84568− Micrococcus roseu++
ATCC416Mlcromonompora
purpureoehromogenes ATC
C13634NocardLa sp ATCC
13635Proteus rettIrerl
ATCC9250ATCC31052 Psaudomona@aarugino*a
NRRLIol 4JPssudomonas f
luoregcans NRRLBIOPse
udomonas maltophlla A
TCC17808Serratia rubidae
a ATCC181S
treptomyces grissug
IFO3355Streptorrryces 1a
vendulae ATCC13664ATCC
13665 ATCC21138 などが挙げらnるが、特にバチルス属、エツシエリヒア
属に属するペニシリンアシラーゼ生産菌が好ましい。上
記のペニシリンアシラーゼはその微生物の種類により菌
体内酵素または菌体外酵素として産生さ几るが、これら
は公知の方法により培養物より採取される。菌体内酵素
の場合には、ペニシリンアクラーゼ全細胞から採取して
もよいし、細胞のま\で使用してもよい。
チップラセス属、アースロバフタ−属、バ 7− チルス属、エルビニア属、エツクエリヒア属、フラボバ
クテリウム属、ミクロコツカス属、ミクロモノスポラ属
、ノカルディア属、プロテウス属、クユードモナス属、
セラチア属、ストレプトマイセス属などに属する微生物
である。その例としては、 Actinoplanes utahensls
ATCC14539Arthrobacter tiv
ne++cens ATCC6947Arthro
hacter viscosug ATCC15
294Bacillus megaterlurn
ATCCI 4945ATCC14946 B−4001RM−P748 Erwinla stewsrtil ATC
C13531Esdherichla call
ATCIC9637ATCC11105 ATCC13529 MCIB8743 MCIB8743A Flavobaeteriumsuaveoleng
ATCC13533Micrococcus ’ca
ndldug ATCC84568− Micrococcus roseu++
ATCC416Mlcromonompora
purpureoehromogenes ATC
C13634NocardLa sp ATCC
13635Proteus rettIrerl
ATCC9250ATCC31052 Psaudomona@aarugino*a
NRRLIol 4JPssudomonas f
luoregcans NRRLBIOPse
udomonas maltophlla A
TCC17808Serratia rubidae
a ATCC181S
treptomyces grissug
IFO3355Streptorrryces 1a
vendulae ATCC13664ATCC
13665 ATCC21138 などが挙げらnるが、特にバチルス属、エツシエリヒア
属に属するペニシリンアシラーゼ生産菌が好ましい。上
記のペニシリンアシラーゼはその微生物の種類により菌
体内酵素または菌体外酵素として産生さ几るが、これら
は公知の方法により培養物より採取される。菌体内酵素
の場合には、ペニシリンアクラーゼ全細胞から採取して
もよいし、細胞のま\で使用してもよい。
上記ペニシリンアシラーゼの固定化は、酵素を固定化す
る公知の固定化酵素の製造法により行われる。例えば次
の方法が挙げらnる。
る公知の固定化酵素の製造法により行われる。例えば次
の方法が挙げらnる。
細胞をセルローストリアセテートで包括する方法〔特開
和47−39694号、J、 Antibioties
、 2J22B(1973) )、 細胞をポリアクリルアミドで包括する方法〔特開昭49
−118892号、EuropeaJ J、 Appl
、 Microbiol、 。
和47−39694号、J、 Antibioties
、 2J22B(1973) )、 細胞をポリアクリルアミドで包括する方法〔特開昭49
−118892号、EuropeaJ J、 Appl
、 Microbiol、 。
互、 153 (1976) )、
細胞をグリシジルメタアクリレート、N、d−メチレン
ビスアクリルアミドおよびジメチルアミノプロピオニト
リルで包括する方法〔特開昭53−69888号〕、 細胞をエポキシポリマーで包括する方法(Bi。
ビスアクリルアミドおよびジメチルアミノプロピオニト
リルで包括する方法〔特開昭53−69888号〕、 細胞をエポキシポリマーで包括する方法(Bi。
technol、 Letters、土、 171 (
1979) ]、酵素をアルキル化法によりDEAEセ
ルロースト共有結合させる方法[: Biochem、
Biophys、 Aeta、 、 284 。
1979) ]、酵素をアルキル化法によりDEAEセ
ルロースト共有結合させる方法[: Biochem、
Biophys、 Aeta、 、 284 。
278 (1972) ]、
酵素をサクシエル化し、DEAEセファデックと吸着結
合する方法〔特開昭47−28187号〕、酵素をアク
リルアミド、N、N’−メチレン−ビス−アクリルアミ
ドと無水マレイン酸のコポリマーと共有結合させる方法
〔特開昭48−61692号〕、酵素をグルタルアルデ
ヒドおよびヘキサメチレンジアミンによりアンバーライ
トXAD −7と共有結合させる方法〔特開昭49−5
0183号〕、酵素を臭化シアン活性化法により水溶性
フィコール(クヨ糖トエピクロロヒドリンとのコポリマ
ー)と共有結合させる方法〔特開昭49−93588号
〕、酵素を臭化シアン活性化法よりデキストランと共有
結合させる方法〔特開昭49−12558725587
号〕化シアン活性化法によりセファロ−ステロ、セファ
デックスG −200またはα−グルカンと共有結合さ
せる方法[Methods in Bn+cyme、
Vol。
合する方法〔特開昭47−28187号〕、酵素をアク
リルアミド、N、N’−メチレン−ビス−アクリルアミ
ドと無水マレイン酸のコポリマーと共有結合させる方法
〔特開昭48−61692号〕、酵素をグルタルアルデ
ヒドおよびヘキサメチレンジアミンによりアンバーライ
トXAD −7と共有結合させる方法〔特開昭49−5
0183号〕、酵素を臭化シアン活性化法により水溶性
フィコール(クヨ糖トエピクロロヒドリンとのコポリマ
ー)と共有結合させる方法〔特開昭49−93588号
〕、酵素を臭化シアン活性化法よりデキストランと共有
結合させる方法〔特開昭49−12558725587
号〕化シアン活性化法によりセファロ−ステロ、セファ
デックスG −200またはα−グルカンと共有結合さ
せる方法[Methods in Bn+cyme、
Vol。
44 、759 、 Academic Prass、
NewYork、 1976 ]、酵素をグルタルア
ルデヒドによりアンバーライトIRC−50と共有結合
させる方法〔特開昭50−95479号〕、 酵素をジイミドまfcはグルタルアルデヒドによ一員一 りグリシジルメタアクリレートとエチレンジメタアクリ
レートとのコポリマーと共有結合させる方法[Blot
echnol、 Eioeng、 、 21 * 13
17 (1979) ]、酵素をグルタルアルデヒドに
よす0MセルロースまたはアンバーライトXAD 7と
共有結合させる方法[Blotechnol、 Bio
eng、 、 22 、735 (1980) )、酵
素をグルタルアルデヒドにより部分的に゛rミノ化され
た多孔性ポリアクリロニトリルと共有結合させる方法〔
特開昭55−48392号、特開昭55−39712号
〕。
NewYork、 1976 ]、酵素をグルタルア
ルデヒドによりアンバーライトIRC−50と共有結合
させる方法〔特開昭50−95479号〕、 酵素をジイミドまfcはグルタルアルデヒドによ一員一 りグリシジルメタアクリレートとエチレンジメタアクリ
レートとのコポリマーと共有結合させる方法[Blot
echnol、 Eioeng、 、 21 * 13
17 (1979) ]、酵素をグルタルアルデヒドに
よす0MセルロースまたはアンバーライトXAD 7と
共有結合させる方法[Blotechnol、 Bio
eng、 、 22 、735 (1980) )、酵
素をグルタルアルデヒドにより部分的に゛rミノ化され
た多孔性ポリアクリロニトリルと共有結合させる方法〔
特開昭55−48392号、特開昭55−39712号
〕。
上記の固定化ペニシリンアシラーゼを水性媒体中PcG
に作用させるのであるが、固定化酵素が水に不溶性であ
る場合には、バッチ法でもカラム法でも行うことができ
る。例えば、バッチ法による場合、PcG溶液に固定化
酵素を懸濁させ、一定pHに調節しつつ攪拌することに
より反応を進行させることができる。反応液から固定化
酵素を濾過または遠心分離することにより回収し、再度
これを反覆使用することができる。また、このバッチ法
を連続的に行なうこともできる。
に作用させるのであるが、固定化酵素が水に不溶性であ
る場合には、バッチ法でもカラム法でも行うことができ
る。例えば、バッチ法による場合、PcG溶液に固定化
酵素を懸濁させ、一定pHに調節しつつ攪拌することに
より反応を進行させることができる。反応液から固定化
酵素を濾過または遠心分離することにより回収し、再度
これを反覆使用することができる。また、このバッチ法
を連続的に行なうこともできる。
12−
カラム法による場合は、固定化酵素をカラムに充填し、
このカラム内KPcG溶液を通過させるのであるが、こ
の場合、高流速でカラムを再循環させることが好捷しい
。即ち、一度のカラム通過による脱アシル化反応率を制
限することにより、生成するカルボン酸に基づ< pH
の極度の低下を抑えることができる。カラムを通過した
反応液は冷却して貯蔵槽に貯め、水酸化アルカリなどの
アルカリでpHを常に6.5〜95に中和し、熱交換器
金倉して再びカラムに再循環させることにより、PH低
下による固定化酵素活性の劣化、ベニンリン分解の防止
に有効であり、且つ脱アシル化反応を促進させることが
できる。カラムは高流速による圧損失を最小にするため
、床のなるべく浅いものを適宜設計して使用するのが好
ましく、再循環は通常毎時100〜300床容積の流量
で行なわ几る。再循環はPeGの90チ以上が(i −
APAに転換き几るまで続けるのが好ましい。
このカラム内KPcG溶液を通過させるのであるが、こ
の場合、高流速でカラムを再循環させることが好捷しい
。即ち、一度のカラム通過による脱アシル化反応率を制
限することにより、生成するカルボン酸に基づ< pH
の極度の低下を抑えることができる。カラムを通過した
反応液は冷却して貯蔵槽に貯め、水酸化アルカリなどの
アルカリでpHを常に6.5〜95に中和し、熱交換器
金倉して再びカラムに再循環させることにより、PH低
下による固定化酵素活性の劣化、ベニンリン分解の防止
に有効であり、且つ脱アシル化反応を促進させることが
できる。カラムは高流速による圧損失を最小にするため
、床のなるべく浅いものを適宜設計して使用するのが好
ましく、再循環は通常毎時100〜300床容積の流量
で行なわ几る。再循環はPeGの90チ以上が(i −
APAに転換き几るまで続けるのが好ましい。
上記の酵素反応は通常15〜40℃の範囲で行なわ扛る
。反応の至適pHはペニシリンアシラーゼの生産菌株に
よっても異なるが、通常pHを至適〆■に保持する必要
のある場合には6〜9の付近に保持して反応を行なうよ
うにすn、ばよい。反応時間は酵素力価基質浸量、流速
等によっても異なるが、通常1−10時間である。従っ
て、カラム式の場合にはその好適な反応時間内に通過さ
せるのがよい。
。反応の至適pHはペニシリンアシラーゼの生産菌株に
よっても異なるが、通常pHを至適〆■に保持する必要
のある場合には6〜9の付近に保持して反応を行なうよ
うにすn、ばよい。反応時間は酵素力価基質浸量、流速
等によっても異なるが、通常1−10時間である。従っ
て、カラム式の場合にはその好適な反応時間内に通過さ
せるのがよい。
上記の酵素反応におけるPcGの濃度は1〜20W/V
チの範囲で用いらnるが、高反応率、再使用率、固定化
酵素の活性劣化防止などの点で通常3〜12 w /
v%の範囲で使用するのが好ましい。
チの範囲で用いらnるが、高反応率、再使用率、固定化
酵素の活性劣化防止などの点で通常3〜12 w /
v%の範囲で使用するのが好ましい。
次いで、反応液から6− APAを単離、精製するので
あるが、公知の方法により行なうことができる。例えば
反応液中に残存するPeGおよびカルボン酸をメチルイ
ンブチルケトン、酢酸エチル、酢酸ブチルなどの非親水
性有機溶媒で酸性上抽出除去した後、PHを43に調節
して6−APAを等電点沈澱させてもよいが、反応液に
アセトン、メタノール等の親水性有機溶媒を加えた後、
直接pI(4,3で6− APAを等電点沈澱させても
よい。本発明においては、基質濃度が極めて高いために
反応液を濃縮することなく、高収率、高純度で反応液か
ら直接6− APAを結晶化させることができる。
あるが、公知の方法により行なうことができる。例えば
反応液中に残存するPeGおよびカルボン酸をメチルイ
ンブチルケトン、酢酸エチル、酢酸ブチルなどの非親水
性有機溶媒で酸性上抽出除去した後、PHを43に調節
して6−APAを等電点沈澱させてもよいが、反応液に
アセトン、メタノール等の親水性有機溶媒を加えた後、
直接pI(4,3で6− APAを等電点沈澱させても
よい。本発明においては、基質濃度が極めて高いために
反応液を濃縮することなく、高収率、高純度で反応液か
ら直接6− APAを結晶化させることができる。
PcG (1’) 6− APAへの転換率は、種々の
方法により求めることができる。例えば、高速液体クロ
マトグラフィー、カルボン酸生成によるアルカリ消費哲
から求めら几、また反応液をp H2j)に調節し、メ
チルインブチルケトンで未反応ペニシリンと生成カルボ
ン酸全抽出除去し、水層中の6− APAをヨード吸収
法により定量すると同時にフェニル酢酸クロライドでア
クル化し、生成するPcGの抗菌力をペーパーディスク
法で生物検定することにより定量できる。
方法により求めることができる。例えば、高速液体クロ
マトグラフィー、カルボン酸生成によるアルカリ消費哲
から求めら几、また反応液をp H2j)に調節し、メ
チルインブチルケトンで未反応ペニシリンと生成カルボ
ン酸全抽出除去し、水層中の6− APAをヨード吸収
法により定量すると同時にフェニル酢酸クロライドでア
クル化し、生成するPcGの抗菌力をペーパーディスク
法で生物検定することにより定量できる。
ペニシリンアシラーゼの力価測定法
0.1 Mリン酸緩衝液(pH7,5) 4.5 ml
、4(W/V)% PcGカリウム塩/ 0.I Mリ
ン酸緩衝液(PH7,5)0.5 mI!よりなるM液
中にあらかじめ重量全測定した固定化酵素を添加し、3
7℃、30分間反応せしめる0こ几から0.5ml!’
iとり、0.05 N NaOH1ml、 20チ酢酸
2mlよりなる緩衝液31nlXO,5(、W/ V)
%P−ジメチルアミノベンジルアルデヒド/メタノ15
− 一ル溶液0.5 ml中に加え、室温下10分間反応さ
せ、415n+nVcおける吸光度を測定し、生成する
6−APA量を求める。
、4(W/V)% PcGカリウム塩/ 0.I Mリ
ン酸緩衝液(PH7,5)0.5 mI!よりなるM液
中にあらかじめ重量全測定した固定化酵素を添加し、3
7℃、30分間反応せしめる0こ几から0.5ml!’
iとり、0.05 N NaOH1ml、 20チ酢酸
2mlよりなる緩衝液31nlXO,5(、W/ V)
%P−ジメチルアミノベンジルアルデヒド/メタノ15
− 一ル溶液0.5 ml中に加え、室温下10分間反応さ
せ、415n+nVcおける吸光度を測定し、生成する
6−APA量を求める。
酵素活性は、1分間に1μモルの6−APAi生成する
活性を1単位(IU)とする。
活性を1単位(IU)とする。
次に、参加例および実施例を挙げて本発明を具体的に説
明するが、こfl、 Kより本発明を限定するものでは
ない。
明するが、こfl、 Kより本発明を限定するものでは
ない。
参考例1
水素化リチウムアルミニウム1.5tにEJジエチルエ
ーテル12OmJ金加え、こ几に多孔質構造を有するポ
リアクリルニトリル繊維(旭化成工業製、アクリロニト
リル90チ以上、多孔質ポアサイズ40〜4000A
)1.5 fを加え、50℃の油浴中、1時間加熱還流
した。反応後、繊維を取り出し、エーテルで洗浄した後
、1N塩酸、水、lN水酸化ナトリウム水啓液、水、0
.1Mリン酸緩衝液(pH7,5)の順に洗浄して多孔
質構造金有するアミノ化ポリアクリロニトリル繊維7t
(湿重量)を得た。
ーテル12OmJ金加え、こ几に多孔質構造を有するポ
リアクリルニトリル繊維(旭化成工業製、アクリロニト
リル90チ以上、多孔質ポアサイズ40〜4000A
)1.5 fを加え、50℃の油浴中、1時間加熱還流
した。反応後、繊維を取り出し、エーテルで洗浄した後
、1N塩酸、水、lN水酸化ナトリウム水啓液、水、0
.1Mリン酸緩衝液(pH7,5)の順に洗浄して多孔
質構造金有するアミノ化ポリアクリロニトリル繊維7t
(湿重量)を得た。
参考例2
16−
固定化ペニシリンアシラーゼ
参考例1で得た多孔性構造全有するアミン化ポリアクリ
ロニトリル繊維を、冷却しi12.5%グルタルアルデ
ヒド/ホウ酸緩衝液(pH8,5) 、24078/!
中に加え、0℃、20分間投押し、と1.を−ノ1νし
た後ホウ酸緩衝液(pHl’1.5 ) 、0.1 M
−IIン酸緩価液(pH7,5)の頓で洗浄し、こf
i、 ’%7 、バチルス・メガテリウム・R−400
(FERM P −748)の生産するアシラーゼ酵素
液(60U / ml ) 113 mlに加えて室温
で4時間攪拌し、さらに5℃で一夜放置した後、戸数し
、た(F液中のアシラーゼ活性は認めら几なかった)。
ロニトリル繊維を、冷却しi12.5%グルタルアルデ
ヒド/ホウ酸緩衝液(pH8,5) 、24078/!
中に加え、0℃、20分間投押し、と1.を−ノ1νし
た後ホウ酸緩衝液(pHl’1.5 ) 、0.1 M
−IIン酸緩価液(pH7,5)の頓で洗浄し、こf
i、 ’%7 、バチルス・メガテリウム・R−400
(FERM P −748)の生産するアシラーゼ酵素
液(60U / ml ) 113 mlに加えて室温
で4時間攪拌し、さらに5℃で一夜放置した後、戸数し
、た(F液中のアシラーゼ活性は認めら几なかった)。
こ′n−全づらに0.5 M食塩含有0.1 Mリン酸
緩衝液(pH7,5)、0.1 Mリン酸緩衝液(pH
7,5)の順で洗浄し、固定化ペニシリンアシラーゼ(
584U/g ) 6.8 f(湿重量)全得た。
緩衝液(pH7,5)、0.1 Mリン酸緩衝液(pH
7,5)の順で洗浄し、固定化ペニシリンアシラーゼ(
584U/g ) 6.8 f(湿重量)全得た。
実施例1
PcGカリウム474. (PcGK ) (ファイザ
ー社製、Lot & G23248−34008 )
300 f f蒸留水ltに溶かし、こf′1.を限外
濾過器(旭化成工業社製、限外濾過モジュールACL
−1010、中空糸状膜、分画分子量1300Q )に
通して限外濾過処理した。この処理液に蒸留水300m
/づつ3回加え、PcGK 281.2#(収率93.
7 % )を含む限外濾過液1900 ml (PcG
K148■/ me )を得た。
ー社製、Lot & G23248−34008 )
300 f f蒸留水ltに溶かし、こf′1.を限外
濾過器(旭化成工業社製、限外濾過モジュールACL
−1010、中空糸状膜、分画分子量1300Q )に
通して限外濾過処理した。この処理液に蒸留水300m
/づつ3回加え、PcGK 281.2#(収率93.
7 % )を含む限外濾過液1900 ml (PcG
K148■/ me )を得た。
実施例2
参考例2で得た固定化ペニシリンアシラーゼ17.0
?(湿重量)をカラム(3,4X 5 cm )に充填
し、貯蔵槽に実施例1で得たPcGKの限外濾過液33
8m1!(PcGKとして5ot)’r加え、O,12
M2Mホウ酸緩衝液PH8,4)を加えて全量全500
−とした。このPcGK水溶液をホンダにより50t/
時の流速でカラムの下部よりカラムに流入し、カラム流
出液は貯蔵槽に戻し、連続循環させた。その間、貯蔵槽
内の水溶液の温度を恒温槽で34℃に保持すると共に4
N水酸化ナトリウム水溶液で自動pH調節器に工りpH
i 8.4に調節し、高速液体クロマトグラフィー(H
PLC)により残存するPcG量を追跡した0残存Pe
G量が2.0■/fnl以下になった時点で反応液の循
環全停止し、カラム内の反応液を回収するために、カラ
ムの下部より洗浄用の0.4Mホウ酸緩衝液(pH7,
5) 100 meに流入し、カラム内の反応液および
洗浄液を貯蔵槽に流し出した。
?(湿重量)をカラム(3,4X 5 cm )に充填
し、貯蔵槽に実施例1で得たPcGKの限外濾過液33
8m1!(PcGKとして5ot)’r加え、O,12
M2Mホウ酸緩衝液PH8,4)を加えて全量全500
−とした。このPcGK水溶液をホンダにより50t/
時の流速でカラムの下部よりカラムに流入し、カラム流
出液は貯蔵槽に戻し、連続循環させた。その間、貯蔵槽
内の水溶液の温度を恒温槽で34℃に保持すると共に4
N水酸化ナトリウム水溶液で自動pH調節器に工りpH
i 8.4に調節し、高速液体クロマトグラフィー(H
PLC)により残存するPcG量を追跡した0残存Pe
G量が2.0■/fnl以下になった時点で反応液の循
環全停止し、カラム内の反応液を回収するために、カラ
ムの下部より洗浄用の0.4Mホウ酸緩衝液(pH7,
5) 100 meに流入し、カラム内の反応液および
洗浄液を貯蔵槽に流し出した。
貯蔵槽中の反応液にメタノール340m1f、(加え、
冷却下6N塩酸でpH4,3(/C調節し、冷蔵庫中で
一夜放置した。析出した沈澱物を戸数し、冷メタノール
150−で洗浄、乾燥して6− APAを得た。循環開
始から洗浄終了迄の工程i1パッチとし、反応液中の残
存PaG量が2.Oflに!/ d以下になる迄の反応
時間、6−APAの乾燥重量、その収率および固定化ペ
ニシリンアシラーゼの活性残存率を求めた。
冷却下6N塩酸でpH4,3(/C調節し、冷蔵庫中で
一夜放置した。析出した沈澱物を戸数し、冷メタノール
150−で洗浄、乾燥して6− APAを得た。循環開
始から洗浄終了迄の工程i1パッチとし、反応液中の残
存PaG量が2.Oflに!/ d以下になる迄の反応
時間、6−APAの乾燥重量、その収率および固定化ペ
ニシリンアシラーゼの活性残存率を求めた。
次に、新たに貯蔵槽全セットしてP cGK水溶液全仕
込み、前記と同一工程を連続的に繰り返し行って6−
APA Q製造した。その間、各バッチ毎に反応時間、
6−APAの乾燥重量、その収率および固定化ベニy
IJンアシラーゼの活性残存率ヲ求めた。
込み、前記と同一工程を連続的に繰り返し行って6−
APA Q製造した。その間、各バッチ毎に反応時間、
6−APAの乾燥重量、その収率および固定化ベニy
IJンアシラーゼの活性残存率ヲ求めた。
そnらの結果は第1表の通りであった。
19−
第1表
参考例3
実施例2において、限外濾過処理したp cGK水溶液
の代りにpcGK (ファイザー社製、LotAG23
248−34008 )50 P全0.12 Mホウ酸
緩衝液(pH8,4)にtow/v%濃度で溶解した限
外濾過処理の水溶1500+n!、’i用いて、実施例
2に記載の工程に従って各バッチ毎に5− APAを製
造した。
の代りにpcGK (ファイザー社製、LotAG23
248−34008 )50 P全0.12 Mホウ酸
緩衝液(pH8,4)にtow/v%濃度で溶解した限
外濾過処理の水溶1500+n!、’i用いて、実施例
2に記載の工程に従って各バッチ毎に5− APAを製
造した。
その結果は第2表の通りである。
20−
第2表
以上の結果より純度の悪いP eGKバルクを使用して
固定化酵素法により6− APA ’(r製造すると、
初めのlバッチですでにペニシリンアシラーゼ活性が2
0%以上低下しており、バッチを増す毎にペニシリンア
シラーゼ活性の安定性の著しい低下と反応時間の長期化
を示しているだけでなく1固定化ペニシリンアシラーゼ
の長期的に連続便用が不可能であること全示している。
固定化酵素法により6− APA ’(r製造すると、
初めのlバッチですでにペニシリンアシラーゼ活性が2
0%以上低下しており、バッチを増す毎にペニシリンア
シラーゼ活性の安定性の著しい低下と反応時間の長期化
を示しているだけでなく1固定化ペニシリンアシラーゼ
の長期的に連続便用が不可能であること全示している。
こnに対し実施例2において純度の悪いP cGKバル
クを予め限外濾過処理した水溶液を用いて得た第1表の
結果によn、げ、ペニシリンアシラーゼ活性の安定性が
極めて良好であり、長期的に連続使用が可能であること
を示しており、本発明によ几は参考例3における製造例
よりも工業的には6− APAの製造コストがより安価
に製造可能であることを意味している0 実施例3 PcG醗酵ブロス(東洋醸造社、Lot A 2096
)からドラム・フィルターにより菌体除去した培養涙
液(PcGKとして30q/d含有)10tで6N塩酸
でPH2,0に調節した後、酢酸ブチルItで3回づつ
抽出した。酢酸プナル層を合わせ、炭酸カリウム−酢酸
カリウム緩衝液(pl(7,2〜7.3 ) 300
mlで3回づつ水層のpHk酢酸カリウム水溶液で7.
2〜7.3に調節しなからPeGを水層に転溶した。水
層全減圧下で酢酸ブチルが留去するまで濃縮した。
クを予め限外濾過処理した水溶液を用いて得た第1表の
結果によn、げ、ペニシリンアシラーゼ活性の安定性が
極めて良好であり、長期的に連続使用が可能であること
を示しており、本発明によ几は参考例3における製造例
よりも工業的には6− APAの製造コストがより安価
に製造可能であることを意味している0 実施例3 PcG醗酵ブロス(東洋醸造社、Lot A 2096
)からドラム・フィルターにより菌体除去した培養涙
液(PcGKとして30q/d含有)10tで6N塩酸
でPH2,0に調節した後、酢酸ブチルItで3回づつ
抽出した。酢酸プナル層を合わせ、炭酸カリウム−酢酸
カリウム緩衝液(pl(7,2〜7.3 ) 300
mlで3回づつ水層のpHk酢酸カリウム水溶液で7.
2〜7.3に調節しなからPeGを水層に転溶した。水
層全減圧下で酢酸ブチルが留去するまで濃縮した。
得ら几た水性抽出液900 ml (PcGKとして2
57g含有)を限外p過器(旭化成工業社製、限外濾過
モジュールACL −1010、中空糸状膜、分子量1
3000以上分画沖過)に通して限外p過処理した。こ
の処理液に蒸留水300 m7!づつ3回加え、pcG
K241.2 g(収率94 ’fA ) k 會む限
外濾過液1800 ml (PcGK134■/7斤得
た。
57g含有)を限外p過器(旭化成工業社製、限外濾過
モジュールACL −1010、中空糸状膜、分子量1
3000以上分画沖過)に通して限外p過処理した。こ
の処理液に蒸留水300 m7!づつ3回加え、pcG
K241.2 g(収率94 ’fA ) k 會む限
外濾過液1800 ml (PcGK134■/7斤得
た。
実施例4
実施例2において、PCGK水溶液の代りに実施例3で
得たPcGKの限外濾過!、 373 ml(PcGK
として50t)に0.12 Mホウ酸緩衝液(pH8,
4)を加えて500−とじた水溶液を用いて、実施例2
に記載の工程に従って、各バッチ毎IC6−AI”A
全製造した。
得たPcGKの限外濾過!、 373 ml(PcGK
として50t)に0.12 Mホウ酸緩衝液(pH8,
4)を加えて500−とじた水溶液を用いて、実施例2
に記載の工程に従って、各バッチ毎IC6−AI”A
全製造した。
その結果は第3表の通りであつfc、。
第3表
一23二
参考例4
実施例2において、限外F :iM L * PcGK
水溶液の代りに実施例3で得た限外濾過処理しない水性
抽出液175 ml (PcGKとして509)に0.
12Mホウ酸緩衝液(pH8,4)を加えて500コと
した水溶液を用いて、実施例2に記載の工程に従って、
各バッチ毎に5− APA全製造した。その結果は第4
表の通りであった。
水溶液の代りに実施例3で得た限外濾過処理しない水性
抽出液175 ml (PcGKとして509)に0.
12Mホウ酸緩衝液(pH8,4)を加えて500コと
した水溶液を用いて、実施例2に記載の工程に従って、
各バッチ毎に5− APA全製造した。その結果は第4
表の通りであった。
第4表
第4表の結果より、参考例4の従来の固定化酵素法にお
いて、PcGKとして醗酵ブロスから得ら几24− た水性抽出液を使用すると、酵素活性残存率が著しく低
下し、各バッチにおける反応時間が大巾に長期化し、固
定化ペニシリンアクラーゼが長期的に連続使用が不可能
となり、工業的な方法とはいえない。
いて、PcGKとして醗酵ブロスから得ら几24− た水性抽出液を使用すると、酵素活性残存率が著しく低
下し、各バッチにおける反応時間が大巾に長期化し、固
定化ペニシリンアクラーゼが長期的に連続使用が不可能
となり、工業的な方法とはいえない。
こ1に対し、実施例4において、P(!G#酵ブロブロ
ス得た水性抽出液金子め限外濾過処理した水溶液を用い
て得た第3表の結果によ几ば、ペニシリンアシラーゼ活
性が長期間の連続使用に対しても比較的安定であり、長
期的に連続使用が可能であることを示している。例4に
おける製造例よりも工業的にに6− APAの製造が可
能であることを意味している。
ス得た水性抽出液金子め限外濾過処理した水溶液を用い
て得た第3表の結果によ几ば、ペニシリンアシラーゼ活
性が長期間の連続使用に対しても比較的安定であり、長
期的に連続使用が可能であることを示している。例4に
おける製造例よりも工業的にに6− APAの製造が可
能であることを意味している。
従来、醗酵ブロスから得らfる水性抽出液からPcGK
としてm離収率に高々85チ程度であることを考慮する
と、本発明ではこの単離工程が不要であるため、少なく
ともその工程の製造コストの低減につながり、本発明が
原料であるPaGih酵プロスより得らn−た水性抽出
液の形で使用する固定化酵素法による6 −APAの製
造法として充分に工渠内な方法であるといえる。
としてm離収率に高々85チ程度であることを考慮する
と、本発明ではこの単離工程が不要であるため、少なく
ともその工程の製造コストの低減につながり、本発明が
原料であるPaGih酵プロスより得らn−た水性抽出
液の形で使用する固定化酵素法による6 −APAの製
造法として充分に工渠内な方法であるといえる。
特許出願人
東洋醗造株式会社
一屏 −
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 l)ベンジルペニシリンに水性媒体中固定化ペニシリン
アシラーゼを作用させて酸素的に6−アミノペニシラン
酸tl−製造する方法において、粗製ベンジルペニシリ
ンまたはその水溶性塩の水性溶液を分子量5000以上
の限外濾過処理を行い、得ら几た処理液に固定化ペニシ
リンアシラーゼを作用させることを特徴とする6−アミ
ノベニクラン酸の製造法。 2)水性溶液がベンジルペニシリン醗酵プロスから抽出
工程により得ら九たベンジルペニシリンの水性抽出液で
ある特許請求の範囲第1項記載の製造法。 3)水性抽出液がペニシリンアシラーゼの至適pHまた
はその付近にpHを調節した浴液である特許請求の範囲
第2項記載の製造法。 4)水性溶液がベンジルペニシリン醗酵プロスから単離
された粗製ベンジルペニシリンまたはその水溶性塩全水
性媒体に溶液化した溶液である特許請求の範囲第1項記
載の製造法。 51 aaizペニシ11ンアクラーゼの至適pHま
たはその付近KpHを調節した溶液である特許請求の範
囲第4項記載の製造法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP18919482A JPS5982097A (ja) | 1982-10-29 | 1982-10-29 | 固定化酵素法による6−アミノペニシラン酸の改良製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP18919482A JPS5982097A (ja) | 1982-10-29 | 1982-10-29 | 固定化酵素法による6−アミノペニシラン酸の改良製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5982097A true JPS5982097A (ja) | 1984-05-11 |
| JPH0154999B2 JPH0154999B2 (ja) | 1989-11-21 |
Family
ID=16237086
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP18919482A Granted JPS5982097A (ja) | 1982-10-29 | 1982-10-29 | 固定化酵素法による6−アミノペニシラン酸の改良製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5982097A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5500352A (en) * | 1993-03-24 | 1996-03-19 | Sepracor, Inc. | Membrane filtration process for 6-aminopenicillanic acid |
| WO1997035029A1 (es) * | 1996-03-15 | 1997-09-25 | Antibioticos, S.A. | Procedimiento alternativo para la obtencion del acido 6-amino penicilanico (6-apa) |
| ES2105988A1 (es) * | 1996-03-15 | 1997-10-16 | Antibioticos Sa | Procedimiento para purificar 7-sustituido-amino-desacetoxi-cefalosporinas mediante el empleo de membranas de filtracion. |
-
1982
- 1982-10-29 JP JP18919482A patent/JPS5982097A/ja active Granted
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5500352A (en) * | 1993-03-24 | 1996-03-19 | Sepracor, Inc. | Membrane filtration process for 6-aminopenicillanic acid |
| US5521068A (en) * | 1993-03-24 | 1996-05-28 | Sepracor, Inc. | Process for 7-aminodesacetoxycephalosporanic acid |
| WO1997035029A1 (es) * | 1996-03-15 | 1997-09-25 | Antibioticos, S.A. | Procedimiento alternativo para la obtencion del acido 6-amino penicilanico (6-apa) |
| ES2105988A1 (es) * | 1996-03-15 | 1997-10-16 | Antibioticos Sa | Procedimiento para purificar 7-sustituido-amino-desacetoxi-cefalosporinas mediante el empleo de membranas de filtracion. |
| US6110699A (en) * | 1996-03-15 | 2000-08-29 | Antibioticos, S.A. | Process for producing 6-amino-penicillanic acid and phenylacetic acid |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0154999B2 (ja) | 1989-11-21 |
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