JPS6012576B2 - サイモポイエチンの免疫検定 - Google Patents
サイモポイエチンの免疫検定Info
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-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/531—Production of immunochemical test materials
- G01N33/532—Production of labelled immunochemicals
-
- G—PHYSICS
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- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
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- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、サィモポイェチン(比のmopoietin
)の免疫検定に関する。
)の免疫検定に関する。
サイモポイェチンは胸腺のポリベプチド・ホルモンで、
これは前胸腺細胞の胸腺細胞への分化をうながし、又神
経筋肉伝達に二次的効果を有するものである。
これは前胸腺細胞の胸腺細胞への分化をうながし、又神
経筋肉伝達に二次的効果を有するものである。
サイモポイェチン1と0と命名した牛のサィモポィェチ
ンの一つの型が分離されており、免疫学的に交差反応性
であることが示されている。(サィモポィェチンは現在
元の名前のサイミン(thymin)よりも多く用いら
れている。)ジー・ゴールドスタイン,ネイチヤ−(G
.奴ld−spin,natme),247,11(1
974)を参照のこと。サィモポイェチンは、T細胞分
化への効果や神経筋肉伝達への効果を用いてバイオアツ
セイにより検出できるが、これらアツセィは複雑で、時
間を取り、又標準化がむつかしい。
ンの一つの型が分離されており、免疫学的に交差反応性
であることが示されている。(サィモポィェチンは現在
元の名前のサイミン(thymin)よりも多く用いら
れている。)ジー・ゴールドスタイン,ネイチヤ−(G
.奴ld−spin,natme),247,11(1
974)を参照のこと。サィモポイェチンは、T細胞分
化への効果や神経筋肉伝達への効果を用いてバイオアツ
セイにより検出できるが、これらアツセィは複雑で、時
間を取り、又標準化がむつかしい。
更に、免疫検定とは異なり、特に放射免疫検定とは異な
り、バイオアッセィは容易に自動化できず、又それ故経
済的方法で多数のサンプルの振り分けを行う臨床研究室
やその他の診断的施設では日常的に採用することができ
なかった。好ましい免疫検定は、血数や血清のような生
物学的液体サンプルにおける該ホルモンの約0.1ng
/の‘までの感度を有する。
り、バイオアッセィは容易に自動化できず、又それ故経
済的方法で多数のサンプルの振り分けを行う臨床研究室
やその他の診断的施設では日常的に採用することができ
なかった。好ましい免疫検定は、血数や血清のような生
物学的液体サンプルにおける該ホルモンの約0.1ng
/の‘までの感度を有する。
それ故「 サィモポィェチンの高濃度(重症性筋無力症
)や低濃度(老化,免疫欠如又は免疫学的中介疾病,癌
,栄養失調,感染症など)を示す疾病状態に対する診断
的テストとしてこの当該検定を採用することができる■
サィモポイェチンの一つの型は免疫検定法では識別で
きない。この当該検定のための抗体を調製するのに用い
られる抗原はそれ自体知られている方法でサィモポィェ
チンと免疫原担体物質とを結合させることにより容易に
得られる。
)や低濃度(老化,免疫欠如又は免疫学的中介疾病,癌
,栄養失調,感染症など)を示す疾病状態に対する診断
的テストとしてこの当該検定を採用することができる■
サィモポイェチンの一つの型は免疫検定法では識別で
きない。この当該検定のための抗体を調製するのに用い
られる抗原はそれ自体知られている方法でサィモポィェ
チンと免疫原担体物質とを結合させることにより容易に
得られる。
このような結合は、好ましくは、適当な二官能性結合基
を用いることにより得られる。この目的に好ましい二官
能性結合基はグルタルアルデヒドの如きC2−7 ジア
ルカナルである。こ)に用いられているように“免疫原
担体物質(jmmunogenlccameてmate
rialゾという語は、宿主の動物における免疫原的反
応を独立的に引出す性質を持ちL又サィモポィェチンと
結合し得る物質を含むことを意味している。
を用いることにより得られる。この目的に好ましい二官
能性結合基はグルタルアルデヒドの如きC2−7 ジア
ルカナルである。こ)に用いられているように“免疫原
担体物質(jmmunogenlccameてmate
rialゾという語は、宿主の動物における免疫原的反
応を独立的に引出す性質を持ちL又サィモポィェチンと
結合し得る物質を含むことを意味している。
適当な担体物質としては例えば、蛋白質;ポリリジンや
アミノ酸の共重合体のようなポリベプチド類のような天
然又は合成の重合化合物:ポリサッカラィドなどを含む
。特に好ましい担体物質は蛋白質とポリベプチドで、殊
に蛋白質がそうである。本発明の抗原の調製に用いられ
る蛋白質物質の確認は臨界的なものではない。
アミノ酸の共重合体のようなポリベプチド類のような天
然又は合成の重合化合物:ポリサッカラィドなどを含む
。特に好ましい担体物質は蛋白質とポリベプチドで、殊
に蛋白質がそうである。本発明の抗原の調製に用いられ
る蛋白質物質の確認は臨界的なものではない。
本発明の実施において有用な適切な蛋白質の例には、隅
乳類の血清蛋白質がある。例えば、人間のガンマ。グロ
プリン,人間の血清アルブミン,牛の血清アルブミン,
ミチル化した牛の血清アルブミン,ウサギの血清アルプ
ミン,牛のガンマ。グロブリン,及び馬のガンマ・グロ
ブリンがある。他の適当な蛋白質についてはこの技術に
堪能な人には示唆されよう。結果として得られる抗原が
用いられるであろう動物宿王とは縁のない蛋白質を用い
ることは一般に好ましいことではあるが、必須のことで
はない。サィモポィヱチンと免疫原担体物質とのカップ
リングは、この技術において既知の方法で行うことがで
きる。
乳類の血清蛋白質がある。例えば、人間のガンマ。グロ
プリン,人間の血清アルブミン,牛の血清アルブミン,
ミチル化した牛の血清アルブミン,ウサギの血清アルプ
ミン,牛のガンマ。グロブリン,及び馬のガンマ・グロ
ブリンがある。他の適当な蛋白質についてはこの技術に
堪能な人には示唆されよう。結果として得られる抗原が
用いられるであろう動物宿王とは縁のない蛋白質を用い
ることは一般に好ましいことではあるが、必須のことで
はない。サィモポィヱチンと免疫原担体物質とのカップ
リングは、この技術において既知の方法で行うことがで
きる。
好ましい方法としては等価結合や、例えば静電気的な物
理的結合がある。それ故、例えばカップリングが等価結
合が得られるように行われる場合には、例えばグルタル
アルデヒドのような二官能性結合基を、ェス.アブラミ
ーズ・ィミユノケミストリイ(S.Avrameas,
lmm肌o−chemisoy),6,43(1969
)に述べてある条件下で用いてもよい。二官能性結合基
の使用がサィモポィェチンと免疫原担体物質との等価結
合を得るのに好ましい方法である一方、結合のための他
の方法も利用し得る。
理的結合がある。それ故、例えばカップリングが等価結
合が得られるように行われる場合には、例えばグルタル
アルデヒドのような二官能性結合基を、ェス.アブラミ
ーズ・ィミユノケミストリイ(S.Avrameas,
lmm肌o−chemisoy),6,43(1969
)に述べてある条件下で用いてもよい。二官能性結合基
の使用がサィモポィェチンと免疫原担体物質との等価結
合を得るのに好ましい方法である一方、結合のための他
の方法も利用し得る。
このような方法の一つで、“サイエンス”(Scien
ce),14巻1344〜1346ページ(196乎王
6月12日発行)に述べてあるカーボジィミド法を用い
てもよい。この論文に述べてあるように、カルポキシ酸
とアミンを含む多くの型の官能器を含む物質を結合する
のにカーボジイミドを用いることができる。この別法に
おいて、カップリングが進行して「“サイエンス”のこ
の論文に述べてある方法でアミド結合を通じてサイモポ
ィェチンは蛋白質とカップリングすることにより等価結
合が形成される。シアネート類を用いての等価結合のも
つ一つの方法も用い得ることが197必宅1月29日付
の米国特許地.3.788,948にでている。この担
体とサイモポィェチンとの結合は又物理的手段によって
も得られる。例えば、静電気結合でもこの技術に裏既陳
した人々に既知の手段を用いて行う。この方法は担体と
サィモポィェチンとのZ錨化合物の形成により進行し、
“メソッド・ィン・イミユノロジイ・アンド・イミユノ
ケミストリ イ ”( Me仇ods ln lmm皿
olo劉 a肘lmmunochemistひ)カーチ
ス・エイ・ウイリアムス(CmtisAWilliam
s)線,第1巻,アカデZミツク・プレス(Acade
micPress)(1967)に述べてあるように行
われる。他の方法は、197必王12月lo日付の米国
特許No.3,8鼠 鱗7に述べてある。もちろん、こ
の技術に裏糊陳した人々に知られて2いる他の方法も又
、サィモポィェチンと笹体とを結合するのに用いられる
ものと理解されるものとする。
ce),14巻1344〜1346ページ(196乎王
6月12日発行)に述べてあるカーボジィミド法を用い
てもよい。この論文に述べてあるように、カルポキシ酸
とアミンを含む多くの型の官能器を含む物質を結合する
のにカーボジイミドを用いることができる。この別法に
おいて、カップリングが進行して「“サイエンス”のこ
の論文に述べてある方法でアミド結合を通じてサイモポ
ィェチンは蛋白質とカップリングすることにより等価結
合が形成される。シアネート類を用いての等価結合のも
つ一つの方法も用い得ることが197必宅1月29日付
の米国特許地.3.788,948にでている。この担
体とサイモポィェチンとの結合は又物理的手段によって
も得られる。例えば、静電気結合でもこの技術に裏既陳
した人々に既知の手段を用いて行う。この方法は担体と
サィモポィェチンとのZ錨化合物の形成により進行し、
“メソッド・ィン・イミユノロジイ・アンド・イミユノ
ケミストリ イ ”( Me仇ods ln lmm皿
olo劉 a肘lmmunochemistひ)カーチ
ス・エイ・ウイリアムス(CmtisAWilliam
s)線,第1巻,アカデZミツク・プレス(Acade
micPress)(1967)に述べてあるように行
われる。他の方法は、197必王12月lo日付の米国
特許No.3,8鼠 鱗7に述べてある。もちろん、こ
の技術に裏糊陳した人々に知られて2いる他の方法も又
、サィモポィェチンと笹体とを結合するのに用いられる
ものと理解されるものとする。
本発明の抗原を用いて宿主動物にこの抗原を既知の方法
により好ましくはフ。
により好ましくはフ。
インド補助液を用いて注射することにより、宿主の中に
サイモポィェチンに特別の抗体を生ぜしめる。一定期間
注射をくり返すことにより、よりよい力価が得られる。
この目的に通した宿主動物にはウサギ,馬,ヤギ,モル
モット,ラツト,牛,ヒツジなどの縄乳類がある。結果
として得られる抗血清は、上述の如くサィモポィェチン
又はそれから作られた抗原のいずれかと選択的に結合す
る抗体を含んでいるであろう。本発明により作られたサ
ィモポィェチンに特定の抗体はサイモボイェチンについ
ての免疫検定の試薬として有用である。
サイモポィェチンに特別の抗体を生ぜしめる。一定期間
注射をくり返すことにより、よりよい力価が得られる。
この目的に通した宿主動物にはウサギ,馬,ヤギ,モル
モット,ラツト,牛,ヒツジなどの縄乳類がある。結果
として得られる抗血清は、上述の如くサィモポィェチン
又はそれから作られた抗原のいずれかと選択的に結合す
る抗体を含んでいるであろう。本発明により作られたサ
ィモポィェチンに特定の抗体はサイモボイェチンについ
ての免疫検定の試薬として有用である。
好ましい実施形態では、0.1M硫酸塩−綾衡生理食塩
水府6.5中の5%牛のガンマ・グロブリンのような適
当な緩衛液で希釈した抗血清を標準又はテストサンプル
及び放射能標識サイモポイェチンの既知量のいずれも、
歌℃緩衡液中に溶解したものと混合する。テストサンプ
ル中に存在するサィモポィェチンの量を次いで種々の方
法で測定する。
水府6.5中の5%牛のガンマ・グロブリンのような適
当な緩衛液で希釈した抗血清を標準又はテストサンプル
及び放射能標識サイモポイェチンの既知量のいずれも、
歌℃緩衡液中に溶解したものと混合する。テストサンプ
ル中に存在するサィモポィェチンの量を次いで種々の方
法で測定する。
第一の方法では、上記の成分を混合し、その混合物を室
温に数時間放置した後、抗体一抗原複合体を冷たい30
%ポリエチレン・グリコールを用いて沈澱せしめた。遠
心分離後、上ずみ液を吸引し、沈澱物中の放射能を調べ
た。このサンプル中のサィモポィヱチン含有量を次いで
それ自体既知の方法で標準曲線に認められる放射能レベ
ルと比較して決定することができる。適当な標準曲線は
、既知量のサィモポィェチンを標識サィモポィェチンと
サィモポィェチンに特定の抗体の一定量と混合し、各既
知量に対する結合の度合いを測定して作ることができる
。抗原一抗体複合体を除去するための分離法では二種類
用いることができる。
温に数時間放置した後、抗体一抗原複合体を冷たい30
%ポリエチレン・グリコールを用いて沈澱せしめた。遠
心分離後、上ずみ液を吸引し、沈澱物中の放射能を調べ
た。このサンプル中のサィモポィヱチン含有量を次いで
それ自体既知の方法で標準曲線に認められる放射能レベ
ルと比較して決定することができる。適当な標準曲線は
、既知量のサィモポィェチンを標識サィモポィェチンと
サィモポィェチンに特定の抗体の一定量と混合し、各既
知量に対する結合の度合いを測定して作ることができる
。抗原一抗体複合体を除去するための分離法では二種類
用いることができる。
このような二種類の方法は事実、検定についての感渡が
よりよいために、上記のポリエチレン・グリコール法よ
りも好ましい。このような方法の一つでは、二重抗体法
を用いている。
よりよいために、上記のポリエチレン・グリコール法よ
りも好ましい。このような方法の一つでは、二重抗体法
を用いている。
上記の三成分による検定反応用混合物の培養後、最初の
検定用抗体に対して他の噸乳類より得た抗体を加え、こ
れら成分を混合し、次いで室温に5〜120分間放置後
、この混合物を遠沈する。上ずみ液を吸引後、沈澱物に
ついて放射能を測定し、サンプル中のサィモポィェチン
濃度を上記標準曲線より決定する。もう一つの方法では
抗体−抗原複合体の分離を助けるためにデキストラン被
覆チャコールを用いる。
検定用抗体に対して他の噸乳類より得た抗体を加え、こ
れら成分を混合し、次いで室温に5〜120分間放置後
、この混合物を遠沈する。上ずみ液を吸引後、沈澱物に
ついて放射能を測定し、サンプル中のサィモポィェチン
濃度を上記標準曲線より決定する。もう一つの方法では
抗体−抗原複合体の分離を助けるためにデキストラン被
覆チャコールを用いる。
この方法では「デキストラン被覆チャコールを培養後に
検定用反応系に加える。約4℃の低温0を用いる。約3
0分間約4℃に放置後、混合物を遠沈し、上ずみ液を吸
引する。沈澱物について放射能を測定し、この方法では
この放射能は“非結合”サィモポイヱチンを表わす。本
検定システムの好ましい実施形態では、タ皮℃穣衡系に
用いられた生理食塩水を山MKCIに置きかえる。
検定用反応系に加える。約4℃の低温0を用いる。約3
0分間約4℃に放置後、混合物を遠沈し、上ずみ液を吸
引する。沈澱物について放射能を測定し、この方法では
この放射能は“非結合”サィモポイヱチンを表わす。本
検定システムの好ましい実施形態では、タ皮℃穣衡系に
用いられた生理食塩水を山MKCIに置きかえる。
この代替により、付随する感度の低減ないこ検定中にお
ける非特異性結合が減る。本発明の免疫検定で使用する
のに適した標識サィモポィェチンには、ラジオアイソト
ープで標識0をつけたサィモポィェチン、殊にトリチウ
ム(3H),炭素14(14C),沃素125(1あ1
),又は沃素131(1311)で標識づけたものが含
まれる。本発明による他の免疫実施態用として、例えば
発色団,蟹光団,酵素,赤血球,ラテックス粒又は電子
目転共鳴群のような他のユニークで検出可能な標識で標
識づけたサィモポイェチンを用いてもよい。最も好まし
い放射標識サィモポィェチンはめ51サイモボイエチン
である。サイモポイヱチンへの凶51標識の導入は、こ
の技術で既知の方法、例えばクロルアミンーT法を用い
たり、更に好ましくはバイオケム。ジェイ。(Bioc
hemJ.)i339529,(1973)に述べてあ
るボルトン−ハンター(敗lton−Hunter)試
薬(1251沃素化ピーハィドロキシフエニイールプロ
ピオニツク.アシツド(P−hydroxypheny
lproplomcacid), エヌーハイドロキシ
サクシニマイド.エステル(N−hydro奴sMci
nimideester)を用いることにより行うこと
ができる。これが好ましいのはサイモポィェチンのチロ
シル成分を直接沃素化すると免疫活性がいくらか失われ
るためである。しかしながら「ボルトンGハンター試薬
は遊離ァミノ基と縮合するので〜それは免疫決定チロシ
ル部分に影響を与えない。その他の上記標識付きサイモ
ポィヱチンはこの技術に熟練の人々に既知の手段により
作製される。
ける非特異性結合が減る。本発明の免疫検定で使用する
のに適した標識サィモポィェチンには、ラジオアイソト
ープで標識0をつけたサィモポィェチン、殊にトリチウ
ム(3H),炭素14(14C),沃素125(1あ1
),又は沃素131(1311)で標識づけたものが含
まれる。本発明による他の免疫実施態用として、例えば
発色団,蟹光団,酵素,赤血球,ラテックス粒又は電子
目転共鳴群のような他のユニークで検出可能な標識で標
識づけたサィモポイェチンを用いてもよい。最も好まし
い放射標識サィモポィェチンはめ51サイモボイエチン
である。サイモポイヱチンへの凶51標識の導入は、こ
の技術で既知の方法、例えばクロルアミンーT法を用い
たり、更に好ましくはバイオケム。ジェイ。(Bioc
hemJ.)i339529,(1973)に述べてあ
るボルトン−ハンター(敗lton−Hunter)試
薬(1251沃素化ピーハィドロキシフエニイールプロ
ピオニツク.アシツド(P−hydroxypheny
lproplomcacid), エヌーハイドロキシ
サクシニマイド.エステル(N−hydro奴sMci
nimideester)を用いることにより行うこと
ができる。これが好ましいのはサイモポィェチンのチロ
シル成分を直接沃素化すると免疫活性がいくらか失われ
るためである。しかしながら「ボルトンGハンター試薬
は遊離ァミノ基と縮合するので〜それは免疫決定チロシ
ル部分に影響を与えない。その他の上記標識付きサイモ
ポィヱチンはこの技術に熟練の人々に既知の手段により
作製される。
例えば、酵素標識サィモポィェチンは1972年4月4
日付米国特許No.39 654,090に記載のよう
にして作製される。又〜 197仏王12月10日付の
米国特許船.3,853,987は標識用の例えば蟹光
化合物とラテックス系のようなトレーサー物質を用いる
方法について述べている。従って「標識のこれら方法は
先行技術中に完全に述べられている。それ故、本発明の
標識付きサィモボィェチンは、ラジオアベソトープで標
識されたものも〜上記の他の3物質により標識付けられ
たサィモポィェチンと同機に含まれている。本発明の免
疫検定は「種々の対照ポリベプチドでテスドをし「抗体
−標識抗原複合体の移動のないことを認めることにより
、サイモポイェチンに3特異であることが示された。
日付米国特許No.39 654,090に記載のよう
にして作製される。又〜 197仏王12月10日付の
米国特許船.3,853,987は標識用の例えば蟹光
化合物とラテックス系のようなトレーサー物質を用いる
方法について述べている。従って「標識のこれら方法は
先行技術中に完全に述べられている。それ故、本発明の
標識付きサィモボィェチンは、ラジオアベソトープで標
識されたものも〜上記の他の3物質により標識付けられ
たサィモポィェチンと同機に含まれている。本発明の免
疫検定は「種々の対照ポリベプチドでテスドをし「抗体
−標識抗原複合体の移動のないことを認めることにより
、サイモポイェチンに3特異であることが示された。
特に、組織中に広く広がっている物質であるュービクィ
チン(肋iquitjn)や牛の胸腺より抽出されたヒ
ストン(histone)類との交差反応はなかった。
チン(肋iquitjn)や牛の胸腺より抽出されたヒ
ストン(histone)類との交差反応はなかった。
サィモポィェチンの残港29−41に基づく合成トリデ
カベプ多チドはサィモポィェチンの生物学的活性を有す
るものであるが、これは交差反応しなかった。明らかに
「この区域には〜抗血清中の抗サィモポィェチン抗体に
より認められる抗原性部位を再構成するのに必要な残澄
及びノ又は第三構造もない。本発明を以下の例により更
に説明する。実施例 1 抗原及び抗体の調整 ゴールドスタイン・ネイチヤ−(C℃ldsにin,N
atme)247;11(1974)が記載の如くサイ
モポィェチンを分離した。
カベプ多チドはサィモポィェチンの生物学的活性を有す
るものであるが、これは交差反応しなかった。明らかに
「この区域には〜抗血清中の抗サィモポィェチン抗体に
より認められる抗原性部位を再構成するのに必要な残澄
及びノ又は第三構造もない。本発明を以下の例により更
に説明する。実施例 1 抗原及び抗体の調整 ゴールドスタイン・ネイチヤ−(C℃ldsにin,N
atme)247;11(1974)が記載の如くサイ
モポィェチンを分離した。
免疫のためにそれを「 ァブラミイズ・イミユノケミス
トリイ(Avrameas;lmmunochemis
t沙)6,43(1969)の方法によ0りカップリン
グ剤としてのグルタルアルデヒドと共に、同量の馬のガ
ンマ−‘グロブリンとカップリングさせた。結果として
得た抗原を次いでサィモポィェチン抗体の調製に用いた
。三匹の雌のサン・ジュアン(SanJ船n)ゥサタギ
の各々にtフロィンド完全補助薬中に懸濁したサイモポ
イェチン400ムダをいくつかの場所に注射して免疫を
作った。
トリイ(Avrameas;lmmunochemis
t沙)6,43(1969)の方法によ0りカップリン
グ剤としてのグルタルアルデヒドと共に、同量の馬のガ
ンマ−‘グロブリンとカップリングさせた。結果として
得た抗原を次いでサィモポィェチン抗体の調製に用いた
。三匹の雌のサン・ジュアン(SanJ船n)ゥサタギ
の各々にtフロィンド完全補助薬中に懸濁したサイモポ
イェチン400ムダをいくつかの場所に注射して免疫を
作った。
免疫は2週間の間隔で4回くりかえし、これら動物を最
後の注射後1週間で出血致死させた。実施例 2 サイモポィェチンの放射能標識付け a クロルアミン−T法 サィモポィェチンを更に「 0.2の酢酸アンモニウム
中pH4.5に平衝させ「 直線勾配で0.9M,PH
4。
後の注射後1週間で出血致死させた。実施例 2 サイモポィェチンの放射能標識付け a クロルアミン−T法 サィモポィェチンを更に「 0.2の酢酸アンモニウム
中pH4.5に平衝させ「 直線勾配で0.9M,PH
4。
5にした力ルボキシメチルーセフアデツクス(CM−S
ephadex)(0.6×30肌カラム)で精製した
。
ephadex)(0.6×30肌カラム)で精製した
。
サィモポィヱチンはボィド量のすぐ後に現われ、これら
分画は親液性化しLセフアデツクス(Sephadex
)G−25で脱塩した。ポリアクリルアミド。ゲルの電
気決動pH4.3とpH8.9により純品とした。極〈
純度の高いサィモポィェチン0.01の9を「バンタ−
,アンド。
分画は親液性化しLセフアデツクス(Sephadex
)G−25で脱塩した。ポリアクリルアミド。ゲルの電
気決動pH4.3とpH8.9により純品とした。極〈
純度の高いサィモポィェチン0.01の9を「バンタ−
,アンド。
グリーンウッド・ネイチヤ〜(日肌terand餌ee
nwoodF Natme)? 194,495(19
62)のクoルァミン法により狐Ci担体遊離1氏1で
放射能標議し、0.09の燐酸塩pH7。5中のセフア
デツクスG一25(0.6×30仇カラム)上で未反応
放射ヌクラィドから脇1サィモポィェチンを分離した。
nwoodF Natme)? 194,495(19
62)のクoルァミン法により狐Ci担体遊離1氏1で
放射能標議し、0.09の燐酸塩pH7。5中のセフア
デツクスG一25(0.6×30仇カラム)上で未反応
放射ヌクラィドから脇1サィモポィェチンを分離した。
カラムは燐酸塩緩衡液中でも0。25%ゼラチンで前洗
練した。
練した。
各分画から取ったサンプル1仏その放射能を自動ガンマ
一分光計で測定し〜ボィド量に相当する分画を0.1似
づつの段階をもつ分量に分け、一20午0に貯蔵し、3
週間以内に使用する。b ボルトンーハンター法 ベンゼン中に溶解した2ミリキュリ−の1251沃素化
ピーハィドロキシフェニィルプロピオニツクアシツド・
エヌーハイドロキシサクシニミド,エステル(p‐hy
&o刈phenylpropIonにacidN‐hy
dro刈sMcinimideesteて)(ボルトン
ーハンタ‐試薬ご150にiノmmole)を用いて、
ボルトン・アンド・ハンター,バイオケミ・ジエイ,(
BolりnandHunter,Biochem。
一分光計で測定し〜ボィド量に相当する分画を0.1似
づつの段階をもつ分量に分け、一20午0に貯蔵し、3
週間以内に使用する。b ボルトンーハンター法 ベンゼン中に溶解した2ミリキュリ−の1251沃素化
ピーハィドロキシフェニィルプロピオニツクアシツド・
エヌーハイドロキシサクシニミド,エステル(p‐hy
&o刈phenylpropIonにacidN‐hy
dro刈sMcinimideesteて)(ボルトン
ーハンタ‐試薬ご150にiノmmole)を用いて、
ボルトン・アンド・ハンター,バイオケミ・ジエイ,(
BolりnandHunter,Biochem。
J.)133,529(1973)記述の方法により4
℃でサィモポィェチンを沃素化した。ボルトンーハンタ
ー試薬を蒸気フードの中でガラスびんの口の上を窒素流
を通して乾燥させLサィモポィェチン10ムク(0.1
M棚酸ナトリウム中0.5m9/似;p 日8.5)を
加え、45分間4℃に保った。0.1M棚酸ナトリウム
中の0。
℃でサィモポィェチンを沃素化した。ボルトンーハンタ
ー試薬を蒸気フードの中でガラスびんの口の上を窒素流
を通して乾燥させLサィモポィェチン10ムク(0.1
M棚酸ナトリウム中0.5m9/似;p 日8.5)を
加え、45分間4℃に保った。0.1M棚酸ナトリウム
中の0。
2Mグリシン半ミリリッターpH8.5を更に加えて未
共役結合の試薬と反応させた。
共役結合の試薬と反応させた。
18分後に脇1サイモポイェチンを上記(a)に述べた
方法により共役の他の標識生成物より分離した。
方法により共役の他の標識生成物より分離した。
クロールアミン−T法により放射性沃素化されたサィモ
ポィェチンのわずか5%が過剰の抗体の存在下に結合し
、この結合は10‐3以上の希釈では少くなった。
ポィェチンのわずか5%が過剰の抗体の存在下に結合し
、この結合は10‐3以上の希釈では少くなった。
それに反しボルトンーハンター法で放射性沃素化したサ
ィモポィェチンの45%が過剰の抗体の存在下に結合し
た。この結合は又、10‐3以上の抗体希釈で減少した
。実施例 3a 放射性免疫検定ーポリェチレングリコ
ール分離12×75側のプラスチック製チューブの中で
培養を三通り行った。
ィモポィェチンの45%が過剰の抗体の存在下に結合し
た。この結合は又、10‐3以上の抗体希釈で減少した
。実施例 3a 放射性免疫検定ーポリェチレングリコ
ール分離12×75側のプラスチック製チューブの中で
培養を三通り行った。
0.01M燐酸塩緩衡0.18MNaCI中(Bは緩衝
液)5%牛のガンマーグロブリンで希釈した抗血清0.
5の‘に0.2の‘のサンプルと、0.3の【の1環1
−サイモポイエチン(ミ50,00比pm,BGG緩衡
液中)を加えた。
液)5%牛のガンマーグロブリンで希釈した抗血清0.
5の‘に0.2の‘のサンプルと、0.3の【の1環1
−サイモポイエチン(ミ50,00比pm,BGG緩衡
液中)を加えた。
血清サンプルを検定する時には、pH8.0の0.1M
重炭酸アンモニウム中G−50セフアデックスでの分子
節クロマトグラフィにより作製する。除外量(Vo)後
の分画と算入量(Vi)の最初のものはプールしておき
、凍結乾燥し、その粉末はサイモポィェチン用に緩衡液
中で採取する。
重炭酸アンモニウム中G−50セフアデックスでの分子
節クロマトグラフィにより作製する。除外量(Vo)後
の分画と算入量(Vi)の最初のものはプールしておき
、凍結乾燥し、その粉末はサイモポィェチン用に緩衡液
中で採取する。
この調製は分子量がサィモポイヱチンよりも大きい分子
や小さい分子をこの検定から除外するのに役立つ。検定
用チューブは渦巻ミキサーで燈拝し、室温で2時間放置
した。
や小さい分子をこの検定から除外するのに役立つ。検定
用チューブは渦巻ミキサーで燈拝し、室温で2時間放置
した。
次いで冷たい30%ポリエチレン・グリコール半ミリリ
ッターを渦巻ミキサーで燈拝した各チューブに加え、3
0分間冷却遠心分離機で2,00比pmで途淡した。上
ずみ液を吸引し、沈澱物中の放射能を自動ガンマ‐分光
器で測定した。沈澱しだ251サィモポィェチン(%)
はa−c(b−c)×100の式により計算する。こ)
でa=抗体で沈澱したcpm,b;加えたcpm総量,
c=正常なウサギ血清又は抗体と過剰の非標識サィモポ
ィェチン(これらは通常全cpmの約10%)で非特異
的に沈澱するcpm。結合阻害の標準曲線のために、結
合したサイモポイェチンは10‐1における抗体と結合
した最大サィモポイェチンのパーセンテージとして計算
した。1三3000の抗体希釈液を結合阻害の標準曲線
のために使用した。
ッターを渦巻ミキサーで燈拝した各チューブに加え、3
0分間冷却遠心分離機で2,00比pmで途淡した。上
ずみ液を吸引し、沈澱物中の放射能を自動ガンマ‐分光
器で測定した。沈澱しだ251サィモポィェチン(%)
はa−c(b−c)×100の式により計算する。こ)
でa=抗体で沈澱したcpm,b;加えたcpm総量,
c=正常なウサギ血清又は抗体と過剰の非標識サィモポ
ィェチン(これらは通常全cpmの約10%)で非特異
的に沈澱するcpm。結合阻害の標準曲線のために、結
合したサイモポイェチンは10‐1における抗体と結合
した最大サィモポイェチンのパーセンテージとして計算
した。1三3000の抗体希釈液を結合阻害の標準曲線
のために使用した。
b 放射性免疫検定一二重抗体分離法
上記(a)の方法は』MKCIB的機衡液を用いる時以
外はくり返した。
外はくり返した。
そして2時間の培養期間後、全体で0.1泌のャギの抗
ウサギ抗体及び0.02の土の正常ウサギを加え、この
成分を渦巻ミキサーで混合し、得た混合物を室温で5分
間放置し「次いで遠沈した。上ずみ液を吸引し、沈澱物
はaに述べたようにして放射能を測定した。c 放射性
免疫検定−デキストラン被覆チャコール分離法デキスト
ラン被覆チャコールは同量の(ilか舷CIと牛のガン
マーグロブリンを含む燐酸塩緩衝液100肌‘当り5夕
のNoritAチャコール,(ii)IMKCI及び牛
のガンマーグロブリンを含む燐酸塩緩衡液100泌当り
0.5夕のデキストラン110を混合して作る。
ウサギ抗体及び0.02の土の正常ウサギを加え、この
成分を渦巻ミキサーで混合し、得た混合物を室温で5分
間放置し「次いで遠沈した。上ずみ液を吸引し、沈澱物
はaに述べたようにして放射能を測定した。c 放射性
免疫検定−デキストラン被覆チャコール分離法デキスト
ラン被覆チャコールは同量の(ilか舷CIと牛のガン
マーグロブリンを含む燐酸塩緩衝液100肌‘当り5夕
のNoritAチャコール,(ii)IMKCI及び牛
のガンマーグロブリンを含む燐酸塩緩衡液100泌当り
0.5夕のデキストラン110を混合して作る。
全体で0.5柵【のデキストラン被覆チャコールを上記
(b)のようにして2時間培養した後に検定チューブに
4℃加え、その混合物を4℃で30分間放置する。
(b)のようにして2時間培養した後に検定チューブに
4℃加え、その混合物を4℃で30分間放置する。
これらチューブを遠沈し、その上ずみ液を吸引した。べ
レットについて放射能を測定し、それはこの検定では“
非結合”サイモポイエチンを示すものである。抗原−抗
体複合体のポリエチレン・グリコ−ル分離法を採用した
検定での非標識サィモポィェチンのための結合阻害標準
曲線は、跡gノの‘以上のサィモポィェチン濃度に対す
る感腹を示した。
レットについて放射能を測定し、それはこの検定では“
非結合”サイモポイエチンを示すものである。抗原−抗
体複合体のポリエチレン・グリコ−ル分離法を採用した
検定での非標識サィモポィェチンのための結合阻害標準
曲線は、跡gノの‘以上のサィモポィェチン濃度に対す
る感腹を示した。
10〜1,00仇g/の【の濃度では、インシュリン,
アルフアーバンガロトキシン(alpha− bung
arotoxin), ユ ー ビ クイ チ ン(u
biquitin),ヒストン(histo肥)及びサ
イモポィェチンの合成トリデカベプチド成分(残澄29
−41)を含む対照ポリベプチドーこより有意の移動の
起ることはなかった。
アルフアーバンガロトキシン(alpha− bung
arotoxin), ユ ー ビ クイ チ ン(u
biquitin),ヒストン(histo肥)及びサ
イモポィェチンの合成トリデカベプチド成分(残澄29
−41)を含む対照ポリベプチドーこより有意の移動の
起ることはなかった。
抗原−抗体複合物の二重抗体及びデキストラン被覆チャ
コール分離法を用いた検定における非標識サィモポィェ
チンについての結合阻害曲線は、いずれも0.1増サィ
モポィヱチン/似のサィモポィェチン濃度までの感度を
示した。
コール分離法を用いた検定における非標識サィモポィェ
チンについての結合阻害曲線は、いずれも0.1増サィ
モポィヱチン/似のサィモポィェチン濃度までの感度を
示した。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 サイモポイエチン及び免疫原担体物質と結合してい
るサイモポイエチンより実質的になる抗原に特異性を有
する抗体と共に試料中のサイモポイエチンの免疫検定に
使用する標識付きサイモポイエチンであって、該サイモ
ポイエチン特異性抗体は上記抗原を宿主動物に接種し、
その血清を該宿主動物より回収することにより作成され
るものでありかつ該標識付きサイモポイエチンの標識が
トリチウム,炭素^1^4,沃素^1^3^1,沃素^
1^2^5,発色団,螢光団,酵素,赤血球,ラテツク
ス粒,及び電子スピン共振群よりなる群より選ばれたも
のであることを特徴とする標識付きサイモポイエチン。 2 標識が^1^2^5Iである特許請求の範囲第1項
による標識付きサイモポイエチン。3 サンプル中のサ
イモポイエチンの検定の方法であって、この方法は該サ
ンプルを標識付きサイモポイエチンの既知量と該サイモ
ポイエチンと選択的に結合する抗体とに混ぜ、生じた抗
体−抗原複合物を上ずみ液から分離し、該複合物中の該
標識付きサイモポイエチンの結合度を測定し、該結合度
を、既知量のサイモポイエチンを一定量の該標識付きサ
イモポイエチンと該抗体とを混合しサイモポイエチンの
各既知量に対する結合度を測定して得た標準曲線と比較
して、該サンプル中に存在するサイモポイエチンの量を
決定する方法。 4 放射性免疫検定が用いられ、かつ放射性標識付きサ
イモポイエチンが用いられる特許請求の範囲第3項の方
法。 5 抗体−抗原複合物を30%ポリエチレン・グリコー
ルの助けにより溶液より分離する特許請求の範囲第4項
の方法。 6 抗体−抗原複合物を、サイモポイエチン抗体がそこ
から引出されてきた宿主動物の血清に対する抗体を用い
る二重抗体方の助けにより溶液より分離する特許請求の
範囲第4項の方法。 7 抗体−抗原複合物を溶液よりデキストラン被覆チヤ
コール法により分離し、この場合沈澱物の放射能は非結
合サイモポイエチンを表わすものである特許請求の範囲
第4項の方法。 8 該放射性標識付きサイモポイエチンが^1^2^5
Iサイモポイエチンである特許請求の範囲第4項の方法
。 9 検定するサンプルが血漿又は血清サンプルである特
許請求の範囲第4項の方法。
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US05/709,565 US4055633A (en) | 1976-07-28 | 1976-07-28 | Immunoassay for thymopoietin |
| US05/810,269 US4124700A (en) | 1976-07-28 | 1977-06-27 | Immunoassay for thymopoietin |
| US810269 | 1977-06-27 | ||
| US709565 | 1996-09-06 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5459318A JPS5459318A (en) | 1979-05-12 |
| JPS6012576B2 true JPS6012576B2 (ja) | 1985-04-02 |
Family
ID=27108277
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9021277A Expired JPS6012576B2 (ja) | 1976-07-28 | 1977-07-27 | サイモポイエチンの免疫検定 |
Country Status (9)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6012576B2 (ja) |
| AU (1) | AU497627B1 (ja) |
| CA (1) | CA1075600A (ja) |
| DE (1) | DE2733561C3 (ja) |
| FR (1) | FR2359851A1 (ja) |
| GB (1) | GB1545332A (ja) |
| IT (1) | IT1126757B (ja) |
| NZ (1) | NZ184667A (ja) |
| SE (1) | SE447165B (ja) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2557458B1 (fr) * | 1983-12-30 | 1987-09-04 | Centre Nat Rech Scient | Nouveaux anticorps capables de reconnaitre specifiquement des groupements hapteniques, leur preparation et leur application, et nouveaux antigenes permettant de les preparer |
| GB2160312B (en) * | 1984-04-13 | 1987-09-16 | South African Inventions | Adjuvant for immunisation |
| FR2581313A1 (fr) * | 1985-05-02 | 1986-11-07 | Pasteur Institut | Composes suscitant la formation d'anticorps, compositions immunogeniques et compositions immunoprotectrices les contenant et procede d'obtention d'anticorps les mettant en oeuvre |
| US5593842A (en) * | 1994-09-20 | 1997-01-14 | Gideon Goldstein | Method of measuring thymopoietin proteins in plasma and serum including acidification of the plasma and serum |
-
1977
- 1977-07-15 CA CA282,819A patent/CA1075600A/en not_active Expired
- 1977-07-18 NZ NZ18466777A patent/NZ184667A/xx unknown
- 1977-07-19 GB GB3017777A patent/GB1545332A/en not_active Expired
- 1977-07-26 IT IT5044677A patent/IT1126757B/it active
- 1977-07-26 DE DE19772733561 patent/DE2733561C3/de not_active Expired
- 1977-07-27 JP JP9021277A patent/JPS6012576B2/ja not_active Expired
- 1977-07-27 AU AU27382/77A patent/AU497627B1/en not_active Expired
- 1977-07-27 SE SE7708625A patent/SE447165B/xx not_active IP Right Cessation
- 1977-07-27 FR FR7723092A patent/FR2359851A1/fr active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| AU497627B1 (en) | 1978-12-21 |
| SE447165B (sv) | 1986-10-27 |
| DE2733561B2 (de) | 1979-07-26 |
| GB1545332A (en) | 1979-05-10 |
| IT1126757B (it) | 1986-05-21 |
| FR2359851B1 (ja) | 1983-04-01 |
| DE2733561C3 (de) | 1980-04-03 |
| NZ184667A (en) | 1980-02-21 |
| JPS5459318A (en) | 1979-05-12 |
| FR2359851A1 (fr) | 1978-02-24 |
| DE2733561A1 (de) | 1978-02-02 |
| CA1075600A (en) | 1980-04-15 |
| SE7708625L (sv) | 1978-01-29 |
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